JPH1067796A - 環状ペプチドの合成法 - Google Patents
環状ペプチドの合成法Info
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- JPH1067796A JPH1067796A JP24564896A JP24564896A JPH1067796A JP H1067796 A JPH1067796 A JP H1067796A JP 24564896 A JP24564896 A JP 24564896A JP 24564896 A JP24564896 A JP 24564896A JP H1067796 A JPH1067796 A JP H1067796A
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Abstract
(57)【要約】
【課題】 環状ペプチドを収率良く合成する。
【解決手段】 ペプチドの固相合成において、樹脂上に
直鎖ペプチドを合成した後、次いでエーテル系の溶媒に
溶解したヨウ素を作用させることにより、ジスルフィド
結合を形成させ、その後ペプチドを樹脂上から切り離
す。
直鎖ペプチドを合成した後、次いでエーテル系の溶媒に
溶解したヨウ素を作用させることにより、ジスルフィド
結合を形成させ、その後ペプチドを樹脂上から切り離
す。
Description
【０００１】
【発明の属する技術分野】本発明は固相合成法におい
て、収率良く環状ペプチドを得る方法に関する。
て、収率良く環状ペプチドを得る方法に関する。
【０００２】
【従来の技術】ペプチドや蛋白質には、分子内にジスル
フィド結合を持っているものが多く有り、それが構造の
安定や生理活性の保持に寄与している。通常、ジスルフ
ィド結合を持つ環状ペプチドは、液相法によって高希釈
条件下で、システインのスルヒドリル基を酸化して得ら
れてきた。しかしこの高希釈条件下の反応は、分子間の
ジスルフィド結合の生成を抑制し分子内環化には望まし
い条件ではあるが、収率が低くその改善が望まれてい
た。また、固相合成法においても、合成したペプチドを
固相上でジメチルホルムアミド懸濁下、ヨウ素にて環化
させジスルフィド結合を得ているとの報告もあるが、収
率的に必ずしも満足すべきものではない。
フィド結合を持っているものが多く有り、それが構造の
安定や生理活性の保持に寄与している。通常、ジスルフ
ィド結合を持つ環状ペプチドは、液相法によって高希釈
条件下で、システインのスルヒドリル基を酸化して得ら
れてきた。しかしこの高希釈条件下の反応は、分子間の
ジスルフィド結合の生成を抑制し分子内環化には望まし
い条件ではあるが、収率が低くその改善が望まれてい
た。また、固相合成法においても、合成したペプチドを
固相上でジメチルホルムアミド懸濁下、ヨウ素にて環化
させジスルフィド結合を得ているとの報告もあるが、収
率的に必ずしも満足すべきものではない。
【０００３】
【発明が解決しょうとする課題】従って、本発明の目的
は固相合成した直鎖ペプチドから収率良く環状ペプチド
を得るための方法を提供する事である。
は固相合成した直鎖ペプチドから収率良く環状ペプチド
を得るための方法を提供する事である。
【０００４】
【課題を解決するための手段】本発明者等は、前述の課
題を解決するため鋭意研究を行った結果、環化反応をエ
ーテル系の溶媒で行う事により、収率良く環状ペプチド
が得られる事を見出し本発明を完成するに至った。すな
わち、本発明はペプチドの固相合成において、樹脂上に
直鎖ペプチドを合成した後、次いでエーテル系の溶媒に
溶解したヨウ素を作用させることにより、ジスルフィド
結合を形成させ、その後ペプチドを樹脂上から切り離す
ことを特徴とする環状ペプチドの合成法に関するもので
ある。
題を解決するため鋭意研究を行った結果、環化反応をエ
ーテル系の溶媒で行う事により、収率良く環状ペプチド
が得られる事を見出し本発明を完成するに至った。すな
わち、本発明はペプチドの固相合成において、樹脂上に
直鎖ペプチドを合成した後、次いでエーテル系の溶媒に
溶解したヨウ素を作用させることにより、ジスルフィド
結合を形成させ、その後ペプチドを樹脂上から切り離す
ことを特徴とする環状ペプチドの合成法に関するもので
ある。
【０００５】次に本発明について詳細に説明する。ペプ
チドの固相合成に関しては、通常の合成法が使用される
が、例えば「ペプチド合成の基礎と実験」｛丸善（株）
著者（泉屋等）１９８５年｝などに記載されている方法
が挙げられる。
チドの固相合成に関しては、通常の合成法が使用される
が、例えば「ペプチド合成の基礎と実験」｛丸善（株）
著者（泉屋等）１９８５年｝などに記載されている方法
が挙げられる。
【０００６】本発明に使用される樹脂については、通常
固相合成法において使用される樹脂でペプチドを樹脂か
ら切り離した時、目的とするペプチドのＣ末端がアミド
体又はカルボン酸体となる樹脂であれば特に限定される
ものではない。例えば、Ｎ−α−９−フルオレニルメト
キシカルボニル−４−（２，４−ジメトキシフェニルア
ミノメチル）レジン｛Ｆmoc-ＮＨ−ＳＡＬ−Ｒesin 渡
辺化学（株）製｝やＮ−α−９−フルオレニルメトキシ
カルボニルアミノアシッド−Ｐ−アルコキシベンゾイル
アルコールレジン｛Ｆmoc- Ａmino Ａcid Ａlko Ｒ
esin 渡辺化学（株）製｝等の樹脂が挙げられる。
固相合成法において使用される樹脂でペプチドを樹脂か
ら切り離した時、目的とするペプチドのＣ末端がアミド
体又はカルボン酸体となる樹脂であれば特に限定される
ものではない。例えば、Ｎ−α−９−フルオレニルメト
キシカルボニル−４−（２，４−ジメトキシフェニルア
ミノメチル）レジン｛Ｆmoc-ＮＨ−ＳＡＬ−Ｒesin 渡
辺化学（株）製｝やＮ−α−９−フルオレニルメトキシ
カルボニルアミノアシッド−Ｐ−アルコキシベンゾイル
アルコールレジン｛Ｆmoc- Ａmino Ａcid Ａlko Ｒ
esin 渡辺化学（株）製｝等の樹脂が挙げられる。
【０００７】本発明で使用されるアミノ酸としては、通
常のペプチド合成に用いられるものであれば特に限定さ
れない。本発明におけるペプチドの環化は、システイン
のスルヒドリル基間のジスルフィド結合の形成による
が、このスルヒドリル基の保護基としてはトリチル（Ｔ
ｒｔ）基やアセトアミド（Ａｃｍ）基が挙げられる。
常のペプチド合成に用いられるものであれば特に限定さ
れない。本発明におけるペプチドの環化は、システイン
のスルヒドリル基間のジスルフィド結合の形成による
が、このスルヒドリル基の保護基としてはトリチル（Ｔ
ｒｔ）基やアセトアミド（Ａｃｍ）基が挙げられる。
【０００８】システイン（Ｃｙｓ）以外のアミノ酸の側
鎖保護基は、市販されているもので通常固相合成に使用
されるものであれば良く、目的に応じて使用変更出来る
が、通常使用される側鎖保護基としては、例えばＮ−ω
−（２，２，５，７，８−ペンタメチルクロマン−６−
スルホニル（Ｐｍｃ）基、ｔ−ブチル（ｔＢｕ）基、ｔ
−ブトキシカルボニル（Ｂｏｃ）基等が挙げられる。
鎖保護基は、市販されているもので通常固相合成に使用
されるものであれば良く、目的に応じて使用変更出来る
が、通常使用される側鎖保護基としては、例えばＮ−ω
−（２，２，５，７，８−ペンタメチルクロマン−６−
スルホニル（Ｐｍｃ）基、ｔ−ブチル（ｔＢｕ）基、ｔ
−ブトキシカルボニル（Ｂｏｃ）基等が挙げられる。
【０００９】固相合成法での保護アミノ酸の縮合は、通
常の固相合成法に用いる縮合剤を使用する方法や、活性
エステル法等を目的に応じて使う事ができる。縮合剤と
しては、１，３−ジイソプロピルカルボジイミド（ＤＩ
ＰＣＩ）、ジシクロヘキシルカルボジイミド（ＤＣ
Ｃ）、水溶性カルボジイミド（ＷＳＣ）、水溶性カルボ
ジイミド塩酸塩（ＷＳＣ・ＨＣｌ）、２−（１Ｈ−ベン
ゾトリアゾール−１−イル）−１，１，３，３−テトラ
メチルウロニゥムテトラフルオロボレ−ト（ＴＢＴＵ）
等が挙げられるが、前記以外にも通常固相合成用に市販
されている縮合剤を目的に応じて使う事ができる。活性
エステル化剤としては、Ｎ−ヒドロキシ−５−ノルボル
ネン−２，３−ジカルボキシイミド（ＨＯＮＢ）等が挙
げられる。更にラセミ化抑制剤として、Ｎ−ヒドロキシ
トリアゾール（ＨＯＢＴ）等を使用しても良い。前記以
外にも通常固相合成用に市販されている縮合剤、ラセミ
化抑制剤、活性エステル化剤を目的に応じて使うことが
できる。
常の固相合成法に用いる縮合剤を使用する方法や、活性
エステル法等を目的に応じて使う事ができる。縮合剤と
しては、１，３−ジイソプロピルカルボジイミド（ＤＩ
ＰＣＩ）、ジシクロヘキシルカルボジイミド（ＤＣ
Ｃ）、水溶性カルボジイミド（ＷＳＣ）、水溶性カルボ
ジイミド塩酸塩（ＷＳＣ・ＨＣｌ）、２−（１Ｈ−ベン
ゾトリアゾール−１−イル）−１，１，３，３−テトラ
メチルウロニゥムテトラフルオロボレ−ト（ＴＢＴＵ）
等が挙げられるが、前記以外にも通常固相合成用に市販
されている縮合剤を目的に応じて使う事ができる。活性
エステル化剤としては、Ｎ−ヒドロキシ−５−ノルボル
ネン−２，３−ジカルボキシイミド（ＨＯＮＢ）等が挙
げられる。更にラセミ化抑制剤として、Ｎ−ヒドロキシ
トリアゾール（ＨＯＢＴ）等を使用しても良い。前記以
外にも通常固相合成用に市販されている縮合剤、ラセミ
化抑制剤、活性エステル化剤を目的に応じて使うことが
できる。
【００１０】反応の溶媒としては、ジメチルホルムアミ
ド（ＤＭＦ）、Ｎ−メチル−２−ピロリジノン（ＮＭ
Ｐ）、塩化メチレン（ＤＣＭ）、アセトニトリル（ＣＨ
３ＣＮ）等を、単独あるいは２種類以上を、適当な割合
で混合して用いる事ができる。アミノ酸のα位の保護基
としては、Ｎ−α−９−フルオニルメトキシカルボニル
（Ｆｍｏｃ）基を使用しているが、この保護基の除去方
法としては、本発明の実施例ではＤＭＦにピペリジン
（ＰＩＰ）を１：１の容量比で混合した溶液を使用して
いるが、ＰＩＰの容量比がＤＭＦに対して２０％〜６０
％であれば特に限定されるものではない。
ド（ＤＭＦ）、Ｎ−メチル−２−ピロリジノン（ＮＭ
Ｐ）、塩化メチレン（ＤＣＭ）、アセトニトリル（ＣＨ
３ＣＮ）等を、単独あるいは２種類以上を、適当な割合
で混合して用いる事ができる。アミノ酸のα位の保護基
としては、Ｎ−α−９−フルオニルメトキシカルボニル
（Ｆｍｏｃ）基を使用しているが、この保護基の除去方
法としては、本発明の実施例ではＤＭＦにピペリジン
（ＰＩＰ）を１：１の容量比で混合した溶液を使用して
いるが、ＰＩＰの容量比がＤＭＦに対して２０％〜６０
％であれば特に限定されるものではない。
【００１１】ヨウ素を使用して行う環化反応のエーテル
系溶媒としては、例えばジエチルエーテル、テトラヒド
ロフラン、又はジオキサンが挙げられるが、特にジエチ
ルエーテルが好ましい。反応温度としては、使用する溶
媒によって異なるが、通常０〜５０℃であり、好ましく
は１０℃〜３０℃の間である。反応時間としては、使用
する溶媒によって異なるが、通常３０分〜３時間の間で
あり、好ましくは５０〜７０分間である。
系溶媒としては、例えばジエチルエーテル、テトラヒド
ロフラン、又はジオキサンが挙げられるが、特にジエチ
ルエーテルが好ましい。反応温度としては、使用する溶
媒によって異なるが、通常０〜５０℃であり、好ましく
は１０℃〜３０℃の間である。反応時間としては、使用
する溶媒によって異なるが、通常３０分〜３時間の間で
あり、好ましくは５０〜７０分間である。
【００１２】環化反応終了後、環化されたペプチドの樹
脂からの切り離しは、ペプチド中に側鎖保護基がある場
合は、保護基の切断も同時に行う条件、すなわちＲeage
ntＫ（Ｉnt. Ｊ．Ｐept.Ｐrot Ｒes Ｖol３６ ２５５
（１９９０））を使用することができる。その他に、ト
リフルオロ酢酸又は酢酸を含む試剤などが目的に応じて
使用可能である。
脂からの切り離しは、ペプチド中に側鎖保護基がある場
合は、保護基の切断も同時に行う条件、すなわちＲeage
ntＫ（Ｉnt. Ｊ．Ｐept.Ｐrot Ｒes Ｖol３６ ２５５
（１９９０））を使用することができる。その他に、ト
リフルオロ酢酸又は酢酸を含む試剤などが目的に応じて
使用可能である。
【００１３】
【実施例】以下、本発明を実施例により具体的に説明す
るが、本発明により合成し得る環状ペプチドの種類はこ
れらの実施例のみに限定されるものではない。
るが、本発明により合成し得る環状ペプチドの種類はこ
れらの実施例のみに限定されるものではない。
【００１４】実施例１ 式〔Ｉ〕で表される環状ペプチ
ドの合成−ジエチルエーテル溶媒
ドの合成−ジエチルエーテル溶媒
【化１】
【００１５】Fmoc-NH-SAL-Resin(以下Fmocレジンと略）
５０ｍｇ（アミノ基 0.52mmol/ gr) をアシストチュー
ブ内にサンプリングし、マルチペプチドシンセサイザー
（ＡＣＴ３５０型 アドバンストケムテック社製）にセ
ットした。予めこのＡＣＴ３５０型に組み込んだプロト
コール（Fmoc- アミノ酸を用いる通常のペプチド合成
法）によって、直鎖ペプチドを合成した。 １）Fmocレジンの脱Fmoc化 FmocレジンをＤＭＦ６００μｌ×２で洗浄後、５０％Ｐ
ＩＰ／ＤＭＦ６００μｌを加え、３分間脱Fmoc化を行っ
た。その後この液を抜取りもう一度５０％ＰＩＰ／ＤＭ
Ｆ６００μｌを加え、今度は１２分間脱Fmoc化を行っ
た。脱Fmoc化が終わったレジンをＤＭＦ６００μｌ×７
で洗浄してＰＩＰを除いた。
５０ｍｇ（アミノ基 0.52mmol/ gr) をアシストチュー
ブ内にサンプリングし、マルチペプチドシンセサイザー
（ＡＣＴ３５０型 アドバンストケムテック社製）にセ
ットした。予めこのＡＣＴ３５０型に組み込んだプロト
コール（Fmoc- アミノ酸を用いる通常のペプチド合成
法）によって、直鎖ペプチドを合成した。 １）Fmocレジンの脱Fmoc化 FmocレジンをＤＭＦ６００μｌ×２で洗浄後、５０％Ｐ
ＩＰ／ＤＭＦ６００μｌを加え、３分間脱Fmoc化を行っ
た。その後この液を抜取りもう一度５０％ＰＩＰ／ＤＭ
Ｆ６００μｌを加え、今度は１２分間脱Fmoc化を行っ
た。脱Fmoc化が終わったレジンをＤＭＦ６００μｌ×７
で洗浄してＰＩＰを除いた。
【００１６】２）Fmoc-Cys(Acm)-Ile-His(Trt)-Glu(OtB
u)-Pro-Lys(Boc)-Cys (Trt)-レジンの合成 ２─１）Fmoc-Cys(Trt)-レジンの合成 １）で脱Fmocしたレジンに、Fmoc-Cys(Trt) ７６ｍｇ
（レジンのアミノ基に対して５当量分）をＨＯＢＴ１８
ｍｇとＮＭＰ６００μｌの溶液に溶解し加えた。さら
に、ＤＩＰＣＩ １９ｍｇとＮＭＰ１５０μｌの溶液を
加え、３０分間縮合反応を行った。３０分後この液を抜
取り、もう一度同一操作を繰り返しダブルカップリング
を行った。縮合反応後このFmoc-Cys(Trt)-レジンをＤＭ
Ｆ６００μｌ×３で洗浄し、過剰のFmoc-Cys(Trt) やＤ
ＩＰＣＩを除いた。
u)-Pro-Lys(Boc)-Cys (Trt)-レジンの合成 ２─１）Fmoc-Cys(Trt)-レジンの合成 １）で脱Fmocしたレジンに、Fmoc-Cys(Trt) ７６ｍｇ
（レジンのアミノ基に対して５当量分）をＨＯＢＴ１８
ｍｇとＮＭＰ６００μｌの溶液に溶解し加えた。さら
に、ＤＩＰＣＩ １９ｍｇとＮＭＰ１５０μｌの溶液を
加え、３０分間縮合反応を行った。３０分後この液を抜
取り、もう一度同一操作を繰り返しダブルカップリング
を行った。縮合反応後このFmoc-Cys(Trt)-レジンをＤＭ
Ｆ６００μｌ×３で洗浄し、過剰のFmoc-Cys(Trt) やＤ
ＩＰＣＩを除いた。
【００１７】２−２）Fmoc-Lys(Boc)-Cys(Trt)- レジン
の合成 得られたFmoc-Cys(Trt)-レジンを上の１）と同一操作に
より脱Fmoc化後、２−１）と同一操作により、ただしFm
oc-Cys(Trt) に代えてFmoc-Lys(Boc) ６１ｍｇを使用し
てFmoc-Lys(Boc)-Cys(Trt)- レジンを合成した。 ２−３）Fmoc-Cys(Acm) -Ile-His(Trt) -Glu(OtBu)-Pro
-Lys(Boc)-Cys(Trt)−レジンの合成 ２−２）と同一操作にて、Fmoc-Pro４４ｍｇ、Fmoc-Glu
(OtBu)５５ｍｇ、Fmoc-His(Trt) ８１ｍｇ、Fmoc-Ile４
６ｍｇ、及びFmoc-Cys(Acm) ５４ｍｇを使用して、順次
脱Fmoc化と縮合反応を行い、Fmoc-Cys(Acm)-Ile-His(Tr
t)-Glu(OtBu)-Pro-Lys(Boc)-Cys(Trt)−レジンを合成し
た。
の合成 得られたFmoc-Cys(Trt)-レジンを上の１）と同一操作に
より脱Fmoc化後、２−１）と同一操作により、ただしFm
oc-Cys(Trt) に代えてFmoc-Lys(Boc) ６１ｍｇを使用し
てFmoc-Lys(Boc)-Cys(Trt)- レジンを合成した。 ２−３）Fmoc-Cys(Acm) -Ile-His(Trt) -Glu(OtBu)-Pro
-Lys(Boc)-Cys(Trt)−レジンの合成 ２−２）と同一操作にて、Fmoc-Pro４４ｍｇ、Fmoc-Glu
(OtBu)５５ｍｇ、Fmoc-His(Trt) ８１ｍｇ、Fmoc-Ile４
６ｍｇ、及びFmoc-Cys(Acm) ５４ｍｇを使用して、順次
脱Fmoc化と縮合反応を行い、Fmoc-Cys(Acm)-Ile-His(Tr
t)-Glu(OtBu)-Pro-Lys(Boc)-Cys(Trt)−レジンを合成し
た。
【００１８】２−４）Fmoc-Cys(Acm)-Ile-His(Trt)-Glu
(OtBu)-Pro-Lys(Boc)-Cys(Trt)−レジンの脱Fmoc化 上の２−３）で得られたペプチドレジンを、１）と同一
操作にて、脱Fmoc化し８４．２１ｍｇの H-Cys(Acm)-Il
e-His(Trt)-Glu(OtBu)-Pro-Lys(Boc)-Cys(Trt)−レジン
を得た（縮合後の増量：３４．２１ｍｇ）．
(OtBu)-Pro-Lys(Boc)-Cys(Trt)−レジンの脱Fmoc化 上の２−３）で得られたペプチドレジンを、１）と同一
操作にて、脱Fmoc化し８４．２１ｍｇの H-Cys(Acm)-Il
e-His(Trt)-Glu(OtBu)-Pro-Lys(Boc)-Cys(Trt)−レジン
を得た（縮合後の増量：３４．２１ｍｇ）．
【００１９】３）スルヒドリル基の保護基の脱離と環化 上で得られた直鎖保護ペプチドレジン８４．２１ｍｇ
に、ヨウ素１００ｍｇとジエチルエーテル３００μｌの
溶液を加え、２０℃にて１時間攪拌し、直鎖保護ペプチ
ドレジンを環状体とした。
に、ヨウ素１００ｍｇとジエチルエーテル３００μｌの
溶液を加え、２０℃にて１時間攪拌し、直鎖保護ペプチ
ドレジンを環状体とした。
【００２０】４）側鎖保護基の脱保護とレジンからの脱
離 ４−１）環状保護ペプチドレジンを、ジエチルエーテル
を使用しグラスフィルター内に移し、まずジエチルエー
テル２ｍｌ×２回、水２ｍｌ×２回、０．１規定のアス
コルビン酸水２ｍｌ×２回、エタノール２ｍｌ×５回、
更にジエチルエーテル２ｍｌ×５回にて洗浄した。洗浄
後の環状保護ペプチドレジンを４．５ｍｌのセラムチュ
ーブ内に移し、Ｒegent Ｋ１ｍｌを加え、２０℃で２．
５時間攪拌し、アミノ酸の側鎖保護基の脱保護とレジン
からの脱離を行った。 ４−２）セラムチューブ内の目的物である環状ペプチド
と、レジンの混合物を２分間氷冷し、ジエチルエーテル
２ｍｌを加え目的物を沈澱させた。この目的物とレジン
の混合物を、ジエチルエーテルにてグラスフィルター上
に濾取し、ジエチルエーテル２ｍｌ×５回で洗浄しＲeg
ent Ｋの試薬等を除いた。その後グラスフィルター上の
目的物を、２０％酢酸水２ｍｌ×３回にて溶解し、溶液
として硝子容器内に回収し、その後凍結乾燥を行い環状
ペプチド２１．０５ｍｇ（粗収率９８．１４％ ＨＰＬ
Ｃ純度５４％）を得た。精製収量１１．１６ｍｇ（収率
５２．０３％） ＥＳＩ−ＭＳ：ｍ／ｚ ８２５（Ｍ＋
Ｈ）+
離 ４−１）環状保護ペプチドレジンを、ジエチルエーテル
を使用しグラスフィルター内に移し、まずジエチルエー
テル２ｍｌ×２回、水２ｍｌ×２回、０．１規定のアス
コルビン酸水２ｍｌ×２回、エタノール２ｍｌ×５回、
更にジエチルエーテル２ｍｌ×５回にて洗浄した。洗浄
後の環状保護ペプチドレジンを４．５ｍｌのセラムチュ
ーブ内に移し、Ｒegent Ｋ１ｍｌを加え、２０℃で２．
５時間攪拌し、アミノ酸の側鎖保護基の脱保護とレジン
からの脱離を行った。 ４−２）セラムチューブ内の目的物である環状ペプチド
と、レジンの混合物を２分間氷冷し、ジエチルエーテル
２ｍｌを加え目的物を沈澱させた。この目的物とレジン
の混合物を、ジエチルエーテルにてグラスフィルター上
に濾取し、ジエチルエーテル２ｍｌ×５回で洗浄しＲeg
ent Ｋの試薬等を除いた。その後グラスフィルター上の
目的物を、２０％酢酸水２ｍｌ×３回にて溶解し、溶液
として硝子容器内に回収し、その後凍結乾燥を行い環状
ペプチド２１．０５ｍｇ（粗収率９８．１４％ ＨＰＬ
Ｃ純度５４％）を得た。精製収量１１．１６ｍｇ（収率
５２．０３％） ＥＳＩ−ＭＳ：ｍ／ｚ ８２５（Ｍ＋
Ｈ）+
【００２１】実施例２ 式〔Ｉ〕で表される環状ペプチ
ドの合成−ＴＨＦ溶媒 実施例１の１）〜２）の操作を行い、目的とする直鎖保
護ペプチドレジンを９０．０１ｍｇ得た（縮合後の増
量：４０．０１ｍｇ）。これに、ヨウ素１００ｍｇとテ
トラヒドロフラン３００μｌの懸濁液を加え、２０℃で
１時間攪拌し環状体とした。次いで実施例１の４）と同
一操作を行い、環状ペプチド１９．９４ｍｇ（粗収率９
２．９６％ ＨＰＬＣ純度４３％）を得た。精製収量
７．９７ｍｇ（収率３７．１６％） ＥＳＩ−ＭＳ：ｍ
／ｚ ８２５（Ｍ＋Ｈ）+
ドの合成−ＴＨＦ溶媒 実施例１の１）〜２）の操作を行い、目的とする直鎖保
護ペプチドレジンを９０．０１ｍｇ得た（縮合後の増
量：４０．０１ｍｇ）。これに、ヨウ素１００ｍｇとテ
トラヒドロフラン３００μｌの懸濁液を加え、２０℃で
１時間攪拌し環状体とした。次いで実施例１の４）と同
一操作を行い、環状ペプチド１９．９４ｍｇ（粗収率９
２．９６％ ＨＰＬＣ純度４３％）を得た。精製収量
７．９７ｍｇ（収率３７．１６％） ＥＳＩ−ＭＳ：ｍ
／ｚ ８２５（Ｍ＋Ｈ）+
【００２２】比較例 式〔Ｉ〕で表される環状ペプチド
の合成−ＤＭＦ溶媒 実施例１の１）〜２）の操作を行い、目的とする直鎖保
護ペプチドレジンを８８．４９ｍｇ得た（縮合後の増
量：３８．４９ｍｇ）．これに、ヨウ素１００ｍｇとＤ
ＭＦ３００μｌの懸濁液を加え、２０℃で１時間攪拌し
環状体とした。次いで、実施例１の４）と同一操作を行
い、環状ペプチド１９．４９ｍｇ（粗収率９２．８６％
ＨＰＬＣ純度３３％）を得た。精製収量５．８４ｍｇ
（収率２７．２３％） ＥＳＩ−ＭＳ：ｍ／ｚ ８２５
（Ｍ＋Ｈ）+
の合成−ＤＭＦ溶媒 実施例１の１）〜２）の操作を行い、目的とする直鎖保
護ペプチドレジンを８８．４９ｍｇ得た（縮合後の増
量：３８．４９ｍｇ）．これに、ヨウ素１００ｍｇとＤ
ＭＦ３００μｌの懸濁液を加え、２０℃で１時間攪拌し
環状体とした。次いで、実施例１の４）と同一操作を行
い、環状ペプチド１９．４９ｍｇ（粗収率９２．８６％
ＨＰＬＣ純度３３％）を得た。精製収量５．８４ｍｇ
（収率２７．２３％） ＥＳＩ−ＭＳ：ｍ／ｚ ８２５
（Ｍ＋Ｈ）+
【００２３】
【発明の効果】本発明により収率良く環状ペプチドが得
られるようになった。
られるようになった。
Claims (2)
- 【請求項１】ペプチドの固相合成法において、樹脂上に
直鎖ペプチドを合成した後、次いでエーテル系の溶媒に
溶解したヨウ素を作用させることによりジスルフィド結
合を形成させ、その後ペプチドを樹脂上から切り離すこ
とを特徴とする環状ペプチドの合成法。 - 【請求項２】エーテル系の溶媒が、ジエチルエーテル、
テトラヒドロフラン又はジオキサンであることを特徴と
する請求項１記載の環状ペプチドの合成法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP24564896A JPH1067796A (ja) | 1996-08-27 | 1996-08-27 | 環状ペプチドの合成法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP24564896A JPH1067796A (ja) | 1996-08-27 | 1996-08-27 | 環状ペプチドの合成法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH1067796A true JPH1067796A (ja) | 1998-03-10 |
Family
ID=17136775
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP24564896A Pending JPH1067796A (ja) | 1996-08-27 | 1996-08-27 | 環状ペプチドの合成法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH1067796A (ja) |
Cited By (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| EP0469721A2 (en) * | 1990-07-03 | 1992-02-05 | Digital Equipment Corporation | Mode switching for a memory system with diagnostic scan |
| WO2000011031A1 (de) * | 1998-08-20 | 2000-03-02 | Orpegen Pharma Gesellschaft Für Biotechnologische Forschung, Entwicklung Und Produktion Mbh | Verfahren zur herstellung von biostatin (tt-232 triacetat) und seine analoga |
| WO2004106362A2 (en) * | 2003-05-30 | 2004-12-09 | Cellpep S.A. | Oxidation of peptides |
-
1996
- 1996-08-27 JP JP24564896A patent/JPH1067796A/ja active Pending
Cited By (5)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| EP0469721A2 (en) * | 1990-07-03 | 1992-02-05 | Digital Equipment Corporation | Mode switching for a memory system with diagnostic scan |
| WO2000011031A1 (de) * | 1998-08-20 | 2000-03-02 | Orpegen Pharma Gesellschaft Für Biotechnologische Forschung, Entwicklung Und Produktion Mbh | Verfahren zur herstellung von biostatin (tt-232 triacetat) und seine analoga |
| WO2000011032A3 (de) * | 1998-08-20 | 2000-09-14 | Orpegen Pharma Ges Fuer Biotec | Verfahren zur herstellung von biostatin (tt-232 triacetat) und seine analoga |
| WO2004106362A2 (en) * | 2003-05-30 | 2004-12-09 | Cellpep S.A. | Oxidation of peptides |
| WO2004106362A3 (en) * | 2003-05-30 | 2005-03-17 | Cellpep Sa | Oxidation of peptides |
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