JPH10502535A - Method for identifying nucleic acid encoding c-fos promoter activating protein - Google Patents

Method for identifying nucleic acid encoding c-fos promoter activating protein

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JPH10502535A
JPH10502535A JP8504313A JP50431396A JPH10502535A JP H10502535 A JPH10502535 A JP H10502535A JP 8504313 A JP8504313 A JP 8504313A JP 50431396 A JP50431396 A JP 50431396A JP H10502535 A JPH10502535 A JP H10502535A
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スタンリー エル． リン，
マーニー エル． ロトフスキー，
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Abstract

(57)【要約】 ヒトc-fosガン原遺伝子プロモーターのようなプロモーターを活性化する、シグナル伝達分子、およびこのような分子のアンタゴニストを同定するための物質および方法が記載される。ヒトc-fosプロモーター活性化タンパク質、および特にCROC-1タンパク質およびCROC-4タンパク質と名付けられた新規タンパク質、これらタンパク質をコードする核酸、およびこのような核酸を含むベクターでトランスフェクトされた哺乳類細胞がまた記載される。   (57) [Summary] Materials and methods for identifying signaling molecules, and antagonists of such molecules, that activate a promoter, such as the human c-fos proto-oncogene promoter, are described. Human c-fos promoter activating proteins, and in particular novel proteins named CROC-1 and CROC-4 proteins, nucleic acids encoding these proteins, and mammalian cells transfected with vectors containing such nucleic acids, Also described.

Description

【発明の詳細な説明】 c-fos プロモーター活性化タンパク質をコードする核酸を同定する方法 本発明は、ヒトc-fosガン原遺伝子プロモーターを活性化するシグナル伝達分 子およびこのような分子のアンタゴニストを同定する物質および方法に関する。発明の背景 ガン原遺伝子Ha-ras、c-fos、c-myc、およびc-junのようなシグナリング分子 の変異または過剰発現の結果としての細胞活性化は、新生物の基礎を形成する細 胞の異常増殖に関連している。DeFeoら、Proc ．Natl．Acad．Sci.，78，3328-33 32(1981); Millerら、Cell，36，51-60(1984); Kelekarら、Mol ．Cell．Biol.，6 ，7-14(1986); およびVogtら、Adv ．Cancer Res.，55，1-35(1990)を参照のこ と。 c-fosの誘導は、マウス3T3細胞の血清刺激後の増殖関連シグナリング経路の活 性化に応答して、またはHa-rasの正常およびトランスフォーミング形態の過剰発 現に応答してそれぞれ起こる。c-fosの構成的発現はまた、特定のヒト腫瘍株で 起こることが示されている。これらの知見は、新生物表現型の異常な増殖特性が 、c-fosガン原誘導に関係するシグナル伝達経路の構成的活性化を含み得ること を示唆する。Greenbergら、Nature，311，433-438(1984); Staceyら、Mol ．Cell ．Biol. ，7，523-527(1987);およびO'Haraら、Mol．Cell ．Biol.，7，2941-2946 (1987)を参照のこと。 c-fosプロモーターで駆動されるリポーター遺伝子を用いることにより、c-fos ガン原遺伝子プロモーター中の特異的エンハンサーが同定されており、それは活 性化シグナル伝達経路に応答する。これらのエンハンサーには、チロシンキナー ゼ応答性SCM、raf-応答性直接反復、プロテインキナーゼＣ-応答性AP-1部位、お よびras-応答性血清応答要素が含まれる。Fujiiら，Mol ．Cell．Biol.，9，2493 -2499(1989); Hayesら，Proc ．Natl．Acad．Sci.，USA，84，1272-1276(1987); Jamalら，Nature，344，463-466(1990); Gutmanら，Mol ．Cell．Biol.，11，5 381-5387(1991); およびFischら、Mol ．Cell．Biol.，9 1327-1331(1989)を参照 のこと。 SV40 T抗原遺伝子の転写活性化を用いてエンハンサーおよび安定に相互作用す る転写因子を同定する随伴複製系が知られている。Vasavadaら、Ind ．J．Bioche m．Biophys. ，25，488-494(1988); Vasavadaら，Gene，55，29-40(1987); Vasav adaら，Proc ．Natl．Acad．Sci.，88，10686-10690(1991);およびRusconiら、Ge ne ，89，211-221(1990)参照のこと。 細胞増殖の制御におけるシグナリング分子の重要性のため、増殖関連シグナリ ング系に含まれる分子（それは次に抗腫瘍薬剤を発見するための生物学的標的を 同定するために用いられ得る）を同定する方法が必要である。異常細胞増殖が起 こったときこのような増殖関連シグナリング系を妨害して正常増殖を回復し得る 因子を同定する方法もまた必要である。発明の要旨 本発明は、シグナル伝達分子およびそのアンタゴニストを同定するための物質 および方法を提供することにより前述の必要性を満たす。より詳しく述べると、 本発明は哺乳類細胞株を提供し、この細胞は：(a)ポリオーマウイルスラージT抗 原をコードする核酸に作動可能に連結された誘導可能なまたは組織特異的プロモ ーターを含む組換えベクター；および(b)ポリオーマウイルスの複製開始点およ び上記プロモーターの活性化タンパク質をコードすると考えられる核酸を含む組 換え発現ベクターを含む。 好ましくは、プロモーターはヒトc-fosプロモーターであり、そして活性化タ ンパク質はヒトc-fosプロモーター活性化タンパク質である。 本発明は、プロモーター活性化タンパク質をコードする核酸を同定する方法を さらに提供し、この方法は：(a)哺乳類細胞株であって：(i)ポリオーマウイルス ラージT抗原遺伝子のコード領域に作動可能に連結された誘導可能なまたは組織 特異的プロモーターを含む組換えベクター；および(ii)ポリオーマウイルスの複 製開始点および上記プロモーターの活性化タンパク質をコードすると考えられる 核酸を含む組換え発現ベクターを含む細胞を、このような核酸が発現する条件下 で培養する工程；および(b)ベクター複製を許容するに十分なインキュベーショ ン期間の後細胞中の複製したベクターのレベルを測定する工程；それによってヒ トプロモーター活性化タンパク質をコードする核酸が、細胞中のベクターの増加 したレベルの測定により同定される工程を包含する。 好ましくは、プロモーターはヒトc-fosプロモーターであり、そして活性化タ ンパク質はヒトc-fosプロモーター活性化タンパク質である。 本発明において使用されるヒトc-fosプロモーターを含む好適な組換えベクタ ーは、プラスミドPfLAG-8である。 ポリオーマウイルス複製開始点を含む好適な組換え発現ベクターは、プラスミ ドLα2である。 本発明はまた、配列表の配列番号１および配列番号３で定義されるアミノ酸配 列を有するヒトc-fosプロモーター活性化タンパク質、またはその抗原性フラグ メント、およびこのようなタンパク質またはフラグメントをコードする核酸を提 供する。 別の実施態様では、本発明は哺乳類細胞株を提供し、この細胞は：(a)ヒトc-f osプロモーターに作動可能に連結されたリポーター遺伝子を含む第１の組換え発 現ベクター；および(b)ヒトc-fosプロモーター活性化タンパク質をコードする核 酸を含む第２の組換え発現ベクターを含む。 本発明はまた、ヒトc-fosプロモーター活性化タンパク質のアンタゴニストを 同定する方法を提供し、この方法は：(a)哺乳類細胞株を提供する工程であって 、この細胞が(i)ヒトc-fosプロモーターに作動可能に連結されたリポーター遺伝 子を含む第１の組換え発現ベクター；および(ii)ヒトc-fosプロモーター活性化 タンパク質をコードする核酸を含む第２の組換え発現ベクターを含み；(b)工程( a)の細胞株と、ヒトc-fosプロモーター活性化タンパク質のアンタゴニストを含 むと考えられる試料とを接触させる工程；および(c)リポーター遺伝子の発現の レベルを測定する工程；それによって試料中のヒトc-fosプロモーター活性化タ ンパク質のアンタゴニストがリポーター遺伝子の発現の低減したレベルの測定に より同定される工程を包含する。 好ましくは、第２の組換え発現ベクターは、CROC-1タンパク質、CROC-4タンパ ク質またはα2-マクログロブリンレセプター結合タンパク質をコードする。詳細な説明 本明細書で引用されるすべての参考文献は、その全体が参考として援用される 。 以下の用語は、本明細書で示された略語により表される：ロングターミナルリ ピート(LTR)；ダルベッコの改変イーグル培地(DMEM)；血清応答要素(SRE)；クロ ラムフェニコールアセチルトランスフェラーゼ(CAT)。 開示されるすべての核酸配列は、通常５'から３'である慣例に従い左から右に 読む。標準の単一文字略語を、配列中のヌクレオチド塩基について用いる(37 C. F.R.§ 1.822)。 用語「アンタゴニスト」は、本明細書では、CROC-1タンパク質またはα2-マク ログロブリンレセプター結合タンパク質のような、ヒトc-fosプロモーター活性 化タンパク質の作用をブロックまたは阻害する物質として定義される。 本明細書で用いられる用語「リポーター遺伝子」は、イントロンを含み得るま たは含み得ないゲノムDNAから単離されたDNA分子、またはメッセンジャーRNAを テンプレートとして用いて調製された相補DNA(cDNA)のいずれかを意味する。い ずれの場合にも、このDNAは、例えば、酵素活性、酵素連結イムノソルベントア ッセイ(ELISA)またはラジオイムノアッセイ(RIA)により、容易に測定され得る発 現産物をコードする。本発明において使用される好適なリポーター遺伝子は、pC H110(Stratagene #27-4508-01)由来のE.coli Lac-Z遺伝子を含む。この遺伝子の 発現レベルは、高感度の蛍光基質アッセイにより測定され得る。以下に記載する CATリポーター遺伝子もまた好適であるが、当業者に周知の多くの他のリポータ ー遺伝子がこの代わりに用いられ得る。 用語「組換え発現ベクター」は、組換え技術を用いて調製されたベクターを意 味し、このベクターは、タンパク質をコードする挿入された核酸を、このベクタ ーが適切な宿主細胞中へのトランスフェクションまたは形質転換の際に上記タン パク質を発現し得るように含む。好適なベクターは、プロモーター活性化タンパ ク質をコードする核酸を含む。ヒトc-fosプロモーターに作動可能に連結された リポーター遺伝子を含むベクターもまた好適である。 「安定に形質転換」された細胞は、それらのゲノムDNA中に組み込まれた組換 えDNAを有する。そのような安定に組み込まれたDNAは、形質転換された細胞に保 持される。何故なら、それは、G418耐性のような選択マーカーとともに細胞中に 導入され、選択培地で細胞が増殖するとき保持を強制するからである。本発明は 、一時的にトランスフェクトされた哺乳類細胞株を用いるが、c-fosプロモータ ー調節ラージT抗原を含む安定に形質転換された哺乳類細胞株もまた用いられ得 る。 本発明の誘導可能なまたは組織特異的プロモーターは、通常必要な(house-kee ping)プロモーターではない。即ち、それらは通常の条件下で調節されるが構成 的発現の低い基礎レベルが生じ得る程度を除いて転写的に活性ではない。 本明細書で定義されるように、「誘導可能なプロモーター」は、その活性が、 ストレス、ホルモン刺激、または分化のような細胞応答を生じる細胞環境におけ る変化に応答して活性化または増大されるプロモーターである。誘導は、シグナ リングカスケードの活性化を経由して起こり、プロモーター部位で、転写因子の 増大した結合および活性を生じる。このような誘導に含まれる分子は、本明細書 で記載されるようなプロモーター活性化タンパク質を包含する。誘導可能なプロ モーターはc-fosおよびc-mysプロモーターを含む。他の誘導可能なプロモーター は、J ．Biol．Chem.，268，15347-15350(1993)に記載される多剤耐性遺伝子プロ モーターである。 用語「組織特異的プロモーター」は、前立腺細胞でのみ活性であるプロモータ ーのような、細胞タイプのサブセット内でのみ活性であるプロモーターを意味す る。Youngら，Biochem.，31，818-824(1992)；およびRiegmanら，Mol ．Endocrin ol. ，5，(No．12)1921-1930(1991)を参照のこと。他の組織特異的プロモーター は、後期ヒストン遺伝子のプロモーターおよび筋肉調節要素のプロモーターを含 む。Genes Dev.，4，849-859(1990); Mol ．Cell．Biol.，9，515-522(1989);お よびMol ．Cell．Biol.，9，2191-2201(1989)。 本発明で用いられ得るプロモーターは、ガン原遺伝子c-fosおよびc-mycのプロ モーターを含むがこれに限定されない。Millerら、前出；およびKelekarら、前 出を参照のこと。これらの両プロモーターは、過剰発現が異常な細胞増殖を導き 得る遺伝子のインビボ発現を調節する。c-fosプロモーターが最も好ましい。 用語「異常細胞増殖」は、本明細書では、新生物の異常なまたは制御されない 細胞増殖特性として定義される。 本明細書で用いられる用語「プロモーター活性化タンパク質」は、上記のプロ モーターの１つの転写活性化を引き起こすタンパク質として定義される。好まし くは、プロモーター活性化タンパク質は、ヒトc-fosプロモーター活性化タンパ ク質である。最も好適には、α2-マクログロブリンレセプター結合タンパク質の アミノ酸配列と実質的に同一のアミノ酸配列を有する活性化タンパク質である。 また、最も好適なのは、配列番号３および配列番号１でそれぞれ定義される配列 である、CROC-4タンパク質またはCROC-1タンパク質のアミノ酸配列と実質的に同 一であるアミノ酸配列を有する活性化タンパク質である。アミノ酸配列の実質的 同一性は、配列番号１または配列番号３のいずれかにより定義される配列と比較 した別のc-fosプロモーター活性化タンパク質の配列が、同一であるかまたは本 明細書で記載されるような転写活性化活性を実質的に損なわない１つまたはそれ 以上のアミノ酸改変(欠失、付加、置換)によって異なることを意味する。例えば 、配列番号１または配列番号３のいずれかにより定義される配列の対立遺伝子座 のまたは種間の改変体が存在し得る。 さらに、例えば、化学的合成によりまたは改変ポリメラーゼ連鎖反応(PCR)の 使用によりまたは部位特異的変異誘発の使用により、配列番号１または配列番号 ３のいずれかにより定義される配列を有するc-fosプロモーター活性化タンパク 質をコードするDNAを改変して、単一または複数の塩基置換を生成しそれから活 性を実質的に損なわないc-fosプロモーター活性化タンパク質を生成することは 、十分に当業者の技術的範囲である。このような保存的に改変された改変体は、 本発明の範囲内にある。 配列同一性は、必要であれば、残基の一致を最適化することにより、そして必 要に応じてギャップを導入することにより測定され得る。これは、保存的置換を 一致として考慮する場合には異なる。保存的置換は、代表的には、以下のグルー プ内の置換を包含する：グリシン、アラニン；バリン、イソロイシン、ロイシン ；アスパラギン酸、グルタミン酸;アスパラギン、グルタミン；セリン、スレオ ニン；リジン、アルギニン；およびフェニルアラニン、チロシン。相同のアミ ノ酸配列は、代表的には、各タンパク質配列の各々における天然の対立遺伝子座 および種間変動を含む。代表的な相同タンパク質またはペプチドは、CROC-1タン パク質またはCROC-4タンパク質と、25-100％の相同性(ギャップが導入され得る 場合)、50-100％の相同性(保存的置換が含まれる場合)を有する。相同性の大き さは、少なくとも約50％、および代表的には少なくとも60％またはそれ以上であ る。 本発明はまた、ヒトc-fosプロモーター活性化タンパク質の「抗原性フラグメ ント」を含む。抗原決定基(エピトープ)が一般に少なくとも約５のアミノ酸残基 を含むことは当業者に周知である。Ohnoら、Proc ．Natl．Acad．Sci．USA，82， 2945(1985)。本発明の抗原性フラグメントは、約５から約100の、そして好まし くは約５から約50のアミノ酸残基を含む。所定のポリペプチドが本発明の範囲に 入るか否かは、以下に記載する方法を用いるルーチンの実験により容易に決定さ れ得る。 このような抗原性フラグメントは、全長のヒトc-fosプロモーター活性化タン パク質のタンパク質分解により、または化学的もしくは組換DNA合成により作成 され得る。この抗原性フラグメントは、標準的方法により、好ましくは哺乳類で 、抗体産生を惹起するために用いられ得る。このように産生された抗体は、標準 の免疫アッセイまたは免疫吸着法を用いて活性化タンパク質をアッセイまたは精 製するために用いられ得る。 本発明は、ポリオーマウイルスT抗原遺伝子を含む組換えベクターを利用し、 そして随伴複製系を拡張して、その産生が遺伝子プロモーターの転写活性化に導 くタンパク質を同定する。Vasavadaら、前出、により用いられるSV40 T抗原遺伝 子とは対照的に、ポリオーマT抗原遺伝子の複製および形質転換性質は分離され 得る。 複製および形質転換性質の分離は、ミドルT抗原の中央コード配列と重複する 領域中のラージTイントロンに停止コドンを挿入することにより達成される。こ の機能の分離は、c-fosプロモーターの場合重要であり、ここでミドルT発現の防 止は、プロモーターからの低レベルの、基礎転写に起因する、ミドルTで活性化 されるc-src-およびホスファチジルイノシトール3-キナーゼ関連シグナリング系 (Talmageら，Cell，59，55-65(1989)により同定された)を経由する転写活性化の 可能性を除外する。 ポリオーマウイルス系の使用は、いくつかの良く特徴付けられたマウスの系へ の、随伴複製の拡張を可能にする。対照的に、Vasavadaら、前出、により用いら れるSV40 T系は、主としてシミアン(サル)の系に限られる。さらに、本発明の系 は、SV40 T抗原をベースにした系で先に報告された高頻度の短縮型のまたは再配 列された挿入物(約25％)を生じないようてある。挿入物の改変は、本発明の系で は２％未満の頻度で生じる。 好適な実施態様は、ポリオーマウイルスラージT抗原遺伝子のプロモーター上 流からの複数のエンハンサーの組み込みを含み、cDNAでコードされるシグナリン グ分子の低レベル発現に応答するラージT誘導を許容するに十分なプロモーター の感受性を達成する。ラージT誘導は、次に、プラスミド複製をもたらす。以下 に記載のようなcDNAライブラリーとの同時トランスフェクションは、このような ラージTで誘導されるプラスミド複製により、シグナリングタンパク質をコード するcDNAのパーセントが、ライブラリー集団内で濃縮されることを可能にする。 得られる濃縮は、cDNAライブラリー内のライブラリープラスミドのますます小さ くなるグループの連続的スクリーニングを可能にし、プロモーターを活性化する 生物学的に活性な分子をコードする単一のライブラリープラスミドの同定をもた らす。 本発明の自己増幅プロセスは、シグナリング分子をコードするcDNAの検出に対 するさらなる感度を提供する。誘導に応答して初期プラスミド複製は、より大き な遺伝子コピー数に起因して活性なシグナリング分子の増大した発現をもたらす 。シグナリング分子におけるこの増加は、ラージT抗原発現のより大きな増幅を もたらし、それは次に、より大きなプラスミド増幅をもたらす。 本発明の好ましいベクターは、以下に記載するように、PfLAG-8およびLα2と 名付けられる新規プラスミドを含む。 本発明は、プロモーター、好ましくはヒトプロモーター、そしてより好ましく は、ヒトc-fosプロモーターを活性化し得るタンパク質をコードするcDNAを同定 する方法をさらに提供する。より好ましいのは、c-fosプロモーター活性化タン パク質をコードするCROC-1およびCROC-4と名付けられたcDNAである。例えば、CR OC-1は、配列番号１で示されるアミノ酸配列を有するCROC-1タンパク質と名付け られる特異的c-fosプロモーター活性化タンパク質をコードする。同様に、CROC- 4は、配列番号３で示されるアミノ酸配列を有するCROC-4タンパク質と名付けら れる特異的c-fosプロモーター活性化タンパク質をコードする。最も好ましいの は、配列番号１および配列番号３で示されるヌクレオチド配列である。 本発明はまた、CROC-1またはCROC-4によりコードされるタンパク質の保存的変 異体であるc-fosプロモーター活性化タンパク質をコードするcDNAを提供する。 このような変異体は、それぞれCROC-1およびCROC-4によりコードされるタンパク 質の結合およびc-fosプロモーター活性化機能を有する。 さらに、本発明は、CROC-1またはCROC-4によりコードされるタンパク質のアン タゴニストである化合物を提供する。これらのアンタゴニストは、CROC-1タンパ ク質またはCROC-4タンパク質の欠失、置換または付加変異体であるタンパク質を 包含し、そしてそれは、ヒトc-fosプロモーターに結合するが活性化しない。 遺伝コードの縮重のため、本明細書で定義されるようなc-fosプロモーター活 性化タンパク質およびc-fosプロモーター活性化タンパク質アンタゴニストをコ ードし得る多くの機能的に等価な核酸配列が存在することが理解される。このよ うな機能的に等価な配列は、化学的合成、改変プライマーを用いるPCR、および 部位特異的変異誘発のような公知の方法を用いて容易に調製され得、本発明の範 囲内である。 本明細書で用いられる用語「組換えベクター」は、本明細書で述べられるよう な組換えプラスミド、およびGellerら，Proc ．Natl．Acad．Sci．USA，87，1149 (1990)に記載のように加工され得る組換えレトロウイルスベクターの両者を含む 。 前述の組換えベクターは、本明細書で定義されるように、トランスフェクショ ンされ、そしてベクター複製を許容し得る任意の呻乳類細胞をトランスフェクト するために用いられ得る。新鮮な組織外植体(一次細胞)由来の細胞が原則として 用いられ得るが、確立された細胞株の使用が好ましい。多くのこのような細胞株 が利用可能であり、例えば、NIH 3T3マウス(ATCC番号CRL 1658)、L-M(TK-)マウ ス(ATCC番号CCL 1.3)およびBALB/c 3T3クローンA31マウス(ATCC番号CCL 163)細 胞株を含む。 本発明の方法における細胞または細胞株の選択は、用いられるベクターの既知 のまたは決定され得る特異性により導かれる。例えば、マウス細胞株は、ヒトc- fosプロモーターのような、調節プロモーターの制御下でポリオーマウイルスラ ージT抗原遺伝子を含む組換えベクター；およびポリオーマウイルス複製開始点 、ならびにヒトプロモーター活性化タンパク質をコードすると考えられる核酸を 含む哺乳類組換え発現ベクターであって、例えば、この核酸を発現し得るレトロ ウイルスLTRを含むレトロウイルス発現ベクターのようなベクターとの使用に好 ましい。 本発明において使用する細胞は一次的にトランスフェクトされるけれども、安 定に形質転換された細胞もまた用いられ得る。哺乳類細胞株の安定な形質転換は 、細胞を、上記の組換えベクターの１つおよび抗生物質のような選択薬剤に耐性 を付与する第２のベクターと同時トランスフェクトする標準的方法を用いること により達成され得る。 本発明の方法を用いて、ヒトc-fosプロモーター活性化タンパク質をコードす る核酸を同定するために、細胞を、ポリオーマウイルスラージT抗原遺伝子に作 動可能に連結されたヒトc-fosプロモーター、およびポリオーマウイルスの複製 開始点を含む哺乳類組換え発現ベクター中に組み込まれたcDNAライブラリーを含 む組換えベクターで同時トランスフェクトする。次いで細胞を、ヒトc-fosプロ モーター活性化タンパク質をコードするcDNAを含むベクターがベクター複製の増 大を刺激する条件下でインキュベートする。次いで細胞を回収し、プラスミドを 抽出し、複製しなかったベクターはDpnIで選択的に消化する。複製したプラスミ ドは、DpnI消化物てコンピテント細菌を形質転換することにより回収される。 代表的なインキュベーションは、湿潤CO2インキュベーター中、37℃で２日間 実施されるが、条件の選択は、当業者に明らかであり、そして、例えば、細胞の 性質、用いられる培地、および培養コンテナのタイプに依存する。インキュベー ションは、強い複製応答の進展を許容するに十分な時間続けられる。最適時間は ルーチンの実験により決定され得るが、代表的には、約24時間〜72時間の範囲で ある。 実質的に増加したレベルのベクター複製およびDpnI消化後の回収は、ヒトc-fo sプロモーター活性化タンパク質をコードする核酸を含むようなベクターについ て、このようなベクターを欠いているベクターの複製から得られるバックグラウ ンドと比較して検出される。 ベクター複製および回収における実質的な増加は、ヒトc-fosプロモーター活 性化タンパク質をコードする核酸を含むプラスミドが全く存在しないときに測定 されるレベルの、代表的には、少なくとも約５倍、好ましくは約８倍、そして最 も好ましくは約20倍のレベルの増加てある。増加の程度は、主に、バックグラウ ンドの複製レベルに依存する。 実質的に同じ手順が、他のヒトプロモーター活性化タンパク質をコードする核 酸を同定するために用いられるが、それはポリオーマウイルスラージT抗原をコ ードする核酸に作動可能に連結されたプロモーターを含むベクターを利用するこ とによる。 本発明の方法を用いる、ヒトc-fosプロモーター活性化タンパク質アンタゴニ ストのスクリーニングでは、ヒトc-fosプロモーターに作動可能に連結されたリ ポーター遺伝子を含む第１の組換え発現ベクター、およびヒトc-fosプロモータ ー活性化タンパク質をコードする核酸を含む第２のベクターで同時トランスフェ クトされる細胞が提供される。好ましいリポーター遺伝子は、以下に記載するfo s-CATリポーター遺伝子またはfos-lacZリポーター遺伝子である。細胞は、用い られる細胞の種類に適切な培養培地に植えられる。 次いで、細胞は、推定されるアンタゴニストを含む変化する量の試料の存在下 または非存在下(コントロール)、ヒトc-fosプロモーター活性化タンパク質をコ ードする遺伝子が発現する条件下でインキュベートされる。このような条件下、 およびアンタゴニストの非存在下では、ヒトc-fosプロモーターの剌激が起こり 、リポーター遺伝子が発現する。試料は、例えば、単離化合物が溶解された、ま たはクロマトグラフィー画分または電気泳動画分のような精製工程からの個々の またはプールされた画分である水性または水混和性溶液であり得る。 代表的なインキュベーションは、約37℃で湿潤CO2インキュベーター中で実施 されるが、条件の選択は当業者に明らかであり、そして例えば、細胞の性質、用 いられる培地、および培養コンテナのタイプに依存する。 インキュベーションは、顕著なリポーター遺伝子誘導を可能にするに十分な時 間継続し、その時点でリポーター遺伝子の発現レベルが適切なアッセイにより測 定される。測定を行う最適時間はルーチンの実験により決定され得るが、代表的 には、約24〜72時間の範囲、好ましくは約48時間である。 リポーター遺伝子発現の最も高いレベルは、コントロール(アンタゴニストが ない)培養で測定され得る。培養がヒトc-fosプロモーター活性化タンパク質アン タゴニストを含む場合、リポーター遺伝子発現レベルの低下が測定され、その程 度は、培地に添加されたアンタゴニストの量の直接の関数である。培養のいくつ かに添加された試料中に存在するアンタゴニストは、リポーター遺伝子発現の実 質的に低減したレベルを、コントロール培養で測定されたレベルと比較して測定 することにより同定される。 リポーター遺伝子発現の実質的に低下したレベルは、ヒトc-fosプロモーター 活性化タンパク質のアンタゴニストの全くない条件で測定されたレベルの少なく とも50％、そして好ましくは少なくとも約70％の減少として定義される。勿論、 減少の程度は、用いたヒトc-fosプロモーター活性化タンパク質およびアンタゴ ニストの効果と比較した試料中に存在するアンタゴニストの質により影響される 。 試料の一般毒性に起因するリポーター遺伝子発現の低減したレベルは、β-ア クチンプロモーターにより駆動されるlac-Zのような構成的に発現する第２のリ ポーター遺伝子をトランスフェクトし、そしてlac-Z発現に対してc-fosリポータ ー遺伝子活性を補正することにより説明され得る。 以下の限定されない実施例は、本発明の例示のために供される。 実施例 材料および一般的方法 特に示さない限り、以下の、固体混合物中の固体、液体混合物中の液体および 液体中の固体に対するパーセントは、それぞれ、wt/wt、vol/vol、およびwt/vol ベースである。細胞の培養中は無菌状態が保たれる。 Sambrookら、「Molecular Cloning．A Laboratory Manual，第２版」、Cold S pring Harbor Laboratory Press(1989)に記載されているような標準的な組換え 方法を使用した。 DpnIは、Diplococcus pneumoniaeから単離された既知の制限エンドヌクレアー ゼであり、ICN Biomedicals，Sigma Chemical CompanyまたはNew England BioLa bs，Inc．から購入し得る。 制限エンドヌクレアーゼAsel、BamHI、BglII、BstXI、ClaI、FspI、HincII、N arI、NotI、SacII、SalI、ScaI、XbaIおよびXhoIは既知であり、例えば、Sigma Chemical Companyから購入し得る。 制限エンドヌクレアーゼBamHI、BssHII、BstXI、HincII、SalI、ScaIおよびXb alは、既知であり、例えば、ICN Biomedicalsから購入し得る。 制限エンドヌクレアーゼAflIII、AseI、BamHI、BglII、BssHII、BstXI、ClaI 、FspI、HincII、NaeI、NarI、NotI、SacII、SalI、ScaI、XbaIおよびXhoIは既 知であり、例えば、New England BioLabs，Inc．から購入し得る。 制限エンドヌクレアーゼSauIは既知であり、例えば、Boehringer Mannheimか ら購入し得る。 酵素mung beanヌクレアーゼは既知であり、例えば、New England BioLabs，In c．またはSigma Chemical Companyから購入し得る。 ベクターLα２を調製するために用いられる合成ポリリンカーはNew England B ioLabs，Inc．から得、配列番号２に示される配列を有している。NcoIリンカーd (pAGCCATGGCT)は既知てあり、New England BioLabs，Inc．(カタログ番号1150) から購入し得る。 ベクターpUC19(ATCC 37254、GenBank Accession受託番号X02514)は、New Engl and BioLabs，Inc．またはICN Biomedicalsから購入し得る。pUC19のヌクレオチ ド配列および制限部位は、Yanisch-Perronら、Gene，33，103-119(1985)に記載 されている。 以下のDNAは、本発明のプラスミドの調製に使用され、公衆に入手可能である ：ポリオーマウイルスDNA A2株(ATCC番号45017)；およびヒトゲノムc-fos(ATCC 番号41042)。付言すると、ポリオーマウイルスA2株のDNA配列は、DNA Tumor Vir uses 、Tooze,J編、(1980)(Cold Spring Harbor Press)、834-838頁に報告さ れている。 レトロウイスルベクターpMV7の構築は、Kirschmeierら、DNA，7，219-225(198 8)に記載されており、プラスミドpPyoriおよびpMV(ATCC番号37190)から出発する 。ベクターpMV7は当業者に周知であり、多くの研究所に、無料で広く配布されて いる。さらに、pMV7に類似し、本願発明において代わりに用いられ得るレトロウ イスルは容易に入手可能であり、例えば、pV-mos(ATCC番号41037)がある。 以下に記載されるfos-CATリポーター遺伝子構築物は、購入可能なpCAT-ベーシ ックベクター(Promegaカタログ番号E1041)を用いて調製された。 赤血球凝集素エピトープおよび蛍光結合ウサギ抗-マウスIgGに対するマウスモ ノクローナル抗体は、Boehringer Mannheimから購入し得る。 cDNAライブラリーのスクリーニングのために、一方向性cDNAライブラリーを作 製したが、これは、ヒト脳ポリA RNA(Clontech，Palo Alto，CA)からGIBCO(Gran d Island，NY)のSuperscriptクローニングキットを用い、プラスミドLα2のSalI /NotI部位に挿入することにより行った。 核酸の分離と視覚化は、Sambrookら、前出、に記載のように行い、アガロース ゲルで電気泳動し、エチジウムブロマイドを用いて視覚化した。すべてのヌクレ オチド配列決定は、ジデオキシを介するチェーンターミネーション法を用いて実 施した。この方法は、Sangerら、Proc ．Natl．Acad．Sci．USA，74，5463-5467( 1977)に記載されている。CROC-1およびCROC-4の配列を得るために、両鎖のDNA配 列決定を実施した。 PfLAGと、生物学的に活性なシグナリング分子をコードするcDNAを含むLα2と で細胞を同時トランスフェクトすることにより、c-fosプロモーターの活性化を 引き起こし、ラージＴ抗原が生産された。ラージＴ抗原の生産はポリオーマウイ ルスの複製開始点を有するプラスミドの細胞内複製を刺激する。プラスミドを、 Hirt、J ．Mol．Biol.，26，365-369(1967)に記載の方法を用いて「Hirt抽出」す ることによりトランスフェクトされた細胞培養物から回収する。複製しなかった プラスミドはDpnIによる制限切断で選択的に破壊される。複製されたプラスミド は、次いで、コンピテントな細菌を形質転換することにより回収される。 初期の継代NIH 3T3マウス繊維芽細胞(ATCC番号CRL 1658)およびラット２繊維 芽細胞(ATCC番号CRL 1764)を10%の仔ウシ血清と50μg/mlの硫酸ゲンタマイシン とを補足したDMEM培地で増殖させた。 本発明に使用するDH10B E.coliは、GIBCOから購入し得る。プラスミドの構築： 本発明に用いる２つの基本的なプラスミドを構築した。第一のプラスミド(PfL AGと表される)は、プロモーターの活性化に際しラージＴ抗原の供給源として機 能し、そして、ヒトc-fosプロモーターに基づくヒトプロモーターで調節される ポリオーマウイルスラージＴ抗原遺伝子を有していた。第二のプラスミド(Lα2 と表される)は、ポリオーマウイルスの複製開始点を有するレトロウイルスcDNA 発現ベクターであった。 レトロウイルスcDNAベクターLα2を以下のように構築した。ポリオーマウイル スDNA A2株をBamHI/NarIで消化し、生じた750bpのフラグメントをpUC19のBamHI/ NarI部位に連結し、得られたプラスミドをpOriと名付けた。レトロウイルスベク ターpMV7をFspI/AflIIIで消化し、生じた、２つのモロニーマウス(Molony murin e)肉腫ウイルスLTRを含む4KbバンドをpOriのHincII/AflIIIフラグメントに連結 し、pMV7-2と名付けたプラスミドを得た。pMV7-2中の２つのモロニーマウス肉腫 ウイルスLTRの間に存在するネオマイシン耐性遺伝子をSauI/ClaI消化で除去し、 次に、合成ポリリンカー（上記）で置換し、プラスミドpMV7-3を得た。ブルー- ホワイトスクリーニングを行うために、pUC19中のポリリンカーをNcoIリンカー で置換し、次いで、360bpのlac Z領域をAseI/NarI消化で除去し、mung beanヌク レアーゼで平滑末端化し、pMV7-3のポリリンカーに連結した。生じたプラスミド （Lα2と名付けた）は4.5kbであり、lac Z遺伝子の5'末端および3'末端にそれぞ れ、ただ一つのSalI部位およびNotI部位を有していた。翻訳開始コドン（これに は、ヒスチジンのヘキサマーをコードするDNA配列が続いている）を、cDNA挿入 部位の5'側に挿入し、開始コドンを欠いている短縮型cDNA挿入物からのcDNAでコ ードされた蛋白質の発現を確実にし、そして引き続く蛋白質の精製を助ける。 PfLAGプラスミドを以下の手順で調製した。ヒトc-fosプロモーターの制御下に あるポリオーマウイルスラージＴ抗原を導入したが、これは、pcfos-1の5.9Kb B amHIフラグメント（Curranら、Mol ．Cell．Biol.,3, 914-921(1983)に記載）をN aeIで消化し、c-fos遺伝子の全コード領域を取り除き、そしてポリオーマウイル ス由来の2.8Kb BstXI/HincIIバンド（ポリオーマＴ抗原をコードしている）を挿 入することにより行った。ミドルＴおよびスモールＴ発現を、ポリオーマウイル スDNA配列（Toozeら、前出に報告）の605位にあるScaI部位に停止コドンを挿入 することにより排除した。生じた構築物をPfLAG-1（プロモーターfos/ラージＴ 抗原として）と命名した。 HELと名付けた第３のベクターを調製して、CROC-1の細胞内位置を同定するた めに用いた。Lα2のヒスチジンヘキサマーをコードする配列は、BglII/SalI消化 により取り除き、そしてFieldら、Mol ．Cell．Biol.，8，2159-2165(1988)に記 載されている９つのアミノ酸のインフルエンザウイルスHA1のエピトープをコー ドする配列で置換した。次いで、SV40の複製開始点を、ポリオーマの複製開始点 と5'LTRとの間にある唯一のXbaI部位に挿入して、HELを作成した。 第４のベクターを調製して、推定のヒトc-fosプロモーターの活性化タンパク 質がc-fosプロモーターを刺激する能力を確認するために用いた。fos-CATリポー ター遺伝子（Deschampsら、Science，233，1174-1177(1985)に記載）は、-735(B amHI部位)から＋42(NaeI部位)までのヒトc-fosプロモーターを、pCATベーシック ベクター(Promega)中の細菌CAT遺伝子の前に挿入することにより調製した。PfLAG- 依存性随伴複製のためのエンハンサー要求性の決定： 本願発明の目的には、PfLAG中のヒトc-fosプロモーターは、静止期の細胞中で 転写的に沈黙していなければならないが、プラスミドの複製を引き起こすに十分 なＴ抗原を生産することによる、活性な、cDNAにコードされるシグナリング分子 の低レベルの発現に応答するために十分感受性でなければならない。プロモータ ーからの遺伝子誘導の感受性とレベルは、プロモーターにさらにエンハンサー要 素を導入することにより増大させ得る。複数のエンハンサー要素を、PfLAG-1に 導入するが、それは、c-fosエンハンサー要素を含む約500bpまたはそれより大き いXhoI/BssHII（平滑末端化されている）を単離し、このエンハンサー領域を前 のPfLAGのXhoI/SacII部位（平滑末端化されている）に連結することにより行う 。 随伴する複製を示すために必要とされるエンハンサーの数を決定するために、 １、２、４、および８個のエンハンサー領域を含む一連のPfLAGを構築した。次 いで以下の実験を行って、PfLAG依存性随伴複製のためのエンハンサー要求性を 規定した。 Muramatsuら、Mol ．Cell．Biol.，9，831-836(1989)は、プロテインキナーゼC の触媒ドメインの発現がc-fosプロモーターを誘導することを示した。ラットの プロテインキナーゼC-β1のヌクレオチド配列および推定アミノ酸配列は、House yら、Cell．52, 343-354(1988)に記載されている。ラットプロテインキナーゼC- β1の触媒ドメインをLα2に導入し、pMVPkCΔβ1と名付けた構築物を作成した。 pMVPkCΔβ1/Lα2混合物と１、２、４、または８個のエンハンサー領域を含むPf LAGとの同時トランスフェクションは、それ故、PfLAGの各々の感受性をテストす る手段を提供し得る。 cDNAスクリーニングのために、40個から約１個のプラスミドを検出する閾値の 感受性を用いた。従って、NIH3T3細胞へのPfLAGの各々との同時トランスフェク ションについて1:40(wt/wt)のpMVPkCΔβ1/Lα2の比を用いて、以下の手順を行 った。トランスフェクション後、細胞を48時間インキュベートした。プラスミド を抽出し、そしてDpnI消化後、随伴複製を示す高められたプラスミドの回収を調 査した。これらの条件下で得られた結果を表１に示す。これらのデータは８個の エンハンサー領域(PfLAG-8)が、プラスミドの複製の有意な活性化に必要であり 、そしてPfLAG-8をベクター単独で同時トランスフェクトした結果から生じるバ ックグラウンドに対して、プラスミドの回収が８倍増大されたことを示す。PfLA G-8の誘導は、プラスミド回収において６倍から20倍以上増加の範囲であり、主 にバックグラウンドのレベルに依存した。 プロモーター活性化タンパク質をコードしているプラスミドの濃度の、プラス ミドの全集団におけるpMVPkCΔβ1の回収に対する影響は、PfLAG-8との同時トラ ンスフェクションの前に、pMVPkCΔβ1/Lα2混合物中のpMVPkCΔβ1の濃度を変 えることにより測定した。Lα2はpUC19由来の改変されたlacZ遺伝子を有してい るので、Lα2で形質転換された細菌は、アンピシリン、X-gal、およびIPTGを含 有する寒天平板上にプレートしたときに青色にかわるが、pMVPkCΔβ1で形質転 換された細菌は白いままである。pMVPkCΔβ1のパーセントは、DpnI消化Hirt抽 出物で細菌を形質転換して生じた総コロニー数のパーセントとして白色コロニー の数を表すことにより測定した。 PfLAG-8をpMV7PkCΔβ1/Lα2混合物と同時トランスフェクトすることにより行 われた実験は、1:80の比(wt/wt)で開始し、次いで、希釈して1:400の比まで下げ たが、以下に記載の方法で行った。DpnI消化Hirt抽出物でコンピテントDH10B E. coliを形質転換し、そしてアンピシリン、X-gal、およびIPTGを含有する寒天上 にプレートした。回収されたコロニー中のpMV7PkCΔβ1のパーセントは、総コロ ニーに対する白色コロニーの数により測定した。 pMVPkCΔβ1の形質転換から白色コロニーが生じたことを確認するために、プ ラスミドを回収し制限酵素でマップした。全ての白色コロニーは、正しいpMVPkC Δβ1の制限パターンを示した。表２に示した結果は、回収されたコロニーの数 が高いpMV7PkΔβ1希釈でバックグラウンドレベルに対して減少したが、pMV7Pk Δβ1コロニーの実際のパーセントは増加すること；を示し、最低限400のライブ ラリーコロニーが、pfLAG-8でトランスフェクトされ、シグナル伝達分子をコー ドするcDNAについてcDNAライブラリー集団を濃縮し得ることを示す。従って、c- fosプロモーターのアクチベーターをコードするcDNAが濃縮されたライブラリー 集団を得るために、最初のcDNAライブラリースクリーニングを、400またはそれ 以上のプラスミドからなるプラスミドプールを用いて行った。 細胞培養とトランスフェクション： トランスフェクションのために、8×105の3T3細胞を100mmディッシュ中の増殖 培地に移植し、そして一夜付着させた。翌日、リン酸カルシウムを用いて、Wigl erら、Cell，11, 223-232(1977)の方法によりトランスフェクションを行った。 リン酸カルシウム沈殿に4時間さらした後、細胞をリン酸緩衝化生理食塩水で２ 回洗浄し、0.5%仔牛血清を補足したDMEMを再供給し、そして37℃で40-48時間イ ンキュベートした。細胞を回収し、そしてプラスミドを、Hirt、前出の手順によ り抽出した。抽出したプラスミドを、DpnIを用いて最低24時間消化した。DpnI消 化物をフェノール抽出し、そしてエタノール沈澱させた。DNAを20μl TE（1mM E DTA+10mM Tris，pH8.0）に再縣濁し、そしてコンピテントDH10B細菌(GIBCO)中に 形質転換した。 同時トランスフェクションは上記の手順で行ったが、9:1(wt/wt)のcDNA/PfLAG 比で、皿あたり20μgのDNAを用いた。随伴複製を用いるcDNAライブラリースクリーニング： ヒト脳cDNAライブラリーを、上記の方法でPfLAG-8とともにNIH 3T3細胞に同時 トランスフェクトした。約30-40プラスミドからなるプラスミドプールをPfLAG-8 とともに同時トランスフェクトし、そしてプラスミド回収を最低5倍増加させる かについて検討した。活性なプールからのプラスミドを回収し、そして、それぞ れ、４つのプラスミドの第２のプールに分け、随伴複製の活性化について同様に 調べた。次いで、それぞれの活性な第２プールからのプラスミドの個々について 、随伴複製を調べた。約1400のプラスミドから、最初に、２つのプラスミド(CRO C-1およびCROC-2と名付けられた)を、(cDNAの随伴複製について)をスクリーニン グし、PfLAG-8と同時トランスフェクトしたとき、一貫して増加したプラスミド 回収を与えた。CROC-1のヌクレオチド配列を配列番号１に示す。 第３のプラスミド(CROC-4と名付けた)は、さらなるプラスミドスクリーニング により同定した。プラスミドCROC-4もまた、PfLAG-8と同時トランスフェクトし たとき、一貫して増加したプラスミド回収を与えた。CROC-4のヌクレオチド配 列を配列番号３に示す。fos-CAT リポーター遺伝子を用いるc-fosプロモーター活性化の確認： 特定の外来性の因子がまた、随伴複製アッセイにおいて観察される増加したプ ラスミド回収を引き起こし得た。例えば、DpnI部位の不完全な細菌のメチル化は 、DpnI耐性、またはトランスフェクションもしくは形質転換効率の差異を与える 。これらの可能性を除くために、CROC-1，CROC-2およびCROC-4のそれぞれをfos- CATリポーター遺伝子と同時トランスフェクトし、そして以下のように、CAT活性 の増加についてテストした。ラット2細胞を、18μgのLα2-発現cDNA（即ち、CRO C-1，CROC-2またはCROC-4）＋２μgfos-CATで、4時間、同時トランスフェクトし 、次いで、DMEM＋0.5%ウシ血清を再度供給した。トランスフェクション後、72時 間目に細胞を回収し、そしてCATアッセイをGormanら、Mol ．Cell．Biol.，2,104 4-1051(1982)の手順で行った。 CAT活性は、CROC-1、CROC-2およびCROC-4により、有意に誘導され、c-fosプロ モーター活性化を示した。活性化の程度は、pMVPkCΔβ1との同時トランスフェ クションにより引き起こされる活性の約50%であった。対照的に、ベクター単独 ては実質的なCAT活性を誘導しなかったし、CROC-1、CROC-2およびCROC-4とおな じプラスミドプールから単離されたランダムに選択されたcDNAライブラリープラ スミドであるが、随伴複製を活性化しなかったプラスミドも活性化しなかった。 これらの結果は、CROC-1、2または4をPfLAG-8と同時トランスフェクトした際に 、プラスミドの回収が増加することは、PfLAG-仲介随伴複製におけるc-fosプロ モーターの活性化によることを確証した。c-fos 活性化タンパク質の解析： 配列決定の結果、CROC-2は、最近同定されたα2-マクログロブリンレセプター 結合タンパク質(AMRAP)（Stricklandら、J ．Biol．Chem.,266,13364-13369(1991 )に記載されている）をコードしていることが示された。挿入物はほぼ全長を有 しており、そして開始コドン（これは、内部ベクターの開始コドンとインフレー ムである）からポリAテールまで伸びていた。 CROC-4のヌクレオチド555-897に対応する347塩基対の配列は、発現配列tagと してGenBank(受託番号Z40809)に提出されている。 CROC-1cDNAは、配列番号１に示すように、酸性のアミノ末端半分と塩基性のカ ルボキシ末端とを有する19kdのタンパク質をコードしている。このタンパク質は 、キナーゼ標的ドメインを含んでおり、このドメインは、シグナル伝達に関与す る種々のキナーゼに対するリン酸化部位を含んでいる。特に、キナーゼ標的領域 は、以下の酵素に対する隣接する潜在的なリン酸化部位の近傍からなっている： (a)チロシンキナーゼ(RXXXEXXXYモチーフ、アミノ酸81-89)、Cooperら、J ．Biol ．Chem. ，259，7835-7841(1984); カゼインキナーゼ２(TIYEモチーフ、アミノ酸 82-85)、Kuenzelら、J ．Biol．Chem.，262, 9136-9140(1987); cAMP-依存性プロ テインキナーゼ(RIYSモチーフ、アミノ酸87-90)、Glassら、J ．Biol．Chem.，26 1 ，2987-2993(1986)およびKishimotoら、J ．Biol．Chem. 260 ，12492-12499(198 5); およびプロテインキナーゼＣ(SLKモチーフ、アミノ酸90-92)、Kishimotoら 、前出。 CROC-1タンパク質のキナーゼ標的ドメインは、塩基性ドメインの開始点に位置 する12アミノ酸の長さである。既知の酸性ドメインのトランスアクチベーター活 性は一般に、塩基性ドメインをDNAと結合する可能性と組み合わせると、CROC-1 が、その活性がキナーゼ標的ドメインのリン酸化により調節される転写アクチベ ーターとして作用し得ることを示唆する。リン酸化は、この領域の酸性度をさら に増大させ、それによって、転写活性化のその能力を増加させ、また、このタン パク質の構造コンフォメーションにおける変化を引き起こす。 CROC-1 mRNAの長さと組織分布を、CROC-1の1.8kb SalI/NotI挿入物をプローブ として用い、種々のヒト組織から単離したポリAを含むRNAのノーザン解析により 測定した。CROC-1 mRNAは、約2.3kbの長さであり、本発明者らのcDNA挿入物より も約0.5kb長く、そして調べた全ての組織に存在し、脳、骨格筋、および腎臓で 最も高いレベルであった。これに比べて、1.5kb CROC-2 mRNAは、調べた全ての 組織に存在したが、心臓、胎盤、および腎臓で最も高いレベルで発現していた。 Strickland、前出、によってCROC-2について報告されているような二者択一のス プライシングまたは転写-終結-ポリアデニル化シグナルの複数のセットの結果と してのさらなる転写物に対する証拠は見い出されなかった。 CROC-1タンパク質の細胞内局在化を、HEL中にCROC-1をクローニングし、そし て生じたプラスミドをCOS-7細胞(ATCC番号CRL 1651)にエレクトロポレーション することにより測定した。CROC-1核酸のHELベクターへの導入により、赤血球凝 集素エピトープのCROC-1タンパク質へのインフレームでの融合を可能にする。次 いで、CROC-1タンパク質の細胞内位置を、赤血球凝集素エピトープに対するマウ スモノクローナル抗体を用いる免疫蛍光顕微鏡により測定した。CROC-1のHELへ のエレクトロポレーションにより核蛍光が強化された。対照的に、HEL単独のエ レクトロポレーションは一般的な細胞質の蛍光を生じ、これは、核局在化がCROC -1タンパク質の固有の性質であることを示している。 本発明が修飾例および改変例を含むことは当業者には明白である。本発明に記 載された特定の実施態様は、ただ代表例にすきず、本発明の範囲は、特許請求の 範囲によって規定される。 DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION     c-fos Method for identifying a nucleic acid encoding a promoter activating protein   The present invention provides a signaling component that activates the human c-fos proto-oncogene promoter. The present invention relates to substances and methods for identifying offspring and antagonists of such molecules.Background of the Invention   Signaling molecules like proto-oncogenes Ha-ras, c-fos, c-myc, and c-jun Cell activation as a result of mutation or overexpression of It is associated with vesicle overgrowth. DeFeo et al.Proc . Natl. Acad. Sci.,78, 3328-33 32 (1981); Miller et al.,Cell,36, 51-60 (1984); Kelekar et al.Mol . Cell. Biol.,6 7-14 (1986); and Vogt et al.Adv . Cancer Res.,55, 1-35 (1990). When.   Induction of c-fos activates growth-related signaling pathways after serum stimulation of mouse 3T3 cells. Overexpression of normal and transformed forms of Ha-ras in response to Each happens in response to reality. Constitutive expression of c-fos is also found in certain human tumor lines. It has been shown to happen. These findings suggest that the abnormal growth characteristics of the neoplastic phenotype May include constitutive activation of signaling pathways involved in c-fos carcinogen induction Suggests. Greenberg et al.Nature,311433-438 (1984); Stacey et al.Mol . Cell . Biol. ,7523-527 (1987); and O'Hara et al.Mol.Cell . Biol.,7, 2941-2946 (1987).   By using a reporter gene driven by the c-fos promoter, c-fos A specific enhancer in the proto-oncogene promoter has been identified and Responds to the sexual signaling pathway. These enhancers include tyrosine kinases Responsive SCM, raf-responsive direct repeat, protein kinase C-responsive AP-1 site, And ras-responsive serum response elements. Fujii et al.Mol . Cell. Biol.,9, 2493 -2499 (1989); Hayes et al.Proc . Natl. Acad. Sci., USA,84, 1272-1276 (1987); Jamal et al.Nature,344Gutman et al., 463-466 (1990);Mol . Cell. Biol.,11,Five 381-5387 (1991); and Fisch et al.Mol . Cell. Biol.,9 See 1327-1331 (1989) That.   Enhancer and stably interact using the transcriptional activation of SV40 T antigen gene Associated replication systems that identify transcription factors are known. Vasavada et al.Ind . J. Bioche m. Biophys. ,twenty five, 488-494 (1988); Vasavada et al.,Gene,55, 29-40 (1987); Vasav ada,Proc . Natl. Acad. Sci.,88, 10686-10690 (1991); and Rusconi et al.Ge ne ,89, 211-221 (1990).   Due to the importance of signaling molecules in controlling cell growth, proliferation-related signaling Molecules (which in turn serve as biological targets for the discovery of antitumor drugs) There is a need for a method of identifying (which can be used to identify). Abnormal cell proliferation In this case, normal growth can be restored by disrupting such a growth-related signaling system There is also a need for a method to identify factors.Summary of the Invention   The present invention relates to a substance for identifying a signaling molecule and an antagonist thereof. And providing a method meet the aforementioned needs. More specifically, The present invention provides a mammalian cell line, which comprises: (a) a polyomavirus large T antibody; Inducible or tissue-specific promoter operably linked to the progenitor-encoding nucleic acid And (b) a polyomavirus origin of replication and And a nucleic acid that is thought to encode an activating protein of the above promoter And a recombinant expression vector.   Preferably, the promoter is the human c-fos promoter and The protein is a human c-fos promoter activating protein.   The present invention provides a method for identifying a nucleic acid encoding a promoter activating protein. Further provided is a method comprising: (a) a mammalian cell line, comprising: (i) a polyomavirus Inducible or tissue operably linked to the coding region of the large T antigen gene A recombinant vector containing a specific promoter; and (ii) polyomavirus replication. It is thought to encode the starting point of the production and the activating protein of the above promoter A cell containing a recombinant expression vector containing a nucleic acid is subjected to conditions under which such a nucleic acid is expressed. And (b) incubation sufficient to permit vector replication. Measuring the level of the replicated vector in the cells after the incubation period; Nucleic acid encoding a promoter-activating protein increases the amount of vector in cells Identified by measurement of the determined level.   Preferably, the promoter is the human c-fos promoter and The protein is a human c-fos promoter activating protein.   Suitable recombinant vector containing the human c-fos promoter used in the present invention -Is the plasmid PfLAG-8.   Suitable recombinant expression vectors containing a polyomavirus origin of replication are plasmids. De Lα2.   The present invention also relates to an amino acid sequence defined by SEQ ID NO: 1 and SEQ ID NO: 3 in the sequence listing. C-fos promoter activating protein having a sequence, or antigenic flag thereof And nucleic acids encoding such proteins or fragments. Offer.   In another embodiment, the invention provides a mammalian cell line, wherein the cell comprises: (a) human c-f First recombinant vector comprising a reporter gene operably linked to an os promoter A current vector; and (b) a nucleus encoding a human c-fos promoter activating protein A second recombinant expression vector comprising an acid.   The present invention also provides an antagonist of the human c-fos promoter activating protein. Providing a method of identifying, comprising: (a) providing a mammalian cell line, This cell is (i) a reporter gene operably linked to the human c-fos promoter. A first recombinant expression vector containing the vector; and (ii) activating the human c-fos promoter. A second recombinant expression vector comprising a nucleic acid encoding the protein; a) cell line and a human c-fos promoter activating protein antagonist Contacting with a sample that is considered to be Measuring the level; thereby, activating the human c-fos promoter in the sample. Protein antagonists measure reduced levels of reporter gene expression More identified steps.   Preferably, the second recombinant expression vector is a CROC-1 protein, a CROC-4 protein. Encodes a protein or α2-macroglobulin receptor binding protein.Detailed description   All references cited herein are incorporated by reference in their entirety. .   The following terms are represented by the abbreviations set forth herein: Long Terminal Library Pete (LTR); Dulbecco's Modified Eagle's Medium (DMEM); Serum Response Element (SRE); Ramphenicol acetyltransferase (CAT).   All nucleic acid sequences disclosed are from left to right, according to the convention usually 5 'to 3'. Read. Standard single letter abbreviations are used for nucleotide bases in the sequence (37 C. F.R.§ 1.822).   The term “antagonist” is used herein to refer to the CROC-1 protein or α2-mac Human c-fos promoter activity, such as the immunoglobulin receptor binding protein Is defined as a substance that blocks or inhibits the action of an oxidized protein.   As used herein, the term “reporter gene” may include introns. DNA molecules or messenger RNA isolated from genomic DNA It means any of complementary DNA (cDNA) prepared as a template. I In the event of misalignment, this DNA may be, for example, enzymatically active, Assays that can be easily measured by ELISA or radioimmunoassay (RIA). Code the actual product. A preferred reporter gene used in the present invention is pC Includes E. coli Lac-Z gene derived from H110 (Stratagene # 27-4508-01). Of this gene Expression levels can be measured by a sensitive fluorescent substrate assay. Described below The CAT reporter gene is also suitable, but many other reporters well known to those skilled in the art. A gene can be used instead.   The term “recombinant expression vector” refers to a vector prepared using recombinant technology. This vector contains the inserted nucleic acid encoding the protein, When transfection or transformation into an appropriate host cell, It is included so that the protein can be expressed. Suitable vectors are promoter-activated proteins. And nucleic acids encoding proteins. Operably linked to the human c-fos promoter Vectors containing a reporter gene are also suitable.   "Stably transformed" cells are those that have integrated the recombinant into their genomic DNA It has DNA. Such stably integrated DNA is stored in transformed cells. Be held. Because it is present in cells with selectable markers such as G418 resistance. This is because they are introduced and force retention when cells grow in the selection medium. The present invention Uses a transiently transfected mammalian cell line, but uses the c-fos promoter Stably transformed mammalian cell lines containing regulatory large T antigens can also be used. You.   Inducible or tissue-specific promoters of the invention are usually required (house-kee ping) Not a promoter. That is, they are regulated under normal conditions, but Not transcriptionally active except to the extent that low basal levels of target expression can occur.   As defined herein, an "inducible promoter" is one whose activity is In cellular environments that produce cellular responses such as stress, hormonal stimulation, or differentiation Promoters that are activated or increased in response to certain changes. Induction is Signa Occurs via activation of the ring cascade, and at the promoter site, transcription factors Produces increased binding and activity. The molecules involved in such induction are described herein. And promoter-activating proteins as described in. Navigable pro The motor contains c-fos and c-mys promoters. Other inducible promoters IsJ . Biol. Chem.,268, 15347-15350 (1993). It is a motor.   The term "tissue-specific promoter" refers to a promoter that is active only in prostate cells. Promoters that are active only within a subset of cell types, such as You. Young et al.Biochem.,31818-824 (1992); and Riegman et al.Mol . Endocrin ol. ,Five, (No. 12) 1921-1930 (1991). Other tissue-specific promoters Contains a promoter for the late histone gene and a promoter for the muscle regulatory element. No.Genes Dev.,Four, 849-859 (1990);Mol . Cell. Biol., 9, 515-522 (1989); AndMol . Cell. Biol.,9, 2191-2201 (1989).   The promoter that can be used in the present invention is a promoter of the proto-oncogene c-fos and c-myc. Including but not limited to motors. Miller et al., Supra; and Kelekar et al., Supra. See out. Overexpression of both promoters leads to abnormal cell growth Regulate the in vivo expression of the resulting gene. The c-fos promoter is most preferred.   The term “abnormal cell growth” as used herein refers to abnormal or uncontrolled neoplasms Defined as cell growth characteristics.   As used herein, the term "promoter activating protein" refers to One of the motors is defined as a protein that causes transcriptional activation. Preferred In other words, the promoter activating protein is a human c-fos promoter activating protein. Quality. Most preferably, the α2-macroglobulin receptor binding protein An activated protein having an amino acid sequence substantially identical to the amino acid sequence. Also most preferred are the sequences defined in SEQ ID NO: 3 and SEQ ID NO: 1, respectively. Substantially the same as the amino acid sequence of the CROC-4 protein or the CROC-1 protein. An activated protein having an amino acid sequence that is one. Substantial amino acid sequence Identity is compared to the sequence defined by either SEQ ID NO: 1 or SEQ ID NO: 3 The sequence of another c-fos promoter activating protein One or one that does not substantially impair the transcriptional activation activity as described herein It means that the amino acid changes (deletion, addition, substitution) are different. For example Allele of the sequence defined by any of SEQ ID NO: 1 or SEQ ID NO: 3 Or interspecies variants may be present.   Further, for example, by chemical synthesis or modified polymerase chain reaction (PCR) SEQ ID NO: 1 or SEQ ID NO: by use or by using site-directed mutagenesis C-fos promoter activating protein having a sequence defined by any one of DNA encoding the protein to produce single or multiple base substitutions and then Producing a c-fos promoter activating protein that does not substantially impair the sex , Well within the skill of the artisan. Such a conservatively modified variant, It is within the scope of the present invention.   Sequence identity is determined by optimizing residue matches, if necessary, and It can be measured by introducing a gap as necessary. This allows for conservative substitutions Different if considered as coincident. Conservative substitutions typically involve the following groups: Including substitutions within the group: glycine, alanine; valine, isoleucine, leucine Aspartic acid, glutamic acid; asparagine, glutamine; serine, threo Nin; lysine, arginine; and phenylalanine, tyrosine. Homology The nucleic acid sequence is typically the natural allele at each protein sequence. And interspecies variability. A representative homologous protein or peptide is CROC-1 protein. 25-100% homology with protein or CROC-4 protein (gaps may be introduced Case), 50-100% homology (if conservative substitutions are included). Large homology At least about 50%, and typically at least 60% or more. You.   The present invention also relates to the "antigenic fragment" of the human c-fos promoter activating protein. ). The antigenic determinant (epitope) is generally at least about 5 amino acid residues Is well known to those skilled in the art. Ohno et al.Proc . Natl. Acad. Sci. USA,82, 2945 (1985). The antigenic fragments of the present invention comprise from about 5 to about 100, and preferably Or about 5 to about 50 amino acid residues. Certain polypeptides are within the scope of the present invention. Whether or not to enter is readily determined by routine experimentation using the method described below. Can be   Such an antigenic fragment is a full-length human c-fos promoter activating protein. Produced by protein proteolysis or by chemical or recombinant DNA synthesis Can be done. The antigenic fragment is produced by standard methods, preferably in mammals. , Can be used to elicit antibody production. Antibodies thus produced are standard Activated proteins are assayed or purified using immunoassays or immunosorbent assays Can be used to produce   The present invention utilizes a recombinant vector containing a polyomavirus T antigen gene, By expanding the associated replication system, its production leads to transcriptional activation of the gene promoter. Identify proteins. SV40 T antigen inheritance used by Vasavada et al., Supra. In contrast to offspring, the replication and transformation properties of the polyoma T antigen gene are segregated. obtain.   Separation of replication and transformation properties overlaps with the central coding sequence of middle T antigen This is achieved by inserting a stop codon in the large T intron in the region. This Is important in the case of the c-fos promoter, where the prevention of middle T expression Stop is activated at middle T, due to low levels of basal transcription from the promoter C-src- and phosphatidylinositol 3-kinase-related signaling systems (Talmage et al.,Cell,59, 55-65 (1989)). Exclude the possibility.   The use of the polyomavirus system has led to several well-characterized mouse systems. Enables the extension of adjoint replication. In contrast, used by Vasavada et al., Supra. SV40 T strains are mainly limited to Simian (monkey) strains. Further, the system of the present invention Is the previously reported high frequency of truncated or rearranged SV40 T antigen-based systems. It does not appear to result in an arrayed insert (about 25%). Modification of the insert can be used in the system of the invention. Occurs less than 2% of the time.   A preferred embodiment is the polyomavirus large T antigen gene promoter Signalin encoded by multiple cDNAs, incorporating multiple enhancers from the stream Sufficient promoter to allow large T induction in response to low-level expression of gu molecules Achieve sensitivity. Large T induction, in turn, results in plasmid replication. Less than Co-transfection with a cDNA library as described in Encodes signaling proteins by large T-induced plasmid replication Of the cDNA to be enriched within the library population. The resulting enrichment reduces the size of the library plasmids in the cDNA library. Enables continuous screening of growing groups and activates promoters With the identification of a single library plasmid encoding a biologically active molecule Sir.   The self-amplification process of the present invention provides for the detection of cDNA encoding a signaling molecule. To provide additional sensitivity. Initial plasmid replication in response to induction is greater High gene copy number results in increased expression of active signaling molecules . This increase in signaling molecules leads to greater amplification of large T antigen expression Which, in turn, results in greater plasmid amplification.   Preferred vectors of the present invention, as described below, are PfLAG-8 and La2. Includes a new plasmid named.   The present invention relates to a promoter, preferably a human promoter, and more preferably Identifies a cDNA encoding a protein that can activate the human c-fos promoter Further methods are provided. More preferred is a c-fos promoter activating tan. CDNAs named CROC-1 and CROC-4 that encode the protein. For example, CR OC-1 is named CROC-1 protein having the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1. Encodes a specific c-fos promoter activating protein to be obtained. Similarly, CROC- 4 is named CROC-4 protein having the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 3. Encodes a specific c-fos promoter activating protein. Most preferred Is the nucleotide sequence shown in SEQ ID NO: 1 and SEQ ID NO: 3.   The present invention also provides for conservative alterations of the protein encoded by CROC-1 or CROC-4. Provided is a cDNA encoding a variant c-fos promoter activating protein. Such mutants are proteins encoded by CROC-1 and CROC-4, respectively. It has the function of binding quality and activating the c-fos promoter.   Further, the present invention relates to the amplification of proteins encoded by CROC-1 or CROC-4. Provide compounds that are agonists. These antagonists are based on the CROC-1 protein. Protein or deletion or substitution or addition mutant of CROC-4 protein And it binds but does not activate the human c-fos promoter.   Due to the degeneracy of the genetic code, c-fos promoter activity as defined herein Activating protein and c-fos promoter activating protein antagonist It is understood that there are many functionally equivalent nucleic acid sequences that can be loaded. This Such functionally equivalent sequences include chemical synthesis, PCR using modified primers, and It can be readily prepared using known methods such as site-directed mutagenesis and is within the scope of the present invention. It is in the box.   The term "recombinant vector" as used herein is as described herein. Novel recombinant plasmids, and Geller et al.,Proc . Natl. Acad. Sci. USA,87, 1149 (1990) containing both recombinant retroviral vectors that can be processed as described in .   Said recombinant vector may be transfected, as defined herein. Transfected with any mammals capable of transfecting and allowing vector replication Can be used to In principle, cells from fresh tissue explants (primary cells) Although it can be used, the use of established cell lines is preferred. Many such cell lines Are available, for example, NIH 3T3 mouse (ATCC number CRL 1658), L-M (TK-Mau (ATCC number CCL 1.3) and BALB / c 3T3 clone A31 mice (ATCC number CCL 163) Cell strains.   Selection of cells or cell lines in the method of the present invention depends on the known vector used. Or specificity that can be determined. For example, the mouse cell line is human c- Polyomavirus virus under the control of a regulated promoter, such as the fos promoter Recombinant vector containing the gene for antigen T; polyoma virus origin of replication And nucleic acids that are thought to encode human promoter-activating proteins A mammalian recombinant expression vector comprising, for example, a retrovirus capable of expressing the nucleic acid. Suitable for use with vectors such as retroviral expression vectors containing the viral LTR Good.   Although the cells used in the present invention are primarily transfected, they are safe. Transformed cells can also be used. Stable transformation of mammalian cell lines Make the cells resistant to one of the above recombinant vectors and a selection agent such as an antibiotic. Using standard methods of co-transfection with a second vector that confer Can be achieved by   The method of the present invention is used to encode a human c-fos promoter activating protein. Cells were engineered for the polyomavirus large T antigen gene to identify Operably linked human c-fos promoter and polyomavirus replication Includes a cDNA library integrated into a mammalian recombinant expression vector containing a starting point Co-transfected with the recombinant vector. The cells are then transferred to human c-fos pro Vectors containing a cDNA encoding a motor activating protein enhance vector replication. Incubate under large stimulating conditions. The cells are then harvested and the plasmid Extracted and non-replicated vectors are selectively digested with DpnI. Duplicated Plasmi Are recovered by transforming competent bacteria with the DpnI digest.   A typical incubation is wet COTwo2 days at 37 ° C in an incubator While performed, the choice of conditions will be apparent to those skilled in the art and, for example, It depends on the nature, the medium used and the type of culture container. Incubate The session is continued for a time sufficient to allow the development of a strong replication response. The optimal time is Can be determined by routine experimentation, but typically ranges from about 24 hours to 72 hours. is there.   Substantially increased levels of vector replication and recovery after DpnI digestion indicate that human c-fo For vectors that contain a nucleic acid encoding a promoter-activating protein, Background obtained from replication of a vector lacking such a vector. Is detected in comparison with the command.   A substantial increase in vector replication and recovery is due to the human c-fos promoter activity. Measured when there is no plasmid containing nucleic acid encoding the activating protein Level, typically at least about 5 times, preferably about 8 times, and Also preferably about a 20-fold increase in level. The extent of the increase is mainly due to the background Depending on the replication level of the command.   Substantially the same procedure is followed by a nucleus encoding another human promoter-activating protein. Used to identify the acid, which binds the polyomavirus large T antigen. Use of a vector containing a promoter operably linked to the nucleic acid to be According to.   Using the method of the invention, the human c-fos promoter activating protein antagoni In screening for the list, a list of operably linked human c-fos promoters was used. A first recombinant expression vector containing a porter gene and a human c-fos promoter -Co-transfer with a second vector containing a nucleic acid encoding the activating protein Cells to be cloned are provided. Preferred reporter genes are fo described below. It is the s-CAT reporter gene or the fos-lacZ reporter gene. Cells are used In a culture medium appropriate for the type of cells to be obtained.   The cells are then incubated in the presence of varying amounts of the sample, including the putative antagonist. Alternatively, in the absence (control), a human c-fos promoter activating protein Incubation is performed under the condition that the gene to be loaded is expressed. Under these conditions, And in the absence of antagonists, stimulation of the human c-fos promoter occurs. , The reporter gene is expressed. The sample may be, for example, one in which the isolated compound is dissolved. Or individual steps from purification steps such as chromatography or electrophoresis fractions. Or it may be an aqueous or water-miscible solution that is a pooled fraction.   A typical incubation is at 37 ° C. with wet COTwoImplemented in incubator However, the choice of conditions will be clear to the skilled person and is, for example, It depends on the medium used and the type of culture container.   Incubation is performed when sufficient to allow significant reporter gene induction. At which point the expression level of the reporter gene is measured by an appropriate assay. Is determined. The optimal time to perform the measurement can be determined by routine experimentation, but Range from about 24 to 72 hours, preferably about 48 hours.   The highest level of reporter gene expression was in control (antagonist No) can be measured in culture. Culture is human c-fos promoter activating protein If a agonist is included, a decrease in reporter gene expression levels is measured and The degree is a direct function of the amount of antagonist added to the medium. How many cultures Antagonists present in the sample added to the plate are responsible for the reporter gene expression. Measure qualitatively reduced levels compared to levels measured in control cultures To be identified.   Substantially reduced levels of reporter gene expression are from the human c-fos promoter. Low levels measured in the absence of any activating protein antagonist Both are defined as 50%, and preferably at least about 70% reduction. Of course, The degree of reduction depends on the human c-fos promoter activating protein used and the antago. Influenced by the quality of the antagonist present in the sample compared to the effect of the nyst .   Reduced levels of reporter gene expression due to the general toxicity of the sample A second constitutively expressed second gene, such as lac-Z, driven by the Kuching promoter Transfected porter gene and c-fos reporter for lac-Z expression -Can be explained by correcting for gene activity.         The following non-limiting examples are provided to illustrate the present invention.                                 Example Materials and general methods   Unless otherwise indicated, the following solids in solid mixtures, liquids in liquid mixtures and The percentages of solids in liquids are wt / wt, vol / vol, and wt / vol, respectively. The base. Aseptic conditions are maintained during cell culture.   Sambrook et al., "Molecular Cloning. A Laboratory Manual, Second Edition", Cold S Standard recombination as described in the Spring Harbor Laboratory Press (1989) Method used.   DpnI is a known restriction endonuclease isolated from Diplococcus pneumoniae And ICN Biomedicals, Sigma Chemical Company or New England BioLa bs, Inc. Can be purchased from   Restriction endonucleases Asel, BamHI, BglII, BstXI, ClaI, FspI, HincII, N arI, NotI, SacII, SalI, ScaI, XbaI and XhoI are known, for example, Sigma Can be purchased from Chemical Company.   Restriction endonucleases BamHI, BssHII, BstXI, HincII, SalI, ScaI and Xb al is known and can be purchased, for example, from ICN Biomedicals.   Restriction endonucleases AflIII, AseI, BamHI, BglII, BssHII, BstXI, ClaI , FspI, HincII, NaeI, NarI, NotI, SacII, SalI, ScaI, XbaI and XhoI are already And, for example, New England BioLabs, Inc. Can be purchased from   The restriction endonuclease SauI is known, e.g., from Boehringer Mannheim. Can be purchased from   The enzyme mung bean nuclease is known and is described, for example, in New England BioLabs, In. c. Or it can be purchased from Sigma Chemical Company.   The synthetic polylinker used to prepare the vector Lα2 is New England B ioLabs, Inc. And has the sequence shown in SEQ ID NO: 2. NcoI linker d (pAGCCATGGCT) is known and is available from New England BioLabs, Inc. (Catalog number 1150) Can be purchased from   Vector pUC19 (ATCC 37254, GenBank Accession Accession No. and BioLabs, Inc. Or it can be purchased from ICN Biomedicals. Nucleotide of pUC19 Sequences and restriction sites are described in Yanisch-Perron et al.Gene,33, 103-119 (1985) Have been.   The following DNA is used in the preparation of the plasmid of the present invention and is available to the public : Polyomavirus DNA strain A2 (ATCC No. 45017); and human genome c-fos (ATCC Number 41042). In addition, the DNA sequence of the polyomavirus A2 strain isDNA Tumor Vir uses (1980) (Cold Spring Harbor Press), pp. 834-838. Have been.   The construction of the retrovirus vector pMV7 is described in Kirschmeier et al.DNA,7, 219-225 (198 8), starting from plasmids pPyori and pMV (ATCC No. 37190) . The vector pMV7 is well known to those skilled in the art and is widely and freely distributed to many laboratories. I have. Furthermore, retroviruses similar to pMV7 and which can be used instead in the present invention Isul is readily available, for example, pV-mos (ATCC No. 41037).   The fos-CAT reporter gene construct described below is a commercially available pCAT-based The vector was prepared using a vector (Promega Catalog No. E1041).   Mouse Model for Hemagglutinin Epitope and Fluorescence-Binding Rabbit Anti-Mouse IgG Noclonal antibodies can be purchased from Boehringer Mannheim.   Create a one-way cDNA library to screen for a cDNA library Which was obtained from human brain poly A RNA (Clontech, Palo Alto, CA) using GIBCO (Granco). d Island, NY) using the Superscript cloning kit from SalI of plasmid Lα2. This was performed by insertion at the / NotI site.   Separation and visualization of nucleic acids was performed as described in Sambrook et al., Supra, using agarose. The gel was electrophoresed and visualized using ethidium bromide. All nuclei Otide sequencing was performed using the dideoxy-mediated chain termination method. gave. This method is described in Sanger et al.Proc . Natl. Acad. Sci. USA,74, 5463-5467 ( 1977). In order to obtain CROC-1 and CROC-4 sequences, the DNA Column determination was performed.   PfLAG and Lα2 containing cDNA encoding a biologically active signaling molecule Activation of c-fos promoter by co-transfecting cells with And large T antigen was produced. Polyomawi is a large T antigen Stimulates the intracellular replication of a plasmid having a Russ origin of replication. Plasmid, Hirt,J . Mol. Biol.,26“Hirt extraction” using the method described in J., 365-369 (1967). From the transfected cell culture. Did not duplicate The plasmid is selectively destroyed by restriction digestion with DpnI. Replicated plasmid Is then recovered by transforming competent bacteria.   Early passage NIH 3T3 mouse fibroblasts (ATCC number CRL 1658) and rat 2 fibers Blast cells (ATCC number CRL 1764) with 10% calf serum and 50 μg / ml gentamicin sulfate Were grown in DMEM medium supplemented with   DH10B E. coli used in the present invention can be purchased from GIBCO.Plasmid construction:   Two basic plasmids for use in the present invention were constructed. The first plasmid (PfL AG), which acts as a source of large T antigen upon activation of the promoter. Works and is regulated by a human promoter based on the human c-fos promoter It had the polyomavirus large T antigen gene. The second plasmid (Lα2 Is a retroviral cDNA having a polyomavirus origin of replication. It was an expression vector.   The retroviral cDNA vector Lα2 was constructed as follows. Polyoma virus DNA A2 strain was digested with BamHI / NarI, and the resulting 750 bp fragment was digested with the BamHI / Ligation to the NarI site and the resulting plasmid was named pOri. Retrovirus vector PMV7 was digested with FspI / AflIII and the resulting two Moloney mice (Molony murin e) Ligation of the 4Kb band containing the sarcoma virus LTR to the HincII / AflIII fragment of pOri Thus, a plasmid named pMV7-2 was obtained. Two Moloney mouse sarcomas in pMV7-2 Remove the neomycin resistance gene present between the viral LTRs by SauI / ClaI digestion, Next, substitution with the synthetic polylinker (described above) yielded plasmid pMV7-3. blue- To perform white screening, replace the polylinker in pUC19 with an NcoI linker And then the 360 bp lacZ region was removed by AseI / NarI digestion and the mung bean The ends were blunt-ended with lase and ligated to the polylinker of pMV7-3. The resulting plasmid (Named Lα2) is 4.5 kb and is located at the 5 ′ and 3 ′ ends of the lac Z gene, respectively. And had only one SalI and NotI site. Translation start codon (to this Is followed by the DNA sequence encoding the histidine hexamer) Inserts 5 'of the site and contains cDNA from the truncated cDNA insert lacking the initiation codon. Ensures expression of the loaded protein and aids in subsequent protein purification.   The PfLAG plasmid was prepared by the following procedure. Under the control of the human c-fos promoter A polyomavirus large T antigen was introduced, which was 5.9 Kb B of pcfos-1. amHI fragment (Curran et al.,Mol . Cell. Biol., 3, 914-921 (1983)) to N digest with aeI to remove the entire coding region of the c-fos gene, and 2.8Kb BstXI / HincII band (encoding polyoma T antigen) It went by entering. Expression of middle T and small T was performed using polyomavirus. Insert a stop codon at the ScaI site at position 605 of the DNA sequence (reported by Tooze et al., Supra). By doing so. The resulting construct was cloned into PfLAG-1 (promoter fos / large T As antigen).   A third vector, named HEL, was prepared to identify the subcellular location of CROC-1. Used for The sequence encoding the histidine hexamer of Lα2 was digested with BglII / SalI. And Field et al.,Mol . Cell. Biol.,8, 2159-2165 (1988) The 9 amino acid influenza virus HA1 epitopes listed Was replaced with the sequence to be loaded. Next, the replication origin of SV40 was changed to the replication origin of polyoma. HEL was created by inserting into the unique XbaI site between the and the 5 'LTR.   A fourth vector was prepared to activate the putative human c-fos promoter. Quality was used to confirm the ability to stimulate the c-fos promoter. fos-CAT report Gene (Deschamps et al.,Science,233, 1174-1177 (1985)) is -735 (B human c-fos promoter from amHI site to +42 (NaeI site) Prepared by inserting before the bacterial CAT gene in the vector (Promega).PfLAG- Determining enhancer requirements for dependent-associative replication:   For the purposes of the present invention, the human c-fos promoter in PfLAG is Must be transcriptionally silent, but not sufficient to cause plasmid replication Active, cDNA-encoded signaling molecule by producing a novel T antigen Must be sensitive enough to respond to low levels of expression of Promoter The sensitivity and level of gene induction from It can be increased by introducing element. Multiple enhancer elements in PfLAG-1 Introduced, but it is approximately 500 bp or larger, including the c-fos enhancer element. XhoI / BssHII (blunt-ended) was isolated and the enhancer region was By ligating to the XhoI / SacII site (blunted) of PfLAG .   To determine the number of enhancers needed to indicate concomitant replication, A series of PfLAGs containing 1, 2, 4, and 8 enhancer regions were constructed. Next The following experiment was performed to determine the enhancer requirement for PfLAG-dependent replication. Stipulated.   Muramatsu et al.Mol . Cell. Biol.,9, 831-836 (1989) describes protein kinase C Was shown to induce the c-fos promoter. The rat's The nucleotide sequence and deduced amino acid sequence of protein kinase C-β1 y et al.Cell.52, 343-354 (1988). Rat protein kinase C- The catalytic domain of β1 was introduced into Lα2, creating a construct named pMVPkCΔβ1. Pf containing pMVPkCΔβ1 / Lα2 mixture and 1, 2, 4, or 8 enhancer regions Co-transfection with LAG therefore tests the sensitivity of each of PfLAG Means can be provided.   For cDNA screening, a threshold for detecting about 40 to about 1 plasmid Sensitivity was used. Therefore, co-transfection of NIH3T3 cells with each of PfLAG The following procedure was performed using a pMVPkCΔβ1 / Lα2 ratio of 1:40 (wt / wt) for the Was. After transfection, cells were incubated for 48 hours. Plasmid And, after DpnI digestion, control the recovery of the enhanced plasmid showing concomitant replication. Inspected. Table 1 shows the results obtained under these conditions. These data are 8 Enhancer region (PfLAG-8) is required for significant activation of plasmid replication And the results from co-transfection of PfLAG-8 with the vector alone. This shows that plasmid recovery was increased 8-fold relative to background. PfLA G-8 induction ranges from 6-fold to more than a 20-fold increase in plasmid recovery, Depending on the background level.   Plus the concentration of the plasmid encoding the promoter activating protein The effect on pMVPkCΔβ1 recovery in the entire population of mids was determined by simultaneous tracing with PfLAG-8. Before transfection, change the concentration of pMVPkCΔβ1 in the pMVPkCΔβ1 / Lα2 mixture. Measured. Lα2 has a modified lacZ gene from pUC19 Therefore, bacteria transformed with Lα2 include ampicillin, X-gal, and IPTG. Turns blue when plated on agar plates, but is transformed with pMVPkCΔβ1 The replaced bacteria remain white. The percentage of pMVPkCΔβ1 was White colonies as a percentage of the total number of colonies generated by transforming the bacteria with the product Was determined by expressing the number of   This was achieved by co-transfecting PfLAG-8 with the pMV7PkCΔβ1 / Lα2 mixture. The experiment started with a 1:80 ratio (wt / wt) and then diluted to a 1: 400 ratio However, the procedure was as described below. Competent DH10B E. with DpnI digested Hirt extract. Transform E. coli and on agar containing ampicillin, X-gal, and IPTG Plate. The percentage of pMV7PkCΔβ1 in the recovered colonies was It was determined by the number of white colonies on the knee.   To confirm that white colonies resulted from the transformation of pMVPkCΔβ1, Rasmids were collected and mapped with restriction enzymes. All white colonies have the correct pMVPkC The restriction pattern of Δβ1 was shown. The results shown in Table 2 indicate the number of recovered colonies. Decreased relative to the background level at high pMV7PkΔβ1 dilution, but pMV7Pk The actual percentage of Δβ1 colonies increases; showing a minimum of 400 live Rally colonies are transfected with pfLAG-8 and encode signaling molecules. 4 shows that the cDNA library population can be enriched for the cDNA to be loaded. Therefore, c- A library enriched for cDNA encoding the activator of the fos promoter To obtain a population, perform an initial cDNA library screen of 400 or more This was performed using a plasmid pool composed of the above plasmids. Cell culture and transfection:   8 × 10 for transfectionFiveOf 3T3 cells in a 100mm dish The medium was implanted and allowed to attach overnight. The next day, using calcium phosphate, Wigl er,Cell,11, Transfection was performed by the method of 223-232 (1977). After exposure to calcium phosphate precipitation for 4 hours, cells were washed with phosphate buffered saline for 2 hours. Washed twice, re-fed with DMEM supplemented with 0.5% calf serum, and incubated at 37 ° C for 40-48 hours. Incubated. Harvest cells and transfer plasmid to Hirt, supra. Extracted. The extracted plasmid was digested with DpnI for at least 24 hours. DpnI off The compound was phenol extracted and ethanol precipitated. Add 20 μl of TE (1 mM E DTA + 10 mM Tris, pH 8.0) and resuspended in competent DH10B bacteria (GIBCO). Transformation.   Co-transfection was performed as described above, except that 9: 1 (wt / wt) cDNA / PfLAG By ratio, 20 μg of DNA was used per dish.CDNA library screening using concomitant replication:   Simultaneously transfer human brain cDNA library to NIH 3T3 cells with PfLAG-8 by the method described above. Transfected. Plasmid pool consisting of about 30-40 plasmids was transferred to PfLAG-8 And increase plasmid recovery by at least 5-fold Was examined. Recover plasmids from the active pool, and Divided into a second pool of four plasmids, and similarly for activation of concomitant replication Examined. Then, for each of the plasmids from each active second pool, , And associated replications were examined. From about 1400 plasmids, initially two plasmids (CRO (Named C-1 and CROC-2) and (for concomitant cDNA replication) Plasmid and co-transfected with PfLAG-8 consistently increased plasmid Give recovery. The nucleotide sequence of CROC-1 is shown in SEQ ID NO: 1.   A third plasmid (designated CROC-4) was used for further plasmid screening. Identified by Plasmid CROC-4 was also co-transfected with PfLAG-8. Gave consistently increased plasmid recovery. CROC-4 nucleotide sequence The sequence is shown in SEQ ID NO: 3.fos-CAT Confirmation of c-fos promoter activation using reporter gene:   Certain exogenous factors are also responsible for the increased Rasmid recovery could be caused. For example, incomplete bacterial methylation at the DpnI site , DpnI resistance, or differences in transfection or transformation efficiency . To eliminate these possibilities, CROC-1, CROC-2, and CROC-4 were each replaced by fos- Co-transfected with CAT reporter gene, and CAT activity as follows Was tested for increase. Rat 2 cells were harvested with 18 μg of Lα2-expressing cDNA (ie, CRO C-1, CROC-2 or CROC-4) + 2 μgfos-CAT for 4 hours Then, DMEM + 0.5% bovine serum was fed again. 72 hours after transfection The cells are harvested in the meantime and the CAT assay is performed by Gorman et al.Mol . Cell. Biol.,Two, 104 4-1051 (1982).   CAT activity was significantly induced by CROC-1, CROC-2 and CROC-4, and c-fos Motor activation was indicated. The degree of activation was determined by cotransfer with pMVPkCΔβ1. About 50% of the activity caused by the action. In contrast, vector alone Did not induce substantial CAT activity, and were associated with CROC-1, CROC-2 and CROC-4. Randomly selected cDNA library plasmids isolated from the same plasmid pool Plasmids that were sumids but did not activate concomitant replication did not. These results indicate that CROC-1, 2 or 4 were co-transfected with PfLAG-8. Increased plasmid recovery indicates that c-fos pro- It was confirmed that it was due to the activation of the motor.c-fos Analysis of activated proteins:   As a result of sequencing, CROC-2 is a recently identified α2-macroglobulin receptor Binding protein (AMRAP) (Strickland et al.,J . Biol. Chem., 266, 13364-13369 (1991 ))). Insert has almost full length And the start codon (this is the start codon of the internal vector ) To the poly A tail.   The sequence of 347 base pairs corresponding to nucleotides 555-897 of CROC-4 has an expression sequence tag and And submitted to GenBank (Accession No. Z40809).   CROC-1 cDNA, as shown in SEQ ID NO: 1, has an acidic amino terminal half and a basic amino acid. Encodes a 19 kd protein with a ruboxyl end. This protein is Contains the kinase target domain, which is involved in signal transduction Phosphorylation sites for various kinases. In particular, the kinase target region Consists of adjacent potential phosphorylation sites adjacent to the following enzymes: (a) tyrosine kinase (RXXXEXXXY motif, amino acids 81-89), Cooper et al.,J . Biol . Chem. ,259, 7835-7841 (1984); casein kinase 2 (TIYE motif, amino acid 82-85), Kuenzel et al.,J . Biol. Chem.,262, 9136-9140 (1987); cAMP-dependent pro Thein kinase (RIYS motif, amino acids 87-90), Glass et al.,J . Biol. Chem.,26 1 , 2987-2993 (1986) and Kishimoto et al.J . Biol. Chem. 260 ,12492-12499 (198 5); and protein kinase C (SLK motif, amino acids 90-92), Kishimoto et al. I mentioned earlier.   The CROC-1 protein kinase target domain is located at the start of the basic domain. Is 12 amino acids long. Transactivator activity of known acidic domains Sex is generally associated with CROC-1 when combined with the possibility of binding the basic domain to DNA. Is a transcriptional activator whose activity is regulated by phosphorylation of the kinase target domain Suggest that it can act as a Phosphorylation further increases the acidity of this region. And thereby increase its ability to activate transcription, and Causes a change in the structural conformation of the protein.   Probe the length and tissue distribution of CROC-1 mRNA with the 1.8 kb SalI / NotI insert of CROC-1 By Northern analysis of RNA containing poly A isolated from various human tissues It was measured. CROC-1 mRNA is about 2.3 kb in length, from our cDNA insert. Is about 0.5 kb longer and is present in all tissues examined, and is present in the brain, skeletal muscle, and kidney. It was the highest level. In comparison, 1.5 kb CROC-2 mRNA was found to be Although present in tissues, it was expressed at the highest levels in heart, placenta, and kidney. Alternatives as reported by Strickland, supra, for CROC-2 With the result of multiple sets of pricing or transcription-termination-polyadenylation signals No evidence for additional transcripts was found.   Intracellular localization of CROC-1 protein was performed by cloning CROC-1 into HEL and The resulting plasmid was electroporated into COS-7 cells (ATCC number CRL 1651). It measured by doing. By introducing CROC-1 nucleic acid into HEL vector, It allows in-frame fusion of the confluent epitope to the CROC-1 protein. Next In addition, the intracellular location of the CROC-1 protein is It was measured by immunofluorescence microscopy using a monoclonal antibody. CROC-1 to HEL The nuclear fluorescence was enhanced by electroporation. In contrast, HEL alone Lectroporation produces general cytoplasmic fluorescence, which indicates that nuclear localization is CROC -1 indicates an intrinsic property of the protein.   It will be apparent to those skilled in the art that the present invention includes modifications and variations. In the present invention The specific embodiments described are merely representative and the scope of the invention is not to be construed as being claimed in the appended claims. Specified by range.

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (81)指定国 ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＤＥ， ＤＫ，ＥＳ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，ＩＴ，ＬＵ，Ｍ Ｃ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ)，ＯＡ(ＢＦ，ＢＪ，ＣＦ，ＣＧ ，ＣＩ，ＣＭ，ＧＡ，ＧＮ，ＭＬ，ＭＲ，ＮＥ，ＳＮ， ＴＤ，ＴＧ)，ＡＰ(ＫＥ，ＭＷ，ＳＤ，ＳＺ，ＵＧ)， ＡＭ，ＡＵ，ＢＢ，ＢＧ，ＢＲ，ＢＹ，ＣＡ，ＣＮ，Ｃ Ｚ，ＥＥ，ＦＩ，ＧＥ，ＨＵ，ＩＳ，ＪＰ，ＫＧ，ＫＲ ，ＫＺ，ＬＫ，ＬＲ，ＬＴ，ＬＶ，ＭＤ，ＭＧ，ＭＮ， ＭＸ，ＮＯ，ＮＺ，ＰＬ，ＲＯ，ＲＵ，ＳＧ，ＳＩ，Ｓ Ｋ，ＴＪ，ＴＭ，ＴＴ，ＵＡ，ＵＺ，ＶＮ────────────────────────────────────────────────── ─── Continuation of front page    (81) Designated countries EP (AT, BE, CH, DE, DK, ES, FR, GB, GR, IE, IT, LU, M C, NL, PT, SE), OA (BF, BJ, CF, CG , CI, CM, GA, GN, ML, MR, NE, SN, TD, TG), AP (KE, MW, SD, SZ, UG), AM, AU, BB, BG, BR, BY, CA, CN, C Z, EE, FI, GE, HU, IS, JP, KG, KR , KZ, LK, LR, LT, LV, MD, MG, MN, MX, NO, NZ, PL, RO, RU, SG, SI, S K, TJ, TM, TT, UA, UZ, VN

Claims (1)

【特許請求の範囲】 １．哺乳類細胞株であって、該細胞株の細胞が： (a)ポリオーマウイルスラージT抗原をコードする核酸に作動可能に連結された誘 導可能なまたは組織特異的プロモーターを含む組換えベクター；および (b)ポリオーマウイルスの複製開始点および該プロモーターの活性化タンパク質 をコードすると考えられる核酸を含む組換え発現ベクターを含む、細胞株。 ２．前記プロモーターがヒトc-fosプロモーターである、請求項１に記載の哺乳 類細胞株。 ３．前記組換えベクターがプラスミドPfLAG-8である、請求項２に記載の哺乳類 細胞株。 ４．前記発現ベクターがプラスミドLα2である、請求項１に記載の哺乳類細胞株 。 ５．ポリオーマウイルスラージT抗原をコードする核酸に作動可能に連結された ヒトc-fosプロモーターを含むベクター。 ６．プラスミドPfLAG-8である、請求項５に記載のベクター。 ７．ポリオーマウイルス複製開始点、およびプロモーター活性化タンパク質をコ ードすると考えられる核酸を含む、組換え発現ベクター。 ８．プラスミドLα2である、請求項７に記載のベクター。 ９．プロモーター活性化タンパク質をコードする核酸を同定する方法であって： (a)請求項１に記載の哺乳類細胞株を、該核酸が発現される条件下で培養する工 程；および (b)ベクター複製を許容するに十分なインキュベーション期間の後、細胞中の複 製ベクターのレベルを測定する工程；を包含し、 それによってプロモーター活性化タンパク質をコードする核酸が、細胞中のベク ターの増加したレベルの測定により同定される、方法。 １０．前記プロモーターがヒトc-fosプロモーターである、請求項９に記載の方 法。 １１．配列番号１または配列番号３により定義されるアミノ酸配列を有するヒト c-fosプロモーター活性化タンパク質、またはその抗原性フラグメント。 １２．請求項１１に記載のタンパク質をコードする核酸。 １３．配列番号１または配列番号３に示される配列と実質的に同じ配列を有する 、請求項１２に記載の核酸。 １４．哺乳類細胞株であって、該細胞株の細胞が： (a)ヒトc-fosプロモーターに作動可能に連結されたリポーター遺伝子を含む、第 １の組換え発現ベクター；および (b)ヒトc-fosプロモーター活性化タンパク質をコードする核酸を含む、第２の組 換え発現ベクター、を含む、細胞株。 １５．NIH 3T3マウス細胞を含む、請求項１４に記載の哺乳類細胞株。 １６．前記第２の組換え発現ベクターが、CROC-1タンパク質、CROC-4タンパク質 、またはα2-マクログロブリンレセプター結合タンパク質をコードする、請求項 １４に記載の哺乳類細胞株。 １７．ヒトc-fosプロモーターに作動可能に連結されたリポーター遺伝子を含む 、組換え発現ベクター。 １８．ヒトc-fosプロモーター活性化タンパク質のアンタゴニストを同定する方 法であって： (a)請求項１４に記載の哺乳類細胞株を提供する工程； (b)工程(a)の細胞株を、ヒトc-fosプロモーター活性化タンパク質のアンタゴニ ストを含むと考えられる試料と接触させる工程；および (c)リポーター遺伝子の発現のレベルを測定する工程；を包含し、 それによって試料中のヒトc-fosプロモーター活性化タンパク質のアンタゴニス トがリポーター遺伝子の発現の低減したレベルの測定により同定される、方法。[Claims] 1. A mammalian cell line, wherein the cells of the cell line are: (a) an inducer operably linked to a nucleic acid encoding a polyomavirus large T antigen A recombinant vector comprising an inducible or tissue-specific promoter; and (b) Polyomavirus origin of replication and activating protein of the promoter A cell line comprising a recombinant expression vector comprising a nucleic acid believed to encode 2. The mammal according to claim 1, wherein the promoter is a human c-fos promoter. Cell line. 3. 3. The mammal of claim 2, wherein said recombinant vector is plasmid PfLAG-8. Cell line. 4. The mammalian cell line according to claim 1, wherein the expression vector is a plasmid Lα2. . 5. Operably linked to nucleic acid encoding polyomavirus large T antigen Vector containing the human c-fos promoter. 6. The vector according to claim 5, which is a plasmid PfLAG-8. 7. Copy the polyoma virus origin of replication and promoter-activating protein A recombinant expression vector containing a nucleic acid that is considered to be loaded. 8. The vector according to claim 7, which is a plasmid Lα2. 9. A method for identifying a nucleic acid encoding a promoter activating protein, comprising: (a) culturing the mammalian cell line according to claim 1 under conditions in which the nucleic acid is expressed. About; and (b) After an incubation period sufficient to allow vector replication, replication in the cells Measuring the level of the produced vector; As a result, the nucleic acid encoding the promoter activating protein is transformed into a vector in the cell. The method identified by measuring the increased level of the protein. 10. The method according to claim 9, wherein the promoter is a human c-fos promoter. Law. 11. A human having the amino acid sequence defined by SEQ ID NO: 1 or SEQ ID NO: 3 c-fos promoter activating protein, or an antigenic fragment thereof. 12. A nucleic acid encoding the protein according to claim 11. 13. Has substantially the same sequence as the sequence shown in SEQ ID NO: 1 or SEQ ID NO: 3 The nucleic acid of claim 12. 14． A mammalian cell line, wherein the cells of the cell line are: (a) a reporter gene operably linked to a human c-fos promoter; 1 recombinant expression vector; and (b) a second set comprising a nucleic acid encoding a human c-fos promoter activating protein A cell line comprising a recombinant expression vector. 15. 15. The mammalian cell line according to claim 14, comprising NIH 3T3 mouse cells. 16. The second recombinant expression vector comprises a CROC-1 protein, a CROC-4 protein Or encodes an α2-macroglobulin receptor binding protein. 15. The mammalian cell line according to 14. 17． Contains reporter gene operably linked to human c-fos promoter , A recombinant expression vector. 18. To identify antagonists of the human c-fos promoter activating protein The law: (a) providing a mammalian cell line according to claim 14; (b) transforming the cell line of step (a) with an antagonist of human c-fos promoter activating protein; Contacting with a sample suspected of containing a strike; and (c) measuring the level of expression of the reporter gene; Thereby antagonis of the human c-fos promoter activating protein in the sample The method wherein the report is identified by measuring a reduced level of expression of the reporter gene.
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