JPH104999A - Evaluation of antidementia agent - Google Patents

Evaluation of antidementia agent

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JPH104999A
JPH104999A JP8156913A JP15691396A JPH104999A JP H104999 A JPH104999 A JP H104999A JP 8156913 A JP8156913 A JP 8156913A JP 15691396 A JP15691396 A JP 15691396A JP H104999 A JPH104999 A JP H104999A
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JP
Japan
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cells
cell
astroglial
protein
nerve
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JP8156913A
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Japanese (ja)
Inventor
Nobuyuki Suzuki
伸之 鈴木
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Daiichi Pharmaceutical Co Ltd
Original Assignee
Daiichi Pharmaceutical Co Ltd
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Abstract

PROBLEM TO BE SOLVED: To establish the evaluation of the suppressing effect of a testing substance on neurocyte toxicity in the presence of β-amyloid protein in high sensitivity by applying a specific substance to a neurocyte in the presence of the testing substance and β-amyloid protein and the establish a method for the search and evaluation of a drug effect on dementia such as Altzheimer's disease. SOLUTION: A substance selected from astroglia cell, cultured liquid of astroglia cell, extract of astroglia cell and product of astroglia cell is applied to a neurocyte in the presence of a testing substance and β-amyloid protein. The presence of the astroglia cell, etc., increases the cytotoxic effect of β-amyloid protein on neurocyte to evaluate with a small amount of testing substance.

Description

【発明の詳細な説明】DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION

【0001】[0001]

【発明の属する技術分野】抗痴呆剤に関する。TECHNICAL FIELD The present invention relates to an anti-dementia agent.

【0002】[0002]

【従来技術】アルツハイマー病は、 神経変性又は神経細
胞死が生じてその後に起こる進行性の痴呆症であるが。
その発病・発症の機構には不明な点が多いが、主にβア
ミロイド蛋白の沈着によって構成される老人斑が脳実質
に多発性に形成されることとの関係が重視されている。
BACKGROUND OF THE INVENTION Alzheimer's disease is a progressive dementia that occurs after neurodegeneration or neuronal cell death occurs.
Although there are many unclear points in the mechanism of its onset and onset, emphasis has been placed on the relationship with the multiple formation of senile plaques mainly formed by the deposition of β-amyloid protein in the brain parenchyma.

【0003】しかし、βアミロイド蛋白の沈着後に神経
細胞の変性が生じる機序は現在不明であり、 また、アル
ツハイマ−病の根本的な治療法はいまだに確立されてい
ない。
[0003] However, the mechanism by which neuronal degeneration occurs after the deposition of β-amyloid protein is currently unknown, and no fundamental treatment for Alzheimer's disease has yet been established.

【0004】ヤンクナ−(Yankner)らはラット由来の神
経細胞単独初代培養において、 βアミロイド蛋白による
神経細胞の細胞死をもたらすことを報告し、 βアミロイ
ド蛋白が直接神経細胞を傷害する可能性を示唆した(サ
イエンス(Science)第250 巻第 279頁から第282 頁、19
90年)。
Have reported that β-amyloid protein causes neuronal cell death in primary culture of rat-derived nerve cells alone, suggesting that β-amyloid protein may directly damage nerve cells. (Science, Vol. 250, pp. 279-282, 19
90 years).

【0005】これをうけて、 βアミロイド蛋白による直
接的な神経細胞傷害機序の検討が神経細胞単独初代培養
により行われているが、 現状ではそれについて明確な結
論は得られていない。本発明者はβアミロイド蛋白の神
経細胞に及ぼすグリア細胞の影響について着目し検討し
ている。
[0005] In response to this, the mechanism of direct neuronal cell injury by β-amyloid protein has been studied by primary culture of neurons alone, but no clear conclusion has been obtained at present. The present inventor pays attention to and examines the effect of glial cells on neurons of β-amyloid protein.

【0006】[0006]

【発明が解決しようとする課題】痴呆症改善剤の探索若
しくは評価のため方法を確立することを目的として、β
アミロイド蛋白存在下でもたらされる神経細胞毒性に対
する被検物質の抑制効果を評価する優れた方法を提供す
ることが本発明の課題である。
SUMMARY OF THE INVENTION In order to establish a method for searching or evaluating a dementia ameliorating agent, β
It is an object of the present invention to provide an excellent method for evaluating the inhibitory effect of a test substance on neurotoxicity caused in the presence of amyloid protein.

【0007】[0007]

【課題を解決するための手段】本発明は、以下の(1)
から(5)に関するものである。 (1)被検物質とβアミロイド蛋白存在下で神経細胞
に、アストログリア細胞、アストログリア細胞の培養
液、アストログリア細胞の細胞抽出物又はアストログリ
ア細胞の産生物から選ばれる1つを介在させることによ
る、被検物質の神経細胞障害評価方法に関するものであ
り、(2)被検物質とβアミロイド蛋白存在下で、神経
細胞とアストログリア細胞を混合培養することによる被
検物質の神経細胞障害評価方法に関するものであり、ま
た、(3)前記(1)又は(2)のいずれかに記載の評
価方法を用いる痴呆症の予防薬又は治療薬の評価方法に
関するものであり、(4)前記(1)又は(2)のいず
れかに記載の評価方法を用いるアルツハイマ−病の予防
薬又は治療薬の評価方法に関するものであり、(5)前
記(1)又は(2)のいずれかに記載の評価方法を用い
て得られる神経細胞毒性を抑制する物質に関するもので
あり、(6)前記(3)に記載の方法を用いて得られる
痴呆症の予防薬又は治療薬に関するものであり、更に
は、(7)前記(4)に記載の方法を用いて得られるア
ルツハイマ−病の予防薬又は治療薬に関するものであ
る。
The present invention provides the following (1).
To (5). (1) In the presence of a test substance and β-amyloid protein, one of astroglial cells, a culture solution of astroglial cells, a cell extract of astroglial cells, or a product of astroglial cells is interposed in neurons in the presence of a test substance and β-amyloid protein. The present invention relates to a method for evaluating neuronal damage of a test substance, and (2) neuronal damage of the test substance by mixing and culturing neurons and astroglial cells in the presence of the test substance and β-amyloid protein. (3) The present invention relates to (3) a method for evaluating a preventive or therapeutic drug for dementia using the evaluation method according to any of (1) or (2), The present invention relates to a method for evaluating a preventive or therapeutic agent for Alzheimer's disease using the evaluation method according to any one of (1) and (2), and (5) the method described in (1) or (2) above. The present invention relates to a substance that suppresses neurotoxicity obtained by using the evaluation method described in any of the above, and (6) relates to a preventive or therapeutic drug for dementia obtained by using the method described in (3) above. And (7) a prophylactic or therapeutic agent for Alzheimer's disease obtained by using the method described in (4) above.

【0008】アルツハイマ−等の痴呆症に有効な薬剤を
見いだすには、有効な薬物を評価する方法の確立が必要
である。そのような評価方法の中でも、微量な化合物を
用いて最初に評価する評価方法の確立が望まれるところ
であるが、現時点においては、一般に認められている確
実な評価方法は定まっていない。また、ヒトのアルツハ
イマ−病の動物モデルまたはインビトロモデルについて
も同様に確実な評価方法は定まっていない。
In order to find a drug effective for dementia such as Alzheimer's disease, it is necessary to establish a method for evaluating an effective drug. Among such evaluation methods, it is desired to establish an evaluation method in which a small amount of a compound is used for the first evaluation, but at present, a reliable evaluation method generally accepted has not been determined. Similarly, no reliable evaluation method has been determined for animal models or in vitro models of human Alzheimer's disease.

【0009】本発明者らは、脳の神経細胞毒性の評価方
法につき検討した結果、高感度に神経細胞の細胞死が検
出できる評価方法を見いだしたことにより本発明を完成
させた。すなわち、本発明者らは、ある種のグリア細胞
を介在させることにより、βアミロイド蛋白による神経
細胞に対する細胞障害性を高めることにより、優れた本
発明の評価方法を完成した。
The present inventors have studied the method for evaluating neuronal toxicity in the brain, and as a result, have found an evaluation method capable of detecting cell death of nerve cells with high sensitivity, thereby completing the present invention. That is, the present inventors have completed an excellent evaluation method of the present invention by increasing the cytotoxicity of β-amyloid protein to nerve cells by interposing certain glial cells.

【0010】本発明は、被検物質とβアミロイド蛋白存
在下で神経細胞に、アストログリア細胞、アストログリ
ア細胞の培養液、アストログリア細胞の細胞抽出物又は
アストログリア細胞の産生物等の中から選ばれる1又は
2以上の組み合わせたものを介在させることによる、被
検物質の神経細胞障害評価方法に関するものである。
[0010] The present invention provides a method for producing neurons in the presence of a test substance and β-amyloid protein by selecting from astroglial cells, culture media of astroglial cells, cell extracts of astroglial cells, products of astroglial cells, and the like. The present invention relates to a method for evaluating neuronal damage of a test substance by interposing one or a combination of two or more selected substances.

【0011】ここで、「介在させる」とは、神経細胞
とアストログリア細胞を混合培養するという場合等、す
なわち、両細胞が直接接触可能な状態での混合培養であ
る状態、アストログリア細胞と神経細胞の各々を隣合
わせの異なるチャンバ−(間仕切り)で区切った状態、
細胞の移動はできないが、細胞が分泌する液性物質又は
蛋白因子は通過できる状態の培養の場合、また、アス
トログリア細胞の細胞培養液、同細胞の細胞抽出物又は
同細胞の産生物から選ばれる1又は2以上を添加又は処
理する場合を含むものとする。
Here, "intervening" means, for example, a mixed culture of nerve cells and astroglial cells, that is, a mixed culture in which both cells can be brought into direct contact with each other. A state in which each of the cells is separated by adjacent different chambers (partitions),
In the case of culture in a state where cells cannot move but humoral substances or protein factors secreted by cells can pass therethrough, or selected from cell cultures of astroglial cells, cell extracts of the cells, or products of the cells Or the case of adding or treating one or more of them.

【0012】また、「βアミロイド蛋白存在下」とある
のは、βアミロイド蛋白を添加する場合が好ましいが、
その他に、βアミロイド蛋白を十分量生産するような細
胞との混合培養の場合、βアミロイド蛋白の十分量に生
産した細胞自体又は生産した細胞の処理液を添加又は含
む培地で培養する場合、及びβアミロイド蛋白を含む液
(溶液)での処理する場合をも含む意味である。
The phrase "in the presence of β-amyloid protein" preferably refers to the case where β-amyloid protein is added.
In addition, in the case of mixed culture with cells that produce a sufficient amount of β-amyloid protein, in the case of culturing in a medium containing the cell itself that has produced a sufficient amount of β-amyloid protein or a treatment solution of the produced cell, or The meaning includes the case of treating with a liquid (solution) containing β-amyloid protein.

【0013】本発明で、用いる「神経細胞」又は「アル
トログリア細胞」とは、ほ乳類動物の脳組織から分離し
た初代培養細胞、その初代培養細胞から継代した細胞、
トランスジェニックマウスの脳から分離した初代細胞、
継代細胞、株化細胞をも含むものとする。神経細胞の場
合は、特に、ほ乳類動物の胎児又は新生児脳を用い、ア
ストログリア細胞の分離においては、ほ乳類動物の新生
児、胎児の他、成体をも含まれる。
In the present invention, the term "neural cells" or "altroglia cells" refers to primary cultured cells isolated from mammalian brain tissue, cells subcultured from the primary cultured cells,
Primary cells isolated from the transgenic mouse brain,
It includes passaged cells and cell lines. In the case of neurons, in particular, a mammalian fetal or neonatal brain is used, and in the isolation of astroglial cells, adult animals are also included in addition to mammalian neonates and fetuses.

【0014】[0014]

【発明の実施の態様】神経細胞初代培養系の調製 :本発明で用いる神経細胞を
得るための動物はほ乳動物であればよい。例えば、ほ乳
動物の1種であり通常実験動物として用いているラット
等を用いることができる。このようなほ乳類の動物の脳
の組織を取出して、初代培養細胞の材料として用いるこ
とにより初代培養細胞を完成させることができ、また、
このような初代培養細胞を得ることができれば、神経細
胞培養系とミクログリア細胞の混合培養系、又は神経細
胞とアストログリア細胞の混合培養系を調製することが
できる。
BEST MODE FOR CARRYING OUT THE INVENTION Preparation of a primary culture of nerve cells : The mammal for obtaining the nerve cells used in the present invention may be a mammal. For example, a rat or the like which is a kind of mammal and is usually used as an experimental animal can be used. By removing the brain tissue of such a mammalian animal and using it as a material for primary cultured cells, primary cultured cells can be completed.
If such primary culture cells can be obtained, a mixed culture system of a neural cell culture system and a microglial cell, or a mixed culture system of a nerve cell and an astroglial cell can be prepared.

【0015】神経細胞単独培養系の作製:ほ乳類胎児の
脳を取り出し、髄膜を除去し、 大脳皮質・ 海馬を分離
し、分離した脳組織を細胞消化液及び(または)DNase
、例えば、DNase 1 等の核酸分解酵素で処理し、ピペ
ッティング等で分散させることにより、細胞懸濁液を得
ることができる。
Preparation of a single cell culture system for nerve cells : The brain of a mammalian fetus is removed, the meninges are removed, the cerebral cortex and the hippocampus are separated, and the separated brain tissue is subjected to cell digestive juice and / or DNase
For example, a cell suspension can be obtained by treating with a nuclease such as DNase 1 and dispersing the mixture by pipetting or the like.

【0016】アストログリア細胞及びミクログリア細胞
の分離培養:神経細胞単独培養系の調製と同様の方法で
ほ乳動物の胎児、若しくは幼児の脳又は胎児脳組織を分
散して細胞懸濁液を一定期間培養したフラスコ等の培養
器から、振とう等の手段により剥がされた細胞を再び培
養器に付着させた後、洗浄と培養を繰り返し、付着細胞
のみを分離して得た細胞をミクログリア培養細胞として
用いることができる。
Astroglial cells and microglial cells
Separation and culturing of cells: In the same manner as in the preparation of a single neuronal cell culture system, a fetal or mammalian brain or fetal brain tissue of a mammal is dispersed and a cell suspension is cultured for a certain period from a culture vessel such as a flask. After the cells detached by means such as towels are adhered to the incubator again, washing and culturing are repeated, and the cells obtained by separating only the adhered cells can be used as microglia cultured cells.

【0017】一方、上記のごとくして調製した前記培養
器から剥がれずに残った細胞を洗浄したものをアストロ
グリア培養細胞として用いることができる。
On the other hand, cells obtained by washing the cells remaining without being peeled off from the incubator prepared as described above can be used as astroglial cultured cells.

【0018】神経細胞との混合培養系の調製:アストロ
グリア細胞と神経細胞の混合培養系の調製については、
上記により得たアストログリア培養細胞をトリプシン液
で剥すことにより得れらた細胞懸濁液を調製し、飽和細
胞密度に達するまで培養した細胞に神経細胞単独培養系
で用いた胎児脳由来の神経細胞懸濁液を同様の方法で播
種し培養することにより混合培養系を調製することがで
きる。
Preparation of mixed culture system with nerve cells: For preparation of a mixed culture system of astroglial cells and nerve cells,
A cell suspension obtained by stripping the astroglial culture cells obtained as described above with a trypsin solution was prepared, and the cells cultured until reaching a saturated cell density were added to the nerves derived from fetal brain used in the nerve cell alone culture system. A mixed culture system can be prepared by seeding and culturing the cell suspension in the same manner.

【0019】また、ミクログリア細胞と神経細胞の混合
培養系の調製については、一定期間培養した神経細胞の
上に、予め分離しておいたミクログリア細胞をさらに播
種し、 混合培養系を調製することができる。
As for the preparation of a mixed culture system of microglia cells and nerve cells, it is preferable to further inoculate microglia cells previously separated on neurons cultured for a certain period of time to prepare a mixed culture system. it can.

【0020】更に、株化アストログリア細胞と神経細胞
の混合培養系の調製については、温度感受性癌遺伝子導
入トランスジェニックマウスの脳から分離して株化され
たアストログリア細胞株を用いることができる。そのト
ランスジェニックマウスとしては、SV40の自己プロモー
ターによってSV40温度感受性T抗原を発現したトランス
ジェニックマウス(Yanai, Exp. Cell Res. 197: 50-5
6, 1991) を用いることができる。
Furthermore, for the preparation of a mixed culture system of established astroglial cells and neurons, an astroglial cell line isolated and established from the brain of a transgenic mouse into which a temperature-sensitive oncogene has been introduced can be used. As the transgenic mouse, a transgenic mouse expressing the SV40 temperature-sensitive T antigen by the SV40 self-promoter (Yanai, Exp. Cell Res. 197: 50-5
6, 1991) can be used.

【0021】各種神経細胞培養系における神経細胞およ
びグリア細胞の純度の検定:神経細胞培養系に含まれる
神経細胞及びアストログリア細胞及びミクログリア細胞
の純度を検定をする必要があるが、その方法は以下によ
り行うことができる。先ず、エタノール等で固定後、 神
経細胞特異的な蛋白質である微小管付属蛋白2(MAP
2)、 アストログリア細胞に特異的な蛋白質であるグリ
ア線維性酸性蛋白(GFAP)、およびミクログリア細
胞に特異的な蛋白質であるFcレセプター(FcR)に
対する免疫染色を各培養系毎に免疫染色間接法を用い
て、免疫染色の陽性細胞数を算定し、 その平均密度を求
めることができる。
Nerve cells in various nerve cell culture systems
Of the purity of glial and glial cells : It is necessary to test the purity of nerve cells, astroglial cells, and microglial cells contained in the nerve cell culture system. The method can be performed as follows. First, after fixation with ethanol or the like, the microtubule-associated protein 2 (MAP, a neuron-specific protein)
2) Indirect immunostaining for glial fibrillary acidic protein (GFAP), a protein specific to astroglial cells, and Fc receptor (FcR), a protein specific to microglial cells, for each culture system Can be used to calculate the number of positive cells for immunostaining and determine the average density.

【0022】免疫染色間接法は各蛋白に特異的なマウス
由来のモノクローナル抗体を一次抗体とし 、西洋ワサビ
ペルオキシダーゼ標識抗マウスIg抗体を2次抗体用とし
て用い、反応の最後にDAB(ジアミノベンチジン)で
発色し 、メチルグリーン液等によりで核染色を行うこと
ができる。
In the immunostaining indirect method, a monoclonal antibody derived from a mouse specific to each protein is used as a primary antibody, a horseradish peroxidase-labeled anti-mouse Ig antibody is used as a secondary antibody, and DAB (diaminobenzidine) is used at the end of the reaction. And nuclear staining can be performed with a methyl green solution or the like.

【0023】神経細胞毒性試験:これらの培養系につい
て、 それぞれ神経細胞が規定の細胞密度に達した時期に
至適濃度のβ蛋白溶液を添加して、一定期間培養後に細
胞を採取して、免疫染色により、光学顕微鏡にて、生存
神経細胞数を算定することができる。ここで用いる免疫
染色とは、生存神経細胞に特異的な蛋白であるいわゆる
MAP2と呼ばれている蛋白(Microtuble associated
protein 2)に対する抗体を用いて免疫染色を行う手法
をいう。
Neurocytotoxicity test : For each of these culture systems, an appropriate concentration of β-protein solution was added when the nerve cells reached a specified cell density. By staining, the number of surviving nerve cells can be calculated with a light microscope. The immunostaining used herein refers to a so-called MAP2 protein (Microtuble associated protein) which is a protein specific to living neurons.
This refers to a technique for performing immunostaining using an antibody against protein 2).

【0024】また各培養系に混在しているグリア細胞の
数は、同様にアストログリア細胞、ミクログリア細胞に
それぞれ特異的な蛋白であるグリア繊維性酸性蛋白(G
FAP) 、Fcレセプターに対する抗体を用いた免疫染
色をいい、これらの免疫染色を用いることにより光学顕
微鏡下でカウントすることにより、生存神経細胞数を算
出することにより、神経細胞毒性試験を行うことができ
る。
Similarly, the number of glial cells mixed in each culture system is determined by the number of glial fibrillary acidic protein (G) which is a protein specific to astroglial cells and microglial cells, respectively.
FAP), an immunostaining using an antibody against the Fc receptor. By using these immunostainings, counting under a light microscope and calculating the number of surviving neurons, a neurotoxicity test can be performed. it can.

【0025】また、本発明は、βアミロイド蛋白存在下
で、アストログリア細胞と神経細胞を混合培養すること
による被検物質の評価により選抜された物質に関するも
のである。このような評価方法により選抜された物質
は、神経障害作用を抑制する物質であるが、係る神経細
胞の障害を阻止若しくは抑制する物質は、抗痴呆症の予
防薬若しくは治療薬、又は、アルツハイマ−病の予防薬
若しくは治療薬として有用である。
The present invention also relates to a substance selected by evaluating a test substance by mixing and culturing astroglial cells and nerve cells in the presence of β-amyloid protein. The substance selected by such an evaluation method is a substance that suppresses a neuropathy effect, and the substance that inhibits or suppresses the damage to nerve cells is a prophylactic or therapeutic drug for anti-dementia, or Alzheimer's disease. It is useful as a prophylactic or therapeutic agent for diseases.

【0026】以下に、本発明について、具体的な実施例
により説明するが、本発明はこれらの実施例に限定され
るものではない。
Hereinafter, the present invention will be described with reference to specific examples, but the present invention is not limited to these examples.

【0027】[0027]

【実施例】【Example】

[実施例1] (1) 初代培養神経細胞の調製:SLCラット( エスエル
シー: ウイスター系、日本エスエルシー )の妊娠18日後
の胎児脳より各種の神経系細胞を分離し、神経細胞培養
系を調製し、また、グリア細胞と神経細胞の混合培養を
調製した。用いた培地はDMEM(ダルベッコ変法イ−グル
培地、日水製薬社製)に、 L-グルタミン0.0584g/l、グル
コース 6g/l、ペニシリンGカリウム2万単位/l、 硫酸ス
トレプトマイシン0.05g/l、ファンギンソン250 μg/l を
加えて、 炭酸水素ナトリウムでpHを約7.4 にしたものを
基礎培地とし、細胞の維持にはこれにウシ胎児血清(F
CS)と非動化ウマ血清(HS,GIBCO 社製)をそれぞ
れ10%添加した血清添加培地を用い、 実験時には基礎
培地に B27添加因子(Gibco社製)を1/50用量で添加した
無血清培地を使用した。細胞を播種するプレート類は予
めポリエチレンイミンでコート処理した。 ポリエチレン
イミンによる処理は、 0.15Mのホウ酸緩衝液で500 倍に
希釈したポリエチレンイミンをプレートに加えて1晩37
℃でインキュベートし、 その後に、 プレートをPBS
(−)で2回、次いでDMEMで2回洗うことによって
行った。
[Example 1] (1) Preparation of primary cultured neurons : Various neural cells were separated from the fetal brain of SLC rats (SLC: Wistar strain, Nippon SLC) 18 days after gestation, and a neural cell culture system was prepared. A mixed culture of glial and neuronal cells was also prepared. The medium used was DMEM (Dulbecco's modified Eagle medium, manufactured by Nissui Pharmaceutical Co., Ltd.), L-glutamine 0.0584 g / l, glucose 6 g / l, penicillin G potassium 20,000 units / l, streptomycin sulfate 0.05 g / l And Funginson 250 μg / l, and adjusted the pH to about 7.4 with sodium bicarbonate as a basal medium. To maintain cells, add fetal bovine serum (F
CS) and non-immobilized horse serum (HS, manufactured by GIBCO) were used in a serum-supplemented medium supplemented with 10% each. At the time of the experiment, serum-free medium was prepared by adding a B27 additive factor (Gibco) to the basal medium at a 1/50 dose. Medium was used. Plates for seeding cells were coated in advance with polyethyleneimine. For treatment with polyethyleneimine, polyethyleneimine diluted 500-fold with 0.15 M borate buffer was added to the plate and incubated overnight.
Incubate at ℃ C, then plate
Washing was performed twice with (-) and then twice with DMEM.

【0028】(2) 単独培養神経細胞の調製:妊娠ラット
より胎児を摘出し、 さらに脳を取り出し、 実体顕微鏡下
に髄膜を除去し、 大脳皮質・ 海馬を分離した。分離した
この脳組織を細胞消化液( パパイン90U、 DL−システイ
ン2mg、 ウシ血清アルブミン2mg、 グルコース50
mgを添加したPBS(-)10ml、 DNase 1の 1 mg)にて15分
間インキュベートし、 その後にその上清を除去し、 代わ
りにDNase 1を1mg添加した DMEM 10mlを加えて
ピペッティングすることによって細胞の分散を行った。
分散した細胞は10%FCS,HS(馬血清)添加培地
に105 個/ mlの濃度で懸濁し直し、 16穴スライドチ
ャンバー (ヌンク(Nunk) 社製) に100 μ l/ ウエル
(穴、以下ウエルと略す。)で播種して炭酸ガスインキ
ュベーター(5%炭酸ガス、95%空気、37℃)にて
培養した。 培養2日後にグリア細胞の混入を抑制するた
めに、 サイトシンアラビノシド;シグマ社製)1μMを
培地に添加し、 その翌日、 培養3日後に実験に用いた。
(2) Preparation of single cultured neurons : A fetus was excised from a pregnant rat, the brain was further removed, the meninges were removed under a stereoscopic microscope, and the cerebral cortex and hippocampus were separated. This separated brain tissue was used for cell digestion (papain 90 U, DL-cysteine 2 mg, bovine serum albumin 2 mg, glucose 50
(10 mg of PBS (-) containing 1 mg of DNase 1) and then removing the supernatant, followed by pipetting with 10 ml of DMEM supplemented with 1 mg of DNase 1 instead. Cell dispersion was performed.
The dispersed cells were resuspended at a concentration of 10 5 cells / ml in a medium supplemented with 10% FCS and HS (horse serum), and 100 μl / well (well, hereinafter referred to) in a 16-well slide chamber (manufactured by Nunk). ) And cultured in a carbon dioxide gas incubator (5% carbon dioxide, 95% air, 37 ° C). In order to suppress glial cell contamination after 2 days of culture, 1 μM of cytosine arabinoside (manufactured by Sigma) was added to the medium, and the next day, 3 days after culture, the cells were used in the experiment.

【0029】(3) アストログリア細胞及びミクログリア
細胞の分離培養:神経細胞単独培養系の作成と同様の方
法でラット胎児脳を分散し細胞懸濁液を作製し、 それを
培養フラスコ( ファルコン(FALCON)社製))に、 1本あ
たり1匹の胎児脳分の細胞懸濁液を播種し血清添加培地
にて2週間培養した。その後に、この培養フラスコを約3
分間、 手で強く震盪し、 剥がれた細胞を培地とともに
シャーレ(FALCON 社製) に移して、 炭酸ガスインキュベ
ーターにて30分間インキュベートした後に、 血清添加
培地で2回洗浄し、 シャーレに付着した細胞のみ分離
し、 これをミクログリア細胞培養系とした。一方、 上記
の培養フラスコを約3分間、 手で強く震盪した後に、 剥
がれずにシャーレに残った細胞を、 さらに5mM ED
TA含有PBS(−)で3回洗浄したものをアストログ
リア細胞培養とした。
(3) Astroglial cells and microglia
Separation and culture of cells: In the same manner as in the preparation of a single neuron culture system, a rat fetal brain was dispersed to prepare a cell suspension, which was placed in a culture flask (Falcon) for 1 cell per cell. A cell suspension from the fetal brain of each animal was inoculated and cultured in a serum-supplemented medium for 2 weeks. Thereafter, the culture flask is
After shaking by hand for a minute, transfer the detached cells to a Petri dish (manufactured by FALCON) together with the medium, incubate for 30 minutes in a carbon dioxide incubator, wash twice with serum-supplemented medium, and remove only the cells attached to the Petri dish. This was used as a microglial cell culture system. On the other hand, after the above culture flask was shaken vigorously by hand for about 3 minutes, the cells remaining in the Petri dish without peeling were further removed by 5 mM
Washed three times with TA-containing PBS (-) was used as astroglial cell culture.

【0030】(4) アストログリア細胞との神経細胞の混
合培養系の調製:上記の培養アストログリア細胞を0.
1%トリプシン含有PBS(−)で剥がし、 その遠心沈
殿(2000 rpm,10分) を血清添加培地に懸濁し、 16穴ス
ライドチャンバーに播種し、 飽和細胞密度に達するまで
培養した。この予めアストログリア細胞を敷いておいた
スライドチャンバーに、 神経細胞単独培養系で用いたラ
ット胎児脳由来の神経細胞懸濁液を同様の方法で播種
し、 血清添加培地で3日間培養し、 実験に用いた。
(4) Mixing neurons with astroglial cells
Preparation of a combined culture system :
The cells were detached with PBS (-) containing 1% trypsin, and the centrifuged precipitate (2000 rpm, 10 minutes) was suspended in a medium supplemented with serum, seeded in a 16-well slide chamber, and cultured until a saturated cell density was reached. Into the slide chamber previously laid with astroglial cells, the nerve cell suspension derived from the fetal rat brain used in the nerve cell alone culture system was seeded in the same manner, and cultured in a serum-containing medium for 3 days. It was used for.

【0031】(5) ミクログリア細胞と神経細胞の混合培
養の調製:前記「アストログリア細胞とミクログリア細
胞の分離培養」の項で記載した方法により、シャ−レに
付着した細胞を震盪等により剥して細胞懸濁液を調製
し、培養神経細胞に播種することにより、ミクログリア
細胞と神経細胞の混合培養として調製した。
(5) Mixed culture of microglial cells and nerve cells
Preparation of nutrient : According to the method described in the above section "Separation and culture of astroglial cells and microglial cells", cells attached to the dish are peeled off by shaking or the like to prepare a cell suspension, and seeded on cultured neurons. As a result, a mixed culture of microglial cells and nerve cells was prepared.

【0032】(6) 株化アストログリアと神経細胞の混合
培養の調製:帯刀ら(1991)によって作成された温度感受
性癌遺伝子導入トランスジェニックマウス(SV40 の自己
プロモーターによってSV40温度感受性T抗原を発現した
トランスジェニックマウス;Yanai, Exp.Cell Res. 19
7:50-56,1991)の脳から分離して株化されたアストログ
リア細胞株を、 予め16穴スライドチャンバーに播種し、
飽和細胞密度に達するまで培養した。この株化アストロ
グリア細胞を敷いておいたスライドチャンバーに、 神経
細胞単独培養系で用いたラット胎児脳由来の神経細胞懸
濁液を同様の方法で播種し、 血清添加培地で3日間培養
し、 実験に用いた。
(6) Mixing of established astroglia and nerve cells
Preparation of culture : temperature-sensitive oncogene-introduced transgenic mouse (transgenic mouse expressing SV40 temperature-sensitive T antigen by SV40's self-promoter; created by Otori et al. (1991); Yanai, Exp. Cell Res. 19
7: 50-56, 1991), astroglial cell lines isolated and established from the brain were seeded in advance in a 16-well slide chamber,
Culture was performed until a saturated cell density was reached. Into the slide chamber on which the established astroglial cells were spread, the nerve cell suspension derived from the rat fetal brain used in the nerve cell alone culture system was seeded in the same manner, and cultured in a serum-added medium for 3 days. Used for experiments.

【0033】(7) 各種神経細胞培養系における神経細胞
およびグリア細胞の純度の検定:16穴スライドチャン
バーに調製した種々の神経細胞培養系に含まれる神経細
胞及びアストログリア細胞、 ミクログリア細胞の純度を
検定した。検定ではチャンバーを95%エタノールで固
定(-20℃,15min)した後、 神経細胞特異的な蛋白質であ
る微小管付属蛋白2(MAP2)(Neuroscience 4:151-160,1
984)、 アストログリア細胞に特異的な蛋白質であるグリ
ア線維性酸性蛋白(GFAP)、およびミクログリア細胞に特
異的な蛋白質であるFcレセプター(FcR) に対する免疫
染色を各培養系毎に免疫染色間接法を用いて行い、 1ウ
エルにおいて任意の3視野を選定し、 それを格子模様を
刻み付けた接眼レンズを装着した顕微鏡を用いて拡大倍
率200 倍にて、 上記の蛋白質に対する免疫染色の陽性細
胞数を算定し、 その平均密度を求めた。免疫染色間接法
は各蛋白に特異的なマウス由来のモノクローナル抗体を
一次抗体とし 、西洋ワサビペルオキシダーゼ標識抗マウ
ス1g抗体を二次抗体用として用い、 反応の最後にDAB
(ジアミノベンチジン、シグマ社製)で発色し、1%メ
チルグリーン液で核染色を行った(清水恵司、神経生化
学マニュアル(羊土社)、1990、第253−263
頁)。
(7) Nerve cells in various nerve cell culture systems
Assay of purity of glial cells and glial cells : The purity of nerve cells, astroglial cells, and microglial cells contained in various nerve cell culture systems prepared in a 16-well slide chamber was assayed. In the assay, after fixing the chamber with 95% ethanol (-20 ℃, 15min), the microtubule-associated protein 2 (MAP2), a neuron-specific protein (Neuroscience 4: 151-160,1)
984), immunostaining for glial fibrillary acidic protein (GFAP), a protein specific for astroglial cells, and Fc receptor (FcR), a protein specific for microglial cells, was performed by indirect immunostaining for each culture system. The number of positive cells for immunostaining for the above-mentioned protein was determined at 200 times magnification using a microscope equipped with an eyepiece with a grid pattern engraved by selecting any three visual fields in one well. Was calculated, and the average density was calculated. The indirect immunostaining method uses a mouse-derived monoclonal antibody specific to each protein as the primary antibody, horseradish peroxidase-labeled anti-mouse 1g antibody for the secondary antibody, and DAB at the end of the reaction.
(Diaminobenzidine, manufactured by Sigma), and nuclear staining was performed with 1% methyl green solution (Keiji Shimizu, Manual of Neurobiochemistry (Yodosha), 1990, 253-263).
page).

【0034】[実施例2] 神経細胞毒性試験:これら
の細胞を用いて以下の4種の培養系を構築し、 16穴ス
ライドチャンバー(ヌンク、Nunc社製)で維持した。
[Example 2] Neurotoxicity test : The following four culture systems were constructed using these cells and maintained in a 16-well slide chamber (Nunc, manufactured by Nunc).

【0035】第1群のプレ−トは、常法に従って分離
し、5x104 個(cells)/ウエルになるように播種した
培養神経細胞を調製した。この群は、ほとんどの細胞が
神経細胞からなり若干のアストログリア細胞が混ざる細
胞群からなる細胞系である。
The plates of the first group were separated according to a conventional method, and cultured neurons were seeded at 5 × 10 4 cells / well. This group is a cell line consisting of a cell group in which most cells are composed of nerve cells and some astroglial cells are mixed.

【0036】第2群のプレ−トは、あらかじめ分離した
ミクログリア細胞を第1群に4x104 個 /ウエルさら
に加えた細胞系であり、ミクログリア細胞を中心とする
グリア細胞と神経細胞の混合培養系である。
The plate of the second group is a cell line obtained by further adding 4 × 10 4 cells / well to the first group of microglia cells previously separated, and is a mixed culture system of glial cells and neurons, mainly microglia cells. It is.

【0037】第3群は、アストログリア細胞を中心とす
るグリア細胞の混合培養系である。この群は、ウイスタ
−ラット由来の細胞を予め播種し、飽和細胞密度(confl
uent) になるように培養させたチャンバ−に神経細胞を
播種した培養系である。これは、アストログリア細胞を
中心とするグリア細胞と神経細胞の混合培養系である。
The third group is a mixed culture system of glial cells, mainly astroglial cells. This group was pre-seeded with cells derived from Wistar rats, and was set to a saturated cell density (confl.
This is a culture system in which nerve cells are seeded in a chamber cultivated to be uent). This is a mixed culture system of glial cells and nerve cells, mainly astroglial cells.

【0038】第4群のプレ−トは、株化アストログリア
細胞(Clone No.3)を予め播種し、飽和細胞密度になるよ
うに培養させたチャンバーに神経細胞を播種した培養系
であり、アストログリア細胞と神経細胞以外の細胞を含
まない混合培養系である。
The plate of the fourth group is a culture system in which the established astroglial cells (Clone No. 3) were seeded in advance and the nerve cells were seeded in a chamber in which the cells were cultured to a saturated cell density. This is a mixed culture system that does not contain cells other than astroglial cells and neurons.

【0039】これら第1群から第4群までの群におい
て、 それぞれ神経細胞が培養3日後なった時点で予め純
水にて1mMの濃度で溶解しておいたβ蛋白(25-35,シグ
マ社製)溶液を最終濃度25μM になるように添加し、 添
加2日後に細胞を採取し固定した。その後に、 生存神経
細胞に特異的な蛋白であるMAP2(Microtuble assoc
iated protein)に対する免疫染色を行って生存神経細
胞数を光顕下に算定し、各培養系においてβ蛋白非投与
群に対する投与群の生存神経細胞の割合( 神経細胞生存
率) を求めた。また各培養系に混在しているグリア細胞
の数はアストログリア細胞、 ミクログリア細胞にそれぞ
れ特異的な蛋白であるグリア繊維性酸性蛋白(以下、G
FAPと略す、Glial fibrillary acidic protein)、
Fcレセプターに対する免疫染色を行って光顕下に算定
した。
In each of the first to fourth groups, β-protein (25-35, Sigma Co., Ltd.) previously dissolved at a concentration of 1 mM in pure water at the time when the neurons were cultured for 3 days. 2) solution was added to a final concentration of 25 μM, and two days after the addition, the cells were collected and fixed. Then, MAP2 (Microtuble assoc), a protein specific to living neurons,
The number of surviving neurons was calculated under light microscopy by immunostaining for iated protein), and the ratio of surviving neurons in the administration group to the non-beta protein administration group (neural cell survival rate) was determined in each culture system. In addition, the number of glial cells mixed in each culture system is determined by glial fibrillary acidic protein (hereinafter referred to as G), which is a protein specific to astroglial cells and microglial cells.
Glial fibrillary acidic protein)
Immunostaining for Fc receptors was performed and calculated under light microscopy.

【0040】今回構築した各細胞系に含まれるグリア細
胞の組織を表1に示す。株化アストログリア細胞を用い
ることにより、 第4群においてミクログリア細胞をほぼ
除外したアストログリア細胞と神経細胞の混合培養系を
構築することができた。β蛋白の投与によっていずれの
群でも生存神経細胞の有意な減少または減少傾向が認め
られたが、 第2群ではその程度は、第1群と有意に変わ
らなかったのに対して、 第2群及び第4群では、第1群
に比較して、著しく強い生存神経細胞率の減少が生じた
(表2)。また、各群ともに、アストログリア細胞又は
ミクログリア細胞に対するβ蛋白による細胞毒性は認め
られなかった。
Table 1 shows the glial cell tissues contained in each cell line constructed this time. By using the established astroglial cells, it was possible to construct a mixed culture system of astroglial cells and neurons in which the microglial cells were almost excluded in the fourth group. The administration of β protein resulted in a significant decrease or a tendency to decrease in the number of surviving neurons in all groups, but the degree of the decrease in the second group was not significantly different from that in the first group. And in group 4 there was a markedly stronger reduction in the percentage of viable neurons compared to group 1 (Table 2). In each group, no cytotoxicity to astroglial cells or microglial cells due to β protein was observed.

【0041】本試験において、神経細胞と各種グリア細
胞との混合培養系を用いた検討によって、アストログリ
ア細胞がβ蛋白の神経細胞毒性を増強する可能性を初め
て直接的に示すことができた。この試験では、 グリア細
胞の混在が少なくほぼ神経細胞からなる第1群におい
て、 β蛋白の添加によって若干の生存神経細胞率の減少
が認められた(表2)。
In this test, the possibility of astroglial cells enhancing the neurotoxicity of β-protein could be directly shown for the first time by the examination using a mixed culture system of neurons and various glial cells. In this test, in the first group, in which glial cells were scarcely mixed and almost consisted of nerve cells, a slight decrease in the rate of surviving nerve cells was observed by the addition of β protein (Table 2).

【0042】ミクログリア細胞については、 β蛋白によ
って一酸化窒素(以下、NO)や種々のサイトカインの
産生が誘導される(BBRC: 199:984-991, 1994: Brain R
esearch, 692:207-214, 1995: Brain Research 569:14
1-145, 1992)という報告もされている。しかし、神経細
胞にミクログリア細胞を混在させた培養系である第2群
は、第1群と比較して有意な差を認めず、 ミクログリア
細胞を介するβ蛋白の神経細胞毒性の増強を示す結果は
得られなかった(表2)。
In microglial cells, production of nitric oxide (hereinafter referred to as NO) and various cytokines is induced by β protein (BBRC: 199: 984-991, 1994: Brain R).
esearch, 692: 207-214, 1995: Brain Research 569: 14
1-145, 1992). However, the second group, which is a culture system in which microglia cells were mixed with neurons, did not show a significant difference compared to the first group, and the results showing the enhancement of neuroglial toxicity of β protein mediated by microglia were Not obtained (Table 2).

【0043】[0043]

【表1】 [Table 1]

【0044】アストログリア細胞を中心とするグリア細
胞と神経細胞の混合培養(第3群)及び株化アストログ
リア細胞と神経細胞の混合培養(第4群)において、β
蛋白による神経細胞傷害性の著明な亢進が認められたこ
とは、アストログリア細胞による神経細胞傷害性の増強
効果を示すものであり、これらのことよりアストログリ
ア細胞がアルツハイマ−病の病態形成に関与することを
示唆した。
In a mixed culture of glial cells and nerve cells, mainly astroglial cells (Group 3), and a mixed culture of established astroglial cells and nerve cells (Group 4), β
The remarkable enhancement of neuronal cytotoxicity due to the protein shows the effect of enhancing neuronal cytotoxicity by astroglial cells, which indicates that astroglial cells are involved in the pathogenesis of Alzheimer's disease. Suggested to be involved.

【0045】[0045]

【表2】 [Table 2]

【0046】[0046]

【発明の効果】本発明の方法は、βアミロイド蛋白によ
る神経細胞の細胞傷害性に対する被検物質による抑制又
は阻害作用を評価する方法として有用である。
The method of the present invention is useful as a method for evaluating the inhibitory or inhibitory effect of a test substance on the cytotoxicity of nerve cells by β-amyloid protein.

【0047】かかる評価方法は、抗アルツハイマ−病治
療薬の評価又は探索する方法として有用である。また、
本発明の方法を用いて種々の化合物その他の物質を評価
することにより、選抜された物質は、抗アルツハイマ−
病治療薬又は抗痴呆薬として有用である。
Such an evaluation method is useful as a method for evaluating or searching for a therapeutic drug for Alzheimer's disease. Also,
By evaluating various compounds and other substances using the method of the present invention, the selected substances are identified as anti-Alzheimer's
It is useful as a drug for treating diseases or an anti-dementia drug.

Claims (7)

【特許請求の範囲】[Claims] 【請求項1】 被検物質とβアミロイド蛋白存在下で神
経細胞に、アストログリア細胞、アストログリア細胞の
培養液、アストログリア細胞の細胞抽出物又はアストロ
グリア細胞の産生物から選ばれる1つを介在させること
による、被検物質の神経細胞障害評価方法。
Claims: 1. An astroglial cell, a culture solution of astroglial cells, a cell extract of astroglial cells, or a product of astroglial cells, which is added to a neuron in the presence of a test substance and β-amyloid protein. A method for evaluating neuronal damage of a test substance by intervening.
【請求項2】 被検物質とβアミロイド蛋白存在下で、
神経細胞とアストログリア細胞を混合培養することによ
る被検物質の神経細胞障害評価方法。
2. In the presence of a test substance and β-amyloid protein,
A method for evaluating neuronal damage of a test substance by co-culturing neurons and astroglial cells.
【請求項3】 請求項1又は2のいずれか1項に記載の
評価方法を用いる痴呆症の予防薬又は治療薬の評価方
法。
3. A method for evaluating a preventive or therapeutic drug for dementia using the evaluation method according to claim 1 or 2.
【請求項4】 請求項1又は2のいずれか1項に記載の
評価方法を用いるアルツハイマ−病の予防薬又は治療薬
の評価方法。
4. A method for evaluating a preventive or therapeutic agent for Alzheimer's disease using the evaluation method according to claim 1 or 2.
【請求項5】 請求項1又は2のいずれか1項に記載の
評価方法を用いて得られる神経細胞毒性を抑制する物
質。
5. A substance which inhibits neurotoxicity obtained by using the evaluation method according to claim 1 or 2.
【請求項6】 請求項3に記載の方法を用いて得られる
痴呆症の予防薬又は治療薬。
6. A prophylactic or therapeutic agent for dementia obtained by using the method according to claim 3.
【請求項7】 請求項4に記載の方法を用いて得られる
アルツハイマ−病の予防薬又は治療薬。
7. A preventive or therapeutic agent for Alzheimer's disease obtained by using the method according to claim 4.
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Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4748798A (en) * 1985-05-10 1988-06-07 Japan Nuclear Fuel Co., Ltd. Apparatus for automatically loading nuclear fuel pellets
US4762665A (en) * 1985-11-18 1988-08-09 British Nuclear Fuels Plc Stack forming apparatus

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