JPH09313173A - Measurement of megakaryocyte cell projection-forming activity - Google Patents

Measurement of megakaryocyte cell projection-forming activity

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JPH09313173A
JPH09313173A JP8138159A JP13815996A JPH09313173A JP H09313173 A JPH09313173 A JP H09313173A JP 8138159 A JP8138159 A JP 8138159A JP 13815996 A JP13815996 A JP 13815996A JP H09313173 A JPH09313173 A JP H09313173A
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JP
Japan
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megakaryocytes
serum
megakaryocyte
culturing
formation
Prior art date
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Withdrawn
Application number
JP8138159A
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Japanese (ja)
Inventor
Yoji Ishida
陽治 石田
Hiroki Shigematsu
弘樹 重松
Kazuo Yano
和雄 矢野
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Asahi Chemical Industry Co Ltd
Original Assignee
Asahi Chemical Industry Co Ltd
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Publication date
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Abstract

PROBLEM TO BE SOLVED: To measure a substance having a megakaryocyte cell projectionforming ability, such as IL-6, in good repeatability and in high sensitivity. SOLUTION: This method for measuring the megakaryocyte cell projection forming activity of a specimen comprises (a) a process for culturing myeloma cells in a serum-free culture medium containing a mpl ligand in a concentration of 0.01-1ng/ml, (b) a process for separating the megakaryocyte prepared in the process (a), (c) a process for bringing the separated megakaryocyte into contact with the specimen and culturing the treated megakaryocyte in a serum- free medium not containing the mpl ligand, and (d) a process for detecting the cell projection-formed megakaryocyte.

Description

【発明の詳細な説明】Detailed Description of the Invention

【0001】[0001]

【産業上の利用分野】本発明は、巨核球、特に胞体突起
形成は可能であるが、そのままでは実質的に胞体突起形
成を起こさない巨核球の製造法、および巨核球胞体突起
形成活性の測定法、巨核球胞体突起形成活性を有する物
質を選択する方法、巨核球胞体突起形成阻害活性を有す
る物質を選択する方法、骨髄細胞の血小板産生能レベル
の測定法に関する。
INDUSTRIAL APPLICABILITY The present invention provides a method for producing megakaryocytes, particularly megakaryocytes capable of forming vesicle projections, but which does not substantially cause formation of cysts, and measurement of megakaryocyte projection formation activity. The present invention relates to a method, a method of selecting a substance having megakaryocyte projection process forming activity, a method of selecting a substance having megakaryocyte procession formation inhibitory activity, and a method of measuring the level of platelet production of bone marrow cells.

【0002】[0002]

【従来の技術】血小板は、止血において重要な働きをす
る。血小板は骨髄細胞から分化した巨核球に由来し、そ
の巨核球が成長、分化し、胞体突起形成を起こし血小板
を放出すると考えられている。巨核球の成長を促進する
物質については研究が進められ、mplリガンドが発見
されている(1)。しかし、胞体突起形成については適
当な測定系が存在しないため、研究はたち遅れており、
胞体突起形成を促進するような物質はわずかしか知られ
ておらず、実際に医療に用いられている物質は存在しな
い。
BACKGROUND OF THE INVENTION Platelets play an important role in hemostasis. It is considered that platelets are derived from megakaryocytes differentiated from bone marrow cells, and the megakaryocytes grow and differentiate to cause endoplasmic reticulum formation and release platelets. Studies have been conducted on substances that promote the growth of megakaryocytes, and an mpl ligand has been discovered (1). However, due to the lack of an appropriate measurement system for the formation of ER processes, research has been delayed,
Only a few substances are known to promote the formation of endoplasmic reticulum, and no substance is actually used in medicine.

【0003】従来の方法として、種々の動物の骨髄より
巨核球を分離し、使用する方法(2)が知られている。
しかしながら、この方法は、すでに生体内において種々
の刺激を受け成熟した巨核球を用いるため、何らの薬剤
を添加しないコントロールにおいても半数以上の巨核球
が胞体突起を形成してしまうものであって、巨核球胞体
突起形成活性を有する物質の探索のための系としては不
適当である。
As a conventional method, a method (2) for separating megakaryocytes from bone marrow of various animals and using them is known.
However, since this method uses mature megakaryocytes that have already been subjected to various stimuli in the living body, more than half of the megakaryocytes will form endoplasmic reticulum projections even in the control without addition of any drug, It is unsuitable as a system for searching for a substance having megakaryocyte projection process-forming activity.

【0004】このような胞体突起促進因子の探索のため
には、骨髄細胞から巨核球を誘導し胞体突起形成をおこ
す一連の過程を観察できる培養法が必要であるが、従
来、骨髄細胞、またはその代わりとして、骨髄を適当な
培地中に分散して得られる細胞を、50U/ml〔即
ち、10ng/ml程度(3)〕のmplリガンドと血
清とを含有せしめた培地中で培養することにより調製さ
れた巨核球を用いる方法(4)が行われている。即ち、
この方法では、マウス骨髄細胞を50U/mlのmpl
リガンド、10%ウシ胎児血清(FCS)を含むイスコ
フ改変ダルベッコ培地(IMDM)中で1から3週間培
養することで巨核球を誘導し、誘導された巨核球を分離
し、5%FCSを含むIMDM中で15時間から、3日
間培養し、胞体突起形成を起こした細胞を観察してい
る。しかしながら、この方法により測定される巨核球胞
体突起形成活性の値が極めて誤差が大きく、測定法とし
て極めて再現性の悪いものであり、また巨核球胞体突起
形成活性を有する物質のスクリーニングに使用した場合
には、巨核球胞体突起形成活性を有さない物質を誤って
活性を有する物質として検出する事態も認められた。
[(1)溝口秀昭、医学のあゆみ、174、695、1
995(2)Leven、R.M.、Journalo
f Cellular Physiology、16
、597、1995(3)Frederic,J.d
e,Sauvage et al、NATURE、36
、533、1994(4)Nagahisa,H.
et al、Blood、87、1309、1996
[0004] In order to search for such an ER process stimulating factor, a culture method capable of observing a series of processes in which megakaryocytes are induced from bone marrow cells to cause formation of ER processes is required. Instead, cells obtained by dispersing bone marrow in an appropriate medium are cultured in a medium containing 50 U / ml [ie, about 10 ng / ml (3)] of mpl ligand and serum. The method (4) using the prepared megakaryocytes is performed. That is,
In this method, mouse bone marrow cells were treated with 50 U / ml of mpl.
Induction of megakaryocytes by culturing in Iscove's modified Dulbecco's medium (IMDM) containing ligand, 10% fetal calf serum (FCS) for 1 to 3 weeks, and the induced megakaryocytes are separated, and IMDM containing 5% FCS Cells are cultured for 15 hours to 3 days, and cells that have undergone endoplasmic reticulum formation are observed. However, the value of megakaryocyte projection process forming activity measured by this method has an extremely large error and is extremely poor in reproducibility as a measurement method, and when used for screening a substance having megakaryocyte projection process forming activity. , A situation in which a substance that does not have megakaryoblastic process formation activity was erroneously detected as a substance having activity was also observed.
[(1) Hideaki Mizoguchi, History of Medicine, 174 , 695, 1
995 (2) Leven, R.A. M. , Journalo
f Cellular Physiology, 16
3 , 597, 1995 (3) Frederic, J. et al. d
e, Sauvage et al, NATURE, 36
9 , 533, 1994 (4) Nagahisa, H .;
et al, Blood, 87 , 1309, 1996.

【0005】[0005]

【発明が解決しようとする課題】血小板減少症、血小板
増加症に対する薬剤の開発のため、巨核球の胞体突起形
成を促進または阻害する物質の開発を行うため、また、
血小板の増加または減少を呈する疾患に胞体突起形成を
促進または阻害する物質がどのように関与するかを診断
するために、再現性よく、多くの試料を測定できる胞体
突起形成活性の測定法の開発が求められている。
DISCLOSURE OF THE INVENTION Problems to be Solved by the Invention In order to develop a drug for thrombocytopenia and thrombocytosis, to develop a substance that promotes or inhibits the formation of megakaryocyte endoplasmic reticulum, and
Development of a reproducible method to measure a large number of samples in order to diagnose how a substance that promotes or inhibits endoplasmic reticulum formation is involved in diseases that exhibit an increase or decrease in platelets Is required.

【0006】[0006]

【課題を解決するための手段】本発明者は、上記課題を
解決するために、鋭意検討を行った。先ず、本発明者
は、前述の方法(4)において、再現性の悪い原因が、
血清含有培地を用いる点にあるものと推察し、無血清培
地による培養を検討した。血清は、未知物質を含み、そ
の組成が一定ではなく、ロット毎に差があり、一般的
に、血清を用いた培養では用いる血清のロット差により
結果が変化する可能性があるためである。
Means for Solving the Problems The present inventor has conducted extensive studies in order to solve the above problems. First, the present inventor found that the cause of poor reproducibility in the above method (4) is
Since it is presumed that a serum-containing medium is used, the culture in a serum-free medium was examined. This is because serum contains an unknown substance, its composition is not constant, and there is a difference between lots, and generally, in culture using serum, the result may change depending on the lot difference of the serum used.

【0007】骨髄細胞を、10ng/mlのmplリガ
ンドを含む無血清培地中で培養して、巨核球を調製する
ことは極めて容易であり、図1に示す通り、極めて多く
の巨核球が誘導されることが確認された。しかしなが
ら、この巨核球は、従来巨核球胞体突起形成活性を有す
る物質として知られているインターロイキン−6(IL
−6と略する)を接触せしめても、ほとんど胞体突起を
形成しないものであり、巨核球胞体突起形成活性の測定
法としては、全く意味をなさないという困難な状況に立
ち至った。
It is extremely easy to prepare megakaryocytes by culturing bone marrow cells in a serum-free medium containing 10 ng / ml of mpl ligand, and as shown in FIG. 1, a very large number of megakaryocytes were induced. It was confirmed that However, this megakaryocyte is interleukin-6 (IL), which is conventionally known as a substance having megakaryocyte procession forming activity.
Even if they are contacted with (abbreviated as -6), almost no vesicle projections are formed even if they are brought into contact with each other, and it has reached a difficult situation that it does not make any sense as a method for measuring megakaryoblastic projection formation activity.

【0008】そこで本発明者は、mplリガンドの添加
量に何らかの影響があり得るものとの推定の基、mpl
リガンドの添加量を変化せしめた無血清培地により、該
骨髄細胞を培養する実験を行った。その結果は、意外に
も、図2に示す通りmplリガンドの培地中への添加量
が少なければ少ないほど、胞体突起を形成した巨核球の
数が増加するというものであった。しかしながら一方で
は、mplリガンドの添加量が少ない程、骨髄細胞から
誘導される巨核球の数が減少することも確認できた。容
易に入手できる量に限界のある骨髄細胞から、巨核球胞
体突起形成活性の測定法の行い得る適量の巨核球数を誘
導することが必要である上に、その誘導された巨核球
が、少なくとも巨核球胞体突起形成活性を有する物質と
して知られるIL−6によって、再現性よく、高い感度
で、巨核球の胞体突起形成を示し得る巨核球であること
が必要であるが、本発明者は、これらの課題が、mpl
リガンドの添加量を特定の範囲とすることにより克服で
きることを確認し、本発明を完成するに至った。本発明
は、以上のような画期的な発想と実験の基に、完成され
たものである。
Therefore, the present inventors presume that there may be some influence on the amount of mpl ligand added, mpl
An experiment was carried out in which the bone marrow cells were cultured in a serum-free medium in which the amount of ligand added was changed. As a result, surprisingly, as shown in FIG. 2, the smaller the amount of mpl ligand added to the medium, the greater the number of megakaryocytes that formed the ER process. On the other hand, however, it was also confirmed that the smaller the amount of mpl ligand added, the smaller the number of megakaryocytes induced from bone marrow cells. From bone marrow cells with a limit to the amount that can be easily obtained, it is necessary to induce an appropriate amount of megakaryocytes that can be used for the measurement of megakaryocyte procession formation activity, and the induced megakaryocytes are at least It is necessary that IL-6, which is known as a substance having megakaryocyte projection process-forming activity, be a megakaryocyte capable of exhibiting reticulum formation of megakaryocytes with good reproducibility and high sensitivity. These issues are mpl
It was confirmed that this can be overcome by setting the addition amount of the ligand within a specific range, and the present invention has been completed. The present invention has been completed based on the epoch-making ideas and experiments as described above.

【0009】即ち、本発明は、骨髄細胞を、0.01〜
1ng/mlのmplリガンドを含有する培地にて培養
することを特徴とする巨核球の製造法である。また、本
発明は、骨髄細胞を、0.01〜1ng/mlのmpl
リガンドを含有する無血清培地にて培養することを特徴
とする胞体突起形成は可能であるが、そのままでは実質
的に胞体突起形成を起こさない巨核球の製造法である。
That is, according to the present invention, bone marrow cells are added in an amount of 0.01 to
A method for producing megakaryocytes, which comprises culturing in a medium containing 1 ng / ml of mpl ligand. In addition, the present invention provides bone marrow cells with 0.01 to 1 ng / ml of mpl.
It is a method for producing megakaryocytes, which is capable of forming ER projections, which is characterized by culturing in a serum-free medium containing a ligand, but does not substantially cause ER projection formation as it is.

【0010】本発明の巨核球の製造方法において用いる
骨髄細胞は、巨核球に誘導され得る細胞であれば特に限
定されず、ヒトを含む哺乳動物、例えば入手の容易なマ
ウスの骨髄細胞が好ましい例として挙げられる。成熟し
た血球(赤血球、白血球、血小板)を除去して骨髄細胞
として選択されたものであってもよいが、通常は大腿骨
のように造血が盛んに行なわれている骨の骨髄を等張液
にて分散したものをそのまま用いることも簡便である。
具体的には、マウスの大腿骨から、骨髄を押し出し、1
mMのEDTAを添加したカルシウム、マグネシウム不
含ハンクス液等の等張液、またはイスコフ改変ダルベッ
コ培地(IMDM)等の培養液中で、ピペッティングに
より細胞を分散し、遠心分離により、沈殿性の細胞を取
得し、適宜の濃度に分散して調製する方法が挙げられ
る。
The bone marrow cells used in the method for producing megakaryocytes of the present invention are not particularly limited as long as they are cells that can be induced by megakaryocytes, and preferred examples are bone marrow cells of mammals including humans, for example, easily available mouse. As. It may be selected as bone marrow cells by removing mature blood cells (red blood cells, white blood cells, platelets), but isotonic liquid is usually used for the bone marrow of bones where hematopoiesis is actively performed like femurs. It is also easy to use the one dispersed in step 1.
Specifically, extruding bone marrow from the femur of a mouse, 1
Cells are dispersed by pipetting in isotonic solution such as calcium- and magnesium-free Hanks solution containing mM EDTA, or culture medium such as Iscove's modified Dulbecco's medium (IMDM), and the precipitated cells are separated by centrifugation. And a method of preparing the same by dispersing it to an appropriate concentration.

【0011】骨髄細胞から巨核球を誘導するために用い
るmplリガンドは、巨核球前駆細胞や巨核球の表面に
発現しているmplレセプターに結合し、巨核球の成長
を促進する因子であり、例えば、mplリガンド遺伝子
をもとに遺伝子工学的に作った組み替え型mplリガン
ド(Frederic, J. de, Sauvage et al, NATURE, 369,53
3, 1994) 、C末端ドメインを欠くtruncated
型mplリガンド(Tamaki, Wada et al, BIOCHEMICAL
AND BIOPHYSICAL RESERCH COMMUNICATIONS, 213, 1091,
1996) 、または血小板減少動物から精製された天然型m
plリガンド(Takashi, Kato et al, Journal of Bioc
hemistry, 118, 229,1995)等が挙げられ、英国のペプロ
テック社製のヒトTPOがmplリガンドとして市販さ
れているので、これを用いるのが特に好ましい。mpl
リガンドの添加濃度は、通常0.01〜1ng/mlが
用いられ、好ましくは0.1〜0.5ng/ml、特に
好ましくは約0.3ng/mlである。
The mpl ligand used for inducing megakaryocytes from bone marrow cells is a factor that binds to mpl receptors expressed on the surface of megakaryocyte progenitor cells and megakaryocytes and promotes growth of megakaryocytes. , Mpl ligand gene-engineered recombinant mpl ligand (Frederic, J. de, Sauvage et al, NATURE, 369, 53
3, 1994), truncated without a C-terminal domain
Type mpl ligand (Tamaki, Wada et al, BIOCHEMICAL
AND BIOPHYSICAL RESERCH COMMUNICATIONS , 213, 1091,
1996), or native m purified from thrombocytopenic animals
pl ligand (Takashi, Kato et al, Journal of Bioc
hemistry, 118, 229 , 1995) and the like, and human TPO manufactured by Peprotech Co., Ltd. in the UK is commercially available as an mpl ligand, so that it is particularly preferable to use it. mpl
The concentration of the added ligand is usually 0.01 to 1 ng / ml, preferably 0.1 to 0.5 ng / ml, particularly preferably about 0.3 ng / ml.

【0012】mplリガンドを含有する培地は、無血
清、血清含有培地のいずれでも良いが、無血清培地の方
が好ましく、その時は調製される巨核球が、胞体突起形
成は可能であるが、そのままでは実質的に胞体突起形成
を起こさない巨核球となる。培地の種類は、適当な動物
細胞用基礎培地であれば特に限定はしないが、イスコフ
改変ダルベッコ培地(IMDM)が好ましい。血清を添
加する場合は、ヒトやウシのような哺乳動物の血清で良
いが、ウシ胎児血清が好ましい。無血清培地を用いる場
合は、一般に無血清培養に用いられる無機物、ビタミ
ン、蛋白等の添加物を適量培地中に添加する。好ましく
はトランスフェリンとインシュリンを添加するが、その
濃度は一般に使用される0.1〜100μg/mlで良
い。さらに好ましくは5μg/mlトランスフェリンと
10μg/mlインシュリンを添加する。即ち、具体的
には、10μg/mlウシ由来インシュリン、5μg/
mlウシ由来ホロタイプトランスフェリンを含むIMD
M培地が例示される。培養日数は、骨髄細胞の種類や添
加物により異なるが、5%CO2 、37℃条件下で1〜
5日間が良く、2〜3日間が更に好ましい。
The medium containing mpl ligand may be either serum-free or serum-containing medium, but serum-free medium is preferred, in which case the prepared megakaryocytes are capable of forming endoplasmic reticulum, but as they are. Then, it becomes a megakaryocyte that does not substantially cause the formation of alveolar process. The type of medium is not particularly limited as long as it is a suitable basal medium for animal cells, but Iscove's modified Dulbecco's medium (IMDM) is preferable. When serum is added, it may be serum of mammals such as humans and cows, but fetal bovine serum is preferable. When using a serum-free medium, additives such as minerals, vitamins and proteins generally used for serum-free culture are added to the medium in an appropriate amount. Transferrin and insulin are preferably added, and the concentration thereof may be generally used 0.1-100 μg / ml. More preferably, 5 μg / ml transferrin and 10 μg / ml insulin are added. That is, specifically, 10 μg / ml bovine-derived insulin, 5 μg / ml
ml IMD containing holotype transferrin derived from bovine
M medium is exemplified. The number of culture days varies depending on the type of bone marrow cells and additives, but is 1 to 5% CO 2 at 37 ° C.
Five days is good, and 2-3 days is more preferable.

【0013】さらに本発明は、(a) 骨髄細胞を、0.0
1〜1ng/mlのmplリガンドを含有する無血清培
地にて培養する工程、(b) 該工程により調製された巨核
球を分離する工程、(c) 分離された巨核球を、被験体と
接触せしめるとともに、mplリガンドを含有しない無
血清培地にて培養する工程、(d) 胞体突起形成を起こし
た巨核球を検出する工程、を含むことを特徴とする被験
体の巨核球胞体突起形成活性の測定法である。
Further, the present invention provides (a) bone marrow cells with 0.0
A step of culturing in a serum-free medium containing 1-1 ng / ml of mpl ligand, (b) a step of separating the megakaryocytes prepared by the step, (c) a contact of the separated megakaryocytes with a subject And a step of culturing in a serum-free medium containing no mpl ligand, and (d) detecting a megakaryocyte that has undergone formation of alveolar process. It is a measuring method.

【0014】本発明の(a)骨髄細胞を、0.01〜1
ng/mlのmplリガンドを含有する無血清培地にて
培養する工程、は前記と同様である。該(a)工程によ
り調製された巨核球を分離する(b) 工程は、巨核球表面
に特異的に発現している蛋白に対する抗体を用いて分離
する方法や、細胞の比重の差を利用して分離する方法等
適当な方法で巨核球を分離できるが、好ましくは平衡塩
類中にウシ血清アルブミン(BSA)の濃度勾配を形成
させた溶液に巨核球を含む細胞分散液を重層し、自然沈
降させることにより、巨核球を分離する方法が例示され
る。さらに好ましくは、16%、4%及び2%BSAを
含むカルシウム、マグネシウム不含ハンクス液を順番に
重層した液に、細胞培養液を重層し1時間静置すること
により、沈降してきた巨核球を分離すればよい。この様
にして分離された巨核球は、胞体突起形成は可能である
が、そのままでは実質的に胞体突起形成を起こさない巨
核球である。
The bone marrow cells (a) of the present invention are added in an amount of 0.01 to 1
The step of culturing in a serum-free medium containing ng / ml of mpl ligand is the same as described above. The step (b) of separating the megakaryocyte prepared in the step (a) is carried out by using a method of separating by using an antibody against a protein specifically expressed on the surface of the megakaryocyte or a difference in specific gravity of cells. Although megakaryocytes can be separated by an appropriate method such as a method of separating cells, preferably, a cell dispersion containing megakaryocytes is layered on a solution in which a concentration gradient of bovine serum albumin (BSA) is formed in balanced salt and allowed to spontaneously precipitate. The method of separating the megakaryocytes is exemplified. More preferably, the cell culture solution is layered on a calcium-magnesium-free Hank's solution containing 16%, 4% and 2% BSA in this order, and the cells are allowed to stand for 1 hour. You can separate it. The megakaryocytes isolated in this manner are megakaryocytes that are capable of forming vesicle projections but do not substantially form vesicle projections as they are.

【0015】分離された巨核球を、被験体と接触せしめ
るとともに、mplリガンドを含有しない無血清培地に
て培養する(c) 工程において用いる被験体は、特に限定
されないが、ヒトあるいは動物の血液、尿、細胞上清、
発酵生産物、またはそれらから得られた精製物や、測定
対象とすべき既知の生理活性物質などが挙げられ、特に
本発明の測定法が阻害されないのであれば、精製等の前
処理をしないことが簡便であって好ましい。被験体との
接触は、同(c) 工程における培養とともに行うこと、即
ち、該培養に用いるmplリガンドを含有しない無血清
培地中に、被験体を添加する方法が最も簡便で好ましい
が、その他に、実質的に培養をする前に、予め被験体と
巨核球とを接触させてから、巨核球を取り出し、この巨
核球をmplリガンドを含有しない無血清培地中に入れ
て培養する方法が挙げられる。この予め被験体と巨核球
とを接触させる場合においては、勿論、被験体と巨核球
との他に適宜の緩衝液や培地が使用できるが、mplリ
ガンドと血清とを含まないことが好ましい。
The separated megakaryocytes are brought into contact with the subject and cultured in a serum-free medium containing no mpl ligand (c) The subject used in the step (c) is not particularly limited, but may be human or animal blood, Urine, cell supernatant,
Fermentation products, or purified products obtained from them, known physiologically active substances to be measured, and the like, do not pretreatment such as purification unless the assay method of the present invention is particularly inhibited Is preferred because it is simple. The contact with the subject is performed together with the culture in the step (c), that is, the method of adding the subject to the serum-free medium containing no mpl ligand used for the culture is the most simple and preferable, but other than that, Prior to substantially culturing, there is a method in which a test subject is contacted with a megakaryocyte in advance, the megakaryocyte is taken out, and the megakaryocyte is placed in a serum-free medium containing no mpl ligand and cultured. . In the case where the subject and the megakaryocyte are brought into contact with each other in advance, of course, an appropriate buffer solution or medium can be used in addition to the subject and the megakaryocyte, but it is preferable that the mpl ligand and the serum are not contained.

【0016】この(c) 工程で用いるmplリガンドを含
有しない無血清培地とは、適当な動物細胞用基礎培地で
あれば特に限定はしないが、イスコフ改変ダルベッコ培
地(IMDM)が好ましく、一般に無血清培養に用いら
れる無機物、ビタミン、蛋白等の添加物を適量培地中に
添加する。好ましくはトランスフェリンとインシュリン
を添加するが、その濃度は一般に使用される0.1〜1
00μg/mlで良い。さらに好ましくは5μg/ml
トランスフェリンと10μg/mlインシュリンを添加
する。培養器は、通常動物細胞培養に用いられるもので
あれば、特に限定はされないが、通常は細胞培養用96
プレートが好ましい。該プレートにおいては、巨核球数
は1穴当たり100〜1000個程度が観察しやすいこ
とから、その程度となるような分散液としておくことが
好ましい。培養日数は、骨髄細胞の種類や添加物により
異なるが、5%CO2 、37℃条件下で1〜3日間が良
く、1〜2日間が更に好ましい。
The serum-free medium containing no mpl ligand used in step (c) is not particularly limited as long as it is a suitable basal medium for animal cells, but Iscove's modified Dulbecco's medium (IMDM) is preferable, and serum-free medium is generally used. Add appropriate amounts of additives such as minerals, vitamins and proteins used for culture to the medium. Transferrin and insulin are preferably added, the concentration of which is generally 0.1-1.
00 μg / ml is sufficient. More preferably 5 μg / ml
Transferrin and 10 μg / ml insulin are added. The incubator is not particularly limited as long as it is usually used for animal cell culture, but it is usually used for cell culture.
Plates are preferred. In the plate, since it is easy to observe the number of megakaryocytes per hole is about 100 to 1000, it is preferable to set the dispersion liquid to such a level. The number of culture days varies depending on the type of bone marrow cells and additives, but is preferably 1 to 3 days under 5% CO 2 and 37 ° C. conditions, and more preferably 1 to 2 days.

【0017】胞体突起形成を起こした巨核球を検出する
(d) 工程は、例えば、96穴プレートの各穴の培養後の
巨核球を顕微鏡下で観察して、胞体突起形成を起こした
巨核球数を測定し、陰性対照の胞体突起形成を起こした
巨核球数と、被験体を添加したときの胞体突起形成を起
こした巨核球数を比較し、試料の胞体突起形成能を測定
する方法として例示される。胞体突起形成活性の強さは
陰性対照添加での胞体突起形成巨核球数を100%とし
てその比率で表すことが一般的である。測定できる範囲
としては、例えば、IL−6においては、通常、10n
g/ml程度以上において測定できる。
Detect megakaryocytes that have undergone vesicle formation
In the step (d), for example, the megakaryocytes after culturing in each well of a 96-well plate are observed under a microscope to measure the number of megakaryocytes that have undergone vesicle formation, and to form vesicle formation as a negative control. This is exemplified as a method of comparing the number of megakaryocytes with the number of megakaryocytes that have undergone vesicle process formation when a test subject is added, and measuring the oocyst process forming ability of a sample. It is general that the strength of the vesicle formation activity is expressed as the ratio with the number of vesicle formation megakaryocytes with the addition of the negative control taken as 100%. As a measurable range, for example, IL-6 is usually 10 n.
It can be measured at about g / ml or higher.

【0018】したがって、本発明の特に好ましい具体例
を挙げると以下の通りである。例えば、入手の容易なマ
ウスの大腿骨の骨髄から採取し、分散した細胞を、巨核
球誘導用培地、例えば、適当な基礎培地、好ましくはI
MDMに約0.3ng/mlの英国ペプロテック社製の
ヒトTPO(mplリガンド)を添加し、さらに、必要
に応じて無血清培養に用いられる無機物、ビタミン、蛋
白等、特に5μg/mlトランスフェリンと10μg/
mlインシュリンを添加した巨核球誘導用培地にて、5
%CO2 、37℃条件下で2〜3日間培養する。培養
後、誘導された巨核球を、平衡塩類中にウシ血清アルブ
ミン(BSA)の濃度勾配を形成させた溶液に巨核球を
含む細胞分散液を重層し、自然沈降させることにより、
巨核球を分離する。かくして得た分離した巨核球は、細
胞培養用96プレート中に1穴当たり100〜1000
個添加し、被験体を含有させたmplリガンドを含有し
ない無血清培地にて、1〜2日間培養し、培養後、各穴
の巨核球を顕微鏡下で観察して、胞体突起形成を起こし
た巨核球数を測定し、陰性対照の胞体突起形成を起こし
た巨核球数と、被験体を添加したときの胞体突起形成を
起こした巨核球数を比較し、試料の胞体突起形成能を測
定すればよい。
Therefore, a particularly preferred specific example of the present invention is as follows. For example, the cells dispersed from the bone marrow of the femur of an easily available mouse are dispersed, and the dispersed cells are used as a medium for megakaryocyte induction, for example, a suitable basal medium, preferably I
Approximately 0.3 ng / ml of human TPO (mpl ligand) manufactured by British Peprotech Co., Ltd. was added to MDM, and if necessary, inorganic substances, vitamins, proteins, etc. used in serum-free culture, especially 5 μg / ml transferrin and 10 μg /
5 in megakaryocyte induction medium supplemented with ml insulin
Incubate for 2 to 3 days under the conditions of CO 2 and 37 ° C. After culturing, the induced megakaryocytes are overlaid with a cell dispersion containing megakaryocytes in a solution in which a concentration gradient of bovine serum albumin (BSA) is formed in balanced salt, and naturally precipitated.
Separate megakaryocytes. The separated megakaryocytes thus obtained were placed in a cell culture 96 plate at 100 to 1000 per well.
Individually added, and cultured in a serum-free medium containing no test substance and containing mpl ligand for 1 to 2 days, and after culturing, the megakaryocytes in each hole were observed under a microscope to cause the formation of endoplasmic reticulum. The number of megakaryocytes was measured, and the number of megakaryocytes that had undergone formation of vesicles as a negative control was compared with the number of megakaryocytes that had formed vesicles when the test subject was added. Good.

【0019】また、本発明は、(a) 骨髄細胞を、0.0
1〜1ng/mlのmplリガンドを含有する無血清培
地にて培養する工程、(b) 該工程により調製された巨核
球を分離する工程、(c) 分離された巨核球を、被験体と
接触せしめるとともに、mplリガンドを含有しない無
血清培地にて培養する工程、(d) 胞体突起形成を起こし
た巨核球を検出する工程、を含むことを特徴とする被験
体中の巨核球胞体突起形成活性を有する物質を選択する
方法である。
The present invention also provides (a) bone marrow cells to 0.0
A step of culturing in a serum-free medium containing 1-1 ng / ml of mpl ligand, (b) a step of separating the megakaryocytes prepared by the step, (c) a contact of the separated megakaryocytes with a subject And the step of culturing in a serum-free medium containing no mpl ligand, and (d) the step of detecting megakaryocytes that have undergone vesicle formation, in which the megakaryocyte spore formation activity in the subject is included. Is a method of selecting a substance having

【0020】さらに本発明は、(a) 骨髄細胞を、0.0
1〜1ng/mlのmplリガンドを含有する無血清培
地にて培養する工程、(b) 該工程により調製された巨核
球を分離する工程、(c) 分離された巨核球を、胞体突起
形成を起こす因子および被験体と接触せしめるととも
に、mplリガンドを含有しない無血清培地にて培養す
る工程、(d) 胞体突起形成を起こした巨核球を検出する
工程、を含むことを特徴とする被験体中の巨核球胞体突
起形成阻害活性を有する物質を選択する方法である。
Further, the present invention provides (a) bone marrow cells with 0.0
The step of culturing in a serum-free medium containing 1-1 ng / ml of mpl ligand, (b) the step of separating the megakaryocytes prepared by the step, (c) the separated megakaryocytes for the formation of endoplasmic reticulum. In a subject characterized by including a step of contacting with a factor to cause and a subject and culturing in a serum-free medium containing no mpl ligand, and (d) a step of detecting megakaryocytes in which vesicle formation has occurred Is a method of selecting a substance having an activity of inhibiting megakaryocyte projection formation.

【0021】骨髄細胞を、0.01〜1ng/mlのm
plリガンドを含有する無血清培地にて培養する(a) 工
程、該工程により調製された巨核球を分離する(b) 工
程、および胞体突起形成を起こした巨核球を検出する
(d) 工程、はそれぞれ前記と同様である。一方、分離さ
れた巨核球を、胞体突起形成を起こす因子および被験体
と接触せしめるとともに、mplリガンドを含有しない
無血清培地にて培養する(c) 工程にて用いる、胞体突起
形成を起こす因子としては、具体的にはIL−6を用い
ることができる。培地中に添加するIL−6の濃度は、
一般に1〜1000ng/mlであるが、10〜100
ng/mlが好ましい。その他の培地や培養条件等は前
記と同様である。
Bone marrow cells were treated with 0.01-1 ng / ml of m
Culturing in serum-free medium containing pl ligand (a) step, separating megakaryocytes prepared by the step (b) step, and detecting megakaryocytes that have undergone cyst formation
Step (d) is the same as described above. On the other hand, the isolated megakaryocyte is contacted with a factor that causes the formation of endoplasmic reticulum and a subject, and is cultured in a serum-free medium containing no mpl ligand (c). Specifically, IL-6 can be used. The concentration of IL-6 added to the medium is
Generally 1 to 1000 ng / ml, but 10 to 100
ng / ml is preferred. Other media, culture conditions and the like are the same as above.

【0022】また、本発明は、(a) 骨髄細胞を、0.0
1〜1ng/mlのmplリガンドを含有する無血清ま
たは血清培地にて培養する工程、(b) 該工程により調製
された巨核球を分離する工程、(c) 分離された巨核球
を、mplリガンドを含有しない無血清培地にて培養す
る工程、(d) 胞体突起形成を起こした巨核球を検出する
工程、を含むことを特徴とする該骨髄細胞の血小板産生
能レベルの測定法である。
The present invention also provides (a) bone marrow cells to 0.0
Culturing in serum-free or serum medium containing 1-1 ng / ml of mpl ligand, (b) separating megakaryocytes prepared by the step, (c) separating megakaryocytes from mpl ligand And a step of culturing in a serum-free medium that does not contain, and (d) detecting megakaryocytes that have undergone formation of endoplasmic reticulum.

【0023】前述したように血小板は未熟な骨髄細胞か
ら分化した巨核球が、胞体突起を形成することにより産
生されると考えられているので、in vitroで骨
髄細胞から誘導した巨核球の胞体突起形成能を測定する
ことにより、骨髄細胞の血小板産生能レベルを測定する
ことができる。この測定法を用いれば、ある種の個体に
おいて血小板数が正常とは異なる原因が、骨髄細胞に問
題があるのか、その他の環境に問題があるのかを判断す
ることができる。
As described above, since it is considered that platelets are produced by the formation of endoplasmic reticulum by megakaryocytes differentiated from immature bone marrow cells, megakaryocyte endoplasmic reticulum projections derived from bone marrow cells in vitro. By measuring the forming ability, it is possible to measure the level of platelet producing ability of bone marrow cells. Using this assay, it is possible to determine whether the cause of the platelet count differing from normal in certain individuals is a problem with bone marrow cells or another environment.

【0024】本発明をより詳細に記述するために、実施
例により説明するが、本発明の範囲はこれらの実施例に
限定されるものではない。
The present invention is described in more detail by way of examples, but the scope of the present invention is not limited to these examples.

【0025】[0025]

【実施例】【Example】

実施例1 マウス骨髄細胞からmplリガンドにより誘導された巨
核球数 7週齢のddYマウス(雄)8匹の大腿骨を採取し、そ
の両端を切断し、1mMのEDTA(米国、シグマ社
製)を添加したカルシウム、マグネシウム不含ハンクス
液(シグマ社製;pH7.4)20mlをいれたプラス
チック注射器(22G針)を用いて、100mmプラス
チックディッシュ中に、骨髄を押し出した。ピペッティ
ングにより細胞を分散した後、15mlのチューブに移
し、100gで20分間遠心した。沈殿性の細胞を10
mlのIMDMに分散し、350gで5分間遠心し、再
び、沈殿性の細胞を10mlのIMDMに分散し、35
0g、5分間遠心した。沈殿性の細胞を5x106 /m
lになるように0、0.01、0.03、0.1、0.
3、1.0、3.0または10ng/mlのmplリガ
ンド(ヒトTPO、英国、ペプロテック社製)、10μ
g/mlウシ由来インシュリン(米国、ギブコ社製)、
5μg/mlウシ由来ホロタイプトランスフェリン(ギ
ブコ社製)を含むIMDM培地に分散した。mplリガ
ンド濃度が異なる各5mlの骨髄細胞分散液が8種類取
得でき、それぞれを25cm2 培養用フラスコ(米国、
ベクトンディッキンソン社製)で、37℃、5%CO2
の条件下で3日間培養した。培養により誘導された巨核
球を含む液を数回のピペッティングをした後、15ml
チューブに移し、1時間静置した。上部の4mlを吸い
出し、下部の1mlを回収し、数回のピペッティングを
し、細胞を分散した。8本の15mlチューブに、下か
ら1.5mlの16%BSAを含むカルシウム、マグネ
シウム不含ハンクス液、3mlの4%BSAを含むカル
シウム、マグネシウム不含ハンクス液、1.5mlの2
%BSAを含むカルシウム、マグネシウム不含ハンクス
液を重層した液に、各1mlの細胞分散液を重層し1時
間静置した。上部5mlを吸い出し、下部2mlを残し
た。残った液に8mlのIMDMを加え、60g,5分
間の遠心を行った。顕微鏡観察により20μm以上の大
きさを持つ細胞を巨核球として、沈殿中の巨核球数を測
定した。図1に各濃度のmplリガンドにより誘導され
た巨核球数を示した。mplリガンドにより誘導される
巨核球は濃度依存的に増加し、mplリガンド無添加に
比べ10ng/mlのmplリガンドを添加したとき
は、誘導される巨核球数は約8倍であった。 実施例2 マウス骨髄細胞からmplリガンドにより誘導された巨
核球の胞体突起形成能 7週齢のddYマウス(雄)8匹の大腿骨を採取し、そ
の両端を切断し、1mMのEDTA(米国、シグマ社
製)を含むカルシウム、マグネシウム不含ハンクス液
(シグマ社製;pH7.4)20mlをいれたプラスチ
ック注射器(22G針)を用いて、100mmプラスチ
ックディッシュ中に、骨髄を押し出した。ピペッティン
グにより細胞を分散した後、15mlのチューブに移
し、100gで20分間遠心した。沈殿性の細胞を10
mlのIMDMに分散し、350gで5分間遠心し、再
び、沈殿性の細胞を10mlのIMDMに分散し、35
0g、5分間遠心した。沈殿性の細胞を5x106 /m
lになるように0、0.01、0.03、0.1、0.
3、1.0、3.0または10ng/mlのmplリガ
ンド(ヒトTPO、英国、ペプロテック社製)、10μ
g/mlウシ由来インシュリン(ギブコ社)、5μg/
mlウシ由来ホロタイプトランスフェリン(ギブコ社)
を含むIMDM培地に分散した。mplリガンド濃度が
異なる各5mlの骨髄細胞分散液が8種類取得でき、そ
れぞれを25cm2 培養用フラスコ(米国、ベクトンデ
ィッキンソン社)で、37℃、5%CO2 の条件下で3
日間培養した。培養により誘導された巨核球を含む液を
数回のピペッティングをした後、15mlチューブに移
し、1時間静置した。上部の4mlを吸い出し、下部の
1mlを回収し、数回のピペッティングをし、細胞を分
散した。8本の15mlチューブに、下から1.5ml
の16%BSAを含むカルシウム、マグネシウム不含ハ
ンクス液、3mlの4%BSAを含むカルシウム、マグ
ネシウム不含ハンクス液、1.5mlの2%BSAを含
むカルシウム、マグネシウム不含ハンクス液を重層した
液に、各1mlの細胞分散液を重層し1時間静置した。
上部5mlを吸い出し、下部2mlを残した。残った液
に8mlのIMDMを加え、60g,5分間の遠心を行
った。顕微鏡観察により20μm以上の大きさを持つ細
胞を巨核球として、沈殿中の巨核球数を測定し、それぞ
れを3000巨核球/mlになるように10μg/ml
ウシ由来インシュリン(ギブコ社)、5μg/mlウシ
由来ホロタイプトランスフェリン(ギブコ社)を含むI
MDM培地に分散し、これを巨核球分散液とした。
Example 1 Number of megakaryocytes induced by mpl ligand from mouse bone marrow cells The femurs of eight 7-week-old ddY mice (male) were collected, and both ends thereof were cut to obtain 1 mM EDTA (manufactured by Sigma, USA). Bone marrow was extruded into a 100 mm plastic dish using a plastic syringe (22 G needle) containing 20 ml of calcium- and magnesium-free Hanks solution (Sigma 7.4; pH 7.4) added with. The cells were dispersed by pipetting, transferred to a 15 ml tube, and centrifuged at 100 g for 20 minutes. 10 precipitating cells
Disperse in ml of IMDM, centrifuge at 350 g for 5 minutes, again disperse the pelleted cells in 10 ml of IMDM,
It was centrifuged at 0 g for 5 minutes. Precipitating cells at 5 × 10 6 / m
0, 0.01, 0.03, 0.1, 0.
3, 1.0, 3.0 or 10 ng / ml mpl ligand (human TPO, Peprotech, UK) 10 μ
g / ml bovine-derived insulin (manufactured by Gibco, USA),
It was dispersed in IMDM medium containing 5 μg / ml bovine-derived holotype transferrin (manufactured by Gibco). Bone marrow cell suspension of mpl ligand concentration is different each 5ml can be eight acquired respectively 25 cm 2 culture flasks (USA,
Becton Dickinson), 37 ° C, 5% CO 2
The cells were cultured for 3 days under the conditions of. After pipetting a liquid containing megakaryocytes induced by culture several times, 15 ml
It was transferred to a tube and left for 1 hour. 4 ml of the upper part was sucked out, 1 ml of the lower part was collected, and the cells were dispersed by pipetting several times. In eight 15 ml tubes, from the bottom, 1.5 ml of calcium and magnesium-free Hanks solution containing 16% BSA, 3 ml of calcium containing 4% BSA and magnesium-free Hanks solution, 1.5 ml of 2
1 ml of each cell dispersion was overlaid on a liquid containing calcium- and magnesium-free Hanks' solution containing% BSA, and left standing for 1 hour. The top 5 ml was aspirated, leaving the bottom 2 ml. 8 ml of IMDM was added to the remaining liquid, and the mixture was centrifuged at 60 g for 5 minutes. The number of megakaryocytes in the precipitate was measured by observing cells having a size of 20 μm or more as megakaryocytes by microscopic observation. FIG. 1 shows the number of megakaryocytes induced by each concentration of mpl ligand. The number of megakaryocytes induced by mpl ligand increased in a concentration-dependent manner, and when 10 ng / ml of mpl ligand was added, the number of megakaryocytes induced was about 8-fold, as compared to when no mpl ligand was added. Example 2 Endoplasmic reticulum formation ability of megakaryocytes induced by mpl ligand from mouse bone marrow cells Femoral bones of 8 7-week-old ddY mice (male) were collected, and both ends thereof were cut to obtain 1 mM EDTA (US, The bone marrow was extruded into a 100 mm plastic dish using a plastic syringe (22G needle) containing 20 ml of calcium- and magnesium-free Hank's solution (manufactured by Sigma) (manufactured by Sigma; pH 7.4). The cells were dispersed by pipetting, transferred to a 15 ml tube, and centrifuged at 100 g for 20 minutes. 10 precipitating cells
Disperse in ml of IMDM, centrifuge at 350 g for 5 minutes, again disperse the pelleted cells in 10 ml of IMDM,
It was centrifuged at 0 g for 5 minutes. Precipitating cells at 5 × 10 6 / m
0, 0.01, 0.03, 0.1, 0.
3, 1.0, 3.0 or 10 ng / ml mpl ligand (human TPO, Peprotech, UK) 10 μ
g / ml bovine insulin (Gibco), 5 μg /
ml Bovine-derived holotype transferrin (Gibco)
Was dispersed in IMDM medium containing Eight types of 5 ml bone marrow cell dispersions with different mpl ligand concentrations were obtained, and each of them was placed in a 25 cm 2 culture flask (Becton Dickinson, USA) under conditions of 37 ° C. and 5% CO 2
Cultured for days. The solution containing megakaryocytes induced by the culture was pipetted several times, then transferred to a 15 ml tube and allowed to stand for 1 hour. 4 ml of the upper part was sucked out, 1 ml of the lower part was collected, and the cells were dispersed by pipetting several times. 1.5 ml from the bottom in 8 15 ml tubes
Calcium containing 16% BSA, magnesium-free Hanks solution, 3 ml of calcium containing 4% BSA, magnesium-free Hanks solution, 1.5 ml of calcium containing 2% BSA, magnesium-free Hanks solution , 1 ml of each cell dispersion was layered and left standing for 1 hour.
The top 5 ml was aspirated, leaving the bottom 2 ml. 8 ml of IMDM was added to the remaining liquid, and the mixture was centrifuged at 60 g for 5 minutes. The number of megakaryocytes in the precipitate was measured by observing cells with a size of 20 μm or more as megakaryocytes by microscopic observation, and 10 μg / ml of each was determined to be 3000 megakaryocytes / ml.
I containing bovine-derived insulin (Gibco), 5 μg / ml bovine-derived holotype transferrin (Gibco)
It was dispersed in an MDM medium and used as a megakaryocyte dispersion.

【0026】培養用96穴プレート(日本国、住友ベー
クライト社製)に、前記の巨核球分散液100μlずつ
を分注し、37℃、5%CO2 の条件下で培養した。2
日目に顕微鏡下で巨核球を観察し、胞体突起形成を起こ
した巨核球数を測定した。図2に各濃度のmplリガン
ドにより誘導された巨核球の胞体突起形成能を示した。
mplリガンドにより誘導された巨核球は、mplリガ
ンドの濃度依存的に胞体突起形成能が抑制され、10n
g/mlのmplリガンドにより誘導された巨核球は、
ほとんど胞体突起を形成しなかった。実施例1、2の結
果からmplリガンド濃度が高いほど骨髄細胞から誘導
される巨核球数は増加するが、誘導された巨核球の胞体
突起形成能は低下することがわかった。 実施例3 IL−6による胞体突起形成巨核球の増加数 培養用96穴プレート(日本国、住友ベークライト社)
に、実施例2にて調製した巨核球分散液100μlずつ
を分注し、IL−6無添加と100ng/mlのIL−
6(米国、アップステートバイオテクノロジー社)添加
で37℃、5%CO2 の条件下で培養した。2日目に顕
微鏡下で巨核球を観察し、巨核球胞体突起形成活性を有
するIL−6無添加の場合と100ng/mlのIL−
6を添加した場合の胞体突起形成を起こした巨核球数を
比較した。図3に各濃度のmplリガンドにより誘導さ
れた巨核球を用いた時のIL−6により胞体突起形成を
起こした巨核球の増加数を示した。100ng/mlの
IL−6が胞体突起形成を起こさせた巨核球数は、0.
3ng/mlのmplによって誘導された巨核球を用い
た場合が最も多かった。したがって、mplリガンドに
よって骨髄細胞から誘導された巨核球を用いて胞体突起
形成活性を測定する場合は、最適のmplリガンド濃度
が存在し、それは従来使用されている10ng/ml程
度の濃度よりもはるかに低いことがわかった。すなわち
0.01〜1ng/mlのmplリガンド濃度が胞体突
起形成活性を測定するのに適していることがわかった。 実施例4 巨核球胞体突起形成活性測定法 実施例1〜3の結果を基に以下のように巨核球胞体突起
形成活性測定法を確立し、IL−6の活性を測定した。
100 μl of each of the megakaryocyte dispersions was dispensed into a 96-well plate for culture (Sumitomo Bakelite Co., Ltd., Japan) and cultured at 37 ° C. under 5% CO 2 . Two
On the day, the megakaryocytes were observed under a microscope, and the number of megakaryocytes that had undergone the formation of endoplasmic reticulum was measured. FIG. 2 shows the endoplasmic reticulum formation ability of megakaryocytes induced by each concentration of mpl ligand.
In megakaryocytes induced by mpl ligand, the ability to form endoplasmic reticulum formation was suppressed in a concentration-dependent manner, and 10n
Megakaryocytes induced by g / ml mpl ligand are
Almost no alveolar process was formed. From the results of Examples 1 and 2, it was found that the higher the concentration of mpl ligand is, the more the number of megakaryocytes induced from bone marrow cells increases, but the ability of the induced megakaryocytes to form endoplasmic reticulum processes decreases. Example 3 Increase in number of vesicle-forming megakaryocytes by IL-6 96-well plate for culture (Sumitomo Bakelite Co., Ltd., Japan)
100 μl of the megakaryocyte dispersion prepared in Example 2 was dispensed into each of the cells, and no IL-6 was added and 100 ng / ml of IL-.
6 (Upstate Biotechnology Inc., USA) was added and the cells were cultured at 37 ° C. under 5% CO 2 . On the 2nd day, megakaryocytes were observed under a microscope, and there was no addition of IL-6 having megakaryocyte procession formation activity and 100 ng / ml of IL-.
The number of megakaryocytes that caused the formation of endoplasmic reticulum when 6 was added was compared. FIG. 3 shows the increase in the number of megakaryocytes that caused the formation of endoplasmic reticulum due to IL-6 when using megakaryocytes induced by each concentration of mpl ligand. The number of megakaryocytes in which 100 ng / ml of IL-6 caused the formation of endoplasmic reticulum was 0.
It was most often with megakaryocytes induced by 3 ng / ml mpl. Therefore, when measuring endoplasmic reticulum formation activity using megakaryocytes derived from bone marrow cells by mpl ligand, there is an optimum mpl ligand concentration, which is much higher than the concentration of 10 ng / ml which is conventionally used. It turned out to be very low. That is, it was found that a concentration of 0.01 to 1 ng / ml of mpl ligand was suitable for measuring the endoplasmic reticulum formation activity. Example 4 Method for measuring megakaryocytic process formation activity Based on the results of Examples 1 to 3, a method for measuring megakaryocyte process formation activity was established as follows, and the activity of IL-6 was measured.

【0027】7週齢のddYマウス(雄)8匹の大腿骨
を採取し、その両端を切断し、1mMのEDTA(米
国、シグマ社製)を含むカルシウム、マグネシウム不含
ハンクス液(シグマ社製;pH7.4)20mlをいれ
たプラスチック注射器(22G針)を用いて、100m
mプラスチックディッシュ中に、骨髄を押し出した。ピ
ペッティングにより細胞を分散した後、15mlのチュ
ーブに移し、100gで20分間遠心した。沈殿性の細
胞を10mlのIMDMに分散し、350gで5分間遠
心し、再び、沈殿性の細胞を10mlのIMDMに分散
し、350g、5分間遠心した。沈殿性の細胞を5x1
6 /mlになるように0.3ng/mlのmplリガ
ンド(ペプロテック社製)、10μg/mlウシ由来イ
ンシュリン(ギブコ社製)、5μg/mlウシ由来ホロ
タイプ トランスフェリン(ギブコ社製)を含むIMD
M培地)に分散した。約40mlの骨髄細胞分散液が取
得でき、8個の25cm2 培養用フラスコ(米国、ベク
トンディッキンソン社製)に5mlずつ分注し、37
℃、5%CO2 の条件下で2日間培養した。培養により
誘導された巨核球を含む液を数回のピペッティングをし
た後、4本の15mlチューブに10mlずつ分注し、
1時間静置した。上部の8.5mlを吸い出し、下部の
1.5mlを回収し、数回のピペッティングをし、細胞
を分散した。2本の15mlチューブに、下から1.5
mlの16%BSAを含むカルシウム、マグネシウム不
含ハンクス液、3mlの4%BSAを含むカルシウム、
マグネシウム不含ハンクス液、1.5mlの2%BSA
を含むカルシウム、マグネシウム不含ハンクス液を重層
した液に、3mlの細胞分散液を重層し1時間静置し
た。上部7mlを吸い出し、下部2mlを残した。残っ
た液に8mlのIMDMを加え、60g,5分間の遠心
を行った。顕微鏡観察により20μm以上の大きさを持
つ細胞を巨核球として、沈殿中の巨核球数を測定し、3
000巨核球/mlになるように10μg/mlウシ由
来インシュリン(ギブコ社)、5μg/mlウシ由来ホ
ロタイプトランスフェリン(ギブコ社製)を含むIMD
M培地に分散し、これを巨核球分散液とした。
Femurs of eight 7-week-old ddY mice (male) were collected, both ends thereof were cut, and calcium- and magnesium-free Hanks solution (manufactured by Sigma) containing 1 mM EDTA (manufactured by Sigma, USA). A plastic syringe (22G needle) containing 20 ml of pH 7.4, 100 m
m The bone marrow was extruded into a plastic dish. The cells were dispersed by pipetting, transferred to a 15 ml tube, and centrifuged at 100 g for 20 minutes. The precipitating cells were dispersed in 10 ml of IMDM and centrifuged at 350 g for 5 minutes, and the precipitating cells were again dispersed in 10 ml of IMDM and centrifuged at 350 g for 5 minutes. Precipitate cells 5x1
IMD containing 0.3 ng / ml of mpl ligand (Peprotech), 10 μg / ml bovine insulin (Gibco), 5 μg / ml bovine holotype transferrin (Gibco) so as to be 0 6 / ml.
M medium). About 40 ml of the bone marrow cell dispersion can be obtained, and 5 ml of each is dispensed into eight 25 cm 2 culture flasks (manufactured by Becton Dickinson, USA).
Cultivation was carried out for 2 days under the conditions of ° C and 5% CO 2 . After pipetting a solution containing megakaryocytes induced by culture several times, 10 ml was dispensed into four 15 ml tubes,
Let stand for 1 hour. The upper 8.5 ml was sucked out, the lower 1.5 ml was recovered, and the cells were dispersed by pipetting several times. In two 15 ml tubes, from the bottom 1.5
ml of calcium containing 16% BSA, magnesium-free Hank's solution, 3 ml of calcium containing 4% BSA,
Hanks liquid without magnesium, 1.5 ml of 2% BSA
3 ml of the cell dispersion liquid was overlaid on a liquid containing calcium- and magnesium-free Hanks' liquid containing the above and left for 1 hour. 7 ml of the upper part was sucked out, leaving 2 ml of the lower part. 8 ml of IMDM was added to the remaining liquid, and the mixture was centrifuged at 60 g for 5 minutes. The number of megakaryocytes in the precipitate was measured by observing cells with a size of 20 μm or more as megakaryocytes by microscopic observation, and
IMD containing 10 μg / ml bovine insulin (Gibco) and 5 μg / ml bovine holotype transferrin (Gibco) to give 000 megakaryocytes / ml
It was dispersed in M medium and used as a megakaryocyte dispersion.

【0028】培養用96穴プレート(日本国、住友ベー
クライト社製)に、前記巨核球分散液100μlずつを
分注し、被験体10μlを添加した。また、陰性対照と
して被験体を添加しない無添加試験群も設けた。このプ
レートを、2日間培養後、プレートの各穴の巨核球を顕
微鏡下で観察して、胞体突起形成を起こした巨核球数を
測定し、陰性対照の胞体突起形成を起こした巨核球数
と、被験体を添加したときの胞体突起形成を起こした巨
核球数を比較し、試料の胞体突起形成能を測定した。活
性の強さは陰性対照の胞体突起形成巨核球数を100%
としてその比率で表した。
100 μl of the megakaryocyte dispersion was dispensed into a 96-well plate for culture (Sumitomo Bakelite Co., Ltd., Japan), and 10 μl of the test subject was added. Further, as a negative control, a non-addition test group to which no subject was added was also set up. After culturing this plate for 2 days, the megakaryocytes in each hole of the plate were observed under a microscope to measure the number of megakaryocytes that had undergone vesicle formation, and the number of megakaryocytes that had undergone vesicle formation was used as a negative control. , The number of megakaryocytes that had undergone vesicle formation when the test subject was added was compared, and the vesicle formation ability of the sample was measured. The intensity of activity is 100% of that of the negative control
The ratio is expressed as

【0029】なお、本発明の測定法の具体例として、被
験体をIL−6とした実験を行った。即ち、被験体IL
−6を、測定時の最終濃度が100ng/mlとなるよ
うに添加したとき、その胞体突起形成の活性の強さは1
68%であった。また、IL−6の最終濃度が10ng
/ml、1ng/mlとなるように添加したとき、その
活性の強さはそれぞれ133%、102%であり、少な
くとも10ng/ml以上の濃度において、測定が十分
に可能であることが確認された。
As a specific example of the measuring method of the present invention, an experiment was conducted in which the subject was IL-6. That is, the subject IL
When -6 was added so that the final concentration at the time of measurement would be 100 ng / ml, the strength of the activity of ER formation was 1
68%. Moreover, the final concentration of IL-6 is 10 ng.
/ Ml and 1 ng / ml were added so that their activity intensities were 133% and 102%, respectively, and it was confirmed that the measurement was sufficiently possible at a concentration of at least 10 ng / ml or more. .

【図面の簡単な説明】[Brief description of drawings]

【図1】 各濃度のmplリガンドにより誘導された巨
核球数を示した図である。
FIG. 1 is a diagram showing the number of megakaryocytes induced by each concentration of mpl ligand.

【図2】 各濃度のmplリガンドにより誘導された巨
核球の胞体突起形成能を示した図である。
FIG. 2 is a diagram showing the ability of megakaryocytes to form endoplasmic reticulum formation induced by various concentrations of mpl ligand.

【図3】 各濃度のmplリガンドにより誘導された巨
核球を用いた時のIL−6により胞体突起形成を起こし
た巨核球の増加数を示した図である。
FIG. 3 is a diagram showing the increased number of megakaryocytes that have undergone the formation of endoplasmic reticulum by IL-6 when using megakaryocytes induced by each concentration of mpl ligand.

Claims (8)

【特許請求の範囲】[Claims] 【請求項1】 骨髄細胞を、0.01〜1ng/mlの
mplリガンドを含有する培地にて培養することを特徴
とする巨核球の製造法。
1. A method for producing megakaryocytes, which comprises culturing bone marrow cells in a medium containing 0.01 to 1 ng / ml of mpl ligand.
【請求項2】 骨髄細胞を、0.01〜1ng/mlの
mplリガンドを含有する無血清培地にて培養すること
を特徴とする胞体突起形成は可能であるが、そのままで
は実質的に胞体突起形成を起こさない巨核球の製造法。
2. Bone marrow cells are cultivated in a serum-free medium containing 0.01 to 1 ng / ml of an mpl ligand, and vesicle formation is possible, but the vesicle projections are substantially formed as they are. A method for producing megakaryocytes that does not cause formation.
【請求項3】 (a) 骨髄細胞を、0.01〜1ng/m
lのmplリガンドを含有する無血清培地にて培養する
工程、(b) 該工程により調製された巨核球を分離する工
程、(c) 分離された巨核球を、被験体と接触せしめると
ともに、mplリガンドを含有しない無血清培地にて培
養する工程、(d) 胞体突起形成を起こした巨核球を検出
する工程、を含むことを特徴とする被験体の巨核球胞体
突起形成活性の測定法。
3. (a) 0.01-1 ng / m 2 of bone marrow cells
culturing in a serum-free medium containing 1 mpl ligand, (b) separating the megakaryocytes prepared by the step, (c) contacting the separated megakaryocytes with a subject, and mpl A method for measuring megakaryocyte projection activity of a subject, comprising the step of culturing in a serum-free medium containing no ligand, and (d) detecting megakaryocytes that have undergone formation of cell projections.
【請求項4】 (a) 骨髄細胞を、0.01〜1ng/m
lのmplリガンドを含有する無血清培地にて培養する
工程、(b) 該工程により調製された巨核球を分離する工
程、(c) 分離された巨核球を、被験体と接触せしめると
ともに、mplリガンドを含有しない無血清培地にて培
養する工程、(d) 胞体突起形成を起こした巨核球を検出
する工程、を含むことを特徴とする被験体中の巨核球胞
体突起形成活性を有する物質を選択する方法。
4. (a) The bone marrow cells are added in an amount of 0.01 to 1 ng / m 2.
culturing in a serum-free medium containing 1 mpl ligand, (b) separating the megakaryocytes prepared by the step, (c) contacting the separated megakaryocytes with a subject, and mpl A step of culturing in a serum-free medium containing no ligand, (d) a step of detecting megakaryocytes that have undergone vesicle formation, and a substance having megakaryocyte projection forming activity in a subject, which comprises How to choose.
【請求項5】 (a) 骨髄細胞を、0.01〜1ng/m
lのmplリガンドを含有する無血清培地にて培養する
工程、(b) 該工程により調製された巨核球を分離する工
程、(c) 分離された巨核球を、胞体突起形成を起こす因
子および被験体と接触せしめるとともに、mplリガン
ドを含有しない無血清培地にて培養する工程、(d) 胞体
突起形成を起こした巨核球を検出する工程、を含むこと
を特徴とする被験体中の巨核球胞体突起形成阻害活性を
有する物質を選択する方法。
5. (a) The bone marrow cells are added in an amount of 0.01 to 1 ng / m 2.
1) a step of culturing in a serum-free medium containing mpl ligand, (b) a step of separating the megakaryocytes prepared in the step, (c) a step of culturing the separated megakaryocytes and a factor which causes the formation of oocysts Megakaryocyte vesicles in a subject, which comprises a step of contacting with a body and culturing in a serum-free medium containing no mpl ligand, and (d) a step of detecting megakaryocytes that have undergone vesicle formation A method for selecting a substance having a protrusion formation inhibiting activity.
【請求項6】 (a) 骨髄細胞を、0.01〜1ng/m
lのmplリガンドを含有する無血清または血清培地に
て培養する工程、(b) 該工程により調製された巨核球を
分離する工程、(c) 分離された巨核球を、mplリガン
ドを含有しない無血清培地にて培養する工程、(d) 胞体
突起形成を起こした巨核球を検出する工程、を含むこと
を特徴とする該骨髄細胞の血小板産生能レベルの測定
法。
6. (a) The bone marrow cells are added in an amount of 0.01 to 1 ng / m 2.
culturing in a serum-free or serum medium containing 1 mpl ligand, (b) separating the megakaryocytes prepared in the step, (c) separating the megakaryocytes without mpl ligand A method for measuring the level of platelet production of said bone marrow cells, comprising the step of culturing in a serum medium and (d) detecting megakaryocytes that have undergone formation of endoplasmic reticulum.
【請求項7】 請求項3〜6のいずれかに記載された
(a) 工程における培養日数が2または3日である、請求
項3〜6のいずれかに記載の巨核球胞体突起形成活性の
測定法、巨核球胞体突起形成活性を有する物質を選択す
る方法、巨核球胞体突起形成阻害活性を有する物質を選
択する方法、または血小板産生能レベルの測定法。
7. The method according to any one of claims 3 to 6.
(a) The number of days of culturing in the step is 2 or 3 days, the method for measuring megakaryocyte projection process forming activity according to any one of claims 3 to 6, the method for selecting a substance having megakaryocyte projection process forming activity, A method for selecting a substance having a megakaryoblastic process formation inhibitory activity, or a method for measuring a platelet production level.
【請求項8】 請求項3〜6のいずれかに記載された
(c) 工程における培養日数が1または2日である、請求
項3〜6のいずれかに記載の巨核球胞体突起形成活性の
測定法、巨核球胞体突起形成活性を有する物質を選択す
る方法、巨核球胞体突起形成阻害活性を有する物質を選
択する方法、または血小板産生能レベルの測定法。
8. The method according to any one of claims 3 to 6.
(c) The number of days of culture in the step is 1 or 2 days, the method for measuring megakaryocyte projection process activity according to any one of claims 3 to 6, the method for selecting a substance having megakaryocyte process projection activity, A method for selecting a substance having a megakaryoblastic process formation inhibitory activity, or a method for measuring a platelet production level.
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Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2011142457A1 (en) 2010-05-14 2011-11-17 国立大学法人熊本大学 Screening method for substance having hemocyte maturation acceleration action

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* Cited by examiner, † Cited by third party
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WO2011142457A1 (en) 2010-05-14 2011-11-17 国立大学法人熊本大学 Screening method for substance having hemocyte maturation acceleration action

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