JPH09304392A - Manufacture of immunological syphilis diagnostic reagent - Google Patents

Manufacture of immunological syphilis diagnostic reagent

Info

Publication number
JPH09304392A
JPH09304392A JP11752796A JP11752796A JPH09304392A JP H09304392 A JPH09304392 A JP H09304392A JP 11752796 A JP11752796 A JP 11752796A JP 11752796 A JP11752796 A JP 11752796A JP H09304392 A JPH09304392 A JP H09304392A
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
surface antigen
kda
antigen
treponema pallidum
syphilis
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Withdrawn
Application number
JP11752796A
Other languages
Japanese (ja)
Inventor
Katsumi Yoshikawa
勝己 吉川
Tetsuya Ota
哲也 大田
Yoshitaka Izumoto
義隆 伊豆本
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Sekisui Chemical Co Ltd
Original Assignee
Sekisui Chemical Co Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Sekisui Chemical Co Ltd filed Critical Sekisui Chemical Co Ltd
Priority to JP11752796A priority Critical patent/JPH09304392A/en
Publication of JPH09304392A publication Critical patent/JPH09304392A/en
Withdrawn legal-status Critical Current

Links

Landscapes

  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)

Abstract

PROBLEM TO BE SOLVED: To provide a method for manufacturing an immunological syphilis diagnostic reagent, that utilizes a surface antigen protein of syphilis treponema which can be massproduced, has stable antigen activity, and is obtained using gene recombination techniques, and that provides sensitivity usable for practical purposes. SOLUTION: This manufacturing method comprises mixing a treponema palladium surface antigen protein (e.g. treponema pallidum surface antigen proteins with molecular weights of 47, 17, and 15 kDa), obtained using gene recombination techniques, with an insoluble carrier (e.g. microplate) within a solvent containing divalent metal ions (e.g. magnesium or calcium ions), and thereby causing the insoluble carrier to carry the surface antigen protein.

Description

【発明の詳細な説明】Detailed Description of the Invention

【0001】[0001]

【発明の属する技術分野】本発明は、梅毒トレポネーマ
表面抗原蛋白質が担持された不溶性担体を利用して、抗
梅毒トレポネーマ抗体との抗原抗体反応に基づいて同抗
体を測定する免疫学的梅毒診断試薬の製造方法に関す
る。
TECHNICAL FIELD The present invention relates to an immunological syphilis diagnostic reagent for measuring the antibody based on the antigen-antibody reaction with an anti- Treponema pallidum antibody using an insoluble carrier carrying the Treponema pallidum surface antigen protein. Manufacturing method.

【0002】[0002]

【従来の技術】梅毒は梅毒トレポネーマ(Treponema Pa
llidum)により引き起こされる感染症であり、梅毒に感
染しているか否かは、血液中の抗梅毒トレポネーマ抗体
の存在により判断される。梅毒診断の臨床検査におい
て、従来より、梅毒トレポネーマ抗原を不溶性担体に担
持させ、抗梅毒トレポネーマ抗体との抗原抗体反応によ
り生じた不溶性担体の凝集の度合いを検出する方法、又
は梅毒トレポネーマ抗原を担持したプラスチック製マイ
クロプレートなどを用い、抗梅毒トレポネーマ抗体との
抗原抗体反応により生じた反応生成物に酵素標識第二抗
体を反応させ、反応物の酵素活性の程度を測定すること
により、抗梅毒トレポネーマ抗体を定量する酵素免疫測
定法などが用いられてきた。
2. Description of the Related Art Syphilis is Treponema pallidum (Treponema Pa).
llidum) is an infectious disease caused by syphilis, and it is judged by the presence of anti- Treponema pallidum antibody in the blood. In the clinical test of syphilis diagnosis, conventionally, a method of supporting the syphilis treponemal antigen on an insoluble carrier and detecting the degree of aggregation of the insoluble carrier generated by an antigen-antibody reaction with an anti-syphilis treponemal antibody, or a syphilis treponemal antigen was carried. Anti-syphilis treponemal antibody is obtained by reacting the reaction product generated by the antigen-antibody reaction with the anti- Treponema pallidum antibody with the enzyme-labeled second antibody using a plastic microplate and measuring the degree of enzyme activity of the reaction product. Enzyme immunoassays and the like have been used to quantify the.

【0003】従来、これらの方法に用いられる梅毒トレ
ポネーマ抗原は梅毒菌体から抽出されたものが用いられ
ていた(特開平2−234063号公報)。しかし、梅
毒菌体はin vitroでの培養が現在の技術では不可能であ
り、in vivo であってもウサギ睾丸中での培養のみ可能
であるため、大量の抗原を得ることが困難であった。ま
た、ウサギの体調や菌体からの精製過程も煩雑であるこ
と等、不安定な要素が多く、精製毎に診断試薬作成に必
要な抗原活性があるものが得られるとは限らなかった。
Conventionally, the Treponema pallidum antigen used in these methods has been extracted from syphilis cells (Japanese Patent Laid-Open No. 2-234063). However, in vitro culture of S. syphilis is impossible with current technology, and even in vivo, it is only possible to culture in rabbit testes, making it difficult to obtain a large amount of antigen. . In addition, there are many unstable factors such as the condition of rabbits and the complicated purification process from bacterial cells, and it is not always possible to obtain the one having the antigenic activity necessary for preparing a diagnostic reagent for each purification.

【0004】一方、梅毒トレポネーマの表面抗原蛋白質
には種々の分子量のものが存在することが知られてお
り、その抗原抗体反応において主要なものとしては、分
子量が47kDaの梅毒トレポネーマ表面抗原蛋白質
(以下、47kDa抗原という場合がある)、17kD
aの梅毒トレポネーマ表面抗原蛋白質(以下、17kD
a抗原という場合がある)、15kDaの梅毒トレポネ
ーマ表面抗原蛋白質(以下、15kDa抗原という場合
がある)などが知られている。これらの表面抗原蛋白質
をコードする遺伝子はすでにクローニングされ、アミノ
酸配列も決定されているので、遺伝子組換え手法を用い
てこれらの表面抗原蛋白質を生産することが可能である
(Infection and Immunity 57(1),196-203(1989)。Infe
ction and Immunity 61,1202-1210(1993) 。Molecular
Microbiology 4,1371-1379(1990)) 。これらの3種類の
表面抗原蛋白質のアミノ酸配列はそれぞれ異なってお
り、それぞれ全く別の蛋白質である。
On the other hand, it is known that there are various molecular weight surface antigen proteins of Treponema pallidum, and the major one in the antigen-antibody reaction is a surface antigen protein of Treponema pallidum with a molecular weight of 47 kDa (hereinafter , 47kDa antigen), 17kD
a. Treponema pallidum surface antigen protein (hereinafter, 17 kD)
a) antigen, 15 kDa syphilis treponemal surface antigen protein (hereinafter sometimes referred to as 15 kDa antigen), etc. are known. Since the genes encoding these surface antigen proteins have already been cloned and their amino acid sequences have been determined, it is possible to produce these surface antigen proteins using gene recombination techniques (Infection and Immunity 57 (1 ), 196-203 (1989). Infe
ction and Immunity 61, 1202-1210 (1993). Molecular
Microbiology 4,1371-1379 (1990)). The amino acid sequences of these three types of surface antigen proteins are different, and they are completely different proteins.

【0005】梅毒トレポネーマ表面抗原蛋白質の遺伝子
組換え手法を用いた生産方法は、特表昭59−5021
31号公報、特表平2−500403号公報などに提案
される(このうち、特表平2−500403号公報に
は、47kDa抗原の生産方法が記載されている)とと
もに、得られた抗原蛋白質を用いて抗梅毒トレポネーマ
抗体を検出する方法も提案されている。この方法を使用
すれば、梅毒トレポネーマ抗原を大量に、且つ安定的に
得ることが可能と考えられる。しかし、特表昭59−5
02131号公報、特表平2−500403号公報に
は、得られた抗原蛋白質を用いて抗梅毒トレポネーマ抗
体を検出する方法の詳細については、記載されていな
い。
The production method of Treponema pallidum surface antigen protein using the gene recombination technique is described in Japanese Patent Publication No. 59-5021.
No. 31, Japanese Patent Publication No. 2-500403, etc. (of which, the Japanese Patent Publication No. 2-500403 discloses a method for producing a 47 kDa antigen), and the obtained antigenic protein A method for detecting an anti- Treponema pallidum antibody using the same has also been proposed. By using this method, it is considered possible to stably obtain a large amount of Treponema pallidum antigen. However, the special table Sho 59-5
No. 02131 and Japanese Patent Publication No. 2-500403 do not describe details of a method for detecting an anti- Treponema pallidum antibody using the obtained antigenic protein.

【0006】また、今日まで、遺伝子組換え手法を用い
て得られた梅毒トレポネーマ表面抗原蛋白質を用いた、
実用的に使用可能な免疫学的梅毒診断試薬も報告されて
いない。この理由としては、測定の感度不足、及び特異
性が従来の免疫学的梅毒診断試薬のものと一致しないな
どが考えられるが、感度不足が大きな原因と推定され
る。
[0006] In addition, to date, using the Treponema pallidum surface antigen protein obtained by the gene recombination technique,
No practical immunological syphilis diagnostic reagent has been reported. Possible reasons for this are that the sensitivity of the measurement is insufficient and that the specificity does not match that of the conventional immunological syphilis diagnostic reagent, but the lack of sensitivity is presumed to be the major cause.

【0007】また、特開平7−287017号公報に
は、遺伝子組換え手法を用いてグルタチオン−S−トラ
ンスフェラーゼと17kDa抗原の融合タンパク質、お
よびグルタチオン−S−トランスフェラーゼと15kD
a抗原の融合タンパク質を生産し、それらを用いて、抗
梅毒トレポネーマ抗体を測定する診断試薬が開示されて
いる。しかしながら、この試薬は、グルタチオン−S−
トランスフェラーゼを結合しているため、純粋な梅毒ト
レポネーマ表面抗原蛋白質とは言いがたく、また、グル
タチオン−S−トランスフェラーゼが試薬の反応系に存
在することになり、検体への悪影響も懸念される。
Further, in Japanese Patent Laid-Open No. 7-287017, a fusion protein of glutathione-S-transferase and 17 kDa antigen, and glutathione-S-transferase and 15 kDa are used by a gene recombination technique.
A diagnostic reagent for producing a fusion protein of a antigen and measuring anti- Treponema pallidum antibody using them is disclosed. However, this reagent is not suitable for glutathione-S-
Since it is bound to transferase, it cannot be said to be a pure Treponema pallidum surface antigen protein, and glutathione-S-transferase is present in the reaction system of the reagent, which may cause adverse effects on the sample.

【0008】[0008]

【発明が解決しようとする課題】本発明は、上記問題点
を解決するものであり、その目的は、大量生産可能で、
安定した抗原活性を持つ、遺伝子組換え手法を用いて得
られた梅毒トレポネーマの表面抗原蛋白質を使用し、実
用上、使用可能な感度が得られる免疫学的梅毒診断試薬
の製造方法を提供することである。
SUMMARY OF THE INVENTION The present invention has been made to solve the above-mentioned problems, and its object is to enable mass production.
To provide a method for producing an immunological syphilis diagnostic reagent, which has a stable antigenic activity and uses a surface antigen protein of Treponema pallidum obtained by a gene recombination technique and which has practically usable sensitivity. Is.

【0009】[0009]

【課題を解決するための手段】本発明の免疫学的梅毒診
断試薬の製造方法は、遺伝子組換え手法を用いて得られ
た梅毒トレポネーマ表面抗原蛋白質と不溶性担体を、2
価の金属イオンを含有する溶媒中で混合することによ
り、該表面抗原蛋白質を該不溶性担体に担持させること
を特徴とする。
The method for producing an immunological syphilis diagnostic reagent of the present invention comprises the steps of using a T. syphilis surface antigen protein obtained by a gene recombination technique and an insoluble carrier.
It is characterized in that the surface antigen protein is supported on the insoluble carrier by mixing in a solvent containing a valent metal ion.

【0010】本発明に用いられる梅毒トレポネーマ表面
抗原蛋白質は、遺伝子組換え手法を用いて得られた、梅
毒トレポネーマ表面抗原蛋白質であれば、特に限定され
ないが、例えば、分子量47kDaの梅毒トレポネーマ
表面抗原蛋白質、44kDaの梅毒トレポネーマ表面抗
原蛋白質(Journal of Genetical Microbiology 133,17
93-1803(1987))、42kDaの梅毒トレポネーマ表面抗
原蛋白質(Infectionand Immunity 57(9),2612-2623(19
89)) 、35kDaの梅毒トレポネーマ表面抗原蛋白質
(Infection and Immunity 59(10),3536-3546(1991))、
34kDaの梅毒トレポネーマ表面抗原蛋白質(Infect
ion and Immunity 57(11),3314-3323(1989))、17kD
aの梅毒トレポネーマ表面抗原蛋白質、15kDaの梅
毒トレポネーマ表面抗原蛋白質などが挙げられ、梅毒ト
レポネーマの主要な表面抗原蛋白質と考えられている4
7kDaの表面抗原蛋白質、17kDaの表面抗原蛋白
質および15kDaの表面抗原蛋白質からなる群より選
ばれる少なくとも一種であるのが好ましい。
The syphilis treponemal surface antigen protein used in the present invention is not particularly limited as long as it is a syphilis treponemal surface antigen protein obtained by a gene recombination technique. For example, syphilis treponemal surface antigen protein having a molecular weight of 47 kDa. , 44kDa Treponema pallidum surface antigen protein (Journal of Genetical Microbiology 133,17
93-1803 (1987)), 42 kDa Treponema pallidum surface antigen protein (Infectionand Immunity 57 (9), 2612-623 (19)
89)), 35 kDa Treponema pallidum surface antigen protein (Infection and Immunity 59 (10), 3536-3546 (1991)),
34 kDa Treponema pallidum surface antigen protein (Infect
ion and Immunity 57 (11), 3314-3323 (1989)), 17kD
T. pallidum surface antigen protein of 15a and 15kDa trepidoma pallidum surface antigen protein, etc., which are considered to be major surface antigen proteins of T. pallidum 4
It is preferably at least one selected from the group consisting of a 7 kDa surface antigen protein, a 17 kDa surface antigen protein and a 15 kDa surface antigen protein.

【0011】本発明に用いられる梅毒トレポネーマ表面
抗原蛋白質は、遺伝子組換え手法を用いて得られたもの
に限定されるが、梅毒菌体遺伝子からクローニングされ
たものであれば、そのクローニング法はどのような方法
でもよい。梅毒トレポネーマの表面抗原蛋白質を得るた
めの方法の例を47kDa抗原の場合を例として挙げる
と、47kDa抗原のDNA配列は、前述のように公知
であるので、例えば、PCR法により47kDa抗原に
対するDNAを増幅、精製し、これを適当な発現ベクタ
ーに組み込む。このベクターを大腸菌に導入し、大腸菌
に大量生産させる方法が挙げられる。大腸菌から効率よ
く47kDa抗原を精製するには、ベクターとして特公
平6−81596号公報に記載されているようなグルタ
チオン−S−トランスフェラーゼ(以下、GSTとい
う)遺伝子を含むものを用いるのが好ましい。この方法
を用いる場合は、GST遺伝子の後に47kDa抗原遺
伝子を挿入し、大腸菌にGSTと47kDa抗原の融合
タンパク質として生産させる。十分に生産させた後、菌
体を破壊し、リゼイドを固定グルタチオンカラムと接触
させることにより融合タンパク質を分離する。次いで、
この融合タンパク質を開裂させて47kDa抗原を得
る。他の梅毒トレポネーマの表面抗原蛋白質を得るに
は、上記の47kDa抗原に対するDNAの代わりに、
それぞれの所望の分子量の抗原に対するDNAとするこ
とにより、同様にして所望の分子量の抗原を得ることが
できる。
The Treponema pallidum surface antigen protein used in the present invention is limited to those obtained by gene recombination techniques, but any cloning method can be used as long as it is cloned from the gene of S. syphilis. Such a method may be used. As an example of the method for obtaining the surface antigen protein of Treponema pallidum, in the case of the 47 kDa antigen, the DNA sequence of the 47 kDa antigen is known as described above. Amplify, purify, and incorporate this into an appropriate expression vector. A method of introducing this vector into Escherichia coli and causing Escherichia coli to mass-produce it is mentioned. In order to efficiently purify the 47 kDa antigen from Escherichia coli, it is preferable to use a vector containing a glutathione-S-transferase (hereinafter, referred to as GST) gene as described in Japanese Patent Publication No. 6-81596. When this method is used, the 47 kDa antigen gene is inserted after the GST gene, and E. coli is produced as a fusion protein of GST and the 47 kDa antigen. After sufficient production, the bacterial cells are destroyed, and the fusion protein is separated by contacting the lysoid with a fixed glutathione column. Then
Cleavage of this fusion protein yields the 47 kDa antigen. To obtain the surface antigen protein of other Treponema pallidum, instead of the DNA for the 47 kDa antigen described above,
An antigen having a desired molecular weight can be obtained in the same manner by using a DNA for each antigen having a desired molecular weight.

【0012】本発明に用いられる不溶性担体としては、
例えば、プラスチック製マイクロプレート、ガラスファ
イバー、有機高分子粒子、微生物、血球、細胞膜片等が
挙げられる。
The insoluble carrier used in the present invention includes
Examples thereof include plastic microplates, glass fibers, organic polymer particles, microorganisms, blood cells, cell membrane pieces and the like.

【0013】上記有機高分子粒子としては、例えば、不
溶性アガロース、セルロース、不溶性デキストラン等の
天然高分子粒子;ポリスチレン、スチレン−メタクリル
酸共重合体、スチレン−スチレンスルホン酸塩共重合
体、アクリロニトリル−ブタジエン−スチレン共重合
体、塩化ビニル−アクリル酸エステル共重合体、酢酸ビ
ニル−アクリル酸エステル共重合体等の合成高分子粒子
等が挙げられ、特に合成高分子粒子を均一に懸濁させた
ラテックスが好ましい。
Examples of the organic polymer particles include natural polymer particles such as insoluble agarose, cellulose and insoluble dextran; polystyrene, styrene-methacrylic acid copolymer, styrene-styrene sulfonate copolymer, acrylonitrile-butadiene. -Styrene copolymers, vinyl chloride-acrylic acid ester copolymers, vinyl acetate-acrylic acid ester copolymers and the like synthetic polymer particles and the like can be mentioned, especially latex in which synthetic polymer particles are uniformly suspended. preferable.

【0014】本発明の免疫学的梅毒診断試薬の製造方法
は、上記の梅毒トレポネーマ表面抗原蛋白質と不溶性担
体を、2価の金属イオンを含有する溶媒中で混合するこ
とにより、該表面抗原蛋白質を該不溶性担体に担持させ
る。
The method for producing an immunological syphilis diagnostic reagent of the present invention comprises mixing the above surface antigen protein of Treponema pallidum with an insoluble carrier in a solvent containing a divalent metal ion to form the surface antigen protein. It is supported on the insoluble carrier.

【0015】上記の2価の金属イオンとしては、例え
ば、マグネシウムイオン、カルシウムイオン、亜鉛イオ
ン等が挙げられるが、特に、マグネシウムイオン又はカ
ルシウムイオンが好ましい。また、これらは、通常、塩
化物として、すなわち、MgCl2 、CaCl2 、Zn
Cl2 として用いられる。MgCl2 、CaCl2 、Z
nCl2 などは、種々の方法により製造できるが、市販
品を使用してもよい。
Examples of the above-mentioned divalent metal ion include magnesium ion, calcium ion, zinc ion and the like, with magnesium ion or calcium ion being particularly preferred. Also, these are usually chlorides, ie MgCl 2 , CaCl 2 , Zn.
Used as Cl 2 . MgCl 2 , CaCl 2 , Z
Although nCl 2 and the like can be produced by various methods, commercially available products may be used.

【0016】上記金属イオンを溶解する溶媒としては、
通常、水、特にトリス緩衝液、グリシン緩衝液、ベロナ
ール緩衝液、ホウ酸緩衝液のような緩衝液が好ましい。
As a solvent for dissolving the above metal ions,
Usually, water, especially buffers such as Tris buffer, glycine buffer, veronal buffer, borate buffer are preferred.

【0017】上記の梅毒トレポネーマ表面抗原蛋白質と
不溶性担体を、2価の金属イオンを含有する溶媒中で混
合する際の、2価の金属イオンの濃度は、低くなると得
られる診断試薬の感度が十分に高くならず、高くなると
金属イオンが梅毒トレポネーマの表面抗原蛋白質に何ら
かの影響を及ぼし感度が十分に高くならなくなるので、
0.1〜300mmol/lが好ましく、1〜50mm
ol/lがより好ましい。
When the above-mentioned Treponema pallidum surface antigen protein and the insoluble carrier are mixed in a solvent containing a divalent metal ion, if the concentration of the divalent metal ion is low, the sensitivity of the obtained diagnostic reagent is sufficient. If not, the metal ion will have some effect on the surface antigen protein of Treponema pallidum and the sensitivity will not be sufficiently high.
0.1-300 mmol / l is preferable, 1-50 mm
ol / l is more preferred.

【0018】本発明において、梅毒トレポネーマ表面抗
原蛋白質が不溶性担体に担持される機構は物理吸着によ
る。梅毒トレポネーマ表面抗原蛋白質と上記不溶性担体
とを2価の金属イオンを含有する溶媒中で混合すると、
該表面抗原蛋白質と不溶性担体の荷電により容易に吸着
が起こる。この吸着反応の反応温度は、低くなると十分
に反応が進行しなくなり、高くなると表面抗原蛋白質が
変性し抗原性を失う恐れがあるので、0℃〜50℃が好
ましい。この吸着反応時のpHは、低くなっても高くな
っても、表面抗原蛋白質が変性し抗原性を失う恐れがあ
るので、4〜10が好ましい。
In the present invention, the mechanism by which the Treponema pallidum surface antigen protein is carried on the insoluble carrier is by physical adsorption. When Treponema pallidum surface antigen protein and the above insoluble carrier are mixed in a solvent containing a divalent metal ion,
Adsorption easily occurs due to the charge of the surface antigen protein and the insoluble carrier. The reaction temperature of this adsorption reaction is preferably 0 ° C to 50 ° C because if the reaction temperature becomes low, the reaction will not proceed sufficiently, and if it becomes high, the surface antigen protein may be denatured and lose its antigenicity. Whether the pH during the adsorption reaction is low or high, the surface antigen protein may be denatured and lose its antigenicity, so that it is preferably 4 to 10.

【0019】本発明の製造方法において、2価の金属イ
オンは該表面抗原蛋白質と不溶性担体を混合する際の溶
媒中に存在しておればよく、例えば、予め、該表面抗原
蛋白質溶液に含有させておく方法、混合時に使用される
緩衝液中に含有させておく方法、などが挙げられる。
In the production method of the present invention, the divalent metal ion may be present in the solvent for mixing the surface antigen protein and the insoluble carrier. For example, the divalent metal ion may be contained in the surface antigen protein solution in advance. And a method of containing it in a buffer solution used at the time of mixing.

【0020】本発明によって得られる免疫学的梅毒診断
試薬を用いて、検体中の抗梅毒トレポネーマ抗体を測定
する方法は、検体と本発明の試薬を混合することによ
り、不溶性担体に担持された梅毒トレポネーマの表面抗
原蛋白質と検体中の抗梅毒トレポネーマ抗体とを反応さ
せて抗原抗体複合体を生じさせる。次に、この抗原抗体
複合体に酵素標識抗ヒトグロブリン抗体を結合させ、次
いで、その酵素により分解する発色基質を添加し、結合
された酵素標識抗ヒトグロブリン抗体の量を、その発色
の程度から測定する。この発色の程度が検体中の抗梅毒
トレポネーマ抗体量に相関することから、該抗体量を測
定できる。
The method for measuring anti- Treponema pallidum antibody in a sample using the immunological syphilis diagnostic reagent obtained according to the present invention comprises the steps of mixing the sample with the reagent of the present invention to prepare syphilis carried on an insoluble carrier. An antigen-antibody complex is produced by reacting the surface antigen protein of treponemal with the anti-syphilis treponemal antibody in the sample. Next, an enzyme-labeled anti-human globulin antibody is bound to this antigen-antibody complex, then a chromogenic substrate that is decomposed by the enzyme is added, and the amount of the bound enzyme-labeled anti-human globulin antibody is changed according to the degree of color development. taking measurement. Since the degree of this color development correlates with the amount of anti- Treponema pallidum antibody in the sample, the amount of the antibody can be measured.

【0021】なお、上記測定の酵素は抗ヒトグロブリン
抗体に結合できるものであればいずれでもよく、また、
発色基質は結合酵素により分解し、その量を測定できる
ものであればいずれでもよい。また、酵素に代わるもの
としては、例えば、ビオチン・アビジンなどが挙げられ
るが、抗ヒトグロブリン抗体に結合でき、かつ結合した
ものを定量できるものであれば、いずれでもよい。
Any enzyme can be used as the above-mentioned assay as long as it can bind to the anti-human globulin antibody.
Any chromogenic substrate may be used as long as it can be decomposed by a binding enzyme and the amount thereof can be measured. Examples of the substitute for the enzyme include biotin and avidin, but any substance can be used as long as it can bind to the anti-human globulin antibody and can quantify the bound substance.

【0022】上記測定方法の具体的な一例を説明する
と、まず、マイクロプレートに梅毒トレポネーマの表面
抗原蛋白質を物理吸着させた後、抗梅毒トレポネーマ抗
体を含む検体を添加し、上記抗原蛋白質と結合させる。
次に、パーオキシダーゼ(以下、PODという)標識抗
ヒトグロブリン抗体を結合させ、結合した標識抗ヒトグ
ロブリン抗体のPODの活性を、その発色基質であるo
−フェニレンジアミンの分解量を比色法により測定し、
結合している標識抗体量、言い換えれば、検体中の抗梅
毒トレポネーマ抗体量を測定する。
Explaining a concrete example of the above-mentioned measuring method, first, the surface antigen protein of Treponema pallidum is physically adsorbed on a microplate, and then a sample containing an anti- Treponema pallidum antibody is added to bind to the antigen protein. .
Next, peroxidase (hereinafter, referred to as POD) labeled anti-human globulin antibody is bound, and the POD activity of the bound labeled anti-human globulin antibody is determined as the chromogenic substrate o.
Measuring the amount of decomposition of phenylenediamine by a colorimetric method,
The amount of labeled antibody bound, in other words, the amount of anti-syphilis treponemal antibody in the sample is measured.

【0023】この免疫測定法において、抗原抗体反応の
条件は通常の場合と同様であり、反応媒体としては、各
種緩衝液が用いられる。この緩衝液は、被検物質を失活
させることなく、かつ、抗原抗体反応を阻害しないよう
なイオン強度やpHを有するものであればよい。例え
ば、グリシン緩衝液、トリス緩衝液などが使用される。
反応時のpHは、4〜10が好ましく、6〜8がより好
ましい。反応温度は10〜50℃が好ましく、15〜4
5℃がより好ましい。
In this immunoassay, the conditions of the antigen-antibody reaction are the same as in the usual case, and various buffers are used as the reaction medium. The buffer may have any ionic strength or pH that does not deactivate the test substance and does not inhibit the antigen-antibody reaction. For example, glycine buffer, Tris buffer, etc. are used.
The pH during the reaction is preferably 4 to 10, more preferably 6 to 8. The reaction temperature is preferably 10 to 50 ° C., and 15 to 4
5 ° C is more preferable.

【0024】[0024]

【発明の実施の形態】本発明を実施例につき述べ、その
効果を具体的に説明する。 参考例1 47kDa抗原の調製 (1)発現ベクターの調製 トレポネーマパリダム(Treponema Pallidum)継代ウサ
ギ睾丸の破砕物(常磐化学社製)より、トレポネーマパ
リダム菌体を抽出し、ゲノムDNAを抽出した。すでに
47kDa抗原のDNA配列は既知であるので、それを
もとにDNA合成装置を用いてプライマーを作成した。
前記で抽出されたゲノムDNAを鋳型とし、上記のプラ
イマーを用いて、PCR法により47kDa抗原のDN
A断片を得た。次に、GSTとの融合タンパク質を発現
するために作られたベクターpGEX−4T−3(ファ
ルマシア社製)に、上記のDNA断片を挿入し、pGE
X−4T−3−47kと命名した。
DESCRIPTION OF THE PREFERRED EMBODIMENTS The present invention will be described with reference to embodiments, and its effects will be specifically described. Reference Example 1 Preparation of 47 kDa Antigen (1) Preparation of Expression Vector Treponema pallidum (Treponema Pallidum) From the crushed rabbit testicles (manufactured by Joban Kagaku), Treponema pallidum cells were extracted and genomic DNA was extracted. . Since the DNA sequence of the 47 kDa antigen was already known, primers were prepared based on the DNA sequence using a DNA synthesizer.
Using the genomic DNA extracted above as a template and the above primers, the DN method of the 47 kDa antigen was
A fragment was obtained. Next, the DNA fragment described above was inserted into a vector pGEX-4T-3 (manufactured by Pharmacia) for expressing a fusion protein with GST.
It was named X-4T-3-47k.

【0025】(2)47kDa抗原の製造 次に、pGEX−4T−3−47kを大腸菌に導入し、
培養した。培養液にイソプロピル−β−(−)−チオガ
ラクトピラノシドを加えることにより、47kDa抗原
とGSTの融合タンパク質の発現を誘導した。十分に融
合タンパク質が発現した大腸菌を超音波処理により菌体
を破砕し、遠心分離により細胞膜、核などを除いた上清
に、グルタチオンセファロース4B(ファルマシア社
製)を加え、一晩放置し、融合タンパク質をグルタチオ
ンセファロース4Bに吸着させた。遠心分離により融合
タンパク質が吸着したグルタチオンセファロース4Bを
回収し、これをカラムに充填した。数回洗浄の後、グル
タチオン溶液を流すことにより融合タンパク質がグルタ
チオンセファロース4Bから遊離し溶出した。こうして
精製された47kDa抗原−GST融合タンパク質溶液
にトロンビン溶液を添加し、47kDa抗原とGSTの
結合を切断した。この結果、47kDa抗原、GST及
びトロンビンを含む溶液が得られた。この溶液をグルタ
チオンセファロース4Bカラムに流すことによりGST
を除去した。さらにヘパリンセファロースCL−6B
(ファルマシア社製)を充填したカラムに流すことによ
り、トロンビンを除去し、47kDa抗原を得た。
(2) Production of 47 kDa antigen Next, pGEX-4T-3-47k was introduced into E. coli,
Cultured. The expression of the fusion protein of 47 kDa antigen and GST was induced by adding isopropyl-β-(-)-thiogalactopyranoside to the culture medium. Glutathione Sepharose 4B (manufactured by Pharmacia) was added to the supernatant obtained by disrupting the cells of the E. coli expressing the fusion protein sufficiently by sonication and removing the cell membrane, nucleus, etc. by centrifugation, and allowing the mixture to stand overnight for fusion. The protein was adsorbed on glutathione Sepharose 4B. Glutathione Sepharose 4B to which the fusion protein had been adsorbed was collected by centrifugation, and packed into a column. After washing several times, the fusion protein was released and eluted from glutathione sepharose 4B by flowing a glutathione solution. A thrombin solution was added to the thus purified 47 kDa antigen-GST fusion protein solution to cleave the bond between the 47 kDa antigen and GST. As a result, a solution containing the 47 kDa antigen, GST and thrombin was obtained. GST was applied to the Glutathione Sepharose 4B column by applying this solution.
Was removed. Furthermore, heparin sepharose CL-6B
Thrombin was removed by flowing through a column packed with (Pharmacia) to obtain a 47 kDa antigen.

【0026】参考例2 15kDa抗原の調製 (1)発現ベクターの調製 トレポネーマパリダム(Treponema Pallidum)継代ウサ
ギ睾丸の破砕物(常磐化学社製)より、トレポネーマパ
リダム菌体を抽出し、ゲノムDNAを抽出した。すでに
15kDa抗原のDNA配列は既知であるので、それを
もとにDNA合成装置を用いてプライマーを作成した。
前記で抽出されたゲノムDNAを鋳型とし、上記のプラ
イマーを用いて、PCR法により15kDa抗原のDN
A断片を得た。次に、GSTとの融合タンパク質を発現
するために作られたベクターpGEX−4T−3(ファ
ルマシア社製)に、上記のDNA断片を挿入し、pGE
X−4T−3−15kと命名した。
Reference Example 2 Preparation of 15 kDa Antigen (1) Preparation of Expression Vector Treponema pallidum (Treponema Pallidum) From the crushed rabbit testicles (manufactured by Joban Kagaku), Treponema pallidum cells were extracted, and genomic DNA was extracted. Was extracted. Since the DNA sequence of the 15 kDa antigen was already known, primers were prepared based on the DNA sequence using a DNA synthesizer.
Using the genomic DNA extracted as above as a template and the above primers, the DN of 15 kDa antigen was
A fragment was obtained. Next, the DNA fragment described above was inserted into a vector pGEX-4T-3 (manufactured by Pharmacia) for expressing a fusion protein with GST.
It was named X-4T-3-15k.

【0027】(2)15kDa抗原の製造 次に、pGEX−4T−3−15kを大腸菌に導入し、
培養した。培養液にイソプロピル−β−(−)−チオガ
ラクトピラノシドを加えることにより、15kDa抗原
とGSTの融合タンパク質の発現を誘導した。十分に融
合タンパク質が発現した大腸菌を用い、参考例1の
(2)47kDa抗原の製造の説明における、47kD
a抗原という表現を、15kDa抗原という表現に置き
代える他は、参考例1の(2)47kDa抗原の製造と
同様に操作して、15kDa抗原を得た。
(2) Production of 15 kDa antigen Next, pGEX-4T-3-15k was introduced into E. coli,
Cultured. The expression of a fusion protein of 15 kDa antigen and GST was induced by adding isopropyl-β-(-)-thiogalactopyranoside to the culture medium. In Escherichia coli in which the fusion protein was sufficiently expressed, 47 kD in the explanation of (2) Production of 47 kDa antigen in Reference Example 1
A 15 kDa antigen was obtained in the same manner as in the production of (2) 47 kDa antigen in Reference Example 1 except that the expression "a antigen" was replaced with the expression "15 kDa antigen".

【0028】参考例3 17kDa抗原の調製 (1)発現ベクターの調製 トレポネーマパリダム(Treponema Pallidum)継代ウサ
ギ睾丸の破砕物(常磐化学社製)より、トレポネーマパ
リダム菌体を抽出し、ゲノムDNAを抽出した。すでに
17kDa抗原のDNA配列は既知であるので、それを
もとにDNA合成装置を用いてプライマーを作成した。
前記で抽出されたゲノムDNAを鋳型とし、上記のプラ
イマーを用いて、PCR法により17kDa抗原のDN
A断片を得た。次に、GSTとの融合タンパク質を発現
するために作られたベクターpGEX−4T−3(ファ
ルマシア社製)に、上記のDNA断片を挿入し、pGE
X−4T−3−17kと命名した。
Reference Example 3 Preparation of 17 kDa Antigen (1) Preparation of Expression Vector Treponema pallidum (Treponema Pallidum) From the crushed rabbit testicles (manufactured by Joban Kagaku), Treponema pallidum cells were extracted and genomic DNA was extracted. Was extracted. Since the DNA sequence of the 17 kDa antigen was already known, primers were prepared based on the DNA sequence using a DNA synthesizer.
Using the genomic DNA extracted as a template as a template and the above primers, the DN of 17 kDa antigen was
A fragment was obtained. Next, the DNA fragment described above was inserted into a vector pGEX-4T-3 (manufactured by Pharmacia) for expressing a fusion protein with GST.
It was named X-4T-3-17k.

【0029】(2)17kDa抗原の製造 次に、pGEX−4T−3−17kを大腸菌に導入し、
培養した。培養液にイソプロピル−β−(−)−チオガ
ラクトピラノシドを加えることにより、17kDa抗原
とGSTの融合タンパク質の発現を誘導した。十分に融
合タンパク質が発現した大腸菌を用い、参考例1の
(2)47kDa抗原の製造の説明における、47kD
a抗原という表現を、17kDa抗原という表現に置き
代える他は、参考例1の(2)と同様に操作して、17
kDa抗原を得た。
(2) Production of 17 kDa antigen Next, pGEX-4T-3-17k was introduced into E. coli,
Cultured. Expression of a fusion protein of 17 kDa antigen and GST was induced by adding isopropyl-β-(-)-thiogalactopyranoside to the culture medium. In Escherichia coli in which the fusion protein was sufficiently expressed, 47 kD in the explanation of (2) Production of 47 kDa antigen in Reference Example 1
The procedure of (2) of Reference Example 1 was repeated except that the expression "a antigen" was replaced with the expression "17 kDa antigen".
The kDa antigen was obtained.

【0030】実施例1 MgCl2 (和光純薬社製)を1.1mMの濃度で含有
する10mMトリス塩酸緩衝液(pH7.4)1.0m
lに、参考例1で得られた47kDa抗原(タンパク濃
度 1μg/ml)を0.1ml添加した(MgCl2
の最終濃度は1.0mMとなる)。この47kDa抗原
溶液0.1mlを、ポリスチレン製96穴マイクロプレ
ート(コーニング社製)のウエルに加え、25℃で2時
間放置する。その後、マイクロプレートに結合していな
い47kDa抗原溶液を除くために、10mMトリス塩
酸緩衝液(pH7.4)でウエルを3回洗浄した。次
に、ウエルに、ウシ血清アルブミン(以下、ウシ血清ア
ルブミンをBSAという)を3%(w/v)含有する1
0mMトリス塩酸緩衝液(pH7.4)を200μl添
加し、25℃で2時間放置してブロッキング(非特異的
反応を防ぐために、マイクロプレート表面にBSAを吸
着させること)を行った。次に、マイクロプレートに結
合していないBSAを除くために、10mMトリス塩酸
緩衝液(pH7.4)でウエルを3回洗浄した。このよ
うにして47kDa抗原担持マイクロプレート(免疫学
的梅毒診断試薬)を作製した。
Example 1 1.0 m of 10 mM Tris-HCl buffer (pH 7.4) containing MgCl 2 (manufactured by Wako Pure Chemical Industries, Ltd.) at a concentration of 1.1 mM
0.1 ml of the 47 kDa antigen (protein concentration: 1 μg / ml) obtained in Reference Example 1 was added to 1 (MgCl 2
Final concentration of 1.0 mM). 0.1 ml of this 47 kDa antigen solution is added to the wells of a polystyrene 96-well microplate (Corning) and left at 25 ° C. for 2 hours. Then, the wells were washed 3 times with 10 mM Tris-HCl buffer (pH 7.4) in order to remove the 47 kDa antigen solution not bound to the microplate. Next, the well contains 3% (w / v) of bovine serum albumin (hereinafter, bovine serum albumin is referred to as BSA) 1.
200 μl of 0 mM Tris-HCl buffer (pH 7.4) was added, and the mixture was allowed to stand at 25 ° C. for 2 hours for blocking (adsorption of BSA on the surface of the microplate to prevent nonspecific reaction). The wells were then washed 3 times with 10 mM Tris-HCl buffer (pH 7.4) to remove BSA that was not bound to the microplate. Thus, a 47 kDa antigen-supporting microplate (immunological syphilis diagnostic reagent) was prepared.

【0031】実施例2 実施例1における47kDa抗原の代わりに、参考例2
で調製した15kDa抗原を使用したことの他は、実施
例1と同様に操作して、15kDa抗原担持マイクロプ
レート(免疫学的梅毒診断試薬)を作製した。
Example 2 Instead of the 47 kDa antigen in Example 1, Reference Example 2
A 15-kDa antigen-supporting microplate (immunological syphilis diagnostic reagent) was prepared in the same manner as in Example 1 except that the 15-kDa antigen prepared in 1. was used.

【0032】実施例3 実施例1における47kDa抗原の代わりに、参考例3
で調製した17kDa抗原を使用したことの他は、実施
例1と同様に操作して、17kDa抗原担持マイクロプ
レート(免疫学的梅毒診断試薬)を作製した。
Example 3 Instead of the 47 kDa antigen in Example 1, reference example 3 was used.
A 17-kDa antigen-supporting microplate (immunological syphilis diagnostic reagent) was prepared in the same manner as in Example 1 except that the 17-kDa antigen prepared in 1. was used.

【0033】実施例4 実施例1におけるMgCl2 (和光純薬社製)を1.1
mMの濃度で含有する10mMトリス塩酸緩衝液(pH
7.4)の代わりに、MgCl2 (和光純薬社製)を5
5mMの濃度で含有する10mMトリス塩酸緩衝液(p
H7.4)を用いたことの他は、実施例1と同様に操作
して、47kDa抗原担持マイクロプレート(免疫学的
梅毒診断試薬)を作製した。
Example 4 The MgCl 2 (manufactured by Wako Pure Chemical Industries, Ltd.) in Example 1 was added to 1.1.
10 mM Tris-HCl buffer (pH)
Instead of 7.4), MgCl 2 (manufactured by Wako Pure Chemical Industries, Ltd.)
10 mM Tris-HCl buffer solution (p containing 5 mM concentration)
H7.4) was used and the same procedure as in Example 1 was carried out to prepare a 47 kDa antigen-supporting microplate (immunological syphilis diagnostic reagent).

【0034】実施例5 実施例1におけるMgCl2 (和光純薬社製)を1.1
mMの濃度で含有する10mMトリス塩酸緩衝液(pH
7.4)の代わりに、CaCl2 (和光純薬社製)を
1.1mMの濃度で含有する10mMトリス塩酸緩衝液
(pH7.4)を用いたことの他は、実施例1と同様に
操作して、47kDa抗原担持マイクロプレート(免疫
学的梅毒診断試薬)を作製した。
Example 5 The MgCl 2 (manufactured by Wako Pure Chemical Industries, Ltd.) in Example 1 was added to 1.1.
10 mM Tris-HCl buffer (pH)
In the same manner as in Example 1 except that 10 mM Tris-HCl buffer (pH 7.4) containing CaCl 2 (manufactured by Wako Pure Chemical Industries, Ltd.) at a concentration of 1.1 mM was used instead of 7.4). By operation, a 47 kDa antigen-supporting microplate (immunological syphilis diagnostic reagent) was prepared.

【0035】比較例1 実施例1におけるMgCl2 (和光純薬社製)を1.1
mMの濃度で含有する10mMトリス塩酸緩衝液(pH
7.4)の代わりに、MgCl2 (和光純薬社製)を含
まない10mMトリス塩酸緩衝液(pH7.4)を用い
たことの他は、実施例1と同様に操作して、47kDa
抗原担持マイクロプレートを作製した。
Comparative Example 1 MgCl 2 (manufactured by Wako Pure Chemical Industries, Ltd.) in Example 1 was added to 1.1.
10 mM Tris-HCl buffer (pH)
47 kDa was operated in the same manner as in Example 1 except that 10 mM Tris-HCl buffer (pH 7.4) containing no MgCl 2 (manufactured by Wako Pure Chemical Industries, Ltd.) was used instead of 7.4).
An antigen-carrying microplate was prepared.

【0036】免疫学的梅毒診断試薬の性能評価 実施例1〜5および比較例1で得られた免疫学的梅毒診
断試薬の性能を以下のようにして評価した。梅毒トレポ
ネーマの表面抗原蛋白質担持マイクロプレートのウエル
に、抗梅毒トレポネーマ抗体陽性標準血清を100μl
添加し、25℃で2時間静置後、10mMトリス塩酸緩
衝液(pH7.4)で3回洗浄した。このウエルに、1
0mMトリス塩酸緩衝液(pH7.4)で100倍希釈
したPOD標識抗ヒトグロブリン抗体(カッペル社製)
を100μl添加し、25℃で2時間静置後、10mM
トリス塩酸緩衝液(pH7.4)で3回洗浄した。上記
洗浄後のウエルに30%過酸化水素水50μlを添加
し、次いで、o−フェニレンジアミン(和光純薬社製)
を20mMの濃度で含有する10mMトリス塩酸緩衝液
(pH7.4)を、更に、50μl添加し、25℃で2
時間静置後、反応停止剤として、1規定硫酸を100μ
l添加し、580nmの吸光度を、マイクロプレートリ
ーダーを用いて測定した。
Performance Evaluation of Immunological Syphilis Diagnostic Agent The performance of the immunological syphilis diagnostic reagents obtained in Examples 1 to 5 and Comparative Example 1 was evaluated as follows. 100 μl of anti- Treponema pallidum antibody-positive standard serum was placed in the well of the microplate carrying the surface antigen protein of Treponema pallidum.
After addition, the mixture was allowed to stand at 25 ° C. for 2 hours and then washed 3 times with 10 mM Tris-HCl buffer (pH 7.4). 1 in this well
POD-labeled anti-human globulin antibody (manufactured by Kappel) diluted 100 times with 0 mM Tris-HCl buffer (pH 7.4)
100 μl was added, and the mixture was allowed to stand at 25 ° C for 2 hours, then 10 mM
It was washed 3 times with Tris-HCl buffer (pH 7.4). 50 μl of 30% hydrogen peroxide solution was added to the well after washing, and then o-phenylenediamine (manufactured by Wako Pure Chemical Industries, Ltd.)
Further, 50 μl of 10 mM Tris-HCl buffer (pH 7.4) containing 20 mM of the above was added, and the mixture was added at 25 ° C. for 2 hours.
After standing for 1 hour, 100 μl of 1N sulfuric acid is used as a reaction terminator.
1 was added and the absorbance at 580 nm was measured using a microplate reader.

【0037】なお、上記の抗梅毒トレポネーマ抗体陽性
標準血清は、市販の梅毒トレポネーマ診断試薬キット、
積水化学工業社製、商品名「メディエースTPLA」に
付属の、濃度0、109、242、460各タイターユ
ニット(以下、T.U.と略す。T.U.とは、上記診
断試薬キット「メディエースTPLA」を用いて測定さ
れた抗梅毒トレポネーマ抗体量を表す単位である。)の
ものを用いた。このようにして得られた、0、109、
242、460各T.U.の抗梅毒トレポネーマ抗体陽
性標準血清についての580nmの吸光度を表1に示し
た。
The above-mentioned anti- Treponema pallidum antibody-positive standard serum is a commercially available diagnostic reagent kit for Treponema pallidum,
Sekisui Chemical Co., Ltd. product name "Mediace TPLA" attached to each concentration 0,109,242,460 titer unit (hereinafter abbreviated as TU. TU is the diagnostic reagent kit " The unit representing the anti-syphilis treponemal antibody amount measured using "Mediace TPLA".) Was used. Thus obtained, 0, 109,
242, 460 for each T.I. U. The absorbance at 580 nm for the anti-syphilis treponemal antibody-positive standard serum of Table 1 is shown in Table 1.

【0038】[0038]

【表1】 [Table 1]

【0039】表1より、実施例1〜5の免疫学的梅毒診
断試薬では、検量線として使用できる感度が得られてい
るが、比較例1の免疫学的梅毒診断試薬では、検量線と
して使用できる感度が得られなかった。
From Table 1, the immunological syphilis diagnostic reagents of Examples 1 to 5 have the sensitivity that can be used as a calibration curve, but the immunological syphilis diagnostic reagent of Comparative Example 1 is used as a calibration curve. I couldn't get the sensitivity I could.

【0040】[0040]

【発明の効果】請求項1記載の免疫学的梅毒診断試薬の
製造方法の構成は上記の通り、大量生産可能で、安定し
た抗原活性を持つ、遺伝子組換え手法を用いて得られた
梅毒トレポネーマ表面抗原蛋白質が担持された不溶性担
体からなるので、菌体から得られた従来の梅毒トレポネ
ーマ抗原を用いて製造された試薬に比較し、安定に製造
できる。得られた免疫学的梅毒診断試薬は、実用上、使
用可能な感度が得られたので、臨床診断における梅毒診
断に有効に利用できる。
As described above, the method for producing the immunological syphilis diagnostic reagent according to claim 1 can be mass-produced and has stable antigenic activity. Treponema syphilis obtained by the gene recombination technique. Since it consists of an insoluble carrier carrying a surface antigen protein, it can be stably produced as compared with a reagent produced using a conventional Treponema pallidum syphilis antigen obtained from cells. Since the obtained immunological syphilis diagnostic reagent has a practically usable sensitivity, it can be effectively used for syphilis diagnosis in clinical diagnosis.

【0041】請求項2記載の免疫学的梅毒診断試薬の製
造方法の構成は上記の通り、梅毒トレポネーマ表面抗原
蛋白質が、分子量47kDaの梅毒トレポネーマ表面抗
原蛋白質、分子量17kDaの梅毒トレポネーマ表面抗
原蛋白質および分子量15kDaの梅毒トレポネーマ表
面抗原蛋白質からなる群より選ばれる少なくとも一種で
ある請求項1記載の免疫学的梅毒診断試薬の製造方法で
あり、より高感度な免疫学的梅毒診断試薬が得られるの
で、臨床診断における梅毒診断により有効に利用でき
る。
The structure of the method for producing an immunological syphilis diagnostic reagent according to claim 2 is as described above, wherein the T. pallidum surface antigen protein has a molecular weight of 47 kDa, the T. pallidum surface antigen protein has a molecular weight of 47 kDa, and the T. pallidum surface antigen protein has a molecular weight of 17 kDa. The method for producing an immunological syphilis diagnostic reagent according to claim 1, which is at least one member selected from the group consisting of a 15-kDa Treponema pallidum surface antigen protein, which is clinically useful because a more sensitive immunological syphilis diagnostic reagent can be obtained. It can be effectively used for diagnosis of syphilis.

【0042】請求項3記載の免疫学的梅毒診断試薬の製
造方法の構成は上記の通り、2価の金属イオンが、マグ
ネシウムイオン又はカルシウムイオンである請求項1又
は2記載の免疫学的梅毒診断試薬の製造方法であり、よ
り高感度な免疫学的梅毒診断試薬が得られるので、臨床
診断における梅毒診断により有効に利用できる。
The structure of the method for producing the immunological syphilis diagnostic reagent according to claim 3 is as described above, and the divalent metal ion is magnesium ion or calcium ion. Since it is a method for producing a reagent and a more sensitive immunological syphilis diagnostic reagent can be obtained, it can be effectively used for syphilis diagnosis in clinical diagnosis.

Claims (3)

【特許請求の範囲】[Claims] 【請求項1】 遺伝子組換え手法を用いて得られた梅毒
トレポネーマ表面抗原蛋白質と不溶性担体を、2価の金
属イオンを含有する溶媒中で混合することにより、該表
面抗原蛋白質を該不溶性担体に担持させることを特徴と
する免疫学的梅毒診断試薬の製造方法。
1. A syphilis treponemal surface antigen protein obtained by a gene recombination technique and an insoluble carrier are mixed in a solvent containing a divalent metal ion to give the surface antigen protein as the insoluble carrier. A method for producing an immunological syphilis diagnostic reagent, which comprises carrying the reagent.
【請求項2】 梅毒トレポネーマ表面抗原蛋白質が、分
子量47kDaの梅毒トレポネーマ表面抗原蛋白質、分
子量17kDaの梅毒トレポネーマ表面抗原蛋白質およ
び分子量15kDaの梅毒トレポネーマ表面抗原蛋白質
からなる群より選ばれる少なくとも一種である請求項1
記載の免疫学的梅毒診断試薬の製造方法。
2. The Treponema pallidum surface antigen protein is at least one member selected from the group consisting of Treponema pallidum surface antigen protein having a molecular weight of 47 kDa, Treponema pallidum surface antigen protein having a molecular weight of 17 kDa, and Treponema pallidum surface antigen protein having a molecular weight of 15 kDa. 1
A method for producing the immunological syphilis diagnostic reagent described.
【請求項3】 2価の金属イオンが、マグネシウムイオ
ン又はカルシウムイオンである請求項1又は2記載の免
疫学的梅毒診断試薬の製造方法。
3. The method for producing an immunological syphilis diagnostic reagent according to claim 1, wherein the divalent metal ion is magnesium ion or calcium ion.
JP11752796A 1996-05-13 1996-05-13 Manufacture of immunological syphilis diagnostic reagent Withdrawn JPH09304392A (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP11752796A JPH09304392A (en) 1996-05-13 1996-05-13 Manufacture of immunological syphilis diagnostic reagent

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP11752796A JPH09304392A (en) 1996-05-13 1996-05-13 Manufacture of immunological syphilis diagnostic reagent

Publications (1)

Publication Number Publication Date
JPH09304392A true JPH09304392A (en) 1997-11-28

Family

ID=14714001

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP11752796A Withdrawn JPH09304392A (en) 1996-05-13 1996-05-13 Manufacture of immunological syphilis diagnostic reagent

Country Status (1)

Country Link
JP (1) JPH09304392A (en)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP2603609B2 (en) Fluorescent polarization immunoassays for heavy antigens
CA2117597A1 (en) Method for non-competitive binding assays
JPH0516839B2 (en)
JP2001505663A (en) Antigen-specific IgG detection
US5792606A (en) Nucleic acid hybridization based assay for determining a substance of interest
JPH09504374A (en) Immunoassay for detecting human autoantibodies
KR102041119B1 (en) Reagent for assaying anti-treponema pallidum antibody
JPH02253162A (en) Detection using aequorin conjugated with material having specific conjugatability
EP0670494A2 (en) Anti-treponema pallidum antibody immunoassay
WO1990010227A1 (en) Method and diagnostic test kit for detection of anti-cardiolipin
JPH09304392A (en) Manufacture of immunological syphilis diagnostic reagent
EP0107861B1 (en) Diagnostic test for rheumatological diseases
Jin et al. Use of α-N, N-bis [carboxymethyl] lysine-modified peroxidase in immunoassays
JP3715736B2 (en) Method for producing anti-treponema antibody measuring reagent and anti-treponema antibody measuring reagent
JP3799410B2 (en) Nonspecific reaction inhibitory peptide, and nonspecific reaction inhibitory method and antibody measuring method using the same
JPH1114627A (en) Immunological diagnosis reagent
JP4104219B2 (en) Method for producing anti-treponema antibody measuring reagent, measuring reagent and measuring method
JPH09304391A (en) Immunological treponema pallidum diagnostic reagent and its manufacture
JP2010540921A (en) Immunological analysis method for detection of antibody against human GSTT1 (anti-HGSTT1)
JPH11287804A (en) Formation for immunoassay reagent, immunoassay reagent and immunoassay method
JP2001264334A (en) Syphilis treponema antibody measuring reagent and its manufacturing method
JPH1090265A (en) Manufacture of immunological syphilis diagnosis reagent and syphilis diagnosis reagent
JP3936678B2 (en) Anti-syphilis treponema antibody measurement reagent and anti-syphilis treponema antibody measurement method
JPH09288110A (en) Reagent for immunologically diagnosing syphilis
JP2595921B2 (en) Assay method for anti-RNA binding protein antibody

Legal Events

Date Code Title Description
A761 Written withdrawal of application

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A761

Effective date: 20040329