JPH09107964A - Gene introduction and complex used therefor - Google Patents

Gene introduction and complex used therefor

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JPH09107964A
JPH09107964A JP26846895A JP26846895A JPH09107964A JP H09107964 A JPH09107964 A JP H09107964A JP 26846895 A JP26846895 A JP 26846895A JP 26846895 A JP26846895 A JP 26846895A JP H09107964 A JPH09107964 A JP H09107964A
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JP
Japan
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dna
complex
molecule
macroglobulin
gene
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JP26846895A
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Japanese (ja)
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Atsushi Igai
篤 猪飼
Shinobu Mitsuta
忍 光田
Toshiharu Matsumura
外志張 松村
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Meiji Dairies Corp
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Meiji Milk Products Co Ltd
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Publication date
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Abstract

PROBLEM TO BE SOLVED: To obtain the subject safe complex useful for introducing an extraneous gene into an animal cell including a human cell and having good gene introduction efficiency by binding three components of F type α2 -macroglobilin, a molecule having characteristics associating with DNA and DNA. SOLUTION: Three components of (A) F type α2 -macroglobilin as a ligand for gene introduction, (B) a molecule having characteristic associating with DNA and (C) DNA are bound to provide the objective complex for gene introduction. A method comprising associating, e.g. a bound body obtained by directly binding the molecule A to the molecule B or binding the molecule A through a cross-linking agent to the molecule B with the molecule C is adapted in order to obtain the complex.

Description

【発明の詳細な説明】Detailed Description of the Invention

【0001】[0001]

【発明の属する技術分野】本発明は、外来遺伝子をヒト
細胞を含む動物細胞に導入する方法、及びこの方法に用
いる遺伝子導入用複合体に関する。
TECHNICAL FIELD The present invention relates to a method for introducing a foreign gene into animal cells including human cells, and a complex for gene introduction used in this method.

【0002】[0002]

【従来の技術】外来遺伝子を細胞に導入する技術、即ち
遺伝子導入技術は、組換え細胞の構築による外来物質の
生産、始原生殖細胞あるいは分化全能細胞への遺伝子導
入による動植物の育種、さらにはヒト細胞への遺伝子導
入による遺伝子治療にまで及ぶバイオテクノロジーの基
本技術の一つである。
2. Description of the Related Art A technique for introducing a foreign gene into a cell, that is, a gene introduction technique is used to produce a foreign substance by constructing a recombinant cell, breeding an animal or plant by introducing a gene into a primordial germ cell or a totipotent cell, and further to human. It is one of the basic technologies of biotechnology that extends to gene therapy by introducing genes into cells.

【0003】遺伝子DNAを細胞に導入して、細胞内で
遺伝子機能を発現させるために、すでにさまざまな遺伝
子導入法ならびに遺伝子導入媒体が考案されている。
Various gene transfer methods and gene transfer media have already been devised in order to introduce gene DNA into cells and express the gene function in the cells.

【0004】従来技術による遺伝子導入法は、遺伝子操
作技術成書、たとえば“Maniatis,T.,Fr
itsch,E.F.,Sambrook,J.Mol
ecular Cloning.A laborato
ry Manual,2ndEdition,3:1
6.30−16.55(1989),Cold Spr
ing Harbor Laboratory等、ある
いは総説(P.L.Felgner,Laborato
ry Invest,68:1−3(1993))等に
記述されているが、要約すれば、大別して3種類に分類
される。第1は、機械的、物理的な手段によって遺伝子
DNAを細胞内に導入する方法である。第2は、細胞表
層にある分子と非化学結合的に親和性を有する物質を介
して遺伝子DNAを細胞内に導入する方法である。また
第3は、細胞に感染性のあるウイルス等微生物の粒子を
利用する方法である。
The gene transfer method according to the prior art is described in the textbook on gene manipulation, for example, "Maniatis, T., Fr.
itsch, E .; F. , Sambrook, J .; Mol
ecological Cloning. A laborato
ry Manual, 2nd Edition, 3: 1
6.30-16.55 (1989), Cold Spr.
ing Harbor Laboratory et al., or a review (PL Felgner, Laborato)
ry Invest, 68: 1-3 (1993)) and the like, but in summary, they are roughly classified into three types. The first is a method of introducing genetic DNA into cells by mechanical or physical means. The second is a method of introducing a gene DNA into a cell via a substance having an affinity in a non-chemical bond with a molecule on the cell surface. The third method is to use particles of microorganisms such as viruses that are infectious to cells.

【0005】第1の方法は顕微鏡下で細胞に毛細管を挿
入し、毛細管を経由して遺伝子DNAを導入する方法
(マイクロインジェクション法)が代表的であるが、ほ
かに、DNAを含む溶液中で細胞に無差別に孔を開けて
DNAを導入する方法(プリッキング法)、細胞に孔を
開ける手段として、電気パルスを使用する方法(エレク
トロポレーション法)等がある。
The first method is typically a method in which a capillary tube is inserted into cells under a microscope and gene DNA is introduced through the capillary tube (microinjection method). In addition, in a solution containing DNA, There are a method of indiscriminately making holes in cells to introduce DNA (pricking method), a method of using electric pulses as a means for making holes in cells (electroporation method), and the like.

【0006】第2の方法の代表的なものは、溶液内でD
NAと燐酸カルシウムとから生ずるゲルが、細胞によっ
て容易に取り込まれる性質を利用したものであって、燐
酸カルシウム法と呼ばれ、体外での遺伝子導入技術とし
て汎用されているものである。類似の方法として、DE
AEデキストラン高分子(McCutchan,Pag
ano,J.Natl.Canc.Inst.,41:
351(1968))、ポリブレン(Kawai,
S.,Nishizawa,M.,Mol.Cell.
Biol.,4:1172(1984))、ポリオルニ
チン(Dong,Y.,Skoultchi,A.
I.,Pollard,J.W.,Nucleic A
clds Res.21:771−772(199
3))等の塩基性高分子物質と遺伝子DNAとを会合さ
せた会合体が、細胞表層物質との静電的な親和性から、
細胞によってエンドサイトーシスの機構によって取り込
まれ易いことを利用した方法が挙げられ、さらにはDN
Aを人工の脂質膜小胞(リポソーム)内に包み込み、リ
ポソームと細胞膜との親和性によってリポソームが細胞
膜と融合して、内包されたDNAが細胞内に取り込まれ
ることを利用したリポソーム法等々が挙げられる。塩基
性高分子、たとえばポリリジン、と陽電荷脂質とを複合
させた分子にDNAを会合させて細胞に接触させる方法
(リポフェクチン法、Fagner,P.L.,Rin
gold,G.M.,Naure,337:387−3
88(1989)、X.Zhau,A.L.Kliba
nov,L.Huang,Biochim.Bioph
ys.Acta,1065:8−14(1991))は
遺伝子導入効率が高く、リポソーム法等の欠点をかなり
改善したものである。
The representative of the second method is D in solution.
A gel formed from NA and calcium phosphate utilizes the property of being easily taken up by cells, and is called a calcium phosphate method, which is widely used as an in vitro gene transfer technique. As a similar method, DE
AE dextran polymer (McCutchan, Pag
ano, J .; Natl. Canc. Inst. , 41:
351 (1968)), polybrene (Kawai,
S. , Nishizawa, M .; , Mol. Cell.
Biol. , 4: 1172 (1984)), polyornithine (Dong, Y., Skoultchi, A .;
I. , Pollard, J .; W. , Nucleic A
clds Res. 21: 771-772 (199
3)) and other basic macromolecular substances and gene DNA are associated with each other, the aggregate has an electrostatic affinity with the cell surface substance,
A method that utilizes the fact that cells are easily taken up by the mechanism of endocytosis is used.
Examples include the liposome method and the like, in which A is encapsulated in an artificial lipid membrane vesicle (liposome), the liposome is fused with the cell membrane due to the affinity between the liposome and the cell membrane, and the encapsulated DNA is taken into the cell. To be A method of associating DNA with a molecule in which a basic polymer such as polylysine is combined with a positively charged lipid and bringing the DNA into contact with a cell (lipofectin method, Fagner, PL, Rin
gold, G .; M. , Naure, 337: 387-3.
88 (1989), X. Zhau, A .; L. Kliba
nov, L.N. Huang, Biochim. Bioph
ys. Acta, 1065: 8-14 (1991)) has a high gene transfer efficiency and considerably improves the drawbacks of the liposome method and the like.

【0007】さらに、細胞表層に存在する受容体と特異
的に親和性を有するリガンド分子を介してDNAを導入
する方法が考案されている(リガンド複合体法、G.
Y.Wu,C.H.Wu,J.Biol Chem.,
263:14621−14624(1988))。この
方法では標的とする受容体として、肝細胞のアシアログ
リコプロテイン受容体(N.R Chowdhury,
C.H.Wu,G.Y.Wu,P.C.Yernen
i,V.R.Bomminenl,J.R.Chowd
hury,J.Biol.Chem.,268:112
65−11271(1993))、トランスフェリン受
容体(Wagner,E.,Zenke,M.,Cot
ten,M.,Beug,H.,Birnstiel,
M.L.,Proc.Natl.Acad.Sci.,
87:3410−3414(1990),E.Wagn
er,Zatloukal F.Cotten,M.K
irlappos,H.Mechlter,K.,Cu
riel,DT.,Proc.Natl.Acad.,
Sci.,89:6099−6103(1992))、
多量体免疫タンパク質の受容体(T.Ferkol,
C.S.Kaetzel,R.B.Davis,J.C
lin.Invest.,92:2394−2400
(1993))が用いられてきた。
Furthermore, a method has been devised in which DNA is introduced through a ligand molecule having a specific affinity with a receptor existing on the cell surface (ligand complex method, G. et al.
Y. Wu, C.I. H. Wu, J. Biol Chem. ,
263: 14621-14624 (1988)). In this method, as the target receptor, asialoglycoprotein receptor of hepatocytes (NR Chowdhury,
C. H. Wu, G .; Y. Wu, P.W. C. Jernen
i, V. R. Bomminenl, J. et al. R. Chowd
hury, J.M. Biol. Chem. , 268: 112
65-11271 (1993)), transferrin receptor (Wagner, E., Zenke, M., Cot.
ten, M. , Beug, H .; , Birnstiel,
M. L. Proc. Natl. Acad. Sci. ,
87: 3410-3414 (1990), E.I. Wagne
er, Zatalkal F .; Cotten, M .; K
irlappos, H .; Mechter, K .; , Cu
Riel, DT. Proc. Natl. Acad. ,
Sci. , 89: 6099-6103 (1992)),
Receptors for multimeric immune proteins (T. Ferkol,
C. S. Kaetzel, R.M. B. Davis, J .; C
lin. Invest. , 92: 2394-2400
(1993)) has been used.

【0008】第3の方法の代表的なものは、ウイルス粒
子を使用する方法であって、組換技術によって目的とす
る遺伝子DNAを導入し、さらに病原性等、不用な形質
を除去したウイルス粒子を製造し、これを細胞の表層に
あってウイルス粒子と特異的に結合する受容体を介して
細胞に結合させることによって遺伝子DNAを導入する
方法である(Friedmann,T.,Scienc
e,244:1275−1281(1989),And
erson.W.F.,Science,226:40
1−409(1984))。媒体とするウイルスとして
レトロウイルス、アデノウイルスあるいはワクシニアウ
イルス等が使用されている。
The third method is a typical method using virus particles, in which the desired gene DNA has been introduced by a recombination technique and further unnecessary traits such as pathogenicity have been removed. Is produced, and the gene DNA is introduced by binding it to the cell via a receptor that is present on the surface layer of the cell and specifically binds to virus particles (Friedmann, T., Science).
e, 244: 1275-1281 (1989), And.
erson. W. F. , Science, 226: 40.
1-409 (1984)). A retrovirus, an adenovirus, a vaccinia virus, or the like is used as a medium virus.

【0009】[0009]

【発明が解決しようとする課題】上記の方法には、極め
て効率のよい遺伝子導入法もあるが細胞への障害性、各
種細胞への適用の汎用性、遺伝子導入効率、ならびに媒
体の安全性等について評価すると必ずしも満足できる方
法ではなかった。
There is an extremely efficient gene transfer method among the above-mentioned methods, but it is an obstacle to cells, versatility of application to various cells, gene transfer efficiency, safety of medium, etc. Was not always a satisfactory method.

【0010】例えば、第1の方法であるプリッキング
法、エレクトロポレーション法等、物理的方法は、細胞
を物理的な装置に持ち込む必要があることから、細胞へ
の障害を無視することができず、また遺伝子治療等、医
療目的で使用することには限界であった。
For example, the physical methods such as the pricking method and the electroporation method, which are the first method, require that the cells be brought into a physical device, so that the damage to the cells can be ignored. However, there is a limit to the use for medical purposes such as gene therapy.

【0011】また、第2の方法である燐酸カルシウム
法、DEAEデキストラン法等の塩基性高分子会合法
は、特別の装置も必要ないことから、簡便で、培養細胞
での遺伝子導入には最もしばしば用いられている。しか
し、これらの媒体は遺伝子導入効率が必ずしも高くはな
く、また細胞に対して傷害を来す可能性があり、遺伝子
治療等での使用にはやはり限界がある。またリポフェク
チン法も含めて、陽性電荷を持つ物質に対して無差別に
結合する性質があることから、分離した細胞に対しての
使用に限定され、生体物質を多量に含む状態での遺伝子
導入にはさまざまな問題を残している。
The second method, which is a basic polymer association method such as the calcium phosphate method and the DEAE dextran method, is simple and most often used for gene transfer into cultured cells because no special device is required. It is used. However, these media are not always high in gene transfer efficiency and may cause damage to cells, and thus their use in gene therapy and the like is still limited. Also, including the lipofectin method, it has the property of indiscriminately binding to substances with a positive charge, so it is limited to use in isolated cells, and it is suitable for gene transfer in a state containing a large amount of biological substances. Is left with various problems.

【0012】さらに、第3の方法であるウイルスベクタ
ーを使用する方法は、導入効率が高く、細胞障害も少な
く、また多量の生体物質の存在下においても、細胞に対
して特異的な遺伝子導入を行うことができることから、
遺伝子治療に最もしばしば使用されてきている。しか
し、作製に大変手間が掛かるばかりでなく、目的の遺伝
子以外のさまざまな異種遺伝子や異種抗原物質を含んだ
ウイルス粒子を細胞に導入することとなることから、そ
の安全性や副作用については慎重に検討されてきている
とはいえ、これを使用しないですむ方法があれば避けた
いとするのは一般的な動向であるといえる。
Furthermore, the third method, which uses a viral vector, has high transfection efficiency, little cell damage, and gene transfer specific to cells even in the presence of a large amount of biological substances. From what you can do,
Most often used for gene therapy. However, not only is it extremely time-consuming to prepare, but since virus particles containing various heterologous genes other than the target gene or heterologous antigenic substance are to be introduced into cells, its safety and side effects must be carefully monitored. Although it has been considered, it is a general trend to avoid it if there is a way to avoid using it.

【0013】第2の方法のうちリガンド複合体法は、細
胞に特異的な受容体を用いるにも関わらず、ウイルスベ
クターを使用しないで済む点で、安全性が高く、遺伝子
治療を含めた今後の遺伝子導入技術として期待されるも
のであって、上記のようにすでにトランスフェリン受容
体、アシアロ糖タンパク質受容体、免疫タンパク質受容
体を介する遺伝子導入が試みられてきている。しかしな
がら、リガンド複合体法は、用いる受容体によって遺伝
子導入の標的とする細胞種が異なること、ならびに用い
る受容体の特性を活かした遺伝子導入技術をそれぞれ開
発する必要があり、技術的に解決すべき問題は少なくな
い。
Among the second methods, the ligand complex method is highly safe in that it does not need to use a viral vector in spite of using a cell-specific receptor, and it will be used in the future including gene therapy. As described above, gene transfer via transferrin receptor, asialoglycoprotein receptor and immune protein receptor has already been attempted. However, in the ligand complex method, it is necessary to develop a gene transfer technique that makes use of the characteristics of the receptor to be used and that the cell type targeted for gene transfer differs depending on the receptor to be used. There are many problems.

【0014】一方、α2−マクログロブリンは肝実質細
胞が合成し、血液中に分泌するタンパク質であって、そ
の受容体は肝実質細胞、肝、肺、リンパ組織中の呑食細
胞など単核細胞起源の細胞に広く及んでいるほか、神経
細胞、アストロサイト、消化管上皮細胞、平滑筋細胞、
繊維芽細胞、卵巣顆粒膜細胞、腎樹状間質細胞、精巣L
eydig細胞、にも分布している(S.K.Moes
trup,J.Gllemann,G.Pallese
n,Cell&Tissue Res.,269:37
5−382(1992))。α2−マクログロブリンに
は受容体に結合性のない天然型と、受容体に結合性のあ
るF型とが存在する。天然型のα2−マクログロブリン
は蛋白分解酵素と会合する特性があり、会合体において
は、α2−マクログロブリンは受容体と結合できる形
(F型)に変換している。天然型α 2−マクログロブリ
ンは、またメチルアミンによって処理することによって
受容体に結合できるF型α2−マクログロブリン(以下
「Fα2−マクログロブリン」という)に変換させるこ
とができる。
On the other hand, αTwo-Macroglobulin is
A protein that is synthesized by cells and secreted into the blood.
Is a receptor for glutinous cells in liver parenchymal cells, liver, lungs and lymphoid tissues.
Cells that widely originate from mononuclear cells such as
Cells, astrocytes, gastrointestinal epithelial cells, smooth muscle cells,
Fibroblasts, ovarian granulosa cells, renal dendritic stromal cells, testis L
eydig cells also distributed (SK Moes
trup, J .; Glemann, G .; Palace
n, Cell & Tissue Res. , 269: 37
5-382 (1992)). αTwo-For macroglobulin
Is the natural type that does not bind to the receptor and the
There is an F type. Natural αTwo-Macroglobulin
Has the property of associating with proteolytic enzymes,
Is αTwo-Macroglobulin is in a form capable of binding to the receptor
Converted to (F type). Natural α Two-Macrogloblis
By treatment with methylamine
F type α that can bind to the receptorTwo-Macroglobulin (hereinafter
"FαTwo-Macroglobulin ")
Can be.

【0015】従って、すでにα2−マクログロブリンを
遺伝子導入のためのリガンド分子として使用するという
提案(S−y Cheng.G.T.Emrlino&
I.H.Pastan,Nucleic Acid R
es 11:659−669(1983))があった
が、単なる提案にすぎず、具体的な実施の手段は示され
ておらず、現実性のないものであった。
Therefore, it has already been proposed to use α 2 -macroglobulin as a ligand molecule for gene transfer (Sy Cheng. G. T. Emrino &
I. H. Pastan, Nucleic Acid R
es 11: 659-669 (1983)), but it was merely a proposal, a concrete means for carrying out it was not shown, and it was unrealistic.

【0016】従って本発明の目的は、遺伝子導入のため
のリガンド分子としてFα2−マクログロブリンを用
い、安全で遺伝子導入効率のよい遺伝子導入法を提供す
ることにある。
Therefore, an object of the present invention is to provide a safe and highly efficient gene transfer method using Fα 2 -macroglobulin as a ligand molecule for gene transfer.

【0017】[0017]

【課題を解決するための手段】斯かる実状に鑑み本発明
者らは鋭意研究を行った結果、Fα2−マクログロブリ
ン、DNAと会合する特性を有する分子及びDNAの三
者が結合した遺伝子導入用複合体を用いれば、安全で効
率よく動物細胞に遺伝子を導入できることを見出し本発
明を完成した。
In view of such circumstances, the present inventors have conducted diligent research and as a result, as a result, gene transfer in which three members of Fα 2 -macroglobulin, a molecule having a property of associating with DNA, and DNA are bound. The present inventors have completed the present invention by discovering that the use of a complex for use can safely and efficiently introduce a gene into an animal cell.

【0018】即ち、本発明は、Fα2−マクログロブリ
ン、DNAを会合する特性を有する分子及びDNAが結
合した遺伝子導入用複合体の第1の発明を提供するもの
である。さらに本発明はこの遺伝子導入用複合体を、F
α2−マクログロブリンと特異的に相互作用する受容体
を細胞表層に有するヒト又は動物細胞に接触させること
を特徴とする遺伝子導入法を提供するものである。
That is, the present invention provides the first invention of Fα 2 -macroglobulin, a molecule having the property of associating with DNA, and a complex for gene transfer to which DNA is bound. Furthermore, the present invention provides the gene transfer complex as F
The present invention provides a gene transfer method, which comprises contacting a human or animal cell having a receptor that specifically interacts with α 2 -macroglobulin on the cell surface.

【0019】[0019]

【発明の実施の形態】本発明の遺伝子導入用複合体の原
料であるα2−マクログロブリンは、公知の方法により
調製することができる(Arakawa,H.,Osa
da,T,Ikai,A.,Arch.Biochi
m.Biophys.244:447−453(198
6))。またこれをF型に転換するにはメチルアミンを
用いる公知の方法によればよい(Mitsuda,
S.,Nakagawa.T.,Osada,T.,S
himamoto,T.,Nakazato,H.,I
kai,A.,Biochem.Biophys.Re
s.Commun.,194:1155−1160(1
993))。
BEST MODE FOR CARRYING OUT THE INVENTION The α 2 -macroglobulin, which is a raw material of the complex for gene transfer of the present invention, can be prepared by a known method (Arakawa, H., Osa).
da, T, Ikai, A .; Arch. Biochi
m. Biophys. 244: 447-453 (198
6)). In order to convert this into F type, a known method using methylamine may be used (Mitsuda,
S. , Nakagawa. T. , Osada, T .; , S
Himamoto, T .; , Nakazato, H .; , I
Kai, A .; , Biochem. Biophys. Re
s. Commun. , 194: 1155-1160 (1
993)).

【0020】また、本発明において、DNAと会合する
特性を有する分子としては、(A)塩基性高分子、
(B)塩基性高分子と陽性電荷脂肪酸もくしはその誘導
体との会合体、又は(C)ウイルスのフュージョンペプ
チドと塩基性高分子の複合体が挙げられる。ここで、塩
基性高分子としては、ポリリジン、ポリオルニチン、ポ
リアミン、DEAEデキストラン等が挙げられるが、ポ
リリジンが好ましい。陽性電荷脂肪酸もしくはその誘導
体としては、ジメチルオクタデシルアンモニウムブロマ
イドが挙げられ、ウイルスのフェージョンペプチドとし
てはインフルエンザウイルスのヘマグルチニンサブユニ
ットHA−2のN末端に含まれるペプチドが挙げられ
る。また、これら(A)、(B)又は(C)に公知の細
胞膜と親和性のある補助成分を付加してもよい。さらに
ポリリジンの場合SPDP(N−サクシニミジル−3−
(2−ピリジルジチオ)プロピオネイト)等の公知の架
橋剤を用いさらに還元処理することによってSH基等の
反応性基を導入し、SPDFによりピリジルジスルフィ
ド基を導入したFα2−マクログロブリンと結合できる
状態とすることができる。
In the present invention, the molecule having the property of associating with DNA is (A) a basic polymer,
Examples thereof include (B) an association of a basic polymer with a positively charged fatty acid or a derivative thereof, or (C) a complex of a virus fusion peptide and a basic polymer. Here, examples of the basic polymer include polylysine, polyornithine, polyamine, and DEAE dextran, and polylysine is preferable. Examples of the positively charged fatty acid or its derivative include dimethyloctadecyl ammonium bromide, and examples of the viral phage peptide include a peptide contained in the N-terminal of influenza virus hemagglutinin subunit HA-2. Further, a known auxiliary component having an affinity with a cell membrane may be added to these (A), (B) or (C). Furthermore, in the case of polylysine, SPDP (N-succinimidyl-3-
A state in which a reactive group such as an SH group is introduced by further reduction treatment using a known cross-linking agent such as (2-pyridyldithio) propionate), and Fα 2 -macroglobulin having a pyridyl disulfide group introduced by SPDF can be bound. Can be

【0021】本発明において細胞に導入し得るDNAは
特に限定されない。
The DNA that can be introduced into cells in the present invention is not particularly limited.

【0022】本発明の遺伝子導入用複合体は、Fα2
マクログロブリンとDNAと会合する特性を有する分子
とが直接又は架橋剤を介して結合した結合体にDNAを
会合させるか(方法1)、又はDNAと会合する特性を
有する分子とDNAとの会合体に、直接又は架橋剤を介
してFα2−マクログロブリンを結合させる(方法2)
ことにより製造することができる。
The gene transfer complex of the present invention comprises Fα 2
Macroglobulin and a molecule having a property of associating with DNA are allowed to associate with a conjugate bound directly or through a cross-linking agent (method 1), or an association of a molecule having a property of associating with DNA and a DNA To Fα 2 -macroglobulin directly or through a cross-linking agent (method 2)
It can be manufactured by the following.

【0023】方法1において、Fα2−マクログロブリ
ンとDNAと会合する特性を有する分子との結合は、例
えば架橋剤であるSPDPによりFα2−マクログロブ
リンにピリジルジスルフィド基を導入し、DNAと会合
する特性を有する分子、例えばポリリジンにあらかじめ
導入したSH基とSS交換反応により結合する方法等に
より実施することができる。このようにして得られた結
合体にDNAを会合させるには、混合により静電的に会
合されればよい。方法2において、DNAと会合する特
性を有する分子とDNAとの会合体を得るには、静電的
に会合させる方法、例えば、前記の如くポリリジンは電
荷を帯びており、DNAと静電的に会合する性質がある
ことから、これを利用する方法が挙げられる。また、こ
の会合体にFα2−マクログロブリンを架橋剤を介して
結合させるには、例えば架橋剤たるSPDPによりFα
2−マクログロブリンにピリジルジスルフィド基を導入
し、あらかじめ会合体に導入したSH基とSS交換反応
により結合する方法等によればよい。
In the method 1, the Fα 2 -macroglobulin is bound to a molecule having the property of associating with DNA by, for example, introducing a pyridyl disulfide group into Fα 2 -macroglobulin by a crosslinking agent SPDP and associating with DNA. It can be carried out by a method in which an SH group previously introduced into a molecule having characteristics, such as polylysine, is bound by an SS exchange reaction, or the like. In order to associate the DNA with the conjugate thus obtained, electrostatic association may be achieved by mixing. In Method 2, in order to obtain a DNA-associated molecule having a property of associating with DNA, a method of electrostatically associating, for example, polylysine is charged as described above, and electrostatically interacting with DNA Because of the nature of association, there is a method of utilizing this. Further, in order to bind Fα 2 -macroglobulin to this association through a cross-linking agent, for example, Fα 2 -macroglobulin can be bound by SPDP as a cross-linking agent.
A method in which a pyridyl disulfide group is introduced into 2- macroglobulin and the SH group introduced in advance into the association is bound by an SS exchange reaction or the like may be used.

【0024】このようにして得られた遺伝子導入用複合
体を、α2−マクログロブリンと特異的に相互作用する
受容体を細胞表層に有するヒト又は動物細胞に接触させ
ることにより、細胞中に遺伝子を導入することができ
る。この作用は次のように考えられる。
The gene transfer complex thus obtained is brought into contact with a human or animal cell having a receptor capable of specifically interacting with α 2 -macroglobulin on the cell surface to give the gene in the cell. Can be introduced. This effect is considered as follows.

【0025】複合体の構成要素の一つである遺伝子DN
Aと会合する特性を有する分子、例えば塩基性高分子物
質は遺伝子DNAと静電的に会合する能力を有している
ため、遺伝子DNAは複合体の中に保持される。複合体
は、負に荷電する細胞表層とさらに静電的に親和性を有
するために細胞表層に近づく。ここで複合体中のFα 2
−マクログロブリンは、細胞表層のα2−マクログロブ
リン受容体と高い親和性で結合し、細胞に複合体のエン
ドサイトーシスを促す。エンドサイトーシスにより細胞
内に取り込まれた遺伝子DNAの遺伝子情報が発現され
る。
Gene DN, which is one of the components of the complex
A molecule having the property of associating with A, for example, a basic polymer
Quality has the ability to electrostatically associate with genetic DNA
Therefore, the gene DNA is retained in the complex. Complex
Have a more electrostatic affinity for the negatively charged cell surface.
To get close to the cell surface. Where Fα in the complex Two
-Macroglobulin is the α of the cell surfaceTwo-Macroglob
It binds to the phosphorous receptor with high affinity and allows cells to enter the complex
Promote dosiosis. Cells by endocytosis
The gene information of the gene DNA taken in is expressed
You.

【0026】[0026]

【実施例】以下、実施例により本発明をさらに詳細に説
明するが本発明はこれに限定されるものではない。
The present invention will be described in more detail with reference to the following examples, but the present invention is not limited thereto.

【0027】実施例1 (1)ポリリジンへのSH基の付加 ポリ−L−リジンハイドロブロマイド(分子量 591
00、重合度280)はシグマ社より入手した。SPD
Pはピアス社より入手した。122μM、2mlのポリリ
ジン水溶液に40mMのSPDP溶液を244μl加え、
30分静かに攪拌した。その後反応液はダルベッコの燐
酸緩衝生理食塩水を溶出液としてSephadexG−
25でゲルろ過を行った。ゲルろ過の工程をOD280
によりモニターすることにより、90%以上の回収率で
ピリジルジスルフィド基を導入したポリリジンを、未反
応物低分子物質から分離回収した。回収したピリジルジ
スルフィド基を導入したポリリジン(22.4μM,1
0ml)を、さらに50mMのジチオスレイトール(DT
T)水溶液400μlで還元することにより、SH基を
導入したポリリジンを製作し、ダルベッコの燐酸緩衝生
理食塩水に対して透析を行うことにより精製した。吸光
度から定量したSH基導入率は、ポリリジン1分子あた
り30個、即ち、ポリリジン1残基あたりのSH基導入
率は約11%であった。
Example 1 (1) Addition of SH group to polylysine Poly-L-lysine hydrobromide (molecular weight: 591)
00, degree of polymerization 280) was obtained from Sigma. SPD
P was obtained from Pierce. 122 μM, 244 μl of 40 mM SPDP solution was added to 2 ml of polylysine aqueous solution,
Stir gently for 30 minutes. After that, the reaction solution was separated with Sephadex G- using Dulbecco's phosphate buffered saline.
Gel filtration was performed at 25. Gel filtration process OD280
The polylysine introduced with the pyridyl disulfide group at a recovery rate of 90% or more was separated and collected from the unreacted low molecular weight substance by monitoring with. Recovered polylysine having introduced pyridyl disulfide group (22.4 μM, 1
0 ml) to 50 mM dithiothreitol (DT)
T) An SH group-introduced polylysine was prepared by reduction with 400 μl of an aqueous solution, and purified by performing dialysis against Dulbecco's phosphate buffered saline. The SH group introduction rate quantified from the absorbance was 30 per polylysine molecule, that is, the SH group introduction rate per polylysine residue was about 11%.

【0028】(2)α2−マクログロブリンへのピリジ
ルジスルフィド基の導入 α2−マクログロブリンはヒト血液から常法に従って調
製し(Arakawa,H.,Osada,T,Ika
i,A.,Arch.Biochim.Biophy
s.244:447−453(1986))、メチルア
ミンを用いてF型に転換した(Mitsuda,S.,
Nakagawa,T.,Osada,T.,Shim
amoto,T.,Nakazato,H.,Ika
i,A.,Biochem.Biophys.Res.
Commun.,194:1155−1160(199
3))。13.44mgのFα2−マクログロブリンを含
む溶液3mlに20mMのSPDP溶液11.1μlを加
え、30分攪拌後、50mM燐酸緩衝液を溶出液としてS
ephadexG−25でゲルろ過を行った。ゲルろ過
の工程をOD280によりモニターすることにより、7
0%以上の回収率でピリジルジスルフィド基を導入した
Fα2−マクログロブリンを、未反応物低分子物質から
分離回収した。導入したピリジルジスルフィド基はα2
−マクログロブリン1分子あたり4.5個に相当し、α
2−マクログロブリンがテトラマーであることを考慮す
るとモノマー1分子あたりほぼ1個のピリジルジスルフ
ィド基が導入されたものと推算された。
[0028] (2) α 2 - Introduction of pyridyl disulfide groups into the macroglobulin alpha 2 - macroglobulin were prepared according to a conventional method from human blood (Arakawa, H., Osada, T , Ika
i, A. Arch. Biochim. Biophy
s. 244: 447-453 (1986)), it was converted to the F form using methylamine (Mitsuda, S.,.
Nakagawa, T .; , Osada, T .; , Shim
amoto, T .; , Nakazato, H .; , Ika
i, A. , Biochem. Biophys. Res.
Commun. , 194: 1155-1160 (199
3)). 11.3 μl of 20 mM SPDP solution was added to 3 ml of a solution containing 13.44 mg of Fα 2 -macroglobulin, and after stirring for 30 minutes, S was used as an eluent with 50 mM phosphate buffer.
Gel filtration was performed using ephadex G-25. By monitoring the gel filtration process by OD280, 7
2 -macroglobulin introduced with a pyridyl disulfide group at a recovery rate of 0% or more was separated and recovered from the unreacted low molecular weight substance. The introduced pyridyl disulfide group is α 2
-Equivalent to 4.5 per macroglobulin molecule, α
Considering that 2- macroglobulin is a tetramer, it was estimated that approximately one pyridyl disulfide group was introduced per monomer molecule.

【0029】(3)遺伝子DNA βガラクトシダーゼ発現遺伝子DNA(pCMVβ、哺
乳動物細胞中でサイトメガロウイルスプロモーターによ
り転写され、βガラクトシダーゼを発現するように構成
されたレポーターベクター)はクローンテック社より入
手した。
(3) Gene DNA β-galactosidase expression gene DNA (pCMVβ, a reporter vector transcribed by cytomegalovirus promoter in mammalian cells and constructed to express β-galactosidase) was obtained from Clontech.

【0030】(4)SH基付加ポリリジン(pL−S
H)へのβガラクトシダーゼ発現遺伝子DNAの会合 1μgの遺伝子DNAに10μMのSH付加ポリリジン
を8μl加え、1時間室温で静置することにより、静電
的に会合体を形成させた。
(4) SH group-added polylysine (pL-S
Association of β-galactosidase-expressing gene DNA with H) 8 μl of 10 μM SH-added polylysine was added to 1 μg of gene DNA, and the mixture was allowed to stand at room temperature for 1 hour to electrostatically form an aggregate.

【0031】(5)SH基付加ポリリジン・DNA会合
体へのFα2−マクログロブリンの結合 ピリジルジスルフィド基を導入したFα2−マクログロ
ブリン(Fα2M−DP)を130pmol会合体に加
え、6−24時間静置することにより、SH基付加ポリ
リジン・DNA会合体へFα2−マクログロブリンを結
合させた。この条件では複合体内形成に与えるポリリジ
ンとFα2−マクログロブリンとの分子数の比率は8
0:130であり、複合体中に存在する遺伝子DNAは
これに比較して遙かに少ない比率である。
[0031] (5) SH group addition F.alpha to polylysine · DNA aggregate 2 - F.alpha was introduced macroglobulin binding pyridyl disulfide group 2 - macroglobulin (Fα 2 M-DP) was added to 130pmol aggregates, 6- By allowing it to stand for 24 hours, Fα 2 -macroglobulin was bound to the SH group-added polylysine-DNA aggregate. Under these conditions, the ratio of the number of molecules of polylysine and Fα 2 -macroglobulin that is involved in complex formation is 8
0: 130, which is a much smaller ratio of the gene DNA present in the complex.

【0032】(6)Fα2−マクログロブリン・ポリリ
ジン・βガラクトシダーゼ遺伝子DNA複合体の動物細
胞への導入 ヒト肝癌由来細胞株HepG2を10%牛胎児血清を添
加したMEM培地中で培養した。上記のように作製した
Fα2−マクログロブリン・ポリリジン・βガラクトシ
ダーゼ遺伝子DNA複合体を10%牛胎児血清及び10
0μMクロロキンを添加したMEM培地1mlに加えた。
この培地中で細胞を4時間培養した。その後新しいME
M培地に交換し、2日間培養した。
(6) Introduction of Fα 2 -macroglobulin / polylysine / β-galactosidase gene DNA complex into animal cells Human hepatoma-derived cell line HepG2 was cultured in MEM medium supplemented with 10% fetal calf serum. The Fα 2 -macroglobulin / polylysine / β-galactosidase gene DNA complex prepared as described above was treated with 10% fetal bovine serum and 10%.
It was added to 1 ml of MEM medium supplemented with 0 μM chloroquine.
The cells were cultured in this medium for 4 hours. Then a new ME
The medium was replaced with M medium and the cells were cultured for 2 days.

【0033】(7)導入細胞におけるβガラクトシダー
ゼの発現 基質として用いるクロロフェノールレッド−β−ガラク
トピラノシドはベーリンガーマンハイム社より入手し
た。細胞を溶解し、その上清のβガラクトシーダーゼ活
性をクロロフェノールレッド−β−ガラクトピラノシド
を基質として測定した。
(7) Expression of β-galactosidase in introduced cells Chlorophenol red-β-galactopyranoside used as a substrate was obtained from Boehringer Mannheim. The cells were lysed, and the β-galactosidase activity of the supernatant was measured using chlorophenol red-β-galactopyranoside as a substrate.

【0034】1)Fα2−マクログロブリン・ポリリジ
ン・βガラクトシダーゼ遺伝子DNA複合体と、対照と
するSH基付加ポリリジン・βガラクトシダーゼ遺伝子
複合体との、導入遺伝子発現量に関する比較
1) Comparison of transgene expression level between Fα 2 -macroglobulin / polylysine / β-galactosidase gene DNA complex and SH group-added polylysine / β-galactosidase gene complex as a control

【0035】HepG2細胞を35mmの培養皿で培養
し、これに上記の方法に従って遺伝子導入を行った。加
えたポリリジン誘導体(pL−SH)は培養皿あたり
2.9μgである。また、加えた遺伝子DNA量は1μ
gである。図1は、2日間培養後、βガラクトシダーゼ
活性を測定し、対照とする無処理の細胞における測定値
を100として相対値により表示したものである。この
結果が示すように、Fα2−マクログロブリン・ポリリ
ジン・βガラクトシダーゼ遺伝子DNA複合体によっ
て、無処理群(control)に比較して有意に高い
βガラクトシダーゼ発現量を認めた(DNA+pL−S
H+Fα2M−DP)。また、SH化ポリリジンとDN
Aとの会合体(DNA+pL−SH)ならびに反応基を
導入しないFα 2−マクログロブリンと、SH化ポリリ
ジンとDNAとの混合した溶液(DNA+pL−SH+
Fα2M(フリー))は、遺伝子導入に寄与しなかっ
た。即ち、これらは結合していなければ効果を奏しな
い。図1中の棒グラフの中に記入している数値は、pL
−SHに対するFα2−マクログロブリン誘導体(Fα2
M−DP)のモル比を示しており、1:1.6の比率に
おいて、対照群の5倍以上の発現量を認めた。
Culturing HepG2 cells in a 35 mm culture dish
Then, gene transfer was performed according to the above method. Addition
The obtained polylysine derivative (pL-SH) per culture dish
It is 2.9 μg. The amount of added gene DNA is 1μ
g. Figure 1 shows β-galactosidase after 2 days of culture.
Measured activity, measured in untreated cells as control
Is expressed as a relative value with 100 as 100. this
As the results show, FαTwo-Macroglobulin porili
By the gin / β-galactosidase gene DNA complex
Significantly higher than the untreated group (control)
The expression level of β-galactosidase was observed (DNA + pL-S
H + FαTwoM-DP). In addition, SH-modified polylysine and DN
The association with A (DNA + pL-SH) and the reactive group
Not introduced Fα Two-Macroglobulin and SH-modified poly
A mixed solution of gin and DNA (DNA + pL-SH +
TwoM (free) does not contribute to gene transfer
Was. That is, they do not work unless they are combined.
No. The value entered in the bar graph in Fig. 1 is pL.
-Fα for SHTwo-Macroglobulin derivative (FαTwo
M-DP) molar ratio is shown in the ratio of 1: 1.6.
In addition, the expression level was 5 times or more that of the control group.

【0036】2)Fα2−マクログロブリン・ポリリジ
ン・βガラクトシダーゼ遺伝子DNA複合体の適用量と
導入遺伝子発現量との相関 細胞の培養条件は上記と同様である。また、加えた遺伝
子DNA量はすべて1μg、ならびに加えたFα2M−
DPも全て260pmolである。本実験では、添加し
たpL−SHの量が80pmol程度で最大の遺伝子導
入効率が得られ、無添加の場合の6倍以上に達する高い
βガラクトシダーゼ発現量を認めた。さらに多量のpL
−SHを添加することによって発現量は減少した(図
2)。この結果は遺伝子DNAとpL−SHとが化学量
論的な会合によって遺伝子DNA導入に寄与しているこ
と、ならびに多量のポリリジンの存在は、細胞表層にお
けるFα2−マクログロブリンとその受容体との相互作
用に拮抗することを示唆している。
2) Correlation between applied amount of Fα 2 -macroglobulin / polylysine / β-galactosidase gene DNA complex and transgene expression level The cell culture conditions are the same as above. In addition, the amount of added gene DNA was all 1 μg, and the added Fα 2 M-
DP is also 260 pmol. In this experiment, maximum gene transfer efficiency was obtained when the amount of pL-SH added was about 80 pmol, and a high β-galactosidase expression amount that was 6 times or more that of the case of no addition was observed. Larger amount of pL
The expression level was decreased by adding -SH (Fig. 2). This result indicates that the gene DNA and pL-SH contribute to the gene DNA transfer by stoichiometric association, and the presence of a large amount of polylysine shows that Fα 2 -macroglobulin and its receptor are present on the cell surface. It suggests to antagonize the interaction.

【0037】[0037]

【発明の効果】本発明の複合体は、細胞表層と高親和性
で結合していることから、SH基導入ポリリジンのよう
な静電的な親和性のみに基づく遺伝子導入媒体と比較し
て、遺伝子導入の効果がよい。本発明の複合体は、異種
タンパク質、ウイルス等を使用しないことにより、遺伝
子導入のともなう安全性が高い。
INDUSTRIAL APPLICABILITY Since the complex of the present invention binds to the cell surface with high affinity, it can be compared with a gene transfer medium based only on electrostatic affinity such as SH group-introduced polylysine. The effect of gene transfer is good. Since the complex of the present invention does not use a heterologous protein, virus, etc., it is highly safe with gene transfer.

【0038】本発明の複合体は、分子量3.5万程度の
塩基性高分子及び分子量70万程度のFα2−マクログ
ロブリンが複合体の分子量を構成する主成分であるた
め、ウイルス、リポソーム等の巨大かつ複雑な分子を媒
体として使用する必要がない。
In the complex of the present invention, a basic polymer having a molecular weight of about 35,000 and Fα 2 -macroglobulin having a molecular weight of about 700,000 are the main components constituting the molecular weight of the complex. There is no need to use large and complex molecules of as a medium.

【0039】本発明に使用するα2−マクログロブリン
はF型に変換したものであり、通常型のα2−マクログ
ロブリンがα2−マクログロブリン受容体に親和性がな
いことと対比して親和性があることから、通常型のα2
−マクログロブリンが多量に混在する環境においても受
容体に親和性を有し、トランスフェリンを使用する遺伝
子導入媒体と比較して、多量の血清タンパク質の存在下
での遺伝子導入の効果が期待できる。本発明複合体に含
まれるFα2−マクログロブリンは、トランスフェリン
と異なり、マクロファージ、肝実質細胞など、通常は細
胞増殖性が低く、トランスフェリン受容体が少ない細胞
種にその受容体が多量に存在していることから、トラン
スフェリンを用いるリガンド複合体遺伝子導入法と異な
った標的細胞を標的細胞とすることができる。とくにマ
クロファージ等、抗原提示能を有する細胞に受容体が存
在することから、遺伝子導入によるワクチン、即ちDN
Aワクチンへの応用を可能とするものである。
The α 2 -macroglobulin used in the present invention has been converted into F type, and it has an affinity in comparison with the normal type α 2 -macroglobulin having no affinity for the α 2 -macroglobulin receptor. Because of its nature, the normal type α 2
-Even in an environment in which macroglobulin is present in a large amount, it has an affinity for the receptor, and compared with a gene transfer medium using transferrin, the effect of gene transfer in the presence of a large amount of serum protein can be expected. Unlike transferrin, Fα 2 -macroglobulin contained in the complex of the present invention has a large amount of the receptor in cell types such as macrophages and hepatic parenchymal cells that normally have low cell proliferation and few transferrin receptors. Therefore, a target cell different from the ligand complex gene transfer method using transferrin can be used as the target cell. In particular, since the receptor is present in cells having antigen-presenting ability such as macrophages, a vaccine by gene transfer, namely DN
It is possible to apply to A vaccine.

【図面の簡単な説明】[Brief description of the drawings]

【図1】本発明方法と対照方法の導入遺伝子発現量を示
す図である。
FIG. 1 is a graph showing the transgene expression levels of the method of the present invention and the control method.

【図2】ポリリジンの量と導入遺伝子発現量との関係を
示す図である。
FIG. 2 is a diagram showing the relationship between the amount of polylysine and the expression amount of transgene.

Claims (7)

【特許請求の範囲】[Claims] 【請求項1】 F型α2−マクログロブリン、DNAと
会合する特性を有する分子及びDNAが結合した遺伝子
導入用複合体。
1. A complex for gene transfer in which F-type α 2 -macroglobulin, a molecule having a property of associating with DNA, and DNA are bound.
【請求項2】 F型α2−マクログロブリンと、DNA
と会合する特性を有する分子とが直接又は架橋剤を介し
て結合した結合体にDNAを会合させたものである請求
項1記載の遺伝子導入用複合体。
2. F-type α 2 -macroglobulin and DNA
The gene-introducing complex according to claim 1, wherein the molecule is associated with a molecule having a property of associating with DNA, or a DNA is associated with a conjugate bound through a crosslinking agent.
【請求項3】 DNAと会合する特性を有する分子とD
NAとの会合体に、直接又は架橋剤を介してF型α2
マクログロブリンを結合させたものである請求項1記載
の遺伝子導入用複合体。
3. A molecule having the property of associating with DNA and D
F-type α 2 − in association with NA, directly or through a cross-linking agent
The complex for gene transfer according to claim 1, which is bound with macroglobulin.
【請求項4】 DNAと会合する特性を有する分子が、
(A)塩基性高分子、(B)塩基性高分子と陽性電荷脂
肪酸もしくはその誘導体との会合体又は(C)塩基性高
分子とウイルスのフュージョンペプチドである請求項
1、2又は3記載の遺伝子導入用複合体。
4. A molecule having the property of associating with DNA,
The fusion peptide of (A) a basic polymer, (B) a basic polymer and a positively charged fatty acid or its derivative, or (C) a basic polymer and a virus fusion peptide. Complex for gene transfer.
【請求項5】 塩基性高分子がポリリジンである請求項
4記載の遺伝子導入用複合体。
5. The gene transfer complex according to claim 4, wherein the basic polymer is polylysine.
【請求項6】 架橋剤がN−サクシニミジル−3−(2
−ピリジルジチオ)プロピオネイト(SPDP)である
請求項2又は3記載の遺伝子導入用複合体。
6. The cross-linking agent is N-succinimidyl-3- (2
The complex for gene transfer according to claim 2 or 3, which is -pyridyldithio) propionate (SPDP).
【請求項7】 請求項1〜6のいずれか1項記載の遺伝
子導入用複合体を、F型α2−マクログロブリンと特異
的に相互作用する受容体を細胞表層に有するヒト又は動
物細胞に接触させることを特徴とする遺伝子導入法。
7. A human or animal cell having the receptor for specifically interacting with F-type α 2 -macroglobulin in the cell surface of the complex for gene transfer according to any one of claims 1 to 6. A gene transfer method characterized by contacting.
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