JPH0827197A - Antibody recognizing cytochrome p4502a4 originated from man - Google Patents

Antibody recognizing cytochrome p4502a4 originated from man

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JPH0827197A
JPH0827197A JP6161552A JP16155294A JPH0827197A JP H0827197 A JPH0827197 A JP H0827197A JP 6161552 A JP6161552 A JP 6161552A JP 16155294 A JP16155294 A JP 16155294A JP H0827197 A JPH0827197 A JP H0827197A
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antibody
cytochrome
human
derived cytochrome
derived
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JP6161552A
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Japanese (ja)
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Yoshihiko Funae
良彦 舩江
Susumu Imaoka
進 今岡
Yasushi Matsuki
泰 松木
Koji Hayashi
浩司 林
Yoshiyasu Yabusaki
義康 藪崎
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Sumitomo Chemical Co Ltd
Original Assignee
Sumitomo Chemical Co Ltd
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Abstract

PURPOSE:To obtain an antibody capable of accurately and simply determining a cytochrome P450 molecule species in a living body, because of specifically recognizing the specific cytochrome P450 molecule species originated from a man. CONSTITUTION:The antibody substantially not exhibiting cross reactivity with cytochrome P450 molecule species originated from other men and recognizing the cytochrome P4503A4 originated from a man is obtained by collecting blood from a mammalian immunologically sensitized with the cytochrome P4503A4 originated from the man as an antigen, separating the antibody from the blood and subsequently purifying the antibody. The cytochrome P4503A4 originated from the man is obtained by extracting from a yeast as a transformant expressing the cytochrome P4503A4 originated from the man and subsequently purifying the extracted cytochrome P4503A4.

Description

【発明の詳細な説明】Detailed Description of the Invention

【0001】[0001]

【産業上の利用分野】本発明はヒト由来のチトクロムP
4503A4を認識する抗体に関する。
FIELD OF THE INVENTION The present invention relates to human-derived cytochrome P.
It relates to an antibody that recognizes 4503A4.

【0002】[0002]

【従来の技術】チトクロムP450は生体が取り込んだ
薬物、異物、環境汚染物質などの酸化的代謝(解毒およ
び代謝活性化)、生体内生理活性物質の生合成など極め
て多彩な反応に関与する要因の1つとして、チトクロム
P450が互いに重複した基質特異性を有する多数の分
子種から構成されることが挙げられる。そして、生体に
薬物を投与すると、特定のチトクロムP450分子種が
誘導されることがよく知られている。一方、新規薬物の
開発においては、ヒトにおける薬物の代謝、効果、毒性
を早期に予測、評価することが極めて重要な課題であ
る。そのためにはヒト生体内のチトクロムP450分子
種の分布および存在量を知る必要がある。そして近年、
チトクロムP450には動物種差や人種差があることが
明らかになってきており、たとえば特定の薬物を代謝す
るチトクロムP450分子種を遺伝的に欠損する人種の
場合、薬物の効果が強く、さらには副作用を生じること
などの症例が報告されるようになってきた。また、生体
内のチトクロムP450分子種の量は高血圧や糖尿病な
どの病態により変動することも知られるようになった。
2. Description of the Related Art Cytochrome P450 is a factor involved in a wide variety of reactions such as oxidative metabolism (detoxification and metabolic activation) of drugs, foreign substances and environmental pollutants taken up by the living body, biosynthesis of physiologically active substances in vivo. One is that cytochrome P450s are composed of multiple molecular species with substrate specificities that overlap with each other. It is well known that administration of a drug to a living body induces a specific cytochrome P450 molecular species. On the other hand, in the development of new drugs, early prediction and evaluation of drug metabolism, effects, and toxicity in humans are extremely important subjects. For that purpose, it is necessary to know the distribution and abundance of cytochrome P450 molecular species in the human body. And in recent years
It has become clear that cytochrome P450 has differences in animal species and races. For example, in the case of a race that genetically lacks a cytochrome P450 molecular species that metabolizes a specific drug, the effect of the drug is strong and Cases such as side effects have come to be reported. It has also become known that the amount of cytochrome P450 molecular species in the living body varies depending on the pathological condition such as hypertension and diabetes.

【0003】[0003]

【発明が解決しようとする課題】こうした状況から、ヒ
トにおける薬物の代謝、効果、毒性等の早期予測、評価
をより正確に行うために生体内のチトクロムP450分
子種を正確にしかも簡便に定量する方法が望まれてい
る。こうした課題を解決するために、ラット、ウサギな
どの実験動物のチトクロムP450分子種を認識する抗
体を用いることも考えられるが、チトクロムP450に
は動物種間による相違があることおよび必ずしも目的の
チトクロムP450分子種のみを特異的に認識する能力
がないことから、必ずしも正確な評価とはなり得ない。
従って、ヒト由来のチトクロムP450分子種の定量を
正確に行うためにヒト由来のチトクロムP450分子種
を認識しかつ目的とする特定なチトクロムP450分子
種のみを特異的に認識する抗体が必要であった。
Under these circumstances, in order to more accurately predict and evaluate the metabolism, effect, toxicity, etc. of drugs in humans, it is possible to quantify cytochrome P450 molecular species in vivo accurately and simply. A method is desired. In order to solve these problems, it is possible to use an antibody that recognizes a cytochrome P450 molecular species of experimental animals such as rat and rabbit. However, there are differences in the cytochrome P450 between animal species and the required cytochrome P450. Since it is not capable of specifically recognizing only a molecular species, it cannot always be an accurate evaluation.
Therefore, in order to accurately quantify human-derived cytochrome P450 molecular species, an antibody that recognizes human-derived cytochrome P450 molecular species and specifically recognizes only a specific cytochrome P450 molecular species of interest has been required. .

【0004】[0004]

【課題を解決するための手段】本発明者らは、こうした
状況を鑑み、ヒト由来のチトクロムP450分子種を認
識しかつ目的とする特定なチトクロムP450分子種の
みを特異的に認識する抗体を作製するために、組換えD
NA技術を用いることによって所望の抗体を得ることに
成功し、本発明を完成した。すなわち、本発明は、ヒト
由来のチトクロムP4503A4を発現する形質転換体
である酵母から抽出および精製されたヒト由来のチトク
ロムP4503A4を抗原として免疫感作化した哺乳動
物から血液を採取し、該血液から分離・精製して得られ
うる、他のヒト由来のチトクロムP450分子種に対し
て交差反応性を実質的に示さないことを特徴とするヒト
由来のチトクロムP4503A4を認識する抗体(以
下、本発明抗体と記す。)を提供するものである。
In view of such circumstances, the present inventors have prepared an antibody that recognizes a human-derived cytochrome P450 molecular species and specifically recognizes only a specific cytochrome P450 molecular species of interest. In order to do recombinant D
We succeeded in obtaining the desired antibody by using NA technology, and completed the present invention. That is, the present invention collects blood from a mammal immunized with human-derived cytochrome P4503A4 as an antigen, which is extracted and purified from yeast, which is a transformant expressing human-derived cytochrome P4503A4, and collects blood from the blood. An antibody that recognizes human-derived cytochrome P450 3A4, which does not substantially cross-react with other human-derived cytochrome P450 molecular species that can be obtained by separation and purification (hereinafter referred to as the antibody of the present invention. Is provided).

【0005】以下、さらに詳細に本発明を説明する。本
発明でいう「ヒト由来のチトクロムP4503A4を認
識する抗体」とは、ヒト由来のチトクロムP4503A
4以外の他のヒト由来のチトクロムP450分子種に対
して交差反応性を実質的に示さないものであればいかな
る方法によって得てもよいが、哺乳動物を免疫感作する
ために用いられる抗原は、ヒト由来のチトクロムP45
03A4以外の他のヒト由来のチトクロムP450分子
種を実質的に混入しないヒト由来のチトクロムP450
3A4を用いる必要がある。ここで、ヒト由来のチトク
ロムP4503A4はヒトの肝臓からも精製することは
できるが、得られるチトクロムP450はどうしても類
似のチトクロムP450分子種が若干混在してしまい、
単一な状態にまで精製することはきわめて難しい。特に
含量が少ないにもかかわらず、重要な薬物の代謝に関与
するチトクロムP450分子種の場合、単一な状態にま
で精製は不可能である。このような試料を抗原として用
いれば、ヒト由来のチトクロムP4503A4以外の他
のヒト由来のチトクロムP450分子種に対して交差反
応性を実質的に示さない抗体を製造することはできな
い。また仮にきわめて単一な状態にまで精製できたとし
ても得られる量がきわめて少量なために哺乳動物を充分
に免疫感作することができない、もしくはきわめて低い
抗体価のものしか得られない等の問題が生じる。また、
そもそもヒトの肝臓を大量に入手することは倫理的、技
術的に不可能に近く、現実的ではない。これに対して、
本発明で用いた方法は、組換えDNA技術によって特定
のチトクロムP450分子種のみを発現する形質転換体
である酵母から哺乳動物を免疫感作するために用いられ
る抗原を抽出および精製する方法であって、これによっ
てヒト由来のチトクロムP4503A4以外の他のヒト
由来のチトクロムP450分子種を実質的に混入しない
ような高い純度のヒト由来のチトクロムP4503A4
を大量に、しかも容易に得ることができる。
The present invention will be described in more detail below. The “antibody that recognizes human-derived cytochrome P4503A4” in the present invention means human-derived cytochrome P4503A.
Other than 4, any human-derived cytochrome P450 molecular species may be obtained by any method as long as it does not substantially show cross-reactivity. The antigen used for immunizing a mammal is , Human-derived cytochrome P45
Human-derived cytochrome P450 other than 03A4, which does not substantially contaminate molecular species of human-derived cytochrome P450
It is necessary to use 3A4. Here, human-derived cytochrome P450 3A4 can be purified also from human liver, but the obtained cytochrome P450 is inevitably mixed with similar cytochrome P450 molecular species,
It is extremely difficult to purify to a single state. In the case of cytochrome P450 molecular species which is involved in the metabolism of important drugs although it is particularly small in content, purification to a single state is impossible. If such a sample is used as an antigen, it is not possible to produce an antibody that does not substantially show cross-reactivity with other human-derived cytochrome P450 molecular species other than human-derived cytochrome P450 3A4. Further, even if it could be purified to an extremely single state, the amount obtained would be so small that it would not be possible to sufficiently immunize a mammal, or that only a very low antibody titer could be obtained. Occurs. Also,
In the first place, obtaining a large amount of human liver is ethically and technically impossible and impractical. On the contrary,
The method used in the present invention is a method of extracting and purifying an antigen used for immunizing a mammal from yeast, which is a transformant expressing only a specific cytochrome P450 molecular species, by recombinant DNA technology. As a result, a human-derived cytochrome P4503A4 of high purity that does not substantially contaminate other human-derived cytochrome P450 molecular species other than human-derived cytochrome P4503A4.
Can be obtained in large quantities and easily.

【0006】具体的には、(1)ヒト由来のチトクロム
P4503A4をコードする遺伝子をクローニングし、
(2)クローニングした遺伝子を酵母で発現させるため
の発現プラスミドを構築し、(3)構築した酵母発現プ
ラスミドを酵母に導入し、ヒト由来のチトクロムP45
03A4を発現する組換え体酵母を作製し、(4)作製
した組換え体酵母を培養し、これを破砕後、酵母ミクロ
ソーム画分を調製し、(5)該画分を界面活性剤等を用
いて可溶化後、得られる可溶化上清をオクチルアミノセ
ファロースカラムクロマトグラフィー、陰イオン交換カ
ラムクロマトグラフィー、ハイドロキシアパタイトカラ
ムクロマトグラフィー等の各種カラムクロマトグラフィ
ーによって精製し、(6)精製したヒト由来のチトクロ
ムP4503A4を抗原として哺乳動物を免疫感作化
し、(7)該哺乳動物から血液を採取し、採取した血液
から本発明抗体を分離・精製する、方法があげられる。
Specifically, (1) a gene encoding human-derived cytochrome P4503A4 was cloned,
(2) An expression plasmid for expressing the cloned gene in yeast is constructed, (3) the constructed yeast expression plasmid is introduced into yeast, and human-derived cytochrome P45
Recombinant yeast expressing 03A4 is prepared, (4) the prepared recombinant yeast is cultured, and after crushing this, a yeast microsome fraction is prepared, and (5) the fraction is treated with a surfactant or the like. After solubilization using, the resulting solubilized supernatant was purified by various column chromatography such as octylamino sepharose column chromatography, anion exchange column chromatography, and hydroxyapatite column chromatography, and (6) purified human-derived Examples include a method of immunizing a mammal with cytochrome P4503A4 as an antigen, (7) collecting blood from the mammal, and isolating and purifying the antibody of the present invention from the collected blood.

【0007】上記の「ヒト由来のチトクロムP4503
A4をコードする遺伝子」の塩基配列は配列表中の配列
番号5で示されており、ヒト由来のチトクロムP450
3A4をコードする遺伝子は市販のヒト肝細胞由来のc
DNAライブラリーからPCRなど通常の方法を用いて
単離することができる。
The above-mentioned "human-derived cytochrome P4503
The base sequence of the "gene encoding A4" is shown in SEQ ID NO: 5 in the sequence listing, and human-derived cytochrome P450
The gene encoding 3A4 is c derived from commercially available human hepatocytes.
It can be isolated from a DNA library using a conventional method such as PCR.

【0008】ヒト由来のチトクロムP4503A4をコ
ードする遺伝子を酵母で発現させるためのプロモーター
としては、通常の酵母発現系において用いられるプロモ
ーターであれば特に制限されるものではないが、例えば
酵母アルコール脱水素酵素遺伝子のプロモーター(以
下、ADHプロモーターと記す)、グリセルアルデヒド
ー3リン酸脱水素酵素遺伝子のプロモ−タ−(以下、G
APDHプロモーターと記す)、フォスフォグリセリン
酸キナーゼ遺伝子のプロモ−タ−(以下、PGKプロモ
ーターと記す)等をあげることができる。なお、ADH
プロモーターは、例えば酵母ADH1プロモーターおよ
び同ターミネーターを保持する酵母発現ベクターpAA
H5(Washington Research Foundationから入手可能、
Ammerer ら、Methods in Enzymology, 101 (p.192-20
1))から通常の遺伝子操作方法により調製することがで
きる。酵母ADH1プロモーターは、Washington Resea
rch Foundation の米国特許第299,733 に含まれてお
り、米国において、工業的、商業的目的で使用する場合
は権利者からの権利許諾を必要とする。上記の酵母内で
発現させるためのプロモーターおよび前記のヒト由来の
P450分子種をコードする塩基配列を有する遺伝子を
含む酵母内発現プラスミドは通常の遺伝子組換え方法を
用いて構築することができる。例えば、ヒト由来のP4
50分子種をコードするcDNAを特開平2-211880等に記載
されるADHプロモーターとターミネーターを保有する
酵母発現ベクターpAAH5NのHindIII部位に
挿入することにより構築する方法等をあげることができ
る。
The promoter for expressing the gene encoding human-derived cytochrome P450 3A4 in yeast is not particularly limited as long as it is a promoter used in a normal yeast expression system. For example, yeast alcohol dehydrogenase. Gene promoter (hereinafter referred to as ADH promoter), glyceraldehyde-3phosphate dehydrogenase gene promoter (hereinafter referred to as G
Examples thereof include an APDH promoter), a promoter of a phosphoglycerate kinase gene (hereinafter referred to as a PGK promoter), and the like. In addition, ADH
The promoter is, for example, a yeast expression vector pAA having the yeast ADH1 promoter and the terminator.
H5 (available from Washington Research Foundation,
Ammerer et al., Methods in Enzymology, 101 (p.192-20
It can be prepared from 1)) by a conventional gene manipulation method. The yeast ADH1 promoter is the Washington Resea
Included in US Patent No. 299,733 of the rch Foundation and requires license from the right holder for industrial or commercial use in the United States. The yeast expression plasmid containing the above-mentioned promoter for expression in yeast and the above-mentioned gene having a nucleotide sequence encoding a human-derived P450 molecular species can be constructed by a conventional gene recombination method. For example, human-derived P4
A method of constructing by inserting a cDNA encoding 50 molecular species into the HindIII site of the yeast expression vector pAAH5N having the ADH promoter and terminator described in JP-A-2-211880 and the like can be mentioned.

【0009】ヒト由来のチトクロムP4503A4を発
現する組換え体酵母は、構築された酵母発現プラスミド
を、例えばプロトプラスト法等の通常の方法によって酵
母に導入することで得ることができる。本発明システム
において用いられる酵母菌株としては、例えばサッカロ
ミセス・セレビジェー(Saccharomyces cerevisiae)等を
あげることができる。好ましくはサッカロミセス・セレ
ビジェーAH22株(ATCC38626)があげられ
る。
Recombinant yeast expressing human-derived cytochrome P450 3A4 can be obtained by introducing the constructed yeast expression plasmid into yeast by a conventional method such as the protoplast method. Examples of the yeast strain used in the system of the present invention include Saccharomyces cerevisiae. Preferred is Saccharomyces cerevisiae AH22 strain (ATCC38626).

【0010】組換え体酵母からのチトクロムP450分
子種の抽出および精製は、例えば、J.Biochem., Vol 9
8. No.1. p167-175 (1985) 等に記載された通常の方法
に従い行うことができる。具体的には、作製した組換え
体酵母を培養し、得られた酵母を溶菌酵素等によるスフ
ェロプラスト化後、超音波破砕する。遠心分離によって
酵母ミクロソーム画分を調製し、該画分を界面活性剤お
よびコール酸ナトリウム等を用いて可溶化後(必要に応
じて硫酸アンモニウムまたはポリエチレングリコール等
による沈殿を行う)、得られる可溶化上清をオクチルア
ミノセファロースカラムクロマトグラフィー、陰イオン
交換カラムクロマトグラフィー、ハイドロキシアパタイ
トカラムクロマトグラフィー等の各種カラムクロマトグ
ラフィーによって精製する。なお高速液体クロマトグラ
フィー装置で分離・精製することが適している。
Extraction and purification of cytochrome P450 molecular species from recombinant yeast is described, for example, in J. Biochem., Vol 9
8. No.1. Can be performed according to the usual method described in p167-175 (1985). Specifically, the produced recombinant yeast is cultured, the obtained yeast is spheroplasted with a lytic enzyme or the like, and then ultrasonically disrupted. A yeast microsome fraction was prepared by centrifugation, solubilized with a detergent and sodium cholate, etc. (precipitation with ammonium sulfate, polyethylene glycol, etc., if necessary), and then solubilized. The residue is purified by various column chromatography such as octylamino sepharose column chromatography, anion exchange column chromatography and hydroxyapatite column chromatography. It is suitable to separate and purify with a high performance liquid chromatography device.

【0011】本発明抗体の作製は、このようにして精製
したヒト由来のチトクロムP4503A4を抗原として
哺乳動物を免疫感作化し、該哺乳動物から血液を採取
し、採取した血液から本発明抗体を分離・精製すること
により行うことができる。例えばマウス、ハムスター、
モルモット、ニワトリ、ラット、ウサギ、イヌ等の哺乳
動物を免疫するには、例えばJ.ASSOC.OFF.ANAL.CHEM 70
(6) 1025-1027 (1987)等に記載されるW.H.Newsome等の
通常の免疫感作の方法を用いて、例えば抗原の1回また
はそれ以上の投与により行われる。例えば、7ないし3
0日、特に12ないし16日間隔で2または3回の投与
等が好ましい。投与量は1回につき、例えば抗原約0.
05から2mg程度を目安とする。投与経路は、皮下投
与、皮内投与、腹膜腔内投与、静脈内投与、筋肉内投与
等を選択することができるが、静脈内、腹膜腔内もしく
は皮下に行われうる注射が好ましい投与形態である。さ
らに皮下注射と腹腔内注射の組み合わせが特に好まし
い。なおこの場合、抗原は適当な緩衝液、例えば完全フ
ロイントアジュバント(Aracel A.Bayol F 結核死菌を
混合したもの)、RAS〔MPL(Monophosphoryl Lipid
A)+TDM(Synthetic Trehalose Dicorynomycolate)+CWS(C
ell Wall Skeleton) アジュバントシステム、水酸化ア
ルミニウム等の通常用いられるアジュバントの1種を含
有するナトリウム系リン酸緩衝液、生理食塩水等に溶解
して用いられるが、投与経路や条件等によっては、上記
のようなアジュバントを使用しないこともある。ここで
アジュバントとは抗原とともに投与したとき、非特異的
にその抗原に対する免疫反応を増強する物質を意味す
る。そして、上記の哺乳動物を0.5ないし4ケ月間処
置せずに放置した後、該哺乳動物の血清を耳静脈等から
少量サンプリングし、抗体価を測定する。抗体価が上昇
してきたら、状況に応じて抗原の投与を適当回数実施す
る。例えば100μgないし1000μg、特に50μ
gないし500μgの抗原の投与量でもう1回の投与が
行われる。最後の投与の1ないし2ケ月間後に免疫感作
した哺乳動物から通常の方法により血液を採取して、該
血液を、例えば遠心分離、硫酸アンモニウムまたはポリ
エチレングリコールを用いることによる沈澱、ゲルろ過
クロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー、
アフィニティクロマトグラフィー等のクロマトグラフィ
ー等の通常の方法によって分離・精製することにより、
ポリクローナル抗血清として本発明抗体を得ることがで
きる。なお血清は、たとえば、56℃で30分間処理す
ることによって補体系の不活性化を実施してもよい。
The antibody of the present invention is prepared by immunizing a mammal with human-derived cytochrome P4503A4 thus purified, collecting blood from the mammal, and separating the antibody of the present invention from the collected blood. -Can be performed by purification. Mouse, hamster,
For immunizing mammals such as guinea pigs, chickens, rats, rabbits and dogs, for example, J.ASSOC.OFF.ANAL.CHEM 70
(6) It is carried out by using an ordinary immunization method such as WH Newsome described in 1025-1027 (1987) etc. by, for example, one or more administrations of the antigen. For example, 7 to 3
Administration on day 0, especially 2 or 3 times at intervals of 12 to 16 days is preferred. The dose may be, for example, about 0.
As a guideline, use about 05 to 2 mg. The route of administration can be selected from subcutaneous administration, intradermal administration, intraperitoneal administration, intravenous administration, intramuscular administration and the like, but injection which can be performed intravenously, intraperitoneally or subcutaneously is preferable. is there. Furthermore, a combination of subcutaneous injection and intraperitoneal injection is particularly preferable. In this case, the antigen is an appropriate buffer such as complete Freund's adjuvant (mixed with Aracel A. Bayol F. tuberculosis killed bacteria), RAS [MPL (Monophosphoryl Lipid
A) + TDM (Synthetic Trehalose Dicorynomycolate) + CWS (C
ell Wall Skeleton) Adjuvant system, sodium phosphate buffer containing one of the commonly used adjuvants such as aluminum hydroxide, physiological saline, etc., but depending on the route of administration and conditions, etc. In some cases, an adjuvant such as is not used. Here, the adjuvant means a substance that nonspecifically enhances an immune response to the antigen when administered together with the antigen. Then, after leaving the above mammals without treatment for 0.5 to 4 months, a small amount of serum of the mammals is sampled from an ear vein or the like to measure the antibody titer. When the antibody titer rises, the antigen is administered a suitable number of times depending on the situation. For example 100 μg to 1000 μg, especially 50 μg
Another dose is given at a dose of g to 500 μg of antigen. One or two months after the last administration, blood is collected from the immunized mammal by a conventional method, and the blood is subjected to, for example, centrifugation, precipitation by using ammonium sulfate or polyethylene glycol, gel filtration chromatography, Ion exchange chromatography,
By separating and purifying by a usual method such as chromatography such as affinity chromatography,
The antibody of the present invention can be obtained as a polyclonal antiserum. The serum may be treated at 56 ° C. for 30 minutes to inactivate the complement system.

【0012】また、上記の免疫感作した哺乳動物から免
疫適格B細胞が単離され、該免疫適格B細胞が連続的に
細胞分裂し得る腫瘍細胞と融合され、生成する融合物が
単離され、そして選択の後、所望の抗体を産生するハイ
ブリドーマ細胞がクローン化され、そしてモノクローナ
ル抗体を製造するために該ハイブリドーマ細胞が試験管
内または生体内で培養されることにより、ヒト由来のチ
トクロムP4503A4以外の他のヒト由来のチトクロ
ムP450分子種に対して交差反応性を実質的に示さな
い高度の特異性および親和性を有する本発明抗体も製造
することができる。
Immunocompetent B cells are isolated from the immunized mammals described above, the immunocompetent B cells are fused with tumor cells capable of continuous cell division, and the resulting fusion product is isolated. , And, after selection, a hybridoma cell that produces the desired antibody is cloned, and the hybridoma cell is cultured in vitro or in vivo to produce a monoclonal antibody, whereby a human-derived cytochrome P4503A4 other than Antibodies of the invention having a high degree of specificity and affinity that do not substantially show cross-reactivity with other human-derived cytochrome P450 molecular species can also be produced.

【0013】本発明抗体は、ヒト由来のチトクロムP4
503A4以外の他のヒト由来のチトクロム分子種に対
して交差反応性を実質的に示さないことを特徴とする新
規な抗体である。ここで「ヒト由来のチトクロムP45
03A4以外の他のヒト由来のチトクロム分子種に対し
て交差反応性を実質的に示さない」とは、目的とするヒ
ト由来のチトクロムP4503A4と異なる分子種のヒ
ト由来のチトクロムP450に対して、交差反応性が約
1/4未満、好ましくは約1/20未満、そしてより好
ましくは1/100未満であるような選択的認識が実質
的に可能であることを意味する。ここで、交差反応性の
程度は、例えばヒト由来のチトクロムP4503A4を
後述するイムノブロット法によって検出することができ
る基質蛋白質濃度を1とした時に他のヒト由来のチトク
ロム分子種が同方法によって検出されてくる濃度をCと
すれば、1/Cのように決定される。また、ヒト由来の
チトクロムP4503A4を発現する形質転換体である
酵母から抽出および精製されたヒト由来のチトクロムP
4503A4を抗原として免疫感作化した哺乳動物から
血液を採取し、該血液から分離・精製して得られる血清
の希釈率が10- 4 においてもヒト由来のチトクロムP
450分子種を認識する能力を有する。
The antibody of the present invention is human-derived cytochrome P4.
It is a novel antibody characterized by substantially not showing cross-reactivity to human-derived cytochrome molecular species other than 503A4. Here, "human-derived cytochrome P45
It does not substantially show cross-reactivity with other human-derived cytochrome P450 other than 03A4 ", and the target human-derived cytochrome P450 3A4 and a human-derived cytochrome P450 with a different molecular species are cross-reactive. It is meant that selective recognition is substantially possible such that the reactivity is less than about 1/4, preferably less than about 1/20, and more preferably less than 1/100. Here, the degree of cross-reactivity can be detected by, for example, human-derived cytochrome P4503A4 by the immunoblotting method described later, and when the substrate protein concentration is set to 1, other human-derived cytochrome molecular species are detected by the same method. If the incoming density is C, it is determined as 1 / C. Further, human-derived cytochrome P extracted and purified from yeast, which is a transformant expressing human-derived cytochrome P4503A4.
The 4503A4 Blood was collected from immunized Sakuka mammals as an antigen, the dilution of serum that is obtained by separation and purification from blood is 10 - cytochrome P also derived from humans in 4
It has the ability to recognize 450 molecular species.

【0014】本発明抗体の利用としては、ヒト由来のチ
トクロムP4503A4に作用させた本発明抗体または
該抗体に対する抗体を、それら抗体が有する標識によっ
て検出することによってヒト由来のチトクロムP450
3A4を免疫学的に検出する方法をあげることができ
る。具体的には、例えば、イムノブロット法、免疫沈降
による分離法、間接競合阻害法(ELISA 法)、細胞また
は組織の免疫学的染色法等によってヒト由来のチトクロ
ムP4503A4を分析する方法をあげることができ
る。該分析方法は、簡便でかつ迅速に処理できる精度の
高い分析方法である。例えば、以下の方法によって行う
ことができる。
The antibody of the present invention can be used by detecting the antibody of the present invention that has acted on human-derived cytochrome P450 3A4 or an antibody against the antibody, by means of a label possessed by these antibodies.
A method for immunologically detecting 3A4 can be mentioned. Specific examples include methods for analyzing human-derived cytochrome P4503A4 by immunoblotting, separation by immunoprecipitation, indirect competitive inhibition (ELISA), immunological staining of cells or tissues, and the like. it can. The analysis method is a simple and highly accurate analysis method that can be processed quickly. For example, it can be performed by the following method.

【0015】I.イムノブロット法 固体支持材に結合される試料に存在するヒト由来のチト
クロムP4503A4を本発明抗体(第1抗体)によっ
て認識させ、その抗体を検出する方法である。試料を結
合させる固体支持材としては、膜、シート、フィルター
等の形状にされたニトロセルロースが一般的に使用され
るが、試料の吸着がよくかつその試料に存在するヒト由
来のチトクロムP4503A4の抗原性を消失させない
ものであれば特に制限はない。ニトロセルロースを使用
する場合、試料のニトロセルロースへの結合は、例えば
リン酸緩衝生理食塩水等の適当な緩衝液に試料を溶解し
て得られた溶液をニトロセルロース上にスポットする。
なお、定量化のためのスポット量は、抗原であるヒト由
来のチトクロムP4503A4に対する本発明抗体(第
1抗体)の量が過剰になるような量が望ましく、1μl
/3mm角程度がよい。このようにしてスポットされた
ニトロセルロースを約1分間から約24時間、適当な湿
度条件下でインキュベートする。インキュベート後、ス
ポットした部位以外への非特異的な吸着を防止するため
に、試料を結合させた固体支持材を本発明抗体(第1抗
体)によって認識されない高分子量担体分子、すなわ
ち、本発明抗体(第1抗体)の製造において用いられな
い高分子量担体分子(ヤギ、ウシ等の別種の動物の血清
アルブミンやスキムミルク)を含む溶液と約20分間か
ら約24時間、室温下でインキュベートすることによっ
て該高分子量担体分子で固体支持材の表面を覆う。イン
キュベート後、得られた固体支持材をよく洗浄して遊離
状態にある上記の高分子量担体分子を除去する。このよ
うに調製された固体支持材を本発明抗体(第1抗体)を
含む調製液と混合した後、約10分間から約3時間、振
とうしながらインキュベートする。なお本発明抗体(第
1抗体)を含む調製液とは、本発明抗体(第1抗体)を
遊離の状態で、蒸留水、緩衝液、生理食塩水等の溶液中
に存在しうる調製液をいう。このようにして、試料に存
在するヒト由来のチトクロムP4503A4を本発明抗
体(第1抗体)によって認識させる。つぎに、その抗体
を検出する方法について説明する。本発明抗体(第1抗
体)が、例えばペルオキシダーゼ、アルカリホスファタ
ーゼ、β−D−ガラクトシダーゼ、グルコースオキシダ
ーゼ、グルコアミラーゼ、炭酸アンヒドラーゼ、アセチ
ルコリンエステラーゼ、リゾチーム、マレートデヒドロ
ゲナーゼ、グルコース−6−ホスフェートデヒドロゲナ
ーゼ等の酵素等で標識されている場合には、インキュベ
ート後、遊離の状態にある本発明抗体(第1抗体)を洗
浄によって除去してから、上記の標識酵素の基質を作用
させて、発色等で反応を測定することによって本発明抗
体(第1抗体)を検出することができる。例えば、 ペ
ルオキシダーゼで標識される場合には、基質として過酸
化水素、発色試薬としてジアミノベンジジンまたはO−
フェニレンジアミンと組み合わさって褐色または黄色を
生じる。グルコースオキシダーゼで標識される場合に
は、基質として、たとえば2,2'−アシド−ジ−(3
−エチルベンゾチアゾリン−6−スルホン酸(ABT
S)等を用いる。また、本発明抗体(第1抗体)を認識
しかつ結合する酵素あるいはラジオアイソトープ等で標
識された第2抗体を使用する場合には、インキュベート
後、遊離の状態にある本発明抗体(第1抗体)を洗浄に
よって除去してから、第2抗体とインキュベートする。
この酵素等で標識された第2抗体としては、例えばペル
オキシダーゼ、アルカリホスファターゼ、β−D−ガラ
クトシダーゼ、グルコースオキシダーゼ、グルコアミラ
ーゼ、炭酸アンヒドラーゼ、アセチルコリンエステラー
ゼ、リゾチーム、マレートデヒドロゲナーゼ、グルコー
ス−6−ホスフェートデヒドロゲナーゼ等の酵素を結合
した第1抗体(本発明抗体)に対する抗体をあげること
ができる。具体的な例としては、第1抗体(本発明抗
体)としてウサギ抗血清を使用する場合、第2抗体とし
ては、アルカリホスファターゼを結合した抗ウサギ免疫
グロブリン(IgG)ヤギ免疫グロブリン(IgG)を
好ましくあげることができる。なお、該ウサギIgGヤ
ギIgGは市販されており、容易に入手可能である。第
2抗体の検出としては、上記の標識された本発明抗体
(第1抗体)の場合と同様な方法をあげることができ
る。
I. Immunoblotting method This is a method in which human-derived cytochrome P4503A4 present in a sample bound to a solid support is recognized by the antibody of the present invention (first antibody) and the antibody is detected. Nitrocellulose in the form of a membrane, sheet, filter or the like is generally used as a solid support for binding a sample, but the human-derived cytochrome P4503A4 antigen that has good sample adsorption and is present in the sample. There is no particular limitation as long as it does not lose the sex. When nitrocellulose is used, the binding of the sample to nitrocellulose involves spotting the solution on the nitrocellulose obtained by dissolving the sample in a suitable buffer such as phosphate buffered saline.
The amount of spots for quantification is preferably such that the amount of the antibody of the present invention (first antibody) with respect to human-derived cytochrome P4503A4, which is an antigen, becomes excessive.
Approximately 3 mm square is preferable. The nitrocellulose spotted in this way is incubated under suitable humidity conditions for about 1 minute to about 24 hours. After the incubation, in order to prevent non-specific adsorption to a site other than the spotted site, the solid support to which the sample is bound is not recognized by the antibody of the present invention (first antibody) as a high molecular weight carrier molecule, that is, the antibody of the present invention. By incubating at room temperature for about 20 minutes to about 24 hours with a solution containing a high molecular weight carrier molecule (serum albumin or skim milk of another animal such as goat or cow) which is not used in the production of (first antibody), The surface of the solid support is covered with high molecular weight carrier molecules. After the incubation, the obtained solid support material is thoroughly washed to remove the above-mentioned high molecular weight carrier molecules in a free state. The solid support material thus prepared is mixed with a preparation liquid containing the antibody of the present invention (first antibody), and then incubated with shaking for about 10 minutes to about 3 hours. The preparation containing the antibody of the present invention (first antibody) refers to a preparation which may exist in a solution such as distilled water, a buffer solution, or physiological saline in a free state of the antibody of the present invention (first antibody). Say. In this way, the human-derived cytochrome P450 3A4 present in the sample is recognized by the antibody of the present invention (first antibody). Next, a method for detecting the antibody will be described. The antibody of the present invention (first antibody) is, for example, an enzyme such as peroxidase, alkaline phosphatase, β-D-galactosidase, glucose oxidase, glucoamylase, carbonic anhydrase, acetylcholinesterase, lysozyme, malate dehydrogenase, glucose-6-phosphate dehydrogenase, etc. In the case of being labeled with, after the incubation, the free antibody of the present invention (first antibody) is removed by washing, and then the substrate of the above-mentioned labeling enzyme is allowed to act, and the reaction is measured by color development or the like. By doing so, the antibody of the present invention (first antibody) can be detected. For example, in the case of labeling with peroxidase, hydrogen peroxide is used as a substrate and diaminobenzidine or O- is used as a coloring reagent.
Combines with phenylenediamine to give a brown or yellow color. When labeled with glucose oxidase, for example, 2,2′-acid-di- (3
-Ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid (ABT
S) or the like is used. When a second antibody labeled with an enzyme or a radioisotope that recognizes and binds to the antibody of the present invention (first antibody) is used, the antibody of the present invention in a free state after incubation (the first antibody) ) Is removed by washing and then incubated with the second antibody.
Examples of the secondary antibody labeled with this enzyme or the like include peroxidase, alkaline phosphatase, β-D-galactosidase, glucose oxidase, glucoamylase, carbonic anhydrase, acetylcholinesterase, lysozyme, malate dehydrogenase, glucose-6-phosphate dehydrogenase, etc. An antibody to the first antibody (the antibody of the present invention) to which the enzyme of (1) is bound can be mentioned. As a specific example, when a rabbit antiserum is used as the first antibody (antibody of the present invention), an alkaline phosphatase-conjugated anti-rabbit immunoglobulin (IgG) goat immunoglobulin (IgG) is preferable as the second antibody. I can give you. The rabbit IgG and goat IgG are commercially available and can be easily obtained. For detection of the second antibody, the same method as in the case of the labeled antibody of the present invention (first antibody) can be mentioned.

【0016】II.免疫沈降による分離法 試料に存在するヒト由来のチトクロムP4503A4を
本発明抗体(第1抗体)によって認識させ、その抗体と
ヒト由来のチトクロムP4503A4からなる免疫複合
体を精製することによって試料からヒト由来のチトクロ
ムP4503A4のみを分離し、分離したヒト由来のチ
トクロムP4503A4をゲル電気泳動法、酵素活性測
定、イムノブロット法等の方法によってヒト由来のチト
クロムP4503A4の検出に利用する。まず、試料と
ヒト由来のチトクロムP4503A4に対する本発明抗
体(第1抗体)を、たとえば、約1時間から約24時
間、4℃で撹拌しながら混合することによって免疫複合
体を形成させる。この際の試料と本発明抗体(第1抗
体)との混合比としては、例えば1:8程度をあげるこ
とができるが、試料に存在するヒト由来のチトクロムP
4503A4によって適宜増減される。つぎに形成され
た免疫複合体に、抗体に特異的に結合しかつ抗体および
抗体と結合しているヒト由来のチトクロムP4503A
4を溶液中から分離することができる2次試薬を添加
し、この混合物をインキュベートすることによって、免
疫複合体と2次試薬からなる複合体を形成させ、これを
回収する。ここで2次試薬としては、たとえば、プロテ
インA,プロテインG等の抗体と結合する細菌細胞壁蛋
白質または抗免疫グロブリン抗体があげられる。なお、
これら2次試薬は不溶性の支持材に結合されたものを用
いると免疫複合体と2次試薬からなる複合体の回収(遠
心分離、洗浄等)がきわめて容易である。不溶性の支持
材は、非常に広範囲のデザインを有し、そして使用に際
して意図された特定の目的に応じて非常に異なる形状を
有することができる。たとえば、ビーズ、皿、球、プレ
ート、小型ロッド、セル、小型ボトル、小型チューブ、
ファイバー、ネット等をあげることができる。具体的な
例としては、アガロース等の多糖体(たとえば、セファ
ロース、バイオゲル等)からなるビーズや透明プラスチ
ック材料、たとえばポリ塩化ビニルまたはポリスチレン
からなるミクロタイタープレート、ポリスチレンおよび
ポリスチレンラテックスからなる小球、チューブまたは
ロッド等が使用可能である。つぎに回収された複合体を
加熱処理等の操作によってヒト由来のチトクロムP45
03A4を遊離させる。そして遊離の状態にあるヒト由
来のチトクロムP4503A4をゲル電気泳動法、酵素
活性測定、イムノブロット法等の方法によって検出すれ
ばよい。
II. Separation method by immunoprecipitation Human-derived cytochrome P4503A4 present in a sample is recognized by the antibody of the present invention (first antibody), and an immune complex consisting of the antibody and human-derived cytochrome P4503A4 is purified to obtain a human-derived cytochrome from the sample. Only cytochrome P4503A4 is separated, and the separated human-derived cytochrome P4503A4 is used for detection of human-derived cytochrome P4503A4 by methods such as gel electrophoresis, enzyme activity measurement, and immunoblotting. First, an immune complex is formed by mixing a sample and the antibody of the present invention (first antibody) against human-derived cytochrome P450 3A4 at, for example, about 1 to about 24 hours with stirring at 4 ° C. The mixing ratio of the sample to the antibody of the present invention (first antibody) at this time may be, for example, about 1: 8, and human-derived cytochrome P present in the sample.
It is increased or decreased by 4503A4. Next, a human-derived cytochrome P4503A which specifically binds to the antibody and binds to the antibody and the antibody in the formed immune complex
A secondary reagent capable of separating 4 from the solution is added, and the mixture is incubated to form a complex consisting of the immune complex and the secondary reagent, which is recovered. Here, examples of the secondary reagent include a bacterial cell wall protein that binds to an antibody such as protein A and protein G, or an anti-immunoglobulin antibody. In addition,
If these secondary reagents bound to an insoluble support material are used, the recovery of the complex consisting of the immune complex and the secondary reagent (centrifugation, washing, etc.) is extremely easy. Insoluble support materials have a very wide range of designs and can have very different shapes depending on the particular purpose for which they are intended. For example, beads, dishes, spheres, plates, small rods, cells, small bottles, small tubes,
Fiber, net, etc. can be mentioned. Specific examples include beads made of polysaccharides such as agarose (eg, sepharose, biogel, etc.) and transparent plastic materials such as microtiter plates made of polyvinyl chloride or polystyrene, spheres made of polystyrene and polystyrene latex, and tubes. Alternatively, a rod or the like can be used. Next, the recovered complex is subjected to a treatment such as a heat treatment to give human-derived cytochrome P45.
Release 03A4. Then, the human-derived cytochrome P4503A4 in a free state may be detected by a method such as gel electrophoresis, enzyme activity measurement, and immunoblotting.

【0017】III.間接競合阻害法(ELISA 法) 基本的には、固体支持材に結合される抗原であるヒト由
来のチトクロムP4503A4と試料中に含まれるヒト
由来のチトクロムP4503A4との競合、例えば固体
支持材に結合される抗原であるヒト由来のチトクロムP
4503A4と標識が施されている第2抗体によって認
識される第1抗体の遊離抗原であるヒト由来のチトクロ
ムP4503A4との競合に基づいている。これに関連
して、固体支持材への抗原の結合は直接、あるいはスペ
ーサーおよび/または第1抗体(すなわち、本発明抗
体)によって認識されない高分子量担体分子を介して起
こり得る。ここで、第1抗体(すなわち、本発明抗体)
によって認識されない高分子量担体分子とは、第1抗体
の製造において用いられない高分子量担体分子のことで
ある。これは本発明抗体がポリクローナルである場合に
重要である。抗原の直接または間接的な結合に用いられ
る固体支持材としては、たとえばミクロタイタープレー
トまたは試験管のプラスチック表面、ポリスチレン、ポ
リプロピレン、ポリ塩化ビニル、ガラスまたはプラスチ
ック等からなるビーズ表面、ろ紙、デキストラン、セル
ロースもしくはニトロセルロースまたはその他の類似の
材料の細片の表面等をあげることができる。これらの固
体支持材に、抗原であるヒト由来のチトクロムP450
3A4を直接、あるいはスペーサーおよび/または第1
抗体(本発明抗体)によって認識されない高分子量担体
分子を介して間接的に結合する(以下、コーティングと
記す。)には、例えば、あらかじめ、グルタルアルデヒ
ドまたは臭化シアン等を用いる通常の方法によって固体
支持材の活性化を行う。用いられるコーティング液とし
ては、例えば140mMの塩化ナトリウムを含む約10
mMのリン酸緩衝液(pH=7.4)等をあげることができ
る。コーティングの条件として、例えば抗原であるヒト
由来のチトクロムP4503A4のコーティング液内の
濃度は、約0.05μg/mlから約1μg/ml等を好ま
しくあげることができる。またコーティング時間として
は、例えば約6時間ないし24時間をあげることができ
る。なお、上記の具体的な例としては、例えば固体支持
材としてポリスチレン製の96穴ミクロタイタープレー
トを使用することができる。このようにして得られる固
体支持材に直接または間接的に結合するヒト由来のチト
クロムP4503A4は次に、試料中に含まれる検出す
べき抗原であるヒト由来のチトクロムP4503A4お
よび第1抗体(本発明抗体)を含有する試験溶液と混合
され、該混合物はインキュベートされる。なお、試料中
に含まれる検出すべき抗原であるヒト由来のチトクロム
P4503A4は、この際に遊離の形態で、水溶液、生
理食塩水、緩衝液または生体試料等の成分として存在し
得る。約10分間ないし約2時間のインキュベート後
に、混合物は第1抗体(本発明抗体)を認識し、そして
結合する酵素等で標識された第2抗体とインキュベート
される。この酵素等で標識された第2抗体としては、例
えばペルオキシダーゼ、アルカリホスファターゼ、β−
D−ガラクトシダーゼ、グルコースオキシダーゼ、グル
コアミラーゼ、炭酸アンヒドラーゼ、アセチルコリンエ
ステラーゼ、リゾチーム、マレートデヒドロゲナーゼ、
グルコース−6−ホスフェートデヒドロゲナーゼ等の酵
素を結合した第1抗体(本発明抗体)に対する抗体をあ
げることができる。具体的な例としては、第1抗体(本
発明抗体)としてウサギ抗血清を使用する場合、第2抗
体としては、ペルオキシダーゼを結合した抗ウサギ免疫
グロブリン(IgG)ヤギ免疫グロブリン(IgG)を
好ましくあげることができる。なお、該ウサギIgGヤ
ギIgGは市販されており、容易に入手可能である。ペ
ルオキシダーゼで標識される場合には、基質として過酸
化水素、発色試薬としてジアミノベンジジンまたはO−
フェニレンジアミンと組み合わさって褐色または黄色を
生じる。グルコースオキシダーゼで標識される場合に
は、基質として、たとえば2,2'−アシド−ジ−(3−
エチルベンゾチアゾリン−6−スルホン酸(ABTS)
等を用いる。また本発明は、ヒト由来のチトクロムP4
503A4の免疫学的検出・分析用キットを包含する。
上記の試験キットは、たとえば次の構成成分を含有し得
る:(1) ヒト由来のチトクロムP4503A4を直接、
あるいはスペーサーおよび/または第1抗体(本発明抗
体)によって認識されない高分子量担体分子を介して間
接的に結合する固体支持材、(2) 本発明抗体を含有する
試薬、(3) 本発明抗体に対する標識された抗体を含有す
る試薬、すなわち第1抗体(本発明抗体)を認識し、そ
して結合する酵素等で標識された第2抗体を含有する試
薬。さらに補助的に、(4) ヒト由来のチトクロムP45
03A4の標準化溶液、(5) 緩衝液、(6) 非特異的吸着
および凝集体の形成を防止するポリペプチド、界面活性
剤等の添加剤、および(7)ピペット、反応容器、計算曲
線等を含めるとよい。上記の固体支持材は、非常に広範
囲のデザインを有し、そして使用に際して意図された特
定の目的に応じて非常に異なる形状を有することができ
る。例えば、皿、球、プレート、小型ロッド、セル、小
型ボトル、小型チューブ、ファイバー、ネット等をあげ
ることができる。具体的な例としては、透明プラスチッ
ク材料、たとえばポリ塩化ビニルまたはポリスチレンか
らなるミクロタイタープレート、ポリスチレンおよびポ
リスチレンラテックスからなる小球、チューブまたはロ
ッド等が使用可能である。
III. Indirect competitive inhibition method (ELISA method) Basically, competition between human-derived cytochrome P4503A4, which is an antigen bound to a solid support, and human-derived cytochrome P4503A4 contained in a sample, for example, bound to a solid support. Human-derived cytochrome P, which is an antigen
It is based on competition with human-derived cytochrome P4503A4, which is the free antigen of the first antibody recognized by 4502A4 and the labeled second antibody. In this context, the binding of the antigen to the solid support can occur directly or via a spacer and / or a high molecular weight carrier molecule that is not recognized by the first antibody (ie the antibody of the invention). Here, the first antibody (that is, the antibody of the present invention)
High molecular weight carrier molecules that are not recognized by are those that are not used in the production of the first antibody. This is important when the antibody of the present invention is polyclonal. Solid supports used for direct or indirect binding of antigens include, for example, microtiter plate or test tube plastic surfaces, polystyrene, polypropylene, polyvinyl chloride, glass or plastic bead surfaces, filter paper, dextran, cellulose. Alternatively, the surface of strips of nitrocellulose or other similar material may be mentioned. Human-derived cytochrome P450, which is an antigen, is added to these solid supports.
3A4 directly or with spacer and / or first
For indirectly binding (hereinafter referred to as coating) via a high-molecular-weight carrier molecule that is not recognized by the antibody (the antibody of the present invention), for example, glutaraldehyde, cyanogen bromide, or the like is used as a solid substance by a conventional method. Activate the support material. The coating liquid used is, for example, about 10 mM containing 140 mM sodium chloride.
Examples of the buffer include mM phosphate buffer (pH = 7.4). As a coating condition, for example, the concentration of human-derived cytochrome P4503A4 as an antigen in the coating solution is preferably about 0.05 μg / ml to about 1 μg / ml. The coating time can be, for example, about 6 hours to 24 hours. As a specific example of the above, for example, a 96-well microtiter plate made of polystyrene can be used as the solid support material. The human-derived cytochrome P4503A4 that directly or indirectly binds to the solid support thus obtained is then the human-derived cytochrome P4503A4 that is the antigen to be detected contained in the sample and the first antibody (the antibody of the present invention). ) Is mixed with the test solution, and the mixture is incubated. The human-derived cytochrome P4503A4, which is the antigen to be detected, contained in the sample may be present in a free form at this time as a component such as an aqueous solution, physiological saline, a buffer solution or a biological sample. After incubation for about 10 minutes to about 2 hours, the mixture is incubated with a second antibody labeled with an enzyme or the like that recognizes and binds to the first antibody (the antibody of the present invention). Examples of the second antibody labeled with this enzyme or the like include, for example, peroxidase, alkaline phosphatase, β-
D-galactosidase, glucose oxidase, glucoamylase, carbonic anhydrase, acetylcholinesterase, lysozyme, malate dehydrogenase,
An antibody to the first antibody (the antibody of the present invention) to which an enzyme such as glucose-6-phosphate dehydrogenase is bound can be mentioned. As a specific example, when a rabbit antiserum is used as the first antibody (antibody of the present invention), as the second antibody, anti-rabbit immunoglobulin (IgG) and goat immunoglobulin (IgG) conjugated with peroxidase are preferred. be able to. The rabbit IgG and goat IgG are commercially available and can be easily obtained. When labeled with peroxidase, hydrogen peroxide is used as a substrate and diaminobenzidine or O-is used as a coloring reagent.
Combines with phenylenediamine to give a brown or yellow color. When labeled with glucose oxidase, for example, 2,2′-acid-di- (3-
Ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid (ABTS)
Etc. are used. The present invention also relates to human-derived cytochrome P4.
It includes a kit for immunological detection / analysis of 503A4.
The above test kit may contain, for example, the following components: (1) human-derived cytochrome P450 3A4 directly,
Alternatively, a solid support material indirectly bound through a spacer and / or a high molecular weight carrier molecule that is not recognized by the first antibody (the antibody of the present invention), (2) a reagent containing the antibody of the present invention, (3) against the antibody of the present invention A reagent containing a labeled antibody, that is, a reagent containing a second antibody labeled with an enzyme or the like that recognizes and binds to the first antibody (the antibody of the present invention). (4) Human-derived cytochrome P45
03A4 standardized solution, (5) buffer solution, (6) polypeptide that prevents non-specific adsorption and aggregate formation, additives such as surfactants, and (7) pipette, reaction vessel, calculation curve, etc. Good to include. The solid supports described above have a very wide range of designs and can have very different shapes depending on the particular purpose for which they are intended. For example, a plate, a ball, a plate, a small rod, a cell, a small bottle, a small tube, a fiber, a net and the like can be mentioned. As a specific example, a transparent plastic material such as a microtiter plate made of polyvinyl chloride or polystyrene, a small ball made of polystyrene and polystyrene latex, a tube or a rod can be used.

【0018】IV. 細胞または組織の免疫学的染色法 固定された細胞または組織標本中に存在するヒト由来の
チトクロムP4503A4を本発明抗体(第1抗体)に
よって認識させ、その抗体を検出する方法であり、細胞
または組織中の存在量、局在状態を調べるのに役立つ。
調べたい細胞または組織を固定し、光学顕微鏡または電
子顕微鏡等の観察が可能な標本を作製する。細胞または
組織の固定に使用する試薬は、顕微鏡下での観察に適し
たもので、かつ抗原であるヒト由来のチトクロムP45
03A4を認識する本発明抗体の能力を消失させないも
のであれば特に制限はないが、好ましくは3.7%ホル
マリン液、100%メタノール、100%エタノール、
4%パラホルムアルデヒド溶液、1%グルタールアルデ
ヒド溶液等があげられる。そして固定された細胞または
組織標本を約30分間から約24時間、4℃でインキュ
ベートすることによって、固定された細胞または組織標
本中に存在するヒト由来のチトクロムP4503A4を
本発明抗体(第1抗体)によって認識させる。つぎに、
その抗体を検出する方法について説明する。本発明抗体
(第1抗体)が、たとえばペルオキシダーゼ、アルカリ
ホスファターゼ、β−D−ガラクトシダーゼ、グルコー
スオキシダーゼ、グルコアミラーゼ、炭酸アンヒドラー
ゼ、アセチルコリンエステラーゼ、リゾチーム、マレー
トデヒドロゲナーゼ、グルコース−6−ホスフェートデ
ヒドロゲナーゼ等の酵素等で標識されている場合には、
インキュベート後、遊離の状態にある本発明抗体(第1
抗体)を洗浄によって除去してから、上記の標識酵素の
基質を作用させて、発色等で反応を測定することによっ
て本発明抗体(第1抗体)を検出することができる。例
えば、 ペルオキシダーゼで標識される場合には、基質
として過酸化水素、発色試薬としてジアミノベンジジン
またはO−フェニレンジアミンと組み合わさって褐色ま
たは黄色を生じる。グルコースオキシダーゼで標識され
る場合には、基質として、例えば2,2'−アシド−ジ−
(3−エチルベンゾチアゾリン−6−スルホン酸(AB
TS)等を用いる。また、本発明抗体(第1抗体)を認
識しかつ結合する酵素等で標識された第2抗体を使用す
る場合には、インキュベート後、遊離の状態にある本発
明抗体(第1抗体)を洗浄によって除去してから、第2
抗体とインキュベートする。この酵素等で標識された第
2抗体としては、例えばペルオキシダーゼ、アルカリホ
スファターゼ、β−D−ガラクトシダーゼ、グルコース
オキシダーゼ、グルコアミラーゼ、炭酸アンヒドラー
ゼ、アセチルコリンエステラーゼ、リゾチーム、マレー
トデヒドロゲナーゼ、グルコース−6−ホスフェートデ
ヒドロゲナーゼ等の酵素を結合した第1抗体(本発明抗
体)に対する抗体をあげることができる。具体的な例と
しては、第1抗体(本発明抗体)としてウサギ抗血清を
使用する場合、第2抗体としては、ペルオキシダーゼを
結合した抗ウサギ免疫グロブリン(IgG)ヤギ免疫グ
ロブリン(IgG)を好ましくあげることができる。な
お、該ウサギIgGヤギIgGは市販されており、容易
に入手可能である。第2抗体の検出としては、上記の標
識された本発明抗体(第1抗体)の場合と同様な方法を
あげることができる。以下、実施例を挙げて本発明を説
明するが、本発明は下記の実施例にのみ限定されないこ
とは言うまでもない。
IV. Immunological Staining Method for Cells or Tissues A method for recognizing human-derived cytochrome P4503A4 present in fixed cells or tissue specimens by the antibody of the present invention (first antibody) and detecting the antibody. It is useful for investigating the abundance and the localized state in.
The cells or tissues to be examined are fixed, and a specimen that can be observed with an optical microscope or an electron microscope is prepared. Reagents used for fixing cells or tissues are suitable for observation under a microscope, and are human-derived cytochrome P45 that is an antigen.
There is no particular limitation as long as it does not abolish the ability of the antibody of the present invention to recognize 03A4, but 3.7% formalin solution, 100% methanol, 100% ethanol,
4% paraformaldehyde solution, 1% glutaraldehyde solution, etc. may be mentioned. Then, by incubating the fixed cell or tissue sample for about 30 minutes to about 24 hours at 4 ° C., the human-derived cytochrome P4503A4 present in the fixed cell or tissue sample is transferred to the antibody of the present invention (first antibody). To recognize. Next,
A method for detecting the antibody will be described. The antibody of the present invention (first antibody) is an enzyme such as peroxidase, alkaline phosphatase, β-D-galactosidase, glucose oxidase, glucoamylase, carbonic anhydrase, acetylcholinesterase, lysozyme, malate dehydrogenase, glucose-6-phosphate dehydrogenase, etc. If labeled with
After incubation, the antibody of the present invention in a free state (first
The antibody of the present invention (first antibody) can be detected by removing the antibody) by washing, then allowing the substrate of the above-mentioned labeling enzyme to act, and measuring the reaction by color development or the like. For example, when labeled with peroxidase, it combines with hydrogen peroxide as a substrate and diaminobenzidine or O-phenylenediamine as a coloring reagent to give a brown or yellow color. When labeled with glucose oxidase, for example, 2,2'-acid-di-
(3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid (AB
TS) or the like is used. When a second antibody labeled with an enzyme or the like that recognizes and binds to the antibody of the present invention (first antibody) is used, the free antibody of the present invention (first antibody) is washed after incubation. Removed by the second
Incubate with antibody. Examples of the secondary antibody labeled with this enzyme or the like include peroxidase, alkaline phosphatase, β-D-galactosidase, glucose oxidase, glucoamylase, carbonic anhydrase, acetylcholinesterase, lysozyme, malate dehydrogenase, glucose-6-phosphate dehydrogenase, etc. An antibody to the first antibody (the antibody of the present invention) to which the enzyme of (1) is bound can be mentioned. As a specific example, when a rabbit antiserum is used as the first antibody (antibody of the present invention), as the second antibody, anti-rabbit immunoglobulin (IgG) and goat immunoglobulin (IgG) conjugated with peroxidase are preferred. be able to. The rabbit IgG and goat IgG are commercially available and can be easily obtained. For detection of the second antibody, the same method as in the case of the labeled antibody of the present invention (first antibody) can be mentioned. Hereinafter, the present invention will be described with reference to examples, but it goes without saying that the present invention is not limited to the following examples.

【0019】[0019]

【実施例】【Example】

製造例1 ヒト由来のチトクロムP4503A4をコー
ドする塩基配列を有する遺伝子の取得 市販のヒト肝臓由来のcDNAライブラリー(Clontech
社)から配列番号1〜4記載のヒト由来のチトクロムP
450遺伝子クローニング用プライマーを用いたPCR
法を用いることによりヒト由来のチトクロムP4503
A4をコードするcDNAを得た。得られたcDNAの
塩基配列および検定アミノ酸配列を配列番号5に記載し
た。
Production Example 1 Acquisition of a gene having a nucleotide sequence encoding human-derived cytochrome P450 3A4 A commercially available human liver-derived cDNA library (Clontech
Human-derived cytochrome P described in SEQ ID NOs: 1 to 4
PCR using 450 gene cloning primers
Method for human-derived cytochrome P4503
A cDNA encoding A4 was obtained. The nucleotide sequence of the obtained cDNA and the test amino acid sequence are shown in SEQ ID NO: 5.

【0020】 製造例2 酵母発現プラスミドの構築:p3A4 図1にヒト由来のチトクロムP4503A4の酵母発現
プラスミドの構築方法を示す。配列番号1〜4で示すプ
ライマーを用いて、PCR法により、ヒト由来のチトク
ロムP4503A4遺伝子のタンパク質コーディング領
域を約0.6kbと約0.9kbの2つの断片に分けて増
幅した。得られた約0.6kb断片はSacIで切断し
てpUC118ベクターにサブクローン化した。その
後、EcoRIで切断、平滑化し、XbaIリンカーを
導入したものに、XbaI、SacIで切断した0.9
kb断片を組み込み、2つの断片を連結させた。このプ
ラスミドをSphIで切断後、平滑化し、XbaIリン
カーを導入したものからXbaI断片を切り出し、pU
CANX(市販されるpUC19 ベクターが有するEcoRI 部
位とHindIII部位をそれぞれNotI部位に改変し、形成さ
れたNotI部位とNotI部位の間にpAAH5Nから調製したNotI
断片を組み込んで、さらにそのHind III部位を平滑
化し、XbaIリンカーを導入したベクター)のXba
I部位に挿入した。これをNotIで切り出し、同様に
NotI処理したpAAH5Nに挿入し、ヒト由来のチ
トクロムP450 3A4の酵母発現プラスミドp3A
4を構築した。
Production Example 2 Construction of yeast expression plasmid: p3A4 FIG. 1 shows a method for constructing a yeast expression plasmid of human-derived cytochrome P450 3A4. Using the primers shown in SEQ ID NOs: 1 to 4, the protein coding region of human-derived cytochrome P450 3A4 gene was divided into two fragments of about 0.6 kb and about 0.9 kb and amplified by PCR. The resulting about 0.6 kb fragment was cut with SacI and subcloned into the pUC118 vector. Then, it was cut with EcoRI, blunted, and introduced with an XbaI linker, and cut with XbaI and SacI to 0.9.
The kb fragment was incorporated and the two fragments were ligated. This plasmid was cleaved with SphI, blunted, and an XbaI fragment was excised from the one into which the XbaI linker had been introduced.
CANX (EcoRI site and HindIII site of the commercially available pUC19 vector were modified to NotI sites, respectively, and NotI prepared from pAAH5N was formed between NotI site and NotI site.
Xba of a vector incorporating the fragment, further blunting the HindIII site thereof, and introducing an XbaI linker)
It was inserted at the I site. This was cut out with NotI and inserted into NotA-treated pAAH5N in the same manner, and the yeast expression plasmid p3A of human-derived cytochrome P450 3A4 was inserted.
4 was built.

【0021】製造例3 形質転換酵母菌体の作製 YPD培地(1%酵母エキス,2%ポリペプトン、2%
グルコース)1.0mlにサッカロミセス・セレビシェーA
H22株を植菌し、30℃で18時間振盪した後、遠心
分離(5000Xg、10分間) により集菌した。得られた菌体
を1.0mlの0.2M LiC1溶液に懸濁した後、再度
遠心分離(5000Xg、10分間) し、得られたペレットに2
0μlの1M LiC1溶液、30μlの70%ポリエ
チレングリコール4000溶液、約1.0μgのヒト由来の
チトクロムP450酵母発現プラスミド(p3A4)を
含む10μlの溶液を添加した。これを十分に混合した
後、30℃で1時間インキュベートし、さらに140μ
lの滅菌水を加えて撹拌した。この溶液をSD合成培地
プレート(2.0%グルコース、0.67%窒素源アミノ酸不
含(Nitrogen base w/o amino acids, Difco製)、20μ
g/mlヒスチジン、2.0%寒天)上に蒔き、30℃で3
日間インキュベートし、上記の酵母内発現プラスミドを
保有する形質転換酵母菌体を選抜した。このようにし
て、酵母内でヒト由来のチトクロムP4503A4を発
現させる形質転換酵母菌体を作製した。
Production Example 3 Preparation of transformed yeast cells YPD medium (1% yeast extract, 2% polypeptone, 2%
Glucose) 1.0 ml with Saccharomyces cerevisiae A
The H22 strain was inoculated, shaken at 30 ° C. for 18 hours, and then collected by centrifugation (5000 × g, 10 minutes). The obtained bacterial cells were suspended in 1.0 ml of 0.2M LiC1 solution and then centrifuged again (5000Xg, 10 minutes) to give 2 pellets to the resulting pellet.
0 μl of 1M LiC1 solution, 30 μl of 70% polyethylene glycol 4000 solution, 10 μl of solution containing about 1.0 μg of human-derived cytochrome P450 yeast expression plasmid (p3A4) were added. After mixing this well, incubate at 30 ° C for 1 hour, then add 140μ
l of sterilized water was added and stirred. This solution was added to an SD synthetic medium plate (2.0% glucose, 0.67% nitrogen source amino acid-free (Nitrogen base w / o amino acids, manufactured by Difco), 20 μm.
g / ml histidine, 2.0% agar) and spread at 30 ° C for 3
After incubating for a day, transformed yeast cells carrying the above yeast expression plasmid were selected. In this way, a transformed yeast cell expressing human-derived cytochrome P450 3A4 in yeast was prepared.

【0022】製造例4 酵母内で発現したヒト由来のチ
トクロムP4503A4の定量 製造例3によって作製されたヒト由来のチトクロムP4
503A4を発現させる形質転換酵母菌体の培養液(S
D合成培地、菌体濃度約1.5×107 菌体/ml)200
mlを集菌し、該菌体を10mlの100mMリン酸カリウ
ム緩衝液(pH7.0)を懸濁した後、遠心分離(5000×
g、10分間)した。得られたペレットを新たに2.0m
lの100mMリン酸カリウム緩衝液(pH7.0)に懸濁
し、2本のキュベットに1.0mlずつ分注した。サンプ
ル側のキュベットに一酸化炭素を吹き込んだ後、両キュ
ベット内にジチオナイト5−10mgを添加し、撹拌した
のち400−500nmの差スペクトルを測定し、酵母
内に存在するヒト由来のチトクロムP4503A4濃度
を算出した。形質転換酵母菌体におけるヒト由来のチト
クロムP4503A4の発現量は約105 −約106
子/菌体のレベルであった。
Production Example 4 Quantification of Human-derived Cytochrome P4503A4 Expressed in Yeast Human-derived cytochrome P4 produced in Production Example 3
Culture medium of transformed yeast cells expressing 503A4 (S
D synthetic medium, cell concentration about 1.5 × 10 7 cells / ml) 200
ml was collected, and the cells were suspended in 10 ml of 100 mM potassium phosphate buffer (pH 7.0), followed by centrifugation (5000 x
g, 10 minutes). The pellet obtained is newly added to 2.0 m.
It was suspended in 100 mM potassium phosphate buffer (pH 7.0) (1) and dispensed into two cuvettes in an amount of 1.0 ml each. After blowing carbon monoxide into the cuvette on the sample side, 5-10 mg of dithionite was added to both cuvettes, and after stirring, the difference spectrum of 400-500 nm was measured to determine the concentration of human-derived cytochrome P4503A4 present in yeast. It was calculated. The expression level of human-derived cytochrome P450 3A4 in the transformed yeast cells was at a level of about 10 5 to about 10 6 molecules / cell.

【0023】製造例5 形質転換酵母菌体からのミクロ
ソーム画分の調製 製造例3によって作製されたヒト由来のチトクロムP4
503A4を発現させる形質転換酵母菌体の培養液(S
D合成培地、菌体濃度約1.0×108 菌体/ml)3.8
lを集菌し、得られた菌体を400mlの緩衝液A(10
mM Tris−HCl(pH7.5),2M ソルビトー
ル,0.1mM DTT,0.2mM EDTA)に懸濁
し、160mg ザイモリエイス 100,000(zymolyase100
T 和光純薬社製)を加え、30℃で60分間インキュベ
ートした。遠心分離(5000×g、10分間)して得られ
たスフェロプラストを100mlの緩衝液Aに懸濁した
後、遠心分離(5000×g、10分間)した。同じ遠心分
離操作をもう一度繰り返してスフェロプラストの洗浄を
行った後、スフェロプラストを200mlの緩衝液(10
mM Tris−HCl(pH7.5),0.65M ソルビト
ール,0.1mM DTT)に懸濁し超音波破砕(50
W,5分間)した。該破砕物を遠心分離(9000×g、2
0分間)して、上清画分を得た。また、これをさらに遠
心分離(125000×g、70分間)して沈澱を集め、0.
1Mリン酸カリウム緩衝液(pH7.4)10mlに再懸濁す
ることによりミクロソーム画分を得た。
Production Example 5 Preparation of Microsome Fraction from Transformed Yeast Cells Human-derived cytochrome P4 produced in Production Example 3
Culture medium of transformed yeast cells expressing 503A4 (S
D synthetic medium, cell concentration about 1.0 × 10 8 cells / ml) 3.8
1 was collected, and the obtained bacterial cells were mixed with 400 ml of buffer solution A (10
Suspended in mM Tris-HCl (pH 7.5), 2M sorbitol, 0.1 mM DTT, 0.2 mM EDTA), 160 mg zymolyase 100,000 (zymolyase100
T Wako Pure Chemical Industries, Ltd.) was added, and the mixture was incubated at 30 ° C. for 60 minutes. The spheroplasts obtained by centrifugation (5000 xg, 10 minutes) were suspended in 100 ml of buffer solution A and then centrifuged (5000 xg, 10 minutes). The same centrifugation operation was repeated once again to wash the spheroplasts, and then the spheroplasts were washed with 200 ml of the buffer solution (10
Suspend in mM Tris-HCl (pH7.5), 0.65M sorbitol, 0.1 mM DTT and sonicate (50
W, 5 minutes). The crushed material was centrifuged (9000 xg, 2
0 minutes) to obtain a supernatant fraction. This was further centrifuged (125,000 xg, 70 minutes) to collect the precipitate,
The microsome fraction was obtained by resuspending in 10 ml of 1M potassium phosphate buffer (pH 7.4).

【0024】製造例6 ミクロソーム画分からのヒト由
来のチトクロムP4503A4の精製 製造例5で取得したヒト由来のチトクロムP4503A
4を含むミクロソーム画分(約300mg)を1mMDT
T、1mMEDTA、0.25mMPMSF、20%グ
リセロールを含む0.1Mリン酸カリウム緩衝液(pH7.
2、緩衝液B)で3mg/mlに希釈し、コール酸ナトリウム
を最終濃度0.6%になるように滴下し、4℃ 30分
放置し、ヒト由来のチトクロムP4503A4を可溶化
した。可溶化液を遠心分離(200000xg、30
分)した後、上清を0.5%コール酸ナトリウムを含む
緩衝液Bで平衡化したオクチルアミノセファロース4B
(ファルマシア社製)15mlを充填したカラムに通し、
ヒト由来のチトクロムP4503A4を担体に吸着させ
た。緩衝液Bでカラムを充分に洗浄し、非吸着分を除去
した後、緩衝液Bに0.2%ポリオキシエチレンノニル
フェニルエーテル(花王社製、商品名エマルゲン91
1)を添加した緩衝液にてヒト由来のチトクロムP45
03A4を溶出させた。活性画分を集め、20%グリセ
ロールを含む0.02Mトリス−酢酸緩衝液(pH7.2、
緩衝液C)に対して1晩透析した。その後、0.4%ポ
リオキシエチレンノニルフェニルエーテル(花王社製、
商品名エマルゲン911)を添加した緩衝液Cで平衡化
したDEAE−5PW(トーソー社製)HPLCカラム
に供したところヒト由来のチトクロムP4503A4は
非吸着画分に溶出された。続いて、0.2%ポリオキシ
エチレンノニルフェニルエーテル(花王社製、商品名エ
マルゲン911)、0.2%コール酸ナトリウム、20
%グリセロールを含む0.01Mリン酸ナトリウム緩衝
液(pH7.2緩衝液D)で平衡化したハイドロキシアパタ
イト(高研社製)HPLCカラムに供し、緩衝液Dでカ
ラムを充分に洗浄し、非吸着部分を除去した後、リン酸
ナトリウム直線濃度勾配法にてヒト由来のチトクロムP
4503A4を溶出した。続いて、活性画分を集め、2
0%グリセロールを含む0.01Mリン酸緩衝液(pH7.
2、緩衝液E)で平衡化したハイドロキシアパタイト
(Bio−Rad社製)HPLCカラムに供し、緩衝液
Eにて充分に洗浄し、0.05%コール酸ナトリウム、
20%グリセロールを含む0.35Mリン酸ナトリウム
緩衝液でヒト由来のチトクロムP4503A4を溶出さ
せ、活性画分を集め、精製ヒト由来のチトクロムP45
03A4を得た。
Production Example 6 Purification of human-derived cytochrome P4503A4 from microsomal fraction Human-derived cytochrome P4503A obtained in Production Example 5
The microsome fraction containing 4 (about 300 mg) was added to 1 mM DT
T, 1 mM EDTA, 0.25 mM PMSF, 20% glycerol in 0.1 M potassium phosphate buffer (pH 7.
2. Diluted to 3 mg / ml with buffer solution B), sodium cholate was added dropwise to a final concentration of 0.6% and left at 4 ° C. for 30 minutes to solubilize human-derived cytochrome P4503A4. Centrifuge the solubilized solution (200000 xg, 30
Octylamino sepharose 4B equilibrated with buffer B containing 0.5% sodium cholate.
Pass through a column filled with 15 ml (Pharmacia),
Human-derived cytochrome P4503A4 was adsorbed on a carrier. The column was thoroughly washed with buffer solution B to remove non-adsorbed components, and then 0.2% polyoxyethylene nonylphenyl ether (manufactured by Kao, trade name Emulgen 91) was added to buffer solution B.
Human-derived cytochrome P45 in a buffer containing 1)
03A4 was eluted. The active fractions were collected, and 0.02 M Tris-acetate buffer solution (pH 7.2, containing 20% glycerol) was used.
It was dialyzed overnight against buffer C). Then, 0.4% polyoxyethylene nonyl phenyl ether (manufactured by Kao Corporation,
When it was applied to a DEAE-5PW (manufactured by Tosoh Corporation) HPLC column equilibrated with the buffer solution C containing the trade name Emulgen 911), human-derived cytochrome P450 3A4 was eluted in the non-adsorbed fraction. Subsequently, 0.2% polyoxyethylene nonylphenyl ether (Kao Corporation, trade name Emulgen 911), 0.2% sodium cholate, 20
It is applied to a hydroxyapatite (Koken Co.) HPLC column equilibrated with 0.01 M sodium phosphate buffer (pH 7.2 buffer D) containing 10% glycerol, and the column is thoroughly washed with buffer D for non-adsorption. After removing the portion, human-derived cytochrome P was subjected to a linear concentration gradient method of sodium phosphate.
4503A4 was eluted. Subsequently, the active fractions were collected and 2
0.01M phosphate buffer (pH 7.
2, subjected to a hydroxyapatite (manufactured by Bio-Rad) HPLC column equilibrated with buffer solution E), thoroughly washed with buffer solution E, 0.05% sodium cholate,
Human-derived cytochrome P4503A4 was eluted with a 0.35 M sodium phosphate buffer containing 20% glycerol, the active fractions were collected, and purified human-derived cytochrome P45 was collected.
03A4 was obtained.

【0025】製造例7 哺乳動物の免疫感作化工程およ
び本発明抗体取得工程 製造例6によって得られた精製ヒト由来のチトクロムP
4503A4を1mg/mlの濃度になるように生理食塩水
に溶解した。この水溶液2mlにあらかじめ42℃から4
3℃にインキュベートされたRAS〔MPL(Monophosphor
yl Lipid A)+TDM(Synthetic Trehalose Dicorynomycola
te)+CWS(Cell Wall Skeleton) アジュバントシステム〕
(Sigma 社製)40μlを加え、よく混合した。得られ
た混合物をニュージーランドホワイト種ウサギ(雌、1
4週齢、平均2.4kg)一羽あたり1mlの液量投与し
た。その内訳は、100μlずつ背部10ケ所に皮下投
与であった。その後、3週間後、5週間後に再度初回の
1/2量を同様に投与をした。この間ウサギの耳静脈か
ら少量の血液をサンプリングし、抗体価を測定した。2
回目の投与後に抗体価が上昇したため、2回目投与の約
2週間後に免疫感作した供試ウサギの頸動脈から全採血
し、得られた血液をセパラピットチューブ(積水化学社
製)に入れ、37℃で2時間インキュベートした後、遠
心分離(3000rpm 、20min 、室温)して上清を回収する
ことにより、抗血清を得た。さらに得られた抗血清を5
6℃で30分間処理し、補体系の不活性化を行った。こ
れを(第1)抗体として下記の試験に用いた。
Production Example 7 Mammary immunization step and step of obtaining antibody of the present invention Purified human-derived cytochrome P obtained in Production Example 6
4503A4 was dissolved in physiological saline to a concentration of 1 mg / ml. Add 2 ml of this aqueous solution from 42 ° C to 4
RAS [MPL (Monophosphor
yl Lipid A) + TDM (Synthetic Trehalose Dicorynomycola
te) + CWS (Cell Wall Skeleton) adjuvant system)
40 μl (Sigma) was added and mixed well. The resulting mixture was applied to New Zealand White rabbits (female, 1
(4 weeks old, average 2.4 kg) 1 ml of liquid was administered per bird. The breakdown was 100 μl each subcutaneously administered to 10 sites on the back. Then, after 3 weeks and 5 weeks, the first half amount was again administered in the same manner. During this period, a small amount of blood was sampled from the rabbit ear vein and the antibody titer was measured. Two
Since the antibody titer increased after the second administration, whole blood was collected from the carotid artery of the immunized test rabbit about 2 weeks after the second administration, and the obtained blood was put in a separapit tube (Sekisui Chemical Co., Ltd.), After incubating at 37 ° C. for 2 hours, centrifugation (3000 rpm, 20 min, room temperature) was performed and the supernatant was collected to obtain an antiserum. Furthermore, the obtained antiserum was 5
The complement system was inactivated by treatment at 6 ° C for 30 minutes. This was used as the (first) antibody in the following test.

【0026】試験例1 本発明抗体を用いたイムノブロ
ット法によるヒト由来のチトクロム3A4の分析 製造例1から6によって得られてヒト由来のチトクロム
3A4および同様な方法に準じて得られた他のヒト由来
のチトクロムP450分子種9種類(チトクロムP45
01A1、1A2、2A6、2B6、2C8、2C9、
2C18、2D6および2E1)に対し、製造例7で得
た本発明抗体を用いてイムノブロッティングを行った。
ヒト由来のチトクロムP4501A1、1A2、2A
6、2B6、2C8、2C9、2C18、2D6、2E
1および3A4をそれぞれ0.5 から1pmol をSDSポリ
アクリルアミドゲルで電気泳動(40mA、1 時間)した。
このゲルにニトロセルロース膜を重ね、転写用緩衝液
(25mM Tris 、192mM グリシン、20% メタノール)中に
浸した状態で、BIO-RAD 社製のブロッティング装置によ
り、4 ℃、20mA、15時間処理し、泳動したタンパク質を
ニトロセルロース膜へと移動させた。得られたニトロセ
ルロース膜は、TBS +Tween20 溶液(50mM Tris-HCl(pH
7.5)、200mM NaCl、0.05% Tween20 )で洗浄した後、3%
のゼラチンを含むTBS +Tween20 溶液中で、37℃、40分
間インキュベートし、その後、1%ゼラチンを含むTBS +
Tween20 溶液で1000倍希釈した本発明抗体と、37℃、1
時間反応させた。反応後、TBS +Tween20 溶液で4 回洗
浄後、3%のゼラチンを含むTBS +Tween20 溶液中で、37
℃、20分間インキュベートし、その後、1%ゼラチンを含
むTBS +Tween20 溶液で、2500倍希釈した1 2 5 I 標識
したProteinA(アマシャム社製)と、37℃、1 時間反応
させた。反応後、TBS +Tween20 で4 回洗浄後、風乾
し、富士フィルム社製のイメージングプレートにて15時
間露光し、富士フィルム社製のBAS2000 システムにて検
出した。本発明抗体は、上記10種のヒト由来のチトクロ
ムP450のうち、3A4のみと特異的に反応した(表
1および図2参照)。
Test Example 1 Analysis of human-derived cytochrome 3A4 by immunoblotting using the antibody of the present invention Human-derived cytochrome 3A4 obtained in Production Examples 1 to 6 and other humans obtained according to a similar method 9 types of derived cytochrome P450 molecular species (cytochrome P45
01A1, 1A2, 2A6, 2B6, 2C8, 2C9,
2C18, 2D6 and 2E1) were subjected to immunoblotting using the antibody of the present invention obtained in Production Example 7.
Human-derived cytochrome P450 1A1, 1A2, 2A
6, 2B6, 2C8, 2C9, 2C18, 2D6, 2E
0.5 to 1 pmol of each of 1 and 3A4 were electrophoresed on an SDS polyacrylamide gel (40 mA, 1 hour).
A nitrocellulose membrane was overlaid on this gel, and immersed in a transfer buffer solution (25 mM Tris, 192 mM glycine, 20% methanol) and treated with a BIO-RAD blotting device at 4 ° C, 20 mA for 15 hours. The migrated protein was transferred to a nitrocellulose membrane. The obtained nitrocellulose membrane was TBS + Tween20 solution (50 mM Tris-HCl (pH
7.5), 200 mM NaCl, 0.05% Tween20), then 3%
Incubate in TBS + Tween20 solution containing 1% gelatin for 40 minutes at 37 ℃, and then in TBS + containing 1% gelatin
The antibody of the present invention diluted 1000-fold with Tween20 solution and 37 ° C, 1
Allowed to react for hours. After the reaction, wash 4 times with TBS + Tween20 solution, then in 37% TBS + Tween20 solution containing 3% gelatin.
° C., for 20 minutes, then at TBS + Tween20 solution containing 1% gelatin, and 2500-fold diluted 1 2 5 I-labeled ProteinA (Amersham), 37 ° C., and allowed to react for 1 hour. After the reaction, the plate was washed 4 times with TBS + Tween20, dried in air, exposed for 15 hours on an imaging plate manufactured by Fuji Film Co., and detected by BAS2000 system manufactured by Fuji Film Co., Ltd. The antibody of the present invention specifically reacted with only 3A4 among the above 10 human-derived cytochrome P450s (see Table 1 and FIG. 2).

【0027】比較例1 比較例抗体を用いたイムノブロ
ット法によるヒト由来のチトクロムP450分子種の分
析 市販品であるラット由来のチトクロムP450分子種を
認識する抗体(比較例抗体)を用いた場合は、上記の試
験例1と同様な方法に準じて行った。上記のようにして
得られたニトロセルロース膜を、4%ブロックエース(雪
印乳業社製)溶液中で、室温、1 時間インキュベート
し、その後、0.4%ブロックエース溶液で500 倍希釈した
ラット由来のチトクロムP450を認識する抗体それぞ
れと、室温、1 時間反応させた。反応後、0.1% Tween2
0、0.4%ブロックエース溶液で3 回洗浄後、0.4%ブロッ
クエース溶液で5000倍希釈したアルカリフォスファター
ゼ標識抗ヤギIgG ウサギ血清と、室温、1 時間反応させ
た。反応後、0.1% Tween20、0.4% ブロックエース溶液
で3 回洗浄、さらにAP溶液(10mM Tris-HCl(pH9.6)、0.
1M NaCl 、5mM MgCl2 )で1 回洗浄し、その後同溶液に
NBT (シグマ社製)、BCIP(シグマ社製)を加えた基質
溶液中に入れて発色させた。ラット由来のチトクロムP
450分子種をを認識する抗体それぞれとの反応交差性
を表1を示す。ラット由来のチトクロムP4502B1
を認識する抗体は、10種のヒト由来のチトクロムP45
0のうち、2A6、2C8の2分子種と強く反応し、2
B6、2C9、2D6の3分子種とも反応した。ラット
由来のチトクロムP4502C6を認識する抗体は、2
C8、2C9の2分子種と強く反応し、2A6、2C1
8、2E1の3分子種とも反応した。ラット由来のチト
クロムP4502C11を認識する抗体は、2A6、2
C8、2C9の3分子種と反応した。ラット由来のチト
クロムP4502C13を認識する抗体は、2C8、2
C9の2分子種と強く反応し、2A6、2C18、2E
1の3分子種とも反応した。ラット由来のチトクロムP
4502E1を認識する抗体は、2E1と強く反応し、
2A6とも反応した。ラット由来のチトクロムP450
3A2を認識する抗体は、3A4と強く反応した。以
上、異なる動物種由来のチトクロムP450分子種を認
識する抗体では、特定のヒト由来のチトクロムP450
分子種のみと特異的に反応しなかった。
Comparative Example 1 Analysis of Human-derived Cytochrome P450 Molecular Species by Immunoblotting Using Comparative Example Antibodies When a commercially available rat antibody recognizing cytochrome P450 molecular species (comparative example antibody) is used, The same procedure as in Test Example 1 above was performed. The nitrocellulose membrane obtained as described above was incubated in a 4% Block Ace (Yukirushi Dairy Co., Ltd.) solution at room temperature for 1 hour, and then diluted 500-fold with a 0.4% Block Ace solution to give rat-derived cytochromes. Each antibody that recognizes P450 was reacted at room temperature for 1 hour. After the reaction, 0.1% Tween2
After washing three times with 0, 0.4% Block Ace solution, the mixture was reacted with alkaline phosphatase-labeled anti-goat IgG rabbit serum diluted 5000-fold with 0.4% Block Ace solution at room temperature for 1 hour. After the reaction, wash 3 times with 0.1% Tween20, 0.4% block ace solution, and then add AP solution (10 mM Tris-HCl (pH 9.6), 0.
Wash once with 1M NaCl, 5mM MgCl2) and then add to the same solution.
NBT (manufactured by Sigma) and BCIP (manufactured by Sigma) were added to a substrate solution for color development. Rat-derived cytochrome P
Table 1 shows the reaction cross-reactivity with each of the antibodies that recognize 450 molecular species. Rat-derived cytochrome P450 2B1
Antibodies that recognize human are 10 types of human-derived cytochrome P45.
Reacts strongly with 2 molecular species of 2A6 and 2C8 among 0
It also reacted with 3 molecular species of B6, 2C9, and 2D6. Antibodies that recognize rat-derived cytochrome P450 2C6 are 2
Reacts strongly with two molecular species of C8 and 2C9, 2A6 and 2C1
It also reacted with 3 molecular species of 8 and 2E1. Antibodies that recognize rat-derived cytochrome P450 2C11 are 2A6, 2
Reacted with 3 molecular species of C8 and 2C9. Antibodies that recognize rat-derived cytochrome P450 2C13 are 2C8, 2
Reacts strongly with 2 molecular species of C9, 2A6, 2C18, 2E
It also reacted with the three molecular species of 1. Rat-derived cytochrome P
The antibody that recognizes 4502E1 reacts strongly with 2E1,
It also reacted with 2A6. Rat-derived cytochrome P450
The antibody that recognizes 3A2 reacted strongly with 3A4. As described above, in the antibodies that recognize cytochrome P450 molecular species derived from different animal species, specific human-derived cytochrome P450
It did not react specifically with only the molecular species.

【0028】[0028]

【表1】 1)+++を100%とした時、++は25%程度、+は5%程度、無印は1% 程度未満の反応を示すことを表す。 2)N.D は未試験。[Table 1] 1) When ++ is defined as 100%, ++ indicates a reaction of about 25%, + indicates a reaction of about 5%, and no mark indicates a reaction of less than about 1%. 2) ND has not been tested.

【0029】試験例2 間接競合阻害法によるヒト由来
のチトクロムP4503A4の分析 ポリスチレン製の96穴ミクロタイタープレートに、製
造例6によって得られたヒト由来のチトクロムP450
3A4を10μg/mlの濃度で含むコーティング液(塩
化ナトリウムを140mg/lの濃度で含む10mMのリン
酸緩衝液(NaH2 PO4 −Na2 HPO4 、pH7.4))
を 0.1ml/ウェルの割合で添加した後、4℃で一晩イン
キュベートした。そしてコーティング液を除去した後、
ヒト由来のチトクロムP4503A4によってコーティ
ングされたミクロタイタープレートを10mMのリン酸緩
衝液(NaH2 PO4 −Na2 HPO4 、pH7.4)中に浸
すことにより3回洗浄し、該ミクロタイタープレートの
上面を下にしてペーパータオル上で軽く打ちつけること
によりプレート内の水分を除去した。次に、該ミクロタ
イタープレートにブロッキング液(ブロックエース、雪
印乳業社製)を 0.1ml/ウェルの割合で添加した後、室
温で4時間インキュベートした。そして再びミクロタイ
タープレートを0.05%(w/v) の Tween20を含む10mMの
リン酸緩衝液(NaH2 PO4 −Na2 HPO4 、pH7.
4)を用いて3回洗浄した。次に、製造例7によって得ら
れた抗体(第1抗体)をブロッキング液で10ないし1
8 倍希釈し、上記のミクロタイタープレートに 0.1ml
/ウェルの割合で添加した後、室温で1時間インキュベ
ートした。そして第1抗体調製液を除去した後、0.05%
(w/v) の Tween20を含む10mMのリン酸緩衝液(NaH
2 PO4 −Na2 HPO4 、pH7.4)を用いて3回洗浄し
た。次に、市販のアルカリフォスファターゼを結合した
抗ウサギ免疫グロブリン(IgG)ヤギ免疫グロブリン
(IgG)(生化学工業社製)を、 0.5mg/mlの濃度で
ブロッキング液で4000倍に希釈した第2抗体調製液
を上記のミクロタイタープレートに、 0.1ml/ウェルの
割合で添加した後、室温で1時間インキュベートした。
そして第2抗体調製液を除去した後、0.05%(w/v) の T
ween20を含む10mMのリン酸緩衝液(NaH2 PO4
−Na2 HPO4 、pH7.4)を用いて3回洗浄し、該ミ
クロタイタープレートの上面を下にしてペーパータオル
上で軽く打ちつけることによりプレート内の水分を除去
した。次に、アルカリホスファB−テストワコーキット
(和光純薬社製)を用いて、該試薬(p-ニトロフェニルリン 酸二
ナトリウム )および0.1 Mの炭酸塩緩衝液(pH9.8 )を上記
のミクロタイタープレートに各々、 0.1ml/ウェルの割
合で添加した後、該ミクロタイタープレートを室温で3
0分間インキュベートした。そして0.2 Nの水酸化ナト
リウム溶液0.1ml を加えることにより、酵素反応を停止
し、ミクロタイタープレート内の発色をマルチスキャニ
ングスペクトロフォトメーター(大日本製薬社製)を用
いて、405nmでの吸光度を測定した。その結果、図3
に示す曲線が得られた。
Test Example 2 Analysis of Human-derived Cytochrome P450 3A4 by Indirect Competitive Inhibition Method Human-derived cytochrome P450 obtained in Production Example 6 was placed on a 96-well microtiter plate made of polystyrene.
Coating solution containing 3A4 at a concentration of 10 μg / ml (10 mM phosphate buffer solution containing sodium chloride at a concentration of 140 mg / l (NaH2 PO4 -Na2 HPO4, pH 7.4))
Was added at a rate of 0.1 ml / well and then incubated at 4 ° C. overnight. And after removing the coating liquid,
Microtiter plates coated with human-derived cytochrome P450 3A4 were washed 3 times by immersing them in 10 mM phosphate buffer (NaH2 PO4 -Na2 HPO4, pH 7.4) with the top side of the microtiter plate facing down. Moisture in the plate was removed by tapping gently on a paper towel. Next, a blocking solution (Block Ace, manufactured by Snow Brand Milk Products Co., Ltd.) was added to the microtiter plate at a rate of 0.1 ml / well, followed by incubation at room temperature for 4 hours. Then, the microtiter plate was again placed on a 10 mM phosphate buffer solution (NaH2 PO4 -Na2 HPO4, pH 7.) containing 0.05% (w / v) Tween20.
It wash | cleaned 3 times using 4). Next, the antibody (first antibody) obtained in Production Example 7 was treated with a blocking solution at 10 to 1
0 8-fold diluted, 0.1 ml in microtiter plates the
/ Well, and then incubated at room temperature for 1 hour. After removing the first antibody preparation, 0.05%
(w / v) Tween20 10 mM phosphate buffer (NaH
It was washed 3 times with 2 PO4 -Na2 HPO4, pH 7.4). Next, a second antibody obtained by diluting commercially available alkaline phosphatase-conjugated anti-rabbit immunoglobulin (IgG) goat immunoglobulin (IgG) (manufactured by Seikagaku Corporation) with blocking solution at a concentration of 4000 times. The prepared solution was added to the above microtiter plate at a rate of 0.1 ml / well, and then incubated at room temperature for 1 hour.
After removing the second antibody preparation, 0.05% (w / v) T
10 mM phosphate buffer containing ween 20 (NaH2 PO4
-Washed 3 times with Na2 HPO4, pH 7.4) and tapped on paper towel with the top side of the microtiter plate facing down to remove water in the plate. Next, using an alkaline phospha B-test Wako kit (manufactured by Wako Pure Chemical Industries, Ltd.), the reagent (p-nitrophenyl phosphate disodium salt) and 0.1 M carbonate buffer solution (pH 9.8) were added as described above. After adding 0.1 ml / well to each microtiter plate, the microtiter plate was incubated at room temperature for 3 times.
Incubated for 0 minutes. Then, the enzymatic reaction was stopped by adding 0.1 ml of 0.2 N sodium hydroxide solution, and the color development in the microtiter plate was measured by measuring the absorbance at 405 nm using a multi-scanning spectrophotometer (Dainippon Pharmaceutical Co., Ltd.). did. As a result, FIG.
The curve shown in was obtained.

【0030】[0030]

【発明の効果】本発明は、ヒト由来のチトクロムP45
0分子種を認識しかつ目的とする特定なチトクロムP4
50分子種のみを特異的に認識する抗体を提供する。そ
して本発明抗体を用いることによって生体内のチトクロ
ムP450分子種を正確にしかも簡便に定量することが
可能となった。
The present invention is directed to human-derived cytochrome P45.
Specific cytochrome P4 that recognizes 0 molecular species and is the target
An antibody that specifically recognizes only 50 molecular species is provided. The use of the antibody of the present invention has made it possible to accurately and easily quantify cytochrome P450 molecular species in vivo.

【配列表】[Sequence list]

【0031】配列番号1 配列の長さ:32 配列の型:核酸 鎖の数:1本鎖 トポロジー:直線状 配列 1 AGTAAGGAATCTAGAAATGGCTCTCATCCCAG 32SEQ ID NO: 1 Sequence length: 32 Sequence type: Nucleic acid Number of strands: Single strand Topology: Linear sequence 1 AGTAAGGAATCTAGAAATGGCTCTCATCCCAG 32

【0032】配列番号2 配列の長さ:27 配列の型:核酸 鎖の数:1本鎖 トポロジー:直線状 配列 1 ACGAGCTCCAGATCGGACAGAGCTTTG 27SEQ ID NO: 2 Sequence length: 27 Sequence type: Nucleic acid Number of strands: Single strand Topology: Linear sequence 1 ACGAGCTCCAGATCGGACAGAGCTTTG 27

【0033】配列番号3 配列の長さ:27 配列の型:核酸 鎖の数:1本鎖 トポロジー:直線状 配列 1 CAAAGCTCTGTCCGATCTGGAGCTCGT 27SEQ ID NO: 3 Sequence length: 27 Sequence type: Nucleic acid Number of strands: Single strand Topology: Linear sequence 1 CAAAGCTCTGTCCGATCTGGAGCTCGT 27

【0034】配列番号4 配列の長さ:33 配列の型:核酸 鎖の数:1本鎖 トポロジー:直線状 配列 1 CAAAGTAATTTGAGGTACCTGGTGTTCTCAGGC 33SEQ ID NO: 4 Sequence length: 33 Sequence type: Nucleic acid Number of strands: Single strand Topology: Linear sequence 1 CAAAGTAATTTGAGGTACCTGGTGTTCTCAGGC 33

【0035】配列番号:5 配列の長さ:1512 配列の型:核酸 鎖の数:二本鎖 トポロジー:直鎖状 配列 1 ATG GCT CTC ATC CCA GAC TTG GCC ATG GAA ACC TGG CTT CTC CTG 45 1 Met Ala Leu Ile Pro Asp Leu Ala Met Glu Thr Trp Leu Leu Leu 15 46 GCT GTC AGC CTG GTG CTC CTC TAT CTA TAT GGA ACC CAT TCA CAT 90 16 Ala Val Ser Leu Val Leu Leu Tyr Leu Tyr Gly Thr His Ser His 30 91 GGA CTT TTT AAG AAG CTT GGA ATT CCA GGG CCC ACA CCT CTG CCT 135 31 Gly Leu Phe Lys Lys Leu Gly Ile Pro Gly Pro Thr Pro Leu Pro 45 136 TTT TTG GGA AAT ATT TTG TCC TAC CAT AAG GGC TTT TGT ATG TTT 180 46 Phe Leu Gly Asn Ile Leu Ser Tyr His Lys Gly Phe Cys Met Phe 60 181 GAC ATG GAA TGT CAT AAA AAG TAT GGA AAA GTG TGG GGC TTT TAT 225 61 Asp Met Glu Cys His Lys Lys Tyr Gly Lys Val Trp Gly Phe Tyr 75 226 GAT GGT CAA CAG CCT GTG CTG GCT ATC ACA GAT CCT GAC ATG ATC 270 76 Asp Gly Gln Gln Pro Val Leu Ala Ile Thr Asp Pro Asp Met Ile 90 271 AAA ACA GTG CTA GTG AAA GAA TGT TAT TCT GTC TTC ACA AAC CGG 315 91 Lys Thr Val Leu Val Lys Glu Cys Tyr Ser Val Phe Thr Asn Arg 105 316 AGG CCT TTT GGT CCA GTG GGA TTT ATG AAA AGT GCC ATC TCT ATA 360 106 Arg Pro Phe Gly Pro Val Gly Phe Met Lys Ser Ala Ile Ser Ile 120 361 GCT GAG GAT GAA GAA TGG AAG AGA TTA CGA TCA TTG CTG TCT CCA 405 121 Ala Glu Asp Glu Glu Trp Lys Arg Leu Arg Ser Leu Leu Ser Pro 135 406 ACC TTC ACC AGT GGA AAA CTC AAG GAG ATG GTC CCT ATC ATT GCC 450 136 Thr Phe Thr Ser Gly Lys Leu Lys Glu Met Val Pro Ile Ile Ala 150 451 CAG TAT GGA GAT GTG TTG GTG AGA AAT CTG AGG CGG GAA GCA GAG 495 151 Gln Tyr Gly Asp Val Leu Val Arg Asn Leu Arg Arg Glu Ala Glu 165 496 ACA GGC AAG CCT GTC ACC TTG AAA GAC GTC TTT GGG GCC TAC AGC 540 166 Thr Gly Lys Pro Val Thr Leu Lys Asp Val Phe Gly Ala Tyr Ser 180 541 ATG GAT GTG ATC ACT AGC ACA TCA TTT GGA GTG AAC ATC GAC TCT 585 181 Met Asp Val Ile Thr Ser Thr Ser Phe Gly Val Asn Ile Asp Ser 195 586 CTC AAC AAT CCA CAA GAC CCC TTT GTG GAA AAC ACC AAG AAG CTT 630 196 Leu Asn Asn Pro Gln Asp Pro Phe Val Glu Asn Thr Lys Lys Leu 210 631 TTA AGA TTT GAT TTT TTG GAT CCA TTC TTT CTC TCA ATA ACA GTC 675 211 Leu Arg Phe Asp Phe Leu Asp Pro Phe Phe Leu Ser Ile Thr Val 225 676 TTT CCA TTC CTC ATC CCA ATT CTT GAA GTA TTA AAT ATC TGT GTG 720 226 Phe Pro Phe Leu Ile Pro Ile Leu Glu Val Leu Asn Ile Cys Val 240 721 TTT CCA AGA GAA GTT ACA AAT TTT TTA AGA AAA TCT GTA AAA AGG 765 241 Phe Pro Arg Glu Val Thr Asn Phe Leu Arg Lys Ser Val Lys Arg 255 766 ATG AAA GAA AGT CGC CTC GAA GAT ACA CAA AAG CAC CGA GTG GAT 810 256 Met Lys Glu Ser Arg Leu Glu Asp Thr Gln Lys His Arg Val Asp 270 811 TTC CTT CAG CTG ATG ATT GAC TCT CAG AAT TCA AAA GAA ACT GAG 855 271 Phe Leu Gln Leu Met Ile Asp Ser Gln Asn Ser Lys Glu Thr Glu 285 856 TCC CAC AAA GCT CTG TCC GAT CTG GAG CTC GTG GCC CAA TCA ATT 900 286 Ser His Lys Ala Leu Ser Asp Leu Glu Leu Val Ala Gln Ser Ile 300 901 ATC TTT ATT TTT GCT GGC TAT GAA ACC ACG AGC AGT GTT CTC TCC 945 301 Ile Phe Ile Phe Ala Gly Tyr Glu Thr Thr Ser Ser Val Leu Ser 315 946 TTC ATT ATG TAT GAA CTG GCC ACT CAC CCT GAT GTC CAG CAG AAA 990 316 Phe Ile Met Tyr Glu Leu Ala Thr His Pro Asp Val Gln Gln Lys 330 991 CTG CAG GAG GAA ATT GAT GCA GTT TTA CCC AAT AAG GCA CCA CCC 1035 331 Leu Gln Glu Glu Ile Asp Ala Val Leu Pro Asn Lys Ala Pro Pro 345 1036 ACC TAT GAT ACT GTG CTA CAG ATG GAG TAT CTT GAC ATG GTG GTG 1080 346 Thr Tyr Asp Thr Val Leu Gln Met Glu Tyr Leu Asp Met Val Val 360 1081 AAT GAA ACG CTC AGA TTA TTC CCA ATT GCT ATG AGA CTT GAG AGG 1125 361 Asn Glu Thr Leu Arg Leu Phe Pro Ile Ala Met Arg Leu Glu Arg 375 1126 GTC TGC AAA AAA GAT GTT GAG ATC AAT GGG ATG TTC ATT CCC AAA 1170 376 Val Cys Lys Lys Asp Val Glu Ile Asn Gly Met Phe Ile Pro Lys 390 1171 GGG TGG GTG GTG ATG ATT CCA AGC TAT GCT CTT CAC CGT GAC CCA 1215 391 Gly Trp Val Val Met Ile Pro Ser Tyr Ala Leu His Arg Asp Pro 405 1216 AAG TAC TGG ACA GAG CCT GAG AAG TTC CTC CCT GAA AGA TTC AGC 1260 406 Lys Tyr Trp Thr Glu Pro Glu Lys Phe Leu Pro Glu Arg Phe Ser 420 1261 AAG AAG AAC AAG GAC AAC ATA GAT CCT TAC ATA TAC ACA CCC TTT 1305 421 Lys Lys Asn Lys Asp Asn Ile Asp Pro Tyr Ile Tyr Thr Pro Phe 435 1306 GGA AGT GGA CCC AGA AAC TGC ATT GGC ATG AGG TTT GCT CTC ATG 1350 436 Gly Ser Gly Pro Arg Asn Cys Ile Gly Met Arg Phe Ala Leu Met 450 1351 AAC ATG AAA CTT GCT CTA ATC AGA GTC CTT CAG AAC TTC TCC TTC 1395 451 Asn Met Lys Leu Ala Leu Ile Arg Val Leu Gln Asn Phe Ser Phe 465 1396 AAA CCT TGT AAA GAA ACA CAG ATC CCC CTG AAA TTA AGC TTA GGA 1440 466 Lys Pro Cys Lys Glu Thr Gln Ile Pro Leu Lys Leu Ser Leu Gly 480 1441 GGA CTT CTT CAA CCA GAA AAA CCC GTT GTT CTA AAG GTT GAG TCA 1473 481 Gly Leu Leu Gln Pro Glu Lys Pro Val Val Leu Lys Val Glu Ser 491 1486 AGG GAT GGC ACC GTA AGT GGA GCC TGA 1512 496 Arg Asp Gly Thr Val Ser Gly Ala *** 504SEQ ID NO: 5 Sequence length: 1512 Sequence type: Nucleic acid Number of strands: Double-stranded topology: Linear sequence 1 ATG GCT CTC ATC CCA GAC TTG GCC ATG GAA ACC TGG CTT CTC CTG 45 1 Met Ala Leu Ile Pro Asp Leu Ala Met Glu Thr Trp Leu Leu Leu 15 46 GCT GTC AGC CTG GTG CTC CTC TAT CTA TAT GGA ACC CAT TCA CAT 90 16 Ala Val Ser Leu Val Leu Leu Tyr Leu Tyr Gly Thr His Ser His 30 91 GGA CTT TTT AAG AAG CTT GGA ATT CCA GGG CCC ACA CCT CTG CCT 135 31 Gly Leu Phe Lys Lys Leu Gly Ile Pro Gly Pro Thr Pro Leu Pro 45 136 TTT TTG GGA AAT ATT TTG TCC TAC CAT AAG GGC TTT TGT ATG TTT 180 46 Phe Leu Gly Asn Ile Leu Ser Tyr His Lys Gly Phe Cys Met Phe 60 181 GAC ATG GAA TGT CAT AAA AAG TAT GGA AAA GTG TGG GGC TTT TAT 225 61 Asp Met Glu Cys His Lys Lys Tyr Gly Lys Val Trp Gly Phe Tyr 75 226 GAT GGT CAA CAG CCT GTG CTG GCT ATC ACA GAT CCT GAC ATG ATC 270 76 Asp Gly Gln Gln Pro Val Leu Ala Ile Thr Asp Pro Asp Met Ile 90 271 AAA ACA GTG CTA GTG AAA GAA TGT TAT TCT GTC TTC ACA AAC CGG 315 91 Lys Thr Val Leu Val Lys Glu Cys Tyr Ser Val Phe Thr Asn Arg 105 316 AGG CCT TTT GGT CCA GTG GGA TTT ATG AAA AGT GCC ATC TCT ATA 360 106 Arg Pro Phe Gly Pro Val Gly Phe Met Lys Ser Ala Ile Ser Ile 120 361 GCT GAG GAT GAA GAA TGG AAG AGA TTA CGA TCA TTG CTG TCT CCA 405 121 Ala Glu Asp Glu Glu Trp Lys Arg Leu Arg Ser Leu Leu Ser Pro 135 406 ACC TTC ACC AGT GGA AAA CTC AAG GAG ATG GTC CCT ATC ATT GCC 450 136 Thr Phe Thr Ser Gly Lys Leu Lys Glu Met Val Pro Ile Ile Ala 150 451 CAG TAT GGA GAT GTG TTG GTG AGA AAT CTG AGG CGG GAA GCA GAG 495 151 Gln Tyr Gly Asp Val Leu Val Arg Asn Leu Arg Arg Glu Ala Glu 165 496 ACA GGC AAG CCT GTC ACC TTG AAA GAC GTC TTT GGG GCC TAC AGC 540 166 Thr Gly Lys Pro Val Thr Leu Lys Asp Val Phe Gly Ala Tyr Ser 180 541 ATG GAT GTG ATC ACT AGC ACA TCA TTT GGA GTG AAC ATC GAC TCT 585 181 Met Asp Val Ile Thr Ser Thr Ser Phe Gly Val Asn Ile Asp Ser 195 586 CTC AAC AAT CCA CAA GAC CCC TTT GTG GAA AAC ACC AAG AAG CTT 630 196 Leu Asn Asn Pro Gln Asp Pro Phe V al Glu Asn Thr Lys Lys Leu 210 631 TTA AGA TTT GAT TTT TTG GAT CCA TTC TTT CTC TCA ATA ACA GTC 675 211 Leu Arg Phe Asp Phe Leu Asp Pro Phe Phe Leu Ser Ile Thr Val 225 676 TTT CCA TATT CTC ATC CCA ATT CTT GAA GTA TTA AAT ATC TGT GTG 720 226 Phe Pro Phe Leu Ile Pro Ile Leu Glu Val Leu Asn Ile Cys Val 240 721 TTT CCA AGA GAA GTT ACA AAT TTT TTA AGA AAA TCT GTA AAA AGG 765 241 Phe Pro Arg Glu Val Thr Asn Phe Leu Arg Lys Ser Val Lys Arg 255 766 ATG AAA GAA AGT CGC CTC GAA GAT ACA CAA AAG CAC CGA GTG GAT 810 256 Met Lys Glu Ser Arg Leu Glu Asp Thr Gln Lys His Arg Val Asp 270 811 TTC CTT CAG CTG ATG ATT GAC TCT CAG AAT TCA AAA GAA ACT GAG 855 271 Phe Leu Gln Leu Met Ile Asp Ser Gln Asn Ser Lys Glu Thr Glu 285 856 TCC CAC AAA GCT CTG TCC GAT CTG GAG CTC GTG GCC CAA TCA ATT 900 286 Ser His Lys Ala Leu Ser Asp Leu Glu Leu Val Ala Gln Ser Ile 300 901 ATC TTT ATT TTT GCT GGC TAT GAA ACC ACG AGC AGT GTT CTC TCC 945 301 Ile Phe Ile Phe Ala Gly Tyr Glu Thr Thr Ser Ser Val Leu Ser 315 946 TTC ATT ATGTAT GAA CTG GCC ACT CAC CCT GAT GTC CAG CAG AAA 990 316 Phe Ile Met Tyr Glu Leu Ala Thr His Pro Asp Val Gln Gln Lys 330 991 CTG CAG GAG GAA ATT GAT GCA GTT TTA CCC AAT AAG GCA CCA CCC 1035 331 Leu Gln Glu Glu Ile Asp Ala Val Leu Pro Asn Lys Ala Pro Pro 345 1036 ACC TAT GAT ACT GTG CTA CAG ATG GAG TAT CTT GAC ATG GTG GTG 1080 346 Thr Tyr Asp Thr Val Leu Gln Met Glu Tyr Leu Asp Met Val Val 360 1081 AAT GAA ACG CTC AGA TTA TTC CCA ATT GCT ATG AGA CTT GAG AGG 1125 361 Asn Glu Thr Leu Arg Leu Phe Pro Ile Ala Met Arg Leu Glu Arg 375 1126 GTC TGC AAA AAA GAT GTT GAG ATC AAT GGG ATG TTC ATT CCC AAA 1170 376 Val Cys Lys Lys Asp Val Glu Ile Asn Gly Met Phe Ile Pro Lys 390 1171 GGG TGG GTG GTG ATG ATT CCA AGC TAT GCT CTT CAC CGT GAC CCA 1215 391 Gly Trp Val Val Met Ile Pro Ser Tyr Ala Leu His Arg Asp Pro 405 1216 AAG TAC TGG ACA GAG CCT GAG AAG TTC CTC CCT GAA AGA TTC AGC 1260 406 Lys Tyr Trp Thr Glu Pro Glu Lys Phe Leu Pro Glu Arg Phe Ser 420 1261 AAG AAG AAC AAG GAC AAC ATA GAT CCT TAC ATA TAC ACA CCC TTT 1305 421 Lys Lys Asn Lys Asp Asn Ile Asp Pro Tyr Ile Tyr Thr Pro Phe 435 1306 GGA AGT GGA CCC AGA AAC TGC ATT GGC ATG AGG TTT GCT CTC ATG 1350 436 Gly Ser Gly Pro Arg Asn Cys Ile Gly Met Arg Phe Ala Leu Met 450 1351 AAC ATG AAA CTT GCT CTA ATC AGA GTC CTT CAG AAC TTC TCC TTC 1395 451 Asn Met Lys Leu Ala Leu Ile Arg Val Leu Gln Asn Phe Ser Phe 465 1396 AAA CCT TGT AAA GAA ACA CAG ATC CCC CTG AAA TTA AGC TTA GGA 1440 466 Lys Pro Cys Lys Glu Thr Gln Ile Pro Leu Lys Leu Ser Leu Gly 480 1441 GGA CTT CTT CAA CCA GAA AAA CCC GTT GTT CTA AAG GTT GAG TCA 1473 481 Gly Leu Leu Gln Pro Glu Lys Pro Val Val Leu Lys Val Glu Ser 491 1486 AGG GAT GGC ACC GTA AGT GGA GCC TGA 1512 496 Arg Asp Gly Thr Val Ser Gly Ala *** 504

【図面の簡単な説明】[Brief description of drawings]

【図1】ヒト由来のチトクロムP4503A4遺伝子を
含む酵母発現プラスミド(p3A4)の構築方法を示す
図である。
FIG. 1 is a diagram showing a method for constructing a yeast expression plasmid (p3A4) containing a human-derived cytochrome P450 3A4 gene.

【図2】本発明抗体のヒト由来のチトクロムP450分
子種に対する交差反応性を示す図である。矢印がヒト由
来のチトクロムP4503A4との反応を示すバンドで
ある。なお、他のバンドは電気泳動のための試料作製
(SDS処理)時に生じるヒト由来のチトクロムP45
03A4の分解物との反応を示すバンドである。
FIG. 2 shows the cross-reactivity of the antibody of the present invention with human-derived cytochrome P450 molecular species. The arrow indicates a band showing a reaction with human-derived cytochrome P450 3A4. The other bands are human-derived cytochrome P45 generated during sample preparation (SDS treatment) for electrophoresis.
It is a band showing a reaction with a decomposition product of 03A4.

【図3】ヒト由来のチトクロムP4503A4を認識す
る本発明抗体の抗体価を示す図である。図から、ヒト由
来のチトクロムP4503A4を発現する形質転換体で
ある酵母から抽出および精製されたヒト由来のチトクロ
ムP4503A4を抗原として免疫感作化した哺乳動物
から血液を採取し、該血液から分離・精製して得られる
血清の希釈率が10- 4 においてもヒト由来のチトクロ
ムP450分子種を認識する能力を充分に有することが
明らかであり、本発明抗体が高い抗体価であることがわ
かる。
FIG. 3 is a graph showing the antibody titer of the antibody of the present invention that recognizes human-derived cytochrome P450 3A4. From the figure, blood was collected from a mammal immunized with human-derived cytochrome P4503A4 as an antigen, which was extracted and purified from yeast, which is a transformant expressing human-derived cytochrome P4503A4, and then separated and purified from the blood. serum dilutions obtained by 10 - even 4 is found to have sufficient ability to recognize the cytochrome P450 molecular species of human origin, it is understood that the present invention the antibody is a high titer.

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.6 識別記号 庁内整理番号 FI 技術表示箇所 G01N 33/53 D (C12N 1/19 C12R 1:865) (72)発明者 林 浩司 兵庫県宝塚市高司4丁目2番1号 住友化 学工業株式会社内 (72)発明者 藪崎 義康 兵庫県宝塚市高司4丁目2番1号 住友化 学工業株式会社内─────────────────────────────────────────────────── ─── Continuation of the front page (51) Int.Cl. 6 Identification number Reference number within the agency FI Technical display location G01N 33/53 D (C12N 1/19 C12R 1: 865) (72) Inventor Koji Hayashi Takarazuka, Hyogo Prefecture 4-2-1 Takashi Ichi, Sumitomo Kagaku Kogyo Co., Ltd. (72) Inventor Yoshiyasu Yabuzaki 4-2-1 Takashi, Takarazuka-shi, Hyogo Sumitomo Kagaku Kogyo Co., Ltd.

Claims (2)

【特許請求の範囲】[Claims] 【請求項1】ヒト由来のチトクロムP4503A4を発
現する形質転換体である酵母から抽出および精製された
ヒト由来のチトクロムP4503A4を抗原として免疫
感作化した哺乳動物から血液を採取し、該血液から分離
・精製して得られうる、他のヒト由来のチトクロムP4
50分子種に対して交差反応性を実質的に示さないこと
を特徴とするヒト由来のチトクロムP4503A4を認
識する抗体。
1. Blood is collected from a mammal immunized with human-derived cytochrome P4503A4 extracted and purified from yeast, which is a transformant expressing human-derived cytochrome P4503A4, and separated from the blood. -Other human-derived cytochrome P4 that can be obtained by purification
An antibody recognizing human-derived cytochrome P450 3A4, which does not substantially show cross-reactivity with 50 molecular species.
【請求項2】ヒト由来のチトクロムP4503A4を発
現する形質転換体である酵母から抽出および精製された
ヒト由来のチトクロムP4503A4を抗原として免疫
感作化した哺乳動物から血液を採取し、該血液から分離
・精製して得られる血清の希釈率が10- 4 においても
ヒト由来のチトクロムP450分子種を認識する能力を
有することを特徴とする請求項1記載のヒト由来のチト
クロムP4503A4を認識する抗体。
2. Blood is collected from a mammal immunized with human-derived cytochrome P4503A4 extracted and purified from yeast, which is a transformant expressing human-derived cytochrome P4503A4, and separated from the blood. and purified by dilution of the resulting serum is 10 - 4 according to claim 1, wherein the human-derived antibodies recognizing cytochrome P4503A4 of also characterized by having the ability to recognize the cytochrome P450 molecular species derived from humans in.
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