JPH0766000B2 - Labeled immunocarrier and method of using the same - Google Patents

Labeled immunocarrier and method of using the same

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JPH0766000B2
JPH0766000B2 JP10383086A JP10383086A JPH0766000B2 JP H0766000 B2 JPH0766000 B2 JP H0766000B2 JP 10383086 A JP10383086 A JP 10383086A JP 10383086 A JP10383086 A JP 10383086A JP H0766000 B2 JPH0766000 B2 JP H0766000B2
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  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Description

【発明の詳細な説明】 [産業上の利用分野] 本発明は、被検体中の微量成分の分析に関するものであ
る。
TECHNICAL FIELD The present invention relates to the analysis of trace constituents in an analyte.

[従来の技術] 従来、検体中の微量成分、例えば疾患とその濃度との関
係が明らかな物質である各種のイムノグロブリン、トラ
ンスフェリン、βミクログロブリン、CRP、AFP、CEA
及びウイルス等の定量方法としては、ラジオイム/アッ
セイ(RIA)、逆受身凝集反応法(RPHA)、補体結合反
応法、エンザイムイム/アッセイ(EIA)等が知られて
いる。これらのうち、RPHA法と補体結合反応法は1検体
毎に検体を2のn乗(n=1〜2)希釈する方法であ
り、多検体処理には不適当であり個人差も大きいと言わ
れている。更に赤血球を用いるため、その安定性にも問
題がある。また、RIA法は取り扱いが困難であるアイソ
トープを使用し、特別な施設を必要とするために設備も
高価であり、簡便に扱うことができない。
[Prior Art] Conventionally, various kinds of immunoglobulins, transferrin, β 2 microglobulin, CRP, AFP, CEA, which are substances having a clear relationship between a trace component in a sample, for example, a disease and its concentration.
As a method for quantifying viruses and the like, radioimmunoassay (RIA), reverse passive agglutination reaction method (RPHA), complement fixation reaction method, enzyme immunoassay method (EIA) and the like are known. Of these, the RPHA method and complement fixation reaction method are methods in which each sample is diluted to the nth power of 2 (n = 1 to 2), and it is not suitable for multi-sample processing and there are large individual differences. It is said. Further, since red blood cells are used, there is a problem in stability. In addition, the RIA method uses an isotope that is difficult to handle and requires special facilities, so the equipment is expensive and cannot be handled easily.

近年、さかんに行なわれているEIA法は、その取り扱い
易さと高価は装置を必要としないことで急速に普及して
いる。しかし、この方法に用いられる酵素標識抗体は、
酵素と抗体を結合させるに際しては、グルタールアルデ
ヒド又はマレイミド試薬の様な二価性試薬、あるいは過
ヨウ素酸ナトリウムを用いパーオキシダーゼの糖鎖を還
元して抗体と結合させる方法、あるいは抗体又は酵素の
SH基を介して結合する方法などが数多く発表されている
が、一般的にこれらの方法による酵素標識抗体の作製は
困難な要素が多い〔酵素抗体法、改定版、学際企画
(株)発行、1985年、21〜23頁参照〕。一方、ホモジニ
アスEIA法において、アガロース粒子を担体に用い、こ
れに抗原もしくは高地とグルコース−6−ホスフェート
デヒドロゲナーゼ(G−6−PDH)を固定化させたもの
と、ヘキソキナーゼを標識した抗体とを加えて抗原抗体
反応をさせる方法が報告されているが、この方法は反応
系が非常に複雑である〔酵素免疫測定法、第2版、医学
書院発行、1982年、39〜40頁参照〕。
In recent years, the EIA method, which is widely carried out, is rapidly spreading because it is easy to handle and expensive and does not require a device. However, the enzyme-labeled antibody used in this method is
When binding the enzyme to the antibody, a divalent reagent such as a glutaraldehyde or maleimide reagent, or a method of reducing the sugar chain of peroxidase using sodium periodate to bind to the antibody, or the method of binding the antibody or enzyme
Many methods for binding via SH groups have been announced, but in general, there are many difficult factors to prepare enzyme-labeled antibodies by these methods [enzyme antibody method, revised version, published by Interdisciplinary Planning Co., Ltd., 1985, see pages 21-23). On the other hand, in the homogeneous EIA method, agarose particles were used as a carrier, to which an antigen or highland and glucose-6-phosphate dehydrogenase (G-6-PDH) were immobilized, and a hexokinase-labeled antibody was added. A method for carrying out an antigen-antibody reaction has been reported, but this method has a very complicated reaction system [see Enzyme-linked immunosorbent assay, 2nd edition, published by Ikushosho, 1982, pp. 39-40].

[発明が解決しようとする問題点] EIA法において最も重要な役割を担っているのは、酵素
標識抗体であり、この酵素標識抗体の性能によって大き
く結果が異なってくる。この原因は酵素標識抗体の作製
にあたっての困難さである。即ち、抗体と酵素を結合す
る際に用いられる架橋剤と蛋白質との反応は、一般的に
は特異性が低く、その結果、再現性の乏しい方法となっ
ているからである。一般的には架橋剤が抗体又は酵素の
どの部分に結合したかを判断するのは困難であり、酵素
と抗体の結合にあたり酵素活性か抗体活性の一方、ある
いは両方が減少することは希ではない。それ故、抗体と
酵素を直接的に結合する従来法では、高抗体価、高酵素
活性を保持し、かつ作製の操作が容易で、長期安定な酵
素標識抗体を作製することは困難である。
[Problems to be Solved by the Invention] The enzyme-labeled antibody plays the most important role in the EIA method, and the results greatly vary depending on the performance of the enzyme-labeled antibody. The cause of this is the difficulty in producing the enzyme-labeled antibody. That is, the reaction between the crosslinking agent used for binding the antibody and the enzyme and the protein generally has low specificity, and as a result, the method has poor reproducibility. Generally, it is difficult to determine which part of the antibody or enzyme the cross-linking agent has bound to, and it is not uncommon for enzyme activity and / or antibody activity to decrease upon binding of enzyme and antibody. . Therefore, it is difficult to produce a long-term stable enzyme-labeled antibody that retains a high antibody titer and a high enzyme activity and is easy to produce by the conventional method of directly binding an antibody to an enzyme.

従って、本発明は抗体と酵素とを直接的に結合すること
なく、抗体活性及び酵素活性の低下をおこさない標識化
免疫担体の作製と、これを用いた被検物の簡便な測定法
を提供することにある。
Therefore, the present invention provides a labeled immunocarrier that does not cause a decrease in antibody activity and enzyme activity without directly binding an antibody to an enzyme, and provides a simple assay method for a test substance using the same. To do.

[問題点を解決するための手段] 本発明者らは、上記問題点を鑑み鋭意研究した結果、担
体粒子に抗体と酵素を検出させることにより、酵素及び
抗体の活性を低下させることなく、両方の高活性を併せ
持った標識化免疫担体の開発に成功し、本発明を完成さ
せた。
[Means for Solving Problems] As a result of intensive studies in view of the above problems, the present inventors have made it possible to detect an antibody and an enzyme in carrier particles, thereby reducing both the activity of the enzyme and the antibody. Succeeded in developing a labeled immunocarrier having both high activity, and completed the present invention.

即ち、本発明は水に不溶な微小粒子で、水に浮遊させる
ことができ、かつ低濃度では肉眼的に確認できない程度
の大きさの担体に、被検物に対する抗体と被検物を検出
するための指標となる酵素を結合させることを特徴とす
る標識化免疫担体である。
That is, the present invention is a water-insoluble fine particles, which can be suspended in water, and detect the antibody against the test substance and the test substance on a carrier of a size that cannot be visually confirmed at a low concentration. It is a labeled immunocarrier characterized by being bound with an enzyme which serves as an index for the purpose.

不溶性の担体粒子としては、その材質には特に制限はな
く、任意の担体粒子を使用できるが、有機高分子物質の
微小粒子、例えばポリスチレン又はスチレン−ブタジエ
ン共重合体、スチレン−ジビニルベンゼンもしくはポリ
ビニルトルエン等、あるいはそれらにカルボキシル基、
水酸基又はアミノ基等を一部有する公知のラテックス粒
子を用い、その粒径は約100μm以下、望ましくは10μ
m以下が良い。
The material of the insoluble carrier particles is not particularly limited, and any carrier particles can be used, but fine particles of an organic polymer, such as polystyrene or styrene-butadiene copolymer, styrene-divinylbenzene or polyvinyltoluene. Etc., or carboxyl groups on them,
Known latex particles partially having a hydroxyl group or an amino group are used, and the particle size is about 100 μm or less, preferably 10 μm.
m or less is good.

被検物に対する抗体は、被検物に対する抗血清より常法
に従って精製する。その作製は、例えばウサギ、ウシ、
マウス、ニワトリ、ウマ、ブタ、モルモット又はヤギ等
動物の種類に関係なく得られた抗血清を18%硫酸ナトリ
ウムで分画したもの、あるいはジエチルアミノエチル基
を有するイオン交換樹脂を用いて精製した抗体とラテッ
クス粒子とを接触させることにより抗体感作ラテックス
粒子を作製できる。抗体としては、細胞融合法により作
製されたマウスモノクローナル抗体を用いても良い。
The antibody against the test substance is purified from the antiserum against the test substance according to a conventional method. For example, rabbit, cow,
Antiserum obtained regardless of the type of animal such as mouse, chicken, horse, pig, guinea pig or goat is fractionated with 18% sodium sulfate, or an antibody purified using an ion exchange resin having a diethylaminoethyl group Antibody-sensitized latex particles can be prepared by contacting with latex particles. A mouse monoclonal antibody produced by a cell fusion method may be used as the antibody.

一方、抗体と共に担体粒子に結合させる酵素としては、
パーオキシダーゼ、グルコースオキシダーゼ、ヘキソキ
ナーゼ、アルカリホスファターゼ、β−ガラクトシダー
ゼ、ウレアーゼ又はアミラーゼ等が挙げられるが、これ
らに限らずその酵素活性測定が容易で、一分子当たりの
活性が高く、扱い易い酵素であれば特に問題はない。
On the other hand, as an enzyme to be bound to carrier particles together with an antibody,
Examples include peroxidase, glucose oxidase, hexokinase, alkaline phosphatase, β-galactosidase, urease or amylase, but not limited to these, the enzyme activity can be easily measured, the activity per molecule is high, and the enzyme is easy to handle. There is no particular problem.

このような酵素の中で分子表面に疎水的な部分を有する
ものは、直接的に抗体と共にラテックス微小粒子へ結合
することができるものの、比較的親水的な酵素は、直接
結合できないため、本発明では酵素自身に疎水性置換基
を導入してラテックス微小粒子に結合を行なう。疎水性
置換基としては、アルキル鎖、フェニル鎖、その両方を
持つアミン、アルデヒド又はカルボン酸等が挙げられ
る。糖鎖を持つ酵素は、常法に従って過ヨウ素酸ナトリ
ウム等の酸化剤によりアルデヒドを作り、アミノ基を有
する上記置換基を導入する。又、アルデヒド基を有する
疎水性置換基は、酵素のアミノ基に導入することができ
る。カルボキシル基を有する疎水性置換基は、カルボジ
イミドの使用で酵素のアミノ基に導入できる。又、他の
置換基としては、2・4−ビス(o−メトキシポリエチ
レンジグリコール)−6−クロロ−S−トリアジン(活
性化PEG2)を酵素分子に導入することも可能である。他
にもアミノ基と反応する2・4ジニトロフロロベンゼン
又はテトラニトロスルホン酸等、酵素に反応して疎水性
を増加させる置換基ならば特に限定されない。
Among such enzymes, those having a hydrophobic portion on the surface of the molecule can directly bind to the latex microparticles together with the antibody, but relatively hydrophilic enzyme cannot bind directly, and therefore, the present invention Then, a hydrophobic substituent is introduced into the enzyme itself to bind to the latex microparticles. Examples of the hydrophobic substituent include an alkyl chain, a phenyl chain, an amine having both of them, an aldehyde or a carboxylic acid. An enzyme having a sugar chain forms an aldehyde with an oxidizing agent such as sodium periodate according to a conventional method and introduces the above-mentioned substituent having an amino group. Further, the hydrophobic substituent having an aldehyde group can be introduced into the amino group of the enzyme. Hydrophobic substituents having a carboxyl group can be introduced at the amino group of the enzyme by using carbodiimide. As another substituent, 2,4-bis (o-methoxypolyethylenediglycol) -6-chloro-S-triazine (activated PEG 2 ) can be introduced into the enzyme molecule. Besides, there is no particular limitation as long as it is a substituent that reacts with an enzyme to increase hydrophobicity, such as 2.4 dinitrofluorobenzene or tetranitrosulfonic acid that reacts with an amino group.

この様にして、疎水性置換基を導入した酵素と抗体とラ
テックス粒子とを同時に混合するか、あるいは疎水性置
換基を有する酵素とラテックス微小粒子とを混合し遠心
洗浄後、抗体と混合しても良く、あるいは抗体を先に微
小粒子担体と結合させた後、酵素と結合させても良い。
これらの操作の後、0.9%塩化ナトリウム水溶液を含む
適当な緩衝液でラテックス粒子を洗浄後、1%〜10%の
ウシ血清アルブミン、0.5%スキムミルク、1%BSA、1
%ゼラチン、1%卵白アルブミン、0.05%ツウィーン、
1%デキストラン、1%γ−グロブリン、又は1%血清
等でブロッキングを行なうことにより標識化免疫担体が
作製できる。ラテックス粒子の他に担体粒子としては、
例えば赤血球、個々に分散された球菌又は桿菌等のバク
テリアに公知の化学的な方法で抗体と酵素を結合させる
ことにより、標識化免疫担体の作製も可能である。又、
ベントナイト、シリカゲル、アルミナの如き無機酸化
物、その他鉱物粉末等のコロイドに抗体と酵素を結合さ
せても同様である。
In this manner, the enzyme having the hydrophobic substituent introduced, the antibody and the latex particles are mixed at the same time, or the enzyme having the hydrophobic substituent and the latex microparticles are mixed and washed by centrifugation, and then mixed with the antibody. Alternatively, the antibody may be bound to the microparticle carrier first and then bound to the enzyme.
After these operations, the latex particles were washed with an appropriate buffer containing 0.9% sodium chloride aqueous solution, and then 1% to 10% bovine serum albumin, 0.5% skim milk, 1% BSA, 1%.
% Gelatin, 1% ovalbumin, 0.05% tween,
A labeled immune carrier can be prepared by blocking with 1% dextran, 1% γ-globulin, 1% serum or the like. As carrier particles in addition to latex particles,
For example, a labeled immune carrier can be prepared by binding an antibody and an enzyme to a bacterium such as erythrocyte, individually dispersed cocci or bacillus by a known chemical method. or,
The same applies when the antibody and the enzyme are bound to a colloid of bentonite, silica gel, an inorganic oxide such as alumina, or other mineral powder.

この様にして得られた標識化免疫担体は、従来様いられ
てきた酵素と抗体とを直接径に結合させた酵素標識抗体
と同様に用いることができる。標識化免疫担体の使用の
応用こそは、即ち本発明のもうひとつの目的である。そ
の応用例とは、被検物の定量方法を提供することであ
る。定量方法とは、例えばニトロセルロース等のフィル
ター上に被検物をスポットし、これをBSA又はスキムミ
ルク等によりブロッキング後、標識化免疫担体で発色さ
せるドットイムノプロット法、あるいは電気泳動後、蛋
白質をニトロセルロース膜に転写し、特定の被検物を同
定するプロティンブロット法等、公知の免疫学的な分析
法である。
The thus-obtained labeled immunocarrier can be used in the same manner as the conventionally known enzyme-labeled antibody in which the enzyme and the antibody are directly bound to the diameter. The application of the use of labeled immunocarriers is thus another object of the invention. The application example is to provide a method for quantifying an analyte. The quantification method is, for example, spotting the test substance on a filter such as nitrocellulose, blocking it with BSA or skim milk, etc., and then developing the color with a labeled immunocarrier, or a dot immunoplot method, or after electrophoresis, the protein is It is a well-known immunological analysis method such as a protein blotting method for identifying a specific test substance by transferring it onto a cellulose membrane.

サンドウィッチ法の場合は、マイクロタイタ−プレート
又はビーズ等の固定相に被検物に対する抗体を固定す
る。これを1〜10%ウシ血清アルブミン又は前記のブロ
ッキング剤でブロッキング後、0.9%塩化ナトリウム水
溶液を含むリン酸緩衝液で洗浄する。被検物を固定相と
接触させ、一定時間後、上記緩衝液で洗浄し、標識化免
疫担体を加えて放置する。一定時間後、再度上記緩衝液
で洗浄し、発色性の担体微小粒子に結合した酵素の基質
を加え、その後比色定量することにより被検物の濃度を
測定できる。
In the case of the sandwich method, the antibody to the test substance is immobilized on a stationary phase such as a microtiter plate or beads. This is blocked with 1-10% bovine serum albumin or the above blocking agent, and then washed with a phosphate buffer containing 0.9% sodium chloride aqueous solution. The test substance is brought into contact with the stationary phase, and after a certain period of time, it is washed with the above-mentioned buffer solution, a labeled immune carrier is added thereto, and the sample is left to stand. After a certain period of time, the sample is washed again with the above-mentioned buffer solution, a substrate for the enzyme bound to the chromogenic carrier microparticles is added thereto, and then the concentration of the test substance can be measured by colorimetric quantification.

発色性の基質と酵素の組み合せは、たとえばパーオキシ
ダーゼでは、過酸化水素、4−アミノアンチピリン、フ
ェノール、あるいは過酸化水素、0−フェニレンジアミ
ン、アルカリホスファターゼでは、p−ニトロフェニル
リン酸、あるいはフェニルリン酸、4−アミノアンチピ
リン、過ヨウ素酸ナトリウム、グルコースオキシダーゼ
では、グルコース、パーオキシダーゼ、4−アミノアン
チピリン、フェノール、β−ガラクトシダーゼでは、β
−D−ガラクトシド、p−ニトロフェニル−β−ガラク
トシド等が挙げられる。
The combination of the chromogenic substrate and the enzyme is, for example, hydrogen peroxide, 4-aminoantipyrine, phenol or hydrogen peroxide in the case of peroxidase, p-nitrophenyl phosphate or phenyl phosphorus in the case of alkaline phosphatase. Acid, 4-aminoantipyrine, sodium periodate, glucose oxidase, glucose, peroxidase, 4-aminoantipyrine, phenol, β-galactosidase, β
-D-galactoside, p-nitrophenyl-β-galactoside and the like can be mentioned.

この様にして測定できる被検物は、血清中の各種イムノ
グロブリン、セルロプラスミン、トランスフェリン、ア
ンチトリプシン、β−ミクログロブリン、CRP、AFP、
CEA、又はHBs等が挙げられる。
The analytes that can be measured in this manner include various immunoglobulins in serum, ceruloplasmin, transferrin, antitrypsin, β 2 -microglobulin, CRP, AFP,
CEA, HBs and the like can be mentioned.

以下、本発明を実施例にて説明する。Hereinafter, the present invention will be described with reference to examples.

実施例1 (1)標識化免疫担体の作製 酵素の修飾 パーオキシダーゼ(POD)〔ベーリンガ社製、グレードI
I〕5mgを、0.3M炭酸緩衝液(pH8.1)1mlに溶解し、1%
2,4−ジニトロフロロベンゼン(2,4−DFB)0.2mlを加え
て室温でスターラーによりゆっくり攪拌する。1時間
後、0.06M過ヨウ素酸ナトリウム1mlを加え室温で30分間
反応させる。これに、0.16Mエチレングリコール1mlを加
えて1時間攪拌する。この溶液を0.01M炭酸緩衝液(pH
9.5)で透析して、2,4−DFB化PODを得た。
Example 1 (1) Preparation of labeled immunocarriers Enzyme modification Peroxidase (POD) [Boehringa grade I
I] 5 mg was dissolved in 1 ml of 0.3 M carbonate buffer (pH 8.1) to give 1%
Add 0.2 ml of 2,4-dinitrofluorobenzene (2,4-DFB) and stir slowly with a stirrer at room temperature. After 1 hour, 1 ml of 0.06 M sodium periodate is added, and the mixture is reacted at room temperature for 30 minutes. To this, 1 ml of 0.16M ethylene glycol is added and stirred for 1 hour. Add this solution to 0.01M carbonate buffer (pH
It dialyzed by 9.5) and the 2,4-DFB-ized POD was obtained.

抗体 マウス膜水より得られた抗HBsモノクローナル抗体(腹
水を18%硫酸ナトリウムで分画し、ジエチルアミノエチ
ルセルロースを用いて精製した)を用いた。
Antibody An anti-HBs monoclonal antibody obtained from mouse membrane water (ascitic fluid was fractionated with 18% sodium sulfate and purified using diethylaminoethyl cellulose) was used.

担体粒子との結合 2,4−DFB化POD(2mg/ml)1mlと抗HBsモノクローナル抗
体(1mg/ml)1mlとラテックス粒子〔積水化学社製、0.0
95μm〕(0.2%v/v)1mlとを混合した。4℃で1昼夜
放置後、0.9%塩化ナトリウム水溶液を含むリン酸緩衝
液で遠心洗浄し、1%BSAを含むグリシンリン酸緩衝液
でブロッキングし標識化免疫担体を作製した。
Binding to carrier particles 2,4-DFB-modified POD (2 mg / ml) 1 ml, anti-HBs monoclonal antibody (1 mg / ml) 1 ml and latex particles [Sekisui Chemical Co., Ltd., 0.0
95 μm] (0.2% v / v) 1 ml. After leaving it at 4 ° C for one day and night, it was centrifugally washed with a phosphate buffer containing 0.9% sodium chloride aqueous solution and blocked with a glycine phosphate buffer containing 1% BSA to prepare a labeled immunocarrier.

(2)標識化免疫担体の確認 HBs抗原1μg/mlをマイクロタイタープレート上に50μ
lを加えて、4℃で1昼夜放置した。1%BSAを含むリ
ン酸緩衝液でブロッキングを行なった。上清を吸引し、
0.002%標識化免疫担体50μlを加えて37℃で1時間放
置後、0.05%ツウィーン20を含むリン酸緩衝液で洗浄し
た。これに基質以下POD測定試薬〔4−アミノアンチピ
リン0.5mM、フェノール10mM、過酸化水素0.3mM、トリス
−塩酸緩衝液(pH7.5)50mM〕を200μl加えて37℃15分
放置後の吸光度を測定した。その結果は、HBs抗原のプ
レートはA505=0.213、BSAのみコートしたプレートはA
505=0.008でありラテックス粒子上に抗体と酵素が結合
していることが確認できた。
(2) Confirmation of labeled immune carrier HBs antigen 1μg / ml 50μ on a microtiter plate
1 was added and the mixture was left at 4 ° C. for one day. Blocking was performed with a phosphate buffer containing 1% BSA. Aspirate the supernatant,
After adding 50 μl of 0.002% labeled immunocarrier, the mixture was allowed to stand at 37 ° C. for 1 hour and then washed with a phosphate buffer containing 0.05% Tween 20. Subsequent to this, add 200 μl of POD measuring reagent below the substrate [4-aminoantipyrine 0.5 mM, phenol 10 mM, hydrogen peroxide 0.3 mM, Tris-hydrochloric acid buffer (pH 7.5) 50 mM] and measure the absorbance after standing at 37 ° C for 15 minutes. did. The results showed that the HBs antigen plate had A 505 = 0.213, and the plate coated with BSA had A 505 = 0.213.
It was 505 = 0.008, and it was confirmed that the antibody and the enzyme were bound to the latex particles.

(3)HBs抗原の定量 マウス腹水より得られた抗HBsモノクローナル抗体5μg
/mlを、マイクロタイタープレート上に50μl加えて、
4℃で1昼夜放置後、吸引し、1%BSAを含むリン酸緩
衝液で37℃で2時間ブロッキングを行ない、リン酸緩衝
液で洗浄した。このプレートにHBs抗原、0、50、100、
200、500、1000ng/mlのサンプルを50μl加えて37℃で
1時間放置した。リン酸緩衝液で洗浄後、(1)で作製
した標識化免疫担体50μlを加えて37℃で1時間放置
後、0.05%ツウィーン20を含むリン酸緩衝液で洗浄し、
(2)で用いたPOD測定試薬を200μl加えて37℃に保存
後、30分後の吸光度を測定した。この結果は第1図に示
す通り、HBs抗原を定量することができた。
(3) Quantification of HBs antigen 5 μg of anti-HBs monoclonal antibody obtained from mouse ascites
Add 50 μl / ml to the microtiter plate,
After allowing to stand at 4 ° C for one day and night, it was sucked, blocked with a phosphate buffer containing 1% BSA at 37 ° C for 2 hours, and washed with a phosphate buffer. HBs antigen, 0, 50, 100,
50 μl of 200, 500 and 1000 ng / ml samples were added and left at 37 ° C. for 1 hour. After washing with a phosphate buffer, 50 μl of the labeled immune carrier prepared in (1) was added and left at 37 ° C. for 1 hour, and then washed with a phosphate buffer containing 0.05% Tween 20.
After adding 200 μl of the POD measurement reagent used in (2) and storing at 37 ° C., the absorbance after 30 minutes was measured. This result, as shown in FIG. 1, was able to quantify the HBs antigen.

実施例2 (1)標識化免疫担体の作製 酵素の修飾 パーオキシダーゼ(POD)〔ベーリンガ社製、グレード
I〕5mgを、0.3M炭酸緩衝液(pH8.1)1mlに溶解し、1
%2,4−ジニトロフロロベンゼン(2,4−DFB)0.2mlを加
えて室温でスターラーによりゆっくり1時間攪拌する。
その後、0.16Mエチレングリコール1mlを加えて1時間攪
拌した。このPODを0.01M炭酸緩衝液(pH9.5)に対して
透析して、2,4−DFB化過ヨウ素酸処理PODを得る。これ
を3.5mlと10mMオクチルアミン2mlを混合して25℃で3時
間攪拌後、リン酸緩衝液で透析しオクチルアミン化POD
を作製した。
Example 2 (1) Preparation of labeled immune carrier Enzyme modification Peroxidase (POD) [Boehringa, Grade I] 5 mg was dissolved in 0.3 M carbonate buffer (pH 8.1) 1 ml to prepare 1
% 0.24-dinitrofluorobenzene (2,4-DFB) (0.2 ml) was added, and the mixture was slowly stirred with a stirrer at room temperature for 1 hour.
Then, 0.16 M ethylene glycol 1 ml was added and stirred for 1 hour. The POD is dialyzed against 0.01 M carbonate buffer (pH 9.5) to obtain 2,4-DFB-modified periodate-treated POD. 3.5 ml of this mixture and 2 ml of 10 mM octylamine were mixed, stirred at 25 ° C for 3 hours, and then dialyzed against phosphate buffer to obtain octylamine-modified POD.
Was produced.

抗体 常法により作製した抗CRP抗血清(ヤギ)を、18%硫酸
ナトリウムにより分画し、0〜18%分画を、0.9%塩化
ナトリウム液で透析後、ジエチルアミノエチルセルロー
スイオン交換カラムによりイム/グロブリン分画を得
た。
Antibodies Anti-CRP antiserum (goat) prepared by a conventional method was fractionated with 18% sodium sulfate, the 0-18% fraction was dialyzed against 0.9% sodium chloride solution, and then immunized / globulin with a diethylaminoethylcellulose ion exchange column. Fraction was obtained.

担体粒子との結合 オクチルアミン化POD(0.5mg/ml)50μlと抗CRP抗体
(1mg/ml)500μlとラテックス粒子〔積水化学社製、
0.095μm〕(0.2%v/v)500μlを混合して37℃で2時
間放置後、0.9%塩化ナトリウム水溶液を含むリン酸緩
衝液で遠心洗浄し、1%BSAを含むグリシンリン酸緩衝
液でブロッキングし標識化免疫担体を作製した。
Binding to carrier particles 50 μl of octylamine POD (0.5 mg / ml), 500 μl of anti-CRP antibody (1 mg / ml) and latex particles [Sekisui Chemical Co., Ltd.,
0.095 μm] (0.2% v / v) 500 μl were mixed and left at 37 ° C. for 2 hours, then centrifugally washed with phosphate buffer containing 0.9% sodium chloride aqueous solution, and with glycine phosphate buffer containing 1% BSA. Blocking was performed to prepare a labeled immune carrier.

(2)標識化免疫担体の確認 CRP(5μg/ml)をマイクロタイタープレート上に50μ
l加えて4℃で1昼夜放置し、CRPを固定した後、1%B
SAを含むリン酸緩衝液でブロッキングを行なった。この
プレートに(1)で作製した標識化免疫担体50μlを加
えて反応を30分行なった。0.05%ツウィーン20を含むリ
ン酸緩衝液で洗浄し、実施例1−(2)で用いたPOD測
定試薬200μlを加えて37℃15分放置後の吸光度をで測
定した。その結果は、CRPをコートしたプレートはA505
=0.104、BSAのみコートしたプレートはA505=0.013で
ありラテックス粒子上に抗体と酵素が結合していること
を確認できた。
(2) Confirmation of labeled immune carrier 50 μC of CRP (5 μg / ml) on a microtiter plate
Add 1 l and leave at 4 ° C for 1 day to fix CRP, then add 1% B
Blocking was performed with a phosphate buffer containing SA. 50 μl of the labeled immunocarrier prepared in (1) was added to this plate and the reaction was carried out for 30 minutes. After washing with a phosphate buffer containing 0.05% Tween 20, 200 μl of the POD measuring reagent used in Example 1- (2) was added, and the absorbance after standing at 37 ° C. for 15 minutes was measured by. The results show that the CRP coated plate is A 505.
= 0.104, the plate coated only with BSA had A 505 = 0.013, and it could be confirmed that the antibody and enzyme were bound to the latex particles.

(3)CRPの定量 (1)で作製した抗CRP抗体5μg/mlを、マイクロタイ
タープレート上に50μl加えて、4℃で1昼夜放置後、
1%BSAを含むリン酸緩衝液でブロッキングを行なっ
た。このプレートにCRP、0、20、40、60、80、100ng/m
lのサンプルを50μl各ウェルに加えて37℃で1時間放
置後、リン酸緩衝液で洗浄後、(1)で作製した標識化
免疫担体0.003%を50μl加えて37℃で1時間放置し
た。0.05%ツウィーン20を含むリン酸緩衝液で洗浄し、
実施例1−(2)で用いたPOD測定試薬200μlを加えて
37℃で30分後の吸光度を測定した。この結果は第1図に
示す通り、CRPを定量することができた。
(3) Quantification of CRP 5 μg / ml of the anti-CRP antibody prepared in (1) was added to the microtiter plate in an amount of 50 μl and left at 4 ° C. for 1 day and then
Blocking was performed with a phosphate buffer containing 1% BSA. CRP, 0, 20, 40, 60, 80, 100ng / m on this plate
50 μl of each sample was added to each well and allowed to stand at 37 ° C. for 1 hour, followed by washing with a phosphate buffer, and then 50 μl of 0.003% of the labeled immune carrier prepared in (1) was added and left at 37 ° C. for 1 hour. Wash with phosphate buffer containing 0.05% Tween 20,
200 μl of the POD measurement reagent used in Example 1- (2) was added
The absorbance was measured after 30 minutes at 37 ° C. As a result, as shown in FIG. 1, CRP could be quantified.

【図面の簡単な説明】[Brief description of drawings]

第1図は実施例1、第2図は実施例2における血清試料
の希釈度と吸光度との関係を示す。
FIG. 1 shows the relationship between the dilution and the absorbance of the serum sample in Example 1 and FIG.

Claims (3)

【特許請求の範囲】[Claims] 【請求項1】水に不溶な微小粒子担体に、被検物に対応
する抗体と疎水的な置換基を導入した酵素とを共に結合
させることを特徴とする標識化免疫担体。
1. A labeled immunocarrier, wherein an antibody corresponding to an analyte and an enzyme having a hydrophobic substituent introduced therein are bound to a water-insoluble microparticle carrier.
【請求項2】疎水的な置換基を導入した酵素と被検物に
対応する抗体とを同時に微小粒子担体に結合させるか、
あるいは疎水的な置換基を導入した酵素と被検物に対応
する抗体のどちらか一方を先に他方を後に微小粒子担体
に結合させることを特徴とする標識化免疫担体の製造方
法。
2. An enzyme having a hydrophobic substituent introduced therein and an antibody corresponding to the analyte are simultaneously bound to the microparticle carrier,
Alternatively, a method for producing a labeled immune carrier, characterized in that one of an enzyme having a hydrophobic substituent introduced and an antibody corresponding to a test substance is bound first and the other is bound to a microparticle carrier later.
【請求項3】被検体中の微量成分を免疫学的に定量する
方法において、水に不溶な微小粒子担体に被検物に対応
する抗体と疎水的な置換基を導入した酵素とを共に結合
させた標識化免疫担体を用いることを特徴とする定量方
法。
3. A method for immunologically quantifying a trace component in a specimen, wherein an antibody corresponding to the specimen and an enzyme having a hydrophobic substituent introduced are bound together to a water-insoluble microparticle carrier. A quantification method comprising using the labeled immune carrier.
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