JPH0751080B2 - A simple method for detecting the human hepatitis C virus genome - Google Patents

A simple method for detecting the human hepatitis C virus genome

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JPH0751080B2
JPH0751080B2 JP3027537A JP2753791A JPH0751080B2 JP H0751080 B2 JPH0751080 B2 JP H0751080B2 JP 3027537 A JP3027537 A JP 3027537A JP 2753791 A JP2753791 A JP 2753791A JP H0751080 B2 JPH0751080 B2 JP H0751080B2
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hepatitis
human
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primer
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孝仁 城森
治雄 高橋
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Description

【発明の詳細な説明】Detailed Description of the Invention

【0001】[0001]

【産業上の利用分野】本発明はウイルスゲノムの検出法
に係り、殊に生体由来の試料からポリメラーゼ連鎖反応
用試料を簡便に調製し、ポリメラーゼ連鎖反応を利用し
て検出を行なう、ヒト C 型肝炎ウイルスゲノムの簡便
な検出法に係る。
The present invention relates to a method for detecting a viral genome
Related to the polymerase chain reaction, especially from biological samples.
Samples for use are simply prepared and polymerase chain reaction is used.
To detect Te, simple of human hepatitis C virus genome
According to Do detection method.

【0002】[0002]

【従来技術】近年、ウイルスや遺伝病の診断方法の1つ
として、ポリメラ−ゼ連鎖反応(Polymerase Chain Rea
ction :以下『PCR 』と略す)法が行われるようになっ
た。PCR 法はプライマ−の特異性に基づく標的DNA遺
伝子領域を100万倍以上に増幅する方法であり(ウイ
ルスゲノムがRNAの場合や mRNA の変異を検出する場
合には、 PCR の実施に先だって RNA から DNA に変
換しておくことが必要である)、ウイルスゲノムや目的
の mRNA が1コピ−あれば原理的には増幅できる高感度
検出法である。従って、 PCR 法は遺伝病における mRN
A の変異やウイルス自体の検出法として、また感染後、
抗体が産生される前の生体試料を検体として用い得る点
で有用性が認められている。
2. Description of the Related Art Recently, as one of diagnostic methods for viruses and genetic diseases, Polymerase Chain Rea
ction: hereinafter abbreviated as “PCR”) method has come to be used. The PCR method is a method that amplifies the target DNA gene region based on the specificity of the primer by a factor of 1,000,000 or more (when the viral genome is RNA or when a mutation in mRNA is detected, RNA is extracted from the RNA prior to PCR. It is necessary to convert it into DNA), and in principle, it is a high-sensitivity detection method that can amplify only one copy of viral genome or target mRNA. Therefore, the PCR method is
As a method of detecting A mutation and the virus itself, and after infection,
The usefulness is recognized in that a biological sample before the antibody is produced can be used as a specimen.

【0003】この PCR を確実に行うためには、生体試
料から目的の DNA もしくは RNA を抽出し、 RNA の
場合には逆転写酵素を用いて DNA に変換する工程を如
何に確実にしかもできるだけコンタミネーションなく簡
便におこなうかがポイントである。しかしながらmRNAや
ウイルスゲノムが RNA の場合、抽出が困難であること
に加えて、 PCR 法は高感度検出法であるが故に、わず
かなコンタミネ−ションによっても見かけ上『陽性』と
検出されることが問題となっている。このコンタミネ−
ションは、マイクロチュ−ブの蓋の開閉やピペット操作
等により生ずる mRNA やウイルスゲノム含有物の飛散
や、増幅された標的遺伝子が実験器具や測定者の手や衣
服に付着しキャリ−オ−バ−されることにより生ずる。
In order to perform this PCR reliably, the step of extracting the desired DNA or RNA from the biological sample and converting it into DNA using reverse transcriptase in the case of RNA should be performed reliably and as much as possible. The point is whether or not it can be done simply. However, when the mRNA or viral genome is RNA, it is difficult to extract, and because the PCR method is a highly sensitive detection method, it may be detected as “positive” even by slight contamination. It's a problem. This contamination
The scattering of mRNA and viral genome-containing substances generated by opening and closing the lid of the microtube, pipetting, etc., and the amplified target gene attached to the laboratory equipment and the hands and clothes of the measurer carry-over. -It is caused by

【0004】ウイルスには大きく分けて DNA をゲノム
とする DNA ウイルスと RNA をゲノムとする RNA ウ
イルスの存在が知られている。RNA ウイルスにおいては
成人T細胞白血病ウイルスやエイズウイルス等のレトロ
ウイルスをはじめとしてインフルエンザウイルスやC型
肝炎ウイルス等の診断が必要とされるウイルスが数多く
存在する。一方各種の遺伝病の中には発現される mRNA
の変異によって異常な蛋白質ができることによって発病
するものが知られている。
It is known that viruses are roughly classified into a DNA virus having a DNA genome and an RNA virus having an RNA genome. Among RNA viruses, there are many viruses that require diagnosis, such as retroviruses such as adult T-cell leukemia virus and AIDS virus, and influenza virus and hepatitis C virus. On the other hand, mRNA expressed in various genetic diseases
It is known that the disease is caused by the production of an abnormal protein due to the mutation.

【0005】例えば、Lesh-Nyhan (LN) 氏症候群はヒ
キサンチンホスホリボシルトランスフェラーゼ (HPRT)
の遺伝子座における変異に起因する遺伝病であるが、こ
の患者ではリンパ芽球細胞などに発現している HPRT の
mRNA に変異があるといわれている。RNA ウイルスの中
で殊に、ヒト非A非B型肝炎ウイルスは輸血に起因する
肝炎の 90 - 95% を占めており、治療法も未だ確立する
に至っておらず、その診断法、治療法、輸血用血液中に
場合により存在するヒト非A非B型肝炎ウイルスを無害
化する処理剤、予防ワクチン等の開発が強く要望されて
いる。近年に至り、ヒト非A非B型肝炎ウイルス自体の
研究が進み、感染には 1 本鎖 RNA が関与するのではな
いかとの報告がなされ (特開昭 62 - 24999 及び同63 -
91328 号)、又最近においては米国のカイロン社がヒト
非A非B型肝炎ウイルスを感染させたチンパンジーの肝
臓から cDNA をクローン化し、これをベクターλgt11
に組込んだ大腸菌で発現させたところ、その産物がヒト
非A非B型肝炎ウイルス感染患者血清と反応することを
見出した。最終的にはこれが約10,000 個のヌクレオチ
ドを有する 1 本鎖 RNA ウイルスであってフラビウイル
スに近いウイルスであることが判明し、前記のカイロン
社は、これをヒトC型肝炎ウイルス (Hepatitis C Viru
s : 以下『HCV』と略記する) と命名するとともに、そ
の内の約 7,000 個のヌクレオチドについての cDNA 塩
基配列を公表した(欧州特許公開318216)。
[0005] For example, Lesh-Nyhan (LN) Mr. syndrome Non-port xanthine phosphoribosyltransferase (HPRT)
It is a genetic disease caused by mutations in the gene locus
It is said that there is a mutation in the mRNA. Among RNA viruses, human non-A non-B hepatitis virus accounts for 90-95% of hepatitis caused by blood transfusion, and the treatment method has not yet been established. There is a strong demand for the development of a treatment agent, a prophylactic vaccine, etc. for detoxifying human non-A, non-B hepatitis virus, which is sometimes present in blood for transfusion. In recent years, human non-A non-B hepatitis virus itself has been studied, and it has been reported that single-stranded RNA may be involved in infection (Japanese Patent Laid-Open Nos. 62-24999 and 63-63).
No. 91328), also cloned liver or et cDNA Chimpanzee Chiron US were infected with human non-A, non-B hepatitis virus in recently, this vector λgt11
When expressed in Escherichia coli incorporated into E. coli, the product was found to react with the sera of patients infected with human non-A non-B hepatitis virus. Ultimately this is a single-stranded RNA viruses with about 10,000 nucleotides proven virus close to flavivirus, said Chiron, which human hepatitis C virus (Hepatitis C Viru
s: while designated hereinafter abbreviated as "HCV"), published a cDNA salt <br/> group sequence of have about 7,000 nucleotides Donitsu of which (European Patent Publication 318,216).

【0006】さらに、上記のカイロン社はこの一部の遺
伝子を用いて酵母で発現させたポリペプチドを抗原とし
て、 HCV感染患者の血清中の抗体を測定する方法を開発
した。この測定法において、急性期を過ぎた頃に抗HC
V抗体が出現するので、現状ではウイルス性慢性肝疾患
の鑑別や診断並びに輸血用血液のスクリ−ニングに適し
ているとされている。
[0006] Furthermore, the above Chiron company has developed a method for measuring the antibody in the serum of HCV-infected patients using the polypeptide expressed in yeast using this part of the gene as an antigen. In this measurement method, anti-HC
Since the V antibody appears, it is currently considered to be suitable for the differentiation and diagnosis of viral chronic liver diseases and the screening of blood for transfusion.

【0007】[0007]

【発明が解決しようとする課題及び発明の目的】慣用の
技術によれば、非常に簡便であり且つ信頼性においてす
ぐれている特に生体試料から RNA ウイルスゲノム及び
mRNA を抽出し DNA に変換し、そのまま PCR 反応が
可能な試料の調製法は未だ確立されていない。
[Problems to be Solved by the Invention and Object of the Invention] According to conventional techniques, RNA virus genome and
The method for preparing a sample that extracts mRNA, converts it into DNA, and allows the PCR reaction as it is has not been established.

【0008】従来、ウイルスゲノムや mRNA を抽出・分
離するためには、グアニジンイソチオシアネート、フェ
ノール、尿素、クロロフォルムなどの蛋白変性剤および
ドデシル硫酸ナトリウムなどの界面活性剤による処理が
行われているが、除蛋白のための遠心、ウイルスゲノム
や mRNA 含有溶液層を採取して別のチューブへ移し換え
たり、さらに溶液層から処理剤を除くためにアルコール
によりウイルスゲノムや mRNA を沈殿させ乾燥する工程
がある。
Conventionally, in order to extract and separate the viral genome and mRNA, treatment with a protein denaturant such as guanidine isothiocyanate, phenol, urea and chloroform and a surfactant such as sodium dodecyl sulfate is carried out. centrifugation for deproteinization, or recombinant Shi moved to another tube and collect viral genome or mRNA-containing solution layer, drying causes further precipitation of the viral genome and mRNA by alcohol to remove the treating agent from the solution layer is there.

【0009】これらの操作は手間が要するので多検体の
処理をするには不適当である上に、コンタミネ−ション
の発生の確率を高くする。しかも、ウイルスゲノムや m
RNA が微量である場合のアルコ−ル沈殿による回収率は
低く(50% 以下)、定量性の得られないことに加え、沈
澱を再溶解してから逆転写酵素により RNA をDNA に
変換する必要があるところに大きな課題がある。
Since these operations require time and labor, they are not suitable for processing a large number of samples, and also increase the probability of occurrence of contamination. Moreover, the viral genome and m
When the amount of RNA is very small, the recovery rate by alcohol precipitation is low (50% or less), and in addition to the inability to obtain quantitative results, it is necessary to redissolve the precipitate and then convert RNA into DNA by reverse transcriptase. There is a big problem where there is.

【0010】本発明の目的は生体試料中にヒト C 型肝
炎ウイルス (HCV) が存在するならば、これを簡便なる
方法で短時間の内に且つコンタミネーションを生じるこ
となしに当該 RNA ウイルスゲノムを抽出し、この RNA
を DNA に変換して PCR 用試料を調製し、この試料を用
いて PCR を実施する、ヒト C 型肝炎ウイルスゲノムの
簡便な検出法を提供することにある。
The object of the present invention is to obtain human C-type liver in a biological sample.
Simplify this if you have a flu virus (HCV)
The method can cause contamination in a short time.
With or without extracting the RNA virus genome,
Is converted into DNA to prepare a PCR sample, and this sample is used.
PCR of the human hepatitis C virus genome is performed.
It is to provide a simple detection method .

【0011】本発明者等は生体試料から HCV RNA を簡
便に抽出し、これを DNA に変換し、直ちに PCR を行う
ことのできる方法について先ず検討した処、非イオン性
界面活性剤の存在下に蛋白分解酵素により生体試料を処
し、次いで逆転写酵素により処理すれば PCR 用試料
となし得ることを見い出して、本発明目的の前段階を達
成するに至ったそこで、更に PCR 用のプライマーに
ついて鋭意検討を行った結果、HCV の検出に好適と考え
られるプライマーセットが見い出された。
The present inventors have simplified HCV RNA from biological samples.
Extract in stool, convert this to DNA, and immediately perform PCR
We first examined the possible methods, and treated biological samples with proteolytic enzymes in the presence of nonionic surfactants , and then with reverse transcriptase, to obtain PCR samples.
And reach the pre-stage of the object of the present invention.
It came to be achieved . Therefore, in addition to PCR primers
As a result of diligent studies, it was considered suitable for detection of HCV
A primer set that can be found was found.

【0012】この発明法による抽出法において、上記の
生体試料としては血清、血漿および摘出された組織であ
ることができ、非イオン性界面活性剤としてはノニデッ
ト p-40 等を用いることができ、また蛋白分解酵素とし
てはプロテイナーゼK等を用いることができる。
In the extraction method according to the present invention, the biological sample may be serum, plasma and excised tissue, and nonidet p-40 or the like may be used as the nonionic surfactant. Further, proteinase K or the like can be used as the proteolytic enzyme.

【0013】従って、本発明によれば、既述の目的は非
イオン性界面活性剤の存在下に蛋白分解酵素により生体
試料を処理し、得られた抽出液中に存在する可能性のあ
るヒト C 型肝炎ウイルス RNA を DNA に変換し、 5' - GAGTGCGCCTCACACCTTCCTT
ACATCG - 3' なる塩基配列を有するプライマーと、 5' - AAGCCTGCTAGATACTGTATCC
CGC - 3' なる塩基配列を有するプライマー及び Taq ポリメラー
ゼを含有する反応液を添加して、上記の DNA に関して
第 1 回目のポリメラーゼ連鎖反応 (PCR) を行い、次い
で 5' - CTTCCTTACATCGAACAAGGA -
3' なる塩基配列を有するプライマーと、 5' - TTCCACATGTGCTTCGCCCAG -
3' なる塩基配列を有するプライマー及び Taq ポリメラー
ゼを含有する反応液を添加して第 2 回目のポリメラー
ゼ連鎖反応 (PCR) を行い、次いで電気泳動により検出
すべきウイルスゲノムの産物に相当する 176bp のバン
ドが検出されるか否かを調べることを特徴とする、ヒト
C 型肝炎ウイルスゲノムの簡便な検出法により達成さ
れる。
Therefore, according to the present invention, the above-mentioned object is not
Processing the biological sample by white degrading enzyme in the presence of an ionic surfactant, the possible presence in the extract obtained Oh
Human hepatitis C virus RNA is converted to DNA, and 5'-GAGTGCCGCTCACACCTTTCCTT
A primer having a base sequence of ACATCG-3 'and 5'-AAGCCTGCTAGATACTGTATCC
A reaction solution containing a primer having a base sequence of CGC-3 'and Taq polymerase was added, the first polymerase chain reaction (PCR) was performed on the above DNA, and then 5'-CTTCCTTACATCGAACAAGGA-
A primer having a base sequence of 3 ', 5'-TTCCACATGTGCTTCGCCCAG-
3 'consists of the reaction mixture containing the primers and Taq polymerase having a base sequence by adding a second round of polymerase chain reaction performed (PCR), then it corresponds to the product of the viral genome to be detected more electrophoresis dynamic van <br/> de of 176bp are you characterized by checking whether the detected human
It is achieved by a simple detection method of the hepatitis C virus genome.

【0014】本発明者らは反応条件等を鋭意検討した
処、生体試料として血清もしくは血漿を用いる場合には
当該試料の量を 1-20 μl 以内に 、また生体組織を用
いる場合には 10 mg 以内にとどめれば 、変性蛋白の
煩雑な除去処理やアルコ−ル沈殿操作を必要とせず、し
かもチュ−ブの交換が不要であり、1つの反応チュ−ブ
内で、ウイルスゲノムの抽出、 RNA から DNA への逆
転写反応及びPCR 反応を行うことができることが判明
した。
The inventors of the present invention have diligently studied the reaction conditions, etc., and found that when serum or plasma is used as a biological sample, the amount of the sample is within 1-20 μl, and when biological tissue is used, it is 10 mg. If it is kept within the range, neither complicated removal treatment of denatured protein nor alcohol precipitation operation is required, and tube exchange is not required. Extraction of viral genome and RNA in one reaction tube are not required. It was found that the reverse transcription reaction to the DNA and the PCR reaction can be performed.

【0015】尚、本発明による検出法は、グアニジンイ
ソチオシアネートを用いる従来のコムクジンスキーらの
方法 ("Analytical Biochemistry", 162, 156 - 159, 1
987)で抽出し、PCR 法を利用してウイルスゲノム産物を
検出した場合に比較して、検出感度の点においても約 1
0 倍優れていることもわかり、生体試料中に数コピーの
RNA があれば充分検出可能なことが判明した。
The detection method according to the present invention is carried out by the conventional method of Kumzdinsky et al. Using guanidine isothiocyanate ("A nalytical Biochemistry ", 162 , 156-159, 1).
987), and the detection sensitivity was about 1% compared to the case where the viral genome product was detected using the PCR method.
I understand also that you are 0 times better, of several peak in a biological sample
It was found that RNA was sufficient to detect it.

【0016】[0016]

【実施例等】次に実施例、試験例及び比較試験例により
本発明を更に詳細に且つ具体的に説明する。
EXAMPLE etc.] following the real施例further and specifically described in detail the present invention by the test examples and comparative test examples.

【0017】実施例(a) ヒ ト生体試料からのウイルスゲノムの抽出 0.5ml 容量のマイクロチューブに、生体由来の試料とし
て HCV 患者の血 漿10μl を注入し、これに 1μl の溶
解液 [500mM トリスヒドロキシアミノメタン-塩酸緩衝
液 (pH 8.0)、250mM 塩化カリウム、30mM 塩化マグネシ
ウム、0.5% ノニデット p-40、及び 10mg/ml プロティ
ナーゼ K を含有] を添加して混和する。次いで 35℃
において 1 時間、続いて 94℃ で 10 分間インキュベ
ートすることにより RNA ウイルスゲノム抽出液を得
た。
[0017] microtube extraction 0.5ml capacity of the viral genome from Example (a) human biological sample, a sample derived from a living body
Blood whey 10μl of HCV patients injected Te, to which 1μl of solution [500 mM tris (hydroxymethyl) aminomethane - HCl buffer (pH 8.0), 250 mM potassium chloride, 30 mM magnesium chloride, 0.5% Nonidet p-40, and 10mg / Add ml Proteinase K] and mix. Then 35 ° C
1 hour to obtain a subsequently incubated by Ri RNA U Irusugenomu extract to 10 minutes at 94 ° C. in.

【0018】生体試料である血漿が 10 μl 以下の場合
は、ノニデット p-40 とプロテイネ−スKを含有してい
ない点を除き上記溶解液と同様の溶液を10倍希釈した溶
液を添加することにより容量が 10μl となす。尚、組
織を試料とする場合には、組織 10 mgに対してノニデッ
ト p-40 とプロテイネ−スKを含有していないことを除
き上記溶解と同様の溶液を10倍に希釈した溶液を10μl
添加し、以下同様にインキュベートする。
When the volume of plasma as a biological sample is 10 μl or less, a solution obtained by diluting 10 times the same solution as the above-mentioned solution except that it does not contain nonidet p-40 and proteinase K is added. Adjust the volume to 10 μl. When a tissue is used as a sample, 10 μl of a 10-fold diluted solution of the same solution as above except that it does not contain nonidet p-40 and proteinase K per 10 mg of tissue.
Add and incubate as well.

【0019】(b) RNA から DNA への変換及び PCR によ
る DNA の増幅この抽 出液 11μl に 20pmol のプライマー (後述す
る)、14 単位の逆転写酵素を含有する反応液 [50mM ト
リスヒドロキシアミノメタン-塩酸緩衝液 (pH8.0)、25m
M 塩化カリウム及び 3mM 塩化マグネシウム、各 250μM
の 4 種のデオキシリボヌクレオチド (dATP、dGTP、dC
TP 及び dTTP)、2.5mM ジチオスレイトール及び 40 単
位の RNasin を含有] 14μl を添加し、40℃ において
1 時間インキュベーションすることにより RNA と相補
的な DNA を合成した。
[0019] (b) amplifying the extracted exudates 11μl primer (described later) of 20pmol to the DNA by transformation and PCR to DNA from RNA, the reaction solution containing reverse transcriptase 14 units [50 mM tris (hydroxymethyl) aminomethane - Hydrochloric acid buffer (pH8.0), 25m
M potassium chloride and 3 mM magnesium chloride, 250 μM each
Four deoxyribonucleotides (dATP, dGTP, dC
TP and dTTP), containing 2.5 mM dithiothreitol and 40 units of RNasin] 14 μl at 40 ° C.
Complementary and by Ri RNA to be incubated for 1 hour
The specific D NA was synthesized.

【0020】この RNA と相補 DNA とを含有するこの
混合溶液に、5 単位の Taqポリメラ−ゼを含む反応液
[50 mM トリスヒドロキシアミノメタン−塩酸緩衝液(pH
8.0), 50 mM 塩化カリウム,1.5 mM 塩化マグネシウ
ム,0.001% ゼラチン] 75μl を加え、94℃で30秒、55℃
で1 分、72℃で1 分を1サイクルとして、20サイクルか
らなる1回目のPCRを行った。さらに、1回目のPC
R反応液10μl を別の0.5 mlマイクロチュ−ブに移し、
20 pmol のプライマ−(後記参照)及び 5単位Taq ポリ
メラ−ゼを含む反応液[ 10 mM トリスヒドロキシアミノ
メタン−塩酸緩衝液(pH 8.0), 50 mM 塩化カリウム,1.5
mM塩化マグネシウム, 各200 μM の4種デオキシリボ
ヌクレオチド(dATP,dGTP,dCTP,dTTP)] 90 μl を加え、
1回目の PCR と同様の系からなる30サイクルの第2回
目の PCR を行った。次いで、電気泳動後エチジウムブ
ロマイド染色した処、 HCV 産物に相当する所定塩基対
の長さのバンドが存在することを確認した。 尚、 HCV
の検出の際しては、図1に示され且つ本発明者らがク
ロ−ン化した HCV の cDNA 配列(特願平1-344876)の
一部をプライマ−としてに用いた。
A reaction solution containing 5 units of Taq polymerase in this mixed solution containing this RNA and complementary DNA
[50 mM Trishydroxyaminomethane-hydrochloric acid buffer (pH
8.0), 50 mM Potassium Chloride, 1.5 mM Magnesium Chloride, 0.001% Gelatin] Add 75 μl, 94 ℃ for 30 seconds, 55 ℃
The first PCR consisting of 20 cycles was performed with 1 minute at 72 ° C and 1 minute at 72 ° C. Furthermore, the first PC
Transfer 10 μl of R reaction solution to another 0.5 ml microtube,
Reaction solution containing 20 pmol of primer (see below) and 5 units of Taq polymerase [10 mM Trishydroxyaminomethane-hydrochloric acid buffer (pH 8.0), 50 mM potassium chloride, 1.5
mM magnesium chloride, 200 μM each of 4 kinds of deoxyribonucleotides (dATP, dGTP, dCTP, dTTP)] 90 μl was added,
The second PCR of 30 cycles consisting of the same system as the first PCR was performed. Then, after electrophoresis, it was stained with ethidium bromide, and it was confirmed that a band having a predetermined base pair length corresponding to the HCV product was present. HCV
In the detection of the above, a part of the cDNA sequence of HCV shown in FIG. 1 and cloned by the present inventors (Japanese Patent Application No. 1-344876) was used as a primer.

【0021】即ち、第1回目の PCR には、配列表の
列番号1における 22 番目から 49番目までの配列であ
5' - GAGTGCGCCTCACACCTTCCTT
ACATCG - 3'の塩基配列を有するプライマーと 、203 番目から 227
番目までの配列と相補鎖の配列である 5' - AAGCCTGCTAGATACTGTATCC
CGC - 3' なる塩基配列を有するプライマーとが用いられ、また第
2回目の PCR には、配列表の配列番号1における 37
番目から 57 番目までの配列であ 5' - CTTCCTTACATCGAACAAGGA -
3'の塩 基配列を有するプライマーと、174 番目から 194
目までの配列と相補鎖の配列である 5' - TTCCACATGTGCTTCGCCCAG -
3' なる塩基配列を有するプライマーとが用いられた。尚、
HCV ゲノム産物に相当する塩基対の長さは 176bp であ
る。
That is, in the first PCR, the 22nd to 49th sequences in SEQ ID NO: 1 of the sequence listing were selected.
That 5 '- GAGTGCGCCTCACACCTTCCTT
ACATCG-3 ' with a primer having a nucleotide sequence of 203 to 227
5'-AAGCCTGCTAGATACTGTATCC which is the sequence up to and including the sequence up to
CGC - 3 'becomes a primer having the nucleotide sequence are used, also in the second round of PCR, 37 in SEQ ID NO: 1
CTTCCTTACATCGAACAAGGA - 5 'Ru array der from up to 57-th-th -
A primer having a base sequence of the 3 ', from 1 74th 194
Is the sequence of SEQ complementary strand to turn first 5 '- TTCCACATGTGCTTCGCCCAG -
A primer having a 3 'becomes nucleotide sequence was used. still,
The base pair length corresponding to the HCV genomic product is 176 bp.

【0022】試験例 ウイルスゲノムの抽出に必要なプロティナーゼ K の濃
度範囲の設定 ウイルスゲノムの抽出に必要なプロティナーゼ K の濃
度範囲を求めるため、実施例において言及の溶解液 1μ
l 中のプロティナーゼ K の濃度を変化させ且つ同一の
HCV 患者の血漿を試料として PCR によりウイルスゲノ
ム産物を検出した。結果は図 1 に示される通りであっ
た。
Test Example Setting of concentration range of proteinase K required for extraction of viral genome To determine the concentration range of proteinase K required for extraction of viral genome, 1 μ of the lysate mentioned in the examples was determined.
and the same varying concentrations of proteinase K in l
Virus genomic products were detected by PCR using plasma of HCV patients as a sample . The results are shown in Figure 1.

【0023】プロティナーゼ K の濃度を 0 - 10mg/ml
に設定してウイルスゲノム産物の検出を行った処、図 1
における電気泳動パターンのレーン番号 5 - 11 で示
されるように、2.5 - 10mg/ml の範囲内で目的とする H
CV ゲノム産物のバンドが検出され、従ってプロティナ
ーゼ K の濃度は 5mg/ml 以上であれば充分であること
が判明した。 比較試験例 本発明法と従来法での検出感度の比較 本発明法において採用されているウイルスゲノム抽出法
と、従来のグアニジンイソチオシアネートを用いるコム
クジンスキー等の抽出法 ["AnalyticalBiochemistry",
Vol. 162, page 156 - 159 (1987)] を用いた場合にお
ける検出感度を比較するために HCV 患者由来の血漿を
試料とし、PCR によりウイルスゲノム産物の検出を行っ
た。
[0023] The concentration of proteinase Inaze K 0 - 10mg / m l
Fig. 1 shows the results of detection of viral genome products by setting to 1
Gas collector in migration patterns of lanes No. 5 - as indicated by 11, 2.5 - H of interest in the range of 10mg / ml
A band of the CV genomic product was detected and thus the protein
It was found that a concentration of the casease K of 5 mg / ml or more is sufficient . Comparative Test Example Comparison of detection sensitivity between the method of the present invention and the conventional method The viral genome extraction method adopted in the method of the present invention
When the extraction method such as com Sophora root skis using conventional guanylyl Jin isothiocyanate [ "Analytical Biochemistry",
Vol 162, page 156 -. 159 (1987)] the plasma from HCV patients as a sample to compare the detection sensitivity in the case of using, to thereby detect the viral genome product by P CR.

【0024】図 2 は上記の両方法で HCV ゲノムを抽出
し、PCR により検出を行った結果を示すものである。
発明方法の場合には血漿 10μl の使用で目的とする HC
V ゲノム産物が検出されたが、コムジンスキー等の方法
でゲノム抽出を行なう場合には血漿 10μl ではゲノム
産物検出が不可能であり、検出には 100μl 程度又はそ
れ以上の血漿が必要であるので、この従来法と比較する
場合に本発明方法は検出感度において約 10 倍優れてい
ることが判明した
[0024] Figure 2 extracts the HCV genome in both methods described above, it is to be shown the results of detection by the PC R. Book
In the case of the method of the invention, the desired HC was obtained by using 10 μl of plasma.
V Genome product was detected.
If 10 μl plasma is used for genome extraction in
It is impossible to product detection, since the detection is required plasma on 100μl about or more than, compared to the conventional method
The present invention method has been found to be superior about ten times in the sensitivity detect when.

【0025】図 3 及び 4 は HCV 患者を含む 12 例の
血漿を使用し、既述の両方法でゲノム抽出を行い PCR
によりゲノム産物を検出した結果を示すものである。
3 は本発明方法に使用されている抽出法を血漿 10μl
に適用した場合であり、一方図 4 はコムジンスキー等
の抽出法を 100μl の血漿に適用した場合である (図3
及び 4 において、共通のレーン番号は同一の HCV 患者
又は健常人由来の血漿を試 料として使用した場合の結
果を示している)
Figures 3 and 4 show 12 cases including HCV patients.
Using plasma to perform genome extraction by both methods described above and PCR
It is also to indicate the result of detection of genomic products by. Figure
3 the extraction method used in the present invention a method blood whey 10 [mu] l
A case applied to, while Figure 4 is co Mujinsuki over such
When the extraction method described above was applied to 100 μl of plasma (Fig. 3
In 4 and 4, the common lane number is the same HCV patient.
Or, the result of using plasma derived from a healthy person as a sample
The result is shown) .

【0026】これらの結果から、両方法共に電気泳動の
パターンのレーン番号1,3,4,5,7で使用した同じ患者血
漿で目的とする PCR 産物のバンドが検出され、本発明
法でウイルスゲノムを抽出しても、従来法と比して同等
以上の信頼性をもった検出が可能であることが明かとな
った。
From these results, in both methods, the band of the desired PCR product was detected in the same patient plasma used in lane numbers 1, 3, 4, 5, and 7 of the electrophoretic pattern, and the virus was detected by the method of the present invention. It has been revealed that even if the genome is extracted, it is possible to detect with a reliability equal to or higher than that of the conventional method.

【0027】[0027]

【配列表】配列番号:1 配列の長さ:240 base pairs 配列の型:核酸 鎖の数:single トポロジー:linear 配列の種類:genomic DNA 起源 生物名:human PROPERTIES:human hepatitis C virus CAGGAGTTTG ATGAGATGGA GGAGTGCGCC 30 TCACACCTTC CTTACATCGA ACAAGGAATG 60 CAGCTCGCCG AGCAATTCAA GCAGAAGGCG 90 CTCGGGCTGC TGCAAACAGC CTCCAAGCAA 120 GCGGAGGCTG CTGCTCCCGT GGTAGAGTCC 150 AAGTGGCAAG CCCTTGAGGC CTTCTGGGCG 180 AAGCACATGT GGAACTTCAT CAGCGGGATA 210 CAGTATCTAG CAGGCTTGTC CACCCTGCCT 240 配列番号:2 配列の長さ:240 base pairs 配列の型:核酸 鎖の数:single トポロジー:linear 配列の種類:genomic DNA 起源 生物名:human PROPERTIES:human hepatitis C virus CGGGAGTTCG ATGAGATGGA GGAGTGCGCT 30 TCACACCTCC CTTACATCGA ACAGGGAATG 60 CAGCTCGCCG AGCAATTCAA GCAGAAGGCG 90 CTCGGGCTGT TGCAGACAGC CACCAAGCAA 120 GCGGAGGCTG CAGCTCCCGT GGTCGAGTCT 150 AAATGGCGGG CTCTTGAGAC CTTCTGGGCG 180 AAGCACATGT GGAATTTCAT CAGCGGGATA 210 CAGTACCTAG CAGGCTTGTC CACTCTGCCT 240 配列番号:3 配列の長さ:240 base pairs 配列の型:核酸 鎖の数:single トポロジー:linear 配列の種類:genomic DNA 起源 生物名:human PROPERTIES:human hepatitis C virusCA
AGAGTTCG ACGAAATGGA AGAGTGCGCC 30 TCACACCTCC CTTACATCGA ACAGGGAATG 60 CAGCTCGCCG AGCAATTCAA GCAGAAAGCG 90 CTCGGTTTGC TGCAGACAGC TACCAAGCAA 120 GCGGAGGCTG CAGCCCCCGT GGTGGAGTCC 150 AAGTGGCGGG CCCTTGAGAC TTTCTGGGCG 180 AAGCACATGT GGAATTTCAT CAGCGGGATA 210 CAATACTTAG CAGGCTTATC CACTTTGCCT 240 配列番号:4 配列の長さ:240 base pairs 配列の型:核酸 鎖の数:single トポロジー:linear 配列の種類:genomic DNA 起源 生物名:human PROPERTIES:human hepatitis C virus CCGGCGTTCG ATGAAATGGA AGAGTGTGCC 30 TCACACCTCC CTTACATCGA ACAAGGAATG 60 CGGCTCGCCG AACAATTCAA GCAGAAGGCG 90 CTCGGGTTGC TGCAAACGGC CACCAAGCAA 120 GCGGAGGCTG CCGCTCCCGT GGTGGAGTCC 150 AAGTGGCGTA CCCTTGAGGC CTTCTGGGCG 180 AAGCACATGT GGAATTTCAT CAGCGGGATA 210 CAATACCTAG CAGGCTTGTC CACTCTGCCT 240 配列番号:5 配列の長さ:240 base pairs 配列の型:核酸 鎖の数:single トポロジー:linear 配列の種類:genomic DNA 起源 生物名:human PROPERTIES:human hepatitis C virus CAGGAGTTTG ATGAGATGGA GGAGTGCGCC 30 TCACACCTTC CTTACATCGA ACAAGGAATG 60 CAGCTCGCCG AGCAATTCAA GCAGAAGGCG 90 CTCGGGCTGC TGCAAACGGC CTCCAAGCAA 120 GCGGAGGCTG CTGCTCCCGT GGTAGAGTCC 150 AAGTGGCAAG CCCTTGAGGC CTTCTGGGCG 180 AAGCACATGT GGAATCTCAT CAGCGGGATA 210 CAGTATCTAG CAGGCTTGTC CACCCTGCCT 240
[Sequence Listing] SEQ ID NO: 1 Sequence length: 240 base pairs Sequence type: Nucleic acid Number of strands: single Topology: linear Sequence type: genomic DNA Origin organism name: human PROPERIES: human hepatitis C virus CAGAGATGAGTGATGAGGAGTGTTG TCACACTTCCTCTACATCGA ACAAGGAATG 60 CAGCTCGCCG AGCAATTCAA GCAGAAGCGCG 90 CTCGGGCTGCC TGCAGTAGCGAGCGAGCGAGCGAGCGAGCGAGCGAGCGAGCGTGCCCCGTAGCTAGCGAGCGAGCGAGCGAGCGAGCGAGCGAGCGAGCGAGCGAGCGAGCGAGCGAGCGAGCGAGCGAGCGAGCGAGCGAGCGAGCGAGCGAGCGAGCGAGCGAGCGAGCGAGCGAGCGAGCGAGCGAGCGAGCGAGCGAGCGAGCGAGCGAGCGAGCGAGCGAGCGAGCGAGCGAGCGAGCGAGCTAGCTAGCTAGCTACT T CACGGGTAGA 210 CAGTATCTAG CAGGCTTGTC CACCCTGCCT 240 SEQ ID NO: 2 Sequence length: 240 base pairs Sequence type: Nucleic acid Number of strands: single Topology: linear Sequence of origin: GatCruGitC ROGitCruGitRuGitRuGuRuGitRuGuRuGuRuGuRuGuRuGuRuIuRuGuRuGuRuTaiGuRuGuRuIuRuRuIuRuIuRuIuRuIuRuIuRuIuRuIuRuIuRuIuRuhuman. ATGAGATGGA GGAGTGCGCT 30 TCACACCTCC CTTACATCGA ACAGGGGAATG 60 CAGCTCCGCCG AGCAATTCAA GCAGAAGGGCG 90 CTCGGGCTGT TGCAGAGCAGCGAGCGCGCGCGCGCGCGCGCGCGCGCGCT TCTTGAGAC CTTCTGGGCG 180 AAGCACATGT GGAATTTCAT CAGCGGGATA 210 CAGTACCTAG CAGGCTTGTC CACTCTGCCT 240 SEQ ID NO: 3 sequence length of the: 240 base type pairs sequence: the number of nucleic acid strands: single Topology: linear sequence type: genomic DNA source organism name: human PROPERTIES: human hepatitis C virus CA
AGAGTTCG ACGAAATGGA AGAGTGCGCC 30 TCACACCTCC CTTACATCGA ACAGGGAATG 60 CAGCTCGCCG AGCAATTCAA GCAGAAAGCG 90 CTCGGTTTGC TGCAGACAGC TACCAAGCAA 120 GCGGAGGCTG CAGCCCCCGT GGTGGAGTCC 150 AAGTGGCGGG CCCTTGAGAC TTTCTGGGCG 180 AAGCACATGT GGAATTTCAT CAGCGGGATA 210 CAATACTTAG CAGGCTTATC CACTTTGCCT 240 SEQ ID NO: 4 sequence Length: 240 Type of base pairs SEQ: nucleic acid strands Number of: single Topology: linear Sequence type: genomic DNA Origin organism name human PROPERTIES: human hepatitis C virus CCGGCGTTCG ATGAAATGGA AGAGTGTGCC 30 TCACACCTCC CTTACATCGA ACAAGGAATG 60 CGGCTCGCCG AACAATTCAA GCAGAAGGCG 90 CTCGGGTTGC TGCAAACGGC CACCAAGCAA 120 GCGGAGGCTG CCGCTCCCGT GGTGGAGTCC 150 AAGTGGCGTA CCCTTGAGGC CTTCTGGGCG 180 AAGCACATGT GGAATTTCAT CAGCGGGATA 210 CAATACCTAG CAGGCTTGTC CACTCTGCCT 240 SEQ ID NO: 5 SEQ length of: 240 base Pairs Sequence type: Nucleic acid Number of strands: ingle Topology: linear sequence type: genomic DNA source organism name: human PROPERTIES: human hepatitis C virus CAGGAGTTTG ATGAGATGGA GGAGTGCGCC 30 TCACACCTTC CTTACATCGA ACAAGGAATG 60 CAGCTCGCCG AGCAATTCAA GCAGAAGGCG 90 CTCGGGCTGC TGCAAACGGC CTCCAAGCAA 120 GCGGAGGCTG CTGCTCCCGT GGTAGAGTCC 150 AAGTGGCAAG CCCTTGAGGC CTTCTGGGCG 180 AAGCACATGT GGAATCTCAT CAGCGGGATA 210 CAGTATCTAG CAGGCTTGTC CACCCTGC T 240

【0028】[0028]

【発明の効果】本発明の mRNA 及びウイルスゲノム抽出
法によれば、変性蛋白質の除去処理やアルコールによる
沈澱処理操作を必要としない。従って、生体由来の試料
からの特定の mRNA 及びウイルスゲノムの検出に際して
は、当該試料と蛋白分解酵素及び非イオン性界面活性剤
との反応に始まり、必要に応じて行われる RNAから DNA
への逆転写反応及びポリメラーゼ連鎖反応 (PCR) 処
理に至るまでの過程を連続して唯1 本の反応チューブ
で行うことができるので、操作の簡素化がもたらされる
と共に、コンタミネーションの確立を大幅に低下させる
ことができる。
EFFECTS OF THE INVENTION According to the method for extracting mRNA and virus genome of the present invention, the removal treatment of denatured proteins and the precipitation treatment operation with alcohol are not required. Therefore, when detecting specific mRNAs and viral genomes from biological samples, the reaction of the samples with proteolytic enzymes and nonionic surfactants begins and RNA to DNA is performed as necessary.
The process from reverse transcription to polymerase chain reaction (PCR) can be performed continuously in a single reaction tube, which simplifies the operation and greatly establishes contamination. Can be reduced to

【0029】本発明の場合に mRNA 及びウイルスゲノム
の抽出所要時間は 2 時間以内に短縮され、これは従来
法の半分以下の時間であり、またヒトC型肝炎ウイルス
(HCV) を PCR 法を利用してHCV ゲノム産物として検
出する場合に、従来法によれば 2 日間を要していた
が、本発明方法を利用すれば 8 時間以内に行うことが
でき、更に本発明は簡便であるために検出の自動化乃至
半自動化が可能である。
In the case of the present invention, the time required for extraction of mRNA and viral genome was shortened to within 2 hours, which is less than half the time required by the conventional method, and the human hepatitis C virus
In the case of detecting (HCV) as an HCV genome product using the PCR method, it took 2 days according to the conventional method, but it can be performed within 8 hours by using the method of the present invention. Since the present invention is simple, detection can be automated or semi-automated.

【図面の簡単な説明】[Brief description of drawings]

【図 1】図1はウイルスゲノムの抽出に必要とするプ
ロテイネ−スKの濃度を調べるため、HCV 肝炎患者血漿
を用い、実施例 2 に記載の要領でウイルスゲノム産物
の検出を行った結果を示すものであり、電気泳動のパタ
ーンを模写したものである。
FIG. 1 shows the results of detection of viral genome products using the plasma of HCV hepatitis patients in the same manner as described in Example 2 in order to examine the concentration of proteinase K required for extraction of viral genomes. It is shown and is a copy of the electrophoretic pattern.

【図 2】図2は本発明の方法と従来法とによりウイル
スゲノムを抽出し、 PCR によりウイルスゲノム産物の
検出を行い検出感度を比較した結果を示す電気泳動パタ
ーンを模写したものである。
FIG. 2 is a copy of an electrophoretic pattern showing the results of extracting the viral genome by the method of the present invention and the conventional method, detecting the viral genome product by PCR, and comparing the detection sensitivities.

【図 3】[Figure 3]

【図 4】図3及び図4は本発明による方法と、グアニ
ジンイソチオシアネ−トを用いたコムクジンスキ−らの
方法[AnalyticalBiochemistry 162,156-159,(1987) ]
を HCV 患者血漿に、但し血漿の使用量は本発明の場合
が 1/10 であるが、適用してウイルスゲノムの抽出を行
い、次いで実施例2に記載の要領でウイルスゲノムの検
出を行った結果を示すものであり、それぞれの電気泳動
パターンを模写したものである。
FIG. 3 and FIG. 4 show the method according to the present invention and the method of Komkudinsky et al. Using guanidine isothiocyanate [Analytical Biochemistry 162,156-159, (1987)].
Was applied to the plasma of HCV patients, but the amount of plasma used was 1/10 in the case of the present invention, and the viral genome was extracted by applying it, and then the viral genome was detected in the same manner as described in Example 2. The results are shown, and the respective electrophoretic patterns are copied.

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.6 識別記号 庁内整理番号 FI 技術表示箇所 C12Q 1/68 ZNA A 9453−4B (72)発明者 城森 孝仁 愛知県名古屋市東区東外堀町35番地 株式 会社 三和化学研究所 内 (72)発明者 高橋 治雄 愛知県名古屋市東区東外堀町35番地 株式 会社 三和化学研究所 内 (72)発明者 林 祐 二 愛知県名古屋市東区東外堀町35番地 株式 会社 三和化学研究所 内 (72)発明者 鈴木 栄二 愛知県名古屋市東区東外堀町35番地 株式 会社 三和化学研究所 内─────────────────────────────────────────────────── ─── Continuation of the front page (51) Int.Cl. 6 Identification code Internal reference number FI Technical display location C12Q 1/68 ZNA A 9453-4B (72) Inventor Takahito Shiromori Higashitobori-cho, Higashi-ku, Nagoya-shi, Aichi 35, Sanwa Chemical Research Institute, Inc. (72) Inventor Haruo Takahashi, Higashi Sotobori-cho, Higashi-ku, Nagoya, Aichi Prefecture 35, Inc. 35, Machi Sanwa Chemical Research Institute Co., Ltd. (72) Inventor Eiji Suzuki, 35, Higashitoboricho, Higashi-ku, Nagoya-shi, Aichi Prefecture Sanwa Chemical Research Laboratories, Inc.

Claims (4)

【特許請求の範囲】[Claims] 【請求項1】 非イオン性界面活性剤の存在下に蛋白分
解酵素により生体試料を処理し、得られた抽出液中に存
在する可能性のあるヒト C 型肝炎ウイルス RNA を DNA
に変換し、 5' - GAGTGCGCCTCACACCTTCCTT
ACATCG - 3' なる塩基配列を有するプライマーと、 5' - AAGCCTGCTAGATACTGTATCC
CGC - 3' なる塩基配列を有するプライマー及び Taq ポリメラー
ゼを含有する反応液を添加して、上記の DNA に関して
第 1 回目のポリメラーゼ連鎖反応 (PCR) を行い、次い
で 5' - CTTCCTTACATCGAACAAGGA -
3' なる塩基配列を有するプライマーと、 5' - TTCCACATGTGCTTCGCCCAG -
3' なる塩基配列を有するプライマー及び Taq ポリメラー
ゼを含有する反応液を添加して第 2 回目のポリメラー
ゼ連鎖反応 (PCR) を行い、次いで電気泳動により検出
すべきウイルスゲノムの産物に相当する 176bp のバン
ドが検出されるか否かを調べることを特徴とする、ヒト
C 型肝炎ウイルスゲノムの簡便な検出法。
1. A non-ionic in the presence of a surfactant treated biological sample by proteolytic enzymes, the possibility of Ah Ruhito hepatitis C virus RNA present in the extract thus obtained was DNA
Convert to 5'-GAGTGCCGCCTCACACCTTCCCTT
A primer having a base sequence of ACATCG-3 'and 5'-AAGCCTGCTAGATACTGTATCC
A reaction solution containing a primer having a base sequence of CGC-3 'and Taq polymerase was added, the first polymerase chain reaction (PCR) was performed on the above DNA, and then 5'-CTTCCTTACATCGAACAAGGA-
A primer having a base sequence of 3 ', 5'-TTCCACATGTGCTTCGCCCAG-
3 'consists of the reaction mixture containing the primers and Taq polymerase having a base sequence by adding a second round of polymerase chain reaction performed (PCR), then it corresponds to the product of the viral genome to be detected more electrophoresis dynamic van <br/> de of 176bp are you characterized by checking whether the detected human
Simple test Deho of the hepatitis C virus genome.
【請求項2】 生体試料が血清、血漿及び摘出された組
織から選択されたものであることを特徴とする、請求項
1 に記載のヒト C 型肝炎ウイルスゲノムの簡便な検
法。
Wherein characterized in that the biological sample is selected from serum, plasma and excised tissue claim
Simple inspection Deho of human hepatitis C virus genome according to 1.
【請求項3】 蛋白分解酵素がプロティナーゼ K で
ことを特徴とする、請求項 1 又は 2 に記載のヒト C
型肝炎ウイルスゲノムの簡便な検出法。
3. Oh proteolytic enzyme is in proteinase K
You characterized by that, the human C according to claim 1 or 2
Simple test Deho types of hepatitis virus genome.
【請求項4】 生体試料として血清又は血漿を用いる場
合には、当該試料の量を 1 - 20μg 以内に、また生体
組織を用いる場合には 10mg 以内にとどめることを特徴
とする、請求項 1、2 又は 3 に記載のヒト C 型肝炎ウ
イルスゲノムの簡便な検出法。
When using serum or plasma as wherein the biological sample, the amount of the sample 1 - within 20 [mu] g, also in the case of using a biological tissue you characterized in that keep within 10 mg, claim 1 , 2 or 3 human hepatitis C
Simple test Deho of Irusugenomu.
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