JPH07503139A - How to use branched nucleic acid probes - Google Patents
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるため要約のデータは記録されません。 (57) [Summary] This bulletin contains application data before electronic filing, so abstract data is not recorded.
Description
分枝核酸プローブの使用方法 発明の分野 本発明は、一般的には、ハイブリダイゼーションアノセイにおいて使用するため に設計した核酸プローブに関する。 発明の背景 核酸はヌクレオチド塩基、例えばウラシル(U)、ンチジン(C)、アデニン( A)、チミン(T)およびグアニン(G)から形成され、一本鎖線状分子として 形成される。 このような線状分子は別の線状分子と、例えばAとT、A、!:UまたはGとC の間に特定の塩基対を形成することにより、ハイブリッド複合体または二本鎖分 子(二重鎖とも称する)を形成することができる。このような対となる分子を相 補的分子と称する。 核酸ハイブリダイゼーションは、2つの一本鎖相補分子が二本鎖分子を形成する 方法である。この方法は、相補的一本鎖分子から形成されるラベル化プローブの 使用によりサンプル(標的核酸)中の一本鎖分子の存在を検出するために用いる のが普通である。例えば、1iuranら[1087104165(1987年 7月16日公開)]は、検出すべき核酸に相補的な一本鎖領域および非放射性ラ ベルを有する二本鎖領域を有するプローブを開示している。核酸プローブの通常 の使用および設計は当分野で本発明は、新規な核酸プローブおよびその使用方法 に関する。本発明は標的核酸の存在下でのみ検出可能な構造を形成し得るlまた はそれ以上のプローブの使用に基づいている。通常、核酸分子の少なくとも2つ の部分(異なる分子上にあってもよい)が標的核酸とハイブリダイズしてこの構 造を創製しなければならない。 即ち、このプローブは、偽陽性の結果がほとんどまたは全く観察されないことを 確実にするものである。このようなプローブを用いて核酸を検出することができ 、また治療薬として用いることができる。これらは新規な検出方法が標的核酸の 構造とは無関係に実施されるのを可能にする。さらに、ラベルシグナルの増幅が 容易に達成され、ゆえにこれらプローブは標的核酸の非常に高い検出感度を可能 にする。 従って、第一の態様において、本発明は標的核酸配列にハイブリダイズする少な くとも2つの独立した標的特異的領域、および標的核酸とハイブリダイズしない が互いにハイブリダイズし得る相補的領域を保持する少なくとも2つの別個のア ーム領域を有する少なくとも1つの核酸鎖を有する核酸ハイブリダイゼーション プローブに関する。適当なハイブリダイゼーション条件下で、相補的アーム領域 は標的核酸の不在下で互いにハイブリダイズしないが、標的核酸の存在下でプロ ーブの標的−特異的領域が標的核酸にアニーリングし、相補的アーム領域が互い にアニーリングしてこれにより分枝核酸構造を形成するようにこれら領域を設計 する。 関連の態様において、本発明はサンプル中の標的核酸の存在または量を検出する ためのこのようなプローブの使用方法に関する。この方法において、予め決定さ れた周囲条件下で標的核酸とハイブリダイズする少なくとも2つの独立した領域 を共に含有する1またはそれ以上の核酸分子が提供される。またこれら分子は、 標的核酸と、または標的核酸の不在下で互いにハイブリダイズしない(予め決定 された周囲条件下で)少なくとも2つのアーム領域を含有する。しかし、標的核 酸の存在下で、アーム領域は互いにハイブリダイズする。この方法はさらに、標 的核酸が存在するときにはアーム領域のハイブリダイゼーションを可能にする予 め決定された周囲条件下で核酸分子とサンプルを接触させることを含む。次いで 、アーム領域のあらゆるハイブリダイゼーションを、標的核酸の存在または雪の 表示として検出する。 好ましい態様において、検出工程には、アーム領域とりゾルベース(この用語は 連結点特異的切断により、例えば4方向連結点または3方向連結点などの連結点 を分解し得る酵素を意味する)の接触およびlまたはそれ以上の核酸分子のりゾ ルベースによる切断の検出、■またはそれ以上の核酸分子のDNAフットプリン ト法の実行、ゲルマトリックス内の1またはそれ以上の核酸分子の移動度の観察 、lまたはそれ以上の核酸分子に対するインターカレークー(挿入物質)の結合 の検出、1またはそれ以上の核酸分子と81ヌクレアーゼの接触およびヌクレア ーゼによるlまたはそれ以上の核酸分子のあらゆる切断の検出、lまたはそれ以 上の核酸分子と制限エンドヌクレアーゼの接触およびエンドヌクレアーゼによる もう1つの核酸分子の切断の検出、または1またはそれ以上の核酸分子の熱安定 性の測定が含まれる。 別の好ましい態様において、■またはそれ以上の核酸分子には、挿入分子または 核酸結合分子(例えば、アクリジニウムエステル)、または他の分子(この分子 が一本鎖核酸分子または二本鎖核酸分子の一部を形成する場合には酸または塩基 による化学的修飾または他の修飾に感受性であり、この分子が一本鎖核酸分子ま たは二本鎖核酸分子の他の中に存在する場合にはこのような化学的切断に非感受 性である分子)が含まれ、検出工程には、1またはそれ以上の核酸分子と化学物 質の接触および分子の化学的修飾の量の測定が含まれ、1またはそれ以上の核酸 分子の少なくとも1つは標的核酸の50(または1000)の隣接塩基の領域内 に8〜30(または8〜100)相補的塩基ををする標的領域を有しており;ア ーム領域は標的核酸の不在下では予め決定された周囲条件下でハイブリダイゼー ション温度より4℃、最も好ましくは7℃またはさらには10℃低い融解温度( 通常はTmと称し、後記に説明するように測定する)を有する二本鎖を形成し、 標的核酸の存在下では予め決定された周囲条件下でハイブリダイゼーション温度 より少なくとも4°C(または7°Cまたはさらには10℃)高いTIDを有す る二本鎖を形成する。 さらに他の好ましい態様において、1つの核酸分子であって、少なくとも2つの アーム領域を連結しているループ領域ををする核酸分子が提供され:1またはそ れ以上の核酸分子は2つの核酸分子から成り、その各々が標的領域およびアーム 領域を有しており:lまたはそれ以上の核酸分子は3つの核酸分子から成り、そ の各々が少なくとも1つのアーム領域を有しており、かつ少なくとも2つの核酸 分子が独立した標的領域を有しており、ここで3つの核酸分子は標的核酸とハイ ブリダイズして少なくとも2つの独立したハイブリダイズ化または二重アーム領 域を形成し;lまたはそれ以上の核酸分子は4つの核酸分子から成り、その各々 が少なくとも1つのアーム領域を有しており、かつ少な(とも2つの核酸分子が 独立した標的領域を有しており、ここで4つの核酸分子および標的核酸はハイブ リダイズして少なくとも3つの独立した二重鎖をアーム領域間に形成する。 さらに別の好ましい態様において、標的領域は標的核酸とハイブリダイズし、ア ーム領域は共にハイブリダイズしてアームを形成して、2つの独立した標的領域 間のアームの基部に連結点が形成されるようにする。1またはそれ以上の核酸分 子または標的核酸は、アーム領域または標的領域または標的核酸と二重鎖を形成 せず連結点から外にループを作る連結点近くの核酸を含んでいてよい。また、標 的領域は、それらの全長に沿って、またはアーム領域から離れた末端に、標的核 酸と二重鎖を形成せず、それゆえに標的核酸と標的領域の間に形成された二重鎖 からループを作るかまたは標的領域の末端から一本鎖領域として伸長する核酸を 含む。また別の選択肢において、アーム領域には、他のアーム領域とは二重鎖を 形成せずにアーム領域から伸長するループを形成するかまたは標的領域から離れ たアーム領域の末端から一本鎖分子として伸長する核酸が含まれる。1つの例に おいて、標的領域は共にハイブリダイズしてアームを形成し、2つの独立した標 的領域間のアームの基部に連結点が形成される。アーム領域の一方または両方は 、標的領域から最も離れた末端に他のアーム領域にハイブリダイズすることがで きず、ゆえに別の核酸分子と二重鎖形成して第二のアームを形成するために利用 可能な一本鎖領域をさらに有する。この例において、1またはそれ以上の核酸分 子は一本鎖領域と二重鎖を形成して第二または第三アームおよび第二連結点をア ームの間に形成し得る部分を含んでいてよい。 関連の好ましい態様において、少なくとも2つのアーム領域は標的核酸とハイブ リダイズしたときにアームを形成し、このアームには、生物学的または化学的に 活性な部位、例えば制限エンドヌクレアーゼ部位、二重鎖領域および一本鎖領域 (ここでは二重鎖領域はDNAポリメラーゼのためのプライマーとして作用する )、RNAポリメラーゼのためのプロモーター、例えば多数のRNA転写体を形 成するために転写され得るプロモーター、RNA5eHによる切断に感受性のD NA−RNA二重鎖、および近接した二重鎖核酸の切断に対して化学的に活性な 物質、例えばFe−EDTAが含まれる。 さらに、アーム領域または標的領域は、二重鎖核酸を形成するために二重鎖領域 にわたってループを作ることのできる一本鎖領域を含んでいてよい。このような 三本鎖構造は当分野で周知であり、本発明の一部として容易に設計することがで きる。また、このような一本鎖核酸は残りの核酸分子とは独立して提供すること ができ、所望なら常法によりラベルすることができる。また、これはアームまた はさらには標的領域の一部を形成することもある。二重鎖核酸の検出は当分野で 知られている方法により容易に行われる。 域またはこれらアーム領域から伸長している一本鎖領域とハイブリダイズし得る 他の核酸分子を接触させて、1またはそれ以上の二重鎖領域またはアームを形成 する工程が含まれ、次いでこれら他の核酸分子をそれらの間でさらにハイブリダ イズさせて多数のアームまたはアーム領域を形成することができる。 従って、上記のプローブを、標的核酸を含有している疑いのあるサンプルと適当 なハイプリダイゼーンヨン条件下でインキュベートして、相補的アーム領域のハ イブリダイゼーションの検出を標的核酸の存在の表示として用いることができる 。通常、プローブは2またはそれ以上の独立した核酸分子、例えば20〜5゜塩 基の間の長さの鎖から形成され:路内のアクリジニウムエステルの検出によりハ イブリダイゼー7−Jンの存在をモニターする。 別の関連の態様において、本発明は、標的核酸から離れていてもよいが標的核酸 の存在下にのみ形成される生物学的または化学的に有意な部位を創製する方法に 関する。この部位は一本鎖形態にあるときには特定の化学的または生化学的活性 に関して相対的に不活性であるが、その相補鎖とハイブリダイズしたときに特定 の化学的または生化学的活性に関して活性になるかまたはこの逆である核層のセ グメントである。化学的または生化学的活性の例には、二本鎖特異的な化学的切 断(例えば、l ron−E D T A?1合体を用いるかまたはフェナント ロリンを二重鎖核酸に提供して銅切断に感受性の二重鎖を作成する)、制限エン ドヌクレアーゼ消化、RNA5eH消化(二重鎖の一方の鎖はRNAであっても う一方はDNA)に感受性の部位、またはT7 RNAポリメラーゼにより作用 され得る部位、またはDNAポリメラーゼ活性、例えばプライマー伸長活性を可 能にする活性(例えば、TaqDNAポリメラーゼを用いる)が含まれるがそれ らに限定されない。 他の例には、一本鎖核酸の形態にある場合に消化される(Slヌクレアーゼによ り)が二本鎖形にある場合にはこのような消化から保護される部位が含まれる。 この部位を有する核酸ハイブリダイゼーションプローブは、このような部位を含 むことを除いて上述のように設計されるか、またはプローブが相補的アーム領域 とハイブリダイズする場合にこのような部位か創製される。ゆえに、このプロー ブを標的核酸とインキュベートして、分枝核酸構造ならびに所望の部位を形成す る。さらに、化学作用または生化学作用を所望により行う。これを、例えば核酸 の検出の様式、増幅の様式、または標的介在性切断の様式として用いることがで きる。 さらに別の関連の態様において、本発明は、プローブを上記と同様に特異的標的 部位にハイブリダイズさせることにより標的細胞内の生物学的活性を媒介する方 法に関する。上記のように、プローブを標的核酸とインキュベートして相補的ア ーム領域の間に形成される二重鎖領域を含む分枝核酸構造を形成する。この方法 における標的核酸の例には、病原性生物のゲノム内の必須配列、病原性生物によ り生産される必須mRNA配列および癌細胞内の必須配列が含まれる(必須とは 、このような配列が欠失した場合に生物または細胞の生存能力が当分野で周知の 方法により測定したときに少なくとも30%減少することを意味する)。プロー ブの相補的アーム領域間に形成される二重鎖領域は、配列−特異的な抗体認識部 位(特異的結合抗体は様々な周知の機構、例えば抗体に結合された細胞毒が細胞 を殺すことにより治療を媒介するであろう)および配列特異的なタンパク質/酵 素結合(治療は酵素的切断、転写のブロック、翻訳のブロックなどにより媒介さ れる)を含む様々な治療的アプローチの1つのための特異的な認識部位として設 計される。 さらに、核酸鎖間の連結点はこのような抗体またはタンパク質に対する認識部位 として働くことができる。 本発明の他の特徴および利点は、本発明の好ましい態様の以下の説明および請求 の範囲から明らかとなるであろう。 好ましい態様の説明 4、 METHODS OF USE OF BRANCHED NUCLEIC ACID PROBE FIELD OF THE INVENTION The present invention relates generally to nucleic acid probes designed for use in hybridization assays. BACKGROUND OF THE INVENTION Nucleic acids are formed from nucleotide bases such as uracil (U), antidine (C), adenine (A), thymine (T) and guanine (G) and are formed as single-stranded linear molecules. Such a linear molecule can be connected to another linear molecule, for example, A and T, A,! : By forming specific base pairs between U or G and C, hybrid complexes or double-stranded components are formed. molecules (also called duplexes) can be formed. Comparing such paired molecules It is called a complementary molecule. Nucleic acid hybridization is a method in which two single-stranded complementary molecules form a double-stranded molecule. This method is typically used to detect the presence of single-stranded molecules in a sample (target nucleic acid) through the use of labeled probes formed from complementary single-stranded molecules. For example, 1iuran et al. [1087104165 (published July 16, 1987)] described a single-stranded region complementary to the nucleic acid to be detected and a non-radioactive label. A probe having a double-stranded region with a bell is disclosed. Conventional use and design of nucleic acid probes is well known in the art, and the present invention relates to novel nucleic acid probes and methods of their use. The present invention provides an alternative method that can form a detectable structure only in the presence of a target nucleic acid. is based on the use of further probes. Usually at least two of the nucleic acid molecules portion (which may be on a different molecule) hybridizes with the target nucleic acid to generate this structure. You have to create a structure. That is, this probe ensures that few or no false positive results are observed. Such probes can be used to detect nucleic acids and can also be used as therapeutic agents. These allow new detection methods to be performed independently of the structure of the target nucleic acid. Furthermore, amplification of the label signal is easily achieved and thus these probes allow very high detection sensitivity of target nucleic acids. Therefore, in a first aspect, the present invention provides for at least two separate target-specific regions and at least two distinct regions that do not hybridize to the target nucleic acid but retain complementary regions that can hybridize to each other. The present invention relates to a nucleic acid hybridization probe having at least one nucleic acid strand having a genomic region. Under appropriate hybridization conditions, complementary arm regions will not hybridize to each other in the absence of target nucleic acid, but will hybridize to each other in the presence of target nucleic acid. The target-specific region of the arm anneals to the target nucleic acid, and the complementary arm regions anneal to each other. These regions are designed to anneal to thereby form a branched nucleic acid structure. In a related aspect, the invention relates to methods of using such probes to detect the presence or amount of a target nucleic acid in a sample. In this method, a predetermined One or more nucleic acid molecules are provided that together contain at least two independent regions that hybridize to a target nucleic acid under controlled ambient conditions. These molecules also contain at least two arm regions that do not hybridize (under predetermined ambient conditions) to the target nucleic acid or to each other in the absence of the target nucleic acid. However, the target nucleus In the presence of acid, the arm regions hybridize to each other. This method further When a target nucleic acid is present, there is a preservative that allows hybridization of the arm region. contacting the sample with the nucleic acid molecule under ambient conditions determined for the purpose of the test. Any hybridization of the arm region is then detected as an indication of the presence or absence of the target nucleic acid. In a preferred embodiment, the detection step involves contacting the arm region with a solbase (this term refers to an enzyme capable of degrading a linkage point, such as a 4-way linkage or a 3-way linkage, by linkage-specific cleavage) and 1 or more nucleic acid molecules Detection of cleavage by Rubase or DNA footprint of further nucleic acid molecules observing the mobility of one or more nucleic acid molecules within a gel matrix, detecting the binding of an intercalator to one or more nucleic acid molecules, 81 Nuclease contact and nucleases detection of any cleavage of l or more nucleic acid molecules by l or more enzymes; contacting the above nucleic acid molecule with a restriction endonuclease and detecting cleavage of another nucleic acid molecule by the endonuclease, or measuring the thermal stability of one or more nucleic acid molecules. In another preferred embodiment, the or more nucleic acid molecules include an insertion molecule or a nucleic acid binding molecule (e.g., an acridinium ester), or another molecule (where the molecule is a single-stranded nucleic acid molecule or a double-stranded nucleic acid molecule). It is susceptible to chemical or other modification by acids or bases if it forms part of a single-stranded nucleic acid molecule or or otherwise insensitive to such chemical cleavage when present in a double-stranded nucleic acid molecule. the detection step includes one or more nucleic acid molecules and a chemical involves measuring the quality of contact and the amount of chemical modification of a molecule, in which at least one of the one or more nucleic acid molecules has 8 to 30 (or 8 ~100) has a target region containing complementary bases; In the absence of the target nucleic acid, the region of the genome is hybridized under predetermined ambient conditions. form a duplex with a melting temperature (usually referred to as Tm and measured as explained below) that is 4°C, most preferably 7°C or even 10°C below the reaction temperature, and in the presence of the target nucleic acid. have a TID at least 4°C (or 7°C or even 10°C) above the hybridization temperature under predetermined ambient conditions. form a double strand. In yet another preferred embodiment, there is provided a nucleic acid molecule having a loop region connecting at least two arm regions: 1 or more. One or more nucleic acid molecules consist of two nucleic acid molecules, each having a target region and an arm region; one or more nucleic acid molecules consist of three nucleic acid molecules, each of which has a target region and an arm region; each having at least one arm region, and at least two nucleic acid molecules having independent target regions, wherein the three nucleic acid molecules are hyperlinked to the target nucleic acid. hybridizes to form at least two independent hybridized or double-armed regions. one or more nucleic acid molecules consisting of four nucleic acid molecules, each of which has at least one arm region, and one or more nucleic acid molecules, each of which has at least one arm region; The four nucleic acid molecules and the target nucleic acid are redize to form at least three independent duplexes between the arm regions. In yet another preferred embodiment, the target region hybridizes to the target nucleic acid and The arm regions hybridize together to form an arm such that a point of connection is formed at the base of the arm between two separate target regions. one or more nucleic acid components The child or target nucleic acid may include an arm region or a target region or a nucleic acid near the point of attachment that does not form a duplex with the target nucleic acid but loops out from the point of attachment. Also, the sign The target regions are located along their entire length or at their distal ends away from the arm regions. It includes nucleic acids that do not form duplexes with acids and therefore either loop from the duplex formed between the target nucleic acid and the target region or extend as a single-stranded region from the end of the target region. In yet another option, the arm region may include a loop that extends from the arm region without forming a duplex with other arm regions, or a single-stranded molecule from the end of the arm region away from the target region. This includes nucleic acids that extend as for one example In this case, the target regions hybridize together to form arms, forming two independent targets. A connection point is formed at the base of the arm between the target areas. One or both of the arm regions can hybridize to the other arm region at the end furthest from the target region. It further has a single-stranded region that is flawed and thus available for duplex formation with another nucleic acid molecule to form a second arm. In this example, one or more nucleic acid components The child forms a duplex with the single-stranded region to attach the second or third arm and the second attachment point. It may include a portion that may be formed between the arms. In a related preferred embodiment, at least two arm regions are in contact with the target nucleic acid. When redized, it forms an arm that contains biologically or chemically active sites, such as restriction endonuclease sites, double-stranded regions, and single-stranded regions (where double-stranded regions are DNA polymerase act as a primer for RNA polymerase), a promoter for RNA polymerase, e.g. DNA-RNA duplexes susceptible to cleavage by RNA5eH, and substances chemically active against cleavage of adjacent duplex nucleic acids, such as Fe-EDTA. Additionally, the arm or target region may include a single-stranded region that can be looped across the double-stranded region to form a double-stranded nucleic acid. Such triple-stranded structures are well known in the art and can be easily designed as part of the present invention. Wear. Additionally, such single-stranded nucleic acids can be provided independently of the rest of the nucleic acid molecules and can be labeled by conventional methods, if desired. Also, this can also be used as an arm. may even form part of the target region. Detection of double-stranded nucleic acids is readily accomplished by methods known in the art. contacting other nucleic acid molecules capable of hybridizing with the regions or single-stranded regions extending from these arm regions to form one or more double-stranded regions or arms; further hybridize the nucleic acid molecules between them. It can be increased to form multiple arms or arm regions. Therefore, the probe described above is incubated with a sample suspected of containing the target nucleic acid under appropriate hybridization conditions to detect the hybridization of the complementary arm region. Detection of hybridization can be used as an indication of the presence of target nucleic acid. Typically, probes are two or more independent nucleic acid molecules, e.g. formed from long chains between groups: detection of acridinium ester within the tract Monitor the presence of ibridase 7-J. In another related aspect, the invention provides a method for creating a biologically or chemically significant site that may be remote from a target nucleic acid but is formed only in the presence of the target nucleic acid. related. This site is relatively inactive with respect to a particular chemical or biochemical activity when in single-stranded form, but becomes active with respect to a particular chemical or biochemical activity when hybridized with its complementary strand. or vice versa. It is a component. Examples of chemical or biochemical activities include duplex-specific chemical cleavage. (e.g. using lron-EDTA?1 conjugation or phenanthyl lolin to duplex nucleic acids to create duplexes sensitive to copper cleavage), restriction enzymes Donuclease digestion, RNA5eH digestion (even if one strand of the duplex is RNA) The other is a site sensitive to DNA), or a site that can be acted upon by T7 RNA polymerase, or a site capable of DNA polymerase activity, such as primer extension activity. (e.g., using Taq DNA polymerase). It is not limited to these. Other examples include digestion when in the form of single-stranded nucleic acids (by Sl nuclease). This includes sites that are protected from such digestion when the protein is in double-stranded form. Nucleic acid hybridization probes containing this site are Such a site can be designed as described above, except that it includes a probe, or it can be created when the probe hybridizes to a complementary arm region. Therefore, this professional the target nucleic acid to form a branched nucleic acid structure as well as the desired site. Ru. Additionally, chemical or biochemical actions are performed as desired. This can be used, for example, as a mode of nucleic acid detection, a mode of amplification, or a mode of target-mediated cleavage. Wear. In yet another related aspect, the invention provides methods for mediating biological activity in target cells by hybridizing probes to specific target sites, as described above. Regarding the law. As described above, the probe is incubated with the target nucleic acid to generate complementary conjugates. A branched nucleic acid structure is formed that includes a double-stranded region formed between the double-stranded and double-stranded regions. Examples of target nucleic acids in this method include essential sequences within the genome of a pathogenic organism; essential mRNA sequences produced by cells and essential sequences in cancer cells (essential means that the viability of an organism or cell in the absence of such sequences is determined by methods well known in the art). (meaning a reduction of at least 30%). plow The double-stranded region formed between the complementary arm regions of the antibody is a sequence-specific antibody recognition site. (specific binding antibodies may mediate therapy by a variety of well-known mechanisms, e.g., a cytotoxin attached to the antibody would kill the cell) and sequence-specific protein/enzyme (Treatment may be mediated by enzymatic cleavage, blocking of transcription, blocking of translation, etc.) designed as a specific recognition site for one of various therapeutic approaches, including It is measured. Additionally, the points of attachment between nucleic acid strands can serve as recognition sites for such antibodies or proteins. Other features and advantages of the invention will be apparent from the following description of preferred embodiments of the invention and from the claims. Description of preferred embodiments 4.
層面 図IA−IF、4A〜4B、6A〜6H,9A〜9FおよびIIA〜IIFは本 発明のプローブの概略の図式的表示であり(各図中のプローブ間の短い線はプロ ーブ間の水素結合を表しており、塩基または水素結合の実際の数を示すものでは ない);゛ 図2A〜2Eおよび3A〜3B、5A〜5G、7および8.10および12A〜 12Cは図IA、4A、6A、9FおよびIIEにおいて各々示されるプローブ の具体的な例であり; 図13および14は不正対合したプローブの具体的な例であり:図15A−15 Fは本発明において有用な様々な検出系の図式的表示であり:図16は制限エン ドヌクレアーゼ処理により検出可能なプローブの具体的な例であり。 図17は図16において示されるプローブを用いた試験のオートラジオグラムで あり: 図18は酵素的増幅により検出可能なプローブの具体的な例であり;図19Aお よび19B1および20A〜20Cは標的−非依存性プローブ増幅系の図式的表 示であり: 図21は4方向連結点を生じる3つのプローブの図式的表示であり;そして図2 2A〜22+は図21において示されるプローブの様々な態様の図式的表示であ る。 プローブ 図IAおよびIBについては、本発明のプローブの1例が示されており、これは 本発明の各プローブの一般的構造を示している。示したプローブは、ハイブリダ イズ条件下で標的核酸15にハイブリダイズし得る標的〜特異的領域14.16 を各々が保持する2つの独立した鎖10.12から形成される。また各鎖は、通 常は標的核酸の存在下でのみ共にハイブリダイズしてアーム22を形成するアー ム領域18.20を保持する。アームがこのように形成される場合には、アーム とハイブリダイズした標的領域の間の連結点21もまた形成される。アーム領域 および標的特異的領域は、両鏡がハイブリダイゼーション混合物中に存在して両 方が標的核酸にそしてそれらのアーム領域で互いにハイブリダイズする場合にの み標的核酸に対する標的特異的領域のハイブリダイゼーションがハイブリダイゼ ーション条件下で観察されるように設計することができる。 従って、上で全般的に説明したように、本発明の核酸ノ\イブリダイゼ−7ヨン ブローブは、標的核酸との相互作用および標的核酸へのハイブリダイゼーション により、分枝核酸構造(すなわち、標的核酸から伸長して標的核酸と直接))イ ブリダイズしない少なくとも1つのアームを有する構造)を形成する。この分枝 構造の形成が標的−依存性となるようにこのプローブを設計する。ゆえに、分枝 形成の検出は、サンプル中の標的核酸の存在および量(検出か量的である場合) の測定である。1以上の分岐を形成させることができるが、1つの分岐のみは標 的依存的様式で形成されなければならない。このプローブは一本鎖核酸であるか またはwL数鎖であることができる。さらに、この鎖(または複数の鎖)はDN A、修飾DNA5RNA、修飾RNA、またはそれらの様々な組み合わせであっ てよい。 「修飾DNAまたはRNAjとは、天然に存在するDNAまたはRNA分子とは 異なるあらゆる核酸構造、例えば修飾塩基(例えばメチルント/ン、またはイノ シン)または修飾ヌクレオチド間結合(例えば、ホスホロチオエートまたはメチ ルホスホネート)を含有するDNAまたはRNAを意味する。プローブは標的核 酸と特異的にハイブリダイズする少なくとも2つの独立した領域、および互いに 相補的であって標的の存在下でのみ安定な二重鎖を形成する少なくとも2つのア ーム領域(すなわち、標的とハイブリダイズしない領域)を有していなければな らない。 これらの相補的アーム領域は標的核酸の存在下でのみハイブリダイズするから、 この二重鎖領域の噴出は標的核酸の存在に対するアッセイにとって好ましい方法 である。 分枝核酸プローブと標的のハイブリダイゼーションを検出するための多数の方法 がある。分枝核酸の検出の例には、リシルベース酵素による連結点特異的な切断 (例えば、ラベル化プローブ鎖の切断を検出する)、DNA5eフツトプリント 法、ゲル遅延アッセイおよびラベル化連結点特異的挿入化合物の結合(標的が捕 捉され、ラベルの存在が検出される)の使用が含まれる。精製された4方向連結 点切断リシルベースは当分野で周知であるが、3方向連結点切断酵素および他の 連結点特異的酵素を当分野で既知の方法により、例えば所望の3方向連結点を切 断する活性を宵する酵素を生化学的に精製することにより容易に精製することが できる。相補的アーム領域間に形成される二重鎖の検出の例には、DNA5eフ ツトプリント法、31ヌクレアーゼ消化(アーム領域をラベルし:アームが二重 鎖を形成する場合にはヌクレアーゼS1により消化されず;アームが二重鎖を形 成しない場合にはヌクレアーゼS1により消化されるであろう)、相補的アーム 領域間に二重鎖形成により創製された部位の制限エンドヌクレアーゼ切断、標的 核酸の捕捉に続く結合二重鎖の熱安定性の分析(ラベル化プローブ鎖を使用:完 全分枝核酸構造はあらゆる部分的形成より高い熱安定性を有するであろうし、形 成が起こらなかった場合には分岐が形成した場合と比べて異なるシグナルが捕捉 標的核酸に伴われるであろう)が含まれる。また、向かい合うプローブアーム上 の2つの共同的なラベルの並列を検出することができる。より一般的に、分枝D NAの形成または相補的アーム二重鎖の形成を検出するあらゆる方法をこの方法 において用いて、標的の存在を示し得ることを当業者は容易に認識するであろう 。 検出の好ましい方法は、Arnoldら[35C11n、Chem、 1588 (1989)]が開示しているハイブリダイゼーション保護アッセイ(HPA )の使用である。この方法は合成オリゴヌクレオチドプローブに共有結合された 化学発光性アクリジニウムエステル(AE)ラベルを用いる。このアッセイ形式 は完全均一(すなわち、いかなる物理的分離工程も必要としない)であり、AE 分子のエステル結合の化学的加水分解に基づいており、その切断はAEを永久的 に非化学発光性にする。このエステル結合の加水分解がハイブリダイズされてい ないAE−ラベル化プローブ(AE−プローブ)に対しては速いがハイブリダイ ズされたAE−プローブに対しては遅い条件が開発されている。従って、AE− プローブとその相補的核酸のハイブリダイゼーション(エステル加水分解を促進 しない条件下で)の後に、反応条件を調節して非ハイブリダイズ化AE−プロー ブに関係する化学発光は迅速に低レベルに減少するがハイブリダイズ化AE−プ ローブに関係する化学発光は最小限の影響を受けるようにする。この示差加水分 解工程後に、あらゆる残存化学発光は形成サレる二重鎖の量の直接の測定値であ る。■またはそれ以上のAEラベルをプローブの1またはそれ以上の核酸鎖に結 合させ、上記の示差加水分解法を用いて二重鎖形成についてアッセイすることに より、このアッセイ法を本発明において用いる。 2成分プローブ 標的核酸の検出のために使用する分枝核酸プローブの1つの配置を図IAおよび IBに図式的に示す。この配置においてプローブは2つの独立した核酸鎖からな り:これら鎖は好ましくは合成オリゴヌクレオチドである。各鎖は標的核酸とハ イブリダイズするプローブ領域およびアーム領域を保持している。2つのアーム 領域は互いに相補的である(これは、それらが互いに全く相補的でない部分を保 持しているかもしれないので必ずしも完全に相補的であることを意味しないが、 ハイブリダイゼーション条件下で安定な二重鎖が形成されることを意味する)。 標的核酸の不在下でアーム領域のハイブリダイゼーションがほとんどまたは全く 起こらないよう、標的の不在下で結合した二重鎖の融解温度Tmがアッセイの操 作温度より低く、好ましくは4°C(さらに好ましくは7℃または10’C)低 くなるように、これらアーム領域を設計する。Tmは、ある核酸二重鎖の50% が融解した(すなわち、−水路になった)温度として定義される。Tmは溶液の 陽イオン濃度などの周囲条件に依存する。所望のTmは、相補領域の長さおよび ヌクレオチド塩基組成の操作により達成されるのが普通である。また、不正対合 の組み込み、グアノシン残基のいくつかまたは全てとイノシンの置換、例えばボ スホロチオエートヌクレオチド間結合によるリン酸背骨の修飾を含むがそれらに 限定されない他の方法を用いて二重鎖のTmを調節することができる。HPA形 式を6゜°Cで用いた場合に、全く相補的な、非修飾アーム領域の好ましい長さ は約8〜20隣接塩基である(塩基の組成および配列に依存する)。他の周囲条 件は、異なる大きさの範囲を導く可能性があるが;これは経験的に容易に測定さ れる。 標的核酸を含有する溶液とプローブを接触させると、図1に示すように、2つの 鎖のプローブ領域は互いに通常近接しているそれらの各々の標的領域にハイブリ ダイズするであろう(それらは直接接している必要はない、以下を参照)。これ が起こるときに、2つのプローブ鎖のアーム領域は互いにきわめて近接するよう に強いられ、こうして結合した二重鎖の安定性力吐昇する。アームが二重鎖を形 成するように、標的の存在下で形成される二重鎖のTmがおよそ同等がまたはア ッセイの操作温度より高い、好ましくは操作温度より4°C(さらに好ましくは 7°Cまたは10℃)高くなるようアーム領域を設計する。上に示したように、 HPA形式を60°Cて用いる場合に、アームの好ましい長さは約8〜2o隣接 相補的塩基である(塩基の組成および配列に依存する)。 2つの独立した鎖のプローブ領域を様々な方法で設計することができる。例えば 、これら領域をアーム領域と同様に設計することができるが、この場合、どちら かの領域単独(すなわち、1つのプローブ鎖+標的鎖)のTmは操作温度より低 いが、両プローブ鎖と標的鎖が存在してアーム領域がハイブリダイズする場合に は操作温度よりも高い。またプローブ領域のTmが両方とも操作温度より高くな るようにそれらを設計することができ、または一方のTlが操作温度より高く、 一方のTmが低くなるようにそれらを設計することができる。いがなる設計が選 択されようとも、標的の存在下でのみアーム領域が安定な二重鎖を形成する必要 条件は満たされなければならない。プローブ領域は好ましくは8〜5oヌクレオ チド長の間であり、より好ましくは8〜30ヌクレオチド長の間である。これら 領域はさらに長くてもよいが、大部分の適用にはこの付加的な長さが必要ではな く、これら一層長いオリゴマーの合成は比較的短いオリゴマーより高価であり、 時間を消費する。 一方または両方のプローブ配列を、所望の標的核酸と反応し、好ましくはあらゆ る非所望の標的核酸と反応(すなわち交差反応)しないように選択する。一方の プローブ領域が非所望の標的とハイブリダイズするが他方のプローブ領域がハイ ブリダイズしないなら、アーム領域がハイブリダイズするためには両プローブセ グメントがハイブリダイズしなければならないからアッセイは依然として適正に 機能するであろう。 HPΔ形式を利用する場合には、AEラベルをプローブのアーム領域に置くのが 普通である。標的の不在下で、この領域は一本鎖となるであろうし、AEは迅速 なエステル加水分解に感受性となるであろう。標的の存在下で、この領域は二本 鎖になり、AEはエステル加水分解からV4XJされるであろう。AEラベルを 一方の鎖、他方の鎖、または両路内に置(ことができる(これによりシグナルお よびアッセイ感度の増大を導く)。複数ラベルを各路内に置くことができ、これ はさらにアッセイ感度を向上させる。また、AEラベルをプローブ領域の一方ま たは他方(または両方)内に置くことができる。また、複数のラベルをこの配置 において用いることもできるであろう。さらに、上で説明した配置のあらゆる組 み合わせにおいてAEを用いることができるであろう。 HP A形式において上記の分枝核酸プローブを用いてサンプル中の標的核酸を 検出するために、以下の一般的方法を用いる。1)分枝核酸プローブをサンプル に加え、2)インキュベートして適当な領域のアニーリングを起こさせ、3)試 薬を加えてAEラベルの示差加水分解を遂行し、そして4)存在するあらゆる標 的核酸の存在または量の表示としてあらゆる残存の化学発光を検出する。アニー リング条件は、厳密な適用、プローブの設計、標的核酸の性質および標的が含有 されるサンプルの組成に応じて変化させることかできる。しかし、上記のTm必 要条件を満たすように条件を選択しなければならない。I−I P A形式のた めに、インキュベーション温度は好ましくは5〜70°Cであり、より好ましく は30〜65°Cであり、アニーリング工程のpHは好ましくは4.5〜8.5 の間であり、最も好ましくは4.5〜5.5の間である(アニーリング工程中の AEの一層高い安定性は比較的低いpH範囲において達成されるが、Hammo ndら[6J、Biolum、 and C定化させるための方法が存在する) 。−価の塩対イオンの濃度は好ましくは50〜1000mMの間であり、より好 ましくは200〜800mMの間であり:アニーリング工程において洗浄剤(こ れはAEが凝集し、試験管およびピペットチップの壁に固着するのを防ぐ)を、 好ましくは0.1〜10%(w/v)、より好ましくは1−10%の濃度で含有 させるのが好ましい。所望のハイブリダイゼー7gン特性を導く別のアニーリン グ条件を本発明において用いてもよいことを当業者なら理解するであろう。 具体的な例を以下に提供するが、これは本発明の限定ではない。多くの改変が可 能であることを当業者なら理解するであろうが、その例を図IC−IFに提供し 、そこでは様々なループ(ラベルL)がアーム、標的核酸または連結点に示され ており、−水路核酸(ラベルS)が存在することもある(例えば、以下に説明す るようなより多くのプローブを有する、後の二重鎖機能のために)。 図1で示される一般的配置の具体的な例を図2八に示す。標的鎖は、Mycob acterium tuberculosisの23SリポソームRNA(rR NA)サブユニ、トの領域に対応する配列を有する長さが43塩基の合成りNA オリゴマーである。分枝核酸プローブの2つの鎖は図2Aに示すように標的鎖と 共に3方向連結点を形成する。 示したように、1個のAEが鎖1のTとA残基の間に共有結合により結合されて いる。 オリゴヌクレオチドは、通常のホスホルアミダイト固相化学[Caruther sら、 154 In Methods EnzyI+lo1.287 (19 g?)]を用いてBiosearch Model 8750またはABh 3 80^DNA合成装置上で合成し、通常のポリアクリルアミドゲル電気泳動を用 いて精製した。鎖1をArnoldおよびNe1son[PCT公開番号108 9102896(1989年4月6日公開)]が既に開示しているようにAEラ ベルした。 以下のアニーリング反応を30μlのO,1Mコハク酸リチウム緩衝液(pH5 ゜2)、2mM EDTA、2mM EGTAおよび10%(w/v)ラウリル 硫酸リチウム中、60’Cで1時間行った。ハイブリッド−標的鎖(0,5pモ ル)、プローブ鎖1(AEララベ化鎖)(0,0!1モル)およびプローブ鎖2 (2,5pモル)。対照1−プローブ鎖1 (0,05pモル)およびプローブ 鎖2(2,5pモル)。対照2−プローブ鎖1(0,05pモル)。試薬ブラン ク−標的またはプローブなし。 アーム領域が標的の存在下でのみハイブリクイズしていることを示すために、上 記の各反応に対するAE加水分解の半減期を、既に開示されているプロトコール [Arnoldら、 35 C11n Chem、 1588 (19g9)] を用いて測定した。以下の結果が得対照1 054分 対照2.051分 これらデータは、AEか標的の不在下でエステル加水分解から保護されない(対 照lど対照2を比較)が、標的(ハイブリット)の存在下での加水分解から保護 されることを明らかにし、これにより標的核酸の存在下のみてのアーム領域のハ イブリダイゼーンヨンを示している。 図2Bにおいて図式的に表されている様々な配置のTmを測定することによりこ の系をさらに評価した。Tmを以下のプロトコールに従い測定した。 1、上記のようなアニーリング後に、分析すべきサンプルを0.1Mコノ\り酸 リチウム緩衝液(pH5,2)、2mMEDTA、2mMEGTA、10%(W /V)ラウリル硫酸リチウム中に希釈して100μm当たり約100,000相 対的光単位(RLU:これはこれらプロトコールにおいて用いられる化学発光の 単位である: Arnoldらを参照E35 C11n Chcm−1588( 1989)])にした。 2、分割した100μmずつを12X75+amアッセイ試験管中にピペットで 入れた。分析すべき各サンプルを7分間、次の4度の各々、56°Cおよびそれ 以下のTmを何するオリゴマーに対しては40,43.46.49.52.55 .58および62℃、そして56℃より高いTmを有するオリコマ−に対しては 50.53.56.59.62.65.68および71°Cでインキュベートし た。インキュベートの後に、各試験管を水浴中に置いた。 3、全てのインキュベートが完了した後に、全ての試験管を水浴から除去し、各 々に300μlの0.15Mテトラホウ酸ナナトリウム緩衝液pH7,6)、5 %(V/v)トリトンX−100を加え、渦撹拌により混合した。全ての試験管 を、56℃以下のTmを有するオリゴマーについては40℃で20分間、56° Cを越えるTaを有するオリゴマーについては50℃で15分間インキュベート した。この試験管を氷上に30秒間置き、次いで室温(20〜25°C)に置い た。 4、化学発光をルミノメータ−(LEADERl、 Gen−Probe、 C A)中で2ooμmの0゜1%H,O,,1NNaOHの自動注入、続いて5秒 間のシグナルの計測により測定した。化学発光の測定前に、試験管を湿ったテイ ノン二またはペーパータオルでプロットした。 5、各々の対応するハイブリッド値から対照値を引き、得られたデータを化学発 光対温度としてプロットした。Tmを最大化学発光の50%が失われる温度とし てグラフにより決定した。 用いる温度範囲および厳密な温度間隔は、特性化されるAE−オリゴマーの厳密 な特性と共に変化することができる。 次のTmか得られた: 構造1 (図28)Ta+=62°C 構造2 (図20)Tm=50°に れらデータは、アーム領域と結合した二重鎖が標的の不在下で60°C(加水分 解速度測定において上記で用いた操作温度)よりかなり低いTeaを有し、標的 の存在下で60°Cより高いTl11を有することを示す。 図2B〜2Eに示される様々な構造のTaを8mMコハク酸リチウム緩衝液(p H5,5)、100mM NaC1,10mM MgCLおよび10+aM T ris−HCI(この試薬は上記のプロトコールの工程lにおける希釈試薬に代 わるものである)中で測定することにより、さらにこの系を特性化した。次のT mが得られた:構造1 (図28)Tm=59°C 構造2 (図2C)Tm=47℃ 構造3 (図2D) Tm=47°C 構造4 (図2E) Tm=45°に の個々の設計について、アーム領域のTmが標的の不在下で標的の存在下よりも はるかに低いだけではなく、標的とプローブ領域の間に形成される二重鎖領域は 完全アーム二重鎖の存在下よりも完全アーム二重鎖(図2を参照)の不在下で安 定性が低い。これは、本発明の分枝核酸を用いて核酸二重鎖のTmを操作し得る ことを示している。 アクリジニウムエステルラベル位置のための他の可能な配置、または二重鎖検出 のための制限酵素(旦5till)の使用を図2B〜2Eに示す。 (以下、余白) 実施例2 図1に示す一般的構造の別の例を図3Aおよび3Bに示す。この設計において、 Ne1sseria gonorrhoeae由来のリポソームRNA(rRN A)が標的核酸である◇上記の実施例】に記載したように全てのオリゴマーを合 成してAE−ラベル化した。 rRNAの特定領域内の若干異なる位置に連結点を有する2つの基本的な設計( 99/135図3B設計および+32/146図3A設計)を評価した。以下に 示すように、様々なリンカー−アーム配置を評価した。さらに、正確に相捕的な 標的核酸(N、 gonorrhoeae)ならびに2つの不正対合を有する潜 在的に交差反応性の標的核酸(N、 meningiLidis)を評価した。 実施例1に記載したように示差加水分解およびTm分析を用いて、以下の特定条 件で異なる領域のハイブリダイゼーション特性を評価した:I N、gon、 0.6 pモル AEo、1りモルなし 2pモルなし 2pモル2 N、go n、 0.6 pモル なし 2pモルAE(1) 0.1 pモルなし 2p モル3 N、gon、086pモル AEO,lpモルAE(1) 0.1 p モルなし 2pモル4 N、gon、 0.6 pモル なし 2pモル^E( 2) 0.1 pモルなし 2pモル5 N、men、 0.6 pモル へE O,lpモルなし 2pモルなし 2pモル6 N、rnen、 0.6 pモ ル なし 2pモルAE(1) 0.1 Pモルなし 2pモルフ N、men 、 0.6 pモル ^E0.1pモルAE(1) 0.1 pモルなし 2p モル9 N、gon、 0.61)モル A20.1pモルなし 2pモルなし 2pモル10 N、gon、 0.6 pモル なし 2pモル AE 0. 1pモルなし 22モル11 N、gon、 0.6 pモル AEo、1pモ ル AE O,lppモルし 2pモル12 N、men、 0.6 pモル へE0.1pモルなし 2pモルなし 2pモル13 N、men、 0.6 pモル なし 2pモルAE(1) O,l pモルなし 2pモルN、 go norrhoeaeとのハイブリダイゼーションを60℃で行い; N、 me ningitidisとのハイブリダイゼー7gンを45または50°Cで行い ;対照は標的を除く全ての成分を含み:線状オリゴヌクレオチド100および1 46はrRNAの第二構造を開く「ヘルパー」プローブであり、本発明の分枝核 酸プローブとは関連がない。 以下の結果が得られた。 1 N、gon 6B、2 14.3 0.48 29.82 N、gon 7 0.0 6.5 0.51 12.73 N、gon 68.0 8.2 0. 50 16.44 N、gon 68.5 18.8 0.47 40.09 N、gon 70.0 12.8 0.49 26.110 N、gon 72 .0 8.0 0.43 18.6II N、gon 67.5 8.6 0. 43 20.05 N、men 59.0 6 Nll1en 59.0 7 N、men 54.5 8 N、men 56.0 12 N、men 58.5 13 N、men 61.0 14 N、men 57. O DH比はハイブリ、ドと対照に対する半減期の比である。Ne1sseria meningiLidisDH比は単一に近い(データは示さず)。ゆえに、ハ イブリタイセーンヨンは観察されなかった。 N、 gonorrhoeae標的に対するDH比は、アーム領域がRNA核酸 標的の存在下でのみ安定な二重鎖を形成することを明らかに示している。これら 2設計の各々は長いプローブ領域を有する鎖および短いプローブ領域を宵する鎖 を有し、これはこの設計パラメーターの柔軟性を示している。さらにデータは、 プローブ当たり2AE(各鎖当たり1つ;サンプル3および11)を含むいくつ かの異なるAE配装か同様の結果を生じることを示す。いくつかのAE配装は他 の配置よりも比較的高いDH比を生じるが、全ては標的の存在下でのみ保護を示 す。N、 gonorrh。 eae標的に対するTmデータは、試験した全構造で操作温度(この場合では6 0℃)よりかなり高いTmが得られることを示す。 N、 meningitidisli的により得られたデータは、よく相関して いる標的核酸と有意に交差反応しないように系を調整して、これによりアッセイ としてのその有用性を改良することかできることを示している。N、 golo rrhoeaeとN、 meningitidisの間の各構造に対するTl1 1の差異は92〜13.5℃の範囲である。 また、99/135系を標的核酸(N、 gonorrhoeae)の減少量を 検出するためのその能力について評価し: N、 meningitidisの 10−’μg(63fモル)との交差反応も試験した。アッセイ形式は次の通り であった:標的およびプローブを100μIの0.1Mフハク酸リチウム緩衝液 (pH5,2)、2mM EDTA、2mM EGTAおよび10%b/V)ラ ウリル硫酸リチウム中、60℃で60分間アニーリングした。5%(v/v) hリドンX−100洗浄剤を含む0.15Mホウ酸ナナトリウム緩衝液pH7, 6)(300μl)を加え、渦撹拌して60℃で10分間インキュベートした。 化学発光をルミノメータ−(LEADERI、Gen−Probe、 C^)に おいて、200μmの0.4 N HNO3,0,1%H2○2、次いで200 μlのlNNaOHの自動注入、続いて5秒間のシグナルの計測により測定した 。 この実施例において、次のプローブ混合物を用いた。プローブ混合物1−AE− ラベル化オリゴ99(0,1pモル)、オリゴl 35(0,5pモル)および オリゴ146(2pモル)ニブロープ混合物2 AE−ラベル化−kl)ゴl 35(0,1pモ#)、オリゴ99(0,:)l)モル)およびオリゴ146( 2pモル)、プローブ混合物3−AE−ラベル化オリゴ99(01pモル)、A E−ラベル化オリゴ135(0,1pモル)およびオリゴ146(2pモル)。 アッセイした標的の1および結果を以下に示すプローブ混合物 to” 66.398 37,016 112,84410−’ 9.242 4,730 14.249[N、 men、 ](μg) 一工鴎’ 2靜玉B−一一団且はL−一」野362これらデータは、ここで示さ れる設計が完全アッセイ形式における少量の核酸の検出の際に有用であることを 示す。さらに、1つ(プローブ混合物1および2のように)の代わりに2つのA E−ラベル化鎖を含有するプローブ混合物3においてラベル増幅が示される。非 常によく相関しているN、 meningitidisRN Aとの交差反応は プローブ混合物1および3に対して最小であり;プローブ混合物2において見ら れた若干の交差反応は陽性のシグナルより約100倍低く、これはア。 セイの操作温度を若干上昇させることにより最小レベルに減少した。 1成分プローブ 標的核酸の検出のために使用する分枝核酸プローブの別の配置を図4Aおよび4 Bに図式的に示す。この配置においてプローブは一本鎖核酸からなる。所望の特 性は図1において示される設計について説明したものと同じであるが、ここでは プローブの2鎖は結合し、ゆえに1鎖になる。プローブの2つの半分を結合して いるセグメント24は性質においてヌクレオチドまたは非ヌクレオチドであって よく、上記の所望のプローブ特性が得られる長さであるべきである。HPA形式 を60°Cで使用した場合に、この配置における相補的、非修飾アーム25.2 7の好ましい長さは相互作用の分子内性質により、図1において示した設計につ いて述べたものより若干短い。ゆえに、好ましいアーム長は約4〜16塩基であ る。上で述べたように、他の周囲条件は異なる大きさの範囲を導く可能性があり 、これは常法により実験的に容易に決定される。 実施例3 図4に示す一般的構造の例を図5に示す。標的鎖は、Mycobacteriu a+ tuberculosisの23S rRNAサブユニットの領域に対応 する配列を有する合成りNAオリゴマー43塩基長である。上記の実施例1に記 載したように全てのオリゴマーを合成してAE−ラベル化した。図5Aに示すよ うに、分枝核酸プローブは標的鎖と3方向連結点を形成する。1個のAEが、示 したようにプローブのTとG残基の間に共育結合により結合されている。さらに AEを標的鎖中、以下に説明するように特定の分析において示される2つの位置 のうちの1つに置いた。 実施例1に記載したDHおよびTm分析プロトコールを用いて、図5B〜5Gに 示す構造のハイブリダイゼーション特性を評価し;各々のアニーリング反応にお いて用いた各成分の量を図5B〜5G中に挙げる。以下の結果が得られた:2 10.2 0.32 31.9 8.1 0.56 14.5 これらデータは、増大したAE安定性により明らかなように、アーム領域間で形 成される二重鎖が標的の不在下よりも標的の存在下で安定であることを示す。 安定性における相対的な差異は標的核酸の存在を明確に検出するために用いるの に十分大きいが、実施例1または2のどちらにおいても見られるものほど大きく はない。サンプル1.2および3の対照の加水分解速度を比較すると、アームが この実験の操作条件下で若干相互作用していることが明らがである。この相互作 用は、操作条件(例えば、より高い操作温度、アーム領域に含有されるイノシン 残基またはアーム領域に含有されるホスホロチオエート結合)を最適にすること により本質的に除去することができる。これは標的が存在する場合と標識が不在 の場合の間の識別を高める。 標的核酸を検出するために使用する分枝核酸プローブの別の配置を図6A〜6■ (に図式的に示す。これら配置においてプローブは3またはそれ以上の核酸鎖か らなり、これら鎖は1またはそれ以上の核酸連結点を標的核酸と形成する。上記 のように、このような構造を1個の核酸分子内に設計することができる。標的の 存在下でのみアーム領域は安定な二重鎖を形成する(標的の不在下でさえ安定な 二重鎖を形成するある種のアーム領域の可能性については後記に記載する)かぎ りは、実質的に連結点のあらゆる組み合わせが可能である。このような系を設計 するためのガイドラインは、図1において示した配置について上で記載したもの と本質的に同じである。4方向連結点(またはさらに高い次数の連結点)の場合 において、プローブ鎖のいくつかはアーム領域のみを含有していかなる標的特異 的領域も含有しないであろう。アーム領域のみを含有する鎖の配列は標的配列と は独立しているから、様々な標的部位の検出のための様々な特異的プローブ鎖と の組み合わせにおいてこの配列を用いることかできる。この「普遍的検出」アプ ローチはいくつかの利点を何し、これらには全ての標的配列の検出のための非常 に少ない(または1つのみまでも)AE−ラベル化普遍的検出オリゴマー(これ は設計および合成時間を顕著に最小限にし、ゆえに費用を最小限にする)を使用 する能力および最適な示差加水分解を生じる配列を選択する自由、標的配列から の完全な独立性か含まれる。 上記のように、AEはいくつかまたは全てのアーム領域ならびにいくつかまたは 全てのプローブ領域の中に置くことができる。この配置の1つの利点はAEに対 する多くの部位の存在であり、これによりアッセイのラベル増幅の潜在能力を顕 著に増大させる。1つの特定の使用において、AE部位の回りの配列は各アーム 領域について同じであることかでき、これはAE加水分解特性(AE加水分解速 度は配列依存性である)の均一性を導き、アッセイの全体精度を改善する。プロ ーブ領域の長さを操作して、ある種のアッセイ能力目標を達成することができる 。例えば、様々なプローブセグメントの長さを調節することにより、非常に相関 した標的との交差反応を最小限にすることができる。例として、図6A、6Bお よび6C中、プローブ鎖lおよび3のプローブ領域30,32は比較的長く、こ れゆえに標的およびこれら領域において相同配列を保持する非常に相関している 非標的核酸とさえ安定な二重鎖を形成する。プローブ鎖2のプローブ領域34は 、比較的短く、lまたはそれ以上の不正対合36を非標的核酸に対して含有する 領域にわたる。このプローブセグメントは完全な対合標的と共に安定な二重鎖を 形成するであろうが、その相対的な短かさにより不正対合標的とは安定な二重鎖 を形成しないであろう。 上記の例はアームと2つの標的領域の間の3方向連結点を示す。図6Eおよび6 Fに示すように、独立したアーム領域(ラベルA)およびプローブ領域(P)を 有する3つのプローブ(それらは1個の分子として形成されることもある)を用 いて4方向連結点を創製することができる。同様の例を図68および6Gに示す 。 実施例4 図6Aに示す一般的構造の具体例を図7に示す。プローブはラベル化99鎖、1 35鎖および146鎖である。実施例2のように、Neisgeria gon orrhoeae由来のリポソームRNA(rRNA)が標的核酸である。上記 の実施例1に記載したように全てのオリコマ−を合成してAE−ラベル化した。 2つの3方向核酸連結点を標的鎖と形成する3つのプローブ鎖を共に含有してい る2つの基本設計を評価した。2設計の間の唯一の差異は、図7に示されるよう に連結点にルーブーアラ)(L)塩基を含有することである(所望により、さら に多くのループ塩基を本発明のプローブ中に含有させることができ、これは非ヌ クレオチド塩基であってもよい、さらに、非固定化、または移動性連結点を創製 するプローブを形成してもよい)。 以下に示すように、様々なリンカ−アーム配置を評価した。さらに、正確に相補 的な標的核酸(N、 gonorrhoeae)ならびに2不正対合ををする潜 在的に交差反応性の標的核酸(N、 meningitidis)を評価した。 実施例1に記載した示差加水分解およびTm分析を用いて、異なる領域のハイブ リダイゼーション特性を次の特定条件で評価した・図8中に図式的に示した構造 1〜18は標的鎖(0,6pモル)、AE−ラベル化プローブ鎖(0,1pモル )および非ラベル化プローブ鎖(2pモル)を常に用いて分析し、サンプルto −12中、標的はN、 meningitidisであり:他の全てのサンプル 中、標的はN、 gonorrhoeaeであり;サンプル1,2.4〜6.1 0.IL 13.14.16および17は図7に示すようにルーブーアウト塩基 を自存しており、残りのサンプルはルーブーアウト塩基を自存していなかった。 得られたデータを図8に表形式で表す。 これらデータは、複数のアーム領域が標的の存在下、そして標的の存在下のみで 形成可能であることを示す。さらに、複数のAEラベルを1個の設計において用 いて、これによりラベル増幅をもたらすことができる。さらに、これら構造は図 7に示されるルーブーアウト塩基と共におよび該塩基を伴わずに形成することが できる。 さらに、図8中に示した構造から選択された構造を、標的核酸(N、 gono rrhoeae)を検出するその能力について評価し: N、 meningi tidisとの交差反応も試験した。 全般のアッセイ形式は実施例3において用いた形式と同じであり、次のプローブ 量を用いた二AE−ラベル化鎖−01pモル;非ラベル化プローブta−2pモ ル。 アッセイした標的核酸の量および結果を以下に示す:構造 非標的 (図8を参照) lo−2μg N、gon、 10−2μg N、men 対 照1 29.820 817 726 4 28.564 1302 683 5 15.540 1892 112716 90.000 1309 121 1これらデータは、ここで示される設計が完全アッセイ形式における少量の核酸 の検出において有用であることを示す。さらに、存意なラベル増幅が構造16に おいて示され、これは1つ(プローブ構造1.4および5にあるように)の代わ りに3つのAE−ラベル化鎖を含有する。非常によく相関しているN、’men ingitidisRNAとの交差反応は構造16に対して最小であり、アッセ イの操作温度を若干上昇させることにより(構造16にとって最適であるとして 選択された)、池の構造において見られる若干の交差反応を最小レベルへと減少 させることができるで標的核酸の検出に用いる分枝核酸プローブの別の配置を図 9A〜9Fにおいて図式的に示す。この配置は、プローブが3またはそれ以上の 核酸鎖からなる直前で述べた構造、例えば40,42.44として示した構造と 非常に類似しており、それらは2またはそれ以上の核酸連結点を形成するが、こ の場合は1またはそれ以上の連結点が標的核酸と共に形成され(例えば、図9A における1)、lまたはそれ以上の連結点は標的と結合しない(例えば、図9A 中の連結点2)が標的の存在下でのみ依然として形成される。アーム領域が標的 の存在下でのみ安定な二重鎖を形成する(標的の不在下でさえ安定な二重鎖を形 成するいくつかのアーム領域の可能性は後記する)かぎりは実質的に連結点のあ らゆる組み合わせが可能である。この性質を有する構造のいくつかの例を図9A 〜9Fに図式的に示す。 このような系を設計するためのガイドラインは、上記の配置に対するものと本質 的に同じである。各鎖の各領域の長さおよび配列の最も良い組み合わせは、最適 な組み合わせが達成されるまで様々な構造を試験することにより実験的に決定さ れるのが普通である。この配置の変化および利点は、図6により表される配置に ついて上で説明したものと本質的に同じである。 実施例5 図9に示す一般的構造の具体例を図10に示す。標的は慢性骨髄性白血病に関連 した主な遺伝的転座に対応する配列を有する合成りNA 60mer(T)であ る(以下の実施例6を参照)。プローブは3つの鎖からなり、それらのうち2つ は標的と3方向連結点を形成し、それらのうちの1つは他の2つと3方向連結点 を形成する。この第三の鎖は唯一のアーム領域を念冑し、それ自体上に記載した ように可能な普遍的検出オリコマ−である。1個のAEラベル化部位をこの実施 例で詳述するが、AEを他の領域にも置くことができる。 この系の能力を評価するために、DHおよびTm分析を実施例1に記載のように 以下の特定条件で行った:標的鎖−05pモル;非ラベル化プローブ鎖=2pモ ル、AE−ラベル化プローブ鎖=o、tpモル;示差加水分解は506Cで行っ た。 結果を次に示す。 これらデータは、AE−ラベル化鎖のAE加水分解に対する保護の欠如により明 示されるように本構造の2つの連結点が標的の存在下でのみ(操作温度で)形成 することを示す。これは標的鎖と接触さえしない鎖のハイブリダイゼーションが 完全に標的依存性である独特の状況である。これは、上記の普遍的検出オリゴマ ーの概念を明らかに示す。またこれは標的に応答して複数の連結点を形成する層 別の配置において、分枝核酸プローブを用いてキメラ核酸標的を検出することが できる。キメラ核酸は、各々か異なる供給源から生じているかまたは他の場合に はある種の方法において唯一である(例えば、キメラDNAは生物の集団の一部 においてのみ存在する)2またはそれ以上のセグメントからなる核酸である。 このようなキメラ標的の例は図11に図式的に示した遺伝子転座の産物である。 この場合において、1つの染色体セグメントは別の染色体上に転座(および相互 転座においては逆も)し、キメラDNA分子(これは結果としてキメラmRNA を生じるかまたは生じないかもしれない)を創製する。この型の転座は複数の区 切り点(一方または両方の染色体に関して)と共に発生することができ、結果と して複数のキメラDNAが得られる。図11Bは、染色体2上の3つの独立した 区切り点が染色体1上の1つの区切り点と再結合する場合を表す。 この種類のキメラ標的を多くの方法で検出することができ、その例を図11C〜 11Fに示す。方法l(図11C)は物理的な分離工程を必要とするサンドイッ チアッセイである。この方法は染色体1に特異的な捕捉プローブ(この捕捉プロ ーブは特異的な捕捉物質Cでラベルされており、この物質は溶液からプローブが 特異的に除去されるのを可能にする1例えば、Cはビオチンであってもよく、特 異的捕捉支持体はアビジンアガロースであってもよい)、および染色体2の3つ の異なる転座領域に特異的な3つの独立した検出オリゴマー(リポータ−基で各 々ラベルされている)を利用する。 方法2(図11D)は各転座産物に対して特異的なAE−ラベル化プローブを利 用する均一アッセイである(これは区切り点連結点を「架橋」するようにプロー ブを設計することにより行われる)。 方法3(図11Eおよび11F)は本発明の方法を利用するものであり、分枝核 酸構造を区切り点連結点の回りに形成する(この適用において、これより前の図 に示すものなどの他の構造が可能である)。鎖aは全ての転座産物に対して普遍 的であり、鎖d、fおよびhは対応する転座産物に特異的である。この具体例に おいて、鎖aはAE−ラベル化されている唯一の鎖である。この系はいくつかの 利点を有しており、以下の点が含まれる 均一であり、方法lにおいて必要とさ れる物理的分離工程を必要としない:AE保護のための普遍的配列を有しており 、各標的に対する均一の示差加水分解特性を導く:唯一のAE−ラベル化鎖を有 しており、慢雑さおよび費用を最小にしてバックグラウンドを低下させる;不正 対合(区切り点連結点領域において発生し得る)に対して方法2より感受性が低 い(実施例7を参照)。このような系を設計するためのガイドラインは上の図1 において説明した配置に対するものと本質的に同じである。 実施例6 図11に示す一般的配置の具体例を図12A〜12Cに示す。キメラ標的は染色 体9の定常abl領域と染色体22の変化に富む領域の間の3つの異なる遺伝子 転座に相同な合成り N Aオリゴマー(80mer)である。2つは慢性骨髄 性白血病(CML)と関連した最も普通の転座であり、1つは急性リンパ性白血 病(ALL)と関連している。各キメラ標的は同一のabl領域を自存するが、 染色体22由来の全ての領域は異なる。また、正常なabl遺伝子(両側の区切 り点4o塩基を架橋している)に対応する80merを合成した。 abl領域に対して特異的な1個のAE−ラベル化鎖を図12A〜12cに示す ように設計した。転座染色体22領域のうちの1つに特異的なプローブ領域なら びに普遍的検出オリゴマーのアーム領域に相捕的なアーム領域を含有するように 3つの異なる鎖を設計した。 実施例1に記載したプロトフールを用いて各々に対する示差加水分解速度および Tmを測定することにより、初めにこれら3設計の能力を評価したく標的−0゜ 5pモル;AE−ラベル化プローブfa−0,1pモル;非ラベル化フローフ鎖 −2pモル)。結果を以下に示す 1 18.3 0.636 28.8 71.52 18.4 0.640 2 8.8 −m−318,60,64029,1−−一 次に、適当な標的配列を検出する(不適当な標的配列とは反応しない)ための3 プロ一ブ混合物の能力を評価した。実施例4に記載したアッセイ形式を用いた( 標的20fmol ; AE−ラベル化プローブ鎖−0,1pモル、非ラヘル化 プローブ鎖−2Pモル)。結果を以下に示す(4重反応の平均)ニブローブ プ ローブ プローブ AE−ラベル化け的 混合物1 混合物2 混合物3 鎖の み1 202.187 1,354 1.265 8B92 2.950 16 7.614 1,343 1,1073 1.307 2,319 131.6 70 729正常なabl 1.491 1,248 1.094 886標的 なし 624 614 506 451プロ一ブ混合物は正しいキメラ標的のみ を検出し、他の2つのキメラ標的または正常なabl配列のどちらとも有意に交 差反応せず、これによりキメラ核酸標的を検出するためのこの配置の有用性およ び複数標的を検出するための1個のAE−ラベル化プローブ鎖の使用が示される 。 不正対合プローブ 別の配置において、相関しているが非同−な配列を有する様々な標的を分枝核酸 プローブを用いて検出する。通常、特定の標的を検出して、非常に相関している 標的と交差反応しないようにDNAプローブに基づくアッセイを設計する。実際 、1つほど少ない不正対合に感受性であろうアッセイを開発するために多大な努 力がはられれている。しかし、アッセイが不正対合に対して比較的非感受性であ る必要がある場合が存在する。そのような場合の例は、有意なゲノム変化を示す HIVなどのウィルスの検出である。 実施例7 上記の一般的構造の具体例を図13に示す。正確な標的鎖はHIV−1における gag遺伝子の領域に対応する配列を有する合成りNAオリゴマー78塩基長で ある。また、図13に示すように様々な不正対合を含有するように別の合成78 IIlerを構築した(これら配列は単離および配列決定されている様々なHI V鎖に対応する)。同一のプローブ領域を有するが異なるアーム領域を有する2 つの分枝核酸構造(図14を参照)を評価した。操作温度で非常に安定になるよ うにプローブ領域を設計し、このようにして標的と共に一旦形成された分枝核酸 構造の全体の安定性を上昇させた。アーム領域により加えられる(ハイブリダイ ズしたなら)安定性を含む各領域の安定性は、不正対合により起こされる他の領 域における安定性損失に対する緩衝剤としてはたらき、ゆえに不正対合に対する 全体構造の感受性を減少させる。上記実施例1に記載したように全てのオリゴマ ーを合成してAE−ラベル化した。 これら設計の示差加水分解比およびTmを、上記実施例1で示した一般的プロト フールを用いて以下の特定条件で測定した。標的−o、spモル、AE−ラベル 化鎖−0.1Pモル:非うベル化プローブ鎖−2pモル;ハイブリダイゼ−ンヨ ンおよび対応するDH比分析は3つの異なる温度で行った(60,55または5 0°C9以下を参照)。結果は以下の通りである。 1 1 1 060 4.3 0.56 7.7 −2 10.2 0.82 12.4 −1&2 7.4 0.75 9.8 −1 1 0 eo 5.9 0.77 7.7 952 3 7.7 0.77 10 593 4 6. 1 0.77 7.8 6546 10.0 0.7713 6 1 1 055 +6.5 1.1 15 B52 3 13.9 1.1 1 2.6 793 4 13.6 1.1 12.4 854 6 9.8 1. 1 8.9 571 1 0 50 30.3 1,7 17.8 912 3 41.6 1.7 24.5 763 4 32.2 1.7 18.9 8 74 6 17.8 1,7 10.5 82To+(’C) 2 + 1 0 60 10.3 0.87 11.8 742 9.8 1. 5 6.5 71 1&2 9.9 0.58 17 702且 1&2 1 0 60 9.3 0.66 14.12 3 9.6 0.66 14.6 3 4 9.5 0.86’14.4 4 6 7.2 0.66 10.9 *−不正対合の数。十−D Hm度(°C)。9−独立した実験。 これら結果は、分枝核酸プローブがほんどまたは全(能力特性に効果を与えずに 3および4不正対合を許容することができ、能力特性におけるほんの小さな減少 と共に6不正対合を許容することができることを示す。ゆえに、分枝核酸プロー ブを不正対合に対する相対的非感受性を必要とするアッセイ形式において用いる ことができる。さらに、これらデータは再びプローブ設計当たりに複数AEを含 ませる(すなわち、ラベル増幅)能力を示す。 実施例4に記載のように完全形式アッセイにおいて完全に対合した標的(標的1 )の減少量を検出することによりさらに構造2を評価した(鎖1および2AEラ ベル化、0.1pモルの6鎖を用い;標的濃度は以下に示す)。結果は以下の通 りである: これらデータはここで示した分枝核酸プローブか完全形式アッセイにおいて少量 の標的核酸を検出し得ることを示す。 分枝二重鎖の検出 分枝核酸プローブの相捕的アーム領域間の二重鎖の標的依存的形成を、上記のA E−ラベル/示差加水分解法以外の方法を用いて検出することができる。さらに 、この示差二重鎖形成は標的依存性の多種多様の生物学的または化学的性質を生 じさせることができる。図1に記載の2鎖分技核酸プローブをモデルとして用い て、検出の別の様式を含むこれら性質のいくつかの例について議論するであろう 。しかし、問題のアーム領域が標的の存在下でのみ安定な二重鎖を形成するとい う基本的基準を満たすかぎりは、これら性質がかなり多数の異なる分枝核酸プロ ーブ配置に適用できることは容易に認識されるであろう。 実施例8 制限エンドヌクレアーゼ切断1つの系(図15A)において、アーム 領域二重鎖形成は、標的鎖から除去される活性な(二本鎖)制限酵素切断部位( R)を創製する。制限エンドヌクレアーゼによるこの部位での切断を様々な方法 で検出することができる。例えば、一方または両方の鎖を3印でラベルすること ができ、ゲル電気泳動または他の分離法を用いて切断産物を検出することができ る。また、一方または両方の鎖を捕捉物質(ビオチンなど)を用いて切断部位の 一方の側止でラベルすることができ、切断部位の他方の側をリポータ−基(例え ば、”P、AE)でラベルすることができる。切断後に、鎖を捕捉しく例えばア ビジンアガロースで)、捕捉支持体と結合したリポータ−基はいかなる切断も示 さないが、上清と結合したリポータ−基は切断を示す。または、非切断鎖と反応 するが切断された鎖とは反応しないように検出プローブを設計することができる 。これは均一または分離アッセイにおいて行うことができる(均一形式を図15 Bに示す)。この系の1つの具体的な側面において、切断部位をアーム領域二重 鎖の基部に近く(すなわち、連結点適(の部分)なるように設計する。制限ヌク レアーゼによる切断により、アーム領域は3方向分技核酸構造からほとんど完全 に除去され、このようにして全体構造の安定性を低下させる。プローブ領域か無 傷のアーム二重鎖の存在下でのみ安定であるよう設計される場合には、切断が起 こったならプローブ領域は標的から融解するであろう。 次いでこれは非切断プローブ鎖を標的とハイブリダイズさせ、工程を再び開始さ せ、このようにして1個の標的部位を通して複数のプローブを循環させることに よりアッセイの感受性を上昇させる。 (以下、余白) 実施例9 DNA/RNAポリメラーゼ伸長別の系(図150)において、ポリ ラーゼによる伸長のための部位を創製するようにアーム領域を設計する。比較的 短い鎖を最初に3!Pラベル化し、次いであらゆる伸長プライマー鎖をゲル電気 泳動または他の分離法を用いて検出することにより、この充填領域を検出するこ とかできる。示差加水分解形式にお(1て伸長産物に特異的なAE−ラベル化プ ローブを用いて充填配列を検出することができる。制限部位がアーム領域二重鎖 の基部近くに含有されるときには、この系も上記のように循環に対する可能性を 有する。 実施例10 増幅 別の系(図15D)において、ポリメラーゼによる充填は活性なT7 RNAプ ロモータ一部位を創製する。充填に続いて、T7 RNAポリメラーゼは鋳型鎖 の複数コピーを転写し、これは検出可能な産物の増幅、ゆえにアツセイ感受性の 上昇をもたらすであろう。これら鎖を例えば放射ラベル化リボヌクレオチドの導 入および続(分離(例えば沈殿による)によるかまたは相補的AE−ラベル化プ ローブの示差加水分解により検出することができる。制限部位がアーム領域二重 鎖の基部近くに含有されるときには、この系も上記のように循環に対する可能性 を何する。RNA転写体を、例えばAE−ラベル化プローブを用いて検出する。 実施例11 選択的分解 剖の系(図15E)において、一方のアーム領域はDNAであり他方のアーム領 域(またはその一部)はRNAである。アーム二重鎖の形成は活性なRNA5e H切断部位を創製する。RNA5eHによる切断は系1につ(\て上で説明した ように検出することができる。またこの系は上記のような循環の可能性を有する 。 実施例12 化学的切断 別の系(図15F)において、二本鎖核酸に特異的な化学的切断物質(X、例え ばFe−EDTAまたはCu・フェナントロリン)をプローブ鎖のうちの1つの アーム領域に結合する。アーム領域二重鎖か形成する場合には、直ぐ近くの核酸 の切断が起こる(切断型は化学的切断物質および正確な位置および接着化学に依 存している)。この切断を上記のように検出することができる。この系も上記の ような循環の可能性を有する。 一本鎖核酸と二本鎖核酸を識別するあらゆる他の系、例えば二本鎖核酸に対する 特異的モノクローナル抗体は、上で一般的に述べた配置に対して潜在的に適用可 能である。 実施例13 図15Aで示す系の具体例を図16に示す。この構造は、AEラベルが含まれな いことを除いて図2で示したものと同じである。BstEII制限エンドヌクレ アーゼ部位を示されるアーム領域中に工作する。アーム領域上標的核酸の切断を 分析するために、プローブの鎖2を通常のキナージング(kinasing)プ ロトコールを用いて最初に3MPでラベルした。次いで、プローブを以下の条件 を用いて標的とハイブリダイズした:ハイブリアド:1P−ラベル化鎖2(0, 6pモル);If(15pモル);標的鎖(3pモル)。対照:標的を除いてノ \イブリッドと同じである。 酵素活性の対照として、鎖2士正確に相捕的なりNA標的鎖を評価した。これら 対照は線状−ハイブリッドおよび線状一対照と称するであろう。用いた量は上記 と同じであったC=P−ラベル化鎖2(0,6pモル):士標的鎖(3pモル) )。これらアニーリング反応物を60μlの50mMTris緩衝i&(pH7 ,9;25°Cで)、500+nM NaC1中、60°Cで60分間インキュ ベートした。次いで、各アニーリング反応物の一部を次の条件下、BstEll で消化した。10μlの上記の各反応物を50mM Tris緩衝液(pH7, 9;25°Cで)、100mM NaCl、10a+M MgC1,,1mMD TTの最終条件て100μlに希釈した。B st E I l(New En glandBiolabs)の10.5.1または02単位のいずれかと共にサ ンプルを60℃で60分間インキュベートした。次いて反応液の一部を通常のポ リアクリルアミドゲル電気泳動(20%ケル、500V、15+nA、25時間 )を用いて分析した。 次いて、ゲルの通常のオートラジオグラムを行った。 結果を図17に示し、BstEIIの10および5単位でのアーム領域二重鎖の 標的依存的切断を示す。さらに、アーム領域の配列は標的配列と独立しているか ら、この制限部位は所望とされる部位のいずれてあってもよい。この様式におい て、制限酵素の使用は分析すべき標的における正しい認識配列の発見に依存しな いであろう。 図15Bおよび15Gで示す系の具体例を図18に示す。この構造は鋳型鎖(鎖 1)およびプライマー鎖(鎖2)を含有する。鋳型鎖はその5′末端に検出配列 を含有し、また検出配列の3′にT7プロモータ一部位を含有する(図18を参 照)。 標的に対する両鏡のハイブリダイゼーションにより、アーム領域は安定な二重鎖 を形成し、鎖2の3゛末端はポリメラーゼ酵素に対する活性なプライマー伸長部 位になる。酵素は相補体を鋳型鎖に充填し、次いでこれは変成されて図18に示 すように、AE−ラベル化検出オリゴマーを用いて検出される。また、ポリメラ ーゼによる充填は、活性な(二本鎖)T7プロモーター領域を同じ検出配列鋳型 領域と共に創製する。次いでT7 RNAポリメラーゼ酵素は複数のRNAコピ ーを鋳型から転写することができ、これもAE−ラベル化検出オリゴマーを用い て検出される。 プローブは、鎖1 (0,3pモル)、鎖2(0,9pモル)および標的鎖(0 ,1pモル)を50mM Tris緩衝液(pH7,9;25°Cで)、0.5 M NaC1(最終審M10ttl)中、60°Cで60分間インキュベートす ることにより標的鎖と最初にハイブリダイズしたく対照サンプルは標的を含まな かった)。次いで、このサンプルを50μmに希釈し、以下の条件下でDNAポ リメラーゼによる伸長に供した:20mMT ris緩#I液(pH7,9,2 56Cで)、0.15M NaC1,3mM Mg5O,,1%TX−100, 1mM DTT、2mM dATP、2OM dTTP、2mM dGTP。 2mMdCTPおよび4単位のTaqボリメラーセ(Cetus Corp、) o反応物を60℃で1時間インキュベートした。次いで5μm等量のサンプルを 25μlの6%ラウリル硫酸リチウム、60mMリン酸ナトリウム緩衝液(pH 6,8)、2mMEDTAおよび2mMEGTAおよび2Oμmの水と共に混合 した。このサンプルを95°Cで5分間インキュベートし、60°Cまたはそれ 以下に冷却し、次いで50μlの200mMコハク酸リチウム緩衝液(pH5, 2)、17%ラウリル硫酸リチウム、2mM EDTA、2+nM EGTAお よびAE−ラベル化検出オリゴマー(0,1pモル)と混合した。この反応混合 物を60℃で60分間インキュベートした。次に、5%トリトンx−ioo洗浄 剤を含む300μlの015M5Mボウトリウム緩衝液(pH7,6)を加え、 サンプルを60℃で10分間インキュベートした。化学発光をルミノメータ−( LEADERl、 Gen−Probe、 C^)において、200111の1 mMHNO,,0,1%H,O,、次いで2ooμlのIN NaOH,2%Z wittergentの自動注入、次いで2秒間のシグナルの計測により測定し た。 T7ポリメラーゼによる転写のために、5μmの伸長混合物を45μlの転写混 合物に加えて最終条件が次のようになるようにした・40mM Tris緩衝i &(pH7,9;25℃で)、6 mM M g Cl v、2mMスペルミジ ン、10mM DTT、2゜5mM ccTP、2.5sM rUTP、2.5 mM rATP、6.5mM rGTPおよび400単位のT7 RNAポリメ ラーゼ(United 5taLes Bioche+oical Corpo ration)。このサンプルの5μm等量を、上記のようなAE−ラベル化検 出オリゴマーを用いてアッセイした。以下の結果が得られた:Taqポリメラー ゼ ?4,125 1.083T7 RNAボリメラーセ 641,753 9 7.218これらデータは、TaqポリメラーゼおよびT7 RNAポリメラー ゼに対する部位を標的領域とは独立して創製することができるが、これら部位の 活性は標的に対するハイブリダイゼーションにより変調されることを示す。 害旌凹上五 図6Eに示す一般的配置の具体例を図21に示す。この標的鎖は合成38a+e rオリゴマーでありニブローブ鎖は示したように標的鎖と4方向連結点を形成す る。 上記の実施例1に記載のように全てのオリゴマーを合成した。図22A〜221 に示される構造(構造の様々な図式的表示は図21に示す)のハイブリダイゼー ション特性を実施例1に記載のDH分析プロトコールを用いて評価し、全ての操 作を50°Cで行った。用いた異なる鎖の量は常に同じ(全ての鎖を用いない場 合でさえ)であって次の通りである二標的鎖−15pモル;鎖1−0.1pモル ;鎖2−6.5pモル、鎖3−1.0Pモル。以下の結果が得られた:構造 加 水分解 (図の番号) 半減期(分) 22A 37.0 22B 0.54 22C1,7 22D 0.72 22E 0.69 22F 0.60 これらデータは、AEが標的の不在下でエステル加水分解から保護されないが標 的(および池のプローブ鎖)の存在下でエステル加水分解から保護されることを 示す。この具体例において、プローブ鎖1および2のアーム領域の間に安定な二 重鎖を形成するために4つ全ての鎖が存在しなければならない。 標的非依存的プローブ増幅 別の配置において、相捕的アーム領域間に形成される二重鎖のい(つかは標的と は独立して形成される(このような二重鎖の少なくとも1つが標的の存在下での み形成されるかぎりは)。この配置のい(つかの例を図19A〜19Bに示す。 AEまたは別のラベルを分枝核酸構造の「ネットワーク」の複数領域に置くこと ができるから、この配置の有用性の1つはラベル増幅である。さらに、AEがラ ベルである場合に、この配置はあらゆる所望の標的部位のために用い得るであろ う普遍的検出複合体を可能にする。2つ(またはそれ以上)のプローブ領域が標 的とハイブリダイズするときにこの構造は標的分子と結合するようになり、この ようにして「アンカーシ連結点を安定化させる(図19Aおよび19Bに示すよ うに)。 次いで、この結合されたラベル増幅ネットワークををする標的を、いくつかの不 均一法(例えば、サンドイッチアッセイ、標的核酸のヒドロキシアパタイト捕捉 )により非結合性ネットワークから分離しなければならないのが普通であろう。 標的と共に形成される連結点の数は非限定的であることができ(ハイブリダイズ されたプローブが溶液から沈殿しないかぎりは少なくとも5、またはさらには1 ゜まで、そしてプローブの大きさに依存して、数千であることができる)、標的 に対するハイブリダイゼーションの前または後にプローブと結合するかもしれな い検出ネットワークの形成も同様である。 上記の配置の1つの場合において、全ての連結点は標的非依存的様式で形成する ことができるであろう。この配置のいくつかの例を図20A〜20Cに示す。 これはネットワークを創製するための分枝核酸構造を用いてラベル増幅を可能に し、これにより標的部位当たり複数ラベルの導入が可能になるであろう。標的鎖 と核酸連結点を形成するプローブ(この連結点は全連結点が標的の不在下で形成 し得ないという意味において標的依存的であるが、結合アーム領域間に形成され る二重鎖は標的非依存的であってそれらは標的の不在下でさえ形成する)、また は標的鎖と核酸連結点を形成しないプローブと共にこの方法を用いることができ る。 治療的プローブ 核酸標的の検出および計量に加えて、本明細書中で開示する分枝核酸プローブ配 置を様々な治療的応用において用いることもできる。例えば、図15に示す一般 的配置である系3は、プローブ領域を例えば感染生物、または特定の癌細胞に特 異的であるよう設計し、アーム領域を生物学的に活性な分子をコードするよう設 計することにより用いることができるであろう。このプローブは標的部位とハイ ブリダイズし、鋳型鎖は内因性ポリメラーゼにより充填され(この工程は不必要 であるかもしれない)、活性なコード化領域をもたらし、次いでこれは生物学的 に活性な分子、例えば必須の転写または躬訳囚子の阻害物質、生物または細胞に 毒性であるペプチドまたは他の小分子、または細胞を免疫系による除去に対して 感受性にする抗原を生じる(再び内因性活性により)であろう。 また、アーム領域は二本鎖RNA領域を標的依存的様式で形成するかもしれない が、これは次いでインターフェロン活性を刺激する。別の例として、標的路(少 な(とも)が内因性リシルベース酵素により切断されるような部位を形成するよ うに標的核酸と共に形成される連結点を設計することができる。このプローブは 、この切断が生物または細胞に対して致命的となるであろう部位を標的とするで あろう。 別の例として、内因性ヌクレアーゼに対する認識部位を創製してもよく、該ヌク レアーゼはこの認識部位に結合するが標的鏡上の末端部位で切断し、この切断に より生物または細胞の死を導く。また、アーム領域二重鎖は必須の内因性調節タ ンパク質の結合に対して競合するかまたは配列特異的な様式で必須の調節複合体 の組み立てに干渉する認識部位を創製するであろう。さらに、標的核酸の必須領 域と安定な分岐点を形成するようにプローブの様々な組み合わせを設計すること ができ、このようにして配列特異的なプロセシング因子の結合を阻害し、それに より複製を阻害するであろう。 他の態様は以下の請求の範囲内にある。 Flgure IA Flgure IB Flgure IC FIgure IE Figure 2D Figure 4A 門gure 4B ハイブリッド1 対照1 Flgure 6^ Flgure 6B 半減期(分) +、JLJL 18.19 0.53 34.3 66.52、−IL’L 6 .10 0.70 B、7 66.33、」閑L 22.32 0.55 40 .6 66.14、ヨUL 9.41 0.56 16.8 68J5JUヒ 7.67 0.72 10.7 67.86、」Uヒ 8.75’ 0.73 12.0 −7、−1■L 10.02 0.56 17.9 67.98、ニ ロし 8.44 0.72 11.37 69.39、ff1LIL 8.83 0.75 o、s 64.513、JLJI−7,370,6211,9−− −+4.JIJL 6.76 0.60 11.3 −15、」LIL 7.5 1 0.58 12.9 62.216−1LJL 5.79 0.73 7, 9 62.017、コじ団 5,21 0.62 8.4 61.618、−ヨ 閑ヒー 6.36 0.64 9.9 61.41−結合部位 特表千7−503139 (22) Flgure 15A Figure 16 為J Figure21 フロントページの続き (51) Int、 C1,’ 識別記号 庁内整理番号Cl2R1:36) (72)発明者 ネルソン、ノーマン・チャールズアメリカ合衆国92111カ リフォルニア、サン・ディエゴ、マーレスタ・ドライブ3639番 I (72)発明者 ベツベルコフ、ロバートアメリカ合衆国92007カリフオル ニア、カーディフ・パイ・ザ・シー、ノルベイ・ストリート950番 Layer Planes Figures IA-IF, 4A-4B, 6A-6H, 9A-9F and IIA-IIF are schematic diagrammatic representations of the probes of the present invention (the short lines between the probes in each figure are Figures 2A-2E and 3A-3B, 5A-5G, 7 and 8.10 and 12A-12C are FIGS. 13 and 14 are specific examples of mismatched probes; FIGS. 15A-15F are specific examples of probes shown in FIGS. A diagrammatic representation of various detection systems that are useful: Figure 16 This is a specific example of a probe that can be detected by donuclease treatment. Figure 17 is an autoradiogram of a test using the probe shown in Figure 16; Figure 18 is a specific example of a probe detectable by enzymatic amplification; and 19B1 and 20A-20C are schematic representations of target-independent probe amplification systems. FIG. 21 is a diagrammatic representation of three probes creating a four-way connection point; and FIGS. 2A-22+ are diagrammatic representations of various embodiments of the probes shown in FIG. Ru. Probes Referring to Figures IA and IB, one example of a probe of the invention is shown, which illustrates the general structure of each probe of the invention. The probe shown is a hybrid It is formed from two independent strands 10.12, each carrying a target-specific region 14.16 that is capable of hybridizing to a target nucleic acid 15 under isostatic conditions. Also, each chain Arrays that normally hybridize together to form arms 22 only in the presence of a target nucleic acid. 18.20. When the arms are formed in this way, a connection point 21 between the arms and the hybridized target region is also formed. The arm region and the target-specific region are hybridize to target nucleic acids and to each other in their arm regions. Hybridization of the target-specific region to the target nucleic acid is called hybridization. can be designed to be observed under observation conditions. Accordingly, as generally explained above, the nucleic acid hybridase-7 molecules of the present invention The probe creates a branched nucleic acid structure (i.e., extends directly from the target nucleic acid) by interacting with and hybridizing to the target nucleic acid. a structure having at least one arm that does not bridle). The probe is designed so that the formation of this branched structure is target-dependent. Detection of branch formation is thus a measurement of the presence and amount (if detection or quantitative) of a target nucleic acid in a sample. One or more branches can be formed, but only one branch is must be formed in a dependent manner. The probe can be a single stranded nucleic acid or wL several strands. Additionally, the strand (or strands) may be DNA, modified DNA5RNA, modified RNA, or various combinations thereof. “Modified DNA or RNA refers to any nucleic acid structure that differs from naturally occurring DNA or RNA molecules, such as modified bases (e.g. syn) or modified internucleotide linkages (e.g., phosphorothioate or methyl phosphonate). The probe is the target nucleus at least two independent regions that hybridize specifically with the acid, and at least two regions that are complementary to each other and form a stable duplex only in the presence of the target. must have a hybridizing region (i.e., a region that does not hybridize with the target). No. Because these complementary arm regions hybridize only in the presence of the target nucleic acid, this jetting of duplex regions is the preferred method for assaying for the presence of the target nucleic acid. There are numerous methods for detecting hybridization of branched nucleic acid probes and targets. Examples of detection of branched nucleic acids include junction-specific cleavage with lysyl-based enzymes (e.g., to detect cleavage of labeled probe strands), DNA5e footprinting, gel retardation assays, and labeled junction-specific insertion compounds. binding (target is captured) the presence of the label is detected). Although purified four-way linkage point-truncated lysyl bases are well known in the art, three-way linkage point-cleaving enzymes and other linkage point-specific enzymes can be used, e.g., to cleave the desired three-way linkage point. It can be easily purified by biochemically purifying an enzyme that exhibits cleavage activity. An example of detecting duplexes formed between complementary arm regions includes the DNA5e fragment. 31 nuclease digestion (labeling the arm region: not digested by nuclease S1 if the arm forms a duplex; Restriction endonuclease cleavage of the site created by duplex formation between the complementary arm regions (which would otherwise be digested by nuclease S1), thermal stabilization of the bound duplex following capture of the target nucleic acid. analysis (using labeled probe strands: complete) A fully branched nucleic acid structure will have higher thermal stability than any partial formation and will If no branching occurs, a different signal will be associated with the captured target nucleic acid than if a branch was formed. Also, the juxtaposition of two collaborative labels on opposing probe arms can be detected. More generally, one skilled in the art will readily recognize that any method that detects the formation of branched DNA or complementary arm duplex formation can be used in this method to indicate the presence of the target. . A preferred method of detection is the use of the hybridization protection assay (HPA) as disclosed by Arnold et al. [35C11n, Chem, 1588 (1989)]. This method uses a chemiluminescent acridinium ester (AE) label covalently attached to a synthetic oligonucleotide probe. This assay format is completely homogeneous (i.e., does not require any physical separation steps) and is based on chemical hydrolysis of the ester bond of the AE molecule, the cleavage of which permanently renders the AE non-chemiluminescent. do. Hydrolysis of this ester bond is fast for unhybridized AE-labeled probes (AE-probes), but for hybridized Slower conditions have been developed for AE-probes that have been moved. Therefore, after hybridization of the AE-probe and its complementary nucleic acid (under conditions that do not promote ester hydrolysis), reaction conditions can be adjusted to remove unhybridized AE-probe. The chemiluminescence associated with hybridized AE-propylene rapidly decreases to low levels, but Chemiluminescence associated with the lobes should be minimally affected. This differential hydration After the decoupling step, any residual chemiluminescence is a direct measure of the amount of duplexes formed. Ru. or more AE labels to one or more nucleic acid strands of the probe. and assayed for duplex formation using the differential hydrolysis method described above. Therefore, this assay method is used in the present invention. Two-component Probes One arrangement of branched nucleic acid probes used for detection of target nucleic acids is shown schematically in Figures IA and IB. In this configuration, the probe consists of two independent nucleic acid strands. These strands are preferably synthetic oligonucleotides. Each strand connects to the target nucleic acid. It holds the probe region and arm region that hybridize. The two arm regions are complementary to each other (this means that they are not completely complementary to each other). This does not necessarily mean that they are perfectly complementary, as they may have some conjugation, but it does mean that a stable duplex will be formed under hybridization conditions). The melting temperature, Tm, of the bound duplex in the absence of target is adjusted so that little or no hybridization of the arm regions occurs in the absence of target nucleic acid. lower than the operating temperature, preferably 4°C (more preferably 7°C or 10'C) These arm regions are designed so that The Tm is defined as the temperature at which 50% of a given nucleic acid duplex has melted (ie, become -channeled). Tm depends on ambient conditions such as the cation concentration of the solution. The desired Tm is typically achieved by manipulation of the length and nucleotide base composition of the complementary regions. Also, incorporation of mismatches, substitution of inosine for some or all of the guanosine residues, e.g. Other methods can be used to adjust the Tm of the duplex, including, but not limited to, modification of the phosphate backbone with sphorothioate internucleotide linkages. HPA type When the formula is used at 6°C, the preferred length of the fully complementary, unmodified arm region is about 8-20 contiguous bases (depending on base composition and sequence). other surrounding strips conditions may lead to a range of different magnitudes; this is easily measured empirically. It will be done. Upon contacting the probe with a solution containing the target nucleic acid, the probe regions of the two strands will hybridize to their respective target regions, usually in close proximity to each other (they are directly connected to each other), as shown in Figure 1. They do not need to be in contact, see below). this When this occurs, the arm regions of the two probe strands are forced into close proximity to each other, thus increasing the stability forces of the bound duplex. arms form a double strand so that the Tm of the duplex formed in the presence of target is approximately equivalent or The arm region is designed to be above the operating temperature of the assay, preferably 4°C (more preferably 7°C or 10°C) above the operating temperature. As indicated above, when using the HPA format at 60°C, the preferred length of the arm is about 8 to 2 o contiguous complementary bases (depending on base composition and sequence). Two independent stranded probe regions can be designed in a variety of ways. For example, these regions can be designed similarly to the arm regions, but in this case the Tm of either region alone (i.e., one probe strand + target strand) is lower than the operating temperature. However, when both probe strands and target strands are present and the arm regions hybridize, the temperature is higher than the operating temperature. Also, the Tm of both probe regions is higher than the operating temperature. They can be designed such that one Tl is higher than the operating temperature and one Tm is lower. The design is selected Whatever is chosen, the requirement that the arm regions form a stable duplex only in the presence of the target must be met. The probe region is preferably 8-5o nucleotides. The length is preferably between 8 and 30 nucleotides, more preferably between 8 and 30 nucleotides in length. These regions may be longer, but this additional length is not necessary for most applications. Furthermore, the synthesis of these longer oligomers is more expensive and time consuming than shorter oligomers. One or both probe sequences are reacted with the desired target nucleic acid, preferably any The target nucleic acid is selected so that it does not react (ie, cross-react) with undesired target nucleic acids. If one probe region hybridizes to the undesired target while the other probe region hybridizes to the undesired target, If not, both probe sets are required for the arm region to hybridize. The assay will still function properly since the components must hybridize. When using the HPΔ format, it is common to place the AE label in the arm region of the probe. In the absence of target, this region will be single-stranded and the AE will be susceptible to rapid ester hydrolysis. In the presence of target, this region will become double-stranded and the AE will undergo V4XJ from ester hydrolysis. AE labels can be placed in one strand, the other strand, or both channels (this allows for signal and and lead to increased assay sensitivity). Multiple labels can be placed within each tract, which further improves assay sensitivity. Also, place the AE label on one side of the probe area. or the other (or both). Also, multiple labels could be used in this arrangement. Furthermore, any set of arrangements described above AE could be used in combination. To detect target nucleic acids in a sample using the branched nucleic acid probes described above in the HPA format, the following general method is used. 1) Add the branched nucleic acid probe to the sample, 2) Incubate to cause annealing of the appropriate regions, and 3) Add the branched nucleic acid probe to the sample. Add drug to perform differential hydrolysis of the AE label, and 4) remove any markers present. Any residual chemiluminescence is detected as an indication of the presence or amount of target nucleic acid. Annie Ring conditions can be varied depending on the exact application, the design of the probe, the nature of the target nucleic acid, and the composition of the sample containing the target. However, the above Tm is required. Conditions must be selected to meet the requirements. I-I P A format For this purpose, the incubation temperature is preferably between 5 and 70°C, more preferably between 30 and 65°C, and the pH of the annealing step is preferably between 4.5 and 8.5, most preferably between 4. .5 to 5.5 (although higher stability of AE during the annealing step is achieved at relatively low pH ranges, Hammond et al. [6J, Biolum, and exist) . The concentration of the -valent salt counterion is preferably between 50 and 1000 mM, more preferably Preferably between 200 and 800mM. This prevents the AE from agglomerating and sticking to the walls of test tubes and pipette tips), preferably at a concentration of 0.1-10% (w/v), more preferably 1-10%. is preferred. Alternative Annealins Leading to Desired Hybridization Characteristics One of ordinary skill in the art will appreciate that conditions that can be used in the present invention may also be used in the present invention. Specific examples are provided below, but are not a limitation of the invention. Many modifications possible An example is provided in Figure IC-IF, where various loops (labeled L) are shown in the arms, target nucleic acids or junctions, as will be understood by those skilled in the art. Waterway nucleic acids (labeled S) may also be present (e.g., (for later duplex functions) with more probes such as A specific example of the general arrangement shown in FIG. 1 is shown in FIG. The target strand is a synthetic NA oligomer 43 bases in length with a sequence corresponding to the region of the 23S liposomal RNA (rRNA) subunit of Mycob acterium tuberculosis. The two strands of the branched nucleic acid probe are the target strand and the target strand, as shown in Figure 2A. Together they form a three-way connection point. As shown, one AE is covalently linked between the T and A residues of chain 1. Oligonucleotides were synthesized on a Biosearch Model 8750 or ABh 3 80^ DNA synthesizer using conventional phosphoramidite solid-phase chemistry [Caruther et al. Using polyacrylamide gel electrophoresis and purified. Chain 1 was converted into an AE label as previously disclosed by Arnold and Nelson [PCT Publication No. 108 9102896 (published April 6, 1989)]. It rang. The following annealing reaction was carried out in 30 μl of O, 1M lithium succinate buffer (pH 5). 2), 2mM EDTA, 2mM EGTA and 10% (w/v) lithium lauryl sulfate at 60'C for 1 hour. Hybrid-target strand (0,5p moiety) ), probe strand 1 (AE larabelled strand) (0,0!1 mol) and probe strand 2 (2,5 p mol). Control 1 - probe strand 1 (0,05 pmol) and probe strand 2 (2,5 pmol). Control 2 - Probe strand 1 (0.05 pmol). reagent bran - No target or probe. To show that the arm region hybridizes only in the presence of target, The half-life of AE hydrolysis for each reaction described above was determined using a previously disclosed protocol [Arnold et al., 35 C11n Chem, 1588 (19g9)]. The following results were obtained: Control 1: 054 min Control 2: 051 min These data indicate that either AE or target is not protected from ester hydrolysis in the absence of (Compare Control 2) was shown to be protected from hydrolysis in the presence of the target (hybrid), thereby indicating that the arm region is protected from hydrolysis only in the presence of the target nucleic acid. It shows that Ibridize is the best. This is done by measuring the Tm of various configurations, which are represented schematically in Figure 2B. The system was further evaluated. Tm was measured according to the following protocol. 1. After annealing as above, the sample to be analyzed was diluted in 0.1M lithium phosphate buffer (pH 5,2), 2mM EDTA, 2mM EGTA, 10% (W/V) lithium lauryl sulfate to 100 μm. Approximately 100,000 phases per Relative light units (RLU; this is the chemiluminescent unit used in these protocols; see Arnold et al. E35 C11n Chcm-1588 (1989)). 2. Pipette 100 μm aliquots into 12×75+am assay tubes. Each sample to be analyzed was run for 7 minutes at each of the following 4 degrees: 56°C and below for oligomers with a Tm of 40, 43.46.49.52.55. Incubate at 58 and 62°C and 50.53.56.59.62.65.68 and 71°C for oricomers with Tm higher than 56°C. Ta. After incubation, each test tube was placed in a water bath. 3. After all incubations are complete, remove all test tubes from the water bath and 300 μl of 0.15 M sodium tetraborate buffer (pH 7.6) and 5% (V/v) Triton X-100 were added to each well and mixed by vortexing. All tubes were incubated at 40°C for 20 minutes for oligomers with Tm below 56°C and for 15 minutes at 50°C for oligomers with Ta above 56°C. The test tube was placed on ice for 30 seconds and then placed at room temperature (20-25°C). 4. Chemiluminescence was measured in a luminometer (LEADERl, Gen-Probe, CA) by automatic injection of 20 μm of 0°1% H,O,,1N NaOH, followed by 5 s. It was measured by measuring the signal between. Before measuring chemiluminescence, place the test tube in a damp container. Plotted with a cloth or paper towel. 5. Subtract the control value from each corresponding hybrid value and use the resulting data for chemical development. Plotted as light versus temperature. Let Tm be the temperature at which 50% of maximum chemiluminescence is lost. This was determined based on the graph. The temperature range and exact temperature interval used can vary with the exact nature of the AE-oligomer being characterized. The following Tms were obtained: Structure 1 (Figure 28) Ta+ = 62°C Structure 2 (Figure 20) Tm = 50° °C (hydration (the operating temperature used above in the kinetics measurements) and a Tl11 higher than 60°C in the presence of target. The various structures of Ta shown in Figures 2B-2E were prepared in 8mM lithium succinate buffer (pH 5,5), 100mM NaCl, 10mM MgCL and 10+aM Tris-HCI (this reagent was the dilution reagent in step 1 of the above protocol). Niyo This system was further characterized by measurements in the 2000 µm (2000 µm). The following T m were obtained: Structure 1 (Figure 28) Tm = 59°C Structure 2 (Figure 2C) Tm = 47°C Structure 3 (Figure 2D) Tm = 47°C Structure 4 (Figure 2E) Tm = 45 For the individual designs at °, not only is the Tm of the arm region much lower in the absence of target than in the presence of target, but the duplex region formed between the target and probe regions is a complete arm duplex. more stable in the absence of a fully-armed duplex (see Figure 2) than in the presence of strands. Qualitativeness is low. This indicates that the branched nucleic acids of the present invention can be used to manipulate the Tm of nucleic acid duplexes. Other possible arrangements for the acridinium ester label position or the use of restriction enzymes for duplex detection are shown in Figures 2B-2E. (Hereinafter, blank spaces) Example 2 Another example of the general structure shown in FIG. 1 is shown in FIGS. 3A and 3B. In this design, all oligomers were synthesized as described in Example above, where liposomal RNA (rRNA) derived from Nelsseria gonorrhoeae was the target nucleic acid. and AE-labeled. Two basic designs (99/135 Figure 3B design and +32/146 Figure 3A design) with junction points at slightly different positions within specific regions of the rRNA were evaluated. Various linker-arm configurations were evaluated as shown below. In addition, a precisely complementary target nucleic acid (N, gonorrhoeae) as well as a latent with two mismatches Currently cross-reactive target nucleic acids (N, meningiLidis) were evaluated. Using differential hydrolysis and Tm analysis as described in Example 1, the following specific conditions were measured: The hybridization properties of different regions were evaluated in the following cases: I N,gon, 0.6 pmol AEo, 1 lmol None 2pmol none 2pmol 2 N,gon, 0.6 pmol None 2pmol AE(1 ) 0.1 p mol None 2 p mol 3 N, gon, 086 p mol AEO, lp mol AE (1) 0.1 p mol None 2 p mol 4 N, gon, 0.6 p mol None 2 p mol^E ( 2) 0.1 pmol none 2 pmol5 N, men, 0.6 pmol to E O,l pmol none 2 pmol none 2 pmol6 N, rnen, 0.6 pmol Le None 2pmol AE (1) 0.1 No Pmol 2pmorph N, men, 0.6 pmol ^E0.1pmol AE (1) 0.1 No pmol 2p mol9 N, gon, 0.61 ) Mol A20.1 pmol None 2 pmol None 2 pmol 10 N, gon, 0.6 pmol None 2 pmol AE 0. 1 pmol None 22 moles 11 N, gon, 0.6 pmol AEo, 1 pmol Le AE O,l ppmole to 2pmol12 N, men, 0.6 pmol to E0.1pmol none 2pmol none 2pmol13 N, men, 0.6 pmol none 2pmol AE(1) O,l No pmol 2 pmol N, hybridization with N. gonorrhoeae was performed at 60°C; hybridization with N. meningitidis was performed at 45 or 50°C; controls included all components except target: Linear oligonucleotides 100 and 146 are "helper" probes that open the second structure of the rRNA and are the branched nuclei of the present invention. Not related to acid probes. The following results were obtained. 1 N, gon 6B, 2 14.3 0.48 29.82 N, gon 7 0.0 6.5 0.51 12.73 N, gon 68.0 8.2 0.50 16.44 N, gon 68.5 18.8 0.47 40.09 N, gon 70.0 12.8 0.49 26.110 N, gon 72. 0 8.0 0.43 18.6II N, gon 67.5 8.6 0.43 20.05 N, men 59.0 6 Nll1en 59.0 7 N, men 54.5 8 N, men 56.0 12 N, men 58.5 13 N, men 61.0 14 N, men 57. The O DH ratio is the ratio of half-lives of hybrid, de and control. Nelsseria meningiLidis DH ratio is close to unity (data not shown). Therefore, ha Iburitaisenyon was not observed. The DH ratio to N, gonorrhoeae target clearly shows that the arm region forms a stable duplex only in the presence of the RNA nucleic acid target. Each of these two designs has a strand with a long probe region and a strand with a short probe region, demonstrating the flexibility of this design parameter. Furthermore, the data show that several different AE configurations, including 2 AEs per probe (one on each strand; samples 3 and 11), produce similar results. Some AE configurations yield relatively higher DH ratios than others, but all exhibit protection only in the presence of a target. vinegar. N, gonorrh. The Tm data for the eae target show that all structures tested yield Tms significantly higher than the operating temperature (60° C. in this case). Data obtained by N. Meningitidisli indicate that the system can be tailored to not significantly cross-react with well-correlated target nucleic acids, thereby improving its utility as an assay. . The Tl11 differences for each structure between N. golo rrhoeae and N. meningitidis range from 92 to 13.5 °C. The 99/135 system was also evaluated for its ability to detect reduced amounts of target nucleic acids (N, gonorrhoeae) and cross-reactivity with 10-' μg (63 fmol) of N. meningitidis was also tested. The assay format was as follows: target and probe were added to 100 μl of 0.1 M lithium succinate buffer (pH 5,2), 2 mM EDTA, 2 mM EGTA and 10% b/V). Annealing was performed at 60° C. for 60 minutes in lithium uryl sulfate. 300 μl of 0.15 M sodium borate buffer pH 7.6) containing 5% (v/v) hlydon X-100 detergent was added, vortexed and incubated at 60° C. for 10 minutes. Chemiluminescence using a luminometer (LEADERI, Gen-Probe, C^) Measurements were made by automatic injection of 200 μm of 0.4 N HNO3, 0.1% H2○2, then 200 μl of IN NaOH, followed by measurement of the signal for 5 seconds. In this example, the following probe mixture was used. Probe mixture 1 - AE-labeled oligo 99 (0,1 p mol), oligo l 35 (0,5 p mol) and oligo 146 (2 p mol) Nibrope mixture 2 AE-labeled - kl) probe mixture 3-AE-labeled oligo 99 (01 pmol), AE-labeled oligo 135 (0,1 pmol), oligo 99 (0,:)l) mol) and oligo 146 (2 pmol), ) and Oligo 146 (2 pmol). 1 of the targets assayed and the probe mixtures for which the results are shown below. These data demonstrate that the design presented here is useful in the detection of small amounts of nucleic acids in a complete assay format. Furthermore, label amplification is shown in probe mixture 3 containing two A E-labeled strands instead of one (as in probe mixtures 1 and 2). Non Cross-reactivity with N. meningitidis RNA, which is always well correlated, is minimal for probe mixtures 1 and 3; The slight cross-reactivity obtained was about 100 times lower than the positive signal, indicating that A. It was reduced to a minimum level by slightly increasing the operating temperature of the cell. Single-Component Probes Another arrangement of branched nucleic acid probes used for detection of target nucleic acids is schematically shown in Figures 4A and 4B. In this configuration the probe consists of a single stranded nucleic acid. desired characteristics The properties are the same as described for the design shown in Figure 1, but now the two strands of the probe are joined, thus becoming one strand. The segment 24 joining the two halves of the probe may be nucleotide or non-nucleotide in nature and should be of a length to provide the desired probe properties described above. When using the HPA format at 60°C, the preferred length of the complementary, unmodified arms 25.27 in this configuration is due to the intramolecular nature of the interaction and is similar to the design shown in Figure 1. It is slightly shorter than the one mentioned above. Therefore, the preferred arm length is about 4 to 16 bases. Ru. As mentioned above, other ambient conditions may lead to a different size range, which is easily determined experimentally by routine methods. Example 3 An example of the general structure shown in FIG. 4 is shown in FIG. The target strand is a 43 base long synthetic NA oligomer with a sequence corresponding to the region of the 23S rRNA subunit of Mycobacterium a+ tuberculosis. As described in Example 1 above. All oligomers were synthesized and AE-labeled as described above. As shown in Figure 5A. Similarly, branched nucleic acid probes form a three-way junction with the target strand. One AE indicates As shown, the T and G residues of the probe are linked by a co-parenting bond. In addition, the AE was placed in the target strand at one of the two positions shown in the specific analysis as described below. The DH and Tm analysis protocols described in Example 1 were used to evaluate the hybridization properties of the structures shown in Figures 5B-5G; The amounts of each component used are listed in Figures 5B-5G. The following results were obtained: 2 10.2 0.32 31.9 8.1 0.56 14.5 These data indicate that the This shows that the resulting duplex is more stable in the presence of target than in its absence. The relative difference in stability is large enough to be used to unambiguously detect the presence of the target nucleic acid, but not as large as that seen in either Example 1 or 2. Comparing the hydrolysis rates of samples 1.2 and 3 controls, it is apparent that the arms interact somewhat under the operating conditions of this experiment. This interaction can be essentially eliminated by optimizing the operating conditions (eg, higher operating temperatures, inosine residues contained in the arm region or phosphorothioate linkages contained in the arm region). This increases the discrimination between when the target is present and when the mark is absent. Alternative configurations of branched nucleic acid probes used to detect target nucleic acids are shown schematically in Figures 6A-6 (in these configurations, the probes can contain three or more nucleic acid strands). These strands form one or more nucleic acid junctions with the target nucleic acid. As described above, such structures can be engineered into one nucleic acid molecule. The key is that the arm regions form stable duplexes only in the presence of target (the possibility of some arm regions forming stable duplexes even in the absence of target is discussed below). Virtually any combination of connection points is possible. The guidelines for designing such a system are essentially the same as those described above for the arrangement shown in FIG. In the case of a four-way junction (or higher order junction), some of the probe strands will contain only arm regions and no target-specific regions. Since the sequence of the strand containing only the arm region is independent of the target sequence, it can be used in combination with various specific probe strands for the detection of various target sites. This “universal detection” app Roach offers several advantages, including very few (or even one) AE-labeled universal detection oligomers for detection of all target sequences (which significantly reduces design and synthesis time). This includes the ability to use (minimizing the amount of hydrolysis and therefore minimizing cost) and the freedom to choose sequences that yield optimal differential hydrolysis, complete independence from the target sequence. As mentioned above, AEs can be placed in some or all arm regions as well as some or all probe regions. One advantage of this arrangement is against AE. The presence of many sites for the label amplification of the assay Significantly increase. In one particular use, the sequence around the AE site can be the same for each arm region, which determines the AE hydrolysis properties (AE hydrolysis rate). (the accuracy is sequence-dependent) and improves the overall accuracy of the assay. Professional The length of the tube region can be manipulated to achieve certain assay performance goals. For example, by adjusting the length of various probe segments, cross-reactivity with highly correlated targets can be minimized. For example, Figures 6A, 6B and and 6C, the probe regions 30 and 32 of probe strands l and 3 are relatively long; Therefore, it forms stable duplexes with targets and even highly related non-target nucleic acids that retain homologous sequences in these regions. The probe region 34 of probe strand 2 is relatively short and spans a region containing l or more mismatches 36 to the non-target nucleic acid. This probe segment will form a stable duplex with a perfectly matched target, but due to its relative shortness it will not form a stable duplex with a mismatched target. The example above shows a three-way connection between an arm and two target areas. As shown in Figures 6E and 6F, three probes (which may be formed as one molecule) with independent arm regions (labeled A) and probe regions (P) are used. can create a four-way connection point. Similar examples are shown in Figures 68 and 6G. Example 4 A specific example of the general structure shown in FIG. 6A is shown in FIG. The probes are labeled 99 strands, 135 strands and 146 strands. As in Example 2, liposomal RNA (rRNA) from Neisgeria gon orrhoeae is the target nucleic acid. All oricomers were synthesized and AE-labeled as described in Example 1 above. Contains three probe strands together that form two three-way nucleic acid junctions with the target strand. Two basic designs were evaluated. The only difference between the two designs is the inclusion of a Roubouara) (L) base at the linkage point (optional) as shown in Figure 7. Many loop bases can be contained in the probes of the invention, which are non-null nucleotide bases, and may also form probes that create non-immobilized or mobile attachment points). Various linker arm configurations were evaluated as shown below. In addition, exactly complementary target nucleic acids (N, gonorrhoeae) as well as 2 mismatching potentials The cross-reactive target nucleic acids (N, N. meningitidis) were evaluated. Using differential hydrolysis and Tm analysis as described in Example 1, different regions of the hive Redization properties were evaluated under the following specific conditions: Structures 1 to 18 are shown schematically in Figure 8: target strand (0.6 pmol), AE-labeled probe strand (0.1 pmol) and unlabeled probe strand In samples to -12, the target was N, meningitidis; in all other samples, the target was N, gonorrhoeae; in samples 1, 2.4 to 6.1 0. As shown in FIG. 7, ILs 13, 14, 16, and 17 had a roubou out base, and the remaining samples did not have a lubou out base. The obtained data are shown in tabular form in FIG. These data indicate that multiple arm regions can be formed in the presence of target, and only in the presence of target. Furthermore, multiple AE labels can be used in one design. This can lead to label amplification. Additionally, these structures can be formed with and without the Luboout base shown in FIG. Additionally, selected structures from those shown in Figure 8 were evaluated for their ability to detect the target nucleic acid (N, gono rrhoeae): Cross-reactivity with N, meningitidis was also tested. The general assay format was the same as that used in Example 3, with the following probe amounts: 2 AE-labeled strands-01 pmol; unlabeled probe ta-2p mole. Le. The amounts of target nucleic acids assayed and the results are shown below: Structure Non-target (see Figure 8) lo-2 μg N, gon, 10-2 μg N, men vs. These data demonstrate that the design presented here is useful in the detection of small amounts of nucleic acids in a complete assay format. show. Additionally, significant label amplification occurs in structure 16. This is an alternative to one (as in probe structures 1.4 and 5). Each contains three AE-labeled strands. Cross-reactivity with the highly correlated N,’men ingitidis RNA was minimal for structure 16, and the assay By slightly increasing the operating temperature of the pond (chosen as optimal for structure 16), some cross-reactivity seen in the pond structure can be reduced to minimal levels and used for the detection of target nucleic acids. Another arrangement of branched nucleic acid probes is shown schematically in Figures 9A-9F. This arrangement is very similar to the structures just mentioned, where the probe consists of three or more nucleic acid strands, such as those shown as 40, 42, 44, which have two or more nucleic acid joining points. form, but this If one or more junctions are formed with the target nucleic acid (e.g., 1 in Figure 9A) and l or more junctions do not bind to the target (e.g., junction 2 in Figure 9A) still formed only in the presence of. The arm regions form a stable duplex only in the presence of target (they form a stable duplex even in the absence of target). (The possibility of several arm regions forming the Any combination is possible. Some examples of structures having this property are shown schematically in Figures 9A-9F. The guidelines for designing such systems are essentially the same as for the configurations described above. The best combination of lengths and sequences for each region of each chain is determined experimentally by testing various structures until the optimal combination is achieved. It is normal for this to occur. The variations and advantages of this arrangement are shown in the arrangement represented by FIG. This is essentially the same as explained above. Example 5 A specific example of the general structure shown in FIG. 9 is shown in FIG. The target is a synthetic NA 60mer (T) with sequences corresponding to major genetic translocations associated with chronic myeloid leukemia. (See Example 6 below). The probe consists of three strands, two of which form a three-way linkage with the target, and one of them forms a three-way linkage with the other two. This third strand has only one arm region and is itself a possible universal detection oricomer as described above. Although one AE labeling site is detailed in this example, AEs can be placed in other areas as well. To evaluate the capabilities of this system, DH and Tm analyzes were performed as described in Example 1 with the following specific conditions: target strand - 05 pmol; unlabeled probe strand = 2 pmol. Differential hydrolysis was performed at 506C. The results are shown below. These data are clearly due to the lack of protection of the AE-labeled strands against AE hydrolysis. As shown, the two junctions of this structure form only in the presence of target (at operating temperature). This is a unique situation in which hybridization of strands that do not even make contact with the target strand is completely target dependent. This is the universal detection oligomer described above. clearly demonstrate the concept of It is also possible to detect chimeric nucleic acid targets using branched nucleic acid probes in stratified configurations that form multiple junctions in response to the target. A chimeric nucleic acid consists of two or more segments, each of which originates from a different source or is otherwise unique in some way (e.g., the chimeric DNA is present only in a portion of a population of organisms). It is a nucleic acid consisting of An example of such a chimeric target is the product of a gene translocation shown schematically in FIG. In this case, one chromosome segment is translocated onto another chromosome (and vice versa in reciprocal translocations), creating a chimeric DNA molecule (which may or may not result in a chimeric mRNA). do. This type of translocation can occur in multiple regions. can occur with a cut point (on one or both chromosomes), resulting in A plurality of chimeric DNAs are obtained. FIG. 11B represents the case where three independent breakpoints on chromosome 2 are recombined with one breakpoint on chromosome 1. This type of chimeric target can be detected in many ways, examples of which are shown in Figures 11C-11F. Method 1 (Figure 11C) is a sandwich method that requires a physical separation step. This is a test assay. This method uses a capture probe specific to chromosome 1 (this capture probe The probe is labeled with a specific capture substance C, which allows the probe to be specifically removed from the solution. For example, C may be biotin; The heterogeneous capture support may be avidin agarose), and the three of chromosome 2 Three independent detection oligomers (each with a reporter group) specific for different translocation regions of (labeled). Method 2 (Figure 11D) utilizes AE-labeled probes specific for each translocation product. (This is a homogeneous assay in which the breakpoint junctions are (This is done by designing a Method 3 (FIGS. 11E and 11F) utilizes the method of the present invention and involves branching nuclei. An acid structure is formed around the breakpoint connection point (other structures are possible in this application, such as those shown in the previous figure). Chain a is universal for all translocation products, and chains d, f and h are specific for the corresponding translocation products. In this specific example In , strand a is the only strand that is AE-labeled. This system has several advantages, including: It is homogeneous, which is not required in method I. Requires no physical separation step: Has a universal sequence for AE protection, leading to uniform differential hydrolysis properties for each target: Has only one AE-labeled strand; Reduces background with minimal sloppiness and cost; less sensitive than method 2 to incorrect pairings (which can occur in the breakpoint junction region) (See Example 7). The guidelines for designing such a system are essentially the same as for the arrangement described in Figure 1 above. Example 6 A specific example of the general arrangement shown in FIG. 11 is shown in FIGS. 12A-12C. Chimera target staining It is a synthetic NA oligomer (80mer) homologous to three different gene translocations between the constant ABL region of chromosome 9 and the variable region of chromosome 22. Two are the most common translocations associated with chronic myeloid leukemia (CML) and one with acute lymphocytic leukemia. disease (ALL). Each chimeric target possesses the same abl region, but all regions derived from chromosome 22 are different. In addition, the normal abl gene (separated on both sides) An 80mer corresponding to the 4o base (cross-linking point 4o base) was synthesized. One AE-labeled strand specific for the abl region was designed as shown in Figures 12A-12c. If the probe region is specific to one of the 22 translocated chromosome regions, Three different chains were designed to contain arm regions complementary to those of the universal detection oligomer. We first wanted to evaluate the ability of these three designs by measuring the differential hydrolysis rate and Tm for each using the protofur described in Example 1. Target-0° 5 pmol; AE-labeled probe fa-0 , 1 pmol; unlabeled flow chain -2 pmol). The results are shown below 1 18.3 0.636 28.8 71.52 18.4 0.640 2 8.8 -m-318,60,64029,1--1 Next, the ability of the three-probe mixture to detect suitable target sequences (and not react with inappropriate target sequences) was evaluated. The assay format described in Example 4 was used (20 fmol of target; 0.1 pmol of AE-labeled probe strand, 2 Pmol of non-Lachelated probe strand). The results are shown below (average of 4 reactions). Lobe Probe AE-Label Mixture 1 Mixture 2 Mixture 3 Chain Mi1 202.187 1,354 1.265 8B92 2.950 16 7.614 1,343 1,1073 1.307 2,319 131.6 70 729 Normal abl 1.491 1,248 1.094 886 Target None 624 614 506 451 The probe mixture detects only the correct chimeric target and does not significantly intersect with either the other two chimeric targets or the normal abl sequence. There is no differential reaction, thereby demonstrating the utility of this arrangement for detecting chimeric nucleic acid targets and The use of a single AE-labeled probe strand to detect multiple targets is shown. Mismatch Probes In another arrangement, different targets with related but non-identical sequences are detected using branched nucleic acid probes. Typically, DNA probe-based assays are designed to detect a specific target and not cross-react with highly correlated targets. Indeed, considerable effort has gone into developing assays that would be sensitive to as few as one mismatch. I feel strong. However, the assay is relatively insensitive to mismatches. There are cases where it is necessary to An example of such a case is the detection of viruses such as HIV that exhibit significant genomic changes. Example 7 A specific example of the above general structure is shown in FIG. The precise target strand is a 78 base long synthetic NA oligomer with a sequence corresponding to the region of the gag gene in HIV-1. Another synthetic 78 IIler was also constructed to contain various mismatches as shown in Figure 13 (these sequences correspond to various HIV chains that have been isolated and sequenced). Two branched nucleic acid structures (see Figure 14) with identical probe regions but different arm regions were evaluated. Very stable at operating temperature The probe region was designed to be unique, thus increasing the overall stability of the branched nucleic acid structure once formed with the target. added by the arm region (hybridization The stability of each region, including the stability (if acts as a buffer against loss of stability in the region, thus reducing the susceptibility of the entire structure to mispairing. All oligomers were prepared as described in Example 1 above. was synthesized and labeled with AE. The differential hydrolysis ratio and Tm of these designs were calculated using the general protocol shown in Example 1 above. Measurement was carried out using a fool under the following specific conditions. Target - o, sp mol; AE-labeled strand - 0.1 p mol; non-uberized probe strand - 2 p mol; hybridized probe strand - 2 p mol; The temperature and corresponding DH ratio analyzes were carried out at three different temperatures (see below 60, 55 or 50°C). The results are as follows. 1 1 1 060 4.3 0.56 7.7 -2 10.2 0.82 12.4 -1&2 7.4 0.75 9.8 -1 1 0 eo 5.9 0.77 7.7 952 3 7.7 0.77 10 593 4 6.1 0.77 7.8 6546 10.0 0.7713 6 1 1 055 +6.5 1.1 15 B52 3 13.9 1.1 1 2.6 793 4 13.6 1.1 12.4 854 6 9.8 1.1 8.9 571 1 0 50 30.3 1,7 17.8 912 3 41.6 1.7 24.5 763 4 32.2 1.7 18.9 8 74 6 17.8 1,7 10.5 82To+('C) 2 + 1 0 60 10.3 0.87 11.8 742 9.8 1.5 6.5 71 1&2 9 .9 0.58 17 702 and 1&2 1 0 60 9.3 0.66 14.12 3 9.6 0.66 14.6 3 4 9.5 0.86'14.4 4 6 7.2 0. 66 10.9 *-Number of invalid pairs. 10-D Hm degrees (°C). 9-Independent experiment. These results demonstrate that branched nucleic acid probes can tolerate 3 and 4 mismatches with few or no effects on the performance profile, and 6 mismatches with only a small decrease in the performance profile. Therefore, branched nucleic acid probes can be used in assay formats that require relative insensitivity to mispairing. Furthermore, these data again include multiple AEs per probe design. (i.e., label amplification). Structure 2 was further evaluated by detecting the reduced amount of perfectly paired target (Target 1) in the full format assay as described in Example 4 (strands 1 and 2 AE label). (Target concentrations are shown below). The results are as follows. These data demonstrate that the branched nucleic acid probes presented here can detect small amounts of target nucleic acids in a complete format assay. Detection of branched duplexes Target-dependent formation of duplexes between complementary arm regions of branched nucleic acid probes can be detected using methods other than the A E-label/differential hydrolysis method described above. can. Furthermore, this differential duplex formation produces a wide variety of target-dependent biological or chemical properties. can be made to stay the same. Examples of some of these properties, including alternative modes of detection, will be discussed using the double-stranded nucleic acid probe described in Figure 1 as a model. However, it is likely that the arm region in question forms a stable duplex only in the presence of the target. As long as these properties meet the basic criteria of It will be readily appreciated that it can be applied to any tube arrangement. Example 8 Restriction Endonuclease Cleavage In one system (FIG. 15A), arm region duplex formation creates an active (double-stranded) restriction enzyme cleavage site (R) that is removed from the target strand. Cleavage at this site by restriction endonucleases can be detected in a variety of ways. For example, one or both strands can be labeled with 3 marks and the cleavage products can be detected using gel electrophoresis or other separation methods. Ru. Alternatively, one or both strands can be labeled with a capture substance (such as biotin) on one side of the cleavage site and the other side of the cleavage site with a reporter group (such as biotin). For example, the strands can be labeled with “P, AE). After cleavage, the strands can be captured and labeled with e.g. vizin agarose), the reporter group bound to the capture support will not exhibit any cleavage. However, the reporter group bound to the supernatant shows cleavage. Alternatively, the detection probe can be designed to react with the uncleaved strand but not with the cleaved strand. This can be done in a homogeneous or separate assay (a homogeneous format is shown in Figure 15B). In one specific aspect of this system, the cleavage site is designed to be close to the base of the arm region duplex (i.e., at the point of attachment). Upon cleavage by lyase, the arm region is almost completely removed from the three-way split nucleic acid structure, thus reducing the stability of the overall structure. probe area or none Cleavage may occur if the wound arm duplex is designed to be stable only in the presence of the duplex. If this happens, the probe region will melt away from the target. This then hybridizes the uncleaved probe strand to the target and starts the process again. In this way, multiple probes can be circulated through a single target site. This increases the sensitivity of the assay. (Hereinafter, blank space) Example 9 DNA/RNA polymerase elongation In another system (Figure 150), poly The arm region is designed to create a site for elongation by the enzyme. Relatively short chains first 3! This filled region can be detected by P-labeling and then detecting any extended primer strands using gel electrophoresis or other separation methods. You can do something like that. in a differential hydrolysis format (1. AE-labeled protein specific for the extension product). Lobes can be used to detect packed arrays. When restriction sites are contained near the base of the arm region duplex, this system also has potential for circulation as described above. Example 10 Amplification In another system (Figure 15D), loading with polymerase amplifies active T7 RNA protein. Create a lomotor part. Following filling, T7 RNA polymerase will transcribe multiple copies of the template strand, which will result in detectable product amplification and thus increased assay sensitivity. These strands can be used, for example, as guides for radiolabeled ribonucleotides. by separation (e.g. by precipitation) or by complementary AE-labeled proteins. It can be detected by differential hydrolysis of the lobes. When a restriction site is contained near the base of the arm region duplex, this system also has some potential for circulation as described above. RNA transcripts are detected using, for example, AE-labeled probes. Example 11 Selective decomposition In the autopsy system (Figure 15E), one arm region is DNA and the other arm region is DNA. The region (or part thereof) is RNA. Formation of the arm duplex creates an active RNA5e H cleavage site. Cleavage by RNA5eH can be detected as described above in system 1 (Figure 15F). This system also has the potential for cycling as described above. ), a chemical cleaving substance (X, e.g. For example, Fe-EDTA or Cu-phenanthroline) is attached to the arm region of one of the probe strands. If the arm region duplex forms, cleavage of the immediately adjacent nucleic acid occurs (the type of cleavage depends on the chemical cleavage agent and the exact location and attachment chemistry). ). This disconnection can be detected as described above. This system also has the possibility of circulation as described above. Any other system for distinguishing between single- and double-stranded nucleic acids, such as specific monoclonal antibodies against double-stranded nucleic acids, is potentially applicable to the configuration generally described above. It is Noh. Example 13 A specific example of the system shown in FIG. 15A is shown in FIG. This structure does not include the AE label. This is the same as shown in FIG. 2, except that BstEII restriction endonucleo Engineer the ase site into the indicated arm region. To analyze cleavage of the target nucleic acid on the arm region, strand 2 of the probe is subjected to a conventional kinasing reaction. First labeled with 3MP using rotor. The probe was then hybridized to the target using the following conditions: hybrid: 1P-labeled strand 2 (0.6 pmol); If (15 pmol); target strand (3 pmol). Control: Same as Ibrid except for the target. As a control for enzymatic activity, the NA target strand was evaluated as being exactly complementary to the two strands. These controls will be referred to as linear-hybrid and linear-hybrid controls. The amounts used were the same as above (C═P-labeled strand 2 (0.6 pmol): target strand (3 pmol)). These annealing reactions were incubated in 60 μl of 50 mM Tris buffer i& (pH 7,9; at 25°C), 500+ nM NaCl for 60 min at 60°C. I bet. A portion of each annealing reaction was then digested with BstEll under the following conditions. 10 μl of each of the above reactions were diluted to 100 μl with final conditions of 50 mM Tris buffer (pH 7,9; at 25°C), 100 mM NaCl, 10a+M MgCl, 1 mM TT. Supported with either 10.5.1 or 02 units of Bst E I l (New England Biolabs) Samples were incubated at 60°C for 60 minutes. Next, a portion of the reaction solution was poured into a regular pot. It was analyzed using lyacrylamide gel electrophoresis (20% Kel, 500V, 15+nA, 25 hours). A regular autoradiogram of the gel was then performed. The results are shown in Figure 17, showing target-dependent cleavage of arm region duplexes with 10 and 5 units of BstEII. Furthermore, is the arm region sequence independent of the target sequence? The restriction site may be any desired site. This style smell Therefore, the use of restriction enzymes does not depend on finding the correct recognition sequence in the target to be analyzed. It would be nice. A specific example of the system shown in FIGS. 15B and 15G is shown in FIG. This structure contains a template strand (strand 1) and a primer strand (strand 2). The template strand contains a detection sequence at its 5' end and a T7 promoter site 3' of the detection sequence (see Figure 18). (see). Upon hybridization of both mirrors to the target, the arm regions form a stable duplex, and the 3' end of strand 2 provides an active primer extension for the polymerase enzyme. rank. The enzyme loads the complement into the template strand, which is then denatured to form the structure shown in Figure 18. detected using an AE-labeled detection oligomer. Also, polymer Fill-in with enzyme creates an active (double-stranded) T7 promoter region with the same detection sequence template region. The T7 RNA polymerase enzyme then synthesizes multiple RNA copies. can be transferred from the template and is also detected using an AE-labeled detection oligomer. Probes were prepared using strand 1 (0,3 pmol), strand 2 (0,9 pmol) and target strand (0,1 pmol) in 50 mM Tris buffer (pH 7,9; at 25 °C), 0.5 M NaCl Incubate at 60°C for 60 minutes (final trial M10ttl). The control sample that you want to hybridize with the target strand first by won). This sample was then diluted to 50 μm and the DNA polymerase was added under the following conditions. Extended with limerase: 20mM Tris mild solution (at pH 7,9, 256C), 0.15M NaCl, 3mM MgSO, 1% TX-100, 1mM DTT, 2mM dATP, 2OM dTTP, 2mM dGTP. 2mM dCTP and 4 units of Taq Bolimerase (Cetus Corp.) The reaction was incubated at 60°C for 1 hour. A 5 μm equivalent volume of sample was then mixed with 25 μl of 6% lithium lauryl sulfate, 60 mM sodium phosphate buffer (pH 6,8), 2 mM EDTA and 2 mM EGTA and 20 μm water. The sample was incubated at 95°C for 5 minutes, cooled to 60°C or below, and then added with 50 μl of 200 mM lithium succinate buffer (pH 5,2), 17% lithium lauryl sulfate, 2 mM EDTA, 2+ nM EGTA and and AE-labeled detection oligomer (0.1 pmol). This reaction mixture The samples were incubated at 60°C for 60 minutes. Next, 300 μl of 015M 5M Boutrium buffer (pH 7,6) containing 5% Triton Chemiluminescence was measured in a luminometer (LEADERl, Gen-Probe, C^) by automatic injection of 200111 1 mM HNO, 0,1% H,O, then 2 ooμl of IN NaOH, 2% Z wittergent, followed by 2 seconds of autoinjection. Measured by measuring the signal Ta. For transcription with T7 polymerase, add 5 μm extension mix to 45 μl of transcription mix. In addition to the compound, the final conditions were as follows: 40mM Tris buffer i & (pH 7,9; at 25°C), 6mM MgClv, 2mM spermidium 10mM DTT, 2°5mM ccTP, 2.5sM rUTP, 2.5mM rATP, 6.5mM rGTP and 400 units of T7 RNA polymer. (United 5taLes Bioche+oical Corporation). A 5 μm equivalent aliquot of this sample was subjected to the AE-labeled assay as described above. The oligomers were used for assay. The following results were obtained: Taq Polymer Ze? 4,125 1.083 T7 RNA polymerase 641,753 9 7.218 These data are based on Taq polymerase and T7 RNA polymerase. We show that although sites for enzymes can be created independently of the target region, the activity of these sites is modulated by hybridization to the target. A specific example of the general arrangement shown in FIG. 6E is shown in FIG. 21. This target strand is a synthetic 38a+er oligomer, and the niblob strand forms a four-way connection point with the target strand as shown. Ru. All oligomers were synthesized as described in Example 1 above. Hybridization of the structures shown in Figures 22A-221 (various schematic representations of the structures are shown in Figure 21) The DH analysis properties were evaluated using the DH analysis protocol described in Example 1, and all operations The cultivation was carried out at 50°C. The amount of different chains used is always the same (if not all chains are used) The two target chains are as follows: - 15 pmol; chain 1 - 0.1 pmol; chain 2 - 6.5 pmol; chain 3 - 1.0 pmol. The following results were obtained: Structural addition Hydrolysis (Figure number) Half-life (min) 22A 37.0 22B 0.54 22C1,7 22D 0.72 22E 0.69 22F 0.60 These data demonstrate that the AE is capable of inhibiting ester hydrolysis in the absence of target. Not protected but marked We show that esters are protected from ester hydrolysis in the presence of target (and probe strands). In this embodiment, all four strands must be present to form a stable duplex between the arm regions of probe strands 1 and 2. Target-Independent Probe Amplification In another arrangement, the duplexes formed between complementary arm regions (some of which are formed independently of the target (at least one such duplex is in the presence of (as long as it is formed). Some examples of this arrangement are shown in Figures 19A-19B. One of the utility of this arrangement is that the AE or other label can be placed in multiple regions of a "network" of branched nucleic acid structures. This is amplification.Furthermore, the AE This arrangement could be used for any desired target site if the enables a universal detection complex. Two (or more) probe regions are targeted. Upon hybridization with the target, this structure becomes bound to the target molecule, thus “stabilizing the anchorage linkage point (as shown in Figures 19A and 19B). sea urchin). This bound label amplification network typically has to be separated from the unbound target by some heterogeneous method (e.g., sandwich assay, hydroxyapatite capture of the target nucleic acid). Dew. The number of attachment points formed with the target can be non-limiting (at least 5, or even 1, as long as the hybridized probe does not precipitate from solution). (up to 1000°C, and depending on the size of the probe, can be in the thousands), may bind to the probe before or after hybridization to the target. The same applies to the formation of a new detection network. In one case of the above arrangement, all attachment points could be formed in a target-independent manner. Some examples of this arrangement are shown in Figures 20A-20C. This allows label amplification using branched nucleic acid structures to create networks. However, this would allow the introduction of multiple labels per target site. The probe forms a nucleic acid junction with the target strand (this junction is target dependent in the sense that all junctions cannot form in the absence of the target, but the duplex formed between the binding arm regions target-independent (they form even in the absence of a target), and can use this method with probes that do not form nucleic acid junctions with the target strand. Ru. Therapeutic Probes In addition to detecting and quantifying nucleic acid targets, the branched nucleic acid probe sequences disclosed herein The device can also be used in a variety of therapeutic applications. For example, system 3, the general arrangement shown in Figure 15, makes the probe region specific to, for example, an infectious organism or a particular cancer cell. The arm region is designed to encode a biologically active molecule. It can be used by measuring. This probe connects to the target site. Upon hybridization, the template strand is filled in by an endogenous polymerase (this step may be unnecessary), resulting in an active coding region, which in turn is used to generate biologically active molecules, such as essential transcription or transcription factors. Inhibitors of transduction will produce peptides or other small molecules that are toxic to the organism or cell, or antigens that render the cell susceptible to removal by the immune system (again due to endogenous activity). The arm region may also form double-stranded RNA regions in a target-dependent manner, which in turn stimulates interferon activity. As another example, the target tract (small to form a site that can be cleaved by endogenous lysyl-based enzymes. Connection points formed with the target nucleic acid can be designed. This probe will target the site where this cleavage would be lethal to the organism or cell. As another example, a recognition site for an endogenous nuclease may be created; Rease binds to this recognition site but cleaves at the terminal site on the target mirror; leading to the death of organisms or cells. Additionally, the arm region duplex is an essential endogenous regulatory protein. Recognition sites will be created that compete for protein binding or interfere with the assembly of essential regulatory complexes in a sequence-specific manner. In addition, essential regions of the target nucleic acid Various combinations of probes can be designed to form stable branch points with regions, thus inhibiting the binding of sequence-specific processing factors and would inhibit replication. Other embodiments are within the scope of the following claims. Flgure IA Flgure IB Flgure IC FIGure IE Figure 2D Figure 4A Figure 4B Hybrid 1 Control 1 Flgure 6^ Flgure 6B Half-life (min) +, JLJL 18.19 0.53 34.3 66.52, -IL'L 6 .. 10 0.70 B, 7 66.33, "L" 22.32 0.55 40. 6 66.14, UL 9.41 0.56 16.8 68J5JUhi 7.67 0.72 10.7 67.86, ``Uhi 8.75' 0.73 12.0 -7, -1L 10 .02 0.56 17.9 67.98, d b 8.44 0.72 11.37 69.39, ff1LIL 8.83 0.75 o, s 64.513, JLJI-7,370,6211,9-- -+4. JIJL 6.76 0.60 11.3 -15, LIL 7.5 1 0.58 12.9 62.216-1LJL 5.79 0.73 7, 9 62.017, Kojidan 5,21 0 .62 8.4 61.618, -Yo Kanhi 6.36 0.64 9.9 61.41-Binding site Special Table Sen7-503139 (22) Flgure 15A Figure 16 TameJ Figure 21 Continuation of front page (51 ) Int, C1,' Identification code Internal reference number Cl2R1:36) (72) Inventor Nelson, Norman Charles United States of America 92111 3639 Maresta Drive I, San Diego, California (72) Inventors Betsverkov, Robert United States 92007 California 950 Norbay Street, Cardiff Pie the Sea, Near
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Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP2013542738A (en) * | 2010-11-19 | 2013-11-28 | スピーデクス ピーティーワイ リミテッド | Signal amplification |
JP2014036667A (en) * | 1999-04-21 | 2014-02-27 | Alnylam Pharmaceuticals Inc | Method and composition for inhibiting function of polynucleotide sequence |
KR20180039093A (en) * | 2015-08-07 | 2018-04-17 | 프레지던트 앤드 펠로우즈 오브 하바드 칼리지 | Super resolution imaging of protein-protein interactions |
US11536715B2 (en) | 2013-07-30 | 2022-12-27 | President And Fellows Of Harvard College | Quantitative DNA-based imaging and super-resolution imaging |
Families Citing this family (290)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US5430136A (en) * | 1984-10-16 | 1995-07-04 | Chiron Corporation | Oligonucleotides having selectably cleavable and/or abasic sites |
US6197556B1 (en) * | 1991-12-20 | 2001-03-06 | The University Of Chicago | Nucleic acid amplification using modular branched primers |
NZ245771A (en) * | 1992-02-07 | 1994-08-26 | New England Medical Center Inc | Mammalian gastrin/cholecystokinin b (cck-b) receptor and antagonists |
ATE152180T1 (en) * | 1992-07-31 | 1997-05-15 | Behringwerke Ag | METHOD FOR INTRODUCING DEFINED SEQUENCES AT THE 3' END OF POLYNUCLEOTIDES |
US6495676B1 (en) | 1993-04-13 | 2002-12-17 | Naxcor | Nucleic acid sequence detection employing probes comprising non-nucleosidic coumarin derivatives as polynucleotide-crosslinking agents |
US5616464A (en) * | 1994-12-27 | 1997-04-01 | Naxcor | Nucleic acid sequence detection employing amplification probes |
US6277570B1 (en) | 1993-04-13 | 2001-08-21 | Naxcor | Nucleic acid sequence detection employing probes comprising non-nucleosidic coumarin derivatives as polynucleotide-crosslinking agents |
US5767259A (en) | 1994-12-27 | 1998-06-16 | Naxcor | Oligonucleotides containing base-free linking groups with photoactivatable side chains |
US5846709A (en) * | 1993-06-15 | 1998-12-08 | Imclone Systems Incorporated | Chemical process for amplifying and detecting nucleic acid sequences |
US5681697A (en) * | 1993-12-08 | 1997-10-28 | Chiron Corporation | Solution phase nucleic acid sandwich assays having reduced background noise and kits therefor |
US6306657B1 (en) * | 1994-06-28 | 2001-10-23 | Kalyx Biosciences, Inc. | Polynucleotide probe and kit for amplifying signal detection in hybridization assays |
ZA956776B (en) * | 1994-08-25 | 1996-03-20 | Akzo Nobel Nv | A process for making the product of a nucleic acid amplification reaction incapable of being a target for further amplification a diagnostic assay employing said process a kit and a container suitable for carrying out said process for assay |
DE69535240T2 (en) * | 1994-10-28 | 2007-06-06 | Gen-Probe Inc., San Diego | Compositions and methods for the simultaneous detection and quantification of a majority of specific nucleic acid sequences |
US5783387A (en) * | 1995-02-06 | 1998-07-21 | The Regents Of The University Of California | Method for identifying and quantifying nucleic acid sequence aberrations |
US5731153A (en) * | 1996-08-26 | 1998-03-24 | The Regents Of The University Of California | Identification of random nucleic acid sequence aberrations using dual capture probes which hybridize to different chromosome regions |
US5843650A (en) * | 1995-05-01 | 1998-12-01 | Segev; David | Nucleic acid detection and amplification by chemical linkage of oligonucleotides |
US20020081577A1 (en) * | 1995-06-06 | 2002-06-27 | Robert L. Kilkuskie | Oligonucleotides speciific for hepatitis c virus |
AU707691B2 (en) * | 1995-06-07 | 1999-07-15 | Gen-Probe Incorporated | Nucleic acid probes and amplification oligonucleotides for neisseria species |
US5747252A (en) | 1995-06-07 | 1998-05-05 | Gen-Probe Incorporated | Nucleic acid probes and amplification oligonucleotides for Neisseria species |
DE19537952A1 (en) * | 1995-10-12 | 1997-04-17 | Boehringer Mannheim Gmbh | Method for the detection of an analyte |
JP2002515730A (en) * | 1995-10-16 | 2002-05-28 | カイロン コーポレイション | Method for screening a factor that modulates gene expression |
WO1997023646A1 (en) * | 1995-12-22 | 1997-07-03 | Behringwerke Aktiengesellschaft | Detection of differences in nucleic acids |
US6180777B1 (en) * | 1996-01-12 | 2001-01-30 | Bayer Corporation | Synthesis of branched nucleic acids |
DE19610255B4 (en) * | 1996-03-15 | 2004-11-04 | Universität Heidelberg | Process for the preparation of nucleic acid sequences and process for the detection of translocations between chromosomes |
US5824478A (en) * | 1996-04-30 | 1998-10-20 | Vysis, Inc. | Diagnostic methods and probes |
US20040266706A1 (en) * | 2002-11-05 | 2004-12-30 | Muthiah Manoharan | Cross-linked oligomeric compounds and their use in gene modulation |
US9096636B2 (en) * | 1996-06-06 | 2015-08-04 | Isis Pharmaceuticals, Inc. | Chimeric oligomeric compounds and their use in gene modulation |
US7812149B2 (en) | 1996-06-06 | 2010-10-12 | Isis Pharmaceuticals, Inc. | 2′-Fluoro substituted oligomeric compounds and compositions for use in gene modulations |
US5898031A (en) | 1996-06-06 | 1999-04-27 | Isis Pharmaceuticals, Inc. | Oligoribonucleotides for cleaving RNA |
GB9626074D0 (en) * | 1996-12-16 | 1997-02-05 | Cytocell Ltd | Nucleic acids amplification assay |
CA2218439A1 (en) * | 1996-12-21 | 1998-06-21 | Henrik Orum | Method of identifying a nucleic acid using triple helix formation of adjacently annealed probes |
US7101672B2 (en) * | 1998-05-05 | 2006-09-05 | Third Wave Technologies, Inc. | Target-dependent reactions using structure-bridging oligonucleotides |
AU744369B2 (en) * | 1997-05-05 | 2002-02-21 | Third Wave Technologies, Inc. | Target-dependent reactions using structure-bridging oligonucleotides |
US6194149B1 (en) * | 1998-03-03 | 2001-02-27 | Third Wave Technologies, Inc. | Target-dependent reactions using structure-bridging oligonucleotides |
US6849400B1 (en) * | 1997-07-23 | 2005-02-01 | Gen-Probe Incorporated | Methods for detecting and measuring spliced nucleic acids |
US6342350B1 (en) * | 1997-09-05 | 2002-01-29 | The General Hospital Corporation | Alpha-2-macroglobulin diagnostic test |
US5935791A (en) * | 1997-09-23 | 1999-08-10 | Becton, Dickinson And Company | Detection of nucleic acids by fluorescence quenching |
US6518017B1 (en) | 1997-10-02 | 2003-02-11 | Oasis Biosciences Incorporated | Combinatorial antisense library |
US20030165888A1 (en) * | 2001-07-18 | 2003-09-04 | Brown Bob D. | Oligonucleotide probes and primers comprising universal bases for diagnostic purposes |
AU746061B2 (en) * | 1997-12-12 | 2002-04-11 | Qiagen Gaithersburg, Inc. | Assessment of human papilloma virus-related disease |
JP2002510464A (en) | 1998-01-27 | 2002-04-09 | サイトセル・リミテッド | Method for detecting nucleic acid target sequence involving in vitro transcription from RNA promoter |
JP2002510465A (en) | 1998-01-27 | 2002-04-09 | サイトセル・リミテッド | Modified nucleic acid probes and uses thereof |
WO1999042616A1 (en) * | 1998-02-20 | 1999-08-26 | Dade Behring Inc. | Methods for determining concentrations of nucleic acids |
US6287772B1 (en) * | 1998-04-29 | 2001-09-11 | Boston Probes, Inc. | Methods, kits and compositions for detecting and quantitating target sequences |
WO1999055916A1 (en) * | 1998-04-29 | 1999-11-04 | Boston Probes, Inc. | Methods, kits and compositions for detecting and quantitating target sequences |
JP3267576B2 (en) * | 1998-11-09 | 2002-03-18 | 三光純薬株式会社 | Method for forming probe polymer |
US6492111B1 (en) * | 1998-11-25 | 2002-12-10 | Isis Pharmaceuticals, Inc. | In situ binary synthesis of biologically effective molecules |
AU1827200A (en) * | 1998-11-25 | 2000-06-13 | Isis Pharmaceuticals, Inc. | (in situ) binary synthesis of biologically effective molecules |
NO986133D0 (en) * | 1998-12-23 | 1998-12-23 | Preben Lexow | Method of DNA Sequencing |
US6900300B1 (en) * | 2000-09-19 | 2005-05-31 | Ingeneus Corporation | Quadruplex DNA and duplex probe systems |
US6432642B1 (en) * | 1999-01-15 | 2002-08-13 | Pe Corporation (Ny) | Binary probe and clamp composition and methods for a target hybridization detection |
GB9905580D0 (en) * | 1999-03-12 | 1999-05-05 | Tepnel Medical Ltd | Enyzymatically catalysed signal amplification |
US6514700B1 (en) * | 1999-04-30 | 2003-02-04 | Aclara Biosciences, Inc. | Nucleic acid detection using degradation of a tagged sequence |
KR20020007359A (en) * | 1999-04-08 | 2002-01-26 | 추후제출 | Amplification and Sequencing Primer Pairs and Use thereof |
JP2002541825A (en) * | 1999-04-08 | 2002-12-10 | オアシス バイオサイエンシーズ インコーポレイティッド | Antisense oligonucleotides containing universal and / or synonymous bases |
US20030235832A1 (en) * | 2000-06-21 | 2003-12-25 | Ahmed Chenna | Multiplexed analysis by chromatographic separation of molecular tags |
US7005261B1 (en) | 1999-07-29 | 2006-02-28 | British Biocell International Limited | Method for detecting nucleic acid target sequences involving in vitro transcription from an RNA polymerase promoter |
JP2004507203A (en) * | 1999-07-29 | 2004-03-11 | サイトセル・リミテッド | Method for detecting nucleic acid target sequence involving in vitro transcription from RNA polymerase promoter |
US6893819B1 (en) * | 2000-11-21 | 2005-05-17 | Stratagene California | Methods for detection of a nucleic acid by sequential amplification |
US7824859B2 (en) * | 1999-10-29 | 2010-11-02 | Cytyc Corporation | Methods for detection of a target nucleic acid by forming a cleavage structure using an RNA polymerase |
US7534568B2 (en) | 1999-10-29 | 2009-05-19 | Hologic Inc. | Methods for detection of a target nucleic acid by forming a cleavage structure with a cleavage resistant probe |
US7585632B2 (en) * | 1999-10-29 | 2009-09-08 | Hologic, Inc. | Compositions and methods for the detection of a nucleic acid using a cleavage reaction |
US7118860B2 (en) * | 1999-10-29 | 2006-10-10 | Stratagene California | Methods for detection of a target nucleic acid by capture |
US7838225B2 (en) * | 1999-10-29 | 2010-11-23 | Hologic, Inc. | Methods for detection of a target nucleic acid by forming a cleavage structure using a reverse transcriptase |
US7381532B2 (en) * | 1999-10-29 | 2008-06-03 | Stratagene California | Compositions and methods for the detection of a nucleic acid using a cleavage reaction |
AU1728001A (en) * | 1999-11-29 | 2001-06-04 | Gamida Sense Diagnostics Ltd. | Oligonucleotides and assemblies thereof useful in the detection of the presence or absence of target nucleic acid sequences in a sample |
US7537938B2 (en) | 2000-04-28 | 2009-05-26 | Monogram Biosciences, Inc. | Biomarker detection in circulating cells |
US20040067498A1 (en) * | 2000-04-28 | 2004-04-08 | Ahmed Chenna | Detection of nucleic acid sequences by cleavage and separation of tag-containing structures |
US7771929B2 (en) | 2000-04-28 | 2010-08-10 | Monogram Biosciences, Inc. | Tag library compounds, compositions, kits and methods of use |
US6511809B2 (en) * | 2000-06-13 | 2003-01-28 | E. I. Du Pont De Nemours And Company | Method for the detection of an analyte by means of a nucleic acid reporter |
US7601497B2 (en) | 2000-06-15 | 2009-10-13 | Qiagen Gaithersburg, Inc. | Detection of nucleic acids by target-specific hybrid capture method |
US7439016B1 (en) | 2000-06-15 | 2008-10-21 | Digene Corporation | Detection of nucleic acids by type-specific hybrid capture method |
US6451588B1 (en) * | 2000-06-30 | 2002-09-17 | Pe Corporation (Ny) | Multipartite high-affinity nucleic acid probes |
NO314206B1 (en) * | 2001-04-30 | 2003-02-10 | Erling Sundrehagen | Quantitative chemical analysis method, device / device, and application of said method and analysis set |
US7727713B2 (en) | 2001-06-20 | 2010-06-01 | Nuevolution A/S | Templated molecules and methods for using such molecules |
EP2980222A1 (en) | 2001-09-24 | 2016-02-03 | One Lambda, Inc. | Diagnostic probe detection system |
CA2447332A1 (en) * | 2001-09-28 | 2003-04-10 | Sanko Junyaku Co., Ltd. | Signal amplification method for dna chip |
CN1166422C (en) * | 2001-11-05 | 2004-09-15 | 北京源德生物医学工程股份有限公司 | Holder for external high-energy focusing ultrasonic treating apparatus |
US20050053939A1 (en) * | 2001-11-09 | 2005-03-10 | Ahmed Chenna | Methods and compositions for enhancing detection in determinations employing cleavable electrophoretic tag reagents |
GB0130268D0 (en) * | 2001-12-19 | 2002-02-06 | Molecular Light Tech Res Ltd | Methods of detecting modification of genetic material and monitoring processes thereof |
SE0200531D0 (en) * | 2002-02-22 | 2002-02-22 | Avaris Ab | Novel biomolecular complexes, method for their production and use |
WO2003076655A2 (en) * | 2002-03-14 | 2003-09-18 | Gnothis Holding Sa | Method for identifying a nucleic acid analyte |
CN101006177B (en) * | 2002-03-15 | 2011-10-12 | 纽韦卢森公司 | An improved method for synthesising templated molecules |
FR2842827B1 (en) * | 2002-07-26 | 2004-10-22 | Biocortech | NOVEL METHOD OF NUCLEIC ACID ANALYSIS AND ITS USE FOR EVALUATING THE DEGREE OF EDITING OF THE 5-HT2c RECEPTOR mRNA |
WO2004013070A2 (en) * | 2002-08-01 | 2004-02-12 | Nuevolution A/S | Multi-step synthesis of templated molecules |
CA2539890A1 (en) * | 2002-09-27 | 2004-04-08 | Carlsberg A/S | Spatially encoded polymer matrix |
CN102838654B (en) | 2002-10-30 | 2016-05-18 | 纽韦卢森公司 | The method of synthetic difunctional compound |
WO2004044136A2 (en) | 2002-11-05 | 2004-05-27 | Isis Pharmaceuticals, Inc. | Compositions comprising alternating 2’-modified nucleosides for use in gene modulation |
GB2395556A (en) * | 2002-11-22 | 2004-05-26 | Dynal Biotech Ltd | Nucleic acid probe |
AU2003291964A1 (en) | 2002-12-19 | 2004-07-14 | Nuevolution A/S | Quasirandom structure and function guided synthesis methods |
US20040152118A1 (en) * | 2003-01-29 | 2004-08-05 | Van Atta Reuel B. | Methods and compositions for detecting nucleic acid sequences |
US20070026397A1 (en) | 2003-02-21 | 2007-02-01 | Nuevolution A/S | Method for producing second-generation library |
CA2522753C (en) | 2003-04-18 | 2014-06-10 | Becton, Dickinson And Company | Immuno-amplification |
CA2529366A1 (en) * | 2003-06-17 | 2004-12-23 | Keygene N.V. | Means and method for the detection of target nucleotide sequences using ligation assays with improved oligonucleotide probe pairs |
WO2005012548A2 (en) * | 2003-08-01 | 2005-02-10 | Dynal Biotech Inc. | Self-hybridizing multiple target nucleic acid probes and methods of use |
US20060035242A1 (en) * | 2004-08-13 | 2006-02-16 | Michelitsch Melissa D | Prion-specific peptide reagents |
WO2005021794A2 (en) * | 2003-09-02 | 2005-03-10 | Keygene N.V. | Ola-based methods for the detection of target nucleic acid sequences |
DK1670939T3 (en) * | 2003-09-18 | 2010-03-01 | Nuevolution As | Method for obtaining structural information on a coded molecule and method for selecting compounds |
EP1531183A1 (en) * | 2003-11-14 | 2005-05-18 | bioMérieux BV | Method for amplification of RNA sequences |
US20090239211A1 (en) * | 2004-02-17 | 2009-09-24 | Nuevolution A/S | Method For Enrichment Involving Elimination By Mismatch Hybridisation |
US8569474B2 (en) | 2004-03-09 | 2013-10-29 | Isis Pharmaceuticals, Inc. | Double stranded constructs comprising one or more short strands hybridized to a longer strand |
US20050250147A1 (en) * | 2004-05-10 | 2005-11-10 | Macevicz Stephen C | Digital profiling of polynucleotide populations |
US7884086B2 (en) | 2004-09-08 | 2011-02-08 | Isis Pharmaceuticals, Inc. | Conjugates for use in hepatocyte free uptake assays |
TW200626729A (en) * | 2004-11-19 | 2006-08-01 | Wakunaga Pharma Co Ltd | Method for producing fermented beverage with beer taste exhibiting excellent brew flavor |
JP2006166911A (en) * | 2004-11-19 | 2006-06-29 | Wakunaga Pharmaceut Co Ltd | Nucleic acid fragment for detecting nucleic acid and method of detecting nucleic acid |
WO2006076683A2 (en) * | 2005-01-13 | 2006-07-20 | Novartis Vaccines And Diagnostics Inc. | Isolation and detection of pathogenic prions |
NZ560535A (en) * | 2005-01-13 | 2011-01-28 | Novartis Vaccines & Diagnostic | Elisa assays using prion-specific peptide reagents |
US20070026423A1 (en) * | 2005-03-16 | 2007-02-01 | Thomas Koehler | Method and test kit for the detection of target nucleic acids |
ATE526975T1 (en) | 2005-10-07 | 2011-10-15 | California Inst Of Techn | PKR ACTIVATION USING HYBRIDIZATION CHAIN REACTION |
ES2431076T3 (en) | 2005-10-07 | 2013-11-25 | Speedx Pty Ltd | Multi-component nucleic acid enzymes and methods for use |
WO2007047912A2 (en) | 2005-10-17 | 2007-04-26 | Gen-Probe Incorporated | Compositions and methods to detect legionella pneumophila nucleic acid |
WO2007054682A1 (en) * | 2005-11-08 | 2007-05-18 | The University Court Of The University Of Edinburgh | Switchable biosensor devices |
EP2336315B1 (en) | 2005-12-01 | 2017-07-19 | Nuevolution A/S | Enzymatic encoding methods for efficient synthesis of large libraries |
US8741813B2 (en) * | 2005-12-15 | 2014-06-03 | General Electric Company | Composition, device and associated method |
US8778845B2 (en) * | 2005-12-15 | 2014-07-15 | Genral Electric Company | Composition, device and associated method |
WO2007087312A2 (en) * | 2006-01-23 | 2007-08-02 | Population Genetics Technologies Ltd. | Molecular counting |
US20070196849A1 (en) * | 2006-02-22 | 2007-08-23 | Applera Corporation | Double-ligation Method for Haplotype and Large-scale Polymorphism Detection |
US20070259344A1 (en) * | 2006-05-03 | 2007-11-08 | Agilent Technologies, Inc. | Compound probes and methods of increasing the effective probe densities of arrays |
US20070259346A1 (en) * | 2006-05-03 | 2007-11-08 | Agilent Technologies, Inc. | Analysis of arrays |
US20070259347A1 (en) * | 2006-05-03 | 2007-11-08 | Agilent Technologies, Inc. | Methods of increasing the effective probe densities of arrays |
US20080058218A1 (en) * | 2006-05-03 | 2008-03-06 | Gordon David B | Arrays of compound probes and methods using the same |
JP5154548B2 (en) * | 2006-05-12 | 2013-02-27 | ジェン−プローブ・インコーポレーテッド | Compositions and methods for detecting enterococcal nucleic acids |
US7759062B2 (en) * | 2006-06-09 | 2010-07-20 | Third Wave Technologies, Inc. | T-structure invasive cleavage assays, consistent nucleic acid dispensing, and low level target nucleic acid detection |
US7745129B1 (en) * | 2006-07-12 | 2010-06-29 | Kenneth David Schatz | Methods for sequencing of a necleic acid |
BRPI0718137B1 (en) | 2006-10-06 | 2016-05-10 | Johnson & Johnson Res Pty Ltd | molecular switches and methods for their use |
US8778846B2 (en) * | 2006-12-04 | 2014-07-15 | General Electric Company | Composition, device and associated method |
US8765643B2 (en) * | 2006-12-04 | 2014-07-01 | General Electric Company | Composition, device and associated method |
EP2121956B1 (en) | 2006-12-21 | 2016-08-17 | Gen-Probe Incorporated | Methods and compositions for nucleic acid amplification |
US8962238B2 (en) | 2007-04-05 | 2015-02-24 | SpeedDx Pty Ltd | Nucleic acid enzymes and complexes and methods for their use |
EP2155770B1 (en) * | 2007-05-16 | 2013-10-16 | California Institute of Technology | A versatile nucleic acid hairpin motif for programming biomolecular self-assembly pathways |
AU2008265610B2 (en) | 2007-06-21 | 2012-08-23 | Gen-Probe Incorporated | Instrument and receptacles for performing processes |
EP2180063B1 (en) * | 2007-08-14 | 2013-01-09 | Eisai R&D Management Co., Ltd. | Method of detecting target substance |
US9551026B2 (en) | 2007-12-03 | 2017-01-24 | Complete Genomincs, Inc. | Method for nucleic acid detection using voltage enhancement |
EP2071035A1 (en) * | 2007-12-13 | 2009-06-17 | Epigenomics AG | Facilitator and method for amplification |
AU2008343380B2 (en) | 2007-12-26 | 2012-07-12 | Gen-Probe Incorporated | Compositions and methods to detect Candida albicans nucleic acid |
US20110189692A1 (en) * | 2008-04-30 | 2011-08-04 | Novartis Ag | Assay for pathogenic conformers |
US20100021904A1 (en) * | 2008-05-21 | 2010-01-28 | Pierce Niles A | Shielded cross-linking probes |
US20100021901A1 (en) * | 2008-05-22 | 2010-01-28 | Peng Yin | Compositions and methods for detecting analytes |
WO2010017246A1 (en) * | 2008-08-04 | 2010-02-11 | University Of Maryland | Probes and methods for detecting analytes |
JP2012506705A (en) * | 2008-10-27 | 2012-03-22 | キアジェン ゲイサーズバーグ インコーポレイテッド | Hybrid capture analysis and system for quick results |
CA2750338C (en) * | 2009-01-28 | 2019-06-25 | Qiagen Gaithersburg, Inc. | Sequence-specific large volume sample preparation method and assay |
EP2391452B1 (en) | 2009-01-30 | 2015-06-17 | Gen-Probe Incorporated | Systems and methods for detecting a signal and applying thermal energy to a signal transmission element |
AU2010209528B2 (en) | 2009-01-30 | 2015-10-01 | Oxford Nanopore Technologies Limited | Adaptors for nucleic acid constructs in transmembrane sequencing |
JP5738278B2 (en) * | 2009-05-01 | 2015-06-24 | キアジェン ゲイサーズバーグ インコーポレイテッド | Non-target amplification method for detecting RNA splicing morphology in a sample |
US20100316998A1 (en) * | 2009-06-15 | 2010-12-16 | Massachusetts Institute Of Technology | Methods and compositions for empirical selection of drugs or other molecules |
EP2446267A1 (en) | 2009-06-24 | 2012-05-02 | Health Corporation - Rambam | Methods and kits for isolating placental derived microparticles and use of same for diagnosis of fetal disorders |
CA2766391C (en) | 2009-07-01 | 2021-04-20 | Gen-Probe Incorporated | Methods and compositions for multiplex nucleic acid amplification |
WO2011032124A1 (en) | 2009-09-14 | 2011-03-17 | Qiagen Gaithersburg, Inc. | Compositions and methods for recovery of nucleic acids or proteins from tissue samples fixed in cytology media |
US8975019B2 (en) * | 2009-10-19 | 2015-03-10 | University Of Massachusetts | Deducing exon connectivity by RNA-templated DNA ligation/sequencing |
US20110129832A1 (en) * | 2009-10-27 | 2011-06-02 | Swift Biosciences, Inc. | Polynucleotide Primers and Probes |
WO2011057029A1 (en) | 2009-11-04 | 2011-05-12 | Novartis Ag | Positively charged species as binding reagents in the separation of protein aggregates from monomers |
JP2013511292A (en) | 2009-11-23 | 2013-04-04 | ベクトン・ディキンソン・アンド・カンパニー | Method for assaying a target nucleic acid by signal amplification using probe hybridization and restriction |
US8835358B2 (en) | 2009-12-15 | 2014-09-16 | Cellular Research, Inc. | Digital counting of individual molecules by stochastic attachment of diverse labels |
US9315857B2 (en) | 2009-12-15 | 2016-04-19 | Cellular Research, Inc. | Digital counting of individual molecules by stochastic attachment of diverse label-tags |
JP2013517803A (en) | 2010-01-29 | 2013-05-20 | キアジェン ゲイサーズバーグ インコーポレイテッド | Method for determining and confirming the presence of HPV in a sample |
JP6103941B2 (en) | 2010-01-29 | 2017-03-29 | キアジェン ゲイサーズバーグ インコーポレイテッド | Methods and compositions for sequence-specific purification and multiplex analysis of nucleic acids |
EP2536849B1 (en) | 2010-02-17 | 2016-05-11 | Gen-Probe Incorporated | Compositions and methods to detect atopobium vaginae nucleic acid |
JP5481250B2 (en) * | 2010-03-26 | 2014-04-23 | 富士フイルム株式会社 | Article with birefringence pattern |
CA3011697C (en) | 2010-04-21 | 2020-04-07 | Gen-Probe Incorporated | Compositions, methods and kits to detect herpes simplex virus nucleic acids |
US8658780B2 (en) | 2010-05-18 | 2014-02-25 | California Institute Of Technology | Triggered covalent probes for imaging and silencing genetic expression |
JP2013528049A (en) | 2010-05-19 | 2013-07-08 | キアゲン ガイサーズバーグ アイエヌシー. | Methods and compositions for sequence-specific purification and multiplex analysis of nucleic acids |
US9376727B2 (en) | 2010-05-25 | 2016-06-28 | Qiagen Gaithersburg, Inc. | Fast results hybrid capture assay and associated strategically truncated probes |
US8877438B2 (en) * | 2010-07-20 | 2014-11-04 | California Institute Of Technology | Self-assembled polynucleotide structure |
US9834439B2 (en) | 2010-07-20 | 2017-12-05 | California Institute Of Technology | Biomolecular self-assembly |
US8962241B2 (en) * | 2010-07-20 | 2015-02-24 | California Institute Of Technology | Triggered molecular geometry based bioimaging probes |
ES2523140T3 (en) | 2010-09-21 | 2014-11-21 | Population Genetics Technologies Ltd. | Increased confidence in allele identifications with molecular count |
EP2625297B1 (en) | 2010-10-04 | 2018-10-10 | Gen-Probe Prodesse, Inc. | Compositions, methods and kits to detect adenovirus nucleic acids |
WO2012061719A2 (en) * | 2010-11-04 | 2012-05-10 | President And Fellows Of Harvard College | Dna origami devices |
WO2012116220A2 (en) | 2011-02-24 | 2012-08-30 | Qiagen Gaithersburg, Inc. | Materials and methods for detection of hpv nucleic acid |
EP2683833B1 (en) | 2011-03-10 | 2018-09-26 | Gen-Probe Incorporated | Methods for the selection and optimization of oligonucleotide tag sequences |
US9657352B2 (en) | 2011-04-25 | 2017-05-23 | Gen-Probe Incorporated | Compositions and methods for detecting BV-associated bacterial nucleic acid |
US10597701B2 (en) * | 2011-05-11 | 2020-03-24 | Navinci Diagnostics Ab | Unfolding proximity probes and methods for the use thereof |
IN2014DN00221A (en) | 2011-07-25 | 2015-06-05 | Oxford Nanopore Tech Ltd | |
AU2012304327B2 (en) | 2011-09-08 | 2015-07-09 | Gen-Probe Incorporated | Compositions and methods for detecting BV-associated bacterial nucleic acid |
WO2013059044A1 (en) * | 2011-10-18 | 2013-04-25 | Celedon Alfredo Andres | Detection units and methods for detecting a target analyte |
US10837879B2 (en) | 2011-11-02 | 2020-11-17 | Complete Genomics, Inc. | Treatment for stabilizing nucleic acid arrays |
DE102011120550B4 (en) | 2011-12-05 | 2013-11-07 | Gen-Probe Prodesse, Inc. | Compositions, methods and kits for the detection of adenovirus nucleic acids |
ES2776673T3 (en) | 2012-02-27 | 2020-07-31 | Univ North Carolina Chapel Hill | Methods and uses for molecular tags |
EP3321378B1 (en) | 2012-02-27 | 2021-11-10 | Becton, Dickinson and Company | Compositions for molecular counting |
ES2741099T3 (en) | 2012-02-28 | 2020-02-10 | Agilent Technologies Inc | Method of fixing a counting sequence for a nucleic acid sample |
AU2013205110B2 (en) | 2012-04-24 | 2016-10-13 | Gen-Probe Incorporated | Compositions, Methods and Kits to Detect Herpes Simplex Virus Nucleic Acids |
AU2013202354A1 (en) * | 2012-06-18 | 2014-01-16 | Speedx Pty Ltd | Target detection and signal amplification |
EP2875154B1 (en) | 2012-07-19 | 2017-08-23 | Oxford Nanopore Technologies Limited | SSB method for characterising a nucleic acid |
JP6464086B2 (en) | 2012-08-30 | 2019-02-06 | ジェン−プローブ・インコーポレーテッド | Multiphase nucleic acid amplification |
EP2893040B1 (en) | 2012-09-04 | 2019-01-02 | Guardant Health, Inc. | Methods to detect rare mutations and copy number variation |
US20160040229A1 (en) | 2013-08-16 | 2016-02-11 | Guardant Health, Inc. | Systems and methods to detect rare mutations and copy number variation |
US10876152B2 (en) | 2012-09-04 | 2020-12-29 | Guardant Health, Inc. | Systems and methods to detect rare mutations and copy number variation |
US11913065B2 (en) | 2012-09-04 | 2024-02-27 | Guardent Health, Inc. | Systems and methods to detect rare mutations and copy number variation |
AU2013205122B2 (en) | 2012-10-11 | 2016-11-10 | Gen-Probe Incorporated | Compositions and Methods for Detecting Human Papillomavirus Nucleic Acid |
AU2013205090B2 (en) | 2012-12-07 | 2016-07-28 | Gen-Probe Incorporated | Compositions and Methods for Detecting Gastrointestinal Pathogen Nucleic Acid |
EP2935585B1 (en) * | 2012-12-21 | 2019-04-10 | Nanyang Technological University | Site-specific induction of bimolecular quadruplex-duplex hybrids and methods of using the same |
EP2959019B1 (en) | 2013-02-20 | 2019-09-04 | Emory University | Methods of sequencing nucleic acids in mixtures and compositions related thereto |
GB201314695D0 (en) | 2013-08-16 | 2013-10-02 | Oxford Nanopore Tech Ltd | Method |
KR102168813B1 (en) | 2013-03-08 | 2020-10-22 | 옥스포드 나노포어 테크놀로지즈 리미티드 | Enzyme stalling method |
WO2014145620A2 (en) * | 2013-03-15 | 2014-09-18 | The Broad Institute, Inc. | Novel hybridization probes and uses thereof |
CN110669826A (en) * | 2013-04-30 | 2020-01-10 | 加州理工学院 | Barcoded molecular multiplex tags by sequential hybridization |
US10510435B2 (en) | 2013-04-30 | 2019-12-17 | California Institute Of Technology | Error correction of multiplex imaging analysis by sequential hybridization |
GB201310823D0 (en) * | 2013-06-18 | 2013-07-31 | Lgc Ltd | Fluorophore-based oligonucleotide probes with a universal element |
US9856472B2 (en) | 2013-07-01 | 2018-01-02 | California Institute Of Technology | Small conditional RNAs |
EP3030680B1 (en) * | 2013-08-09 | 2018-10-03 | Luminex Corporation | Melt discrimination and multiplexing in nucleic acid assays |
AU2014306512C1 (en) | 2013-08-14 | 2021-07-08 | Gen-Probe Incorporated | Compositions and methods for detecting HEV nucleic acid |
KR102536833B1 (en) | 2013-08-28 | 2023-05-26 | 벡톤 디킨슨 앤드 컴퍼니 | Massively parallel single cell analysis |
JP2017504307A (en) | 2013-10-07 | 2017-02-09 | セルラー リサーチ, インコーポレイテッド | Method and system for digitally counting features on an array |
CN111534580A (en) | 2013-12-28 | 2020-08-14 | 夸登特健康公司 | Methods and systems for detecting genetic variations |
GB201403096D0 (en) | 2014-02-21 | 2014-04-09 | Oxford Nanopore Tech Ltd | Sample preparation method |
AU2014384731B2 (en) | 2014-02-28 | 2017-12-14 | Gen-Probe Incorporated | Method of isolating nucleic acid from specimens in liquid-based cytology preservatives containing formaldehyde |
DE102015017080B3 (en) | 2014-02-28 | 2024-01-04 | Gen-Probe Incorporated | Method for isolating nucleic acid from cytological samples in liquid preservatives containing formaldehyde |
US11091810B2 (en) * | 2015-01-27 | 2021-08-17 | BioSpyder Technologies, Inc. | Focal gene expression profiling of stained FFPE tissues with spatial correlation to morphology |
GB201418159D0 (en) | 2014-10-14 | 2014-11-26 | Oxford Nanopore Tech Ltd | Method |
AU2015336079C1 (en) | 2014-10-20 | 2020-12-17 | Gen-Probe Incorporated | Red blood cell lysis solution |
CA2965661C (en) * | 2014-10-23 | 2023-09-26 | Ricardo Mancebo | Reagents and methods for isothermal chain reaction |
US10865433B2 (en) | 2015-01-09 | 2020-12-15 | Gen-Probe Incorporated | Reaction mixtures for diagnosing bacterial vaginosis |
WO2016116935A1 (en) | 2015-01-21 | 2016-07-28 | Yeda Research And Development Co. Ltd. | Use of rasa2 as a prognostic and therapeutic marker for melanoma |
WO2016134078A1 (en) | 2015-02-19 | 2016-08-25 | Becton, Dickinson And Company | High-throughput single-cell analysis combining proteomic and genomic information |
EP3262192B1 (en) | 2015-02-27 | 2020-09-16 | Becton, Dickinson and Company | Spatially addressable molecular barcoding |
EP3910075A1 (en) | 2015-03-16 | 2021-11-17 | Gen-Probe Incorporated | Kits for detecting bacterial nucleic acid and diagnosing bacterial vaginosis |
EP4180535A1 (en) | 2015-03-30 | 2023-05-17 | Becton, Dickinson and Company | Methods and compositions for combinatorial barcoding |
WO2016172373A1 (en) | 2015-04-23 | 2016-10-27 | Cellular Research, Inc. | Methods and compositions for whole transcriptome amplification |
US11124823B2 (en) | 2015-06-01 | 2021-09-21 | Becton, Dickinson And Company | Methods for RNA quantification |
CN108026524A (en) | 2015-09-11 | 2018-05-11 | 赛卢拉研究公司 | Method and composition for nucleic acid library standardization |
SG11201805119QA (en) | 2015-12-17 | 2018-07-30 | Guardant Health Inc | Methods to determine tumor gene copy number by analysis of cell-free dna |
JP6894439B2 (en) | 2016-01-04 | 2021-06-30 | ジェン−プローブ・インコーポレーテッド | Methods and Compositions for Detecting Candida Species |
WO2017173279A1 (en) * | 2016-03-31 | 2017-10-05 | Arizona Board Of Regents On Behalf Of Arizona State University | Probes and methods for measuring tandem repeats |
CA3210120C (en) * | 2016-04-25 | 2024-04-09 | President And Fellows Of Harvard College | Hybridization chain reaction methods for in situ molecular detection |
US10563247B2 (en) * | 2016-04-27 | 2020-02-18 | Kent State University | Single-molecule mechanoanalytical DNA device for ultrasensitive sensing of analytes |
DE202017007130U1 (en) | 2016-04-27 | 2019-08-29 | Gen-Probe Inc. | Lysis reagent for blood cells |
AU2017261189B2 (en) | 2016-05-02 | 2023-02-09 | Becton, Dickinson And Company | Accurate molecular barcoding |
US10301677B2 (en) | 2016-05-25 | 2019-05-28 | Cellular Research, Inc. | Normalization of nucleic acid libraries |
GB201609220D0 (en) | 2016-05-25 | 2016-07-06 | Oxford Nanopore Tech Ltd | Method |
EP3465502B1 (en) | 2016-05-26 | 2024-04-10 | Becton, Dickinson and Company | Molecular label counting adjustment methods |
US10640763B2 (en) | 2016-05-31 | 2020-05-05 | Cellular Research, Inc. | Molecular indexing of internal sequences |
US10202641B2 (en) | 2016-05-31 | 2019-02-12 | Cellular Research, Inc. | Error correction in amplification of samples |
US10508312B2 (en) | 2016-06-10 | 2019-12-17 | Gen-Probe Incorporated | Compositions and methods for detecting Zika virus nucleic acid |
CN109689894A (en) | 2016-06-19 | 2019-04-26 | 耶路撒冷希伯来大学伊萨姆研发有限公司 | Chemotherapy resistance is screened in human haploid cell |
DK3481843T3 (en) | 2016-07-05 | 2022-02-07 | California Inst Of Techn | Fractional initiator hybridization chain reaction |
CA3034617A1 (en) | 2016-08-30 | 2018-03-08 | California Institute Of Technology | Immunohistochemistry via hybridization chain reaction |
US11505819B2 (en) * | 2016-09-22 | 2022-11-22 | William Marsh Rice University | Molecular hybridization probes for complex sequence capture and analysis |
JP7091348B2 (en) | 2016-09-26 | 2022-06-27 | ベクトン・ディキンソン・アンド・カンパニー | Measurement of protein expression using reagents with barcoded oligonucleotide sequences |
EP3529381B1 (en) | 2016-10-19 | 2022-07-06 | Gen-Probe Incorporated | Compositions and methods for detecting or quantifying hepatitis c virus |
AU2017359047A1 (en) | 2016-11-08 | 2019-05-02 | Becton, Dickinson And Company | Methods for cell label classification |
KR20190077062A (en) | 2016-11-08 | 2019-07-02 | 셀룰러 리서치, 인크. | How to classify expression profiles |
EP3541959A1 (en) | 2016-11-21 | 2019-09-25 | Gen-Probe Incorporated | Compositions and methods for detecting or quantifying hepatitis b virus |
KR20180072480A (en) * | 2016-12-21 | 2018-06-29 | 한국생명공학연구원 | Self fluorescence signal-amplifiable bioprobe set for detecting miRNA and uses thereof |
CN110573253B (en) | 2017-01-13 | 2021-11-02 | 赛卢拉研究公司 | Hydrophilic coating for fluid channels |
CN110382708A (en) | 2017-02-01 | 2019-10-25 | 赛卢拉研究公司 | Selective amplification is carried out using blocking property oligonucleotides |
US10844425B2 (en) | 2017-03-24 | 2020-11-24 | Gen-Probe Incorporated | Compositions and methods for detecting or quantifying parainfluenza virus |
CA3056135C (en) | 2017-03-25 | 2024-02-20 | Gen-Probe Incorporated | Compositions, methods and kits to detect adenovirus nucleic acids |
WO2018217905A1 (en) * | 2017-05-23 | 2018-11-29 | Rutgers, The State University Of New Jersey | Target mediated in situ signal amplification with dual interacting hairpin probes |
CN110719959B (en) | 2017-06-05 | 2021-08-06 | 贝克顿迪金森公司 | Sample indexing for single cells |
AU2018281196B2 (en) | 2017-06-07 | 2022-04-28 | Gen-Probe Incorporated | Detecting Babesia species nucleic acid in a sample |
WO2019018555A1 (en) * | 2017-07-18 | 2019-01-24 | Ohio State Innovation Foundation | Antisense fingerloop dnas and uses thereof |
EP4219766A3 (en) | 2017-08-11 | 2023-10-11 | Gen-Probe Incorporated | Compositions and methods for detecting staphylococcus aureus |
US11485966B2 (en) * | 2017-10-11 | 2022-11-01 | Mgi Tech Co., Ltd. | Method for improving loading and stability of nucleic acid |
CN111465707A (en) | 2017-11-17 | 2020-07-28 | 简·探针公司 | Compositions and methods for detecting C1orf43 nucleic acids |
WO2019118735A1 (en) | 2017-12-15 | 2019-06-20 | Gen-Probe Incorporated | Compositions and methods for detecting toxigenic clostridium difficile |
US11946095B2 (en) | 2017-12-19 | 2024-04-02 | Becton, Dickinson And Company | Particles associated with oligonucleotides |
WO2019213237A1 (en) | 2018-05-03 | 2019-11-07 | Becton, Dickinson And Company | Molecular barcoding on opposite transcript ends |
WO2019213294A1 (en) | 2018-05-03 | 2019-11-07 | Becton, Dickinson And Company | High throughput multiomics sample analysis |
GB201807793D0 (en) | 2018-05-14 | 2018-06-27 | Oxford Nanopore Tech Ltd | Method |
GB2597569B (en) | 2018-06-13 | 2023-01-25 | Gen Probe Inc | Compositions and methods for detecting group B streptococcus nucleic acid |
EP3830302B1 (en) | 2018-08-01 | 2022-10-05 | Gen-Probe Incorporated | Compositions and methods for detecting nucleic acids of epstein-barr virus |
US11441182B2 (en) * | 2018-08-08 | 2022-09-13 | Virginia Commonwealth University | Multiplexed and recyclable single-molecule sensors for quantitative analysis of nucleic-acid biomarkers |
CA3107043A1 (en) | 2018-08-21 | 2020-02-27 | Gen-Probe Incorporated | Compositions and methods for amplifying, detecting or quantifying human cytomegalovirus |
AU2019324196A1 (en) | 2018-08-24 | 2021-03-18 | Gen-Probe Incorporated | Compositions and methods for detecting bacterial nucleic acid and diagnosing bacterial vaginosis |
WO2020069085A2 (en) | 2018-09-27 | 2020-04-02 | Gen-Probe Incorporated | Compositions and methods for detecting bordetella pertussis and bordetella parapertussis nucleic acid |
JP2022511398A (en) | 2018-10-01 | 2022-01-31 | ベクトン・ディキンソン・アンド・カンパニー | Determining the 5'transcription sequence |
WO2020086546A1 (en) | 2018-10-22 | 2020-04-30 | Gen-Probe Incorporated | Compositions and methods for amplifying, detecting or quantifying human polyomavirus bk virus |
IL262658A (en) | 2018-10-28 | 2020-04-30 | Memorial Sloan Kettering Cancer Center | Prevention of age related clonal hematopoiesis and diseases associated therewith |
JP2022506546A (en) | 2018-11-08 | 2022-01-17 | ベクトン・ディキンソン・アンド・カンパニー | Single-cell whole transcriptome analysis using random priming |
IL263184A (en) | 2018-11-21 | 2020-05-31 | Yarden Yosef | Method of treating cancer and compositions for same |
EP3894552A1 (en) | 2018-12-13 | 2021-10-20 | Becton, Dickinson and Company | Selective extension in single cell whole transcriptome analysis |
TW202030333A (en) | 2018-12-20 | 2020-08-16 | 美商簡 探針公司 | Compositions and methods for detecting plasmodium species nucleic acid |
WO2020150356A1 (en) | 2019-01-16 | 2020-07-23 | Becton, Dickinson And Company | Polymerase chain reaction normalization through primer titration |
EP4242322A3 (en) | 2019-01-23 | 2023-09-20 | Becton, Dickinson and Company | Oligonucleotides associated with antibodies |
JP2022518510A (en) | 2019-01-25 | 2022-03-15 | ジェン-プローブ・インコーポレーテッド | Detection of drug-resistant MYCOPLASMA GENITALIUM |
WO2020197987A1 (en) | 2019-03-22 | 2020-10-01 | Gen-Probe Incorporated | Compositions and methods for detecting group a streptococcus |
US20220307093A1 (en) | 2019-07-03 | 2022-09-29 | Gen-Probe Incorporated | Oligonucleotides for use in determining the presence of trichomonas vaginalis in a sample |
US11939622B2 (en) | 2019-07-22 | 2024-03-26 | Becton, Dickinson And Company | Single cell chromatin immunoprecipitation sequencing assay |
GB201910635D0 (en) * | 2019-07-25 | 2019-09-11 | Ttp Plc | Detection of target oligonucleotides |
CN114729350A (en) | 2019-11-08 | 2022-07-08 | 贝克顿迪金森公司 | Obtaining full-length V (D) J information for immunohistorian sequencing using random priming |
WO2021146207A1 (en) | 2020-01-13 | 2021-07-22 | Becton, Dickinson And Company | Methods and compositions for quantitation of proteins and rna |
US20230220499A1 (en) | 2020-05-07 | 2023-07-13 | Grifols Diagnostic Solutions Inc. | Methods and compositions for detecting sars-cov-2 nucleic acid |
EP4150118A1 (en) | 2020-05-14 | 2023-03-22 | Becton Dickinson and Company | Primers for immune repertoire profiling |
US11932901B2 (en) | 2020-07-13 | 2024-03-19 | Becton, Dickinson And Company | Target enrichment using nucleic acid probes for scRNAseq |
AU2021308095A1 (en) | 2020-07-17 | 2023-03-09 | Gen-Probe Incorporated | Detection of macrolide-resistant mycoplasma genitalium |
WO2022079719A1 (en) | 2020-10-15 | 2022-04-21 | Yeda Research And Development Co. Ltd. | Method of treating myeloid malignancies |
EP4247967A1 (en) | 2020-11-20 | 2023-09-27 | Becton, Dickinson and Company | Profiling of highly expressed and lowly expressed proteins |
EP4284925A1 (en) | 2021-01-26 | 2023-12-06 | California Institute of Technology | Allosteric conditional guide rnas for cell-selective regulation of crispr/cas |
AU2022319876A1 (en) | 2021-07-27 | 2024-01-18 | Gen-Probe Incorporated | Compositions and methods for detecting gastrointestinal pathogens |
WO2024054924A1 (en) | 2022-09-08 | 2024-03-14 | Gen-Probe Incorporated | Method of detecting nucleic acid analytes using dual-specificity primers |
Family Cites Families (15)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CA1190838A (en) * | 1981-07-17 | 1985-07-23 | Cavit Akin | Homogeneous nucleic acid hybridization diagnostics by non-radiative energy transfer |
WO1985000813A1 (en) * | 1983-08-03 | 1985-02-28 | The Research Foundation Of State University Of New | Nucleic acid branched junctions with precisely defined migrational mobility |
US4647529A (en) * | 1984-06-01 | 1987-03-03 | Rodland Karin D | Hybridization method of detecting nucleic acid sequences with probe containing thionucleotide |
US4775619A (en) * | 1984-10-16 | 1988-10-04 | Chiron Corporation | Polynucleotide determination with selectable cleavage sites |
US4820630A (en) * | 1984-11-23 | 1989-04-11 | Digene Diagnostics, Incorporated | Assay for nucleic acid sequences, particularly genetic lesions, using interactive labels |
EP0253894A1 (en) * | 1985-12-27 | 1988-01-27 | Toray Industries, Inc. | Dna probe and method of preparing the same |
DE3639109A1 (en) * | 1986-11-15 | 1988-05-19 | Merck Patent Gmbh | METHOD FOR DETERMINING NUCLEIC ACIDS |
KR960002561B1 (en) * | 1987-09-21 | 1996-02-22 | 젠-프로우브 인코퍼레이티드 | Homogeneous protection assays |
US5030557A (en) * | 1987-11-24 | 1991-07-09 | Ml Technology Venture | Means and method for enhancing nucleic acid hybridization |
WO1989009284A1 (en) * | 1988-03-24 | 1989-10-05 | University Of Iowa Research Foundation | Catalytic hybridization systems for the detection of nucleic acid sequences based on their activity as cofactors in catalytic reactions in which a complementary labeled nucleic acid probe is cleaved |
US5118801A (en) * | 1988-09-30 | 1992-06-02 | The Public Health Research Institute | Nucleic acid process containing improved molecular switch |
JPH04506152A (en) * | 1989-06-19 | 1992-10-29 | ザ・ジョーンズ・ホップキンス・ユニバーシティー | Formation of triple helix complexes of double-stranded DNA using nucleoside oligomers |
NO904633L (en) * | 1989-11-09 | 1991-05-10 | Molecular Diagnostics Inc | AMPLIFICATION OF NUCLEIC ACIDS BY TRANSCRIPABLE HAIRNEL PROBE. |
CA2039517C (en) * | 1990-04-03 | 2006-11-07 | David Segev | Dna probe signal amplification |
JPH04222599A (en) * | 1990-04-20 | 1992-08-12 | Syntex Usa Inc | Method for assaying double receptor polynucleotide |
-
1992
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Cited By (5)
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JP2013542738A (en) * | 2010-11-19 | 2013-11-28 | スピーデクス ピーティーワイ リミテッド | Signal amplification |
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