JPH07306201A - 破骨細胞評価用基板の製造方法 - Google Patents
破骨細胞評価用基板の製造方法Info
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- JPH07306201A JPH07306201A JP12309294A JP12309294A JPH07306201A JP H07306201 A JPH07306201 A JP H07306201A JP 12309294 A JP12309294 A JP 12309294A JP 12309294 A JP12309294 A JP 12309294A JP H07306201 A JPH07306201 A JP H07306201A
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- osteoclasts
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Abstract
(57)【要約】
【目的】 破骨細胞の活動により形成される吸収窩が確
認し易い破骨細胞評価用基板を製造する方法を提供す
る。 【構成】 まずＣａＯとＳｉＯ2 を主成分とするガラス
若しくは結晶化ガラス、Ｎａ2 ＯとＳｉＯ2 を主成分と
するガラス、又はリン酸カルシウム系セラミックスから
なる基材を用意する。次いでこの基材をカルシウムイオ
ンとリン酸イオンを含む溶液中に浸漬することにより、
基材表面にアパタイト膜が形成された破骨細胞評価用基
板を得る。
認し易い破骨細胞評価用基板を製造する方法を提供す
る。 【構成】 まずＣａＯとＳｉＯ2 を主成分とするガラス
若しくは結晶化ガラス、Ｎａ2 ＯとＳｉＯ2 を主成分と
するガラス、又はリン酸カルシウム系セラミックスから
なる基材を用意する。次いでこの基材をカルシウムイオ
ンとリン酸イオンを含む溶液中に浸漬することにより、
基材表面にアパタイト膜が形成された破骨細胞評価用基
板を得る。
Description
【０００１】
【産業上の利用分野】本発明は破骨細胞の活性度を評価
するために用いられる破骨細胞評価用基板の製造方法に
関するものである。
するために用いられる破骨細胞評価用基板の製造方法に
関するものである。
【０００２】
【従来の技術】骨組織は骨形成と骨吸収が絶えず行わ
れ、古い骨が吸収された後に新しい骨が形成される過程
が繰り返される。この活動のうち骨吸収は破骨細胞が担
っているが、様々な疾患により破骨細胞の働きに障害が
生じると骨代謝異常が起こることが知られている。この
ため破骨細胞の働きを評価することが重要となってい
る。例えば骨量が低下し、骨折を起こし易くなる骨粗し
ょう症では、破骨細胞の活動を抑える治療薬が開発され
ているが、このような薬の効果を評価する場合には破骨
細胞の機能評価が不可欠である。
れ、古い骨が吸収された後に新しい骨が形成される過程
が繰り返される。この活動のうち骨吸収は破骨細胞が担
っているが、様々な疾患により破骨細胞の働きに障害が
生じると骨代謝異常が起こることが知られている。この
ため破骨細胞の働きを評価することが重要となってい
る。例えば骨量が低下し、骨折を起こし易くなる骨粗し
ょう症では、破骨細胞の活動を抑える治療薬が開発され
ているが、このような薬の効果を評価する場合には破骨
細胞の機能評価が不可欠である。
【０００３】ところで破骨細胞は、プロトンイオン（Ｈ
+ ）を分泌することによって局所のｐＨを低下させ、骨
の成分であるアパタイトを溶解して吸収する。このため
その機能評価は、牛骨や鯨デンティン等の生物試料上で
破骨細胞を培養し、破骨細胞の活動による吸収窩が形成
されているか否かや破骨細胞の大きさ等を評価すること
が行われている。
+ ）を分泌することによって局所のｐＨを低下させ、骨
の成分であるアパタイトを溶解して吸収する。このため
その機能評価は、牛骨や鯨デンティン等の生物試料上で
破骨細胞を培養し、破骨細胞の活動による吸収窩が形成
されているか否かや破骨細胞の大きさ等を評価すること
が行われている。
【０００４】
【発明が解決しようとする課題】しかしながら牛骨には
骨細胞が存在していたり血管による穴があるため、破骨
細胞による吸収窩が評価し難い。また鯨デンティンは、
骨細胞や血管による穴がなく、スムーズな表面を有して
いるため評価には適しているが、資源保護の問題から入
手が困難になっている。
骨細胞が存在していたり血管による穴があるため、破骨
細胞による吸収窩が評価し難い。また鯨デンティンは、
骨細胞や血管による穴がなく、スムーズな表面を有して
いるため評価には適しているが、資源保護の問題から入
手が困難になっている。
【０００５】そこで生物試料の代わりに人工的に評価用
基板を作製する試みがなされており、例えば水酸アパタ
イト焼結体を評価用基板として用いることがバイオマテ
リアル１９９３年，Ｖｏｌ．１４，Ｎｏ．２において提
案されている。しかし水酸アパタイト焼結体は破骨細胞
に吸収され難く、しかも焼結時の気孔や研磨による傷や
穴により、吸収窩が確認し難いという欠点を有してい
る。
基板を作製する試みがなされており、例えば水酸アパタ
イト焼結体を評価用基板として用いることがバイオマテ
リアル１９９３年，Ｖｏｌ．１４，Ｎｏ．２において提
案されている。しかし水酸アパタイト焼結体は破骨細胞
に吸収され難く、しかも焼結時の気孔や研磨による傷や
穴により、吸収窩が確認し難いという欠点を有してい
る。
【０００６】本発明の目的は、破骨細胞の活動により形
成される吸収窩が確認し易い破骨細胞評価用基板を製造
する方法を提供することである。
成される吸収窩が確認し易い破骨細胞評価用基板を製造
する方法を提供することである。
【０００７】
【課題を解決するための手段】本発明の破骨細胞評価用
基板の製造方法は、ＣａＯとＳｉＯ2 を主成分とするガ
ラス若しくは結晶化ガラス、Ｎａ2 ＯとＳｉＯ2 を主成
分とするガラス、又はリン酸カルシウム系セラミックス
からなる基材を、カルシウムイオンとリン酸イオンを含
む溶液中に浸漬して、基材表面にアパタイト膜を形成す
ることを特徴とする。
基板の製造方法は、ＣａＯとＳｉＯ2 を主成分とするガ
ラス若しくは結晶化ガラス、Ｎａ2 ＯとＳｉＯ2 を主成
分とするガラス、又はリン酸カルシウム系セラミックス
からなる基材を、カルシウムイオンとリン酸イオンを含
む溶液中に浸漬して、基材表面にアパタイト膜を形成す
ることを特徴とする。
【０００８】以下、本発明の製造方法を詳細に説明す
る。
る。
【０００９】まずＣａＯとＳｉＯ2 を主成分とするガラ
ス若しくは結晶化ガラス、Ｎａ2 ＯとＳｉＯ2 を主成分
とするガラス、又はリン酸カルシウム系セラミックスか
らなる基材を用意する。
ス若しくは結晶化ガラス、Ｎａ2 ＯとＳｉＯ2 を主成分
とするガラス、又はリン酸カルシウム系セラミックスか
らなる基材を用意する。
【００１０】ＣａＯとＳｉＯ2 を主成分とするガラスと
しては、重量百分率でＣａＯ２０〜６０％、ＳｉＯ2 ３
０〜６０％、Ｐ2 Ｏ5 ０〜３０％、ＭｇＯ０〜２０％、
ＣａＦ2 ０〜５％からなるものや、ＣａＯ２０〜３０
％、ＳｉＯ2 ２０〜６０％、Ｎａ2 Ｏ２０〜６０％から
なるもの等が使用できる。またＣａＯとＳｉＯ2 を主成
分とする結晶化ガラスとしては重量百分率でＣａＯ２０
〜６０％、ＳｉＯ2 ３０〜６０％、Ｐ2 Ｏ5 ０〜３０
％、ＭｇＯ０〜２０％、ＣａＦ2 ０〜５％からなり、ア
パタイトとウォラストナイト、さらに必要に応じてディ
オプサイドや第三リン酸カルシウム等を析出してなるも
の等を使用することができる。
しては、重量百分率でＣａＯ２０〜６０％、ＳｉＯ2 ３
０〜６０％、Ｐ2 Ｏ5 ０〜３０％、ＭｇＯ０〜２０％、
ＣａＦ2 ０〜５％からなるものや、ＣａＯ２０〜３０
％、ＳｉＯ2 ２０〜６０％、Ｎａ2 Ｏ２０〜６０％から
なるもの等が使用できる。またＣａＯとＳｉＯ2 を主成
分とする結晶化ガラスとしては重量百分率でＣａＯ２０
〜６０％、ＳｉＯ2 ３０〜６０％、Ｐ2 Ｏ5 ０〜３０
％、ＭｇＯ０〜２０％、ＣａＦ2 ０〜５％からなり、ア
パタイトとウォラストナイト、さらに必要に応じてディ
オプサイドや第三リン酸カルシウム等を析出してなるも
の等を使用することができる。
【００１１】Ｎａ2 ＯとＳｉＯ2 を主成分とするガラス
としては、Ｎａ2 Ｏ２０〜４０％、ＳｉＯ2 ６０〜８０
％、ＣａＯ０〜２０％、ＭｇＯ０〜１０％の組成を有す
るもの等が使用できる。
としては、Ｎａ2 Ｏ２０〜４０％、ＳｉＯ2 ６０〜８０
％、ＣａＯ０〜２０％、ＭｇＯ０〜１０％の組成を有す
るもの等が使用できる。
【００１２】リン酸カルシウム系セラミックスとしては
水酸アパタイト焼結体、リン酸水素カルシウム焼結体等
が好ましい。
水酸アパタイト焼結体、リン酸水素カルシウム焼結体等
が好ましい。
【００１３】なお基材をこれらの材料に限定した理由は
細胞培養に悪影響を与えないとともに、カルシウムイオ
ン及びリン酸イオンを含む水溶液に漬浸するだけで緻密
で平坦なアパタイト膜を基材表面に形成することができ
るためである。
細胞培養に悪影響を与えないとともに、カルシウムイオ
ン及びリン酸イオンを含む水溶液に漬浸するだけで緻密
で平坦なアパタイト膜を基材表面に形成することができ
るためである。
【００１４】次に基材をカルシウムイオンとリン酸イオ
ンを含む溶液中に漬浸する。
ンを含む溶液中に漬浸する。
【００１５】カルシウムイオンとリン酸イオンを含む溶
液は特に限定されるものではないが、イオン濃度が高す
ぎると溶液が不安定になって結晶が析出してしまうこと
があるため、カルシウムイオンはＣａ2+として１０ｍＭ
以下、リン酸イオンはＨＰＯ4 2- として５０ｍＭ以下で
あることが好ましい。またトリスヒドロキシメチルアミ
ノメタン５０ｍＭや塩酸４５ｍＭを加えてｐＨを６〜
９、好ましくは７．２５に調整しておくことが望まし
い。なお溶液の好適な例は、人体液と同じ程度の無機イ
オン濃度を有し、且つ、同程度のｐＨを有するいわゆる
凝似体液である。表１に凝似体液を示す。これらの中で
も特に好ましいのはＮｏ．３の溶液である。
液は特に限定されるものではないが、イオン濃度が高す
ぎると溶液が不安定になって結晶が析出してしまうこと
があるため、カルシウムイオンはＣａ2+として１０ｍＭ
以下、リン酸イオンはＨＰＯ4 2- として５０ｍＭ以下で
あることが好ましい。またトリスヒドロキシメチルアミ
ノメタン５０ｍＭや塩酸４５ｍＭを加えてｐＨを６〜
９、好ましくは７．２５に調整しておくことが望まし
い。なお溶液の好適な例は、人体液と同じ程度の無機イ
オン濃度を有し、且つ、同程度のｐＨを有するいわゆる
凝似体液である。表１に凝似体液を示す。これらの中で
も特に好ましいのはＮｏ．３の溶液である。
【００１６】
【表１】
【００１７】溶液の温度は形成されるアパタイト膜の膜
厚や性状に影響し、温度が高いほどアパタイト膜の成長
が早くなる傾向がある。溶液の温度としては１０〜７０
℃程度であれば使用可能であるが、３０〜４５℃、特に
３６〜３７℃であることが好ましい。
厚や性状に影響し、温度が高いほどアパタイト膜の成長
が早くなる傾向がある。溶液の温度としては１０〜７０
℃程度であれば使用可能であるが、３０〜４５℃、特に
３６〜３７℃であることが好ましい。
【００１８】基材の溶液への漬浸時間は、基材の種類、
溶液の種類や温度等によって左右されるが、例えば３６
〜３７℃の凝似体液を使用した場合、１時間〜７日間で
ある。
溶液の種類や温度等によって左右されるが、例えば３６
〜３７℃の凝似体液を使用した場合、１時間〜７日間で
ある。
【００１９】このようにして基材をカルシウムイオン及
びリン酸イオンを含む溶液中に漬浸することにより、基
材表面に水酸アパタイトや炭酸アパタイトからなる平坦
で緻密なアパタイト膜が形成された破骨細胞評価用基板
を得ることができる。なおアパタイト膜の膜厚は特に限
定されるものではないが、１〜１０μｍが観察し易く好
ましい。
びリン酸イオンを含む溶液中に漬浸することにより、基
材表面に水酸アパタイトや炭酸アパタイトからなる平坦
で緻密なアパタイト膜が形成された破骨細胞評価用基板
を得ることができる。なおアパタイト膜の膜厚は特に限
定されるものではないが、１〜１０μｍが観察し易く好
ましい。
【００２０】
【作用】本発明の破骨細胞評価用基板の製造方法におい
て、ＣａＯとＳｉＯ2 を主成分とするガラス若しくは結
晶化ガラスからなる基材をカルシウムイオンとリン酸イ
オンを含む溶液に漬浸すると、基材表面からカルシウム
イオンが溶出して溶液中のカルシウムイオン濃度を高
め、アパタイトを析出し易くする。また基材表面にシラ
ノール基が形成され、これがアパタイトの核の生成を著
しく誘起して基材表面にアパタイトの核を無数に生成さ
せる。そして生成した核が水溶液中のカルシウムイオン
やリン酸イオンを取り込んで成長し、基材表面にアパタ
イト膜が形成される。
て、ＣａＯとＳｉＯ2 を主成分とするガラス若しくは結
晶化ガラスからなる基材をカルシウムイオンとリン酸イ
オンを含む溶液に漬浸すると、基材表面からカルシウム
イオンが溶出して溶液中のカルシウムイオン濃度を高
め、アパタイトを析出し易くする。また基材表面にシラ
ノール基が形成され、これがアパタイトの核の生成を著
しく誘起して基材表面にアパタイトの核を無数に生成さ
せる。そして生成した核が水溶液中のカルシウムイオン
やリン酸イオンを取り込んで成長し、基材表面にアパタ
イト膜が形成される。
【００２１】Ｎａ2 ＯとＳｉＯ2 を主成分とするガラス
からなる基材を溶液に漬浸すると、ナトリウムイオンが
溶出して溶液中のアパタイトの成分であるＯＨ基濃度が
高まり、アパタイトの析出が容易になる。また基材表面
に多くのシラノール基が形成され、これがアパタイトの
核の生成を著しく誘起するため、上記と同様に基材表面
にアパタイト膜が形成される。
からなる基材を溶液に漬浸すると、ナトリウムイオンが
溶出して溶液中のアパタイトの成分であるＯＨ基濃度が
高まり、アパタイトの析出が容易になる。また基材表面
に多くのシラノール基が形成され、これがアパタイトの
核の生成を著しく誘起するため、上記と同様に基材表面
にアパタイト膜が形成される。
【００２２】またリン酸カルシウム系セラミックスから
なる基材を用いた場合は、基材表面からカルシウムイオ
ンが溶出して溶液中のカルシウムイオン濃度を高め、基
材表面付近のアパタイトの過飽和度が高くなる。その結
果、基材表面にアパタイトが析出し、アパタイト膜が形
成される。
なる基材を用いた場合は、基材表面からカルシウムイオ
ンが溶出して溶液中のカルシウムイオン濃度を高め、基
材表面付近のアパタイトの過飽和度が高くなる。その結
果、基材表面にアパタイトが析出し、アパタイト膜が形
成される。
【００２３】このようにして形成されたアパタイト膜は
緻密で平坦であるとともに、骨類似のアパタイトからな
るため破骨細胞に吸収され易いものである。
緻密で平坦であるとともに、骨類似のアパタイトからな
るため破骨細胞に吸収され易いものである。
【００２４】
【実施例】以下、実施例に基づいて本発明を説明する。
【００２５】表２及び表３は本発明の実施例（試料Ｎ
ｏ．１〜４）及び比較例（試料Ｎｏ．５及び６）を示し
ている。
ｏ．１〜４）及び比較例（試料Ｎｏ．５及び６）を示し
ている。
【００２６】
【表２】
【００２７】
【表３】
【００２８】試料Ｎｏ．１〜４は次のようにして調製し
た。
た。
【００２９】まず表に示した材料からなる大きさ１５φ
×１ｔｍｍの基材を用意した。また基材を漬浸する溶液
として、表１のＮｏ．３の凝似体液を使用し、これにト
リスヒドロキシメチルアミノメタン５０ｍＭや塩酸４５
ｍＭを加えて３６．５℃でのｐＨを７．２５に調節し
た。その後、ポリエチレン容器に基材と溶液３０ｍｌを
入れ、液温を３７℃に保持して５日間漬浸することによ
り、基材表面に緻密で平坦な膜厚２〜３μｍのアパタイ
ト膜を形成した。このアパタイト膜は、水酸アパタイト
と炭酸アパタイトが混在した骨類似のアパタイトからな
る膜であった。なおアパタイト膜が形成されたか否か、
或は形成されたアパタイト膜の状態等については、基材
を溶液から取り出し、蒸留水で洗浄乾燥させた後、走査
型顕微鏡と薄膜Ｘ線回折分析により確認した。
×１ｔｍｍの基材を用意した。また基材を漬浸する溶液
として、表１のＮｏ．３の凝似体液を使用し、これにト
リスヒドロキシメチルアミノメタン５０ｍＭや塩酸４５
ｍＭを加えて３６．５℃でのｐＨを７．２５に調節し
た。その後、ポリエチレン容器に基材と溶液３０ｍｌを
入れ、液温を３７℃に保持して５日間漬浸することによ
り、基材表面に緻密で平坦な膜厚２〜３μｍのアパタイ
ト膜を形成した。このアパタイト膜は、水酸アパタイト
と炭酸アパタイトが混在した骨類似のアパタイトからな
る膜であった。なおアパタイト膜が形成されたか否か、
或は形成されたアパタイト膜の状態等については、基材
を溶液から取り出し、蒸留水で洗浄乾燥させた後、走査
型顕微鏡と薄膜Ｘ線回折分析により確認した。
【００３０】試料Ｎｏ．５は、牛骨から作製した６φ×
０．２ｔｍｍの基材を使用し、また試料Ｎｏ．６は、試
料Ｎｏ．４で基材として用意した水酸アパタイト焼結体
を用いた。
０．２ｔｍｍの基材を使用し、また試料Ｎｏ．６は、試
料Ｎｏ．４で基材として用意した水酸アパタイト焼結体
を用いた。
【００３１】次に、各試料を１２穴の培養プレートに入
れて、２×１０7 個の破骨細胞を播種し、１０％牛胎児
血清を含むα−ＭＥＭ培養液１ｍｌで培養した。その
後、培養開始１０時間後及び２４時間後に０．００１％
プロナーゼＥと０．０２％ＥＤＴＡ液で破骨細胞以外の
細胞を取り除き、続いて走査電子顕微鏡、位相差顕微鏡
及び倒立顕微鏡を用い、破骨細胞の活動によって形成さ
れた吸収窩を観察した。なお倒立顕微鏡による観察に際
しては、酒石酸抵抗性酸フォスファターゼにて細胞を染
色した。
れて、２×１０7 個の破骨細胞を播種し、１０％牛胎児
血清を含むα−ＭＥＭ培養液１ｍｌで培養した。その
後、培養開始１０時間後及び２４時間後に０．００１％
プロナーゼＥと０．０２％ＥＤＴＡ液で破骨細胞以外の
細胞を取り除き、続いて走査電子顕微鏡、位相差顕微鏡
及び倒立顕微鏡を用い、破骨細胞の活動によって形成さ
れた吸収窩を観察した。なお倒立顕微鏡による観察に際
しては、酒石酸抵抗性酸フォスファターゼにて細胞を染
色した。
【００３２】結果を表２及び表３に示す。アパタイト膜
が形成された試料Ｎｏ．１〜４の各試料では、培養開始
１０時間後で破骨細胞の吸収窩が形成され、しかも明瞭
に観察できた。これに対して牛骨を用いた試料Ｎｏ．５
は、１２時間経過後では未だ吸収窩が形成されておら
ず、２４時間経過後は吸収窩が形成されていたものの、
その確認はやや困難であった。また水酸アパタイト焼結
体を用いた試料Ｎｏ．６は、２４時間経過後でも吸収窩
が全く形成されなかった。
が形成された試料Ｎｏ．１〜４の各試料では、培養開始
１０時間後で破骨細胞の吸収窩が形成され、しかも明瞭
に観察できた。これに対して牛骨を用いた試料Ｎｏ．５
は、１２時間経過後では未だ吸収窩が形成されておら
ず、２４時間経過後は吸収窩が形成されていたものの、
その確認はやや困難であった。また水酸アパタイト焼結
体を用いた試料Ｎｏ．６は、２４時間経過後でも吸収窩
が全く形成されなかった。
【００３３】なお基材として使用したＣａＯ−ＳｉＯ2
−ＭｇＯ−Ｐ2 Ｏ5 系ガラスは、重量百分率でＣａＯ４
４．７％、ＳｉＯ2 ３４％、ＭｇＯ４．６％、Ｐ2 Ｏ5
１６．２％、ＣａＦ2 ０．５％の組成を有するものであ
る。ＣａＯ−ＳｉＯ2 −ＭｇＯ−Ｐ2 Ｏ5 系結晶化ガラ
スは、上記組成のガラスを１０５０℃で２時間焼成して
アパタイトとウォラストナイトを析出させたものであ
る。Ｎａ2 Ｏ−ＳｉＯ2−ＣａＯ系ガラスは、Ｎａ2 Ｏ
２０％、ＳｉＯ2 ７０％、ＣａＯ１０％の組成を有する
ものを使用した。水酸アパタイト焼結体は、水酸アパタ
イト粉末を２０００ｋｇｆ／ｃｍ2 の静水圧プレス成形
後、１０００℃で２時間焼成したものを用いた。
−ＭｇＯ−Ｐ2 Ｏ5 系ガラスは、重量百分率でＣａＯ４
４．７％、ＳｉＯ2 ３４％、ＭｇＯ４．６％、Ｐ2 Ｏ5
１６．２％、ＣａＦ2 ０．５％の組成を有するものであ
る。ＣａＯ−ＳｉＯ2 −ＭｇＯ−Ｐ2 Ｏ5 系結晶化ガラ
スは、上記組成のガラスを１０５０℃で２時間焼成して
アパタイトとウォラストナイトを析出させたものであ
る。Ｎａ2 Ｏ−ＳｉＯ2−ＣａＯ系ガラスは、Ｎａ2 Ｏ
２０％、ＳｉＯ2 ７０％、ＣａＯ１０％の組成を有する
ものを使用した。水酸アパタイト焼結体は、水酸アパタ
イト粉末を２０００ｋｇｆ／ｃｍ2 の静水圧プレス成形
後、１０００℃で２時間焼成したものを用いた。
【００３４】また破骨細胞は公知の方法で用意した。即
ち、日本白色ラビット１０日齢の長官骨を切り出し、細
かく粉砕し、続いて３０ｍｌのα−ＭＥＭ培養液に漬浸
して細胞抽出のため１分間振動させた後、静置して２０
ｍｌの上澄み液を採取した。さらに細胞を遠心分離し、
４０ｍｌのα−ＭＥＭ培養液と１０％の牛胎児血清と抗
生物質（ペニシリンＧ１００Ｕ／ｍｌとストレプトマイ
シン１００μｇ／ｍｌ）に懸濁させ、破骨細胞含有分画
とした。このようにして得られた破骨細胞を使用した。
ち、日本白色ラビット１０日齢の長官骨を切り出し、細
かく粉砕し、続いて３０ｍｌのα−ＭＥＭ培養液に漬浸
して細胞抽出のため１分間振動させた後、静置して２０
ｍｌの上澄み液を採取した。さらに細胞を遠心分離し、
４０ｍｌのα−ＭＥＭ培養液と１０％の牛胎児血清と抗
生物質（ペニシリンＧ１００Ｕ／ｍｌとストレプトマイ
シン１００μｇ／ｍｌ）に懸濁させ、破骨細胞含有分画
とした。このようにして得られた破骨細胞を使用した。
【００３５】
【発明の効果】本発明の方法によって製造された破骨細
胞評価用基板は、形成されるアパタイト膜が骨類似のア
パタイトからなるために破骨細胞による吸収窩が形成さ
れ易く、またアパタイト膜が緻密で平坦であるため形成
された吸収窩が観察し易い。このため破骨細胞の機能評
価が容易であり、破骨細胞評価用基板の製造方法として
好適である。
胞評価用基板は、形成されるアパタイト膜が骨類似のア
パタイトからなるために破骨細胞による吸収窩が形成さ
れ易く、またアパタイト膜が緻密で平坦であるため形成
された吸収窩が観察し易い。このため破骨細胞の機能評
価が容易であり、破骨細胞評価用基板の製造方法として
好適である。
Claims (1)
- 【請求項１】 ＣａＯとＳｉＯ2 を主成分とするガラス
若しくは結晶化ガラス、Ｎａ2 ＯとＳｉＯ2 を主成分と
するガラス、又はリン酸カルシウム系セラミックスから
なる基材を、カルシウムイオンとリン酸イオンを含む溶
液中に浸漬して、基材表面にアパタイト膜を形成するこ
とを特徴とする破骨細胞評価用基板の製造方法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP12309294A JPH07306201A (ja) | 1994-05-11 | 1994-05-11 | 破骨細胞評価用基板の製造方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP12309294A JPH07306201A (ja) | 1994-05-11 | 1994-05-11 | 破骨細胞評価用基板の製造方法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH07306201A true JPH07306201A (ja) | 1995-11-21 |
Family
ID=14852011
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP12309294A Pending JPH07306201A (ja) | 1994-05-11 | 1994-05-11 | 破骨細胞評価用基板の製造方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH07306201A (ja) |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2007061100A1 (ja) | 2005-11-28 | 2007-05-31 | Japan Science And Technology Agency | フロック加工された体内留置型医療機器、該体内留置型医療機器の製造方法、および該体内留置型医療機器の製造装置 |
| US7473731B2 (en) | 2002-05-30 | 2009-01-06 | Japan Science & Technology Agency | Hydroxyapatite composite and manufacturing method thereof, medical material using hydroxyapatite complex |
-
1994
- 1994-05-11 JP JP12309294A patent/JPH07306201A/ja active Pending
Cited By (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US7473731B2 (en) | 2002-05-30 | 2009-01-06 | Japan Science & Technology Agency | Hydroxyapatite composite and manufacturing method thereof, medical material using hydroxyapatite complex |
| WO2007061100A1 (ja) | 2005-11-28 | 2007-05-31 | Japan Science And Technology Agency | フロック加工された体内留置型医療機器、該体内留置型医療機器の製造方法、および該体内留置型医療機器の製造装置 |
| JP5002784B2 (ja) * | 2005-11-28 | 2012-08-15 | 独立行政法人科学技術振興機構 | フロック加工された体内留置型医療機器、該体内留置型医療機器の製造方法、および該体内留置型医療機器の製造装置 |
| US8360000B2 (en) | 2005-11-28 | 2013-01-29 | Japan Science And Technology Agency | Flocked medical instrument to be placed in the body, method of producing the medical instrument to be placed in the body and apparatus for producing the medical instrument to be placed in the body |
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