JPH07303485A - Hcv anti-sense rna, manifestation vector containing the same, and therapeutic agent for hcv-involved disease containing the rna or manifestation vector - Google Patents

Hcv anti-sense rna, manifestation vector containing the same, and therapeutic agent for hcv-involved disease containing the rna or manifestation vector

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JPH07303485A
JPH07303485A JP6124609A JP12460994A JPH07303485A JP H07303485 A JPH07303485 A JP H07303485A JP 6124609 A JP6124609 A JP 6124609A JP 12460994 A JP12460994 A JP 12460994A JP H07303485 A JPH07303485 A JP H07303485A
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JP
Japan
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hcv
rna
dna
antisense
virus
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JP6124609A
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Japanese (ja)
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Shinichi Funahashi
真一 舟橋
Akira Hasegawa
明 長谷川
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Tonen General Sekiyu KK
Original Assignee
Tonen Corp
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Publication date
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Abstract

PURPOSE:To obtain the subject new RNA having anti-sense activity of hepatitis C virus (HCV) genome to 5'-nontranslational region, inhibiting in vivo HCV proliferation through suppressing the manifestation of HCV's structural protein, thus useful as e.g. a therapeutic agent for HCV-involved diseases. CONSTITUTION:This new HCV anti-sense RNA has a nucleotide sequence of formula I, II, III, IV, V or VI, having anti-sense activity of HCV genome to a fractional sequence of 5'-non-translational region and inhibiting in vivo proliferation of HCV through suppressing the manifestation of HCV's structural gene, thus being useful as a therapeutic agent for HCV-involved diseases such as hepatitis, hepatocirrhosis and hepatoma. This anti-sense RNA is obtained by transfer reaction, using a RNA polymerase, of a template DNA, the aimed amplified nucleotide sequence produced by polymerase chain reaction using a set of primers suitable for obtaining the aimed nucleotide sequence complementary to the fractional sequence of HCV's 5'-non-translational region.

Description

【発明の詳細な説明】Detailed Description of the Invention

【0001】[0001]

【産業上の利用分野】本発明は、C型肝炎ウイルス(H
CV)ゲノムの5′非翻訳領域の部分配列に対するアン
チセンスRNA、該RNAを保有する発現ベクター、及
び該RNA又は発現ベクターを含むHCV関連疾患治療
剤に関する。
The present invention relates to hepatitis C virus (H
The present invention relates to an antisense RNA against a partial sequence of the 5'untranslated region of the CV) genome, an expression vector carrying the RNA, and a therapeutic agent for HCV-related diseases containing the RNA or the expression vector.

【0002】[0002]

【従来の技術】ある遺伝子に対して相補的な遺伝子を用
いて該遺伝子の転写制御あるいは翻訳開始を妨害する、
いわゆるアンチセンス医薬品はアンチセンスDNA 、アン
チセンス RNAを用いた研究が幾つかなされている(総説
として Biotechniqes 6,p.958-976 (1988) 及び TIBTE
CH 10, p.152-158 (1992))。アンチセンスDNAにつ
いては、例えばHIV の RRE(Rev resposive element )
について相補的な oligodeoxinucleotide phosphorothi
oate (S-ODN)は Rev活性を阻害し、in vitroでは治療薬
としての効果が示されている(Ge Li らJournal of Vir
ology. 67, p.6882-6888 (1993))。アンチセンス医薬
は一般には化学合成により数十塩基のオリゴヌクレオチ
ドを作成し、それを適当な DDS(drug delivery syste
m)により体内に運び入れ、特定な遺伝子の発現を制御
することにより治療するというものである。導入する遺
伝子の安定性を高める為に幾つかの誘導体が試みられて
いるが、一般的には効果は一時的であり、頻繁に投与を
必要とする。DDS についてはリポソームを用いる方法が
試みられているものの、そのアンチセンス医薬の導入効
率や組織特異性を高める方法についてはまだ多くの問題
を抱えている。アンチセンスRNA は標的とする遺伝子の
mRNAと相補的に符合することにより翻訳過程を阻害する
が、これはアンチセンス DNAによる DNA-RNAよりもRNA-
RNA の方が結合が強いのでより特異的な阻害が期待でき
る。しかしながら、RNA は分解されやすく、取り扱いが
難しい。そこで、レトロウイルスベクターに組み込んで
細胞に導入する方法が考案された(Nishikura, K. and
J. Murray, Molecular and Cellular Biology. 7, p.63
9-649 (1987))。レトロウイルスベクターについては感
染効率が低い、導入遺伝子が感染先の細胞の染色体への
ランダムな部位に組み込まれてしまう危険性、分裂細胞
にしか遺伝子を導入することができない等の問題点があ
り、アンチセンスRNA をレトロウイルスベクターによっ
て導入できるのは骨髄細胞等限られた細胞、組織にしか
適用することができない。また、直接体内に投与するこ
とはできず、採取した細胞にレトロウイルスベクターを
導入し、増殖させた後に体内に戻すという操作(ex viv
o 投与)が必要であり、その間に病原菌等に汚染する恐
れもあり、患者からの細胞採取から体内に戻すまで多く
の時間と労力が必要となる。
2. Description of the Related Art A gene complementary to a gene is used to interfere with transcriptional control or translation initiation of the gene,
So-called antisense drugs have been studied using antisense DNA and antisense RNA (for review, see Biotechniqes 6 , p.958-976 (1988) and TIBTE).
CH 10 , p. 152-158 (1992)). Regarding antisense DNA, for example, HIV RRE (Rev resposive element)
About complementary oligodeoxinucleotide phosphorothi
Oate (S-ODN) inhibits Rev activity and has been shown to be effective as a therapeutic drug in vitro (Ge Li et al., Journal of Vir.
ology. 67 , p.6882-6888 (1993)). In general, antisense drugs are prepared by chemical synthesis into oligonucleotides of several tens of bases, which are then labeled with an appropriate DDS (drug delivery system).
It is carried into the body by m) and treated by controlling the expression of specific genes. Several derivatives have been attempted to enhance the stability of the introduced gene, but generally the effect is temporary, and frequent administration is required. Although methods using liposomes have been attempted for DDS, there are still many problems with methods for increasing the introduction efficiency and tissue specificity of the antisense drug. Antisense RNA is the target gene
Complementary coding with mRNA inhibits the translation process, but this is RNA- rather than DNA-RNA with antisense DNA.
Since RNA has stronger binding, more specific inhibition can be expected. However, RNA is easily degraded and is difficult to handle. Therefore, a method of introducing it into cells by incorporating it into a retrovirus vector was devised (Nishikura, K. and
J. Murray, Molecular and Cellular Biology. 7 , p.63
9-649 (1987)). Regarding retrovirus vectors, there are problems such as low infection efficiency, the risk that the transgene will be integrated at a random site in the chromosome of the infected cell, and the gene can be introduced only into dividing cells. The introduction of antisense RNA by retroviral vector can be applied only to limited cells and tissues such as bone marrow cells. In addition, it is not possible to directly administer it to the body, and an operation of introducing the retrovirus vector into the collected cells, propagating it, and then returning it to the body (ex vivo
o Administration) is required, and there is a risk of contamination with pathogenic bacteria, etc. during that time, and much time and labor are required from cell collection from the patient to returning to the body.

【0003】[0003]

【発明が解決しようとする問題点】C型肝炎ウイルス感
染者に対する有効な治療法は現在インターフェロン投与
以外にはない。しかしながら、この治療法においてはC
型肝炎ウイルスの二つのグループ、すなわちグループ
I、グループ II において効果に差があり、すべてのC
型肝炎ウイルス感染症に適用できるものではない。最
近、金井ら(Kanai, K.et al.: Lancet. 339, p.1543
(1992) )及び吉岡ら(Yoshioka, K. et al. :Hepatolo
gy. 16, p.293-299 (1992))は PCR法により遺伝子型を
分類し、それらがインターフェロン治療に対して異なる
反応を示すことを報告している。小原(日本臨床 51 巻
2 号 p.86-91) は慢性肝炎患者についてグループ分類と
治療効果について検討している。グループ I C型肝炎
ウイルス感染者では著効例(ALT正常値が 6ケ月以上持
続したもの)が11%しかなかったのに対して、グループ
IIC型肝炎ウイルス感染者は87%が著効を示し、残りの
13%も有効(一時的に ALT値が正常化したもの)であ
り、無効例は認められなかったと報告している。グルー
プ I C型肝炎ウイルス感染者では有効例 50%、無効例
39%であり、PCR 法により血液中のウイルス量を定量し
た結果、ウイルス量が低い方が有効である傾向が認めら
れた。
DISCLOSURE OF THE INVENTION Problems to be Solved by the Invention Currently, there is no effective treatment for hepatitis C virus-infected patients except administration of interferon. However, in this treatment C
Two groups of hepatitis virus, namely groups
There is a difference in effect between I and Group II, and all C
Not applicable to hepatitis C virus infection. Recently, Kanai et al. (Kanai, K. et al .: Lancet. 339 , p.1543
(1992)) and Yoshioka, K. et al .: Hepatolo
gy. 16 , p. 293-299 (1992)) reported that they genotype by PCR and show different responses to interferon treatment. Ohara (Japanese Clinical 51
No. 2 p.86-91) examines group classification and treatment effects for patients with chronic hepatitis. Only 11% of the group I hepatitis C virus-infected patients had a normal ALT value for more than 6 months, whereas the group
87% of hepatitis II virus-infected patients showed a marked effect, and the remaining
It was reported that 13% was also effective (temporarily normalized ALT value) and no ineffective cases were observed. 50% of effective cases and ineffective cases of group I hepatitis C virus infection
It was 39%, and as a result of quantifying the amount of virus in blood by PCR method, it was recognized that the one with lower virus amount tended to be more effective.

【0004】そこで、高いウイルス量が血液中に排出さ
れている患者の場合にはそのウイルス量を下げるために
なんらかの処置が必要である。
Therefore, in the case of a patient having a high viral load excreted in the blood, some treatment is required to reduce the viral load.

【0005】[0005]

【問題点を解決するための手段】本発明は一時的にC型
肝炎ウイルス感染者のウイルス量を抑制することにより
インターフェロン療法等の治療がより効果的に行えるよ
うな補完的な治療法として考案されたものである。具体
的には、ウイルスベクター等の適切なベクターに、C型
肝炎ウイルスの5′端に存在する非翻訳領域(5′UTR)の
部分領域をアンチセンスRNA として組み込み、適当なプ
ロモーターの制御のもとにin vivo発現させるこ
とにより、C型肝炎ウイルスの構造蛋白質の発現を抑
制、即ち該ウイルスの複製を抑制するものである。
The present invention is devised as a complementary therapeutic method that enables more effective treatment such as interferon therapy by temporarily suppressing the viral load in hepatitis C virus-infected persons. It was done. Specifically, a partial region of the untranslated region (5'UTR) existing at the 5'end of hepatitis C virus is incorporated as an antisense RNA into an appropriate vector such as a viral vector to control an appropriate promoter. By in vivo expression in and, the expression of the structural protein of hepatitis C virus is suppressed, that is, the replication of the virus is suppressed.

【0006】本発明は、C型肝炎ウイルス(HCV)ゲ
ノムの5′非翻訳領域の部分配列に対するアンチセンス
RNAを提供する。例えば、そのようなアンチセンスR
NAは配列番号1、2、3、4、5及び6に示されるヌ
クレオチド配列からなる群から選択される。
The present invention provides an antisense RNA against a partial sequence of the 5'untranslated region of the hepatitis C virus (HCV) genome. For example, such antisense R
NA is selected from the group consisting of the nucleotide sequences shown in SEQ ID NOs: 1, 2, 3, 4, 5 and 6.

【0007】特定のアンチセンスRNAは、それぞれR
NA−AS1′、RNA−AS3、RNA−AS3′、
RNA−AS5、RNA−RS6及びRNA−AS15
と称され、図1に示されるHCV5′UTRのヌクレオ
チド配列の部分配列に相補的であり、且つ逆向きの配列
を有する。図1中、RNA−AS1′はHCV5′UT
Rの位置78〜215に相補的な配列(AS1′と称す
る)に、RNA−AS3はHCV5′UTRの位置10
1〜170に相補的な配列(AS3と称する)に、RN
A−AS3′はHCV5′UTRの位置101〜240
に相補的な配列(AS3′と称する)に、RNA−AS
5はHCV5′UTRの位置131〜200に相補的な
配列(AS5と称する)に、RNA−AS6はHCV
5′UTRの位置163〜231に相補的な配列(AS
6と称する)に、及びRNA−AS15はHCV5′U
TRの位置122〜308に相補的な配列(AS15と
称する)にそれぞれ逆向きの配向をもって対応してい
る。
Specific antisense RNAs have R
NA-AS1 ', RNA-AS3, RNA-AS3',
RNA-AS5, RNA-RS6 and RNA-AS15
And is complementary to a partial sequence of the nucleotide sequence of the HCV 5'UTR shown in Figure 1 and has an inverted sequence. In Figure 1, RNA-AS1 'is HCV5'UT
In the sequence complementary to positions 78 to 215 of R (designated AS1 '), RNA-AS3 contains HCV 5'UTR at position 10
The sequence complementary to 1-170 (designated AS3) contains RN
A-AS3 'is HCV5'UTR positions 101-240
RNA-AS is added to the sequence (referred to as AS3 ') complementary to
5 is a sequence complementary to positions 131 to 200 of HCV 5'UTR (referred to as AS5), and RNA-AS6 is HCV.
A sequence complementary to positions 163-231 of the 5'UTR (AS
6) and RNA-AS15 is HCV5'U.
Sequences complementary to the TR positions 122 to 308 (referred to as AS15) correspond to the respective opposite orientations.

【0008】本発明のアンチセンスRNAは、HCVの
5′UTRを含むクローン、例えばクローン2−1(Ts
ukiyama-Koharaら,Journal of Virology : 66,p.1476-
1483(1992) )を用い、且つ、HCV5′UTRの部分
配列に相補的な目的のヌクレオチド配列(例えば、AS
1、AS1′、AS3、AS3′、AS5、AS6、A
S15等)を得るのに適するセットのプライマーを用い
てポリメラーゼ連鎖反応(例えば、H. A. Erlich編,PC
R Technology, Stockton Press, 1989)を実施して得ら
れる増幅された該目的ヌクレオチド配列を鋳型DNAと
して、RNAポリメラーゼによる転写反応を介して調製
することができる。さらに、得られたアンチセンスRN
Aをゲル電気泳動等の公知の方法で精製する。これらの
調製法については、後述の実施例に詳細に説明されてお
り、これを参照されたい。
The antisense RNA of the present invention is a clone containing the 5'UTR of HCV, such as clone 2-1 (Ts
ukiyama-Kohara et al., Journal of Virology: 66 , p.1476-
1483 (1992)) and is complementary to the nucleotide sequence of interest (eg, AS
1, AS1 ', AS3, AS3', AS5, AS6, A
Polymerase chain reaction (eg HA Erlich, PC, PC) using a set of primers suitable for obtaining S15 etc.
R Technology, Stockton Press, 1989), and can be prepared through the transcription reaction by RNA polymerase using the amplified target nucleotide sequence obtained as a template DNA. Furthermore, the obtained antisense RN
A is purified by a known method such as gel electrophoresis. These preparation methods are described in detail in the Examples below, and reference is made thereto.

【0009】本発明のアンチセンスRNAは、HCVの
5′UTRと構造領域(例えば、コア遺伝子領域、E1
遺伝子領域、NS1遺伝子領域)を含むプラスミド[例
えば、プラスミドpKIV(Tsukiyama-Koharaら,Jour
nal of Virology 66, p.1476-1483(1992) ]を制限酵素
処理して得られるDNAを鋳型として合成したRNAを
mRNAとするin vitro翻訳実験等において、
HCV構造蛋白質の強い翻訳阻害を生じさせることが判
明した。すなわち、本発明のアンチセンスRNAは、生
体内でのHCV構造蛋白質の発現を有意に低減すること
が可能であり、それ故、生体内でのHCVの増殖を抑制
するのに有用である。
The antisense RNA of the present invention comprises the 5'UTR of HCV and a structural region (eg, core gene region, E1).
A plasmid containing a gene region, NS1 gene region [eg, plasmid pKIV (Tsukiyama-Kohara et al., Jour.
nal of Virology 66 , p.1476-1483 (1992)] in an in vitro translation experiment using RNA synthesized from DNA obtained by treating with restriction enzyme as a template.
It was found to cause strong translational inhibition of HCV structural proteins. That is, the antisense RNA of the present invention can significantly reduce the expression of HCV structural protein in vivo, and is therefore useful for suppressing the growth of HCV in vivo.

【0010】したがって、本発明はさらに、上記アンチ
センスRNAを有効成分として含有してなるHCV関連
疾患治療剤を提供する。
Therefore, the present invention further provides a therapeutic agent for HCV-related diseases, which comprises the above antisense RNA as an active ingredient.

【0011】本明細書中、「HCV関連疾患」とは、H
CVが原因で引き起こされる肝炎、肝硬変、肝癌等の疾
患を意味する。
In the present specification, "HCV-related disease" means H
It means diseases such as hepatitis, cirrhosis and liver cancer caused by CV.

【0012】RNAは一般に生体内で分解され易いため
に、例えばリポソーム等の医薬上許容可能な物質中に封
入することによって安定的に投与することもできる。例
えば、静電荷多重膜リポソームは細胞毒性が低いことが
知られており(八木ら、BBRC196, p.1042-1048 (199
3))、アンチセンスRNA又は後述のアンチセンス遺伝
子発現ベクターを封入することにより、遺伝子を導入す
ることも可能である。
Since RNA is generally easily degraded in vivo, it can be stably administered by being encapsulated in a pharmaceutically acceptable substance such as liposome. For example, electrostatic charge multilamellar liposomes are known to have low cytotoxicity (Yagi et al., BBRC 196 , p.1042-1048 (199).
3)), and it is also possible to introduce a gene by encapsulating an antisense RNA or an antisense gene expression vector described below.

【0013】したがって、本発明は、リポソーム内に封
入されたアンチセンスRNAを有効成分として含有して
なるHCV関連疾患治療剤にも関する。
Therefore, the present invention also relates to a therapeutic agent for HCV-related diseases, which comprises an antisense RNA encapsulated in liposome as an active ingredient.

【0014】あるいは、操作可能なプロモーターをもつ
発現ベクターにアンチセンスRNAを組み込むことによ
り、生体内で該RNA遺伝子を発現させることが可能で
ある。ベクターとしては、ウイルスベクターが好まし
く、アデノウイルスベクターがより好ましい。アデノウ
イルスベクターは一般に効率よく非分裂細胞に感染し、
多量の遺伝子産物を産生することができ、目的遺伝子の
発現は数週間から数ヵ月と持続の長い一時的発現を提供
し、レトロウイルスと異なって積極的な染色体への組み
込みの機構を持たないため、宿主細胞の正常な遺伝子の
働きを妨害しないなどの利点をもつ。さらに、in v
ivo投与が可能であり、内視鏡を用いるなどして直接
特定の組織、細胞に導入することが可能である。
Alternatively, the RNA gene can be expressed in vivo by incorporating the antisense RNA into an expression vector having an operable promoter. As the vector, a virus vector is preferable, and an adenovirus vector is more preferable. Adenovirus vectors generally efficiently infect non-dividing cells,
It is able to produce large amounts of gene products, provides long-lasting transient expression of the target gene for weeks to months, and unlike retroviruses, does not have a mechanism for active chromosomal integration. , Has the advantage that it does not interfere with the normal functioning of genes in the host cell. Furthermore, in v
In vivo administration is possible, and it can be directly introduced into a specific tissue or cell by using an endoscope or the like.

【0015】したがって、本発明はまた、アンチセンス
RNAを発現可能なように保有する発現ベクターを提供
する。また、該発現ベクターを有効成分として含有して
なるHCV関連疾患治療剤をも提供する。
Therefore, the present invention also provides an expression vector carrying an antisense RNA in an expressible manner. Also provided is a therapeutic agent for HCV-related diseases, which comprises the expression vector as an active ingredient.

【0016】ここで、「発現可能なように」とは、生体
内でアンチセンスRNAが発現され得ることを意味し、
そのために操作可能なプロモーターがベクター中に含ま
れる。
As used herein, "to be expressible" means that antisense RNA can be expressed in vivo.
For that purpose, an operable promoter is included in the vector.

【0017】発現に用いるプロモーターとしては、プロ
モーター活性の強いCAGプロモーター(Niwaら, Gen
e 108, p.193-200 (1991))、EF−1αプロモーター
(Kim ら, Gene 91, p.217-223 (1990))、SRαプロ
モーター(Takebeら, Mol.Cell. Biol. 8, p.466 (19
88))、RSV LTRプロモーター(Cullen Methods
Enzymol. 152, p.684-704 (1987))、CMV immediat
e earlyプロモーター(Seed and Aruffo, Proc. Natl.
Acad. Sci. USA 84, p.3365-3369 (1987))、SV40
earlyプロモーター(Rigby In Williamson (Ed.), Gene
tic Engineering, Vol. 3, Academic Press, London,
p.83-141 (1982) )、SV40 late プロモーター(Gh
eysen and Fiers, J. Mol. Appl. Genet. 1, p.385-394
(1982))、アデノウイルス late プロモーター(Kaufm
an ら, Mol. Cell. Biol. 9,p.946(1989) )、単純ヘ
ルペスTKプロモーター、ヒト血清アルブミンプロモー
ター、αフェトプロテインプロモーター(Gutierrez
ら, Lancet 339, p.715-721 (1992))等の一般的に使
用できるプロモーターであれば何を用いてもよい。
As a promoter used for expression, a CAG promoter having a strong promoter activity (Niwa et al., Gen
e 108 , p.193-200 (1991)), EF-1α promoter (Kim et al., Gene 91 , p.217-223 (1990)), SRα promoter (Takebe et al., Mol. Cell. Biol. 8 , p. 466 (19
88)), RSV LTR promoter (Cullen Methods
Enzymol. 152 , p.684-704 (1987)), CMV immediat
e early promoter (Seed and Aruffo, Proc. Natl.
Acad. Sci. USA 84 , p.3365-3369 (1987)), SV40
early promoter (Rigby In Williamson (Ed.), Gene
tic Engineering, Vol. 3 , Academic Press, London,
p.83-141 (1982)), SV40 late promoter (Gh
eysen and Fiers, J. Mol. Appl. Genet .1 , p.385-394
(1982)), adenovirus late promoter (Kaufm
an et al., Mol. Cell. Biol. 9 , p.946 (1989)), herpes simplex TK promoter, human serum albumin promoter, α-fetoprotein promoter (Gutierrez
Et al., Lancet 339 , p.715-721 (1992)) and any commonly used promoter may be used.

【0018】本発明の発現ベクター、特に組換えウイル
スの製法については、実験医学別冊バイオマニュアルシ
リーズ4「動物細胞への遺伝子導入と発現・解析」羊土
社(1993年)に斉藤らが詳細に記載しており、これを参
照することにより目的の組換えウイルスを作製すること
が可能である。
Saito et al. Are described in detail in the experimental medicine separate volume, Biomanual Series 4, “Gene Transfer and Expression / Analysis in Animal Cells,” Yodosha (1993), regarding the method for producing the expression vector of the present invention, particularly the recombinant virus. It has been described, and the recombinant virus of interest can be prepared by referring to this.

【0019】遺伝子を体内に導入する方法としては、組
換えウイルスを用いる場合、例えばアンチセンス遺伝子
を発現させる方法や、センダイウイルスとリポソームの
融合体(virosome)を利用する方法(中西ら、第113
回日本薬学会(1993))、金属微粒子上にアンチセンス
遺伝子をコーティングして高速で細胞に打ち込む、いわ
ゆる遺伝子銃(gene gun)による方法(T.M. Kleinら,
Bio/Technology 10,p.286-291 (1992))が用いられ
る。
As a method for introducing a gene into the body, when a recombinant virus is used, for example, a method of expressing an antisense gene or a method of utilizing a fusion (virosome) of Sendai virus and liposome (Nakanishi et al., No. 113)
(Japan Society of Pharmaceutical Sciences (1993)), a method using a so-called gene gun in which antisense genes are coated on metal microparticles and bombarded at high speed (TM Klein et al.,
Bio / Technology 10 , p.286-291 (1992)) is used.

【0020】また医薬の製剤化に際しては、本発明のア
ンチセンスRNA又は発現ベクターを、医薬上許容可能
な担体又は希釈剤と混合して製剤を得ることができる。
また、本発明の治療剤中には、必要により肝炎、肝硬変
及び肝癌等の公知の治療剤を含有させることも可能であ
る。
When preparing a pharmaceutical preparation, the antisense RNA or expression vector of the present invention can be mixed with a pharmaceutically acceptable carrier or diluent to obtain a pharmaceutical preparation.
In addition, the therapeutic agent of the present invention may optionally contain a known therapeutic agent for hepatitis, cirrhosis, liver cancer and the like.

【0021】投与量としては、in vivoでのHC
Vの複製を抑制できる量であり特に限定されないが、好
ましくはアンチセンスRNAの場合には1 pg/kg(体
重)/Day〜1g/kg/Day、好ましくは、1μg/kg/Day〜1
mg/kg/Day、組換えウイルスベクターの場合には106
〜108 PFU が適当である。
As the dose, HC in vivo is used.
The amount is not particularly limited as long as it can suppress the replication of V, but in the case of antisense RNA, it is preferably 1 pg / kg (body weight) / Day to 1 g / kg / Day, preferably 1 μg / kg / Day to 1
mg / kg / Day, 10 6 for recombinant viral vector
-10 8 PFU is suitable.

【0022】投与方法としてはカテーテルなど物理的な
手段を用いて直接肝臓に遺伝子導入を行う方法が考えら
れるが、さらに肝臓特異的に遺伝子導入を行うためには
B.Goudらの(Virology: 163, p.251-254 (198
8))トランスフェリンに対する抗体とウイルスベクター
をカップリングさせる方法や、ウイルスエンベロープ糖
蛋白質をアシアル化する方法により肝細胞特異的に存在
するアシアロ糖蛋白質受容体との結合を利用する方法
(B. Salmonsらの総説 Human Gene Therapy : 4,p.129
-141 (1993))を用いてもよい。
As an administration method, a method of directly introducing the gene into the liver by using a physical means such as a catheter can be considered. However, in order to further introduce the gene into the liver, B. Good et al. (Virology: 163 , p.251-254 (198
8)) A method of coupling an antibody against transferrin with a viral vector, or a method of asialating a viral envelope glycoprotein, which utilizes binding to an asialoglycoprotein receptor that is specifically present in hepatocytes (B. Salmons et al. Review of Human Gene Therapy: 4 , p.129
-141 (1993)) may be used.

【0023】毒性については、例えばアデノウイルスを
ベクターとして用いる場合、すでにアデノウイルスがワ
クチンとして用いられている経緯からもワクチン株を親
株として用いる場合には細胞毒性はないと考えてよい。
アデノ関連ウイルスはヒト染色体19qに組み込まれる
ことが知られているが、細胞毒性はないとされている。
リポソームを利用する方法は、すでに米国において臨床
応用されているが前述のウイルスをベクターとして用い
る方法よりもさらに細胞毒性は低いことが期待される。
Regarding virulence, for example, when adenovirus is used as a vector, it can be considered that there is no cytotoxicity when a vaccine strain is used as a parent strain because of the background that adenovirus has already been used as a vaccine.
Adeno-associated virus is known to integrate into human chromosome 19q, but is not cytotoxic.
The method using liposomes has already been clinically applied in the United States, but it is expected that the method has lower cytotoxicity than the method using the above-mentioned virus as a vector.

【0024】[0024]

【実施例】実施例1 アンチセンスRNAの合成 1. オリゴヌクレオチドの合成 C型肝炎ウイルス(HCV)の 5′UTR の一部を含むオリゴ
ヌクレオチド16種類をβアミダイト法を用いて DNA合成
機 CycloneTM Plus Synthesizer (日本ミリポア社製)
により合成した。合成したオリゴヌクレオチドは以下の
配列を有する。
Example 1 Synthesis of antisense RNA 1. Synthesis of oligonucleotides 16 kinds of oligonucleotides containing a part of 5'UTR of hepatitis C virus (HCV) were synthesized using β-amidite method to synthesize DNA by Cyclone TM. Plus Synthesizer (Millipore Japan)
Was synthesized by. The synthesized oligonucleotide has the following sequence.

【0025】[0025]

【表1】 AS15 5′-cggggtaccttccgcagaccacta- 3′ AS13 5′-ccggaattcggcgttagtatgagt- 3′ AS1′5 5′-cggggtacctctccaggcattgag- 3′ AS35 5′-cggggtacctggcaattccggtgt- 3′ AS33 5′-taggaattcgcctccaggaccccc- 3′ AS3′5 5′-ataggtaccagtcttgcgggggca- 3′ AS55 5′-cggggtaccgggttaatccaagaa- 3′ AS53 5′-ccggaattcatagtggtctgcgga- 3′ AS65 5′-tatggtaccgggggcacgcccaaa- 3′ AS63 5′-ccggaattcaattgccaggacgac- 3′ AS153 5′-gggagagccatagtggtctg- 3′2. テンプレート DNAの調製 HCVの 5′UTR を含んだプラスミドクローン2−1を用
い、以下の条件により遺伝子増幅を行った。
[Table 1] AS15 5'-cggggtaccttccgcagaccacta- 3 'AS13 5'-ccggaattcggcgttagtatgagt- 3'AS1'55'-cggggtacctctccaggcattgag- 3 'AS35 5'-cggggtacctggcaattccggtgt-3ga ASc 5acc-cc '-ataggtaccagtcttgcgggggca- 3' AS55 5'-cggggtaccgggttaatccaagaa- 3 'AS53 5'-ccggaattcatagtggtctgcgga- 3' AS65 5'-tatggtaccgggggcacgcccaaa- 3 'AS63 5'-ccggaattcaattgccaggacgac- 3' AS153 5'-gggagagccatagtggtctg- 3 '2. template DNA Using the plasmid clone 2-1 containing 5'UTR of HCV, gene amplification was performed under the following conditions.

【0026】[0026]

【表2】 60μl 蒸留水 10μl 10×Pfu バッファー#2 (200mM Tris-HCl (pH8.2), 100mM KCl, 60mM (NH4 2
SO4 ,15mM MgCl2 , 1% Triton X-100) 1 μl クローン2−1 DNA (0.1 mg/ml) 10μl プライマー A (10 pmol /μl) 10μl プライマー B (10 pmol /μl) 8 μl dNTP 混合液 (10 mM) 1 μl Pfu DNA ポリメラーゼ (2.5units/μl) (St
ratagene社製、カタログ#600135) 計100 μl を 0.5 ml アシストチューブに入れ、ピペッ
ティングにより混合後、ミネラルオイル(シグマ社製、
カタログ#M5904)を上層した後、94℃ 5分、45℃ 5
分、72℃2分保温後、94℃ 1分、45℃ 1分、72℃ 1分の
反応を30回繰り返し、最後に72℃ 7分の反応を行った。
プライマー A,プライマーB の組み合わせ及び得られた
反応物の呼称については以下の通りである。
[Table 2] 60 μl distilled water 10 μl 10 × Pfu buffer # 2 (200 mM Tris-HCl (pH8.2), 100 mM KCl, 60 mM (NH 4 ) 2
SO 4 , 15mM MgCl 2 , 1% Triton X-100) 1 μl Clone 2-1 DNA (0.1 mg / ml) 10 μl Primer A (10 pmol / μl) 10 μl Primer B (10 pmol / μl) 8 μl dNTP mixture (10 mM) 1 μl Pfu DNA Polymerase (2.5 units / μl) (St
ratagene, Catalog # 600135) Put 100 μl in total into a 0.5 ml assist tube, mix by pipetting, and then add mineral oil (Sigma,
(Catalog # M5904) is overlaid, then 94 ℃ 5 minutes, 45 ℃ 5
After keeping the temperature at 72 ° C for 2 minutes, the reaction of 94 ° C for 1 minute, 45 ° C for 1 minute and 72 ° C for 1 minute was repeated 30 times, and finally the reaction at 72 ° C for 7 minutes was performed.
The combination of primer A and primer B and the name of the resulting reaction product are as follows.

【0027】[0027]

【表3】 プライマー A プライマー B 反応物 AS15 AS13 AS1 AS1′5 AS13 AS1′ AS35 AS33 AS3 AS3′5 AS33 AS3′ AS55 AS53 AS5 AS65 AS63 AS6 反応物は -80℃ 10 分間放置後、室温に戻し融解してき
たミネラルオイルを除去し、エタ沈メート(和光純薬社
製)1μl 、3 M酢酸ナトリウム液(和光純薬社製)3
μl 、エタノール 220μl を加えよく混合した後、室温
で15000 回転15分間の遠心操作の後、沈殿物として回収
した。70μl TE(10mM Tris-HCl, 1mMEDTA pH 8.0)に
溶解し、45μl を以下の条件により制限酵素による切断
を行った。反応液(200mM Tris-acetate, 100mM magnes
ium acetate, 500mM potassiumacetate, 10mM DTT (pH
7.9 at 25℃) )を 5μl 添加し、各20ユニットの制限
酵素 EcoRI, KpnIをさらに加えた後、37℃にて 6時間反
応させた。これを4% NusieveTM GTG Agarose(宝酒造社
製)ゲル電気泳動により分離し、目的の長さの反応物の
みをゲルから切り出し、BIO 101 社製の MERMAIDTM kit
を用いて DNAを回収した。方法はキット添付のマニュア
ルに従い、最終産物として 20 μl の DNA溶液が得られ
た。得られた DNAは制限酵素 EcoRI, KpnIにて上記条件
と同じように消化した pBluescriptR II SK(-) 50 ngと
ともに宝酒造社製DNA Ligation kitを用いてプロトコー
ルに従って連結反応を16℃ 30 分間行った。75μl の反
応液中 1μl を用いて再び前記と同様な条件にて遺伝子
増幅反応を行った。但し、プライマーA はすべてM13 Se
quencing primer M4(5′-gttttcccagtcacgac-3′)(10pm
ol/μl)(宝酒造社製)を用い、プライマーB は連結反
応に用いた反応物を得るための最初の遺伝子増幅に用い
たプライマーとそれぞれ同じものを用いた。これらの反
応から得られた産物はバクテリオファージT7のプロモー
ターの下流に最初の遺伝子増幅で得られた DNAが連結し
た形となる。これらを前記と同様な操作によりアガロー
スゲル電気泳動後、 MERMAIDTM kitを用いて目的の DNA
断片を回収した。最初の遺伝子増幅で得られた DNA,今
回の遺伝子増幅で得られた DNAそれぞれの呼称と断片の
長さ及び T7 RNA ポリメラーゼを用いたin vitro翻訳に
より得られる転写体(RNA 産物)の長さについては以下
のようになる。
[Table 3] Primer A Primer B Reactant AS15 AS13 AS1 AS1′5 AS13 AS1 ′ AS35 AS33 AS3 AS3′5 AS33 AS3 ′ AS55 AS53 AS5 AS65 AS63 AS6 Reactants are left at −80 ° C. for 10 minutes and then thawed and thawed. After removing the mineral oil, 1 μl of etaprecipitate (manufactured by Wako Pure Chemical Industries) and 3 M sodium acetate solution (manufactured by Wako Pure Chemical Industries) 3
After adding μl and 220 μl of ethanol and mixing well, the mixture was centrifuged at room temperature at 15,000 rpm for 15 minutes and collected as a precipitate. It was dissolved in 70 μl TE (10 mM Tris-HCl, 1 mM EDTA pH 8.0) and 45 μl was cleaved with a restriction enzyme under the following conditions. Reaction solution (200mM Tris-acetate, 100mM magnes
ium acetate, 500mM potassiumacetate, 10mM DTT (pH
7.9 at 25 ° C)), 20 units of each of the restriction enzymes EcoRI and KpnI were further added, and the mixture was reacted at 37 ° C for 6 hours. This was separated by 4% Nusieve GTG Agarose (Takara Shuzo) gel electrophoresis, and only the reaction product of the desired length was cut out from the gel, and the BIO 101 MERMAID kit was used.
Was used to recover the DNA. The method was according to the manual attached to the kit, and 20 μl of DNA solution was obtained as the final product. The obtained DNA was ligated with pBluescript R II SK (-) 50 ng digested with the restriction enzymes EcoRI and KpnI under the same conditions as above using a DNA Ligation kit manufactured by Takara Shuzo Co., Ltd. according to the protocol and subjected to ligation reaction at 16 ° C for 30 minutes. . The gene amplification reaction was again carried out using 1 μl of the 75 μl reaction solution under the same conditions as above. However, primer A is M13 Se
quencing primer M4 (5′-gttttcccagtcacgac-3 ′) (10pm
ol / μl) (manufactured by Takara Shuzo Co., Ltd.) and used the same primer B as the primer used for the first gene amplification for obtaining the reaction product used for the ligation reaction. The products obtained from these reactions are in the form in which the DNA obtained by the first gene amplification is ligated downstream of the promoter of bacteriophage T7. After agarose gel electrophoresis of these by the same operation, DNA purpose of using the MERMAID TM kit
The fragments were collected. The names and fragments of the DNA obtained by the first gene amplification and the DNA obtained by this gene amplification, and the length of the transcript (RNA product) obtained by in vitro translation using T7 RNA polymerase Is as follows.

【0028】[0028]

【表4】 最初の産物 2回目の産物 DNA の長さ RNA の長さ AS1 T7-AS1 157bp 94base AS1′ T7-AS1′ 226bp 163base AS3 T7-AS3 158bp 95base AS3′ T7-AS3′ 227bp 164base AS5 T7-AS5 158bp 95base AS6 T7-AS6 158bp 95base 2回目の産物についてはミネラルオイルを前記と同様な
操作により除去した後、フェノール/クロロホルム抽出
を行い、反応液の 1/10の容積の 5M 酢酸ナトリウム溶
液と2容積のエタノールを加えて、 -20℃ 30 分間放置
後、15000 回転15分間の遠心操作により DNAを回収し、
30μl の RNase-free の蒸留水に溶かした。RNase-free
の蒸留水は最終濃度が 0.05%となるようにジエチルピロ
カルボネート(DEPC)(Sigma社製) を蒸留水に添加後、
37℃にて一晩放置した後に 120℃45 分間オートクレー
ブすることによって調製した。得られた2回目の産物の
濃度は 20 μg /mlでそれぞれ 7μl (0.5 pmole から
1.4 pmoleに相当)を invitro 翻訳のテンプレート DN
Aとして用いた。
[Table 4] First product Second product DNA length RNA length AS1 T7-AS1 157bp 94base AS1 ′ T7-AS1 ′ 226bp 163base AS3 T7-AS3 158bp 95base AS3 ′ T7-AS3 ′ 227bp 164base AS5 T7- AS5 158bp 95base AS6 T7-AS6 158bp 95base For the second product, after removing the mineral oil by the same procedure as above, phenol / chloroform extraction was performed and 1/10 volume of 5M sodium acetate solution and 2 Add a volume of ethanol, leave it at -20 ° C for 30 minutes, and centrifuge at 15,000 rpm for 15 minutes to recover the DNA.
It was dissolved in 30 μl of RNase-free distilled water. RNase-free
Diethylpyrocarbonate (DEPC) (manufactured by Sigma) was added to the distilled water to a final concentration of 0.05%.
It was prepared by allowing it to stand overnight at 37 ° C and then autoclaving at 120 ° C for 45 minutes. The concentration of the second product obtained was 20 μg / ml, 7 μl each (from 0.5 pmole)
Equivalent to 1.4 pmole) in vitro translation template DN
Used as A.

【0029】クローン2−1 DNA 5μg を10×SmaIバッ
ファー(100mM Tris-HCl (pH8.0),70mM MgCl2 ,70mM
2-メルカプトエタノール, 200mM KCl, 0.1% BSA) 5μ
l と蒸留水を加えて、50μl として制限酵素 SmaI 20 u
nitsとともに37℃ 6時間保温して消化した後、4% Nusie
veTM GTGアガロースゲルで分離し、187 bpの SmaI 断片
をゲルから切り出し、 MERMAIDTM kitを用いた前述と同
様の操作により DNAを回収した。pBluescript II SK(-)
3μg を10×H バッファー(500mM Tris-HCl (pH7.5), 1
00mM MgCl2 , 10mM Dithiothreitol, 1000mM NaCl) 5
μl と蒸留水を加えて50μl とし、20 unitsの制限酵素
HincII で消化したもの 50ng とともに宝酒造社製 DNA
Ligation kit を用いて16℃ 30 分間保温して連結反応
を行い、M13 sequencing primer M4, M13 Reverse prim
er RV それぞれ 100pmolと共に遺伝子増幅を行い、438
bpの産物が得られた。これをさらに、M13 sequencing p
rimer M4、AS153 それぞれ 100pmolとともに遺伝子増幅
し、T7-AS15 を得た。同様な操作により in vitro 翻訳
のテンプレート DNAとした。図1、表5にアンチセンス
RNA として用いた領域を示す。
Clone 2-1 DNA (5 μg) was added to 10 × SmaI buffer (100 mM Tris-HCl (pH8.0), 70 mM MgCl 2 , 70 mM).
2-mercaptoethanol, 200 mM KCl, 0.1% BSA) 5 μ
Add l and distilled water to make 50 μl of the restriction enzyme SmaI 20 u
After incubating with nits at 37 ℃ for 6 hours to digest, 4% Nusie
Separation was carried out using ve GTG agarose gel, the SmaI fragment of 187 bp was excised from the gel, and DNA was recovered by the same procedure as above using the MERMAID kit. pBluescript II SK (-)
3 μg of 10 × H buffer (500 mM Tris-HCl (pH 7.5), 1
00mM MgCl 2 , 10mM Dithiothreitol, 1000mM NaCl) 5
Add 20 μl of distilled water to 50 μl, and add 20 units of restriction enzyme.
Takara Shuzo DNA with 50 ng digested with HincII
Ligation kit was used for incubation at 16 ° C for 30 minutes to perform ligation reaction, and M13 sequencing primer M4, M13 Reverse prim
er RV gene amplification with 100 pmol each, 438
A bp product was obtained. Add this to M13 sequencing p
T7-AS15 was obtained by gene amplification with 100 pmol of each of rimer M4 and AS153. By the same operation, it was used as a template DNA for in vitro translation. Antisense in Figure 1 and Table 5
The region used as RNA is shown.

【0030】[0030]

【表5】 表5には、 in vitro 翻訳に用いるテンプレートDNA を
遺伝子増幅により作成した際に用いたプライマーの種
類、テンプレート DNAに含まれているC型肝炎ウイルス
の 5′UTR の領域、ベクター由来で 5′端、 3′端に付
加された領域の長さ、T7 RNAポリメラーゼにより合成さ
れる RNA産物の長さを示す。塩基番号は図1による。
[Table 5] Table 5 shows the types of primers used when the template DNA used for in vitro translation was prepared by gene amplification, the 5'UTR region of hepatitis C virus contained in the template DNA, and the 5'end derived from the vector. , The length of the region added to the 3'end, and the length of the RNA product synthesized by T7 RNA polymerase. The base number is according to FIG.

【0031】3. アンチセンス RNAの合成 アンチセンス RNAは Ambion 社製のin vitro transcrip
tion kit(MEGAscriptTMT7 kit 、カタログ#1334)を
用いて作製した。以下に反応条件を示す。
3. Synthesis of antisense RNA Antisense RNA is an in vitro transcrip manufactured by Ambion.
It was prepared using an option kit (MEGAscript T7 kit, catalog # 1334). The reaction conditions are shown below.

【0032】[0032]

【表6】 2 μl 10x Transcription buffer(キット添付) 2 μl 75mM ATP Solution (キット添付) 2 μl 75mM CTP Solution (キット添付) 2 μl 75mM GTP Solution (キット添付) 2 μl 75mM UTP Solution (キット添付) 7 μl テンプレート DNA 2 μl Enzyme Mix (キット添付) 1 μl cloned T7 RNA polymerase(200 units/μl)
(Ambion社製、カタログ#2085) 計 20 μl の反応液を 0.5 ml アシストチューブに分注
し、37℃保温器にて6時間保温した。各サンプルに対し
て 1μl の RNase-free DNase I (キット添付)を加え
て、37℃にて15分間反応させてテンプレート DNAを分解
した後、115 μl の RNase-free 蒸留水と 15 μl の A
mmonium acetate Stop Solution (キット添付)をよく
混合し、さらにフェノール/クロロホルム抽出、クロロ
ホルム抽出にて蛋白質を除去した。150 μl のイソプロ
パノールを加え、よく混合した後に -20℃ 30 分間放置
し、15000 回転 15 分間の遠心操作により RNAを沈殿さ
せた。70% エタノールにて沈殿物を洗浄した後、20μl
の RNase-free 蒸留水に溶かした。各 RNA産物の濃度と
純度を以下に示す。RNA 濃度は 260nmの吸光度 1.0を 3
5 μg / mlとして計算し、純度については 260nmと 280
nmの吸光度の比により 1.7から 2.1の間であることが純
粋な RNAであることが一般に知られている。得られた R
NAは概ね 1.8付近であり純度について問題はないもので
あった。
[Table 6] 2 μl 10x Transcription buffer (with kit) 2 μl 75mM ATP Solution (with kit) 2 μl 75mM CTP Solution (with kit) 2 μl 75mM GTP Solution (with kit) 2 μl 75mM UTP Solution (with kit) 7 μl Template DNA 2 μl Enzyme Mix (included in kit) 1 μl cloned T7 RNA polymerase (200 units / μl)
(Ambion Co., Catalog # 2085) A total of 20 μl of the reaction solution was dispensed into a 0.5 ml assist tube and kept warm at 37 ° C. for 6 hours. Add 1 μl of RNase-free DNase I (provided with the kit) to each sample and incubate at 37 ° C for 15 minutes to decompose the template DNA. Then, 115 μl of RNase-free distilled water and 15 μl of A
mmonium acetate Stop Solution (included in the kit) was mixed well, and the protein was removed by phenol / chloroform extraction and chloroform extraction. 150 μl of isopropanol was added, mixed well, left at -20 ° C for 30 minutes, and centrifuged at 15,000 rpm for 15 minutes to precipitate RNA. After washing the precipitate with 70% ethanol, 20 μl
RNase-free was dissolved in distilled water. The concentration and purity of each RNA product are shown below. The RNA concentration is 3 at an absorbance of 1.0 at 260 nm.
Calculated as 5 μg / ml, for purity 260 nm and 280
It is generally known that pure RNA is between 1.7 and 2.1 depending on the ratio of absorbance at nm. Obtained R
The NA was around 1.8 and there was no problem with the purity.

【0033】[0033]

【表7】 RNA RNA 濃度 RNA 純度 (OD 260 /OD 280 ) AS1-RNA 5.57 mg / ml 1.84 AS1′-RNA 6.07 mg / ml 1.84 AS3-RNA 5.62 mg / ml 1.84 AS3′-RNA 5.72 mg / ml 1.85 AS5-RNA 5.48 mg / ml 1.79 AS6-RNA 5.09 mg / ml 1.87 AS15-RNA 8.16 mg / ml 1.83 2 μl の RNAサンプルに対して 2μl の Loading buffe
r (キット添付)を加え、95℃ 3分間保温した後、1 mg
/mlエチジウムブロマイド(EtBr) 1 μl を加えて 8M
尿素/5 %ポリアクリルアミドゲル電気泳動により分離
し、正しい長さの RNAが合成されたことを確認した。
[Table 7] RNA RNA concentration RNA purity (OD 260 / OD 280 ) AS1-RNA 5.57 mg / ml 1.84 AS1'-RNA 6.07 mg / ml 1.84 AS3-RNA 5.62 mg / ml 1.84 AS3'-RNA 5.72 mg / ml 1.85 AS5-RNA 5.48 mg / ml 1.79 AS6-RNA 5.09 mg / ml 1.87 AS15-RNA 8.16 mg / ml 1.83 2 μl loading buffe for 2 μl RNA sample
After adding r (included in the kit) and incubating at 95 ℃ for 3 minutes, 1 mg
/ Ml Add 1 μl of ethidium bromide (EtBr) to 8M
Separation was performed by urea / 5% polyacrylamide gel electrophoresis, and it was confirmed that RNA of the correct length was synthesized.

【0034】実施例2 In vitro翻訳実験 1. mRNAの調製 HCV の 5′UTR 、コア遺伝子領域、E1遺伝子領域、NS1
遺伝子領域(塩基番号9 番から1772番)を含むプラスミ
ド pKIV (小原ら, Journal of Virology. 66, p.1476
-1483 (1992))は T7 プロモーターの下流に HCVの前記
遺伝子領域が挿入されており、T7 RNAポリメラーゼによ
り人工的に RNAを合成することができる。制限酵素 Sal
I にて以下の条件にてプラスミド DNA 10 μg を消化し
た。
Example 2 In vitro translation experiment 1. Preparation of mRNA 5'UTR of HCV, core gene region, E1 gene region, NS1
Plasmid pKIV containing the gene region (nucleotide numbers 9 to 1772) (Ohara et al., Journal of Virology. 66 , p. 1476)
-1483 (1992)) has the above HCV gene region inserted downstream of the T7 promoter, and can artificially synthesize RNA by T7 RNA polymerase. Restriction enzyme Sal
10 μg of plasmid DNA was digested with I under the following conditions.

【0035】[0035]

【表8】 25μl 10×H バッファー (500mM Tris-HCl (pH7.5), 100mM MgCl2 , 10mMDithio
threitol, 1000mM NaCl) 220 μl DNA 溶液 5 μl 制限酵素 SalI (6units/μl ) 計 250μl を1.5 mlアシストチューブに分注し、37℃に
て 4時間反応させた。完全に消化されて DNAが直鎖状と
なったことをアガロースゲル電気泳動にて確認した後、
13μl の 10% SDS、2.6 μl の Proteinase K (20 mg/
ml) (Stratagene社製、カタログ#300140)を加えて制
限酵素及び DNA回収の際に微量に含まれている RNaseを
37 ℃ 1時間の反応にて分解した。フェノール/クロロ
ホルム抽出により Proteinase K を除去し、26.5μl の
5M 酢酸ナトリウム溶液、530 μlのエタノールを加え
てよく混合し、-20 ℃にて 30 分間放置後、15000 回転
15分間の遠心操作により DNAを沈殿物として回収した。
70% エタノールにて洗浄後、30μl の RNase-free 蒸留
水に溶解させた。DNA の濃度はともに0.2 mg/mlであ
り、8 μl (0.5 pmoleに相当)を DNAテンプレートとし
て前述と同様な操作によりMEGAscriptTM kitを用いて R
NAを合成した。得られた RNAは mRNA としてさらに in
vitro 翻訳(translation )により蛋白質への翻訳を行
わせた。RNA 合成は以下の条件により行った。
[Table 8] 25 μl 10 × H buffer (500 mM Tris-HCl (pH 7.5), 100 mM MgCl 2 , 10 mM Dithio
threitol, 1000 mM NaCl) 220 μl DNA solution 5 μl Restriction enzyme SalI (6 units / μl) A total of 250 μl was dispensed into a 1.5 ml assist tube and reacted at 37 ° C. for 4 hours. After confirming by agarose gel electrophoresis that the DNA was completely digested and linearized,
13 μl 10% SDS, 2.6 μl Proteinase K (20 mg /
ml) (Stratagene, Catalog # 300140) is added to remove RNase contained in trace amounts during restriction enzyme and DNA recovery.
Decomposed by reaction at 37 ° C for 1 hour. Proteinase K was removed by phenol / chloroform extraction, and 26.5 μl of
Add 5M sodium acetate solution and 530 μl ethanol, mix well, leave at -20 ° C for 30 minutes, then rotate 15,000 rpm.
DNA was recovered as a precipitate by centrifugation for 15 minutes.
After washing with 70% ethanol, it was dissolved in 30 μl of RNase-free distilled water. The DNA concentration was 0.2 mg / ml, and 8 μl (corresponding to 0.5 pmole) was used as the DNA template and the MEGAscript kit was used to perform the same procedure as described above.
NA was synthesized. The obtained RNA is further
Translation into protein was performed by in vitro translation. RNA synthesis was performed under the following conditions.

【0036】[0036]

【表9】 2 μl 10×Transcription Buffer 2 μl 75mM ATP Solution 2 μl 75mM CTP Solution 2 μl 75mM GTP Solution 2 μl 75mM UTP Solution 8 μl DNA テンプレート 2 μl Enzyme Mix 計 20 μl の反応液を 0.5 ml アシストチューブに分注
し、37℃ 6時間保温した。反応後 1μl の RNase-free
DNase I を加えて 37 ℃ 15 分間の保温によりテンプレ
ート DNAを分解した。30μl の RNase-free 蒸留水、25
μl の LiCl Solution(キット添付)を加えて、-20 ℃
30 分間放置後、4 ℃にて15000 回転 15分間の遠心操
作により RNAを沈殿物として回収した。70% エタノール
にて沈殿物を洗浄した後、20μl の RNase-free 蒸留水
に溶解させた。得られた RNAの濃度、純度は以下のよう
な結果であった。
[Table 9] 2 μl 10 × Transcription Buffer 2 μl 75mM ATP Solution 2 μl 75mM CTP Solution 2 μl 75mM GTP Solution 2 μl 75mM UTP Solution 8 μl DNA template 2 μl Enzyme Mix Total 20 μl of reaction solution in 0.5 ml assist tube The mixture was dispensed and kept at 37 ° C for 6 hours. After reaction, 1 μl RNase-free
The template DNA was decomposed by adding DNase I and incubating at 37 ° C for 15 minutes. 30 μl RNase-free distilled water, 25
Add μl LiCl Solution (included in the kit), and then -20 ℃
After leaving it for 30 minutes, RNA was collected as a precipitate by centrifugation at 15,000 rpm for 15 minutes at 4 ° C. The precipitate was washed with 70% ethanol and then dissolved in 20 μl of RNase-free distilled water. The obtained RNA concentration and purity were as follows.

【0037】[0037]

【表10】 RNA RNA 濃度 RNA 純度(OD 260 /OD 280 mRNA-KIV 7.25 mg / ml 1.7 得られた RNAはホルムアルデヒド法による電気泳動によ
り確認した。方法を以下に示す。0.8 g のSeakemTM GTG
agarose(宝酒造社製)に 73 mlの蒸留水を加え、加温
し、よくアガロースを溶かしてから、60℃にまで冷や
す。10×Gel Running Buffer (0.2M MOPS (pH7.0), 50m
M 酢酸ナトリウム、5mM EDTA(pH8.0)) 10 mlと37% ホル
ムアルデヒド 16.2 mlをフード内で添加し、よく混ぜ合
わせてゲル作製台に流し込み、ゲルを作製する。泳動サ
ンプルの調製は以下のようにして行った。
[Table 10] RNA RNA concentration RNA purity (OD 260 / OD 280 ) mRNA-KIV 7.25 mg / ml 1.7 The obtained RNA was confirmed by electrophoresis by the formaldehyde method. The method is shown below. 0.8 g Seakem TM GTG
Add 73 ml of distilled water to agarose (manufactured by Takara Shuzo Co., Ltd.), heat to dissolve agarose well, and then cool to 60 ° C. 10 × Gel Running Buffer (0.2M MOPS (pH7.0), 50m
Add 10 ml of M sodium acetate, 5 mM EDTA (pH8.0) and 16.2 ml of 37% formaldehyde in the hood, mix well and pour on a gel preparation table to prepare a gel. The electrophoretic sample was prepared as follows.

【0038】[0038]

【表11】 3.5 μl RNA 2.0 μl 10×Gel Running Buffer 3.5 μl ホルムアルデヒド 10.0μl 脱イオン化ホルムアミド 計19μl を 0.5 ml アシストチューブに分注し、68℃ 5
分間保温した後、1 mg/ml EtBr を 1μl 加え、68℃ 1
5 分間保温した後氷上に 5分間置く。2 μl の Loading
Buffer (50% glycerol, 1mM EDTA, 0.4% bromophenol
blue, 0.4% xylene cyanol) を加え、前述の 0.8% アガ
ロース/2.2Mホルムアルデヒドゲルにて50V で泳動し、
RNA が正しく合成されていることを確認した。
[Table 11] 3.5 μl RNA 2.0 μl 10 × Gel Running Buffer 3.5 μl formaldehyde 10.0 μl Deionized formamide Total 19 μl was dispensed into 0.5 ml assist tube, and 68 ° C 5
After incubating for 1 minute, add 1 μl of 1 mg / ml EtBr and add 68 ° C 1
Incubate for 5 minutes, then place on ice for 5 minutes. 2 μl Loading
Buffer (50% glycerol, 1mM EDTA, 0.4% bromophenol
blue, 0.4% xylene cyanol), and run on the 0.8% agarose / 2.2M formaldehyde gel at 50V,
It was confirmed that RNA was synthesized correctly.

【0039】2. In vitro翻訳実験 1.で調製した mRNA を用いて in vitro 翻訳を行った。
Stratagene社製の Invitro ExpressTM translation ki
t(カタログ#200360)を用いた。反応条件は添付のプ
ロトコールに従い、以下のような手順で実験を行った。
2. In vitro translation experiment was carried out using the mRNA prepared in 1.
Stratagene Invitro Express TM translation ki
t (catalog # 200360) was used. The reaction conditions were according to the attached protocol, and the experiment was conducted in the following procedure.

【0040】1.5 μg mRNA (約 2.5 pmole) を 0.5 ml
アシストチューブに分注し、RNase-free蒸留水を加えて
5μl とし、68℃30秒間保温した後、上記キットの rab
bitreticulocyte lysate をすばやく融解させ、このう
ちの 20 μl を mRNA の入ったチューブに加えて、穏や
かによく混合し、30℃ 1時間反応させた。反応終了後25
μl の 2×SDS-PAGE buffer (0.125M Tris-HCl (pH6.
8), 4% SDS, 20% glycerol, 10% 2-メルカプトエタノー
ル, 0.002% bromophenol blue)を加えて 5分間95℃に保
温し、15%-25 % SDS- ポリアクリルアミドゲルにより
分離した。泳動後のゲルは SDS入りのトランスファーバ
ッファー(48mM トリス (ヒドロキシメチル) アミノメ
タン、39mM グリシン、0.0375% SDS)にて PVDF 膜
( ImmobilonTM-P Transfer membranes :日本ミリポア
社製)へ Sartorius社製の SartoblotR II-Sを用いて転
写した。転写は 300mA 30 分間で行った。ウエスタンブ
ロッティングは蛋白質の転写されたPVDF膜を 5% スキム
ミルク(Difco社製) 、2.5 %牛血清アルブミン (BSA)の
入った T-TBSバッファー (0.05% Tween80, 20mM Tris-H
Cl (pH7.5), 500mM NaCl) 中にて 1晩 4℃に置き、非特
異的な蛋白質の吸着を阻害した後、ウサギ抗 HCVコア蛋
白質抗血清を抗体希釈液(1 %スキムミルク、0.5 % B
SA、T-TBS )にて 1000 倍に希釈した溶液中に室温で 1
時間反応させた。T-TBS にて洗浄後、ビオチン化した抗
ウサギ Ig 抗体(アマシャム社製)を 1000 倍に抗体希
釈液にて希釈した溶液中にて室温 1時間の反応を行っ
た。T-TBS による洗浄後、ストレプトアビジン標識ビオ
チン化ペルオキシダーゼ複合体(アマシャム社製)を 5
000 倍に抗体希釈液にて希釈した溶液中にて室温 15 分
間反応させた。T-TBS にてよく洗浄した後、アマシャム
社製の ECL detection kitを用いて HCVコア蛋白質の検
出を行い、22 Kd のバンドが検出された。
0.5 μg of 1.5 μg mRNA (about 2.5 pmole)
Dispense into an assist tube and add RNase-free distilled water.
After making 5 μl and incubating at 68 ℃ for 30 seconds, rab of the above kit
The bitreticulocyte lysate was thawed quickly, 20 μl of this was added to the tube containing the mRNA, mixed gently and allowed to react at 30 ° C for 1 hour. After reaction 25
μl 2 × SDS-PAGE buffer (0.125M Tris-HCl (pH 6.
8), 4% SDS, 20% glycerol, 10% 2-mercaptoethanol, 0.002% bromophenol blue) was added and the mixture was kept at 95 ° C for 5 minutes and separated by 15% -25% SDS-polyacrylamide gel. After running the gel, transfer it to a PVDF membrane (Immobilon TM -P Transfer membranes: Nippon Millipore) with SDS transfer buffer (48 mM Tris (hydroxymethyl) aminomethane, 39 mM glycine, 0.0375% SDS) Sartorius Sartoblot Transcribed using R II-S. Transcription was performed at 300 mA for 30 minutes. Western blotting was performed using a protein-transferred PVDF membrane in T-TBS buffer (0.05% Tween80, 20 mM Tris-H) containing 5% skim milk (Difco) and 2.5% bovine serum albumin (BSA).
After incubating in Cl (pH7.5), 500mM NaCl) at 4 ℃ overnight to inhibit non-specific protein adsorption, rabbit anti-HCV core protein antiserum was diluted with antibody (1% skim milk, 0.5%). B
SA, T-TBS) at room temperature in a 1000-fold diluted solution
Reacted for hours. After washing with T-TBS, biotinylated anti-rabbit Ig antibody (manufactured by Amersham) was diluted 1000 times with an antibody diluent, and reacted at room temperature for 1 hour. After washing with T-TBS, streptavidin-labeled biotinylated peroxidase complex (Amersham) was added.
Reaction was carried out at room temperature for 15 minutes in a solution diluted 000-fold with antibody diluent. After thorough washing with T-TBS, HCV core protein was detected using an ECL detection kit manufactured by Amersham, and a band of 22 Kd was detected.

【0041】実施例3 アンチセンス RNAによる翻訳阻
害実験 mRNAを in vitro にて翻訳させる際に HCV 5′UTR の領
域の一部に対するアンチセンス RNA、RNA-AS1, RNA-AS
1′, RNA-AS3, RNA-AS3′, RNA-AS5, RNA-AS6,RNA-AS15
の7 種類をそれぞれ 1.5μg mRNAに対してモル比 1:10
0 となるように加えて総量 5μl とし、実施例2の 2.
と同様にして in vitro 翻訳を行った。15-25% SDS-PAG
E にて分離後、PVDF膜に転写し、ウエスタンブロッティ
ングを行った。その結果、 RNA-AS15, RNA-AS1′を添加
したサンプルでは HCVコア蛋白質の 22Kd バンドの顕著
な消長が見られ、強い翻訳阻害が生じていた。 RNA-AS
3′でも翻訳阻害が見られた(図2)。これら以外のア
ンチセンス RNAについてはさらに以下の実験を行った。
Example 3 Inhibition of translation by antisense RNA
Harm experiment Antisense RNA, RNA-AS1, RNA-AS for a part of the region of HCV 5'UTR when translating mRNA in vitro
1 ', RNA-AS3, RNA-AS3', RNA-AS5, RNA-AS6, RNA-AS15
Each of the 7 kinds of
The total volume of 5 μl was added so as to be 0, and 2.
In vitro translation was performed in the same manner as in. 15-25% SDS-PAG
After separation with E, transfer to a PVDF membrane and Western blotting were performed. As a result, in the samples to which RNA-AS15 and RNA-AS1 'were added, the remarkable 22Kd band of HCV core protein was observed, and strong translational inhibition occurred. RNA-AS
Translation inhibition was also observed at 3 '(Fig. 2). The following experiments were performed for other antisense RNAs.

【0042】 35S ラベルの in vitro 翻訳実験 mRNA-KIVを用いて Amersham rabbit reticulocyte lysa
te (N150) による35S-methionineラベルの in vitro 翻
訳実験を行った。
In vitro translation experiment of 35 S-labeled Amersham rabbit reticulocyte lysa using mRNA-KIV
An in vitro translation experiment of 35 S-methionine label with te (N150) was performed.

【0043】反応液の組成は、下記に示す。The composition of the reaction solution is shown below.

【0044】[0044]

【表12】 17.5μl Amino acid-depleted lysate(Amersham
N.150) 1.6 μl 2M potassium acetate solution 1.25μl 1mM amino acid mixture minus L-methi
onine 0.5 μl 1.25 pmol mRNA-KIV 2.15μl 125 pmol antisense RNA 2 μl 35S-L-methionine(ICN 51001H; >1000 C
i/mmol ) 総量 25 μl にて、30℃1時間反応後、反応液2μlを
98μlの 1N NaOH/2% H2 2 に加えて、37℃にて10
分間反応させ、900 μl の25% TCA(トリクロロ酢
酸)/2%カザミノ酸を添加して、氷上に30分間静置
した。沈殿させた反応物をガラスフイルターにより濾過
して、液体シンチレーターにより、その放射活性を測定
して、翻訳阻害効果の比較とした。陰性コントロールと
してmRN−KIVを添加しないでin vitro翻
訳を行い、その値をバックグラウンドとして各サンプル
の値から差し引いた。mRNA−KIVのみを添加した
際の放射活性を1として、アンチセンスRNAを加えた
ことによる翻訳の阻害を相対比で示した。その結果、R
NA−AS1を除きRNA−AS1′,RNA−AS
3,RNA−AS3′,RNA−AS5,RNA−AS
6のいずれにおいても翻訳阻害効果が見られた(表1
3)。
[Table 12] 17.5 μl Amino acid-depleted lysate (Amersham
N.150) 1.6 μl 2M potassium acetate solution 1.25 μl 1mM amino acid mixture minus L-methi
onine 0.5 μl 1.25 pmol mRNA-KIV 2.15 μl 125 pmol antisense RNA 2 μl 35 SL-methionine (ICN 51001H;> 1000 C
i / mmol) After reacting at 25 ° C for 1 hour at 30 ° C, 2 μL of the reaction solution was added to 98 μL of 1N NaOH / 2% H 2 O 2 and the mixture was added at 37 ° C for 10 hours.
After reacting for minutes, 900 μl of 25% TCA (trichloroacetic acid) / 2% casamino acid was added, and the mixture was allowed to stand on ice for 30 minutes. The precipitated reaction product was filtered through a glass filter, and its radioactivity was measured with a liquid scintillator to compare the translation inhibitory effects. As a negative control, in vitro translation was carried out without adding mRN-KIV, and the value was subtracted from the value of each sample as a background. The radioactivity when only mRNA-KIV was added was defined as 1, and the inhibition of translation by the addition of antisense RNA was shown as a relative ratio. As a result, R
RNA-AS1 ′, RNA-AS except NA-AS1
3, RNA-AS3 ', RNA-AS5, RNA-AS
The translation inhibitory effect was observed in all of 6 (Table 1
3).

【0045】[0045]

【表13】 表13中、count は液体シンチレーションカウンターに
より測定した値で、陰性コントロールとしてmRNA−
KIVを添加しないでin vitro翻訳を行った値をバック
グラウンドとして各サンプルの値から差し引いた値を示
し、単位はcpmである。アンチセンスRNAを添加しな
かった値との相対比をさらに示した。
[Table 13] In Table 13, count is a value measured by a liquid scintillation counter, and mRNA- is used as a negative control.
The value obtained by subtracting the value obtained by in vitro translation without addition of KIV from the value of each sample as a background is shown, and the unit is cpm. The relative ratio to the value without addition of antisense RNA is further shown.

【0046】実施例4 組換えアデノウイルスの作製 組換えアデノウイルスの作製方法については、実験医学
別冊バイオマニュアルシリーズ4「動物細胞への遺伝子
導入と発現・解析」羊土社(1993年)に斉藤らが詳しい
方法について述べており、それらの方法に従って行えば
同業者であれば簡単に作製することができる。
Example 4 Preparation of Recombinant Adenovirus For the method of preparing recombinant adenovirus, see Experimental Medicine Separate Volume, Biomanual Series 4, “Gene Transfer and Expression / Analysis in Animal Cells,” Yodosha (1993) Saito. Et al. Describe the detailed methods, and those skilled in the art can easily make them by following these methods.

【0047】アンチセンスRNA−AS15は発現させ
るためのベクターの製法について具体的に以下に述べる
が、用いるプロモーターおよびアデノウイルスの種類に
ついてはこれらに限らず、他のものを用いてもよい。
A method for producing a vector for expressing antisense RNA-AS15 will be specifically described below, but the types of promoter and adenovirus used are not limited to these, and other ones may be used.

【0048】組換えアデノウイルスAS15の作製法 クローン2−1(Tsukiyama-Kohara et al. Journal of
Virology : 66, p.1476-1483 (1992)) 0.1μg を以下
の配列を有するプライマー各100pmolとともにPfu po
lymeraseを用いて先に述べたような反応条件により遺伝
子増幅を行い、両末端に制限酵素EcoRIによる認識部
位を導入したDNA断片を得た。
Method for producing recombinant adenovirus AS15 Clone 2-1 (Tsukiyama-Kohara et al. Journal of
Virology: 66 , p.1476-1483 (1992)) 0.1 μg was added to Pfu po together with 100 pmol of each primer having the following sequence.
Gene amplification was performed using lymerase under the reaction conditions described above to obtain a DNA fragment into which a recognition site by the restriction enzyme EcoRI was introduced at both ends.

【0049】[0049]

【表14】 プライマー EcoAS153 5′-CGGAATTCGGGAGAGCCATAGTG-3′ プライマー EcoAS155 5′-CGGAATTCGGGGCACTCGCAAGC-3′ 得られたDNA断片は1μgを10×EcoRIバッファ
ー(1000mM Tris-HCl(pH7.5), 70mM MgCl2 , 70mM 2-
メルカプトエタノール,500mM NaCl, 0.1% BSA)5μl
と蒸留水、制限酵素EcoRI 10 units を加えて、50
μlとして37℃2時間保温して消化した後、4% Nus
ieveTM GTGアガロースゲルで分離し、197 bp の
DNA断片をゲルから切り出し、 MERMAIDTM kitを用い
た前述と同様の操作によりDNAを回収した。
[Table 14] Primer EcoAS153 5′-CGGAATTCGGGAGAGCCATAGTG-3 ′ Primer EcoAS155 5′-CGGAATTCGGGGCACTCGCAAGC-3 ′ 1 μg of the obtained DNA fragment was added to 10 × EcoRI buffer (1000 mM Tris-HCl (pH7.5), 70 mM MgCl 2 , 70 mM). 2-
Mercaptoethanol, 500 mM NaCl, 0.1% BSA) 5 μl
50 ml of distilled water and restriction enzyme EcoRI 10 units
After incubating for 2 hours at 37 ℃ as a μl and digesting, 4% Nus
It was separated on an ieve GTG agarose gel, a 197 bp DNA fragment was excised from the gel, and the DNA was recovered by the same procedure as above using the MERMAID kit.

【0050】CAGプロモーターが組み込まれたベクタ
ーpCAGGS(Niwaら,Gene: 108, p.193-200
(1991))2μgを制限酵素EcoRIにて上記と同様な条
件にて消化し、AS15の配列を有する先のDNA断片
とともにDNA Ligationkit (宝酒造社製)を用いて
連結反応を行い、CAGプロモーターの下流にEcoRI
認識部位を介して、配列6に示すAS15の配列が挿入
されたベクターpCAG−AS15が作製できた。pC
AG−AS15のDNA 5μgを10×Hバッファー5
μlと蒸留水を加え、制限酵素SalI、HindIII 各
20 unitsを加えて、50μlとして37℃6時間保温
して消化した後、宝酒造社製のDNABlunting kit を
用いてプロトコールに従って、DNAの末端の平滑化を
行った。
The vector pCAGGS (Niwa et al., Gene: 108 , p.193-200) in which the CAG promoter was incorporated.
(1991)) 2 μg was digested with the restriction enzyme EcoRI under the same conditions as above, and the ligation reaction was performed with the above DNA fragment having the sequence of AS15 using DNA Ligation kit (Takara Shuzo) to downstream the CAG promoter. To EcoRI
A vector pCAG-AS15 in which the sequence of AS15 shown in Sequence 6 was inserted via the recognition site could be produced. pC
5 μg of DNA of AG-AS15 was added to 10 × H buffer 5
Add μl and distilled water, add 20 units each of restriction enzymes SalI and HindIII to 50 μl and incubate at 37 ° C. for 6 hours for digestion, and blunt the ends of the DNA according to the protocol using the DNA Blunting kit manufactured by Takara Shuzo. I went.

【0051】アデノウイルス発現コスミドカセットpA
dexlw(斎藤ら、実験医学別冊バイオマニュアルシ
リーズ4「動物細胞への遺伝子導入と発現・解析」羊土
社(1993))5μgを制限酵素SwaI(ベーリンガー
社製)にて10×Hバッファー5μlと蒸留水を加え、
制限酵素SwaI 12 unitsを加えて、50μlとし
て25℃2時間保温して消化し、フェノール/クロロホ
ルム抽出後、ファルマシア社製のG−25カラムを用い
て精製した。SwaI消化のpAdexlw1μgと平
滑末端化したDNA断片0.2μgをエタノール沈殿し
た後、5μlのTE(10mM Tris-HCl, 1mM EDTA (pH8.
0) )に懸濁し、0.7μl 10×Lバッファー、
0.3μl 10mM ATP、1μl T4 DNA L
igase とともに15℃にて一晩反応を行った。0.5μ
l 2M NaCl、4μl 10×Hバッファー、34μl蒸
留水を加えて、70℃10分保温することでDNA Lig
aseを熱失活させた。制限酵素SwaI 20 unitsを
加え、25℃1時間の反応後、フェノール/クロロホル
ム抽出し、G−25カラムにて連結されたDNAを回収
した。50μlDNA溶液をさらに6μl 10×Hバ
ッファーと20unitsSwaIを加えて再度25℃で2
時間消化した。このうち1μlをStratagene社製のGI
GAPACK XLを用いて、プロトコールにある用法
の 1/4 のスケールでパッケージングを行い、目的のコ
スミドpAdex−CAGAS15を得た。組換えアデ
ノウイルスの作製については前述の斉藤ら記載の方法に
従って行い、組換えアデノウイルスAd−CAGAS1
5を得た。
Adenovirus expressing cosmid cassette pA
dexlw (Saito et al., Experimental Medicine separate volume, Biomanual Series 4, “Gene transfer and expression / analysis in animal cells”, Yodosha (1993)) 5 μg was distilled with restriction enzyme SwaI (Boehringer) with 5 μl of 10 × H buffer. Add water,
The restriction enzyme SwaI 12 units was added to make 50 μl and the mixture was kept warm at 25 ° C. for 2 hours for digestion, followed by phenol / chloroform extraction and purification using a G-25 column manufactured by Pharmacia. 1 μg of SwaI-digested pAdexlw and 0.2 μg of the blunt-ended DNA fragment were precipitated with ethanol, and then 5 μl of TE (10 mM Tris-HCl, 1 mM EDTA (pH 8.
0)), 0.7 μl 10 × L buffer,
0.3 μl 10 mM ATP, 1 μl T4 DNA L
The reaction was carried out overnight at 15 ° C. with igase. 0.5μ
DNA Lig was prepared by adding l 2 M NaCl, 4 μl 10 × H buffer, and 34 μl distilled water and incubating at 70 ° C for 10 minutes.
The ase was heat inactivated. The restriction enzyme SwaI 20 units was added, and after reaction at 25 ° C. for 1 hour, phenol / chloroform extraction was performed, and the DNA ligated with the G-25 column was recovered. 50 μl DNA solution was further added with 6 μl 10 × H buffer and 20 units SwaI, and again at 25 ° C. for 2
Digested for hours. 1 μl of this is GI from Stratagene
Using GAPACK XL, packaging was carried out at a scale of 1/4 of the usage in the protocol to obtain the target cosmid pAdex-CAGAS15. Recombinant adenovirus Ad-CAGAS1 was prepared by the method described in Saito et al.
Got 5.

【0052】[0052]

【発明の効果】本発明はアンチセンスRNAを例えばリ
ポソームに封入して又はウイルベクターに組み込んで直
接炎症をおこしている肝臓に投与することにより、肝臓
で増殖しているC型肝炎ウイルスの構造蛋白質の発現の
制御を司っているC型肝炎ウイルス遺伝子の5′UTR
(5′側に存在するC型肝炎ウイルスの非翻訳領域)に
対して相補的に符合させて立体障害を伴う構造遺伝子発
現制御領域の障害を誘導し、C型肝炎ウイルスの増殖を
阻害して、C型肝炎ウイルス量を制限することでインタ
ーフェロンによるより効果的な治療を可能にするもので
ある。
INDUSTRIAL APPLICABILITY The present invention provides a structural protein of hepatitis C virus proliferating in the liver by administering antisense RNA, for example, by encapsulating it in a liposome or incorporating it in a virus vector, directly into the inflamed liver. 5'UTR of hepatitis C virus gene that controls the expression of Escherichia coli
(5'-side non-translated region of hepatitis C virus) is complementarily coded to induce a disorder in the structural gene expression control region accompanied by steric hindrance and inhibit the growth of hepatitis C virus. By limiting the amount of hepatitis C virus, more effective treatment with interferon is possible.

【0053】[0053]

【配列表】[Sequence list]

配列番号:1 配列の長さ:138 配列の型:核酸 鎖の数:一本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:他の核酸 アンチセンス:Yes 配列 CUCCAGGCAU UGAGCGGGUU AAUCCAAGAA AGGACCCGGU CGUCCUGGCA AUUCCGGUGU 60 ACUCACCGGU UCCGCAGACC ACUCUGGCUC UCCCGGGAGG GGGGGUCCUG GAGGCUGCAC 120 GACACUCAUA CUAACGCC 138 配列番号:2 配列の長さ:70 配列の型:核酸 鎖の数:一本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:他の核酸 アンチセンス:Yes 配列 UGGCAAUUCC GGUGUACUCA CCGGUUCCGC AGACCACUAU GGCUCUCCCG GGAGGGGGGG 60 UCCUGGAGGC 70 配列番号:3 配列の長さ:140 配列の型:核酸 鎖の数:一本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:他の核酸 アンチセンス:Yes 配列 CAGUCUCGCG GGGGCACGCC CAAAUCUCCA GGCAUUGAGC GGGUUAAUCC AAGAAAGGAC 60 CCGGUCGUCC UGGCAAUUCC GGUGUACUCA CCGGUUCCGC AGACCACUAU GGCUCUCCCG 120 GGAGGGGGGG UCCUGGAGGC 140 配列番号:4 配列の長さ:70 配列の型:核酸 鎖の数:一本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:他の核酸 アンチセンス:Yes 配列 GGGUUAAUCC AAGAAAGGAC CCGGUCGUCC UGGCAAUUCC GGUGUACUCA CCGGUUCCGC 60 AGACCACUAU 70 配列番号:5 配列の長さ:69 配列の型:核酸 鎖の数:一本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:他の核酸 アンチセンス:Yes 配列 GGGGGCACGC CCAAAUCUCC AGGCAUUGAG CGGGUUAAUC CAAGAAAGGA CCCGGUCGUC 60 CUGGCAAUU 69 配列番号:6 配列の長さ:186 配列の型:核酸 鎖の数:一本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:他の核酸 アンチセンス:Yes 配列 GGGGCACUCG CAAGCACCCU AUCAGGCAGU ACCACAAGGC CUUUCGCGAC CCAACACUAC 60 UCGGCUAGCA GUCUCGCGGG GGCACGCCCA AAUCUCCAGG CAUUGAGCGG GUUAAUCCAA 120 GAAAGGACCC GGUCGUCCUG GCAAUUCCGG GUACUCACCG GUUCCGCAGA CCACUAUGGC 180 UCUCCC 186 SEQ ID NO: 1 Sequence length: 138 Sequence type: Nucleic acid Number of strands: Single-stranded Topology: Linear Sequence type: Other nucleic acid Antisense: Yes Sequence CUCCAGGCAU UGAGCGGGUU AAUCCAAGAA AGGACCCGGU CGUCCUGGCA AUUCCGGUGU 60 ACUCACCGGU UCCGCAGUC ACCCUGGCGA GGGGGUCCUG GAGGCUGCAC 120 GACACUCAUA CUAACGCC 138 SEQ ID NO: 2 Sequence length: 70 Sequence type: Nucleic acid Number of strands: Single-stranded topology: Linear Sequence type: Other nucleic acid Antisense: Yes sequence UGGCAAUUCC GGUGUACUCA CCGGUUCCGC AGACCCCCUAU GGCU GGAGGGGGGG 60 UCCUGGAGGC 70 SEQ ID NO: 3 Sequence length: 140 Sequence type: Nucleic acid Number of strands: Single-stranded Topology: Linear Sequence type: Other nucleic acid Antisense: Yes Sequence CAGUCUCGCG GGGGCACGCC CAAAUCUCCA GGCAUUGAGC GGGUUAAUCC AAGAAAGGAC 60 CCGGUCGUCC UGGCAAUUCC GGUGUACUCA CCGGUUCCGC AGACCACUAU GGCUCUCCCG 120 GGAGGGGGGG UCCUGGAGGC 140 SEQ ID NO: 4 of sequence Length: 70 Sequence type: Nucleic acid Number of strands: Single stranded Topology: Linear Sequence type: Other nucleic acid Antisense: Yes Sequence GGGUUAAUCC AAGAAAGGAC CCGGUCGUCC UGGCAAUUCC GGUGUACUCA CCGGUUCCGC 60 AGACCACUAU 70 SEQ ID NO: 5 Sequence length : 69 Sequence type: Nucleic acid Number of strands: Single strand Topology: Linear Sequence type: Other nucleic acid Antisense: Yes sequence GGGGGCACGC CCAAAUCUCC AGGCAUUGAG CGGGUUAAUC CAAGAAAGGA CCCGGUCGUC 60 CUGGCAAUU 69 SEQ ID NO: 6 Sequence length: 186 Sequence Type: Nucleic Acid Number of Strands: Single Strand Topology: Linear Sequence Type: Other Nucleic Acids Antisense: Yes Sequence GGGGCACUCG CAAGCACCCU AUCAGGCAGU ACCACAAGAGUC CUUC CCUGUCACUCCCUCCAGAUCGAC GUCUCGC UCUCCC 186

【図面の簡単な説明】[Brief description of drawings]

【図1】この図は、C型肝炎ウイルス クローン2−1
の 5′UTR の配列とアンチセンスRNA の領域を示す。ク
ローン2−1 5′UTR の配列の上部に示したstem-loopI
I, III, IV は Brown, E.ら(Nucleic Acids Research.
20, p.5041-5045 (1992))が報告しているC型肝炎ウ
イルス 5'UTRの二次構造予測による領域の分類であり、
配列下部に示したstem-loop A, B, C, D, E, Fは Tsuki
yama-Kohara, K.ら(Journal of Virology.66, p.1476-
1483 (1992))による二次構造予測による分類である。
FIG. 1 shows the hepatitis C virus clone 2-1.
The 5'UTR sequence and the antisense RNA region are shown. The stem-loop I shown above the sequence of clone 2-1 5'UTR
I, III, IV are Brown, E. et al. (Nucleic Acids Research.
20 , p.5041-5045 (1992)), which is a classification of regions by the secondary structure prediction of hepatitis C virus 5'UTR.
The stem-loops A, B, C, D, E, and F shown at the bottom of the array are Tsuki.
yama-Kohara, K. et al. (Journal of Virology. 66 , p.1476-
1483 (1992)).

【図2】この図は、35Sラベルの in vitro 翻訳実験の
結果を示す、ウサギ抗core蛋白質ポリクローナル抗
体を用いたウエスタンブロッティングで検出されるco
re蛋白質のバンドを示す写真である。
FIG. 2 This figure shows the results of an in vitro translation experiment of 35 S-labeled co detected by Western blotting using a rabbit anti-core protein polyclonal antibody.
It is a photograph showing a band of re protein.

Claims (5)

【特許請求の範囲】[Claims] 【請求項1】 C型肝炎ウイルス(HCV)ゲノムの
5′非翻訳領域の部分配列に対するアンチセンスRN
A。
1. An antisense RN against a partial sequence of the 5'untranslated region of the hepatitis C virus (HCV) genome.
A.
【請求項2】 配列番号1、2、3、4、5及び6に示
されるヌクレオチド配列からなる群から選択される、C
型肝炎ウイルス(HCV)ゲノムの5′非翻訳領域の部
分配列に対するアンチセンスRNA。
2. A C selected from the group consisting of the nucleotide sequences shown in SEQ ID NOs: 1, 2, 3, 4, 5 and 6.
An antisense RNA against a partial sequence of the 5'untranslated region of the hepatitis C virus (HCV) genome.
【請求項3】 請求項1又は2記載のアンチセンスRN
Aを発現可能なように保有する発現ベクター。
3. The antisense RN according to claim 1 or 2.
An expression vector carrying A so that it can be expressed.
【請求項4】 請求項1又は2記載のアンチセンスRN
Aを有効成分として含有してなるHCV関連疾患治療
剤。
4. The antisense RN according to claim 1 or 2.
A therapeutic agent for HCV-related diseases, which comprises A as an active ingredient.
【請求項5】 請求項3記載の発現ベクターを有効成分
として含有してなるHCV関連疾患治療剤。
5. A therapeutic agent for HCV-related diseases, which comprises the expression vector according to claim 3 as an active ingredient.
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