JPH07270419A - Enzyme immunity examining method - Google Patents
Enzyme immunity examining methodInfo
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- JPH07270419A JPH07270419A JP6059258A JP5925894A JPH07270419A JP H07270419 A JPH07270419 A JP H07270419A JP 6059258 A JP6059258 A JP 6059258A JP 5925894 A JP5925894 A JP 5925894A JP H07270419 A JPH07270419 A JP H07270419A
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Abstract
Description
【0001】[0001]
【産業上の利用分野】本発明は酵素免疫検査法(エンザ
イムイムノアッセイ)に関するものであり、特に微量か
つ複数の目的物質を高感度に検出する酵素免疫検査法に
関するものである。BACKGROUND OF THE INVENTION 1. Field of the Invention The present invention relates to an enzyme immunoassay method (enzyme immunoassay), and more particularly to an enzyme immunoassay method for detecting a small amount of a plurality of target substances with high sensitivity.
【0002】[0002]
【従来の技術】抗原または抗体を高感度に同定、定量す
るために抗原抗体反応(免疫反応)の高い特異性を利用
することが行われており、一般的に免疫検査法(イムノ
アッセイ)といわれている。この免疫検査法は、抗原抗
体反応により生じる沈澱物や凝集体を光学的に検出する
免疫比濁法(TIA)と分別検出の容易な物質で標識し
た抗体または抗原を用いる標識化免疫法に大別される。
特に後者にはその標識物によって種々の系が考えられて
おり、代表的なものとしては放射性同位元素を含むもの
を標識とするラジオイムノアッセイ(RIA)、酵素を
標識とするエンザイムイムノアッセイ(EIA)、蛍光
体を標識とする蛍光イムノアッセイ(FIAまたはFA
T)等がある。2. Description of the Related Art The high specificity of an antigen-antibody reaction (immune reaction) is used to identify and quantify an antigen or an antibody with high sensitivity, and it is generally called an immunoassay method (immunoassay). ing. This immunoassay is largely classified into an immunoturbidimetric method (TIA) that optically detects precipitates and aggregates generated by an antigen-antibody reaction, and a labeled immunoassay method that uses an antibody or an antigen labeled with a substance that can be easily detected separately. Be separated.
In particular, various systems have been considered for the latter depending on the labeled substance, and typical examples thereof include a radioimmunoassay (RIA) that labels a substance containing a radioisotope, an enzyme immunoassay (EIA) that labels an enzyme, Fluorescent immunoassay (FIA or FA
T) etc.
【0003】また現在適用されている検査を見てみると
TIA法を使用しているものには血清中の蛋白質である
トランスフェリンやCRP、免疫グロブリンIgG,Ig
A、IgM、自己免疫関連としてリウマチ因子、更に血
液学的な検査としてはプラスミノ−ゲンの定量化、アン
チトロンビンIIIの定量化等があり、一方標識化免疫測
定法としてRIA法は内分泌学検査(例えばエリスロポ
エチン、プロスタグランディンなど)からウイルス学検
査(例えばHBs抗体、HCV抗体など)、腫瘍関連検
査(例えばAFP、CEAなど)、生化学検査(例えば
トリプシン等)と広い範囲に及び、EIA法は血液学検
査(例えばプロテインS、FPAなど)、免疫血清学検
査(例えば免疫複合体、マイクログロブリンなど)、F
ATはウイルス抗体の検査(例えばEBV、ヘルペスな
ど)、免疫血清学検査(例えば抗核抗体など)に使用さ
れる。Further, looking at the tests currently applied, those using the TIA method include transferrin and CRP, which are proteins in serum, and immunoglobulins IgG, Ig.
A, IgM, rheumatoid factor for autoimmunity, and quantification of plasmin-gen and antithrombin III for hematological tests. On the other hand, RIA as a labeled immunoassay is an endocrine test ( For example, from erythropoietin, prostaglandin, etc.) to virological tests (eg, HBs antibody, HCV antibody, etc.), tumor-related tests (eg, AFP, CEA, etc.), biochemical tests (eg, trypsin, etc.), and the EIA method is wide. Hematology tests (eg, Protein S, FPA, etc.), Immunoserologic tests (eg, immune complex, microglobulin, etc.), F
AT is used for a virus antibody test (for example, EBV, herpes, etc.) and an immunoserologic test (for example, antinuclear antibody, etc.).
【0004】[0004]
【本発明が解決しようとする課題】免疫検査法は上に述
べた様に広く臨床検査等に利用されているが、高感度に
目的物質を検出するためにはRIA法によることが多
い。しかしこのRIA法では同一被検体中の複数の目的
物質を同時に検出することはできないという問題点があ
った。また、他の方法、例えばEIAやFIAでは感度
の点で使用が制限されるという問題点と複数の目的物質
を同時に検出しようとすると酵素反応生成物の分画装置
や蛍光、発光の分光分布の分析装置が必要となり装置コ
ストが高くなり、かつ分解能の点で対象種類がかなり制
限されるという問題点があった。The immunoassay method is widely used in clinical tests and the like as described above, but the RIA method is often used to detect a target substance with high sensitivity. However, this RIA method has a problem that a plurality of target substances in the same subject cannot be detected at the same time. In addition, in other methods such as EIA and FIA, the problem that the use is limited in terms of sensitivity and when it is attempted to detect a plurality of target substances at the same time, the fractionation device of the enzyme reaction product and the spectral distribution of fluorescence and luminescence are There is a problem that an analyzer is required, the cost of the device is high, and the kinds of objects are considerably limited in terms of resolution.
【0005】本発明はこのような問題点に鑑みてなされ
たもので、複数の目的物質を同時に、簡単に、高感度に
検出することを目的にしている。The present invention has been made in view of the above problems, and an object thereof is to detect a plurality of target substances simultaneously and easily with high sensitivity.
【0006】[0006]
【課題を解決するための手段】そこで、本発明において
は、検出したい目的物質が複数ある場合、これらと反応
する抗体または抗原の標識として各々異なる制限酵素を
用いることにした。このような各々異なる制限酵素によ
って標識された抗体または抗原を検出試薬として被検体
に加えることにより、被検体に目的物質が含まれている
場合には抗原抗体反応が起こり、1または2以上の制限
酵素を有する免疫反応複合体が得られる。これと未反応
物とをB/F分離する。得られた複合体は、目的物質に
よって各々異なる制限酵素を有しており、これらの制限
酵素により各々切断される切断塩基配列を有するDNA
鎖を基質として複合体と反応させることにより、DNA
鎖が切断される。本発明においては、切断されたDNA
鎖断片を分析して測定することにより、制限酵素の有無
やその量、ひいては各々の目的物質の有無やその量を検
出する。Therefore, in the present invention, when there are a plurality of target substances to be detected, different restriction enzymes are used as labels for the antibodies or antigens that react with them. By adding such antibodies or antigens labeled with different restriction enzymes to a test substance as a detection reagent, an antigen-antibody reaction occurs when the test substance contains a target substance, and one or more or more restrictions occur. An immune reaction complex with the enzyme is obtained. This is separated from the unreacted material by B / F. The obtained complex has different restriction enzymes depending on the target substance, and a DNA having a cleavage base sequence that is cleaved by each of these restriction enzymes.
DNA is obtained by reacting the complex with the chain as a substrate.
The chain is broken. In the present invention, cleaved DNA
By analyzing and measuring the chain fragment, the presence or absence of a restriction enzyme and its amount, and thus the presence or absence of each target substance and its amount are detected.
【0007】本発明で用いるDNA鎖としては、切断さ
れたDNA鎖断片の長さが各々の制限酵素によって異な
るように切断塩基配列を配置したDNA鎖を用いること
が好ましい。特に、各々の制限酵素により切断される切
断塩基配列を同一鎖内に有し、DNA鎖が複数箇所で切
断されても各々のDNA鎖断片が異なる長さを有するよ
うに切断塩基配列が配置されているDNA鎖を用いるこ
とにより、1種のDNA鎖で複数の目的物質の検出が可
能となる。As the DNA chain used in the present invention, it is preferable to use a DNA chain in which a cleaved base sequence is arranged so that the length of the cleaved DNA chain fragment varies depending on each restriction enzyme. In particular, the cleavage base sequences are arranged in the same strand so that they can be cleaved by each restriction enzyme, and each DNA strand fragment has a different length even if the DNA strands are cleaved at multiple locations. It is possible to detect a plurality of target substances with one type of DNA chain by using the existing DNA chain.
【0008】または、各々の制限酵素に対してこれによ
り切断される切断塩基配列のみを有する複数種のDNA
鎖を用いる。切断されたDNA鎖断片の分析としては、
例えば電気泳動法やクロマトグラフィ−法を使用するこ
ととした。Alternatively, a plurality of types of DNA having only a cleavage base sequence that is cleaved by each restriction enzyme
Use chains. The analysis of the cleaved DNA chain fragment includes
For example, it was decided to use the electrophoresis method or the chromatography method.
【0009】[0009]
【作用】本発明によれば、複数の目的物質各々の抗体ま
たは抗原に各々異なる切断塩基配列を有する制限酵素を
つけた検出試薬を被検体に同時に加える。これによりこ
の各々の抗体(または抗原)は各々の抗原(または抗
体)に対して非常に高い特異性を持って結合する。これ
をB/F分離して未反応検出試薬を分離すれば免疫反応
複合体が得られる。この時の状態は極少量の各々の免疫
反応複合体に各々異なる制限酵素がついているものであ
る。そこでこの各々異なる制限酵素を同時に検出するた
めにこの各々の制限酵素の切断配列を有するDNA鎖を
基質として加えて反応させて各々異なる長さをもつDN
A鎖断片を生じさせる。この様なDNA鎖としては一種
類のものを用いる場合にはこの内に各々の制限酵素の切
断配列を有し、かつ任意の切断点の組み合わせによって
も同一長のDNA鎖断片を生じない位置に切断配列を有
するものである。また複数種のDNA鎖を用いる時には
各々の切断配列が各々別々のDNA鎖に各々1つづつ有
するようにし、かつ切断後のDNA鎖断片の長さが各々
異なるようなものである。こうすると各免疫反応複合体
があれば各々の制限酵素とDNA鎖の反応により大量の
異なった長さのDNA鎖断片が生じることになる。そこ
でこれらを分析するために例えばゲル電気泳動により各
々異なる長さを各々異なる場所に局在化させエチジウム
ブロマイド等で染色して蛍光を観察すればゲルパタ−ン
として複数の目的物質が同時に簡単に検出できる。さら
に、蛍光強度を測定することにより、複数の目的物質の
有無のみならず、目的物質の量も測定可能である。According to the present invention, a detection reagent prepared by attaching a restriction enzyme having a different cleavage base sequence to an antibody or an antigen of each of a plurality of target substances is simultaneously added to a subject. This allows each of these antibodies (or antigens) to bind to each of the antigens (or antibodies) with very high specificity. An immune reaction complex can be obtained by subjecting this to B / F separation to separate the unreacted detection reagent. The state at this time is such that a very small amount of each immune reaction complex has a different restriction enzyme attached thereto. Therefore, in order to detect these different restriction enzymes at the same time, a DNA chain having a cleavage sequence of each restriction enzyme is added as a substrate and reacted to generate DNs having different lengths.
Generate an A chain fragment. When one kind of such DNA chain is used, it has a cleavage sequence of each restriction enzyme within it, and it is located at a position where a DNA chain fragment of the same length is not produced even by the combination of arbitrary cleavage points. It has a cleavage sequence. When a plurality of types of DNA strands are used, each cleavage sequence has one in each separate DNA strand, and the lengths of the DNA strand fragments after cleavage are different from each other. In this way, in the presence of each immunoreaction complex, a large amount of DNA chain fragments having different lengths are produced by the reaction of each restriction enzyme with the DNA chain. Therefore, in order to analyze these, for example, by gel electrophoresis, localizing different lengths at different locations, staining with ethidium bromide, etc., and observing fluorescence, multiple target substances can be easily detected simultaneously as gel patterns. it can. Furthermore, by measuring the fluorescence intensity, not only the presence or absence of a plurality of target substances but also the amount of the target substances can be measured.
【0010】また、クロマトグラフィ−によっても同様
に、複数の目的物質が同時に簡単に検出できる。Similarly, a plurality of target substances can be easily detected simultaneously by chromatography.
【0011】[0011]
【実施例】 本発明を用いて目的の物質であるガン胎児
性抗原(CEA)及びα−フェトプロテイン(AFP)
を同時に高感度に、簡単に検出する例を示す。 [例1] (1)検出試薬(制限酵素標識抗体)の調製 制限酵素としてEcoR Iを0.1mol/l リン酸ナトリウム緩
衝液(pH7.0)に溶解し、そこへ500〜1000当量のN-スク
シンイミジル-4-(N-マレイミドメチル)シクロヘキサ
ン-1-カルボキシレートのN,N-ジメチルホルムアミド溶
液を加え30℃にて1時間反応させ、沈殿した未反応のマ
レイミド化合物を遠心分離にて除去したのち、上清を0.
1mol/l リン酸ナトリウム緩衝液(pH6.0)で平衡化した
Sephadex G-25カラムにて目的物を精製した。この画分
へ抗CEA抗体を溶解した5mmol/l EDTA含有リン酸ナトリ
ウム緩衝液を混ぜ合わせ4℃にて20時間インキュベート
したのち、0.1mol/l リン酸ナトリウム緩衝液(pH6.5)
で平衡化したUltrogel AcA 44カラムにて目的画分を精
製し、EcoR Iで制限酵素標識された抗CEA抗体を収率85
%で得て検出試薬とした。また、同様の方法によりStu
Iにて標識された抗AFP抗体を収率87%にて調製して検出
試薬とした。 (2)検出用基質DNA鎖の作成 全長が400bpsの長さを有し、その中央部にのみEcoR Iの
切断部位を有するDNA鎖と全長が300bpsの長さを有
し、その中央部のみにStu Iの切断部位を有するDNA
鎖をDNA合成機により調製し検出用基質DNA鎖とし
た。図1にこの両方の基質DNA鎖の構成図を示した。
図中5'や3'はDNA鎖の端部を示し、各正方形のボック
ス11はヌクレオチドを示し、200bps,150bpsは各々塩基
配列長を示す。また、A,G,T,Cはヌクレオチドの塩基を
示し、a,a',b,b'はEcoRI及びStu Iの切断配列を含まな
い任意の配列である。尚EcoR Iの切断配列はExample Using the present invention, carcinoembryonic antigen (CEA) and α-fetoprotein (AFP), which are the target substances,
An example of simultaneously detecting with high sensitivity is shown. [Example 1] (1) Preparation of detection reagent (restriction enzyme-labeled antibody) EcoRI as a restriction enzyme was dissolved in 0.1 mol / l sodium phosphate buffer (pH 7.0), and 500-1000 equivalents of N- A solution of succinimidyl-4- (N-maleimidomethyl) cyclohexane-1-carboxylate in N, N-dimethylformamide was added and reacted at 30 ° C for 1 hour, and the precipitated unreacted maleimide compound was removed by centrifugation. , Supernatant to 0.
Equilibrated with 1 mol / l sodium phosphate buffer (pH 6.0)
The target product was purified on a Sephadex G-25 column. This fraction was mixed with 5 mmol / l EDTA-containing sodium phosphate buffer containing anti-CEA antibody, incubated at 4 ° C for 20 hours, and then 0.1 mol / l sodium phosphate buffer (pH 6.5).
The target fraction was purified on an Ultrogel AcA 44 column equilibrated with and the yield of anti-CEA antibody labeled with EcoR I was obtained.
% To obtain a detection reagent. In addition, Stu
An anti-AFP antibody labeled with I was prepared at a yield of 87% and used as a detection reagent. (2) Creation of substrate DNA strand for detection A total length of 400 bps, a DNA strand having a cleavage site of EcoR I only in its central part and a total length of 300 bps, only in its central part DNA with Stu I cleavage site
The strand was prepared by a DNA synthesizer and used as a substrate DNA strand for detection. FIG. 1 shows a schematic diagram of both substrate DNA strands.
In the figure, 5'and 3'indicate the ends of the DNA chain, each square box 11 indicates a nucleotide, and 200 bps and 150 bps indicate base sequence lengths, respectively. Moreover, A, G, T, and C represent nucleotide bases, and a, a ′, b, and b ′ are arbitrary sequences that do not include the cleavage sequences of EcoRI and StuI. The cleavage sequence of EcoR I is
【0012】[0012]
【化1】 [Chemical 1]
【0013】Stu Iの切断配列はThe cleavage sequence of Stu I is
【0014】[0014]
【化2】 [Chemical 2]
【0015】である。 (3)固相化抗体の作成 リン酸ナトリウム緩衝液(pH7.2)に抗CEA抗体および抗
AFP抗体を溶解したものをマイクロタイタープレートに
加え、4℃にて1晩インキュベートした液を捨てリン酸ナ
トリウム緩衝液(pH7.2)にて洗浄してB/F分離を行
い、2種類の抗体が固定しされた固相化抗体を作成し
た。 (4)固相化抗体-抗原-標識化抗体複合体(標識化免疫
反応複合体)の作成 ウエルに被検体であるCEAおよびAFPの標準試料を加え、
室温にて2時間インキュベートした。液を捨てリン酸ナ
トリウム緩衝液(pH7.2)にて洗浄したのち、先に調製
した検出試薬である2種の制限酵素標識化抗体をリン酸
ナトリウム緩衝液で希釈してウエルに加え、室温にて1
時間インキュベートした。この後液を捨ててリン酸ナト
リウム緩衝液にて洗浄し、未反応検出試薬を除去して固
相化抗体−抗原(CEAまたはAFP)−標識化抗体複合体
(標識化免疫反応複合体)を形成した。 (5)検出 ウエルにEcoR IおよびStu Iにとって好条件となる緩衝
液(50mM塩化ナトリウム、7mM 塩化マグネシウム、Tris
-HCl、pH7.5)と(2)の2種の検出用DNA鎖を加え、37℃
にて30分間インキュベートしたのちウエル内の液をポリ
アクリルアミドゲルにて電気泳動して泳動パタ−ンを得
た。このゲルをエチジウムブロマイドにて染色し、その
蛍光を測定し、同時に作成した検量線から200bps、400b
ps、150bps及び300bpsの位置にあるバンドの各DNA断片
の量を算出して各抗原の定量を行った。結果を図3に泳
動パタ−ンとして示した。図中30はポリアクリルアミド
のゲル板であり、矢印の方向は泳動方向であり、31は15
0bps、32は200bps、33は300bps、34は400bpsのDNA鎖
断片のバンドを示す。 (6)検量線の作成 検量線作成は、上記で用いた同一の免疫検査用タイター
プレートの未使用ウエルにて、既知濃度の各制限酵素を
加え、(5)の検出操作を上記抗原存在系と同一条件に
て行い、制限酵素量と生成するDNA鎖断片量との関係
をプロットし作成した。この結果図5の様な検量線を得
た。[0015] (3) Preparation of immobilized antibody Anti-CEA antibody and anti-CEA were added to sodium phosphate buffer (pH7.2).
AFP antibody was added to a microtiter plate, incubated overnight at 4 ° C, discarded, washed with sodium phosphate buffer (pH7.2), and separated into B / F. A solid-phased antibody in which was immobilized was prepared. (4) Preparation of immobilized antibody-antigen-labeled antibody complex (labeled immunoreaction complex) Add standard samples of CEA and AFP, which are the analytes, to the wells,
Incubated for 2 hours at room temperature. After discarding the solution and washing with sodium phosphate buffer (pH 7.2), dilute the two types of restriction enzyme-labeled antibodies that were the detection reagents prepared above with sodium phosphate buffer and add them to the wells at room temperature. At 1
Incubated for hours. After that, the liquid is discarded and washed with sodium phosphate buffer to remove the unreacted detection reagent, and the immobilized antibody-antigen (CEA or AFP) -labeled antibody complex (labeled immune reaction complex) is removed. Formed. (5) Detection Well buffers (50mM sodium chloride, 7mM magnesium chloride, Tris) that are favorable conditions for EcoR I and Stu I
-HCl, pH 7.5) and (2) two DNA strands for detection were added, and the temperature was 37 ° C.
After incubating at 30 ° C. for 30 minutes, the solution in the well was electrophoresed on a polyacrylamide gel to obtain a migration pattern. This gel was stained with ethidium bromide, and its fluorescence was measured.
The amount of each DNA fragment in the band at ps, 150 bps, and 300 bps was calculated to quantify each antigen. The results are shown in FIG. 3 as a migration pattern. In the figure, 30 is a polyacrylamide gel plate, the direction of the arrow is the migration direction, and 31 is 15
0 bps, 32 shows 200 bps, 33 shows 300 bps, and 34 shows bands of DNA chain fragments at 400 bps. (6) Preparation of calibration curve To prepare the calibration curve, add each restriction enzyme of known concentration to an unused well of the same immunoassay titer plate used above, and perform the detection operation in (5) above in the antigen presence system. Was carried out under the same conditions as above, and the relationship between the amount of restriction enzyme and the amount of generated DNA chain fragment was plotted and created. As a result, a calibration curve as shown in FIG. 5 was obtained.
【0016】[例2] (1)検出試薬の調製 実施例1と同じにした。 (2)検出用基質DNA鎖の調製 図2に示したような、全長が450bpsの長さを有し、一方
の端部より200bpsの位置のみにEcoR Iの切断配列を有
し、もう一方の端部より150bpsの位置のみにStuIの切断
配列を有するDNA二重鎖をDNA合成機により調製し
た。[Example 2] (1) Preparation of detection reagent The same as in Example 1. (2) Preparation of substrate DNA strand for detection As shown in FIG. 2, the total length is 450 bps, the EcoR I cleavage sequence is present only at a position 200 bps from one end, and the other is A DNA duplex having a StuI cleavage sequence only at a position of 150 bps from the end was prepared by a DNA synthesizer.
【0017】図中20はStu Iの切断塩基配列を21はEcoR
Iの切断塩基配列を示し、22はこの双方を含まない任意
の配列である。 (3)固相化抗体の作成 実施例1と同じにした。 (4)固相化抗体−抗原標識化抗体複合体(標識化免疫
反応複合体)の形成 実施例1と同じにした。 (5)検出 ウエルにEcoR IおよびStu Iにとって好条件となる緩衝
液(50mM塩化ナトリウム、7mM 塩化マグネシウム、Tris
-HCl、pH7.5)と(2)の検出用DNA鎖を加え、37℃にて3
0分間インキュベートしたのちウエル内の液をポリアク
リルアミドゲルにて電気泳動して泳動パタ−ンを得た。
このゲルをエチジウムブロマイドにて染色し、その蛍光
を測定し、同時に作成した検量線から同条件にて作成し
た検量線から100bps、150bps、200bps、250bps、300bp
s、450bpsの位置にあるバンドのDNA断片の数を算出
して抗原の定量を得た。図4に泳動パタ−ンを示した。
図中40はポリアクリルアシド板であり、泳動は矢印の方
向に行われ、41,42,43,44,45,46,は各々100bps,150bps,
200bps,250bps,300bps,450bps,のDNA鎖断片のバンド
位置を示す。 (6)検量線の作成 実施例1と同じにした。In the figure, 20 is the cleavage base sequence of Stu I and 21 is EcoR
The cleavage base sequence of I is shown, and 22 is an arbitrary sequence that does not contain both of them. (3) Preparation of immobilized antibody The same as in Example 1. (4) Formation of immobilized antibody-antigen-labeled antibody complex (labeled immune reaction complex) The same procedure as in Example 1 was performed. (5) Detection Well buffers (50mM sodium chloride, 7mM magnesium chloride, Tris) that are favorable conditions for EcoR I and Stu I
-HCl, pH 7.5) and (2) DNA strand for detection were added, and
After incubating for 0 minutes, the solution in the well was electrophoresed on a polyacrylamide gel to obtain a migration pattern.
This gel is stained with ethidium bromide, its fluorescence is measured, and 100bps, 150bps, 200bps, 250bps, 300bp from the calibration curve prepared under the same conditions from the calibration curve prepared at the same time.
The number of DNA fragments in the band at the s and 450 bps positions was calculated to determine the amount of antigen. The migration pattern is shown in FIG.
In the figure, 40 is a polyacrylic acid plate, migration is performed in the direction of the arrow, 41, 42, 43, 44, 45, 46, 100bps, 150bps, respectively.
The band positions of DNA chain fragments of 200 bps, 250 bps, 300 bps, and 450 bps are shown. (6) Preparation of calibration curve The same as in Example 1.
【0018】以上の例では2種類の抗原に対しての実施
例を示したが、より多くの抗原に対してもDNA鎖断片
の長さが各々異なるようにすることにより容易に利用で
きる。2つの例では電気泳動法を用いたが、クロマトグ
ラフィ−でも全く同じように検出できる。In the above examples, examples for two types of antigens have been shown, but it is possible to easily use even more antigens by making the lengths of the DNA chain fragments different. Although the electrophoretic method was used in the two examples, it can be detected by chromatography in exactly the same manner.
【0019】[0019]
【発明の効果】以上のように、本発明の酵素免疫検査法
においては、複数の目的物質を検出するための酵素とし
て複数の制限酵素を利用することにより、高感度に、簡
単に、複数の目的物質を同時に検出できる。しかも、検
出された被検体のデ−タは後日、いつでも再チェックす
ることも可能になる。更に検体の相互比較が1枚の泳動
パタ−ンで簡単にできるというメリットもある。INDUSTRIAL APPLICABILITY As described above, in the enzyme immunoassay method of the present invention, by using a plurality of restriction enzymes as enzymes for detecting a plurality of target substances, a plurality of restriction enzymes can be easily detected with high sensitivity. The target substance can be detected at the same time. Moreover, the detected object data can be rechecked anytime later. Furthermore, there is an advantage that mutual comparison of samples can be easily performed with a single electrophoretic pattern.
【0020】[0020]
【図1】 使用した基質としてのDNA鎖の構成例であ
る。FIG. 1 is a structural example of a DNA chain used as a substrate.
【図2】 使用した基質としてのDNA鎖の構成例であ
る。FIG. 2 is a structural example of a DNA chain as a substrate used.
【図3】 実施例1でのDNA鎖断片の泳動パタ−ンで
ある。FIG. 3 is a migration pattern of a DNA chain fragment in Example 1.
【図4】 実施例2でのDNA鎖断片の泳動パタ−ンで
ある。FIG. 4 is a migration pattern of a DNA chain fragment in Example 2.
【図5】 検量線であり、横軸が制限酵素の量、縦軸が
泳動後のDNA鎖断片のバンド濃度を示す。FIG. 5 is a calibration curve, in which the horizontal axis represents the amount of restriction enzyme and the vertical axis represents the band concentration of the DNA chain fragment after electrophoresis.
11 ヌクレオチド 11 nucleotides
Claims (6)
により標識された抗体または抗原とを反応させ免疫反応
複合体を得た後、該複合体と未反応物とを分離し、反応
物の酵素を利用して目的物質を検出する酵素免疫検査法
において、目的物質が複数あり、これらと反応する各々
の抗体または抗原の標識を各々異なる制限酵素とし、前
記反応及び分離により1または2以上の制限酵素を有す
る各々の免疫反応複合体を得、各々の複合体の制限酵素
により切断される切断塩基配列を有する各々のDNA鎖
を複合体の制限酵素により切断し、該切断された各々の
DNA鎖断片を分析して測定することにより、複数の目
的物質を検出することを特徴とする酵素免疫検査法。1. An immunoreactive complex is obtained by reacting an antigen or antibody as a target substance with an enzyme-labeled antibody or antigen, and then the complex and an unreacted product are separated to obtain a reaction product. In an enzyme immunoassay method for detecting a target substance using an enzyme, there are a plurality of target substances, and each antibody or antigen that reacts with them is labeled with a different restriction enzyme, and 1 or 2 or more depending on the reaction and separation. Each immunoreaction complex having a restriction enzyme is obtained, each DNA chain having a cleavage base sequence that is cleaved by the restriction enzyme of each complex is cleaved by the restriction enzyme of the complex, and each cleaved DNA An enzyme immunoassay method characterized by detecting a plurality of target substances by analyzing and measuring chain fragments.
て、前記反応物の制限酵素により切断される切断塩基配
列を有するDNA鎖として、切断されたDNA鎖断片の
長さが各々の制限酵素によって異なるように切断塩基配
列を配置したDNA鎖を用いることを特徴とする酵素免
疫検査法。2. The enzyme immunoassay method according to claim 1, wherein the DNA chain having a cleavage base sequence that is cleaved by the restriction enzyme of the reaction product has a length of each cleaved DNA chain fragment. An enzyme immunoassay method characterized by using a DNA chain in which a cleavage base sequence is arranged so as to differ depending on the type.
て、前記反応物の制限酵素により切断される切断塩基配
列を有するDNA鎖として、各々の制限酵素により切断
される切断塩基配列を同一鎖内に有し、DNA鎖が複数
箇所で切断されても各々のDNA鎖断片が異なる長さを
有するように切断塩基配列が配置されたことを特徴とす
る酵素免疫検査法。3. The enzyme immunoassay method according to claim 2, wherein the DNA strand having a cleavage base sequence that is cleaved by the restriction enzyme of the reaction product has the same cleavage base sequence that is cleaved by each restriction enzyme. An enzyme-linked immunosorbent assay characterized in that the cleaved nucleotide sequences are arranged such that each DNA strand fragment has a different length even if the DNA strands are cleaved inside and the DNA strands are cleaved at multiple positions.
て、前記反応物の制限酵素により切断される切断塩基配
列を有するDNA鎖として、各々の制限酵素に対してこ
れにより切断される切断塩基配列のみを有する複数種の
DNA鎖を用い、各々の制限酵素により切断されたDN
A鎖断片が各々異なる長さを有することを特徴とする酵
素免疫検査法。4. The enzyme immunoassay method according to claim 2, wherein the DNA strand having a cleavage base sequence that is cleaved by the restriction enzyme of the reaction product is a cleavage base that is cleaved by each restriction enzyme. DN cleaved by each restriction enzyme using plural kinds of DNA chains having only sequences
An enzyme immunoassay method, wherein each A chain fragment has a different length.
て、前記切断されたDNA鎖断片を電気泳動法により分
析して測定することにより複数の目的物質を検出するこ
とを特徴とする酵素免疫検査法。5. The enzyme immunoassay according to claim 1, wherein a plurality of target substances are detected by analyzing and measuring the cleaved DNA chain fragment by an electrophoresis method. Inspection method.
て、前記切断されたDNA鎖断片をクロマトグラフィを
用いて分析して測定することにより複数の目的物質を検
出することを特徴とする酵素免疫検査法。6. The enzyme immunoassay according to claim 1, wherein a plurality of target substances are detected by analyzing and measuring the cleaved DNA chain fragment using chromatography. Inspection method.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP6059258A JPH07270419A (en) | 1994-03-29 | 1994-03-29 | Enzyme immunity examining method |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP6059258A JPH07270419A (en) | 1994-03-29 | 1994-03-29 | Enzyme immunity examining method |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH07270419A true JPH07270419A (en) | 1995-10-20 |
Family
ID=13108178
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP6059258A Pending JPH07270419A (en) | 1994-03-29 | 1994-03-29 | Enzyme immunity examining method |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH07270419A (en) |
-
1994
- 1994-03-29 JP JP6059258A patent/JPH07270419A/en active Pending
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