JPH07177831A - カロチン含量の高い新規アブラナ科植物 - Google Patents
カロチン含量の高い新規アブラナ科植物Info
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- JPH07177831A JPH07177831A JP5326913A JP32691393A JPH07177831A JP H07177831 A JPH07177831 A JP H07177831A JP 5326913 A JP5326913 A JP 5326913A JP 32691393 A JP32691393 A JP 32691393A JP H07177831 A JPH07177831 A JP H07177831A
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- Acyclic And Carbocyclic Compounds In Medicinal Compositions (AREA)
Abstract
(57)【要約】
【構成】 カリフラワーの花球部を橙色にする遺伝子を
有し、従来微量しかカロチンを含まなかった部位におい
ても多量のカロチンを含むことを特徴とする、新規なア
ブラナ科植物。 【効果】 食用、鑑賞用植物等として有用な新規なアブ
ラナ科植物を提供する。
有し、従来微量しかカロチンを含まなかった部位におい
ても多量のカロチンを含むことを特徴とする、新規なア
ブラナ科植物。 【効果】 食用、鑑賞用植物等として有用な新規なアブ
ラナ科植物を提供する。
Description
【０００１】
【産業上の利用分野】本発明は、カロチン含量の高い新
規なアブラナ科植物に関する。更に詳しくは、通常のア
ブラナ科植物では、カロチンを微量しか含まない部位に
も多量のカロチンを含むアブラナ科植物に関する。
規なアブラナ科植物に関する。更に詳しくは、通常のア
ブラナ科植物では、カロチンを微量しか含まない部位に
も多量のカロチンを含むアブラナ科植物に関する。
【０００２】
【従来の技術】アブラナ科植物には、数多くの有用作物
があるが、これらの中でもキャベツ、カリフラワー等を
含むブラシカ・オレラセア(Brassica oleracea L.)、ナ
タネ、ハクラン等を含むブラシカ・ナプス(Brassica na
pus L.)、ハクサイ、カブ等を含むブラシカ・カンペス
トリス(Brassica campestris L.)、ダイコン等を含むラ
ファヌス・サチブス(Raphanus sativus L.)の４種は特
に有用性が高い。
があるが、これらの中でもキャベツ、カリフラワー等を
含むブラシカ・オレラセア(Brassica oleracea L.)、ナ
タネ、ハクラン等を含むブラシカ・ナプス(Brassica na
pus L.)、ハクサイ、カブ等を含むブラシカ・カンペス
トリス(Brassica campestris L.)、ダイコン等を含むラ
ファヌス・サチブス(Raphanus sativus L.)の４種は特
に有用性が高い。
【０００３】これらいずれの種も植物体内にカロチンを
含むことが知られているが、一般にその含有部位は、ク
ロロフィルを多く含む緑色の濃い部位に限られているた
め、カロチンの色が外部から観察されることはほとんど
ない。また、一般にカロチンを多量に含む部位は可食に
適さない部位であることが多い。例えば、ブラシカ・オ
レラセアに属するキャベツ、コールラビ、メキャベツで
は緑色部のカロチン含量は高いが、緑色でない部位（キ
ャベツやメキャベツの結球内部の結球葉、コールラビの
球茎内部）のカロチン含量はほとんどないか、非常に低
い（四訂食品成分表：キャベツ（結球葉・生）１８μｇ
／１００ｇ、コールラビ（球茎・生）５０μｇ／１００
ｇ）。ブラシカ・ナプスに属するハクランでは緑色の葉
部のカロチン含量は高いが、結球内部の結球葉のカロチ
ン含量は余り高くない（四訂食品成分表：はくらん（結
球葉・生）８０μｇ／１００ｇ）。また、種子もほとん
どカロチンを含有していない。ブラシカ・カンペストリ
スに属する白菜では外側の緑色の結球部の結球葉のカロ
チン含量は高いが、大部分の結球内部の結球葉は淡黄色
から白色でほとんどカロチンを含有していない（四訂食
品成分表：はくさい（結球葉・生）１３μｇ／１００
ｇ）。同じくブラシカ・カンペストリスに属するカブで
は葉部のカロチン含量は高いが、根部では全くカロチン
を含有していない（四訂食品成分表：かぶ（葉・生）１
８００μｇ／１００ｇ、（根・生）０μｇ／１００
ｇ）。ラファヌス・サチヴスに属するダイコンでは葉部
のカロチン含量は高いが、根部は白色で全くカロチンを
含有していない（四訂食品成分表：だいこん（葉・生）
２６００μｇ／１００ｇ、（根・生）０μｇ／１００
ｇ）。
含むことが知られているが、一般にその含有部位は、ク
ロロフィルを多く含む緑色の濃い部位に限られているた
め、カロチンの色が外部から観察されることはほとんど
ない。また、一般にカロチンを多量に含む部位は可食に
適さない部位であることが多い。例えば、ブラシカ・オ
レラセアに属するキャベツ、コールラビ、メキャベツで
は緑色部のカロチン含量は高いが、緑色でない部位（キ
ャベツやメキャベツの結球内部の結球葉、コールラビの
球茎内部）のカロチン含量はほとんどないか、非常に低
い（四訂食品成分表：キャベツ（結球葉・生）１８μｇ
／１００ｇ、コールラビ（球茎・生）５０μｇ／１００
ｇ）。ブラシカ・ナプスに属するハクランでは緑色の葉
部のカロチン含量は高いが、結球内部の結球葉のカロチ
ン含量は余り高くない（四訂食品成分表：はくらん（結
球葉・生）８０μｇ／１００ｇ）。また、種子もほとん
どカロチンを含有していない。ブラシカ・カンペストリ
スに属する白菜では外側の緑色の結球部の結球葉のカロ
チン含量は高いが、大部分の結球内部の結球葉は淡黄色
から白色でほとんどカロチンを含有していない（四訂食
品成分表：はくさい（結球葉・生）１３μｇ／１００
ｇ）。同じくブラシカ・カンペストリスに属するカブで
は葉部のカロチン含量は高いが、根部では全くカロチン
を含有していない（四訂食品成分表：かぶ（葉・生）１
８００μｇ／１００ｇ、（根・生）０μｇ／１００
ｇ）。ラファヌス・サチヴスに属するダイコンでは葉部
のカロチン含量は高いが、根部は白色で全くカロチンを
含有していない（四訂食品成分表：だいこん（葉・生）
２６００μｇ／１００ｇ、（根・生）０μｇ／１００
ｇ）。
【０００４】緑色部以外の部位において多量のカロチン
を含むアブラナ科植物としては、ブラシカ・オレラセア
に属するオレンジ・カリフラワーが知られている。オレ
ンジ・カリフラワーは、髄組織以外の花球部が橙色を示
すカリフラワーで、以下のようなことが知られている
(M.H.Dikson et al., HortScience 23(4):778-779,198
8)。
を含むアブラナ科植物としては、ブラシカ・オレラセア
に属するオレンジ・カリフラワーが知られている。オレ
ンジ・カリフラワーは、髄組織以外の花球部が橙色を示
すカリフラワーで、以下のようなことが知られている
(M.H.Dikson et al., HortScience 23(4):778-779,198
8)。
【０００５】1) オレンジ・カリフラワーの橙色は、不
完全一遺伝子支配である（遺伝子記号：Ｏｒ）。 2) ＯｒＯｒホモ個体の花球部の色はＯｒｏｒヘテロ個
体の花球部よりも橙色が濃いが、草型はわい性で、直径
３〜４ｃｍ以下の花球部を作る。 3) Ｏｒｏｒヘテロ個体の花球部は直径１５〜２０ｃｍ
で、通常の白色のカリフラワワーと同じ程度の大きさで
ある。
完全一遺伝子支配である（遺伝子記号：Ｏｒ）。 2) ＯｒＯｒホモ個体の花球部の色はＯｒｏｒヘテロ個
体の花球部よりも橙色が濃いが、草型はわい性で、直径
３〜４ｃｍ以下の花球部を作る。 3) Ｏｒｏｒヘテロ個体の花球部は直径１５〜２０ｃｍ
で、通常の白色のカリフラワワーと同じ程度の大きさで
ある。
【０００６】4) 橙色はカロチン色素である。 従って、このオレンジ・カリフラワーの遺伝子を他のア
ブラナ科植物に導入し、発現することができれば商品価
値の高い植物を作出することが可能となる。しかし、オ
レンジ・カリフラワーの属するブラシカ・オレラセア同
士の交雑はともかくとして、ブラシカ・オレラセアと、
ブラシカ・ナプス、ブラシカ・カンペストリス、又はラ
ファヌス・サチヴスのような異種間の交雑は極めて困難
であり、ほとんど交雑種子が得られず、仮に種子が得ら
れたとしてもほとんどが傾母個体（母親と同じ形態の個
体）である。まれに雑種種子が得られたとしても、多く
の場合不稔性であり、自殖や戻し交雑による後代の維持
は極めて困難である。
ブラナ科植物に導入し、発現することができれば商品価
値の高い植物を作出することが可能となる。しかし、オ
レンジ・カリフラワーの属するブラシカ・オレラセア同
士の交雑はともかくとして、ブラシカ・オレラセアと、
ブラシカ・ナプス、ブラシカ・カンペストリス、又はラ
ファヌス・サチヴスのような異種間の交雑は極めて困難
であり、ほとんど交雑種子が得られず、仮に種子が得ら
れたとしてもほとんどが傾母個体（母親と同じ形態の個
体）である。まれに雑種種子が得られたとしても、多く
の場合不稔性であり、自殖や戻し交雑による後代の維持
は極めて困難である。
【０００７】また、オレンジ・カリフラワーにおいて橙
色が発現する花球部は、花穂分化期の花芽の密集した組
織塊で、カリフラワー特有の組織である。一般に、色素
に関与する遺伝子の発現は組織特異的である場合が多
く、ある組織で色素を産生する遺伝子が発現しても別の
組織ではその遺伝子が発現していないのが通常である。
従って、現在に至るまで、Ｏｒ遺伝子を異種や異属の植
物に導入することはもちろん、同種の植物に導入するよ
うなことも全く試みられたことはなかった。
色が発現する花球部は、花穂分化期の花芽の密集した組
織塊で、カリフラワー特有の組織である。一般に、色素
に関与する遺伝子の発現は組織特異的である場合が多
く、ある組織で色素を産生する遺伝子が発現しても別の
組織ではその遺伝子が発現していないのが通常である。
従って、現在に至るまで、Ｏｒ遺伝子を異種や異属の植
物に導入することはもちろん、同種の植物に導入するよ
うなことも全く試みられたことはなかった。
【０００８】
【発明が解決しようとする課題】本発明の目的は、この
Ｏｒ遺伝子をカリフラワー以外のアブラナ科植物に導入
し、カロチンを微量しか含まない部位にも多量のカロチ
ンを含むアブラナ科植物を提供することにある。
Ｏｒ遺伝子をカリフラワー以外のアブラナ科植物に導入
し、カロチンを微量しか含まない部位にも多量のカロチ
ンを含むアブラナ科植物を提供することにある。
【０００９】
【課題を解決するための手段】本発明者等は、上記Ｏｒ
遺伝子について詳細に検討した結果、この遺伝子は極め
て広範囲の植物に導入でき、また、植物体の広範囲の組
織で発現する特殊な遺伝子であることを見出し、更に、
ブラシカ・オレラセアに属する植物中にこのＯｒ遺伝子
の発現を促進する条件遺伝子があることを見出し、これ
らの知見に基づき本発明を完成した。
遺伝子について詳細に検討した結果、この遺伝子は極め
て広範囲の植物に導入でき、また、植物体の広範囲の組
織で発現する特殊な遺伝子であることを見出し、更に、
ブラシカ・オレラセアに属する植物中にこのＯｒ遺伝子
の発現を促進する条件遺伝子があることを見出し、これ
らの知見に基づき本発明を完成した。
【００１０】即ち、本発明の第１は、カリフラワーの花
球部を橙色にする遺伝子と、該遺伝子の発現を促進する
少なくとも一つの条件遺伝子を有することを特徴とす
る、ブラシカ・オレラセアに属する植物である。また、
本発明の第２は、カリフラワーの花球部を橙色にする遺
伝子を有することを特徴とする、ブラシカ・ナプス、ブ
ラシカ・カンペストリス、又は、ラファヌス・サチヴス
に属する植物である。
球部を橙色にする遺伝子と、該遺伝子の発現を促進する
少なくとも一つの条件遺伝子を有することを特徴とす
る、ブラシカ・オレラセアに属する植物である。また、
本発明の第２は、カリフラワーの花球部を橙色にする遺
伝子を有することを特徴とする、ブラシカ・ナプス、ブ
ラシカ・カンペストリス、又は、ラファヌス・サチヴス
に属する植物である。
【００１１】更に、本発明の第３は、カリフラワーの花
球部を橙色にする遺伝子を有することを特徴とする、キ
ャベツ(B.oleracea L. var. capitata L.)、葉ボタン
(B.oleracea L. var. acephala DC.) 、コールラビ(B.o
leracea L. var. gongyloidesL.) 、サボイカンラン(B.
oleracea L. var. bullta DC.) 、コモチカンラン(B.ol
eracea L. var. gemmifera Zenk.)、ブロッコリ(B.oler
acea L. var. italica)、又はカイラン（B.oleracea L.
var. alboglabra Bayl.)である。以下、本発明を詳細
に説明する。
球部を橙色にする遺伝子を有することを特徴とする、キ
ャベツ(B.oleracea L. var. capitata L.)、葉ボタン
(B.oleracea L. var. acephala DC.) 、コールラビ(B.o
leracea L. var. gongyloidesL.) 、サボイカンラン(B.
oleracea L. var. bullta DC.) 、コモチカンラン(B.ol
eracea L. var. gemmifera Zenk.)、ブロッコリ(B.oler
acea L. var. italica)、又はカイラン（B.oleracea L.
var. alboglabra Bayl.)である。以下、本発明を詳細
に説明する。
【００１２】本発明のブラシカ・オレラセアに属する植
物を具体的に例示すると、キャベツ(B.oleracea L. va
r. capitata L.)、葉ボタン(B.oleracea L. var. aceph
ala DC.) 、コールラビ(B.oleracea L. var. gongyloid
es L.) 、サボイカンラン(B.oleracea L. var. bullta
DC.) 、コモチカンラン(B.oleracea L. var. gemmifera
Zenk.)、カリフラワー(B.oleracea L. var. botrytis
L.)、ブロッコリ(B.oleracea L. var. italica)、カイ
ラン（B.oleracea L. var. alboglabra Bayl.)等を挙げ
ることができる。但し、カリフラワーについては、後述
するＯｒ遺伝子のみを有し、Ｏｒ遺伝子の発現を促進す
る遺伝子を有しない場合は、本発明の範囲には含まれな
い。
物を具体的に例示すると、キャベツ(B.oleracea L. va
r. capitata L.)、葉ボタン(B.oleracea L. var. aceph
ala DC.) 、コールラビ(B.oleracea L. var. gongyloid
es L.) 、サボイカンラン(B.oleracea L. var. bullta
DC.) 、コモチカンラン(B.oleracea L. var. gemmifera
Zenk.)、カリフラワー(B.oleracea L. var. botrytis
L.)、ブロッコリ(B.oleracea L. var. italica)、カイ
ラン（B.oleracea L. var. alboglabra Bayl.)等を挙げ
ることができる。但し、カリフラワーについては、後述
するＯｒ遺伝子のみを有し、Ｏｒ遺伝子の発現を促進す
る遺伝子を有しない場合は、本発明の範囲には含まれな
い。
【００１３】本発明のブラシカ・オレラセアに属する植
物は、カリフラワーの花球部を橙色にする遺伝子を有
し、好ましくは、更に、該遺伝子の発現を促進する条件
遺伝子を有している。カリフラワーの花球部を橙色にす
る遺伝子は、通常Ｏｒ遺伝子と呼ばれており、例えば、
ＮＹ１６３系統、ＮＹ１５６系統、ＮＹ１６５系統等の
オレンジ・カリフラワーに含まれる。Ｏｒ遺伝子の発現
を促進する遺伝子は、商品として人工的に栽培される通
常のキャベツ、カイラン等に含まれている遺伝子であ
り、このような遺伝子を有する植物を例示するとキャベ
ツ品種「明徳」、カイラン品種「芥藍」等を挙げること
ができる。
物は、カリフラワーの花球部を橙色にする遺伝子を有
し、好ましくは、更に、該遺伝子の発現を促進する条件
遺伝子を有している。カリフラワーの花球部を橙色にす
る遺伝子は、通常Ｏｒ遺伝子と呼ばれており、例えば、
ＮＹ１６３系統、ＮＹ１５６系統、ＮＹ１６５系統等の
オレンジ・カリフラワーに含まれる。Ｏｒ遺伝子の発現
を促進する遺伝子は、商品として人工的に栽培される通
常のキャベツ、カイラン等に含まれている遺伝子であ
り、このような遺伝子を有する植物を例示するとキャベ
ツ品種「明徳」、カイラン品種「芥藍」等を挙げること
ができる。
【００１４】なお、ＮＹ１６３近交系統は、Department
of Horticultural Sciences and food Science, New Y
ork State Experimental Station, Cornell Universit
y, (Geneva, NY 14456, U.S.A) より入手したものであ
り、現在本出願人が所持しており、必要に応じて分譲す
ることができる。また、キャベツ明徳固定系統、カイラ
ン芥藍固定系統も同様に現在本出願人が所持しており、
必要に応じて分譲することができる。
of Horticultural Sciences and food Science, New Y
ork State Experimental Station, Cornell Universit
y, (Geneva, NY 14456, U.S.A) より入手したものであ
り、現在本出願人が所持しており、必要に応じて分譲す
ることができる。また、キャベツ明徳固定系統、カイラ
ン芥藍固定系統も同様に現在本出願人が所持しており、
必要に応じて分譲することができる。
【００１５】本発明のブラシカ・オレラセアに属する植
物の特徴は、従来の植物ではカロチンが微量しか含まれ
ていなかった部位のうち、少なくとも一つ以上の部位に
おいて多量のカロチンを含み、橙色、淡橙色等を呈する
ことである。このような部位を具体的に例示するとキャ
ベツであれば、結球内部の結球葉、結球葉の葉柄、茎の
維管束、茎の髄組織、根、種子等、カイランであれば、
茎の維管束、茎の髄組織、根、種子等を、コールラビで
あれば、球茎内部、茎の維管束、茎の髄組織、根、種子
等を、コモチカンランであれば、結球内部の結球葉、結
球葉の葉柄、茎の維管束、茎の髄組織、根、種子等を、
葉ボタンであれば、茎の維管束、茎の髄組織、根、種子
等を、サボイカンランであれば、結球内部の結球葉、結
球葉の葉柄、茎の維管束、茎の髄組織、根、種子等を、
ブロッコリであれば、茎の維管束、茎の髄組織、根、種
子等を挙げることができる。
物の特徴は、従来の植物ではカロチンが微量しか含まれ
ていなかった部位のうち、少なくとも一つ以上の部位に
おいて多量のカロチンを含み、橙色、淡橙色等を呈する
ことである。このような部位を具体的に例示するとキャ
ベツであれば、結球内部の結球葉、結球葉の葉柄、茎の
維管束、茎の髄組織、根、種子等、カイランであれば、
茎の維管束、茎の髄組織、根、種子等を、コールラビで
あれば、球茎内部、茎の維管束、茎の髄組織、根、種子
等を、コモチカンランであれば、結球内部の結球葉、結
球葉の葉柄、茎の維管束、茎の髄組織、根、種子等を、
葉ボタンであれば、茎の維管束、茎の髄組織、根、種子
等を、サボイカンランであれば、結球内部の結球葉、結
球葉の葉柄、茎の維管束、茎の髄組織、根、種子等を、
ブロッコリであれば、茎の維管束、茎の髄組織、根、種
子等を挙げることができる。
【００１６】これらの部位におけるカロチン含量は、キ
ャベツの結球内部の結球葉であれば１００〜５０００μ
ｇ／１００ｇ（従来のキャベツでは０〜５０μｇ／１０
０ｇ）、結球葉の葉柄であれば５０〜５０００μｇ／１
００ｇ（従来のキャベツでは０〜２０μｇ／１００
ｇ）、茎の維管束であれば５０〜５０００μｇ／１００
ｇ（従来のキャベツでは０〜２０μｇ／１００ｇ）、茎
の髄組織であれば５０〜５０００μｇ／１００ｇ（従来
のキャベツでは０〜２０μｇ／１００ｇ）、根であれば
２０〜１０００μｇ／１００ｇ（従来のキャベツでは０
〜９μｇ／１００ｇ）、種子であれば１００〜５０００
μｇ／１００ｇ（従来のキャベツでは０〜５０μｇ／１
００ｇ）、カイランの茎の維管束であれば２００〜５０
００μｇ／１００ｇ（従来のカイランでは０〜１００μ
ｇ／１００ｇ）、茎の髄組織であれば２００〜５０００
μｇ／１００ｇ（従来のカイランでは０〜１００μｇ／
１００ｇ）、根であれば２０〜１０００μｇ／１００ｇ
（従来のカイランでは０〜９μｇ／１００ｇ）、種子で
あれば１００〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のカイラ
ンでは０〜５０μｇ／１００ｇ）、コールラビの球茎内
部であれば１００〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のコ
ールラビでは０〜５０μｇ／１００ｇ）、茎の維管束で
あれば１００〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のコール
ラビでは０〜５０μｇ／１００ｇ）、茎の髄組織であれ
ば１００〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のコールラビ
では０〜５０μｇ／１００ｇ）、根であれば２０〜１０
００μｇ／１００ｇ（従来のコールラビでは０〜９μｇ
／１００ｇ）、種子であれば１００〜５０００μｇ／１
００ｇ（従来のコールラビでは０〜５０μｇ／１００
ｇ）、コモチカンランの結球内部の結球葉であれば２０
０〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のコモチカンランで
は０〜１００μｇ／１００ｇ）、結球葉の葉柄であれば
５０〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のコモチカンラン
では０〜２０μｇ／１００ｇ）、茎の維管束であれば２
００〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のコモチカンラン
では０〜１００μｇ／１００ｇ）、茎の髄組織であれば
２００〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のコモチカンラ
ンでは０〜１００μｇ／１００ｇ）、根であれば２０〜
１０００μｇ／１００ｇ（従来のコモチカンランでは０
〜９μｇ／１００ｇ）、種子であれば１００〜５０００
μｇ／１００ｇ（従来のコモチカンランでは０〜５０μ
ｇ／１００ｇ）、葉ボタンの茎の維管束であれば５０〜
５０００μｇ／１００ｇ（従来の葉ボタンでは０〜２０
μｇ／１００ｇ）、茎の髄組織であれば５０〜５０００
μｇ／１００ｇ（従来の葉ボタンでは０〜２０μｇ／１
００ｇ）、根であれば２０〜１０００μｇ／１００ｇ
（従来の葉ボタンでは０〜９μｇ／１００ｇ）、種子で
あれば１００〜５０００μｇ／１００ｇ（従来の葉ボタ
ンでは０〜５０μｇ／１００ｇ）、サボイカンランの結
球内部の結球葉であれば１００〜５０００μｇ／１００
ｇ（従来のサボイカンランでは０〜５０μｇ／１００
ｇ）、結球葉の葉柄であれば５０〜５０００μｇ／１０
０ｇ（従来のサボイカンランでは０〜２０μｇ／１００
ｇ）、茎の維管束であれば５０〜５０００μｇ／１００
ｇ（従来のサボイカンランでは０〜２０μｇ／１００
ｇ）、茎の髄組織であれば５０〜５０００μｇ／１００
ｇ（従来のサボイカンランでは０〜２０μｇ／１００
ｇ）、根であれば２０〜１０００μｇ／１００ｇ（従来
のサボイカンランでは０〜９μｇ／１００ｇ）、種子で
あれば１００〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のサボイ
カンランでは０〜５０μｇ／１００ｇ）、ブロッコリの
茎の維管束であれば２００〜５０００μｇ／１００ｇ
（従来のブロッコリでは０〜１００μｇ／１００ｇ）、
茎の髄組織であれば２００〜５０００μｇ／１００ｇ
（従来のブロッコリでは０〜１００μｇ／１００ｇ）、
根であれば２０〜１０００μｇ／１００ｇ（従来のブロ
ッコリでは０〜９μｇ／１００ｇ）、種子であれば１０
０〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のブロッコリでは０
〜５０μｇ／１００ｇ）程度である。
ャベツの結球内部の結球葉であれば１００〜５０００μ
ｇ／１００ｇ（従来のキャベツでは０〜５０μｇ／１０
０ｇ）、結球葉の葉柄であれば５０〜５０００μｇ／１
００ｇ（従来のキャベツでは０〜２０μｇ／１００
ｇ）、茎の維管束であれば５０〜５０００μｇ／１００
ｇ（従来のキャベツでは０〜２０μｇ／１００ｇ）、茎
の髄組織であれば５０〜５０００μｇ／１００ｇ（従来
のキャベツでは０〜２０μｇ／１００ｇ）、根であれば
２０〜１０００μｇ／１００ｇ（従来のキャベツでは０
〜９μｇ／１００ｇ）、種子であれば１００〜５０００
μｇ／１００ｇ（従来のキャベツでは０〜５０μｇ／１
００ｇ）、カイランの茎の維管束であれば２００〜５０
００μｇ／１００ｇ（従来のカイランでは０〜１００μ
ｇ／１００ｇ）、茎の髄組織であれば２００〜５０００
μｇ／１００ｇ（従来のカイランでは０〜１００μｇ／
１００ｇ）、根であれば２０〜１０００μｇ／１００ｇ
（従来のカイランでは０〜９μｇ／１００ｇ）、種子で
あれば１００〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のカイラ
ンでは０〜５０μｇ／１００ｇ）、コールラビの球茎内
部であれば１００〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のコ
ールラビでは０〜５０μｇ／１００ｇ）、茎の維管束で
あれば１００〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のコール
ラビでは０〜５０μｇ／１００ｇ）、茎の髄組織であれ
ば１００〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のコールラビ
では０〜５０μｇ／１００ｇ）、根であれば２０〜１０
００μｇ／１００ｇ（従来のコールラビでは０〜９μｇ
／１００ｇ）、種子であれば１００〜５０００μｇ／１
００ｇ（従来のコールラビでは０〜５０μｇ／１００
ｇ）、コモチカンランの結球内部の結球葉であれば２０
０〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のコモチカンランで
は０〜１００μｇ／１００ｇ）、結球葉の葉柄であれば
５０〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のコモチカンラン
では０〜２０μｇ／１００ｇ）、茎の維管束であれば２
００〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のコモチカンラン
では０〜１００μｇ／１００ｇ）、茎の髄組織であれば
２００〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のコモチカンラ
ンでは０〜１００μｇ／１００ｇ）、根であれば２０〜
１０００μｇ／１００ｇ（従来のコモチカンランでは０
〜９μｇ／１００ｇ）、種子であれば１００〜５０００
μｇ／１００ｇ（従来のコモチカンランでは０〜５０μ
ｇ／１００ｇ）、葉ボタンの茎の維管束であれば５０〜
５０００μｇ／１００ｇ（従来の葉ボタンでは０〜２０
μｇ／１００ｇ）、茎の髄組織であれば５０〜５０００
μｇ／１００ｇ（従来の葉ボタンでは０〜２０μｇ／１
００ｇ）、根であれば２０〜１０００μｇ／１００ｇ
（従来の葉ボタンでは０〜９μｇ／１００ｇ）、種子で
あれば１００〜５０００μｇ／１００ｇ（従来の葉ボタ
ンでは０〜５０μｇ／１００ｇ）、サボイカンランの結
球内部の結球葉であれば１００〜５０００μｇ／１００
ｇ（従来のサボイカンランでは０〜５０μｇ／１００
ｇ）、結球葉の葉柄であれば５０〜５０００μｇ／１０
０ｇ（従来のサボイカンランでは０〜２０μｇ／１００
ｇ）、茎の維管束であれば５０〜５０００μｇ／１００
ｇ（従来のサボイカンランでは０〜２０μｇ／１００
ｇ）、茎の髄組織であれば５０〜５０００μｇ／１００
ｇ（従来のサボイカンランでは０〜２０μｇ／１００
ｇ）、根であれば２０〜１０００μｇ／１００ｇ（従来
のサボイカンランでは０〜９μｇ／１００ｇ）、種子で
あれば１００〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のサボイ
カンランでは０〜５０μｇ／１００ｇ）、ブロッコリの
茎の維管束であれば２００〜５０００μｇ／１００ｇ
（従来のブロッコリでは０〜１００μｇ／１００ｇ）、
茎の髄組織であれば２００〜５０００μｇ／１００ｇ
（従来のブロッコリでは０〜１００μｇ／１００ｇ）、
根であれば２０〜１０００μｇ／１００ｇ（従来のブロ
ッコリでは０〜９μｇ／１００ｇ）、種子であれば１０
０〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のブロッコリでは０
〜５０μｇ／１００ｇ）程度である。
【００１７】また、これらの部位の色調について詳述す
ると、キャベツの結球内部の結球葉であれば濃橙色〜黄
色（従来のキャベツでは黄色〜白色）、結球葉の葉柄で
あれば濃橙色〜黄色（従来のキャベツでは白色）、茎の
維管束であれば赤橙色〜淡橙色（従来のキャベツでは白
色）、茎の髄組織であれば赤橙色〜淡橙色（従来のキャ
ベツでは白色）、根であれば橙色〜淡橙色（従来のキャ
ベツでは白色）、種子であれば橙色〜濃黄色（従来のキ
ャベツでは黄色）、カイランの茎の維管束であれば赤橙
色〜淡橙色（従来のカイランでは白色〜淡緑色）、茎の
髄組織であれば赤橙色〜淡橙色（従来のカイランでは白
色〜淡緑色）、根であれば橙色〜淡橙色（従来のカイラ
ンでは白色）、種子であれば淡橙色〜濃黄色（従来のカ
イランでは黄色）、コールラビの球茎内部であれば濃橙
色〜淡橙色（従来のコールラビでは白色〜淡緑色）、茎
の維管束であれば赤橙色〜淡橙色（従来のコールラビで
は白色〜淡緑色）、茎の髄組織であれば赤橙色〜淡橙色
（従来のコールラビでは白色〜淡緑色）、根であれば橙
色〜淡橙色（従来のコールラビでは白色）、種子であれ
ば淡橙色〜濃黄色（従来のコールラビでは黄色）、コモ
チカンランの結球内部の結球葉であれば赤橙色〜淡橙色
（従来のコモチカンランでは黄色〜白色）、結球葉の葉
柄であれば濃橙色〜黄色（従来のコモチカンランでは白
色）、茎の維管束であれば赤橙色〜淡橙色（従来のコモ
チカンランでは白色〜淡緑色）、茎の髄組織であれば赤
橙色〜淡橙色（従来のコモチカンランでは白色〜淡緑
色）、根であれば橙色〜淡橙色（従来のコモチカンラン
では白色）、種子であれば淡橙色〜濃黄色（従来のコモ
チカンランでは黄色）、葉ボタンの茎の維管束であれば
赤橙色〜淡橙色（従来の葉ボタンでは白色）、茎の髄組
織であれば赤橙色〜淡橙色（従来の葉ボタンでは白
色）、根であれば橙色〜淡橙色（従来の葉ボタンでは白
色）、種子であれば淡橙色〜濃黄色（従来の葉ボタンで
は黄色）、サボイカンランの結球内部の結球葉であれば
濃橙色〜黄色（従来のサボイカンランでは黄色〜白
色）、結球葉の葉柄であれば濃橙色〜黄色（従来のサボ
イカンランでは白色）、茎の維管束であれば赤橙色〜淡
橙色（従来のサボイカンランでは白色）、茎の髄組織で
あれば赤橙色〜淡橙色（従来のサボイカンランでは白
色）、根であれば橙色〜淡橙色（従来のサボイカンラン
では白色）、種子であれば淡橙色〜濃黄色（従来のサボ
イカンランでは黄色）、ブロッコリの茎の維管束であれ
ば赤橙色〜淡橙色（従来のブロッコリでは白色〜淡緑
色）、茎の髄組織であれば赤橙色〜淡橙色（従来のブロ
ッコリでは白色〜淡緑色）、根であれば橙色〜淡橙色
（従来のブロッコリでは白色）、種子であれば淡橙色〜
濃黄色（従来のブロッコリでは黄色）である。
ると、キャベツの結球内部の結球葉であれば濃橙色〜黄
色（従来のキャベツでは黄色〜白色）、結球葉の葉柄で
あれば濃橙色〜黄色（従来のキャベツでは白色）、茎の
維管束であれば赤橙色〜淡橙色（従来のキャベツでは白
色）、茎の髄組織であれば赤橙色〜淡橙色（従来のキャ
ベツでは白色）、根であれば橙色〜淡橙色（従来のキャ
ベツでは白色）、種子であれば橙色〜濃黄色（従来のキ
ャベツでは黄色）、カイランの茎の維管束であれば赤橙
色〜淡橙色（従来のカイランでは白色〜淡緑色）、茎の
髄組織であれば赤橙色〜淡橙色（従来のカイランでは白
色〜淡緑色）、根であれば橙色〜淡橙色（従来のカイラ
ンでは白色）、種子であれば淡橙色〜濃黄色（従来のカ
イランでは黄色）、コールラビの球茎内部であれば濃橙
色〜淡橙色（従来のコールラビでは白色〜淡緑色）、茎
の維管束であれば赤橙色〜淡橙色（従来のコールラビで
は白色〜淡緑色）、茎の髄組織であれば赤橙色〜淡橙色
（従来のコールラビでは白色〜淡緑色）、根であれば橙
色〜淡橙色（従来のコールラビでは白色）、種子であれ
ば淡橙色〜濃黄色（従来のコールラビでは黄色）、コモ
チカンランの結球内部の結球葉であれば赤橙色〜淡橙色
（従来のコモチカンランでは黄色〜白色）、結球葉の葉
柄であれば濃橙色〜黄色（従来のコモチカンランでは白
色）、茎の維管束であれば赤橙色〜淡橙色（従来のコモ
チカンランでは白色〜淡緑色）、茎の髄組織であれば赤
橙色〜淡橙色（従来のコモチカンランでは白色〜淡緑
色）、根であれば橙色〜淡橙色（従来のコモチカンラン
では白色）、種子であれば淡橙色〜濃黄色（従来のコモ
チカンランでは黄色）、葉ボタンの茎の維管束であれば
赤橙色〜淡橙色（従来の葉ボタンでは白色）、茎の髄組
織であれば赤橙色〜淡橙色（従来の葉ボタンでは白
色）、根であれば橙色〜淡橙色（従来の葉ボタンでは白
色）、種子であれば淡橙色〜濃黄色（従来の葉ボタンで
は黄色）、サボイカンランの結球内部の結球葉であれば
濃橙色〜黄色（従来のサボイカンランでは黄色〜白
色）、結球葉の葉柄であれば濃橙色〜黄色（従来のサボ
イカンランでは白色）、茎の維管束であれば赤橙色〜淡
橙色（従来のサボイカンランでは白色）、茎の髄組織で
あれば赤橙色〜淡橙色（従来のサボイカンランでは白
色）、根であれば橙色〜淡橙色（従来のサボイカンラン
では白色）、種子であれば淡橙色〜濃黄色（従来のサボ
イカンランでは黄色）、ブロッコリの茎の維管束であれ
ば赤橙色〜淡橙色（従来のブロッコリでは白色〜淡緑
色）、茎の髄組織であれば赤橙色〜淡橙色（従来のブロ
ッコリでは白色〜淡緑色）、根であれば橙色〜淡橙色
（従来のブロッコリでは白色）、種子であれば淡橙色〜
濃黄色（従来のブロッコリでは黄色）である。
【００１８】本発明のブラシカ・オレラセアに属する植
物は、Ｏｒ遺伝子を有するカリフラワーと該遺伝子の発
現を促進する少なくとも一つの条件遺伝子を有するブラ
シカ・オレラセアに属する植物とを交配することにより
得られる。交雑方法は特別な方法を用いる必要はなく、
通常の方法に従って行えばよい。また、作出される植物
の栽培方法についても特別な方法を用いる必要はなく、
通常の方法に従って行えばよい。以上のような方法によ
り得られたＦ1 植物は、カロチン含量に関する特性のほ
かにも、植物体の大型化、葉色が濃くなる、花芽分化期
が早くなり、抽苔・開花が早まるなどの特性を有する。
なお、本発明におけるブラシカ・オレラセアに属する植
物には、このＦ1 植物のみならず、Ｆ1 植物の自殖や戻
し交雑により得られる後代植物も含まれる。
物は、Ｏｒ遺伝子を有するカリフラワーと該遺伝子の発
現を促進する少なくとも一つの条件遺伝子を有するブラ
シカ・オレラセアに属する植物とを交配することにより
得られる。交雑方法は特別な方法を用いる必要はなく、
通常の方法に従って行えばよい。また、作出される植物
の栽培方法についても特別な方法を用いる必要はなく、
通常の方法に従って行えばよい。以上のような方法によ
り得られたＦ1 植物は、カロチン含量に関する特性のほ
かにも、植物体の大型化、葉色が濃くなる、花芽分化期
が早くなり、抽苔・開花が早まるなどの特性を有する。
なお、本発明におけるブラシカ・オレラセアに属する植
物には、このＦ1 植物のみならず、Ｆ1 植物の自殖や戻
し交雑により得られる後代植物も含まれる。
【００１９】本発明のブラシカ・ナプスに属する植物を
具体的に例示するとアブラナ、ナタネ、ルータバガ、ハ
クラン等を挙げることができる。本発明のブラシカ・ナ
プスに属する植物は、カリフラワーの花球部を橙色にす
る遺伝子を有し、好ましくは、更に、該遺伝子の発現を
促進する遺伝子を有する。本発明のブラシカ・ナプスに
属する植物の特徴は、従来の植物ではカロチンが微量し
か含まれていなかった部位のうち、少なくとも一つ以上
の部位において多量のカロチンを含み、橙色、淡橙色等
を呈することである。このような部位を具体的に例示す
るとナタネであれば、茎の維管束、茎の髄組織、根、種
子等を、ハクランであれば、結球内部の結球葉、結球葉
の葉柄、茎の維管束、茎の髄組織、根、種子等を挙げる
ことができる。
具体的に例示するとアブラナ、ナタネ、ルータバガ、ハ
クラン等を挙げることができる。本発明のブラシカ・ナ
プスに属する植物は、カリフラワーの花球部を橙色にす
る遺伝子を有し、好ましくは、更に、該遺伝子の発現を
促進する遺伝子を有する。本発明のブラシカ・ナプスに
属する植物の特徴は、従来の植物ではカロチンが微量し
か含まれていなかった部位のうち、少なくとも一つ以上
の部位において多量のカロチンを含み、橙色、淡橙色等
を呈することである。このような部位を具体的に例示す
るとナタネであれば、茎の維管束、茎の髄組織、根、種
子等を、ハクランであれば、結球内部の結球葉、結球葉
の葉柄、茎の維管束、茎の髄組織、根、種子等を挙げる
ことができる。
【００２０】これらの部位におけるカロチン含量は、ナ
タネの茎の維管束であれば２００〜５０００μｇ／１０
０ｇ（従来のナタネでは０〜１００μｇ／１００ｇ）、
茎の髄組織であれば２００〜５０００μｇ／１００ｇ
（従来のナタネでは０〜１００μｇ／１００ｇ）、根で
あれば２０〜１０００μｇ／１００ｇ（従来のナタネで
は０〜９μｇ／１００ｇ）、種子であれば１００〜５０
００μｇ／１００ｇ（従来のナタネでは０〜５０μｇ／
１００ｇ）、ハクランの結球内部の結球葉であれば１５
０〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のハクランでは０〜
１００μｇ／１００ｇ）、結球葉の葉柄であれば５０〜
５０００μｇ／１００ｇ（従来のハクランでは０〜２０
μｇ／１００ｇ）、茎の維管束であれば５０〜５０００
μｇ／１００ｇ（従来のハクランでは０〜２０μｇ／１
００ｇ）、茎の髄組織であれば５０〜５０００μｇ／１
００ｇ（従来のハクランでは０〜２０μｇ／１００
ｇ）、根であれば２０〜１０００μｇ／１００ｇ（従来
のハクランでは０〜９μｇ／１００ｇ）、種子であれば
１００〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のハクランでは
０〜５０μｇ／１００ｇ）程度である。
タネの茎の維管束であれば２００〜５０００μｇ／１０
０ｇ（従来のナタネでは０〜１００μｇ／１００ｇ）、
茎の髄組織であれば２００〜５０００μｇ／１００ｇ
（従来のナタネでは０〜１００μｇ／１００ｇ）、根で
あれば２０〜１０００μｇ／１００ｇ（従来のナタネで
は０〜９μｇ／１００ｇ）、種子であれば１００〜５０
００μｇ／１００ｇ（従来のナタネでは０〜５０μｇ／
１００ｇ）、ハクランの結球内部の結球葉であれば１５
０〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のハクランでは０〜
１００μｇ／１００ｇ）、結球葉の葉柄であれば５０〜
５０００μｇ／１００ｇ（従来のハクランでは０〜２０
μｇ／１００ｇ）、茎の維管束であれば５０〜５０００
μｇ／１００ｇ（従来のハクランでは０〜２０μｇ／１
００ｇ）、茎の髄組織であれば５０〜５０００μｇ／１
００ｇ（従来のハクランでは０〜２０μｇ／１００
ｇ）、根であれば２０〜１０００μｇ／１００ｇ（従来
のハクランでは０〜９μｇ／１００ｇ）、種子であれば
１００〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のハクランでは
０〜５０μｇ／１００ｇ）程度である。
【００２１】また、これらの部位の色調について詳述す
ると、ナタネの茎の維管束であれば赤橙色〜淡橙色（従
来のナタネでは白色〜淡緑色）、茎の髄組織であれば赤
橙色〜淡橙色（従来のナタネでは白色〜淡緑色）、根で
あれば橙色〜淡橙色（従来のナタネでは白色）、種子で
あれば淡橙色〜濃黄色（従来のナタネでは黄色）、ハク
ランの結球内部の結球葉であれば濃橙色〜黄色（従来の
ハクランでは黄色〜白色）、結球葉の葉柄であれば濃橙
色〜黄色（従来のハクランでは白色）、茎の維管束であ
れば赤橙色〜淡橙色（従来のハクランでは白色）、茎の
髄組織であれば赤橙色〜淡橙色（従来のハクランでは白
色）、根であれば橙色〜淡橙色（従来のハクランでは白
色）、種子であれば淡橙色〜濃黄色（従来のハクランで
は黄色）である。
ると、ナタネの茎の維管束であれば赤橙色〜淡橙色（従
来のナタネでは白色〜淡緑色）、茎の髄組織であれば赤
橙色〜淡橙色（従来のナタネでは白色〜淡緑色）、根で
あれば橙色〜淡橙色（従来のナタネでは白色）、種子で
あれば淡橙色〜濃黄色（従来のナタネでは黄色）、ハク
ランの結球内部の結球葉であれば濃橙色〜黄色（従来の
ハクランでは黄色〜白色）、結球葉の葉柄であれば濃橙
色〜黄色（従来のハクランでは白色）、茎の維管束であ
れば赤橙色〜淡橙色（従来のハクランでは白色）、茎の
髄組織であれば赤橙色〜淡橙色（従来のハクランでは白
色）、根であれば橙色〜淡橙色（従来のハクランでは白
色）、種子であれば淡橙色〜濃黄色（従来のハクランで
は黄色）である。
【００２２】ブラシカ・ナプスは、ブラシカ・オレラセ
アとブラシカ・カンペストリスの種間雑種の複二倍体で
ある。従って、本発明のブラシカ・ナプスに属する植物
は、上記のＯｒ遺伝子を有するカリフラワーと、ブラシ
カ・カンペストリスに属する植物とを交雑して得られる
種間雑種の中から染色体の倍化が起こっている個体を選
抜することにより得られる。ここで用いるブラシカ・カ
ンペストリスに属する植物は、特に限定されず、商品と
して人工的に栽培されているハクサイ、カブなどを用い
ることができる。Ｏｒ遺伝子を有するカリフラワーとブ
ラシカ・カンペストリスに属する植物の交雑は、種が異
なるので通常の方法では種間雑種を得ることは困難であ
るため、交配に際しては、交配子房から胚を取り出し、
胚培養を行うことが好ましい。染色体の倍化は何ら人工
的な処理を行わない場合であっても一定の確率でおこり
得るが、葉切片由来の組織培養法により得られた再分化
個体の中から倍化個体を選抜する方法、０．０１％〜１
％コルヒチン水溶液を植物体の成長点に滴下またはその
溶液中に植物体を浸漬する方法等の処理を行うことによ
り倍化個体数を増大させることが可能である。また、倍
化個体の選抜方法は、２倍体に比べて植物体が大型化す
る、花粉稔性がある、根端細胞の染色体数の観察等であ
る。以上の方法により得られる倍化個体は通常種子稔性
を有するので、自殖、戻し交雑、放任受粉等により後代
を維持することができる。
アとブラシカ・カンペストリスの種間雑種の複二倍体で
ある。従って、本発明のブラシカ・ナプスに属する植物
は、上記のＯｒ遺伝子を有するカリフラワーと、ブラシ
カ・カンペストリスに属する植物とを交雑して得られる
種間雑種の中から染色体の倍化が起こっている個体を選
抜することにより得られる。ここで用いるブラシカ・カ
ンペストリスに属する植物は、特に限定されず、商品と
して人工的に栽培されているハクサイ、カブなどを用い
ることができる。Ｏｒ遺伝子を有するカリフラワーとブ
ラシカ・カンペストリスに属する植物の交雑は、種が異
なるので通常の方法では種間雑種を得ることは困難であ
るため、交配に際しては、交配子房から胚を取り出し、
胚培養を行うことが好ましい。染色体の倍化は何ら人工
的な処理を行わない場合であっても一定の確率でおこり
得るが、葉切片由来の組織培養法により得られた再分化
個体の中から倍化個体を選抜する方法、０．０１％〜１
％コルヒチン水溶液を植物体の成長点に滴下またはその
溶液中に植物体を浸漬する方法等の処理を行うことによ
り倍化個体数を増大させることが可能である。また、倍
化個体の選抜方法は、２倍体に比べて植物体が大型化す
る、花粉稔性がある、根端細胞の染色体数の観察等であ
る。以上の方法により得られる倍化個体は通常種子稔性
を有するので、自殖、戻し交雑、放任受粉等により後代
を維持することができる。
【００２３】また、Ｏｒ遺伝子の発現を促進する遺伝子
の導入は、上記方法により得られた倍化個体と、上記の
Ｏｒ遺伝子の発現を促進する少なくとも一つの条件遺伝
子を有するブラシカ・オレラセアに属する植物とを交配
することにより行うことができる。あるいは、Ｏｒ遺伝
子と、該遺伝子の発現を促進する少なくとも一つの条件
遺伝子を有するブラシカ・オレラセアに属する植物と、
ブラシカ・カンペストリスに属する植物とを交雑して得
られる種間雑種の中から染色体の倍化が起こっている個
体を選抜することによっても導入することができる。こ
こで用いるブラシカ・カンペストリスに属する植物は、
特に限定されず、商品として人工的に栽培されているハ
クサイ、カブ等を用いることができる。さらには、Ｏｒ
遺伝子及び該遺伝子の発現を促進する少なくとも一つの
条件遺伝子を有するブラシカ・オレラセアに属する植物
と、Ｏｒ遺伝子及び該遺伝子の発現を促進する少なくと
も一つの条件遺伝子を有するブラシカ・カンペストリス
に属する植物とを交雑して得られる種間雑種の中から染
色体の倍化が起こっている個体を選抜することによって
も導入することができる。
の導入は、上記方法により得られた倍化個体と、上記の
Ｏｒ遺伝子の発現を促進する少なくとも一つの条件遺伝
子を有するブラシカ・オレラセアに属する植物とを交配
することにより行うことができる。あるいは、Ｏｒ遺伝
子と、該遺伝子の発現を促進する少なくとも一つの条件
遺伝子を有するブラシカ・オレラセアに属する植物と、
ブラシカ・カンペストリスに属する植物とを交雑して得
られる種間雑種の中から染色体の倍化が起こっている個
体を選抜することによっても導入することができる。こ
こで用いるブラシカ・カンペストリスに属する植物は、
特に限定されず、商品として人工的に栽培されているハ
クサイ、カブ等を用いることができる。さらには、Ｏｒ
遺伝子及び該遺伝子の発現を促進する少なくとも一つの
条件遺伝子を有するブラシカ・オレラセアに属する植物
と、Ｏｒ遺伝子及び該遺伝子の発現を促進する少なくと
も一つの条件遺伝子を有するブラシカ・カンペストリス
に属する植物とを交雑して得られる種間雑種の中から染
色体の倍化が起こっている個体を選抜することによって
も導入することができる。
【００２４】本発明のブラシカ・ナプスに属する植物の
栽培方法は特別な方法を用いる必要はなく、通常の方法
に従って行えばよい。なお、本発明におけるブラシカ・
ナプスに属する植物には、この種間雑種の倍化個体のみ
ならず、倍化個体の自殖や戻し交雑により得られる後代
植物も含まれる。本発明のブラシカ・カンペストリスに
属する植物を具体的に例示するとハクサイ、カブ、ツケ
ナ等を挙げることができる。本発明のブラシカ・カンペ
ストリスに属する植物は、上記のカリフラワーの花球部
を橙色にする遺伝子を有し、好ましくは、更に、上記の
該遺伝子の発現を促進する遺伝子を有する。
栽培方法は特別な方法を用いる必要はなく、通常の方法
に従って行えばよい。なお、本発明におけるブラシカ・
ナプスに属する植物には、この種間雑種の倍化個体のみ
ならず、倍化個体の自殖や戻し交雑により得られる後代
植物も含まれる。本発明のブラシカ・カンペストリスに
属する植物を具体的に例示するとハクサイ、カブ、ツケ
ナ等を挙げることができる。本発明のブラシカ・カンペ
ストリスに属する植物は、上記のカリフラワーの花球部
を橙色にする遺伝子を有し、好ましくは、更に、上記の
該遺伝子の発現を促進する遺伝子を有する。
【００２５】本発明のブラシカ・カンペストリスに属す
る植物の特徴は、従来の植物ではカロチンが微量しか含
まれていなかった部位のうち、少なくとも一つ以上の部
位において多量のカロチンを含み、橙色、淡橙色等を呈
することである。このような部位を具体的に例示すると
ハクサイであれば、結球葉内部の結球葉、結球葉の葉
柄、茎の維管束、茎の髄組織、根、種子等を、カブであ
れば、茎の維管束、茎の髄組織、根、種子等を、コマツ
ナであれば、茎の維管束、茎の髄組織、根、種子等を挙
げることができる。
る植物の特徴は、従来の植物ではカロチンが微量しか含
まれていなかった部位のうち、少なくとも一つ以上の部
位において多量のカロチンを含み、橙色、淡橙色等を呈
することである。このような部位を具体的に例示すると
ハクサイであれば、結球葉内部の結球葉、結球葉の葉
柄、茎の維管束、茎の髄組織、根、種子等を、カブであ
れば、茎の維管束、茎の髄組織、根、種子等を、コマツ
ナであれば、茎の維管束、茎の髄組織、根、種子等を挙
げることができる。
【００２６】これらの部位におけるカロチン含量は、ハ
クサイの結球内部の結球葉であれば１００〜５０００μ
ｇ／１００ｇ（従来のハクサイでは０〜５０μｇ／１０
０ｇ）、結球葉の葉柄であれば５０〜５０００μｇ／１
００ｇ（従来のハクサイでは０〜２０μｇ／１００
ｇ）、茎の維管束であれば５０〜５０００μｇ／１００
ｇ（従来のハクサイでは０〜２０μｇ／１００ｇ）、茎
の髄組織であれば５０〜５０００μｇ／１００ｇ（従来
のハクサイでは０〜２０μｇ／１００ｇ）、根であれば
２０〜１０００μｇ／１００ｇ（従来のハクサイでは０
〜９μｇ／１００ｇ）、種子であれば１００〜５０００
μｇ／１００ｇ（従来のハクサイでは０〜５０μｇ／１
００ｇ）、カブの根であれば２０〜１０００μｇ／１０
０ｇ（従来のカブでは０〜９μｇ／１００ｇ）、種子で
あれば１００〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のカブで
は０〜５０μｇ／１００ｇ）、コマツナの根であれば２
０〜１０００μｇ／１００ｇ（従来のコマツナでは０〜
９μｇ／１００ｇ）、種子であれば１００〜５０００μ
ｇ／１００ｇ（従来のコマツナでは０〜５０μｇ／１０
０ｇ）程度である。
クサイの結球内部の結球葉であれば１００〜５０００μ
ｇ／１００ｇ（従来のハクサイでは０〜５０μｇ／１０
０ｇ）、結球葉の葉柄であれば５０〜５０００μｇ／１
００ｇ（従来のハクサイでは０〜２０μｇ／１００
ｇ）、茎の維管束であれば５０〜５０００μｇ／１００
ｇ（従来のハクサイでは０〜２０μｇ／１００ｇ）、茎
の髄組織であれば５０〜５０００μｇ／１００ｇ（従来
のハクサイでは０〜２０μｇ／１００ｇ）、根であれば
２０〜１０００μｇ／１００ｇ（従来のハクサイでは０
〜９μｇ／１００ｇ）、種子であれば１００〜５０００
μｇ／１００ｇ（従来のハクサイでは０〜５０μｇ／１
００ｇ）、カブの根であれば２０〜１０００μｇ／１０
０ｇ（従来のカブでは０〜９μｇ／１００ｇ）、種子で
あれば１００〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のカブで
は０〜５０μｇ／１００ｇ）、コマツナの根であれば２
０〜１０００μｇ／１００ｇ（従来のコマツナでは０〜
９μｇ／１００ｇ）、種子であれば１００〜５０００μ
ｇ／１００ｇ（従来のコマツナでは０〜５０μｇ／１０
０ｇ）程度である。
【００２７】また、これらの部位の色調について詳述す
ると、ハクサイの結球内部の結球葉であれば濃橙色〜黄
色（従来のハクサイでは黄色〜白色）、結球葉の葉柄で
あれば濃橙色〜黄色（従来のハクサイでは白色）、茎の
維管束であれば赤橙色〜淡橙色（従来のハクサイでは白
色〜淡緑色）、茎の髄組織であれば赤橙色〜淡橙色従来
のハクサイでは白色〜淡緑色）、根であれば橙色〜淡橙
色（従来のハクサイでは白色）、種子であれば淡橙色〜
濃黄色（従来のハクサイでは黄色）、カブの茎の維管束
であれば赤橙色〜淡橙色（従来のカブでは白色〜淡緑
色）、茎の髄組織であれば赤橙色〜淡橙色（従来のカブ
では白色〜淡緑色）、根であれば橙色〜淡橙色（従来の
カブでは白色）、種子であれば淡橙色〜濃黄色（従来の
カブでは黄色）、コマツナの茎の維管束であれば赤橙色
〜淡橙色（従来のコマツナでは白色〜淡緑色）、茎の髄
組織であれば赤橙色〜淡橙色（従来のコマツナでは白色
〜淡緑色）、根であれば橙色〜淡橙色（従来のコマツナ
では白色）、種子であれば淡橙色〜濃橙色（従来のコマ
ツナでは黄色）である。
ると、ハクサイの結球内部の結球葉であれば濃橙色〜黄
色（従来のハクサイでは黄色〜白色）、結球葉の葉柄で
あれば濃橙色〜黄色（従来のハクサイでは白色）、茎の
維管束であれば赤橙色〜淡橙色（従来のハクサイでは白
色〜淡緑色）、茎の髄組織であれば赤橙色〜淡橙色従来
のハクサイでは白色〜淡緑色）、根であれば橙色〜淡橙
色（従来のハクサイでは白色）、種子であれば淡橙色〜
濃黄色（従来のハクサイでは黄色）、カブの茎の維管束
であれば赤橙色〜淡橙色（従来のカブでは白色〜淡緑
色）、茎の髄組織であれば赤橙色〜淡橙色（従来のカブ
では白色〜淡緑色）、根であれば橙色〜淡橙色（従来の
カブでは白色）、種子であれば淡橙色〜濃黄色（従来の
カブでは黄色）、コマツナの茎の維管束であれば赤橙色
〜淡橙色（従来のコマツナでは白色〜淡緑色）、茎の髄
組織であれば赤橙色〜淡橙色（従来のコマツナでは白色
〜淡緑色）、根であれば橙色〜淡橙色（従来のコマツナ
では白色）、種子であれば淡橙色〜濃橙色（従来のコマ
ツナでは黄色）である。
【００２８】本発明のブラシカ・カンペストリスに属す
る植物は、Ｏｒ遺伝子を有するカリフラワーと、ブラシ
カ・カンペストリスに属する植物とを交配して得られる
種間雑種について戻し交雑を繰り返し、橙色を示す個体
を選抜することにより得られる。ここで用いるブラシカ
・カンペストリスに属する植物は、特に限定されず、一
般的に商品として販売されているハクサイ、カブなどを
用いることができる。Ｏｒ遺伝子を有するカリフラワー
とブラシカ・カンペストリスに属する植物の交雑は、種
が異なるので通常の方法では種間雑種を得ることは困難
であるため、交配に際しては、交配子房から胚を取り出
し、胚培養を行うことが好ましい。橙色を示す個体の選
抜方法は、幼植物期における主茎と葉柄の接合部、主茎
から折り取った葉柄基部の維管束等の部位の色が橙色で
あるものを選抜することにより行う。
る植物は、Ｏｒ遺伝子を有するカリフラワーと、ブラシ
カ・カンペストリスに属する植物とを交配して得られる
種間雑種について戻し交雑を繰り返し、橙色を示す個体
を選抜することにより得られる。ここで用いるブラシカ
・カンペストリスに属する植物は、特に限定されず、一
般的に商品として販売されているハクサイ、カブなどを
用いることができる。Ｏｒ遺伝子を有するカリフラワー
とブラシカ・カンペストリスに属する植物の交雑は、種
が異なるので通常の方法では種間雑種を得ることは困難
であるため、交配に際しては、交配子房から胚を取り出
し、胚培養を行うことが好ましい。橙色を示す個体の選
抜方法は、幼植物期における主茎と葉柄の接合部、主茎
から折り取った葉柄基部の維管束等の部位の色が橙色で
あるものを選抜することにより行う。
【００２９】また、Ｏｒ遺伝子の発現を促進する遺伝子
の導入は、上記方法により得られた選抜個体と、上記の
Ｏｒ遺伝子の発現を促進する少なくとも一つの条件遺伝
子を有するブラシカ・オレラセアに属する植物とを交配
することにより行うことができる。あるいは、Ｏｒ遺伝
子と、該遺伝子の発現を促進する少なくとも一つの条件
遺伝子を有するブラシカ・オレラセアに属する植物と、
ブラシカ・カンペストリスに属する植物とを交雑するこ
とにより行うことができる。
の導入は、上記方法により得られた選抜個体と、上記の
Ｏｒ遺伝子の発現を促進する少なくとも一つの条件遺伝
子を有するブラシカ・オレラセアに属する植物とを交配
することにより行うことができる。あるいは、Ｏｒ遺伝
子と、該遺伝子の発現を促進する少なくとも一つの条件
遺伝子を有するブラシカ・オレラセアに属する植物と、
ブラシカ・カンペストリスに属する植物とを交雑するこ
とにより行うことができる。
【００３０】本発明のブラシカ・カンペストリスに属す
る植物の栽培方法は特別な方法を用いる必要はなく、通
常の方法に従って行えばよい。本発明のラファヌス・サ
チヴスに属する植物を具体的に例示すると、ダイコン等
を挙げることができる。本発明のラファヌス・サチヴス
に属する植物は、上記のカリフラワーの花球部を橙色に
する遺伝子を有し、好ましくは、更に、上記の該遺伝子
の発現を促進する遺伝子を有する。
る植物の栽培方法は特別な方法を用いる必要はなく、通
常の方法に従って行えばよい。本発明のラファヌス・サ
チヴスに属する植物を具体的に例示すると、ダイコン等
を挙げることができる。本発明のラファヌス・サチヴス
に属する植物は、上記のカリフラワーの花球部を橙色に
する遺伝子を有し、好ましくは、更に、上記の該遺伝子
の発現を促進する遺伝子を有する。
【００３１】本発明のラファヌス・サチヴスに属する植
物の特徴は、従来の植物ではカロチンが微量しか含まれ
ていなかった部位のうち、少なくとも一つ以上の部位に
おいて多量のカロチンを含み、橙色、淡橙色等を呈する
ことである。このような部位を具体的に例示するとダイ
コンであれば、根、種子等を挙げることができる。これ
らの部位におけるカロチン含量は、ダイコンの根であれ
ば２０〜１０００μｇ／１００ｇ（従来のダイコンでは
０〜９μｇ／１００ｇ）、種子であれば１００〜５００
０μｇ／１００ｇ（従来のダイコンでは０〜５０μｇ／
１００ｇ）程度である。
物の特徴は、従来の植物ではカロチンが微量しか含まれ
ていなかった部位のうち、少なくとも一つ以上の部位に
おいて多量のカロチンを含み、橙色、淡橙色等を呈する
ことである。このような部位を具体的に例示するとダイ
コンであれば、根、種子等を挙げることができる。これ
らの部位におけるカロチン含量は、ダイコンの根であれ
ば２０〜１０００μｇ／１００ｇ（従来のダイコンでは
０〜９μｇ／１００ｇ）、種子であれば１００〜５００
０μｇ／１００ｇ（従来のダイコンでは０〜５０μｇ／
１００ｇ）程度である。
【００３２】また、これらの部位の色調について詳述す
ると、ダイコンの根であれば橙色〜淡橙色（従来のダイ
コンでは白色）、種子であれば淡橙色〜濃黄色（従来の
ダイコンでは黄色）である。本発明のラファヌス・サチ
ヴスに属する植物は、Ｏｒ遺伝子を有するカリフラワー
と、ラファヌス・サチヴスに属する植物とを交配して得
られる種間雑種について戻し交雑を繰り返し、橙色を示
す個体を選抜することにより得られる。ここで用いるラ
ファヌス・サチヴスに属する植物は、特に限定されず、
一般的に商品として販売されているダイコンなどを用い
ることができる。Ｏｒ遺伝子を有するカリフラワーとラ
ファヌス・サチヴスに属する植物の交雑及び雑種植物の
戻し交雑においては、交配子房から胚を取り出し、胚培
養を行うことが好ましい。橙色を示す個体の選抜方法
は、幼植物期における主茎と葉柄の接合部、主茎から折
り取った葉柄基部の維管束、根等の部位の色が橙色であ
るものを選抜することにより行う。また、Ｏｒ遺伝子の
発現を促進する遺伝子の導入は、上記方法により得られ
た選抜個体と、上記のＯｒ遺伝子の発現を促進する少な
くとも一つの条件遺伝子を有するブラシカ・オレラセア
に属する植物とを交配することにより行うことができ
る。あるいは、Ｏｒ遺伝子と、該遺伝子の発現を促進す
る少なくとも一つの条件遺伝子を有するブラシカ・オレ
ラセアに属する植物と、ラファヌス・サチヴスに属する
植物とを交雑することにより行うことができる。
ると、ダイコンの根であれば橙色〜淡橙色（従来のダイ
コンでは白色）、種子であれば淡橙色〜濃黄色（従来の
ダイコンでは黄色）である。本発明のラファヌス・サチ
ヴスに属する植物は、Ｏｒ遺伝子を有するカリフラワー
と、ラファヌス・サチヴスに属する植物とを交配して得
られる種間雑種について戻し交雑を繰り返し、橙色を示
す個体を選抜することにより得られる。ここで用いるラ
ファヌス・サチヴスに属する植物は、特に限定されず、
一般的に商品として販売されているダイコンなどを用い
ることができる。Ｏｒ遺伝子を有するカリフラワーとラ
ファヌス・サチヴスに属する植物の交雑及び雑種植物の
戻し交雑においては、交配子房から胚を取り出し、胚培
養を行うことが好ましい。橙色を示す個体の選抜方法
は、幼植物期における主茎と葉柄の接合部、主茎から折
り取った葉柄基部の維管束、根等の部位の色が橙色であ
るものを選抜することにより行う。また、Ｏｒ遺伝子の
発現を促進する遺伝子の導入は、上記方法により得られ
た選抜個体と、上記のＯｒ遺伝子の発現を促進する少な
くとも一つの条件遺伝子を有するブラシカ・オレラセア
に属する植物とを交配することにより行うことができ
る。あるいは、Ｏｒ遺伝子と、該遺伝子の発現を促進す
る少なくとも一つの条件遺伝子を有するブラシカ・オレ
ラセアに属する植物と、ラファヌス・サチヴスに属する
植物とを交雑することにより行うことができる。
【００３３】本発明のラファヌス・サチヴスに属する植
物の栽培方法は特別な方法を用いる必要はなく、通常の
方法に従って行えばよい。
物の栽培方法は特別な方法を用いる必要はなく、通常の
方法に従って行えばよい。
【００３４】
【参考例】１９８９年にオレンジ・カリフラワーＮＹ１
６３近交系統（ＯｒＯｒ）を栽培した。このオレンジ・
カリフラワーの特性を表１に示す。
６３近交系統（ＯｒＯｒ）を栽培した。このオレンジ・
カリフラワーの特性を表１に示す。
【００３５】
【表１】
【００３６】花球部の色は、色調としては橙色と一色に
分類され、淡橙色及び濃い橙色の花球部はなかった。花
球部の大きさは平均３〜４ｃｍであるが、その大きさに
かなりの変異がみられた。そこで、できるだけ大きい花
球を持つ個体を２個選抜し、それぞれ系統番号ＯＣ１、
ＯＣ２として自殖により維持した。１９９３年２月に上
記２系統の自殖３代目の種子を播種し、定植後、６月に
各部位の色調等について調査した。結果を表２に示す。
分類され、淡橙色及び濃い橙色の花球部はなかった。花
球部の大きさは平均３〜４ｃｍであるが、その大きさに
かなりの変異がみられた。そこで、できるだけ大きい花
球を持つ個体を２個選抜し、それぞれ系統番号ＯＣ１、
ＯＣ２として自殖により維持した。１９９３年２月に上
記２系統の自殖３代目の種子を播種し、定植後、６月に
各部位の色調等について調査した。結果を表２に示す。
【００３７】
【表２】
【００３８】調査した２系統とも、主茎の横断面は全体
が淡橙色に染まり、維管束も淡橙色であり、色調の変異
はなく、両系統の全個体ともよく揃っていた。また、花
球部の大きさは平均約４ｃｍで、淡橙色も濃い橙色もな
く、橙色であった。
が淡橙色に染まり、維管束も淡橙色であり、色調の変異
はなく、両系統の全個体ともよく揃っていた。また、花
球部の大きさは平均約４ｃｍで、淡橙色も濃い橙色もな
く、橙色であった。
【００３９】
（実施例１）１９９０年春にキャベツ固定系統ａを母親
とし、オレンジ・カリフラワーを父親として交配した。
そのＦ1 世代は半結球を示し、１９９１年１月に半結球
部を切ってみたところ、すでに花蕾が生じ、花蕾及び花
蕾の周囲の結球葉が淡い橙色を示していた。このことか
ら、オレンジ・カリフラワーが持っているＯｒ遺伝子は
キャベツにおいても優性に発現すること、また、花蕾部
だけでなく、結球葉でも淡い橙色を示すことが新たにわ
かった。
とし、オレンジ・カリフラワーを父親として交配した。
そのＦ1 世代は半結球を示し、１９９１年１月に半結球
部を切ってみたところ、すでに花蕾が生じ、花蕾及び花
蕾の周囲の結球葉が淡い橙色を示していた。このことか
ら、オレンジ・カリフラワーが持っているＯｒ遺伝子は
キャベツにおいても優性に発現すること、また、花蕾部
だけでなく、結球葉でも淡い橙色を示すことが新たにわ
かった。
【００４０】１９９１年春に、Ｆ1 世代の自殖を行っ
た。また、Ｆ1 世代にキャベツ固定系統ａ及び固定系統
ｂを父親として戻し交雑を行った。同年１２月に、Ｆ1
の自殖世代（Ｆ2 世代）及び戻し交雑世代（ＢＣ1 Ｆ1
世代）の各個体の主茎の横断面における橙色の有無及び
色の濃さについて調査した。Ｆ2 及びＢＣ1 Ｆ1 世代で
は、オレンジ・カリフラワーで見られたような主茎の横
断面全体が淡橙色である個体は見出されず、維管束のみ
が淡橙色を示す個体が見出された。さらに、淡橙色より
も色が濃い、橙色の維管束を持つ個体、維管束を含む主
茎の横断面全体が橙色の個体が見出された。従って、キ
ャベツ固定系統ａとオレンジ・カリフラワーを交雑した
Ｆ1 個体の自殖後代Ｆ2 世代及びＦ1個体とキャベツ固
定系統ａ、ｂの戻し交雑ＢＣ1 Ｆ1 世代において、オレ
ンジ・カリフラワーそのものよりも濃い色調の主茎横断
面を持つ個体が出現すること、ＢＣ1 Ｆ1 世代で橙色、
淡橙色、白色に分離すること、キャベツにはこれまで橙
色を発現する遺伝子が見出されていないことから、キャ
ベツ固定系統ａ及びｂにはＯｒ遺伝子の発現を促進する
条件遺伝子があると考えられた。
た。また、Ｆ1 世代にキャベツ固定系統ａ及び固定系統
ｂを父親として戻し交雑を行った。同年１２月に、Ｆ1
の自殖世代（Ｆ2 世代）及び戻し交雑世代（ＢＣ1 Ｆ1
世代）の各個体の主茎の横断面における橙色の有無及び
色の濃さについて調査した。Ｆ2 及びＢＣ1 Ｆ1 世代で
は、オレンジ・カリフラワーで見られたような主茎の横
断面全体が淡橙色である個体は見出されず、維管束のみ
が淡橙色を示す個体が見出された。さらに、淡橙色より
も色が濃い、橙色の維管束を持つ個体、維管束を含む主
茎の横断面全体が橙色の個体が見出された。従って、キ
ャベツ固定系統ａとオレンジ・カリフラワーを交雑した
Ｆ1 個体の自殖後代Ｆ2 世代及びＦ1個体とキャベツ固
定系統ａ、ｂの戻し交雑ＢＣ1 Ｆ1 世代において、オレ
ンジ・カリフラワーそのものよりも濃い色調の主茎横断
面を持つ個体が出現すること、ＢＣ1 Ｆ1 世代で橙色、
淡橙色、白色に分離すること、キャベツにはこれまで橙
色を発現する遺伝子が見出されていないことから、キャ
ベツ固定系統ａ及びｂにはＯｒ遺伝子の発現を促進する
条件遺伝子があると考えられた。
【００４１】そこで、次のような仮説を立てて、各々の
仮説の下で、χ2 検定を行った。 仮説１ 橙色の遺伝は、完全優性一遺伝子支配である。
（Ｆ2 分離比３：１、ＢＣ1 Ｆ1 分離比１：１） 仮説２ 橙色の遺伝は、不完全優性一遺伝子支配であ
る。（Ｆ2 分離比１：２：１、ＢＣ1 Ｆ1 分離比１：
１） 仮説３ 橙色の遺伝は、優性二遺伝子支配である。
仮説の下で、χ2 検定を行った。 仮説１ 橙色の遺伝は、完全優性一遺伝子支配である。
（Ｆ2 分離比３：１、ＢＣ1 Ｆ1 分離比１：１） 仮説２ 橙色の遺伝は、不完全優性一遺伝子支配であ
る。（Ｆ2 分離比１：２：１、ＢＣ1 Ｆ1 分離比１：
１） 仮説３ 橙色の遺伝は、優性二遺伝子支配である。
【００４２】（Ｆ2 分離比９：３：４、１０：２：４ ＢＣ1 Ｆ1 分離比１：１、１：１：２、３：１：４） なお、色の濃さの基準として、オレンジ・カリフラワー
の維管束を含む主茎の横断面の色を淡橙色とし、これよ
りも濃い色は橙色とした。また、色の判定は、主茎の横
断面全体が着色しているものと、維管束のみが着色して
いるものとを区別せずに行った。この結果を表３及び表
４に示す。
の維管束を含む主茎の横断面の色を淡橙色とし、これよ
りも濃い色は橙色とした。また、色の判定は、主茎の横
断面全体が着色しているものと、維管束のみが着色して
いるものとを区別せずに行った。この結果を表３及び表
４に示す。
【００４３】
【表３】
【００４４】
【表４】
【００４５】表３に示したように、優性一遺伝子支配で
ある３：１の分離比を示すとする仮説に適合しない場合
と、適合する場合があった。前者の場合は、橙色の出現
頻度が少ないので、Ｏｒ遺伝子の発現を抑制する遺伝子
を持つと考えられた。また、調査したすべてのＦ1 の花
蕾及びその周辺の結球葉は淡橙色であったので、Ｏｒ遺
伝子の発現を抑制する遺伝子は劣性であると考えられ
た。後者の場合は、３：１の分離比を示すとする仮説に
適合するものの、橙色：淡橙色：無色＝１：２：１の分
離比を示すとする仮説には適合しなかった。従って、橙
色の遺伝は不完全優性一遺伝子支配であるという仮説は
棄却された。また、ＯｒＯｒホモであるオレンジ・カリ
フラワーと同じ淡橙色を示す個体が少なく、より濃い色
の橙色を示す個体が多かった。
ある３：１の分離比を示すとする仮説に適合しない場合
と、適合する場合があった。前者の場合は、橙色の出現
頻度が少ないので、Ｏｒ遺伝子の発現を抑制する遺伝子
を持つと考えられた。また、調査したすべてのＦ1 の花
蕾及びその周辺の結球葉は淡橙色であったので、Ｏｒ遺
伝子の発現を抑制する遺伝子は劣性であると考えられ
た。後者の場合は、３：１の分離比を示すとする仮説に
適合するものの、橙色：淡橙色：無色＝１：２：１の分
離比を示すとする仮説には適合しなかった。従って、橙
色の遺伝は不完全優性一遺伝子支配であるという仮説は
棄却された。また、ＯｒＯｒホモであるオレンジ・カリ
フラワーと同じ淡橙色を示す個体が少なく、より濃い色
の橙色を示す個体が多かった。
【００４６】ＢＣ1 Ｆ1 世代についてみると、表４に示
したように、１：１の分離比を示すとする仮説に適合す
る系統が４系統あった。残りの１系統は橙色の出現が極
端に少なく、Ｏｒ遺伝子の発現を抑制する遺伝子が関与
していると考えられた。もし、Ｏｒ遺伝子のみ単独支配
であるのなら、ＢＣ1 Ｆ1 世代では淡橙色と白色のみに
分離して橙色は分離しないはずであるが、１：１の分離
比を示すとする仮説に適合する４系統はさらに橙色と淡
橙色に分類することができた。
したように、１：１の分離比を示すとする仮説に適合す
る系統が４系統あった。残りの１系統は橙色の出現が極
端に少なく、Ｏｒ遺伝子の発現を抑制する遺伝子が関与
していると考えられた。もし、Ｏｒ遺伝子のみ単独支配
であるのなら、ＢＣ1 Ｆ1 世代では淡橙色と白色のみに
分離して橙色は分離しないはずであるが、１：１の分離
比を示すとする仮説に適合する４系統はさらに橙色と淡
橙色に分類することができた。
【００４７】以上のことから、橙色の遺伝は不完全優性
一遺伝子支配であるという仮説は棄却されるので、Ｏｒ
遺伝子がある時にその色を濃くする優性一遺伝子を仮定
したところ、そのＦ2 分離比である９：３：４、及び１
０：２：４の分離比を示すとする仮説によく適合した。
また、ＢＣ1 Ｆ1 の分離比のうち、３色に分離するもの
は、１：１：２（ＯｒｏｒＡａ×ｏｒｏｒａａ）及び
３：１：４（ＯｒｏｒＡａ×ｏｒｏｒＡａ）の２通りで
あるが、これらの分離比を示すとする仮説にもよく適合
した。
一遺伝子支配であるという仮説は棄却されるので、Ｏｒ
遺伝子がある時にその色を濃くする優性一遺伝子を仮定
したところ、そのＦ2 分離比である９：３：４、及び１
０：２：４の分離比を示すとする仮説によく適合した。
また、ＢＣ1 Ｆ1 の分離比のうち、３色に分離するもの
は、１：１：２（ＯｒｏｒＡａ×ｏｒｏｒａａ）及び
３：１：４（ＯｒｏｒＡａ×ｏｒｏｒＡａ）の２通りで
あるが、これらの分離比を示すとする仮説にもよく適合
した。
【００４８】従って、キャベツ固定系統ａには、Ｏｒ遺
伝子の発現を抑制する遺伝子とＯｒ遺伝子の発現を促進
する条件遺伝子があり、キャベツ固定系統ｂには、Ｏｒ
遺伝子の発現を促進する条件遺伝子があることがわかっ
た。主茎の色が３：１に分離するＦ2 世代の２系統の中
からキャベツ型で維管束が橙色の個体を一個体ずつ選抜
し、Ｆ3 種子を得た。これらのＦ3 世代においても橙
色：淡橙色：無色の分離について調査した。この結果を
表５に示す。
伝子の発現を抑制する遺伝子とＯｒ遺伝子の発現を促進
する条件遺伝子があり、キャベツ固定系統ｂには、Ｏｒ
遺伝子の発現を促進する条件遺伝子があることがわかっ
た。主茎の色が３：１に分離するＦ2 世代の２系統の中
からキャベツ型で維管束が橙色の個体を一個体ずつ選抜
し、Ｆ3 種子を得た。これらのＦ3 世代においても橙
色：淡橙色：無色の分離について調査した。この結果を
表５に示す。
【００４９】
【表５】
【００５０】表に示したように、２系統ともＦ3 世代
で、主茎の維管束のみ淡橙色である個体が全くなり、橙
色を示す個体群と無色の個体群だけとなった。橙色：無
色の分離比が３：１を示すとする仮説に適合しているか
否かについて検定を行ったところ、いずれの系統も３：
１に適合した。従って、親個体の遺伝子型は、Ｏｒ遺伝
子ヘテロ＋Ｏｒ遺伝子の発現を促進する条件遺伝子ホモ
であると推察された。
で、主茎の維管束のみ淡橙色である個体が全くなり、橙
色を示す個体群と無色の個体群だけとなった。橙色：無
色の分離比が３：１を示すとする仮説に適合しているか
否かについて検定を行ったところ、いずれの系統も３：
１に適合した。従って、親個体の遺伝子型は、Ｏｒ遺伝
子ヘテロ＋Ｏｒ遺伝子の発現を促進する条件遺伝子ホモ
であると推察された。
【００５１】１９９２年春にＢＣ1 Ｆ1 世代の中から、
主茎の色が橙色でキャベツ型の個体を選抜し、自殖させ
た。同年夏に、そのＢＣ1 Ｆ2 種子を播種し、ＢＣ1 Ｆ
2 世代の橙色の分離についてこれまでと同様な調査を行
った。結果を表６に示す。
主茎の色が橙色でキャベツ型の個体を選抜し、自殖させ
た。同年夏に、そのＢＣ1 Ｆ2 種子を播種し、ＢＣ1 Ｆ
2 世代の橙色の分離についてこれまでと同様な調査を行
った。結果を表６に示す。
【００５２】
【表６】
【００５３】戻し交雑の親にキャベツ系統ａを用いた場
合、５系統のうち２系統は３：１の分離比を示すとする
仮説に適合せず、白色の比率が３：１よりも高いのでＯ
ｒ遺伝子を抑制する遺伝子の存在が考えられた。残りの
３系統は３：１の分離比を示すとする仮説に適合した
が、１：２：１の分離比を示すとする仮説は棄却され
た。一方、９：３：４及び１０：２：４の分離比を示す
とする仮説に適合するので、Ｏｒ遺伝子とＯｒ遺伝子の
色を濃くする条件遺伝子が存在すると考えられた。
合、５系統のうち２系統は３：１の分離比を示すとする
仮説に適合せず、白色の比率が３：１よりも高いのでＯ
ｒ遺伝子を抑制する遺伝子の存在が考えられた。残りの
３系統は３：１の分離比を示すとする仮説に適合した
が、１：２：１の分離比を示すとする仮説は棄却され
た。一方、９：３：４及び１０：２：４の分離比を示す
とする仮説に適合するので、Ｏｒ遺伝子とＯｒ遺伝子の
色を濃くする条件遺伝子が存在すると考えられた。
【００５４】戻し交雑の親にキャベツｂ系統を用いた場
合、２系統とも３：１の分離比を示すとする仮説に適合
したが、１：２：１の分離比を示すとする仮説は棄却さ
れ、橙色の遺伝は不完全優性一遺伝子支配ではないこと
が支持された。また、両系統とも、９：３：４及び１
０：２：４の分離比を示すとする仮説に適合するので、
Ｏｒ遺伝子とＯｒ遺伝子の発現を促進する条件遺伝子の
存在が考えられた。
合、２系統とも３：１の分離比を示すとする仮説に適合
したが、１：２：１の分離比を示すとする仮説は棄却さ
れ、橙色の遺伝は不完全優性一遺伝子支配ではないこと
が支持された。また、両系統とも、９：３：４及び１
０：２：４の分離比を示すとする仮説に適合するので、
Ｏｒ遺伝子とＯｒ遺伝子の発現を促進する条件遺伝子の
存在が考えられた。
【００５５】以上の結果から、キャベツ系統ａはＯｒ遺
伝子を抑制する遺伝子及びＯｒ遺伝子の発現を促進する
条件遺伝子が存在し、キャベツ系統ｂはＯｒ遺伝子の発
現を促進をする条件遺伝子のみが存在することがわかっ
た。１９９２年春に、ＢＣ1 Ｆ1 世代の中から主茎の色
が橙色でキャベツ型の個体を選抜し、キャベツ系統ａ、
ｂ、ｃ、ｄを戻し交雑してＢＣ2 Ｆ1 種子を得た。同年
夏にそのＢＣ2 Ｆ1 種子を播種し、ＢＣ2 Ｆ1 世代の橙
色の分離についてこれまでと同様の調査を行った。この
結果を表７に示す。
伝子を抑制する遺伝子及びＯｒ遺伝子の発現を促進する
条件遺伝子が存在し、キャベツ系統ｂはＯｒ遺伝子の発
現を促進をする条件遺伝子のみが存在することがわかっ
た。１９９２年春に、ＢＣ1 Ｆ1 世代の中から主茎の色
が橙色でキャベツ型の個体を選抜し、キャベツ系統ａ、
ｂ、ｃ、ｄを戻し交雑してＢＣ2 Ｆ1 種子を得た。同年
夏にそのＢＣ2 Ｆ1 種子を播種し、ＢＣ2 Ｆ1 世代の橙
色の分離についてこれまでと同様の調査を行った。この
結果を表７に示す。
【００５６】
【表７】
【００５７】系統ａを戻し交雑した４系統とも１：１の
分離比を示すとする仮説に適合するが、その色は橙色、
淡橙色、白色の３種類に分かれた。Ｏｒ遺伝子とＯｒ遺
伝子の発現を促進する条件遺伝子が存在する場合の分離
比１：１：２または３：１：４の分離比を示すとする仮
説にこれらの４系統は適合した。系統ｂを戻し親とした
１系統も同様で、橙色、淡橙色、白色の３種類に分か
れ、１：１及び３：１：４の分離比を示すとする仮説に
適合した。系統ｃを戻し親とした２系統とも１：１に適
合し、このうち１系統は淡橙色が出現しなかった。両系
統とも、１：１：２の分離比を示すとする仮説は棄却さ
れた。３：１：４の分離比を示すとする仮説について
は、個体番号１では適合し、個体番号２では棄却され
た。系統ｄを戻し親とした３系統とも１：１の分離比を
示すとする仮説に適合した。このうち１系統は淡橙色が
出現しなかった。別の１系統は１：１：２の分離比を示
すとする仮説が棄却され、３：１：４の分離比を示すと
する仮説に適合した。残りの１系統は１：１：２の仮説
にも３：１：４の仮説にも適合した。以上の結果から系
統ａ、ｂ、ｃ、ｄの４系統ともＯｒ遺伝子の発現を促進
する条件遺伝子をもっていることがわかった。 （実施例２）従来のキャベツ（Ｏｒ遺伝子を持たない）
とＯｒ遺伝子をヘテロに持っているキャベツについて、
各々のカロチン含量を測定した。
分離比を示すとする仮説に適合するが、その色は橙色、
淡橙色、白色の３種類に分かれた。Ｏｒ遺伝子とＯｒ遺
伝子の発現を促進する条件遺伝子が存在する場合の分離
比１：１：２または３：１：４の分離比を示すとする仮
説にこれらの４系統は適合した。系統ｂを戻し親とした
１系統も同様で、橙色、淡橙色、白色の３種類に分か
れ、１：１及び３：１：４の分離比を示すとする仮説に
適合した。系統ｃを戻し親とした２系統とも１：１に適
合し、このうち１系統は淡橙色が出現しなかった。両系
統とも、１：１：２の分離比を示すとする仮説は棄却さ
れた。３：１：４の分離比を示すとする仮説について
は、個体番号１では適合し、個体番号２では棄却され
た。系統ｄを戻し親とした３系統とも１：１の分離比を
示すとする仮説に適合した。このうち１系統は淡橙色が
出現しなかった。別の１系統は１：１：２の分離比を示
すとする仮説が棄却され、３：１：４の分離比を示すと
する仮説に適合した。残りの１系統は１：１：２の仮説
にも３：１：４の仮説にも適合した。以上の結果から系
統ａ、ｂ、ｃ、ｄの４系統ともＯｒ遺伝子の発現を促進
する条件遺伝子をもっていることがわかった。 （実施例２）従来のキャベツ（Ｏｒ遺伝子を持たない）
とＯｒ遺伝子をヘテロに持っているキャベツについて、
各々のカロチン含量を測定した。
【００５８】カロチン含量の測定は以下のように行っ
た。２％アセトン−ｎ−ヘキサン混液を溶離液とするア
ルミナクロマトグラフ法を行い、β−カロチンを主体と
するカロチンを他の色素成分と分別した。得られた溶液
を減圧下で留去し、残留分にｎ−ヘキサンを加えて溶か
した。分光光度計により、ｎ−ヘキサンを対照として、
波長４５３ｎｍにおける吸光度を測定した。β−カロチ
ン標準液による検量線より、定量値を算出した。基準物
質としてβ−カロチンを用いたので、定量値はβ−カロ
チン相当量として算出された。算出された定量値は小数
点第一位を四捨五入し、整数位μｇ数で示し、６μｇ未
満は零でないという意味でφで示した。分析試料は、特
に断りがない場合は、１ｃｍ巾で結球部上中央から縦断
し、全結球葉が含まれるように採取し、細断混合したも
のを用いた。
た。２％アセトン−ｎ−ヘキサン混液を溶離液とするア
ルミナクロマトグラフ法を行い、β−カロチンを主体と
するカロチンを他の色素成分と分別した。得られた溶液
を減圧下で留去し、残留分にｎ−ヘキサンを加えて溶か
した。分光光度計により、ｎ−ヘキサンを対照として、
波長４５３ｎｍにおける吸光度を測定した。β−カロチ
ン標準液による検量線より、定量値を算出した。基準物
質としてβ−カロチンを用いたので、定量値はβ−カロ
チン相当量として算出された。算出された定量値は小数
点第一位を四捨五入し、整数位μｇ数で示し、６μｇ未
満は零でないという意味でφで示した。分析試料は、特
に断りがない場合は、１ｃｍ巾で結球部上中央から縦断
し、全結球葉が含まれるように採取し、細断混合したも
のを用いた。
【００５９】従来のキャベツ４系統における１００ｇあ
たりのカロチン含量を表８に示した。
たりのカロチン含量を表８に示した。
【００６０】
【表８】
【００６１】これらを戻し親として２回戻し交雑した後
代でＯｒ遺伝子をヘテロにもっているキャベツ４系統に
おける１００ｇ当たりのカロチン含量については表９に
示した。
代でＯｒ遺伝子をヘテロにもっているキャベツ４系統に
おける１００ｇ当たりのカロチン含量については表９に
示した。
【００６２】
【表９】
【００６３】表からＯｒ遺伝子が導入されると、従来の
キャベツのカロチン含量の３〜７倍高いカロチン含量を
持つようになること、戻し交雑親に用いる系統によって
カロチン含量の増加率が異なることがわかった。Ｏｒ遺
伝子をヘテロに持っているキャベツ戻し交雑系統の中
で、最もカロチン含量が高かった系統（Ｆ1 ×ａ）×ｄ
を用いて、個体ごとに主茎切断面及び維管束における橙
色の有無、結球部横断面の葉色、及び、カロチン含量に
ついて調査した。結果を表１０に示す。
キャベツのカロチン含量の３〜７倍高いカロチン含量を
持つようになること、戻し交雑親に用いる系統によって
カロチン含量の増加率が異なることがわかった。Ｏｒ遺
伝子をヘテロに持っているキャベツ戻し交雑系統の中
で、最もカロチン含量が高かった系統（Ｆ1 ×ａ）×ｄ
を用いて、個体ごとに主茎切断面及び維管束における橙
色の有無、結球部横断面の葉色、及び、カロチン含量に
ついて調査した。結果を表１０に示す。
【００６４】
【表１０】
【００６５】この系統の遺伝子型は戻し交雑であるか
ら、Ｏｒｏｒ型（橙色が出現）とｏｒｏｒ型（従来キャ
ベツ）に分かれる。主茎切断面が従来のキャベツと同じ
場合でも、戻し交雑親の系統ａ及びｄのカロチン含量
（ａ：２３μｇ、ｄ：４６μｇ）よりも高いカロチン含
量を持つ個体が出現した（個体番号３、１７）。葉色が
白→薄い淡黄色→淡黄色→黄色→橙黄色というように、
黄色が濃くなり橙色がかると、カロチン含量も高くなっ
た。さらに、主茎切断面の維管束のみが橙色である個体
（葉色：黄色または淡橙黄色）よりも、維管束を含む主
茎切断面全体が橙色である個体（葉色：橙黄色）の方が
よりカロチン含量が高く、橙色無し（従来のキャベツ
型）→維管束→維管束を含む主茎切断面全体というよう
に橙色が出現する部分が増えると、カロチン含量も高く
なった。
ら、Ｏｒｏｒ型（橙色が出現）とｏｒｏｒ型（従来キャ
ベツ）に分かれる。主茎切断面が従来のキャベツと同じ
場合でも、戻し交雑親の系統ａ及びｄのカロチン含量
（ａ：２３μｇ、ｄ：４６μｇ）よりも高いカロチン含
量を持つ個体が出現した（個体番号３、１７）。葉色が
白→薄い淡黄色→淡黄色→黄色→橙黄色というように、
黄色が濃くなり橙色がかると、カロチン含量も高くなっ
た。さらに、主茎切断面の維管束のみが橙色である個体
（葉色：黄色または淡橙黄色）よりも、維管束を含む主
茎切断面全体が橙色である個体（葉色：橙黄色）の方が
よりカロチン含量が高く、橙色無し（従来のキャベツ
型）→維管束→維管束を含む主茎切断面全体というよう
に橙色が出現する部分が増えると、カロチン含量も高く
なった。
【００６６】最もカロチン含量が高かった系統（Ｆ1 ×
ａ）×ｄの中で、維管束を含む主茎切断面が橙色である
個体を用いて、部位別にカロチン含量を測定した。同様
に、従来のキャベツについても部位別に測定し、両者を
比較した。この結果を表１１に示す。
ａ）×ｄの中で、維管束を含む主茎切断面が橙色である
個体を用いて、部位別にカロチン含量を測定した。同様
に、従来のキャベツについても部位別に測定し、両者を
比較した。この結果を表１１に示す。
【００６７】
【表１１】
【００６８】従来のキャベツでは、食用できる最外結球
葉で２６０μｇ／１００ｇとなるが、食用となる大部分
の結球葉はカロチン含量が低く（０〜３９μｇ／１００
ｇ）、芯周辺ではほぼ０に等しくなってしまう。これに
対し、Ｏｒ遺伝子を持っているキャベツはどの部位をと
っても２４３μｇ／１００ｇ〜４０５μｇ／１００ｇと
非常にカロチン含量が高かった。
葉で２６０μｇ／１００ｇとなるが、食用となる大部分
の結球葉はカロチン含量が低く（０〜３９μｇ／１００
ｇ）、芯周辺ではほぼ０に等しくなってしまう。これに
対し、Ｏｒ遺伝子を持っているキャベツはどの部位をと
っても２４３μｇ／１００ｇ〜４０５μｇ／１００ｇと
非常にカロチン含量が高かった。
【００６９】また、葉軸についてみると、従来のキャベ
ツでは最低０〜最高１１μｇ／１００ｇとほぼ０である
のに対し、Ｏｒ遺伝子を持っているキャベツの葉軸は、
最低２２μｇ／１００ｇ〜最高９９０μｇ／１００ｇで
あり、カロチン含量が２〜９０倍以上高くなった。 （実施例３）１９８９年７月にカイラン３系統とオレン
ジ・カリフラワーＮＹ１６３近交系統を播種した。１９
９０年春にカイランを母親として、ＮＹ１６３と交雑し
た。同年７月に得られた交雑種子を播種し、Ｆ1 個体を
生育させた。カイランの花芽の形態（食用にする部分）
は、ブロコリーの小蕾がやや大きくなり、花枝全体も長
く伸びたような形態をしている。カイランとオレンジ・
カリフラワーのＦ1 個体は、淡橙色の花球に似た組織塊
を形成するが、すぐに組織塊のほとんどの花芽が極めて
小さい蕾となり（普通のカリフラワーの場合、花球の半
数は休眠・未発達となり、花穂を形成しない）、色も淡
橙色が消えて緑色となる。この緑色の小蕾の集まりは、
ブロッコリーとカイランの中間的形態をしている。
ツでは最低０〜最高１１μｇ／１００ｇとほぼ０である
のに対し、Ｏｒ遺伝子を持っているキャベツの葉軸は、
最低２２μｇ／１００ｇ〜最高９９０μｇ／１００ｇで
あり、カロチン含量が２〜９０倍以上高くなった。 （実施例３）１９８９年７月にカイラン３系統とオレン
ジ・カリフラワーＮＹ１６３近交系統を播種した。１９
９０年春にカイランを母親として、ＮＹ１６３と交雑し
た。同年７月に得られた交雑種子を播種し、Ｆ1 個体を
生育させた。カイランの花芽の形態（食用にする部分）
は、ブロコリーの小蕾がやや大きくなり、花枝全体も長
く伸びたような形態をしている。カイランとオレンジ・
カリフラワーのＦ1 個体は、淡橙色の花球に似た組織塊
を形成するが、すぐに組織塊のほとんどの花芽が極めて
小さい蕾となり（普通のカリフラワーの場合、花球の半
数は休眠・未発達となり、花穂を形成しない）、色も淡
橙色が消えて緑色となる。この緑色の小蕾の集まりは、
ブロッコリーとカイランの中間的形態をしている。
【００７０】１９９１年春にＦ1 個体の自殖（Ｆ2 種
子）を行った。同年７月に得られたＦ 2 種子を播種し
た。Ｆ2 個体の花球部を切り除いた主茎切断面の色につ
いて調査し、Ｆ2 分離比についてχ2 検定を行った。結
果を表１２に示す。
子）を行った。同年７月に得られたＦ 2 種子を播種し
た。Ｆ2 個体の花球部を切り除いた主茎切断面の色につ
いて調査し、Ｆ2 分離比についてχ2 検定を行った。結
果を表１２に示す。
【００７１】
【表１２】
【００７２】花球部を切り除いた主茎切断面の色の分離
についてみると、橙色、淡橙色、橙色無し（カイランの
主茎断面と同じ色）の３種類に分類できた。Ｆ2 世代３
系統とも優性一遺伝子支配である３：１の分離比を示す
とする仮説に適合したが、不完全優性一遺伝子支配であ
る１：２：１の分離比を示すとする仮説は棄却され、橙
色の遺伝は不完全優性一遺伝子支配ではないことが支持
された。淡橙色よりも濃い橙色の個体の出現数が多かっ
たので、Ｏｒ遺伝子がある時にその発現を促進する条件
遺伝子Ａがあると考えられた。そこで、優性二遺伝子支
配の時の分離比を仮説としてχ2 検定を行ったところ、
９：３：４あるいは１０：２：４の分離比を示すとする
仮説に適合した。 （実施例４）１９９１年春に白菜２系統各４個体ずつに
ＮＹ１６３自殖１代目の２個体の花粉を交配し、種間雑
種を作出することにした。各母本約１０００花に交配し
たが、交配子房が種子発育期間中にすべて落下してしま
い、交配種子は一粒も得られなかった。従って、通常の
交配方法では交雑種子は得られないと考えられた。そこ
で、翌年は通常の交配と同時に、交配後２〜５週間後の
交配子房から無菌的に胚を取り出し、胚培養を行うこと
にした。
についてみると、橙色、淡橙色、橙色無し（カイランの
主茎断面と同じ色）の３種類に分類できた。Ｆ2 世代３
系統とも優性一遺伝子支配である３：１の分離比を示す
とする仮説に適合したが、不完全優性一遺伝子支配であ
る１：２：１の分離比を示すとする仮説は棄却され、橙
色の遺伝は不完全優性一遺伝子支配ではないことが支持
された。淡橙色よりも濃い橙色の個体の出現数が多かっ
たので、Ｏｒ遺伝子がある時にその発現を促進する条件
遺伝子Ａがあると考えられた。そこで、優性二遺伝子支
配の時の分離比を仮説としてχ2 検定を行ったところ、
９：３：４あるいは１０：２：４の分離比を示すとする
仮説に適合した。 （実施例４）１９９１年春に白菜２系統各４個体ずつに
ＮＹ１６３自殖１代目の２個体の花粉を交配し、種間雑
種を作出することにした。各母本約１０００花に交配し
たが、交配子房が種子発育期間中にすべて落下してしま
い、交配種子は一粒も得られなかった。従って、通常の
交配方法では交雑種子は得られないと考えられた。そこ
で、翌年は通常の交配と同時に、交配後２〜５週間後の
交配子房から無菌的に胚を取り出し、胚培養を行うこと
にした。
【００７３】１９９２年春に白菜３系統及びカブ１系統
の各個体ずつにＮＹ１６３自殖２代目の個体の花粉を交
配した。通常の交配法による結果を表１３に胚培養によ
る結果を表１４に示した。
の各個体ずつにＮＹ１６３自殖２代目の個体の花粉を交
配した。通常の交配法による結果を表１３に胚培養によ
る結果を表１４に示した。
【００７４】
【表１３】
【００７５】
【表１４】
【００７６】表１３に示したように、通常の交配方法で
も交配種子が得られたが、これらは発芽、定植後の生育
状況からすべて傾母植物であった。表１４に示したよう
に胚培養では交配子房１５３個から５９個の胚が得ら
れ、このうち４６個が発芽した。培養中に、葉腋から腋
芽がでるように組織培養を行い、複数のクローン個体を
作った。発芽一個体から得られた複数のクローン個体を
一つの系統とした。１９９２年の夏から秋にかけて鉢出
しし、最終的に鉢出しできたのは８系統（Ｆ1 ）であっ
た。鉢出し後の幼苗期の植物体の形態から、７系統は傾
母植物で、残り１系統のみが種間雑種（Ｆ1 個体）であ
ると考えられた。
も交配種子が得られたが、これらは発芽、定植後の生育
状況からすべて傾母植物であった。表１４に示したよう
に胚培養では交配子房１５３個から５９個の胚が得ら
れ、このうち４６個が発芽した。培養中に、葉腋から腋
芽がでるように組織培養を行い、複数のクローン個体を
作った。発芽一個体から得られた複数のクローン個体を
一つの系統とした。１９９２年の夏から秋にかけて鉢出
しし、最終的に鉢出しできたのは８系統（Ｆ1 ）であっ
た。鉢出し後の幼苗期の植物体の形態から、７系統は傾
母植物で、残り１系統のみが種間雑種（Ｆ1 個体）であ
ると考えられた。
【００７７】１９９３年冬に、種間雑種と考えられる１
系統のクローン個体１０個体について、花粉稔性の有
無、形態的特性、橙色の有無の調査を行い、葉部のカロ
チン含量の定量を行った。１０個体とも両親の中間的特
性を持ち、半結球であった。花粉稔性が全くない個体は
９個体であった。残りの１個体は花粉稔性があり、蕾受
粉による自殖及び放任受粉による採種が可能であった。
また、不稔個体に比べ、可稔個体は葉や花の形態が大き
かった。染色体数を調査したところ、２ｎ＝３８本であ
った。従って、この可稔個体は組織培養中に倍化された
合成ナプスであり、残りの９個体はブラシカ・オレラセ
アとブラシカ・カンペストリスの種間雑種であると推定
した。
系統のクローン個体１０個体について、花粉稔性の有
無、形態的特性、橙色の有無の調査を行い、葉部のカロ
チン含量の定量を行った。１０個体とも両親の中間的特
性を持ち、半結球であった。花粉稔性が全くない個体は
９個体であった。残りの１個体は花粉稔性があり、蕾受
粉による自殖及び放任受粉による採種が可能であった。
また、不稔個体に比べ、可稔個体は葉や花の形態が大き
かった。染色体数を調査したところ、２ｎ＝３８本であ
った。従って、この可稔個体は組織培養中に倍化された
合成ナプスであり、残りの９個体はブラシカ・オレラセ
アとブラシカ・カンペストリスの種間雑種であると推定
した。
【００７８】合成ナプスと推定された可稔個体は、主茎
と葉柄の接合部が薄い淡橙色を示した。また、半結球葉
に包まれた中心の小葉及び根部の横断面全体も淡橙色で
あった。種子中のカロチン含量を測定したところ、従来
のナタネでは、系統ａが５３μｇ／１００ｇ、系統ｂが
２２μｇ／１００ｇであるのに対して、可稔個体の自殖
種子は２０９μｇ／１００ｇと、非常に高いカロチン含
量を示した。
と葉柄の接合部が薄い淡橙色を示した。また、半結球葉
に包まれた中心の小葉及び根部の横断面全体も淡橙色で
あった。種子中のカロチン含量を測定したところ、従来
のナタネでは、系統ａが５３μｇ／１００ｇ、系統ｂが
２２μｇ／１００ｇであるのに対して、可稔個体の自殖
種子は２０９μｇ／１００ｇと、非常に高いカロチン含
量を示した。
【００７９】１９９３年春に可稔個体に対して白菜によ
る戻し交雑と蕾受粉による自殖を行った。結果を表１５
に示す。
る戻し交雑と蕾受粉による自殖を行った。結果を表１５
に示す。
【００８０】
【表１５】
【００８１】表１５に示したように、可稔個体は、蕾受
粉による自殖、白菜による戻し交雑、放任受粉による採
種が可能であった。 （実施例５）実施例４においてブラシカ・オレラセアと
ブラシカ・カンペストリスの種間雑種と推定した不稔性
の９個体についてカロチン含量を定量した。従来の白菜
では、結球内部の葉身部で３８μｇ／１００ｇ、葉柄部
は０μｇ／１００ｇであった。これに対し、不稔個体で
は半結球内部の葉身部で４９６μｇ／１００ｇあり、従
来の白菜に比べて非常にカロチン含量が高かった。ま
た、これらの不稔個体も実施例４の可稔個体と同様に主
茎と葉柄の接合部が薄い淡橙色を示し、半結球葉に包ま
れた中心の小葉及び根部の横断面全体も淡橙色であっ
た。
粉による自殖、白菜による戻し交雑、放任受粉による採
種が可能であった。 （実施例５）実施例４においてブラシカ・オレラセアと
ブラシカ・カンペストリスの種間雑種と推定した不稔性
の９個体についてカロチン含量を定量した。従来の白菜
では、結球内部の葉身部で３８μｇ／１００ｇ、葉柄部
は０μｇ／１００ｇであった。これに対し、不稔個体で
は半結球内部の葉身部で４９６μｇ／１００ｇあり、従
来の白菜に比べて非常にカロチン含量が高かった。ま
た、これらの不稔個体も実施例４の可稔個体と同様に主
茎と葉柄の接合部が薄い淡橙色を示し、半結球葉に包ま
れた中心の小葉及び根部の横断面全体も淡橙色であっ
た。
【００８２】１９９３年春に不稔個体６個体に白菜２系
統及びカブ１系統の花粉を交配して戻し交雑を行い、Ｂ
Ｃ1 Ｆ1 個体を作出することにした。交配後そのまま植
物体上で発育させて種子を得る方法と、交配後１５日か
ら３０日の交配子房から胚を無菌的に取り出して培養す
る方法の２通りを行った。この結果を表１６及び表１７
に示す。
統及びカブ１系統の花粉を交配して戻し交雑を行い、Ｂ
Ｃ1 Ｆ1 個体を作出することにした。交配後そのまま植
物体上で発育させて種子を得る方法と、交配後１５日か
ら３０日の交配子房から胚を無菌的に取り出して培養す
る方法の２通りを行った。この結果を表１６及び表１７
に示す。
【００８３】
【表１６】
【００８４】
【表１７】
【００８５】表に示したように、通常の交配法でも戻し
交雑種子が少し得られた。胚培養した場合では、２０子
房から１２の胚が得られ、４個体が発芽した。従って、
通常の戻し交雑交配法及び胚培養法のどちらの方法を不
稔個体に用いてもＢＣ1 Ｆ1個体が得られる。 （実施例６）１９９１年春に大根５系統各２個体ずつに
ＮＹ１６３自殖１代目の２個体の花粉を交配し、属間雑
種を作出することにした。各母本約１０００花に交配し
たところ、ほとんど種子は得られなかったが、系統Ａの
１個体から雑種種子と思われる交雑種子が７粒得られ
た。同年７月にこれらの７粒を播種したところ、３粒発
芽し、生育した。生育途中で１個体が挫死したが、２個
体は生育を続け、開花に至った。両個体とも、植物体上
部の外観、花の形態・色は非常に大根に類似し、外観の
色は淡緑色が強く、父親由来の橙色の有無は外観からは
っきりしなかった。根部は大根のように太らず、細い主
根であった。しかし、２個体とも花粉稔性は全く無かっ
た。
交雑種子が少し得られた。胚培養した場合では、２０子
房から１２の胚が得られ、４個体が発芽した。従って、
通常の戻し交雑交配法及び胚培養法のどちらの方法を不
稔個体に用いてもＢＣ1 Ｆ1個体が得られる。 （実施例６）１９９１年春に大根５系統各２個体ずつに
ＮＹ１６３自殖１代目の２個体の花粉を交配し、属間雑
種を作出することにした。各母本約１０００花に交配し
たところ、ほとんど種子は得られなかったが、系統Ａの
１個体から雑種種子と思われる交雑種子が７粒得られ
た。同年７月にこれらの７粒を播種したところ、３粒発
芽し、生育した。生育途中で１個体が挫死したが、２個
体は生育を続け、開花に至った。両個体とも、植物体上
部の外観、花の形態・色は非常に大根に類似し、外観の
色は淡緑色が強く、父親由来の橙色の有無は外観からは
っきりしなかった。根部は大根のように太らず、細い主
根であった。しかし、２個体とも花粉稔性は全く無かっ
た。
【００８６】１９９２年春にこれら属間雑種２個体（Ｆ
1 ）に大根系統ｂ、ｃの花粉を交配し、ＢＣ1 Ｆ1 個体
を作出することにした。交配後２０日から３０日ぐらい
で交配子房のすべてが落下してしまい、戻し交雑種子を
得ることは非常に困難であると考えられた。そこで、交
配子房が落下しないうちに胚培養を行うことにした。交
配後６日から３０日の子房から無菌的に胚を取り出し、
培養した。
1 ）に大根系統ｂ、ｃの花粉を交配し、ＢＣ1 Ｆ1 個体
を作出することにした。交配後２０日から３０日ぐらい
で交配子房のすべてが落下してしまい、戻し交雑種子を
得ることは非常に困難であると考えられた。そこで、交
配子房が落下しないうちに胚培養を行うことにした。交
配後６日から３０日の子房から無菌的に胚を取り出し、
培養した。
【００８７】
【表１８】
【００８８】表に示したように、交配子房７４個体から
７０個の胚が得られ、このうち２２個が発芽した。培養
中に、葉腋から腋芽が出るように組織培養を行い、複数
のクローン個体を作った。発芽した一個体から得られた
複数のクローン個体を一つの系統とした。１９９２年夏
から秋にかけて鉢出しし、最終的に鉢出しできたのは１
５系統（ＢＣ1 Ｆ1 ）であった。
７０個の胚が得られ、このうち２２個が発芽した。培養
中に、葉腋から腋芽が出るように組織培養を行い、複数
のクローン個体を作った。発芽した一個体から得られた
複数のクローン個体を一つの系統とした。１９９２年夏
から秋にかけて鉢出しし、最終的に鉢出しできたのは１
５系統（ＢＣ1 Ｆ1 ）であった。
【００８９】１９９３年冬に、上記のＢＣ1 Ｆ1 世代１
５系統について花粉稔性の有無、形態的特性、橙色の有
無の調査を行い、更に根部のカロチン含量の定量を行っ
た。この結果を表１９に示す。
５系統について花粉稔性の有無、形態的特性、橙色の有
無の調査を行い、更に根部のカロチン含量の定量を行っ
た。この結果を表１９に示す。
【００９０】
【表１９】
【００９１】表に示したように、花粉稔性が全くないか
非常に低い系統がほとんどであったが、１５系統のうち
４系統は花粉稔性があった。植物体上部の外観、花の形
態・色は、Ｆ1 の時と同様に非常に大根に類似し、外観
の色は緑が強く、父親由来の橙色の有無は外観からでは
はっきりしなっかった。根部は大根のように太らず、細
い主根であったが、Ｆ1 よりは太い傾向があった。ＢＣ
1 Ｆ1 １５系統各々からクローン個体１個体を縦に切断
してみたところ、淡橙色を示す個体があった。淡橙色を
示す部位は茎部と根部の境から上部の一部分の維管束あ
るいは根の髄組織及び維管束を中心とする切断面全体で
あった。ＢＣ1 Ｆ1 世代１０系統についカロチン含量を
測定したところ、供試１０系統中８系統でカロチンを含
有していた。最高１５９μｇ／１００ｇで平均７５μｇ
／１００ｇであった。
非常に低い系統がほとんどであったが、１５系統のうち
４系統は花粉稔性があった。植物体上部の外観、花の形
態・色は、Ｆ1 の時と同様に非常に大根に類似し、外観
の色は緑が強く、父親由来の橙色の有無は外観からでは
はっきりしなっかった。根部は大根のように太らず、細
い主根であったが、Ｆ1 よりは太い傾向があった。ＢＣ
1 Ｆ1 １５系統各々からクローン個体１個体を縦に切断
してみたところ、淡橙色を示す個体があった。淡橙色を
示す部位は茎部と根部の境から上部の一部分の維管束あ
るいは根の髄組織及び維管束を中心とする切断面全体で
あった。ＢＣ1 Ｆ1 世代１０系統についカロチン含量を
測定したところ、供試１０系統中８系統でカロチンを含
有していた。最高１５９μｇ／１００ｇで平均７５μｇ
／１００ｇであった。
【００９２】１９９３年春に、根部が淡橙色でカロチン
を含有していると思われる４系統に大根の花粉を交配
し、戻し交雑を行いＢＣ2 Ｆ1 個体を作出することにし
た。
を含有していると思われる４系統に大根の花粉を交配
し、戻し交雑を行いＢＣ2 Ｆ1 個体を作出することにし
た。
【００９３】
【表２０】
【００９４】表に示したように４系統とも花粉稔性は非
常に低いか全く無いにもかかわらず、交配種子を得るこ
とができた。また、橙色に関しては不明または無い系統
であるが、花粉稔性を持っている系統（Ｎｏ１、３）
は、放任受粉による種子が得られた。同年９月に採取で
きた戻し交雑種子（ＢＣ2 Ｆ1 種子）を播種したとこ
ろ、５０％前後の発芽率があった。
常に低いか全く無いにもかかわらず、交配種子を得るこ
とができた。また、橙色に関しては不明または無い系統
であるが、花粉稔性を持っている系統（Ｎｏ１、３）
は、放任受粉による種子が得られた。同年９月に採取で
きた戻し交雑種子（ＢＣ2 Ｆ1 種子）を播種したとこ
ろ、５０％前後の発芽率があった。
【００９５】
【発明の効果】本発明は新規なアブラナ科植物を提供す
る。本発明により提供されるアブラナ科植物は、従来微
量しかカロチンを含まなかった部位においても多量のカ
ロチンを含み、食用、鑑賞用植物等として有用である。
る。本発明により提供されるアブラナ科植物は、従来微
量しかカロチンを含まなかった部位においても多量のカ
ロチンを含み、食用、鑑賞用植物等として有用である。
Claims (3)
- 【請求項１】 カリフラワーの花球部を橙色にする遺伝
子と、該遺伝子の発現を促進する少なくとも一つの条件
遺伝子を有することを特徴とする、ブラシカ・オレラセ
ア(Brassica oleracea L.)に属する植物。 - 【請求項２】 カリフラワーの花球部を橙色にする遺伝
子を有することを特徴とする、ブラシカ・ナプス(Brass
ica napus L.)、ブラシカ・カンペストリス(Brassica c
ampestris L.)、又は、ラファヌス・サチヴス(Raphanus
sativus L.)に属する植物。 - 【請求項３】 カリフラワーの花球部を橙色にする遺伝
子を有することを特徴とする、キャベツ(B.oleracea L.
var. capitata L.)、葉ボタン(B.oleraceaL. var. ace
phala DC.) 、コールラビ(B.oleracea L. var. gongylo
ides L.) 、サボイカンラン(B.oleracea L. var. bullt
a DC.) 、コモチカンラン(B.oleracea L. var. gemmife
ra Zenk.)、ブロッコリ(B.oleracea L. var. italic
a)、又はカイラン（B.oleracea L. var. alboglabra Ba
yl.)。
Priority Applications (10)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP32691393A JP3995729B2 (ja) | 1993-12-24 | 1993-12-24 | カロチン含量の高い新規アブラナ科植物 |
| CA2137303A CA2137303C (en) | 1993-12-24 | 1994-12-05 | A novel cruciferous plant having a high carotene content |
| AU80226/94A AU689149B2 (en) | 1993-12-24 | 1994-12-06 | A novel cruciferous plant having a high carotene content |
| US08/359,061 US5710364A (en) | 1993-12-24 | 1994-12-19 | Cruciferous plant having a high carotene content |
| DE69432290T DE69432290T2 (de) | 1993-12-24 | 1994-12-20 | Neue kruzifere Pflanze mit hohem Karotin gehalt |
| AT02019418T ATE422290T1 (de) | 1993-12-24 | 1994-12-20 | Kruzifere pflanze mit hohem karotin gehalt |
| EP94309594A EP0662281B1 (en) | 1993-12-24 | 1994-12-20 | A novel cruciferous plant having a high carotene content |
| EP02019418A EP1287736B1 (en) | 1993-12-24 | 1994-12-20 | A cruciferous plant having a high carotene content |
| AT94309594T ATE234545T1 (de) | 1993-12-24 | 1994-12-20 | Neue kruzifere pflanze mit hohem karotin gehalt |
| DE69435186T DE69435186D1 (de) | 1993-12-24 | 1994-12-20 | Kruzifere Pflanze mit hohem Karotin gehalt |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP32691393A JP3995729B2 (ja) | 1993-12-24 | 1993-12-24 | カロチン含量の高い新規アブラナ科植物 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH07177831A true JPH07177831A (ja) | 1995-07-18 |
| JP3995729B2 JP3995729B2 (ja) | 2007-10-24 |
Family
ID=18193157
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP32691393A Expired - Lifetime JP3995729B2 (ja) | 1993-12-24 | 1993-12-24 | カロチン含量の高い新規アブラナ科植物 |
Country Status (7)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US5710364A (ja) |
| EP (2) | EP1287736B1 (ja) |
| JP (1) | JP3995729B2 (ja) |
| AT (2) | ATE422290T1 (ja) |
| AU (1) | AU689149B2 (ja) |
| CA (1) | CA2137303C (ja) |
| DE (2) | DE69432290T2 (ja) |
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| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| AU2011242727B2 (en) * | 2010-04-20 | 2015-09-10 | Seminis Vegetable Seeds, Inc. | White-stem trait containing plants |
Family Cites Families (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US3833350A (en) * | 1972-12-14 | 1974-09-03 | Amchem Prod | Method of inducing carotenoid accumulation in plant tissue |
-
1993
- 1993-12-24 JP JP32691393A patent/JP3995729B2/ja not_active Expired - Lifetime
-
1994
- 1994-12-05 CA CA2137303A patent/CA2137303C/en not_active Expired - Lifetime
- 1994-12-06 AU AU80226/94A patent/AU689149B2/en not_active Expired
- 1994-12-19 US US08/359,061 patent/US5710364A/en not_active Expired - Lifetime
- 1994-12-20 AT AT02019418T patent/ATE422290T1/de not_active IP Right Cessation
- 1994-12-20 DE DE69432290T patent/DE69432290T2/de not_active Expired - Lifetime
- 1994-12-20 EP EP02019418A patent/EP1287736B1/en not_active Revoked
- 1994-12-20 EP EP94309594A patent/EP0662281B1/en not_active Expired - Lifetime
- 1994-12-20 AT AT94309594T patent/ATE234545T1/de not_active IP Right Cessation
- 1994-12-20 DE DE69435186T patent/DE69435186D1/de not_active Expired - Fee Related
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|---|---|
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| EP1287736A2 (en) | 2003-03-05 |
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