JPH06503816A - Regulation of T cell proliferation through a novel 5HT1a receptor - Google Patents

Regulation of T cell proliferation through a novel 5HT1a receptor

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JPH06503816A
JPH06503816A JP3517820A JP51782091A JPH06503816A JP H06503816 A JPH06503816 A JP H06503816A JP 3517820 A JP3517820 A JP 3517820A JP 51782091 A JP51782091 A JP 51782091A JP H06503816 A JPH06503816 A JP H06503816A
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Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるため要約のデータは記録されません。 (57) [Summary] This bulletin contains application data before electronic filing, so abstract data is not recorded.

Description

【発明の詳細な説明】 新規な5HT1a受容体を介するT細胞増殖の調節本出願は1990年9月4日 出願の米国特許出願第071578710号の一部継続出願である。明確化のた めに、5HT2類似受容体が5HT1a受容体として選定されている。[Detailed description of the invention] Regulation of T cell proliferation through a novel 5HT1a receptor This application was filed on September 4, 1990. This is a continuation-in-part of filed U.S. Patent Application No. 0,715,78710. For clarification Therefore, a 5HT2-like receptor has been selected as the 5HT1a receptor.

新規5HT2類似受容体が形質転換ジュルヵット(Jurkat)細胞上に存在 すること、および、当該受容体がヒト科Tリンパ球(活性化T細胞)上に存在す ることが初期的な研究により明らかにされている。さらに、実験により、5 H T受容体が活性化されがっ休止していないT細胞上に存在すること、これらの5  HT受容体とジェルカット細胞上の5HT受容体とが類似の薬理特性を有する こと、さらに、当該5HT受容体が、条件により、アデニル酸シクラーゼ活性を 調節し、CD4+細胞の増殖を抑制し、また、CD8+T細胞の増殖を促進する ことができることが確認されている。さらに、薬理的、生物化学的および分子構 造分析の組み合わせによる当該ジュルカット細胞および活性化T細胞上の5HT 特定受容体のキャラクタリゼーションにより、5HT受容体の存在が確認されて おり、また、該ジュルヵット細胞および活性化T細胞上の受容体が受容体の5H Tla族に属していることが知られている。すなわち、当該ジュルカソト細胞お よび活性化T細胞の場合、このことは、5HTb ての検討、信号トランスダクションの検討、および、特定ヒト科5HT1aオリ ゴヌクレオチドプローブを用いてのノーザン(northern)分析法等の判 定基準に基づいている。一方、休止T細胞はこれらの判定基準によっては5HT b らの知見は当該受容体や細胞増殖のメカニズムに相互作用する化合物を同定する ための種々の方策を開拓する基礎となってきた。A novel 5HT2-like receptor is present on transformed Jurkat cells. and that the receptor is present on human T lymphocytes (activated T cells). Initial research has shown that Furthermore, through experiments, 5H The presence of T receptors on activated but not resting T cells, these 5 HT receptors and 5HT receptors on gel-cut cells have similar pharmacological properties Furthermore, the 5HT receptor can induce adenylate cyclase activity under certain conditions. regulates the proliferation of CD4+ cells and promotes the proliferation of CD8+ T cells. It has been confirmed that this is possible. In addition, pharmacological, biochemical and molecular 5HT on Jurkat cells and activated T cells by a combination of structural analysis Characterization of specific receptors confirmed the existence of 5HT receptors. In addition, the receptors on Jurkat cells and activated T cells are 5H receptors. It is known to belong to the Tla tribe. In other words, the Jurcasoto cells and and activated T cells, this means that 5HTb study of signal transduction, and study of specific hominid 5HT1a origin. Evaluation of northern analysis methods using oligonucleotide probes, etc. Based on established standards. On the other hand, resting T cells are 5HT according to these criteria. b Their findings identify compounds that interact with these receptors and cell proliferation mechanisms. This has served as the basis for developing various strategies for achieving this goal.

本発明は細胞表面分子として存する新規セロトニン受容体の認識に基づく細胞増 殖の調節に関する。当該新規受容体は5HT2族に属するセロトニン受容体であ る。The present invention aims to increase cell growth based on the recognition of novel serotonin receptors that exist as cell surface molecules. Concerning the regulation of reproduction. The new receptor is a serotonin receptor belonging to the 5HT2 family. Ru.

なお、該5HT2類似受容体は、例えばCD4+やCD8十等の、悪性細胞若し くは腫瘍細胞、さらには、活性化T細胞上に存在する。In addition, the 5HT2-like receptor is used for malignant cells or CD4+, CD8+, etc. It is present on tumor cells and even activated T cells.

本発明はまた増殖している細胞がセロトニンを含有/表現することの認識に基づ く細胞増殖の調節に関する。The invention is also based on the recognition that proliferating cells contain/express serotonin. related to the regulation of cell proliferation.

なお、該セロトニンを含有する悪性または腫瘍細胞および活性化T細胞の増殖は セロトニン合成の阻害によって低減することができる。In addition, the proliferation of malignant or tumor cells and activated T cells containing the serotonin is It can be reduced by inhibiting serotonin synthesis.

本発明はまた、細胞増殖を促進もしくは抑制するために、効果的な量のアゴニス ト若しくはアンタゴニストを導入することによって、当該新規5HT2受容体を 示す細胞槽−殖の調節に関する。The invention also provides an effective amount of an agonist to promote or inhibit cell proliferation. The new 5HT2 receptor can be stimulated by introducing a receptor or an antagonist. Cell baths shown - Concerning the regulation of proliferation.

免疫システムの細胞に結合するが若しくはある作用を及ぼすための多くの神経伝 達物質が開示されている(文献1参照)。そのような神経伝達物質の−っである セロトニン(5−ヒドロキシトリプタミン、5−HT)はまた炎症部位において 放出される血小板の主生成物でもある(2−4)。また、セロトニンはIFN誘 導誘導ファイサイトシス大するためのもの(5)、マクロファージ上のIFN誘 導Ia表現を抑制するためのもの(6)、NK細胞細胞毒性を増大するためのも の(7)、単離ブレーBリンパ球におけるイオン浸透性に影響を及ぼすためのも の(8)、および、インビトロにおけるマイトゲン促進のT細胞増殖を抑制する ためのもの(9)が知られている。さらに、当該セロトニンおよびセロトニン受 容体はマウスモデルにおける遅延型過敏症の表現のために必要とされることが示 唆されている(10−11)。Many neurotransmitters bind to or exert certain effects on cells of the immune system. A substance that achieves this goal has been disclosed (see Reference 1). One such neurotransmitter is Serotonin (5-hydroxytryptamine, 5-HT) is also found at sites of inflammation. It is also the main product of platelets released (2-4). In addition, serotonin is an IFN-induced IFN induction on macrophages to enhance induced phycytosis (5) one to suppress Ia expression (6), and another to increase NK cell cytotoxicity. (7), also for influencing ion permeability in isolated Brae B lymphocytes. (8) and inhibits mitogen-promoted T cell proliferation in vitro. (9) is known. Furthermore, the serotonin and serotonin receptor condition has been shown to be required for the expression of delayed-type hypersensitivity in mouse models. It has been suggested (10-11).

また、当該セロトニン受容体の機能的、薬理的および分子構造的特性が末梢およ び中枢神経系において特徴付けられている(12)。さらに、5HTの異なる作 用を媒介する受容体の明確なカテゴリーが規定されている(13)。また、5H Tアンタゴニストを使用する実験によって、遅延型過敏症応答を真正な受容体に 転移することのできるTリンパ球が5HT受容体を表現できるということが示唆 されている(11)。また、ケタンセリン(ketanserin)やリタンセ リン(ritanserin)等の特定の5HT2アンタゴニストは当該応答の 転移を防止する。なお、ここに報告された実験の目的は5HT受容体の並順型が ヒト科Tリンパ球上に同定できるか、および、当該5HT受容体が神経系におけ る5 HT受容体についてそれ以前に報告されたものと類似の信号トランスダク ションを媒介し得るかを決定することであった。その結果、ヒト科7’ IJン パ系(ジュルカノト)が、フォスファチジルイノシトール加水分解および細胞内 Ca+十可動化を媒介し得る5HT2類似受容体亜類型を表現することがわかっ た。In addition, the functional, pharmacological, and molecular structural properties of the serotonin receptor have been investigated in the peripheral and and the central nervous system (12). Furthermore, different works of 5HT A distinct category of receptors that mediate this function has been defined (13). Also, 5H Experiments using T antagonists shift delayed-type hypersensitivity responses to bona fide receptors. Suggestions that T lymphocytes capable of metastasizing can express 5HT receptors (11) Also, ketanserin and retanse Certain 5HT2 antagonists, such as ritanserin, enhance this response. Prevent metastasis. The purpose of the experiment reported here was to determine whether the parallel type of 5HT receptor is Can the 5HT receptor be identified on human T lymphocytes and whether the 5HT receptor is present in the nervous system? 5 Signal transducers similar to those previously reported for HT receptors The objective was to determine whether the transaction could be mediated. As a result, the hominid 7'IJn The PA system (Julkanoto) is responsible for phosphatidylinositol hydrolysis and intracellular was found to express a 5HT2-like receptor subtype that can mediate Ca+ mobilization. Ta.

また、体止Tリンパ球の活性化は、当該活性化がこれらの細胞に調節やイフエク ターの活性を作用させるために、たいていの免疫応答に対して臨界関係にある。In addition, the activation of body-stopping T lymphocytes may cause these cells to undergo regulation and It is critical for most immune responses to exert its activity.

また、当該活性化の間は、比較的無活動状態の細胞が細胞分化や増殖を含む複雑 な変化をする。さらに、当該Tリンパ球の活性化は該T細胞と抗原存在細胞との 界面において生じるリガント−受容体間相互作用の結果である。なお、当該Tリ ンパ球および抗原存在細胞上の多数の異なる細胞表面分子は抗原のプレゼンテー ション時に生じる上記の複雑な細胞−細胞間相互作用に関与することが可能であ り、抗原−誘導Tリンパ球の活性は当該T細胞抗原受容体の刺激を含む必要があ る。ただし、当該T細胞抗原受容体の刺激だけでは増殖応答を誘導するには不十 分であり、該T細胞上に表現される他の細胞表面分子が補助分子として機能する 。該補助分子は接合分子として機能することができ、抗原受容体を介して開始し たトランスメンブランシグナルを修飾し、かつ/または、それら自体のトランス メンブランシグナル作用を開始する。Also, during this activation, cells in a relatively inactive state undergo complex processes including cell differentiation and proliferation. make a change. Furthermore, the activation of the T lymphocytes is caused by the interaction between the T cells and antigen-present cells. It is the result of ligand-receptor interactions that occur at the interface. In addition, the T-li A large number of different cell surface molecules on lymphocytes and antigen-presenting cells play a role in antigen presentation. may be involved in the above-mentioned complex cell-cell interactions that occur during cell-cell interactions. Therefore, antigen-induced T lymphocyte activity must include stimulation of the T cell antigen receptor. Ru. However, stimulation of the T cell antigen receptor alone is insufficient to induce a proliferative response. other cell surface molecules expressed on the T cell function as accessory molecules. . The auxiliary molecule can function as a conjugation molecule and initiates via the antigen receptor. modified transmembrane signals and/or their own transmembrane signals. Initiates membrane signal action.

該細胞表面分子の多くは上記T細胞の活性化、分化、および増殖に伴う作用の間 に該T細胞の表面上に現出する。なお・、該T細胞の増殖はI L−2の作用を 通して、その特定の細胞表面受容体上で主に調節されると考えられている。なお 、該IL−2はまた他のT細胞の増殖において生じるいわゆるオートクリン(a utocrine)およびバラクリン(paracrine)作用を有する。Many of these cell surface molecules play a role in the activation, differentiation, and proliferation of T cells. appears on the surface of the T cell. Furthermore, the proliferation of T cells depends on the action of IL-2. is thought to be regulated primarily on its specific cell surface receptors. In addition , the IL-2 also plays a role in the so-called autocrine (a) that occurs in the proliferation of other T cells. It has utocrine and paracrine effects.

さらに、該I L −2作用下の子細胞増殖は当該T細胞成長のための主たるメ カニズムとして考えられているが、特定の状況においては、当該T細胞の増殖が IL−2と独立して生じる。Furthermore, progeny cell proliferation under the action of IL-2 is the main mechanism for the T cell growth. However, under certain circumstances, the proliferation of these T cells may Occurs independently of IL-2.

新規な5HT2類似受容体が活性化T@胞上に細胞表面として存在することが知 られているが、当該新規な5HT2類似受容体がセロトニン合成の阻害により調 節できることもすでに認識されている。It is known that a novel 5HT2-like receptor exists on the cell surface of activated T@ cells. However, the novel 5HT2-like receptor is regulated by inhibiting serotonin synthesis. It has already been recognized that it is possible to

本発明はまた細胞増殖を促進または抑制するために新規な5HT2アンタゴニス トを呈示する細胞の増殖を調節することに関する。The present invention also provides novel 5HT2 antagonists for promoting or suppressing cell proliferation. It relates to regulating the proliferation of cells that exhibit symptoms.

さらに、本発明は新規な5HT2類似受容体を呈示する細胞増殖の調節に関する 。当該抗体は5HT2類似受容体に対して特定な単−若しくは複数のエピトープ を有する複数の「型」の抗体を含む。さらに、該抗体の「型」には、ポリクロー ナル抗体、モノクローナル抗体、キメラ(chimeric)抗体、ヒト化若し くはヒト科抗体をも含む。Furthermore, the present invention relates to the regulation of cell proliferation presenting novel 5HT2-like receptors. . The antibody has specific single or multiple epitopes for 5HT2-like receptors. Contains multiple "types" of antibodies with Furthermore, the “type” of the antibody includes polyclonal null antibodies, monoclonal antibodies, chimeric antibodies, humanized or It also includes hominid antibodies.

さらに、本発明は、5HT2類似受容体または該5HT2類似受容体に対する抗 体に結合するミモトープ(mimotope)や小ペプチドリガンドを生じるこ とによって新規な5HT2類似受容体を呈示する細胞増殖の調節に関する。なお 、該小ペプチドリガンドはアゴニストおよび/またはアンタゴニストとして機能 する。Furthermore, the present invention provides 5HT2-like receptors or antibodies against the 5HT2-like receptors. can produce mimotopes and small peptide ligands that bind to the body. and the regulation of cell proliferation presenting a novel 5HT2-like receptor. In addition , the small peptide ligand functions as an agonist and/or antagonist. do.

正常な二倍体細胞の増殖は一般に内因性若しくは外因性の成長因子の連続的供給 の存在を必要とする。また、腫瘍細胞の増殖は一般に外因性成長因子の付加を必 要としないと認識されている。これは、腫瘍細胞が該細胞自体の成長因子を生成 する能力を有すること、成長因子受容体が変化してそれらか連続的に活性化する こと、あるいは、シグナルトランスダクションの要素が変化して当該腫瘍細胞の 連続的な活性化が引き起こされること等に起因する。該腫瘍細胞はまた特異な受 容体を表現でき、また、通常親細胞組織に連係のない特異なホルモンや成長因子 を生成することもできる。さらに、最近では、正常な二倍体マウス繊維芽細胞に おける5HT1cまたは5HT2受容体の表現(遺伝子トランスフェクションに よる)によって、これらの細胞における形質転換の表現型が得られることが明ら かになっている。つまり、これらの受容体をエンコードするcDNAが導入され ると、形質転換された細胞が二次メツセンジャーシグナルを形質転換する5HT に対する高アフィニティ受容体を表現する。また、これらの繊維芽細胞により、 組織培養における集合点が形成され、ソフトアガーにおける成長が可能になり、 はだか鼠において腫瘍形成が生じる。このことは、セロトニンの合成および5H T受容体の変体の表現か腫瘍形成において重要な役割を果たす可能性を示すもの である。つまり、正常な細胞は、二次メツセンジャー経路を形質転換することの できるセロトニンおよび/またはセロトニン受容体を合成する能力を得ることに より、形質転換の表現型を得ることができる。したがって、ここで示す結論とし ては、(1)増殖細胞はセロトニンを含む、(2)セロトニン合成の阻害は、正 常な細胞によってではなく、腫瘍細胞により細胞増殖を阻害する、(3)正常細 胞ではなく、腫瘍細胞の増殖はある特定のセロトニン受容体アンタゴニストによ って阻害される。Normal diploid cell proliferation generally relies on a continuous supply of endogenous or exogenous growth factors. requires the existence of Additionally, tumor cell proliferation generally requires the addition of exogenous growth factors. It is recognized that it is not necessary. This is because tumor cells produce their own growth factors. growth factor receptors change and activate them sequentially Or, the signal transduction components may be altered to cause the tumor cells to This is caused by continuous activation. The tumor cells also have unique Unique hormones and growth factors that can express the physical condition and are not normally linked to the parent cell tissue can also be generated. Furthermore, recently, normal diploid mouse fibroblasts Expression of 5HT1c or 5HT2 receptors in cells (on gene transfection) It has been shown that a transformed phenotype can be obtained in these cells by It's turning into a crab. That is, cDNAs encoding these receptors are introduced. 5HT, which transforms the transformed cells with the secondary messenger signal. expresses high affinity receptors for. In addition, these fibroblasts Assemblage points in tissue culture are formed, allowing growth in soft agar, Tumor formation occurs in naked mice. This suggests that serotonin synthesis and 5H Variant expression of T receptors may play an important role in tumorigenesis It is. In other words, normal cells are susceptible to transforming secondary Messenger pathways. to obtain the ability to synthesize serotonin and/or serotonin receptors. From this, the transformed phenotype can be obtained. Therefore, the conclusion presented here is (1) proliferating cells contain serotonin, (2) inhibition of serotonin synthesis is a positive inhibiting cell proliferation by tumor cells rather than by normal cells; (3) normal cells; Growth of tumor cells, but not cells, is stimulated by certain serotonin receptor antagonists. It's hindered.

免五夏Al 5HT2類似受容体に対する結合に有効なセロトニンの量を機能的に減少するこ と、または、当該5HT2類似受容体結合部位の有効性を機能的に低減すること から成る5 H1’ 2類似受容体を呈示する細胞の増殖を抑制的に調節する方 法。当該方法は悪性細胞または腫瘍細胞および活性化T細胞に適用される。該活 性化T細胞はIL−2依存性でもよく、また、I L−2非依存性であってもよ い。当該細胞の増殖は、セロトニン合成を阻害する酵素トリプトファンヒドロキ シラーゼの活性を阻害する化合物を十分量投与することによって抑制される。当 該化合物の例としてはp−クロロフェニルアラニンが挙げられる。Mengoka Al Functionally reducing the amount of serotonin available for binding to 5HT2-like receptors or functionally reducing the effectiveness of the 5HT2-like receptor binding site. A method that suppresses the proliferation of cells exhibiting 5H1'2-like receptors consisting of Law. The method applies to malignant or tumor cells and activated T cells. The activity Sexualized T cells may be IL-2 dependent or IL-2 independent. stomach. The proliferation of these cells depends on the enzyme tryptophan hydroxyl, which inhibits serotonin synthesis. This can be inhibited by administering a sufficient amount of a compound that inhibits the activity of sylase. Current An example of such a compound is p-chlorophenylalanine.

5HT2類似受容体結合部位の有効性を機能的に低減することから成る5HT2 類似受容体を呈示する細胞の増殖を抑制的に調節する方法において、当該増殖が 、該細胞増殖を阻止するために、当該5HT2類似受容体に結合するに足る量の 少なくとも一種のアンタゴニストを導入することよって、抑制されることを特徴 とする方法。5HT2 consisting of functionally reducing the effectiveness of 5HT2-like receptor binding sites. In a method for suppressively regulating the proliferation of cells exhibiting similar receptors, the proliferation is , an amount sufficient to bind to the 5HT2-like receptor to inhibit cell proliferation. characterized by being suppressed by introducing at least one kind of antagonist How to do it.

当該少なくとも一種のアンタゴニストは5HT受容体リガントの群から選択され る。さらに、当該5HT受容体リガンドの群には、リタンセリン(ritans erin)、メスラジン(mesulergine)、ミアンセリン(mian serin)、スピベロン(spiperone)、および、当該5HT2類似 受容体に対するミモトープおよび抗体が含まれる。The at least one antagonist is selected from the group of 5HT receptor ligands. Ru. Furthermore, the group of 5HT receptor ligands includes ritanserin (ritanserin). erin), mesulergine, mianserin (mian) serin), spiperone, and the 5HT2 analogues Includes mimotopes and antibodies directed against the receptor.

5 I(T 2類似受容体結合部位の有効性を機能的に高めることから成る5H T2類似受容体を呈示する細胞を促進的に調節する方法。該細胞の増殖は、当該 細胞増殖を促進するに十分な量の少なくとも一種のアゴニストを導入することに よって高められる。該少なくとも一種のアゴニストは5HT受容体リガンドの群 から選択される。5H consisting of functionally increasing the effectiveness of 5I (T2-like receptor binding sites) A method of promotingly modulating cells displaying T2-like receptors. The proliferation of said cells is introducing at least one agonist in an amount sufficient to promote cell proliferation; Therefore, it is enhanced. The at least one agonist belongs to the group of 5HT receptor ligands. selected from.

さらに、該5HT受容体リガンドの群はペランセリン(pelanserin) 、ケタンセリン(ketanserin)、メチルセロトニン、8− OH−D  P A T。Furthermore, the group of 5HT receptor ligands includes pelanserin. , ketanserin, methylserotonin, 8-OH-D  P A T.

およびプロプラノロールを含む。and propranolol.

5HT2類似受容体に対する結合に有効なセロトニンの量を機能的に減少するこ と、または、当該5HT2類似受容体結合部位の有効性を機能的に低減すること による5HT2類似受容体を呈示する細胞の増殖を抑制的に調節することから成 る哺乳類のT細胞依存型病状の治療方法。当該細胞の増殖は、セロトニン合成を 阻害する酵素トリプトファンヒドロキシラーゼの活性を阻害する化合物の効果量 を投与することによって抑制される。当該化合物の例としてはp−クロロフェニ ルアラニンが挙げられる。Functionally reducing the amount of serotonin available for binding to 5HT2-like receptors or functionally reducing the effectiveness of the 5HT2-like receptor binding site. It consists of inhibiting the proliferation of cells exhibiting 5HT2-like receptors. A method for treating T cell-dependent pathologies in mammals. The proliferation of these cells requires serotonin synthesis. Effective amount of a compound that inhibits the activity of the inhibiting enzyme tryptophan hydroxylase can be suppressed by administering Examples of such compounds include p-chlorophenylene Lualanine is mentioned.

5HT2類似受容体結合部位の有効性を機能的に低減することによる5HT2類 似受容体を呈示する細胞の増殖を抑制的に調節することから成る哺乳類のT細胞 依存型病状の治療方法において、当該増殖が、該細胞増殖を阻止するために、当 該5HT2類似受容体に結合するに足る量の少なくとも一種のアンタゴニストを 導入することよって、抑制されることを特徴とする方法。当該少なくとも一種の アンタゴニストは5HT受容体リガンドの群から選択される。さらに、当該5H T受容体リガンドの群には、リタンセリン(ritanserin)、メスラジ ン(mesulergin)、ピレンベロン(pi renpe rone)  、スピペロン(spiper。5HT2s by functionally reducing the effectiveness of 5HT2-like receptor binding sites. Mammalian T cells consisting of suppressive regulation of the proliferation of cells presenting similar receptors In the method for treating a dependent disease state, the cell proliferation is inhibited by the cell proliferation. at least one antagonist in an amount sufficient to bind to the 5HT2-like receptor; A method characterized by being suppressed by introducing. the at least one type of The antagonist is selected from the group of 5HT receptor ligands. Furthermore, the 5H The group of T receptor ligands includes ritanserin, methradi mesulergin, pi renpe rone , spiperone (spiper.

ne)、および、当該5HT2類似受容体に対するミモトープおよび抗体が含ま れる。ne), and mimotopes and antibodies against the 5HT2-like receptor. It will be done.

5HT2類似受容体に対する結合に有効なセロトニンの量を機能的に減少するこ と、または、当該5 HT 2類似受容体結合部位の有効性を機能的に低減する ことにょる5HT2類似受容体を呈示する細胞の増殖を抑制的に調節することか ら成る哺乳類の腫瘍性病状の治療方法。Functionally reducing the amount of serotonin available for binding to 5HT2-like receptors or functionally reduces the effectiveness of the 5HT2-like receptor binding site. Is it possible to suppress the proliferation of cells exhibiting 5HT2-like receptors? A method of treating neoplastic conditions in mammals consisting of:

当該細胞の増殖は、セロトニン合成を阻害する酵素トリプトファンヒドロキシラ ーゼの活性を阻害する化合物の効果量を投与することによって抑制される。当該 化合物の例としてはp−クロロフェニルアラニンが挙げられる。The proliferation of these cells depends on the enzyme tryptophan hydroxyl, which inhibits serotonin synthesis. by administering an effective amount of a compound that inhibits the activity of the enzyme. concerned An example of a compound is p-chlorophenylalanine.

5HT2類似受容体結合部位の有効性を機能的に低減することによる5HT2類 似受容体を呈示する細胞の増殖を抑制的に調節することから成る哺乳類の腫瘍性 病状の治療方法において、当該増殖が、該細胞増殖を阻止するために、当該5H T2類似受容体に結合するに効果的な量の少なくとも一種のアンタゴニストを導 入することよって、抑制されることを特徴とする方法。当譲歩なくとも一種のア ンタゴニストは5HT受容体リガンドの群から選択される。さらに、当該5HT 受容体リガンドの群には、リタンセリン(ritanserin)、メスラジン (mesulergin)、ピレンペロン(pirenpe rone) 、ス ピベロン(spiperone)、および、当該5HT2類似受容体に対するミ モトープおよび抗体が含まれる。5HT2s by functionally reducing the effectiveness of 5HT2-like receptor binding sites. Mammalian neoplastic activity consisting of suppressive regulation of proliferation of cells displaying similar receptors In a method of treating a medical condition, the proliferation is inhibited by the 5H introducing an effective amount of at least one antagonist to bind to a T2-like receptor; A method characterized by being suppressed by entering. Even without making any concessions, it is a kind of a The antagonist is selected from the group of 5HT receptor ligands. Furthermore, the 5HT The group of receptor ligands includes ritanserin, mesladine (mesulergin), pirenpe rone, su spiperone and the mimetic for the 5HT2-like receptor. Includes motopes and antibodies.

5H−T2類似受容体結合部位の有効性を機能的に高めることから成る5HT2 類似受容体を呈示するT細胞の増殖を促進的に調節することによる哺乳類の免疫 欠損病状の治療方法。該細胞の増殖は、当該細胞増殖を促進するに十分な量の少 なくとも一種のアゴニストを導入することによって高められる。譲歩なくとも一 種のアゴニストは5HT受容体リガンドの群から選択される。さらに、該5HT 受容体リガンドの群はペランセリン(petanserin)、ケタンセリン( ketanserin)、メチルセロトニン、8−0H−DPAT、プロプラノ ロールおよびミアンセリンを含。5HT2 consists of functionally increasing the effectiveness of 5H-T2 analog receptor binding sites. Mammalian immunity by promoting the proliferation of T cells displaying similar receptors How to treat deficiency conditions. Proliferation of said cells is controlled by a small amount sufficient to promote said cell proliferation. Enhanced by the introduction of at least one type of agonist. At least one concession The species agonist is selected from the group of 5HT receptor ligands. Furthermore, the 5HT The group of receptor ligands includes petanserin, ketanserin ( ketanserin), methylserotonin, 8-0H-DPAT, proprano Contains roll and mianserin.

の なz[+ 第1図はジュルカソト細胞に結合している5HTを示すためのグラフである。該 ジュルカット細胞(1xlO6)は、50μMの5HT (非特定結合)の非存 在下(全結合)または存在下4℃で6分間(”H)5HTの指定濃度で培養した 。特定結合([])はこれら二つの値の差として表現されている。第1A図はス キャッチャードプロット(Scatchard plot)上に示した結果を示 す。Nonaz [+ FIG. 1 is a graph showing 5HT binding to Jurkasoto cells. Applicable Jurkat cells (1xlO6) in the absence of 50 μM 5HT (non-specific binding) Incubated with indicated concentrations of 5HT in the presence (total binding) or in the presence of 5HT for 6 min at 4°C (''H). . The specific combination ([]) is expressed as the difference between these two values. Figure 1A is Show the results shown on the Scatchard plot. vinegar.

第2図はジュルカット細胞に対する(”H)5HTの会合および解離の速度を示 す図である。(A)はジュルカット細胞に対する(”H)5HTの会合の経時変 化を示す。条件は、培養時間が異なること(ロ)以外は、「材料および方法」の 欄において記載したものである。Figure 2 shows the rate of association and dissociation of (“H)5HT to Jurkat cells. This is a diagram. (A) Time course of association of (“H)5HT to Jurkat cells. to show the The conditions are the same as in "Materials and Methods" except that the culture time is different (b). This is what is described in the column.

(B)はジュルカット細胞からの(”H)5HT結合(ロ)の解離の経時変化を 示す。(B) shows the time course of dissociation of (“H)5HT binding (b) from Jurkat cells. show.

第3図はジュルカット細胞における細胞内Ca”+イオン濃度についての0KT 3および5HTの作用の比較を示す図である。データ収集を開始してから約5秒 後に、0KT3 (lμg/ml)または5HT (5μM)を直接細胞に添加 して、データを合計4分にわったて採集した。次いで、相対細胞内カルシウム濃 度を紫色蛍光(カルシウム遊離インド−1(indo−1))と青色蛍光(カル シウム遊離インド−1)との対比から計算して、時間の関数としてプロットした 。Figure 3 shows the intracellular Ca''+ ion concentration in Jurkat cells at 0KT. FIG. 3 is a diagram showing a comparison of the effects of 3 and 5HT. Approximately 5 seconds after starting data collection Afterwards, 0KT3 (lμg/ml) or 5HT (5μM) was added directly to the cells. The data were collected over a total of 4 minutes. Then, the relative intracellular calcium concentration Violet fluorescence (calcium free indo-1 (indo-1)) and blue fluorescence (calcium free indo-1) Calculated from the contrast with sium release ind-1) and plotted as a function of time. .

第4図は細胞内Ca’+における5HT媒介の増加の濃度依存性を示す図である 。インド−1を付与したジュルカット細胞を37℃で2分間5HT存在下に培養 した。Figure 4 shows the concentration dependence of 5HT-mediated increase in intracellular Ca'+. . Jurkat cells loaded with Indo-1 were cultured at 37°C for 2 minutes in the presence of 5HT. did.

増加した細胞内Ca ” (■)を有する細胞と全細胞内Ca2+濃度(ロ)と の比率を「材料および方法」に記載するような装置(FAC3TARP I u  s)を用いて蛍光の増加を計測することによって決定した。この場合、陽性細 胞は375乃至425nMのCa”+を含み、陰性細胞は150乃至175nM のCa’“を含むのもとした。Cells with increased intracellular Ca (■) and total intracellular Ca2+ concentration (b) The ratio of s) by measuring the increase in fluorescence. In this case, the positive cells contain 375-425 nM Ca''+, negative cells contain 150-175 nM It was assumed that the term "Ca'" was included.

第5図はフォスファチジルイノシトールターンオーバーにおける5HT媒介増加 を示す図である。ジュルカット細胞を−H)イノシトール存在下48時間ラベル 処理した。次いで、ラベル処理した細胞を3BMの5HT(ロ)または1Hg/ mlの0KT3 (■)の存在下に所定時間培養し、その後、集菌してアニオン 交換クロマトグラフィによりIPレベルの分析を行った。Figure 5 shows 5HT-mediated increase in phosphatidylinositol turnover. FIG. -H) Labeling Jurkat cells for 48 hours in the presence of inositol Processed. Next, the labeled cells were treated with 3BM of 5HT (b) or 1Hg/ Culture in the presence of ml of 0KT3 (■) for a specified period of time, then collect the bacteria and collect the anion. IP level analysis was performed by exchange chromatography.

第6A図はT細胞の胚(blasts)への3H−5HTの特定結合を示す図で ある。Figure 6A shows specific binding of 3H-5HT to T cell blasts. be.

第6B図はT細胞の胚へのケタンセリンの結合を示す図である。FIG. 6B shows the binding of ketanserin to T cell embryos.

第6A−1図および第6B−1図は第6A図および第6B図からそれぞれ得られ た結合データのスキャッチャード分析を示している。Figures 6A-1 and 6B-1 are obtained from Figures 6A and 6B, respectively. Scatchard analysis of the combined data is shown.

第7図は種々の5HT受容体リガンドを用いた競争実験を示す図である。FIG. 7 shows a competition experiment using various 5HT receptor ligands.

第8図はPBLにおける5HTの同定を示す図である。FIG. 8 is a diagram showing the identification of 5HT in PBL.

第9図はPBLの増殖についての5HTの作用を示す図である。FIG. 9 is a diagram showing the effect of 5HT on proliferation of PBL.

第10図は5HT受容体に結合し、T細胞増殖を促進または抑制する類似体を示 す図である。Figure 10 shows analogs that bind to 5HT receptors and promote or suppress T cell proliferation. This is a diagram.

第11図はPWMによるCDS+サプレッサT細胞の活性化が5HTを必要とす ることを示す図である。Figure 11 shows that activation of CDS+ suppressor T cells by PWM requires 5HT. FIG.

第12図は5 HTに結合する類似体の存在下または非存在下に0KT3により 刺激されたPBLの作用を示す図である。Figure 12 shows that 0KT3 was used in the presence or absence of an analog that binds to 5HT. It is a figure showing the effect of stimulated PBL.

第13A図および13B図は腫瘍細胞上のセロトニン受容体の特性を示す図であ る。(A)ジュルヵット細胞を対数増殖期から採取し、3H−5HT (◆)、 1251−LSD (◇)、3H−ケタンセリン(■)、3H−80H−1)P AT (ロ)またL!3H−DOB(ロ) (NEN)の存在下で50 Mの5 HTの存在下または非存在下に6分間、O乃至4℃で、RPM11640媒体の 全容積600μm中において3X10’/mlに培養した。当該期間中(図示せ ず)に結合平衡に到達した。次いで、細胞をニトロセルロース膜(ミリボア(M illipore))上に収集し、試験管およびフィルタを冷却したPB84m lによりそれぞれ3回洗浄した。アスコルビン酸塩(100μM)を当該洗浄液 に加え、フィルタへの非特定結合を減少した(15)。この結果、特定結合が全 結合と50HM5HTの存在下に観察された結合との差として表現される。Figures 13A and 13B are diagrams showing the characteristics of serotonin receptors on tumor cells. Ru. (A) Jurkat cells were collected from the logarithmic growth phase, 3H-5HT (◆), 1251-LSD (◇), 3H-ketanserin (■), 3H-80H-1)P AT (b) L again! 50 M in the presence of 3H-DOB (B) (NEN) of RPM 11640 medium in the presence or absence of HT for 6 minutes at 0 to 4°C. Cultures were grown at 3×10′/ml in a total volume of 600 μm. During the relevant period (see diagram) Binding equilibrium was reached at 1). The cells were then coated with a nitrocellulose membrane (millibore (M PB84m (illipore)) and cooled the test tube and filter. The cells were washed three times each with l. Ascorbate (100 μM) was added to the washing solution. In addition, non-specific coupling to the filter was reduced (15). As a result, all specific bonds Expressed as the difference between binding and the binding observed in the presence of 50HM5HT.

第13A−1図は5HT (ロ)とケタンセリン(◆)を用いた結合データのス キャッチャード分析を示す。Kdは130nMであった。Figure 13A-1 is a screenshot of combined data using 5HT (b) and ketanserin (◆). Demonstrate catchard analysis. Kd was 130 nM.

(B)細胞を100μnMの38−5HTおよび所定濃度の5HTC口)、ケタ ンセリン(ロ)、a−メチルセロトニン(◆)、メスラジン(■)、80H−D PAT(◇)およびリタンセリン(ロ)等の5HT受容体リガンドの存在下O℃ で6分間培養し、上記の如く結合3 H−5HTを決定した。その後、50HM の5HT存在下で特定結合を決定した。(B) Cells were cultured with 100 μnM 38-5HT and the indicated concentration of 5HTC) encerine (b), a-methylserotonin (◆), mesladine (■), 80H-D O℃ in the presence of 5HT receptor ligands such as PAT (◇) and ritanserin (b) and bound 3H-5HT was determined as described above. After that, 50HM Specific binding was determined in the presence of 5HT.

第14図は5HT受容体リガンドによる腫瘍細胞増殖のリタンセリン媒介による 阻害の逆反応を示す図である。Figure 14 shows ritanserin-mediated tumor cell proliferation by 5HT receptor ligands. FIG. 3 is a diagram showing the reverse reaction of inhibition.

ME180細胞をリタンセリン(20HM)の存在下または非存在下で、所定濃 度の5HT ([])、ペランセリン(◆)、ケタンセリン(ロ)、ミアンセリ ン(◇)、80H−DPAT (■)、プロプラノロール(ロ)等の5HT受容 体リガンドの存在下または非存在下に48時間培養した。次いで、1μCiの” H−TdRを用いて当該培養の最後の6時間でラベル処理を行い、その後、収集 してDNA内への取込みを測定した。結果をリタンセリンまたは他のリガンドの 非存在下におけるME180細胞培養への”H−TdRの取込み制御の割合とし て表現した。ME180細胞による3H−TdRの取込みはリタンセリンの非存 在下では40679+/−2548であり、リタンセリンの存在下では2215 +/−433であった。したがって、これらのリガンドはそれらの特定5HT受 容体部位に11−1Onの間で作用する。ME180 cells were cultured at specified concentrations in the presence or absence of ritanserin (20HM). degree 5HT ([]), perancerin (◆), ketanserin (b), mianseri 5HT receptors such as (◇), 80H-DPAT (■), propranolol (b), etc. The cells were cultured for 48 hours in the presence or absence of body ligand. Then 1 μCi” Labeling was performed during the last 6 hours of the culture using H-TdR and then harvested. The incorporation into DNA was measured. Results of ritanserin or other ligands As the rate of control of H-TdR uptake into ME180 cell culture in the absence of It was expressed as 3H-TdR uptake by ME180 cells occurs in the absence of ritanserin. 40679+/-2548 in the presence of ritanserin and 2215+/-2548 in the presence of ritanserin. It was +/-433. Therefore, these ligands have their specific 5HT receptors. It acts on the body part between 11-1 On.

第15図はT細胞胚の細胞内cAMP含有量における5HT依存変化を示す図で ある。Figure 15 shows 5HT-dependent changes in intracellular cAMP content in T cell embryos. be.

第16図は5HT添加後のT細胞培養におけるcAMP含有量(0)および増殖 (・)の変化の割合を示す図である。Figure 16 shows cAMP content (0) and proliferation in T cell culture after addition of 5HT. It is a figure showing the rate of change of (.).

第17図はガンマインターフェロン(IFN)への抗増殖作用の阻害を示す図で ある。(A)ME180細胞を300μMトリプトファン(■)または5μM5 Htp(◆)の存在下または非存在下(ロ)でIFNを用いて3日間培養した。Figure 17 is a diagram showing the inhibition of the antiproliferative effect on gamma interferon (IFN). be. (A) ME180 cells were treated with 300 μM tryptophan (■) or 5 μM 5 The cells were cultured for 3 days using IFN in the presence or absence (b) of Htp (♦).

(B)ME180細胞を異なる濃度の5 Ht p ([])またはトリプトフ ァン(◆)の存在下て100 u / m lのIFNを用いて3日間培養した 。そノ後、1μCiの”H−TdRにより4時間処理した後、対照の細胞増殖は ”H−TdRの88765±1256cpmとなった。(B) ME180 cells were treated with different concentrations of 5Htp ([]) or tryptophore. Cultured for 3 days using 100 u/ml IFN in the presence of fan (◆) . Thereafter, after treatment with 1 μCi of “H-TdR for 4 hours, cell proliferation in the control “H-TdR was 88,765±1,256 cpm.

第18図は5Htpの能力比較とガンマインターフェロンの抗増殖作用を逆転す るための58tpの代謝物質を示す図である。ME180細胞を所定濃度の5H tp(○) 、5HT (・)、メラトニン(■)、N−メチルセロトニン(ロ )または5−ヒドロキシインドール酢酸(×)の存在下または非存在下に100 u/mlのIFNを用いて3日間培養した。対照の増殖は73456±2289 cpmであり、IFN存在下の増殖では16894±1145であった。Figure 18 shows a comparison of the ability of 5Htp to reverse the antiproliferative effect of gamma interferon. FIG. 5 shows the metabolites of 58tp for ME180 cells were treated with 5H at a specified concentration. tp (○), 5HT (・), melatonin (■), N-methylserotonin (Ro) ) or 100 in the presence or absence of 5-hydroxyindoleacetic acid (×) Cultured for 3 days using u/ml IFN. Control growth was 73456±2289 cpm, and 16894±1145 when grown in the presence of IFN.

第19図はガンマIFNを用いた培養後のトリプトファンおよび5HTの細胞損 失を示す図である。ME180細胞を100u/mlのIFN存在下(○)また は非存在下(○)に所定日数経過後した後、採取して、HP■、Cにより5HT 含有量(上図)およびトリプトファン含有量(下図)をそれぞれ分析した。Figure 19 shows cell loss of tryptophan and 5HT after incubation with gamma IFN. FIG. ME180 cells were incubated in the presence of 100 u/ml IFN (○) or After a predetermined number of days have passed in the absence of (○), it is collected and 5HT The content (upper figure) and tryptophan content (lower figure) were analyzed, respectively.

第20図は5 Ht pがガンマIFNを用いる培養において細胞外トリプトフ ァンの損失を阻害しないことを示す図である。M E 180細胞を100u/ mlのIFN存在下(・、口)または非存在下(0)で、10HM5Ht pの 存在下(・)または非存在下(ロ)に培養した。Figure 20 shows that 5Htp is extracellular tryptophore in culture using gamma IFN. FIG. M E 180 cells 100u/ ml of 10HM5Htp in the presence (·, oral) or absence (0) of IFN. Cultured in the presence (・) or absence (b).

培養媒体を所定日数経過後に採取し、HPLCによりトリプトファン含有量を分 析した。The culture medium was collected after a specified number of days, and the tryptophan content was determined by HPLC. analyzed.

第21図は5Htpが低トリプトファンによって細胞増殖の阻害を逆転すること を示す図である。ME180細胞をRPMI−1640媒体中で、所定量のトリ プトファンを用いて、3μMの58tpの存在下(・)または非存在下(○)に 48時間培養した。結果を2日目の6時間の処理後の”H−TdRの取込みとし て示した。Figure 21 shows that 5Htp reverses the inhibition of cell proliferation by low tryptophan. FIG. ME180 cells were cultured in RPMI-1640 medium with a predetermined amount of aliquots. using putophane in the presence (·) or absence (○) of 3 μM 58tp. Cultured for 48 hours. The results are expressed as “H-TdR uptake” after 6 hours of treatment on the second day. It was shown.

Bの−細な3日 まず5HT受容体亜類型がヒト科Tリンパ球上に同定し得るか、また、5HT受 容体がシグナルトランスダクションに媒介し得るかを決定するための検討を行っ た。B-3 short days First, we need to determine whether 5HT receptor subtypes can be identified on human T lymphocytes and whether 5HT receptor subtypes can be identified on human T lymphocytes. A study was conducted to determine whether the condition could mediate signal transduction. Ta.

ここで、5HTはセロトニン若しくは5−ヒドロキシチブタミンを示し、DOB は(R)−(−) −4−ブロモ−2,5−ジメトキシ−アンフェタミン、80 H−DPATは8−ヒドロキシ−2−(ジ−n−プロピルアミン)テトラリン、 IPはリン酸イノシトール、IC50は50%にまで応答を阻害するに要する濃 度、さらに、EC50は最大応答の半分を生じるに要する濃度をそれ!H−5h  t (20Ci/mmo l) 、”H−ケタンセリン(65Ci/mmo  り 、”’−1リセルグ酸ジアミ ト (LSD、2200Ci/mmo l)  、 ”H−80H−DPAT (128Ci/mmo l)および3H−ミオ −イノシトール(48Ci/mmo I)をニューイングランドニュークリア( New Eng I and Nuclear)から入手した。Fe2.RPM I 1640およびL−グルタミンをギブコ(GIBCO)から入手した。また 、インド−1をシグマケミカル社(S i gma Cehmical Co、 )から入手した。Here, 5HT indicates serotonin or 5-hydroxytibutamine, and DOB is (R)-(-)-4-bromo-2,5-dimethoxy-amphetamine, 80 H-DPAT is 8-hydroxy-2-(di-n-propylamine) tetralin, IP is inositol phosphate, IC50 is the concentration required to inhibit the response by 50%. In addition, EC50 is the concentration required to produce half the maximum response! H-5h t (20Ci/mmol), “H-ketanserin (65Ci/mmol) "'-1 lysergic acid diamide (LSD, 2200Ci/mmol) , “H-80H-DPAT (128Ci/mmol) and 3H-myo -Inositol (48Ci/mmo I) was added to New England Nuclear ( New Eng I and Nuclear). Fe2. RPM I1640 and L-glutamine were obtained from GIBCO. Also , India-1 to Sigma Chemical Co., Ltd. ).

■ ジュルカット細胞をアメリカンタイプカルチャコレクション(American  Type Cu1tureCo I 1ect 1on)から入手し、10% FC3添加で抗体の非存在下かつ1mMグルタミンの存在下にRPM11640 媒体中において連続的な培養状態に維持ジュルカット細胞の1−21培養体を遠 心分離により採取し、EDTA1mM含有、pI−(7,5(7)I−リス塩酸 10mM液に懸濁して、氷上で10分間培養し、その後、ホモゲナイザ(Dou nce homogenizer)で均一化して全量で2020−4Oにした。■ Jurkat cells were collected from the American Type Culture Collection (American Obtained from Type CultureCo I 1ect 1on) and 10% RPM11640 in the absence of antibody and in the presence of 1mM glutamine with the addition of FC3. Displace 1-21 cultures of Jurkat cells maintained in continuous culture in medium. Collected by heart isolation, containing 1mM EDTA, pI-(7,5(7)I-Lis hydrochloride) Suspend in 10mM solution and incubate on ice for 10 minutes, then use a homogenizer (Dou homogenizer) to make the total amount 2020-4O.

その後、該ホモゲネートを110000xで10分間遠心分離して、核と細胞く ずを除去した。この上澄み液をさらに1100000xで1時間遠心分離した。The homogenate was then centrifuged at 110,000x for 10 minutes to separate the nuclei and cells. removed. The supernatant was further centrifuged at 1,100,000x for 1 hour.

次いで、該ベレットをEDTA含有のトリス塩酸バッファに懸濁して7.7mg /mlの蛋白濃度にした。この試料膜を結合アッセイに使用するまで一70℃で 保存した。Next, the pellet was suspended in EDTA-containing Tris-HCl buffer to give 7.7 mg. The protein concentration was set at 1/ml. The sample membrane was kept at -70°C until used for binding assays. saved.

糊企ヱユ±4 ジュールカット細胞を対数増殖期の培養体から採取し、全量600μmで3,0 xlO’/mlに、若しくは、RPM11640存在下0乃至4℃で、”H−5 HT存在下に、5HTアゴニストまたはアンタゴニスト(詳細はテキスト参照) 存在下または非存在下で6分間培養した。当該培養中に結合平衡に到達した。ま た、細胞を3H−5HTで培養することにより置換反応を行い、次いで、テキス トに記載のラベル化されていないアゴニストまたはアンタゴニストでの培養を行 った。その後、細胞をグラスファイバフィルタ上に収集し、試験管およびフィル タを冷却したPB34mlで3回洗浄した。次いで、”5I−LSD若しくは” H−80H−DPAT結合が評価された時点でアスコルビン酸塩(100μM) を当該洗浄液に加えてフィルタに対する非特定結合を減少した(14−15)。Paste project ±4 Joule-cut cells were harvested from a culture in the logarithmic growth phase, and the total volume was 600 μm. xlO'/ml or at 0 to 4°C in the presence of RPM11640. 5HT agonist or antagonist in the presence of HT (see text for details) Incubation was carried out for 6 minutes in the presence or absence. Binding equilibrium was reached during the culture. Ma In addition, a substitution reaction was performed by culturing the cells with 3H-5HT, and then the text Culture with unlabeled agonist or antagonist as described above. It was. The cells are then collected on a glass fiber filter, the test tube and the filter The container was washed three times with 34 ml of chilled PB. Next, “5I-LSD or” Ascorbate (100 μM) at the time H-80H-DPAT binding was assessed. was added to the wash solution to reduce non-specific binding to the filter (14-15).

各フィルタの洗浄時間は20秒以下である。また、′H−5HTのジュルカット 細胞に対する全結合の代表値は10100n全添加cpm数:10’)の”H− 5HT存在下110000−15000cpであった。なお、100μM5HT  (非特定結合)の存在下では約1500−3000cpmが結合したままであ った。次に、会合速度についての検討をするため、細胞を100nMの3H−5 HT存在下で100μMの5HT存在下および非存在下に種々の時間で培養した 。次いで、結合反応をPBSの添加により停止して、濾過した。同様に、解離速 度について検討するため、細胞を1100nの5H−5HT存在下で0乃至4℃ で10分間培養した。その後、5HTを最終濃度が100μMとなるまで添加し 、反応を冷却したPBSを加えて停止し、さらにサンプルを濾別した。このよう にして、結合アッセイを最小3回二重に行ない、該二重のサンプルは互いに5% 以内であった。The cleaning time for each filter is 20 seconds or less. Also, 'H-5HT Juru cut The typical value of total binding to cells is 10100n total added cpm number: 10') of "H- It was 110,000-15,000 cp in the presence of 5HT. In addition, 100 μM 5HT (non-specific binding), approximately 1500-3000 cpm remains bound. It was. Next, to examine the association rate, cells were incubated with 100 nM 3H-5. Cultured in the presence and absence of 100 μM 5HT for various times. . The binding reaction was then stopped by the addition of PBS and filtered. Similarly, the dissociation rate To examine the temperature, cells were incubated at 0 to 4°C in the presence of 1100 n of 5H-5HT. The cells were incubated for 10 minutes. Then, 5HT was added to a final concentration of 100 μM. Then, the reaction was stopped by adding cold PBS and the sample was filtered. like this Binding assays were performed in duplicate a minimum of three times, with the duplicate samples 5% of each other. It was within

ジュルカット細胞の試料膜を用いての結合アッセイを、総蛋白量500乃至70 0μg/mlでpH7,5のトリス塩酸バッファ中で行うことを除いて、同様の 手順で行った。Binding assays using sample membranes of Jurkat cells were performed with total protein content ranging from 500 to 70%. Similar procedures were carried out in Tris-HCl buffer, pH 7.5 at 0 μg/ml. I followed the steps.

1枇帆立ま上止11 細胞内Ca+十の移動化を改良した装置(Bect。1 scallop top 11 A device with improved intracellular Ca + mobilization (Bect.

n Dickinson FAC8TARPlus)を用いたインド−1法によ って評価した(16−17)。n Dickinson FAC8TARPlus) using the India-1 method. It was evaluated as follows (16-17).

つまり、ジュルカット細胞を37℃で45分間HEPES10mM存在下DME M中で2μMのインド−1により培養し、その後、3回洗浄して106個/ml でPBS中に懸濁した。その一部(1ml)を37℃に保ち、修飾したサンプル 配置場所に保持して、データ収集を開始した。データ収集を始めてから約5秒後 に、5HTまたは0KT3 (濃度についてはテキスト参照)を当該サンプルに 直接添加し、全体で4分間にわたりデータ測定をした。蛍光発光は集光レンズに 対して45°に配置した長光路フィルタ(455nmカットオフ)によって分割 され、2個の帯域光路フィルタBP485/22およびBP395/20を通し て同時に測定される。次いで、収集した一連のデータを処理して紫色蛍光(39 5/20nm)の青色蛍光(485/22nm)に対する比率値を時間の関数と して得る。このようにすることにより、カルシウム濃度を以下の式により計算す る。Briefly, Jurkat cells were incubated with DME in the presence of 10 mM HEPES for 45 minutes at 37°C. cultured with 2 μM Indo-1 in M and then washed 3 times to 106 cells/ml. and suspended in PBS. A portion (1 ml) of the modified sample was kept at 37°C. I held it in place and started collecting data. Approximately 5 seconds after starting data collection then add 5HT or 0KT3 (see text for concentration) to the sample. Direct addition and data acquisition over a total of 4 minutes. Fluorescent light is emitted by a condensing lens split by a long optical path filter (455nm cutoff) placed at 45° to and passes through two bandpass filters BP485/22 and BP395/20. measured at the same time. The set of collected data is then processed to produce violet fluorescence (39 5/20 nm) to blue fluorescence (485/22 nm) as a function of time. and get it. By doing this, the calcium concentration can be calculated using the following formula. Ru.

[Ca”+コ =Kd ・ (R−Rm i n) / (Rma x−R)・ S f 2/S b 2 上式において、Kdは解離定数(250nm)であり、R,RminおよびRm axは、休止状態、ゼロおよび飽和カルシウム濃度におけるそれぞれの蛍光強度 比率の値であり、Sf2/Sb2はカルシウム遊離およびカルシウム結合染料の 蛍光強度の比率値を示す(18)。[Ca”+ko=Kd・(R-Rm i n)/(Rma x-R)・ S f 2/S b 2 In the above formula, Kd is the dissociation constant (250 nm), R, Rmin and Rm ax is the respective fluorescence intensity at resting state, zero and saturated calcium concentration Sf2/Sb2 is the value of the ratio, Sf2/Sb2 is the ratio of calcium-free and calcium-binding dyes. Ratio values of fluorescence intensity are shown (18).

また、全ポピユレーションに対する個々のジュルカット細胞の応答についての5 )4Tの濃度の影響を評価した。We also investigated the response of individual Jurkat cells to total population. ) The influence of the concentration of 4T was evaluated.

この場合、細胞を37℃に保ち、5)FTを加えて2分間培養した。その後、1 0000個のデータリストを収集した。次いで、該データを紫色蛍光と青色蛍光 の比により分析し、標準偏差閾値の約2倍に相当する細胞数の割合をめた。これ らの実験は最小3回行い同様の結果を得た。In this case, the cells were kept at 37°C, and 5) FT was added and incubated for 2 minutes. After that, 1 0000 data lists were collected. The data is then divided into violet fluorescence and blue fluorescence. The ratio of the number of cells corresponding to approximately twice the standard deviation threshold was determined. this The experiment was conducted a minimum of three times and similar results were obtained.

リン イノシトールのレベル ジュルカット細胞(2x 10’/m l )を10μCi/mlの3H−ミオ −イノシトールを用いてRPMII640媒体中で1%透析FC3存在下48時 間ラベル化した。その後、細胞を採集し、Fe2無しのRPMII640媒体中 で2回洗浄した。次いで、該細胞をFC3無しの媒体中に37℃、lXl0’/ mlで懸濁し、テキストに記載の如<5HTで処理した後、遠心分離により数回 収集した。その後、抽出物を7規定KOHで中和し、上述のようにしてアニオン 交換クロマトグラフィによりIPのレベル値を分析した(19)。二重に作成し たサンプルは5%以内であり、当該リン酸イノシトールのレベル値の測定は3回 行い同様の結果を得た。Phosphorus inositol level Jurkat cells (2x 10'/ml) were treated with 10 μCi/ml of 3H-Myo. - 1% dialysis in RPM II 640 medium using inositol in the presence of FC3 for 48 hours Labeled in between. Thereafter, cells were harvested and placed in RPMII640 medium without Fe2. Washed twice with The cells were then incubated in medium without FC3 at 37°C, lXl0'/ ml and treated with <5HT as described in the text, followed by centrifugation several times. collected. The extract was then neutralized with 7N KOH and anionized as described above. IP level values were analyzed by exchange chromatography (19). Create double The level of inositol phosphate was measured three times. and obtained similar results.

PB琶交匁11 PBMCを正常な提供者から得た血液中のバッフイコートから得た。次いで、当 該PBMCをリンパ単離勾配(isolymph gradients (Ph armacia、Piscataway、NJ))上で単離して、PBS中で2 回洗浄した。その後、10%DMSO−90%FC3(GIBCO,Grand  l5land、NY)の溶液中に懸濁し、使用するまで液体窒素中に保存した 。当該液体窒素中での保存後のPBMCの細胞表面Agおよび増殖応答は新鮮な リンパ球特性と同一であった。PB Wako Momme 11 PBMC were obtained from blood buffy coats obtained from normal donors. Next, the current The PBMCs were subjected to lymph isolation gradients (Ph armacia, Piscataway, NJ)) and diluted in PBS. Washed twice. After that, 10% DMSO-90% FC3 (GIBCO, Grand 15land, NY) and stored in liquid nitrogen until use. . Cell surface Ag and proliferation responses of PBMCs after storage in liquid nitrogen were compared with fresh The lymphocyte characteristics were identical.

PWMおよびPHAをGIBCO(OKT3をマウス(BALB/c m1ce )の腹水から得て、1:1000の希釈で使用)から得て、PBS中で1/80 に希釈し、培養に使用した。また、精製した組換または天然IL−2をボーエリ ンガーマンハイム(Boehringer Mannheim(Indiana polis。PWM and PHA from GIBCO (OKT3 from mouse (BALB/c m1ce) ) and used at a dilution of 1:1000) and diluted 1/80 in PBS. It was diluted and used for culture. Additionally, purified recombinant or natural IL-2 can be Boehringer Mannheim (Indiana) polis.

IN))から購入した。I L−2活性の1単位を24時間アッセイにおけるI L−2依存型細胞系CTLLの最大増殖を50%生じさせるに要する量として定 義した。Purchased from IN)). 1 unit of I L-2 activity in a 24 hour assay Determined as the amount required to cause 50% maximal proliferation of the L-2 dependent cell line CTLL. I justified it.

なお、精製したrIL−1、rIL−4およびrIL−6をゲンザイム(Gen zyme (Boston、MA))から入手した。In addition, purified rIL-1, rIL-4, and rIL-6 were purified using Genzyme (Genzyme). Zyme (Boston, MA).

1囚痒I PBMC,CD4+細胞MCまたはCD4+細胞を10%FC3添加で抗体無添 加のRPMI−1640媒体中、3乃至8日間、フラットボトム96−ウェルミ クロカルチャープレート(Becton Dickins。1 Itching I PBMC, CD4+ cells MC or CD4+ cells with 10% FC3 added without antibody flat-bottom 96-well microorganisms for 3 to 8 days in Canadian RPMI-1640 medium. Cloculture plate (Becton Dickins.

n)中で、5X10’個細胞/mlの濃度に、空気中5%COの加湿雰囲気中に おいて総容量100乃至200μlで培養した。次いで、(’H)TdRの取込 みを測定するために、ICiの(8H)チミジン(2Ci/mmol、Amer sham International、Indianapol is、IN) を、細胞がフィルタ紙(PHD cell harvester、Chambr  idge、MA)上に採取される18時間乃至20時間前に二重に、培養体に 添加した。データは当該二重に作成したサンプルの(’H)TdRの取込みの平 均値を示している。なお、当該二重に作成したサンプルは5%以内であり、さら に、これらの実験を少なくとも3回行って同様の結果を得ており、次の実験にお いて陽性調節として再現した。n) in a humidified atmosphere of 5% CO in air to a concentration of 5 x 10' cells/ml. The cells were cultured in a total volume of 100 to 200 μl. Then, uptake of ('H)TdR (8H)thymidine (2Ci/mmol, Amer sham International, Indianapolis, IN) , the cells are filter paper (PHD cell harvester, Chambr idge, MA) in duplicate, 18 to 20 hours before harvesting. Added. The data represent the average uptake of ('H)TdR in the duplicate sample. Shows the average value. In addition, the number of duplicate samples is within 5%, and We have conducted these experiments at least three times with similar results, and we will use them in the next experiment. This was reproduced as a positive control.

微生物アッセイへの適用:16 :1706゜結合ア・ンセイをジュルカット細 胞についてp15−16に記載したと同様に行った。Application to microbial assay: 16:1706° The same procedure as described on pages 15-16 was performed for cells.

表11 5 HT合成の阻害は腫瘍細胞系による増殖の阻害をもたらす。ME180頸管 がん腫細胞をATCCから入手し、()に記載の如く保持した。次いで、該細胞 を48時間培養し、5HT含有量か”H−TdRの添加による細胞増殖のいずれ かについて分析をおこなった。3 H−TdR:媒体と細胞を分離し、5HTを 抽出して、蛋白質を70%エタノールで沈殿させた。その後、サンプルを装置( S p e e d−v a c、 )を用いて濃縮した。Table 11 5. Inhibition of HT synthesis results in inhibition of proliferation by tumor cell lines. ME180 cervical canal Carcinoma cells were obtained from ATCC and maintained as described in (). Then, the cells were cultured for 48 hours, and cell proliferation was determined by either 5HT content or the addition of H-TdR. We conducted an analysis on this. 3H-TdR: Separate the medium and cells and add 5HT. After extraction, proteins were precipitated with 70% ethanol. Then transfer the sample to the device ( It was concentrated using SP e d-v a c, ).

次いで、サンプルの5HT含有量を、280nm励起フィルタと360nm発光 フィルタとを有する蛍光検出装置(Beckman)を備えたHPLC(Hew l e t−Packard)によって分析した。A(リン酸によりpH3,0 に調節した50mM)リエチルアミン)とB(40%メタノールでpH3,0の 50mM)−リエチルアミン)とから成る二つの移動相を用意した。勾配はA1 00%からB100%まで25分間で線形とした(51)。標準的な保持時間を 次のようにした。5 HT。The 5HT content of the sample was then determined using a 280 nm excitation filter and a 360 nm emission filter. HPLC (Hew The analysis was carried out by L e t-Packard). A (pH 3.0 with phosphoric acid) (50mM) ethylamine) and B (adjusted to pH 3.0 with 40% methanol) Two mobile phases were prepared consisting of 50mM)-ethylamine). The slope is A1 00% to B100% in 25 minutes (51). Standard retention time I did it like this: 5 HT.

3.50分、50■4−トリプトファン、4.77分、トリプトファン、9.1 1分、50H−インドール酢酸、12.5分、および、メラトニン、21.69 分。この場合も、細胞を培養の最後の4時間において1μCiの3 H−T d  Rで処理し、DNAへの取込みを測定するために採取した。次いで、培養を三 重に行った。トリプトファンからの実際の5HT合成を3−Hトリプトファンで 細胞を培養することによって確認し、可溶性成分を抽出して、メチルプロパノ− ルー酢酸エチル−水酸化アンモニウム−水(45−30−17−8)の溶媒シス テムでの薄層クロマトグラフィによって3H−5HTを分析した(52)。この ような条件下において、トリプトファンのRf値i;to、03であり、5HT のRf値は0゜50であった。3.50 minutes, 50■4-tryptophan, 4.77 minutes, tryptophan, 9.1 1 min, 50H-indoleacetic acid, 12.5 min, and melatonin, 21.69 Minutes. Again, cells were treated with 1 μCi of 3H-T d during the last 4 hours of culture. The cells were treated with R and collected to measure their incorporation into DNA. Then, the culture was carried out for three times. It went seriously. Actual 5HT synthesis from tryptophan with 3-H tryptophan Confirmed by culturing cells, extracting soluble components, and extracting methylpropanol. Solvent system of ethyl acetate-ammonium hydroxide-water (45-30-17-8) 3H-5HT was analyzed by thin layer chromatography on a TEM (52). this Under these conditions, the Rf value of tryptophan is i;to, 03, and 5HT The Rf value was 0°50.

モデルシステムとして、形性転換したヒト科ジュルカットT細胞に対する”H− 5HTの結合を調べ、T細胞が当該神経伝達物質のための特定結合部位を表現で きるかを決定した。これらの細胞は、抗原やマイトゲンの刺激によるシグナルト ランスダクションの機構を探求するために、これまで多くの研究者によって使用 されてきた(20−21)。第1図示の結果はジュルカット細胞に対する”H− 5HTの結合が検出可能であり、当該結合か飽和し得ることを示している。また 、所定濃度(第1図)の5HTの存在下における”H−5HT結合の量からラベ ル化されていない5HTの100μM存在下における”H−5HT結合の量を差 し引くことによって、特定結合を決定した。なお、これらの58Tの濃度におい ては、当該特定結合は全結合の約70−80%であり、3H−5HTの最大結合 比率には培養して5分以内に到達する(第2図)。また、5HTの結合は1乃至 2μMの5HTにおいて最大となる。第1A図は当該結合データのスキャノチャ ードプロットを示している。また、3種の分離した実験からのデータにより、解 離定数(Kd)の平均値90nMを得た。さらに、’H−5HTのジュルカソト 細胞に対する結合部位密度は106個の細胞当たり130fmolすなわち1細 胞当たり5oooo受容体であった。加えて、これらデータについてのヒルスロ ープ(Hi l l s 1ope)値は0.8であった(図示せず)。さらに 、アフィニティ定数や受容体密度についての影響を調べるために種々の結合条件 を検討した。その結果、2mMまでのMg++イオン、10μMまでのバルンリ ン、3mMまでのEDTA若しくは10μMまでのイミブラミン(5HTの捕捉 を阻止する)の添加は結合定数や受容体密度を変更しないことがわかった(デー タ示さず)。なお、ここに示す全ての結果は対数増殖期から由来したものである 。また、10’個/mlを超える培養体から得たジュルカット細胞は5HT受容 体が実質的に少ない。さらに、これらの培養体はまたCa++イオンを移動した りリン酸イノシトールの濃度を増加することによって5HTに対して応答しない 。As a model system, “H- 5HT binding was investigated to determine whether T cells express specific binding sites for the neurotransmitter. I decided to do it. These cells respond to signal triggers stimulated by antigens and mitogens. Previously used by many researchers to explore the mechanism of transduction (20-21). The results shown in the first figure indicate "H-" for Jurkat cells. Binding of 5HT is detectable, indicating that the binding can be saturated. Also , the label was determined from the amount of H-5HT binding in the presence of 5HT at a given concentration (Figure 1). Difference in the amount of H-5HT binding in the presence of 100 μM of uncoupled 5HT Specific bonds were determined by subtraction. In addition, these 58T concentrations Therefore, the specific binding is about 70-80% of the total binding, and the maximum binding of 3H-5HT is The ratio is reached within 5 minutes of incubation (Figure 2). In addition, the bond of 5HT is 1 to Maximum at 2 μM 5HT. Figure 1A is the scanocha of the combined data. It shows a code plot. Additionally, data from three separate experiments provide a solution. An average value of separation constant (Kd) of 90 nM was obtained. In addition, 'H-5HT's Jurukasoto The binding site density for cells is 130 fmol per 10 cells or 1 cell. There were 5oooo receptors per cell. In addition, Hillthro The Hi l l s 1 ope value was 0.8 (not shown). moreover , various binding conditions to investigate the effects on affinity constants and receptor density. It was investigated. As a result, Mg++ ions up to 2mM, balloon ions up to 10μM EDTA up to 3mM or imibramine up to 10μM (5HT capture It was found that the addition of (blocking (not shown). Please note that all results shown here are derived from the logarithmic growth phase. . In addition, Jurkat cells obtained from cultures exceeding 10' cells/ml are 5HT-receptive. There are practically fewer bodies. Furthermore, these cultures also transferred Ca++ ions. No response to 5HT by increasing the concentration of inositol phosphate .

単離した膜試料もまた同様の特性を5HTに付与する。Isolated membrane samples also confer similar properties to 5HT.

さらに、5HTの結合は1−2μMの5HTにおいて飽和状態に達し、スキャッ チャード分析により決定されたKdの平均値は160nMであった。また、当該 5HTの結合および解離の速度(以下を参照)は完全な細胞や膜試料の場合と同 様であった。さらに、同様な5HTの濃度若しくは5HTアゴニストまたはアン タゴニストの濃度では、”H−5HTの膜試料または完全な細胞への結合が防止 される。また、5HTの試料膜への結合と完全な細胞への結合との主な差は受容 体/細胞の数の計算により明らかとなる。この結果、完全な細胞では当該細胞光 たりの受容体の数は5ooooであり、単離した膜試料における該数値は300 00であった。現時点では、何がこの差に起因しているのかは不明である。しか し、結合データが5HT濃度の関数として5HTに対する完全な細胞の生物学的 応答に対比されているので、当該完全な細胞に対する5HTの結合の結果のみを ここでは報告する。Furthermore, 5HT binding reaches saturation at 1-2 μM 5HT, leading to scattering. The average value of Kd determined by Chard analysis was 160 nM. Also, the relevant The rates of 5HT binding and dissociation (see below) are similar to those for intact cells and membrane samples. It was like that. Furthermore, similar concentrations of 5HT or 5HT agonists or antagonists Concentrations of antagonist prevent binding of H-5HT to membrane samples or intact cells. be done. Additionally, the main difference between binding of 5HT to sample membranes and binding to intact cells is This is revealed by calculating the number of bodies/cells. As a result, in a complete cell, the cell light The number of receptors per membrane is 5oooo, and the number in isolated membrane samples is 300. It was 00. At present, it is unclear what causes this difference. deer The binding data showed that the intact cell biological response to 5HT as a function of 5HT concentration Since only the results of 5HT binding to the intact cells are contrasted with the responses, I will report it here.

次いで、結合の速度を調べた。第2a図における結果から、”H−5HTの結合 は4分で完了し、最大結合の半分が30秒で生じたことがわかる。結合は10分 間維持された。これらのデータから、2.lXl0IO/m。The rate of binding was then examined. From the results in Figure 2a, we can see that “H-5HT binding” It can be seen that this was completed in 4 minutes, with half of the maximum binding occurring in 30 seconds. Joining takes 10 minutes It was maintained for a while. From these data, 2. lXl0IO/m.

1−m1nの会合速度定数(kl)が以下の式に基づいて計算できる。The association rate constant (kl) of 1-m1n can be calculated based on the following formula.

k1= [1/l (a−b) In [b (a−x) /a (b−X)] 、 同式中、aは”H−5HTの初期濃度であり、bは受容体の濃度であり、Xは時 間tにおける受容体−リガント濃度の量である。さらに、該受容体−リガント複 合体は過剰のラベル化しない5HTの存在下に速やかに解離した。これらの結果 を第2b図に示す。擬−次解離速度定数は11/分であり以下の式により計算で きる。k1= [1/l (a-b) In [b (a-x) / a (b-X)] , In the equation, a is the initial concentration of H-5HT, b is the receptor concentration, and X is the time is the amount of receptor-ligand concentration at time t. Furthermore, the receptor-ligand complex The coalescence dissociated rapidly in the presence of excess unlabeled 5HT. These results is shown in Figure 2b. The pseudo-order dissociation rate constant is 11/min and can be calculated using the following formula: Wear.

k、2= (1/l)I n (a/x) 、同式中、aは時間tにおいて結合 した”H−5HTの量である(15)。さらに、当該に1で割ったksの比の値 がKdの計算値であり、180nMとなる。この値は理論的にスキャッチャード 分析により計算したKd値とよく合致する。k, 2 = (1/l) I n (a/x), where a is the bond at time t is the amount of ``H-5HT'' (15).Furthermore, the value of the ratio of ks divided by 1 is is the calculated value of Kd, which is 180 nM. This value is theoretically Scatchard It agrees well with the Kd value calculated by analysis.

また、5HTに対する細胞表面受容体は薬理学上並びに機能特性上においていく つかの並順型に分類されている(12−13)、5HTの5HT1aまたは5H T1b部位への結合は刺激されたアデニル酸シクラーゼの活性を阻害し、5HT 1cまたは5HT2部位への結合はリン酸イノシトールのレベル値および細胞内 Ca++a度を増加する。この際、ジュルカット細胞をインド−1すなわち細胞 内Ca+十の変化に感応する蛍光染料と共に培養し、5μMの58Tまたは1a g/mlの0KT3の存在下または非存在下の培養後に、「方法」において記載 するフローサイトメトリーによって分析した。これらの結果を第3図に示す。ま た、PBS中で培養した細胞は1l50−175nのヘースラインカルシウム濃 度を有しており、10分の間、該細胞内Ca+十濃度が変化しなかった。また、 0KT3存在下に培養したジュルカント細胞では、細胞内Ca+十濃度が2分以 内に最大2μMにまで増加し、その後、700nMのレベルにまで減少した。さ らに、5μMの5)IT存在下に培養したジュルカソト細胞では、該細胞内Ca +十濃度は2分以内に400nMにまで増加した。また、当該5HTで処理した ジュルカット細胞は、0KT3に対する該ジュルカソト細胞の応答の特徴である 、[Ca++]における大きな初期ピークを示さなかった(20−21)。第4 図は当該ジュルカット細胞培養における細胞内Ca++濃度の増加と5HT濃度 の関数としての個々のジュルカソト細胞におけるCa+十濃度との比較を示して いる。Furthermore, the cell surface receptors for 5HT are characterized by pharmacological and functional properties. 5HT1a or 5H of 5HT, which is classified as a few ordered types (12-13) Binding to the T1b site inhibits stimulated adenylate cyclase activity and 5HT Binding to the 1c or 5HT2 site is determined by the level of inositol phosphate and the intracellular Increase Ca++a degree. At this time, Jurkat cells were converted into Indo-1 cells. Incubate with fluorescent dyes that are sensitive to changes in Ca + + 5 μM of 58T or 1a. After culturing in the presence or absence of g/ml 0KT3 as described in the Methods Analyzed by flow cytometry. These results are shown in FIG. Ma Cells cultured in PBS were incubated with 1l50-175n of Haeslein calcium concentration. The intracellular Ca+ concentration did not change during 10 minutes. Also, In Julcant cells cultured in the presence of 0KT3, the intracellular Ca+ concentration increased within 2 minutes. It increased to a maximum of 2 μM within a period of time and then decreased to a level of 700 nM. difference Furthermore, in Julcasoto cells cultured in the presence of 5 μM 5) IT, the intracellular Ca +10 concentration increased to 400 nM within 2 minutes. In addition, the 5HT-treated Jurkat cells are characteristic of the Jurkasot cell response to 0KT3. , did not show a large initial peak in [Ca++] (20-21). Fourth The figure shows the increase in intracellular Ca++ concentration and 5HT concentration in the Jurkat cell culture. shows a comparison with the Ca++ concentration in individual Jurkasoto cells as a function of There is.

この場合、所定の58T濃度において、該細胞は低Ca+十濃度(150−17 5nM)を有するものと高Ca+十濃度(375−425nM)を有するものと に分割することができる。したがって、第3図示の培養全体の応答は該低細胞内 Ca+十濃度または高細胞内Ca++濃度のいずれかを有する個々の細胞の平均 として実際的に表現できる。なお、該細胞内Ca+十濃度の増加は、当該増加し た細胞内Ca+十濃度を有する細胞の増加を意味する。さらに、最大応答の半分 が100乃至300nMの5HTの間であり、この値は上記結合データから得た 解離定数にほぼ匹敵する。In this case, at a given 58T concentration, the cells have a low Ca+ concentration (150-17 5nM) and one with high Ca+ concentration (375-425nM). It can be divided into. Therefore, the response of the entire culture shown in Figure 3 is that the low intracellular Average of individual cells with either Ca+ tens or high intracellular Ca++ concentrations It can be expressed practically as Note that the increase in the intracellular Ca + This means an increase in cells with a higher intracellular Ca+ concentration. Additionally, half of the maximum response was between 100 and 300 nM 5HT, which was obtained from the binding data above. Almost comparable to the dissociation constant.

増加した細胞内Ca+十濃度は、フォスファチジルイノシトールバイオフォスフ エートの加水分解によって生成されるIP3によって媒介可能である(22)。Increased intracellular Ca+ concentration is due to phosphatidylinositol biophosphorus concentration. can be mediated by IP3 produced by hydrolysis of ate (22).

5HTの5HT2受容体族に対する結合が神経組織におけるリン酸イノシトール のレベルを高めることがわかった。Binding of 5HT to the 5HT2 receptor family induces inositol phosphate in nervous tissue. was found to increase the level of

この場合、ジュルカットT細胞を3H−イノシトールで48時間ラベル化し、3 μMの5HTまたは1μg/mlの0KT3により刺激した。次いで、細胞を5 HTまたは0KT3の添加後に種々の時間において採取して、アニオン交換クロ マトグラフィによってIPのレベルを分析した。第5図に示す結果から、当該I Pレベルが5HTまたは0KT3の添加後に増加しており、1分以内に最大値に 到達していることがわかる。その後、該IPレベルは10分間にわたり減少し、 ベースラインのレベルに近付いた。なお、これらの条件下では、5HTおよび0 KT3の両方の場合で同様なIPレベルの増加か見られた。In this case, Jurkat T cells were labeled with 3H-inositol for 48 hours and Stimulation was performed with μM 5HT or 1 μg/ml 0KT3. The cells were then divided into 5 Samples were taken at various times after the addition of HT or 0KT3 and analyzed using anion exchange chromatography. The level of IP was analyzed by matography. From the results shown in Figure 5, the relevant I P levels increase after addition of 5HT or 0KT3 and reach maximum within 1 minute You can see that you have reached it. The IP level then decreases over a period of 10 minutes; approached the baseline level. Note that under these conditions, 5HT and 0 A similar increase in IP levels was seen in both cases of KT3.

さらに、異なる5HT受容体亜類型を区別するために多くの5HTアゴニストま たはアンタゴニストを使用した。その結果、5HT2受容体アンタゴニストの一 種であるケタンセリン、5HT2受容体アゴニストの一種であるアルファーメチ ルセロトニン、および、5HTがジュルカット細胞への”H−5HTの結合を阻 害した。この場合、”H−5HTの特定結合の50%を阻害する濃度(IC50 )は、ケタンセリン、アルファーメチルセロトニンおよび5HTのそれぞれにつ いて20HM、 3μMおよび0.8μMであった。また、5HTb体の特定ア ゴニストの一種である80H−DPATおよび5HT3受容体の特定アンタゴニ ストの一種であるIC3−205930は3H−5HTのジュルカット細胞への 結合を阻止しなかった。さらに、他の二種の5HT1c/2受容体アンタゴニス トであるミアンセリンとメスラジンは5HTのジュルカット細胞に対する結合を 阻害しなかった。これらの結果を表1に示す。また、リタンセリンおよびペラン セリン等の他の5 HT 2受容体アンタゴニストもまた5HTの結合を阻害し なかった(表示せず)。さらに、”’I −L S DS”H−ケタンセリンお よび’H−DOBを中枢神経系における5 HT 1 cまたは5HT2の部位 をラベル化するために使用した。また、’H−80HDPATを中枢神経系にお ける5HT1a部位をラベル化するために使用した。表2にこれらのリガンドの ジュルカット細胞に対する結合の比較をスキャッチャード分析により決定したK d値と共に示した。Furthermore, many 5HT agonists or or an antagonist was used. As a result, one of the 5HT2 receptor antagonists ketanserin, which is a species, and alphamethine, a type of 5HT2 receptor agonist. Lucerotonin and 5HT inhibit the binding of H-5HT to Jurkat cells. harmed. In this case, the concentration that inhibits 50% of the specific binding of H-5HT (IC50 ) for ketanserin, alpha methyl serotonin and 5HT, respectively. The concentrations were 20HM, 3μM and 0.8μM. In addition, the specific agglutinin of 5HTb 80H-DPAT, which is a type of agonist, and a specific antagonist of 5HT3 receptor. IC3-205930, a type of anti-inflammatory drug, inhibits the effects of 3H-5HT on Jurkat cells. did not prevent binding. In addition, two other 5HT1c/2 receptor antagonists Mianserin and mesladine, which are active agents, inhibit the binding of 5HT to Jurkat cells. It didn't interfere. These results are shown in Table 1. Also, ritanserin and peran Other 5HT2 receptor antagonists, such as serine, also inhibit 5HT binding. There was no (not shown). In addition, “’I-L S DS” H-ketanserin and 'H-DOB as the site of 5HT1c or 5HT2 in the central nervous system. used to label. In addition, 'H-80HDPAT was administered to the central nervous system. was used to label the 5HT1a site. Table 2 lists these ligands. K determined by Scatchard analysis for comparison of binding to Jurkat cells. Shown together with d value.

この場合、特定結合を100μMの5HT存在下に決定した。この結果、採用の 条件下において、sH−ケタンセリンと”H−5HTとがジュルカット細胞をラ ベル化し、”’I−LSDと”H−DOBとが該ジュルカット細胞をラベル化し なかった。さらに、”H−80HDPATもまたジュルカット細胞をラベル化し なかった。なお、ケタンセリンについての結合定数は1100nであった。In this case, specific binding was determined in the presence of 100 μM 5HT. As a result, recruitment Under these conditions, sH-ketanserin and ``H-5HT'' can stimulate Jurkat cells. ``I-LSD and ``H-DOB label the Jurkat cells. There wasn't. Furthermore, “H-80HDPAT also labeled Jurkat cells. There wasn't. Note that the binding constant for ketanserin was 1100n.

また、これらの5HT受容体アゴニストおよびアンタゴニストのそれぞれの特定 受容体群に対するアフィニティ定数は1乃至5HMの範囲内であった。In addition, the identification of each of these 5HT receptor agonists and antagonists Affinity constants for receptor groups ranged from 1 to 5 HM.

次に、上記5HT2アゴニストであるアルファーメチルセロトニンのCa+十移 動度を促進する作用について試験した(表3)。この結果、3μMの5HTに比 して、10HMのアルファーメチルセロトニンにより最大のCa+十移動度が生 じ、最大刺激の半分をもたらすに要する濃度(E C50)は、200nMの5 HTに比して、アルファーメチルセロトニンの場合は1μMであった。Next, the Ca + 10 transfer of alpha methyl serotonin, the 5HT2 agonist, The effect of promoting motility was tested (Table 3). As a result, compared to 3μM 5HT, Therefore, 10HM alpha methyl serotonin produced the maximum Ca+ mobility. Similarly, the concentration required to produce half maximal stimulation (EC50) is 200 nM 5 Compared to HT, alpha methyl serotonin was 1 μM.

また、結合した5HTの置換値は同じであり、さらに、該結合5HTの置換につ いてのIC50は800nMの5HTに比してアルファーメチルセロトニンの場 合は3μMであった。また、表4はいくつかの5HT2アンタゴニストについて のンユルカット細胞における5HT媒介Ca+十移動の阻害作用の比較を示して いる。該試験されたアンタゴニストのうち、ケタンセリンのみが当該5 HT媒 介Ca+十移動を阻害した。また、このIC50値は10HMであった。Moreover, the substitution value of the bound 5HT is the same, and furthermore, the substitution value of the bound 5HT is The IC50 of alpha methyl serotonin was higher than that of 800 nM 5HT. The concentration was 3 μM. Table 4 also shows some 5HT2 antagonists. Comparison of the inhibitory effect of 5HT-mediated Ca + mobilization in Nyurkat cells is shown. There is. Of the antagonists tested, only ketanserin was Inhibited Ca+10 movement. Moreover, this IC50 value was 10HM.

表1 5HT受容体による5HTの結合の阻害アゴニスト アンタゴニスト アンタゴニスト 瓜0 型 IC50”5HT 内因性 0.8μM ケタンセリン 5HT2 20HM アルファーメチルセロトニン 5HT2 aμM 8−OH−DPAT 5HT1a >50HMIC3−205−930 5HT3 >20HM メスラジン 5HT1c/2 >50HMミアンセリン 5HT1c 2 >5 0 M(a) 当該結合処理は、2X10’個のジュルカット細胞を用いて、1 100nの”H−5HTと種々の濃度のアゴニストおよびアンタゴニストの存在 下に、「方法」の部分において記載の如く行った。Table 1 Inhibition of 5HT binding by 5HT receptor Agonist/Antagonist Antagonist 0 type IC50”5HT endogenous 0.8μM Ketanserin 5HT2 20HM alpha methyl serotonin 5HT2 aμM 8-OH-DPAT 5HT1a>50HMIC3-205-930 5HT3>20HM Mesradine 5HT1c/2 >50HM Mianserin 5HT1c 2 >5 0 M(a) The binding treatment is carried out using 2 x 10' Jurkat cells, Presence of 100n'H-5HT and various concentrations of agonists and antagonists It was performed as described in the "Methods" section below.

表2 ジュルカット に・ る5HT′B−0リガンドの 合5HT受容体リガンド  Kd” Kd’ 5HT部位−ジュルヵット 2 3H−ケタンセリン 1100n 〜1nM 5HT2”5I−LSD >1O nM 〜1nM 5HT1c3H−DOB >1100n ”1nM 5HT2 a(a) ジュルカット細胞を、3H−ケタンセリン(1−500nM) 、1 2’I−LSD (0,3−3−1Onまたは”H−DOB (0,5−5−2 00n存在下、10分間、0−4℃で培養した。100μM5HTの存在下特定 結合を決定した。Table 2 Combined 5HT'B-0 ligand in Jurkat 5HT receptor ligand Kd" Kd' 5HT part - Jurkat 2 3H-ketanserin 1100n ~ 1nM 5HT2"5I-LSD > 1O nM ~ 1nM 5HT1c3H-DOB > 1100n" 1nM 5HT2 a (a) Jurkat cells were treated with 3H-ketanserin (1-500 nM), 1 2’I-LSD (0,3-3-1On or “H-DOB” (0,5-5-2 The cells were cultured at 0-4°C for 10 minutes in the presence of 00n. Specification in the presence of 100μM 5HT The binding was determined.

(b)記載値は文献12および13から得た。(b) The stated values were obtained from references 12 and 13.

表3 5HT2アゴニストによるCa+十 動アゴニスト 3H−5HT Ca+十移 動度の置換 IC50° EC50b 5HT 800nM 200nM アルファーメチルセロトニン 3M LM(a)−3H−5HTの置換の決定の ためのデータは第5図から得た。Table 3 Ca + decadal agonist 3H-5HT Ca + decadal movement by 5HT2 agonist Mobility replacement IC50° EC50b 5HT 800nM 200nM Determination of substitution of alpha methyl serotonin 3M LM(a)-3H-5HT The data for this were obtained from Figure 5.

(b) EC50値は種々の濃度の5HT2アゴニストを用いてジュルカット細 胞を培養し、次いでCa+十濃度の変化を時間関数として調べることによって決 定した。(b) EC50 values of Jurkat fines using various concentrations of 5HT2 agonists. Determined by culturing cells and then examining changes in Ca+ concentration as a function of time. Established.

なお、該Ca+十の変化速度は最初の60秒間において線形であり、5HTアゴ ニストの添加後2−3分で完了する。Note that the rate of change of Ca+ was linear in the first 60 seconds, and Complete within 2-3 minutes after addition of the nist.

表4 5HT2アンタゴニストによるCa+十移動の阻害Ca+十移動度 Ca++ nM” IC50b− 5HT(lμM) 425 −一 十ケタンセリン 285 1OnM +ペランセリン 435 >1OnM +ミアンセリン 440 >1OnM +メスラジン 460 、>10 M (a) 5HTを添加する前に、ジュルカット細胞(IXIO’/ml)を、1 OnMの所定のアンタゴニストの存在下5分間培養した。次いで、当該ジュルカ ット細胞におけるCa+十移動麿を、5HT添加の2分後に、「方法」に記載の ようにフローサイトメトリーにより決定した。現時点では5HTに対する当該応 答は時間についてまだ線形である(第4図)。Table 4 Inhibition of Ca + 10 mobility by 5HT2 antagonists Ca + 10 mobility Ca++ nM" IC50b- 5HT (lμM) 425-1 Ten ketanserin 285 1OnM + Perancerin 435 > 1OnM + Mianserin 440 > 1 OnM + Methradine 460, >10M (a) Before adding 5HT, Jurkat cells (IXIO'/ml) were added at 1 Incubation was carried out for 5 minutes in the presence of the designated antagonist of OnM. Next, the Julka 2 minutes after addition of 5HT, the Ca + concentration in the cells was increased as described in "Methods". as determined by flow cytometry. At present, there is no corresponding response to 5HT. The answer is still linear in time (Figure 4).

(b) IC50値は1μM5HT存在下ジュルカット細胞によるCa+十移動 の50%を阻害するアゴニストの濃度である。(b) IC50 value is Ca + mobilization by Jurkat cells in the presence of 1 μM 5HT. The concentration of agonist that inhibits 50% of the

神経伝達物質5HTは炎症時に放出されて、遅延型過敏症応答(3,4,10) において重要な役割を果たすと考えられている。一方、ケタンセリンやリタンセ リン等の5HTのアンタゴニストは動物体における当該DTH応答を阻止するこ とが示されている(10−11)。The neurotransmitter 5HT is released during inflammation and contributes to delayed-type hypersensitivity responses (3,4,10) is believed to play an important role in On the other hand, ketanserin and ritanserin Antagonists of 5HT, such as phosphorus, can block the DTH response in the animal body. is shown (10-11).

さらに、該5HTアンタゴニストによるある種の抗原特定T細胞クローンの治療 は、DTH応答を真正な受容体に転移するそれらの能力を阻害する。しかし、二 次メツセンジャーを介して細胞内シグナルを形質転換する機能的な5HT受容体 はまだ該T細胞上に同定されていない。Additionally, treatment of certain antigen-specific T cell clones with said 5HT antagonists inhibit their ability to transfer the DTH response to bona fide receptors. However, two A functional 5HT receptor that transduces intracellular signals via the next metsenger. have not yet been identified on the T cells.

すなわち、ここに記載する実験の目的は、当該5HTに対する機能的受容体がヒ ト科T細胞上に同定し得るか、また、それらは中枢若しくは末梢の神経系存在す る他の種類の細胞上にすでに同定されている亜類型に類似であるかについて、生 化学および薬理学の両面について分析することである。That is, the purpose of the experiments described here was to establish that the functional receptor for 5HT is Can they be identified on T-cells and whether they exist in the central or peripheral nervous system? The biological It is an analysis of both chemistry and pharmacology.

そこで、次に、当該5HTの受容体の亜類型について、機能的に、薬理学的に、 また、分子構造的に特徴付けをした(12−13)、この場合、5HT1a、5 HT1bおよび5HT1dから成る5HT1群、5HT1c。Next, we will discuss functionally and pharmacologically the subtypes of the 5HT receptor. We also characterized the molecular structure (12-13), in this case 5HT1a, 5 5HT1 group consisting of HT1b and 5HT1d, 5HT1c.

5HT2aおよび5HT2bから成る5HT2群、および、現在唯一の因子によ り構成される5HT3群を使用した。また、5HT 1 a、5HT 1 cお よび5HT2受容体をエンコードするcDNAを同定し、当該cDNAがすへて 7種のメンプランスパンニングユニットを有するGプロティンリンク受容体であ る蛋白質をエンコードすることがわかった(23−25)。機能的には、5HT の5HT1a部位に対する結合はアデニル酸シクラーセの活性を変化しく26) 、カリウムイオン経路を変更し、さらに、神経細胞伝達を阻害する(12−13 )。The 5HT2 group, consisting of 5HT2a and 5HT2b, and the currently only factor Three 5HT groups were used. Also, 5HT 1a, 5HT 1c and identified cDNAs encoding 5HT2 and 5HT2 receptors, and demonstrated that the cDNAs It is a G protein-linked receptor with seven types of membrane spanning units. It was found that the protein encodes a protein (23-25). Functionally, 5HT Binding to the 5HT1a site alters the activity of adenylate cyclase26) , alters potassium ion pathways and further inhibits neuronal transmission (12-13 ).

また、5HT1a部位にのみ専ら結合する特定アゴニストも同定した。これらの うちの二種は80H−DPATとイブサビロン(i psap i rone) である。さらに、5HTの5HT1cまたは5HT2部位への結合かフォスファ チジルイノシトールのターンオーバーと細胞内Ca+十の移動を増加することが わかった。また、該5 HT 1 cおよび5HT2と等価的アフィニティをも って相互作用する多くの5HT2アンタゴニストを同定した。なお、当該アンタ ゴニストの例としては、メスラジンやミアンセリンが挙げられる。また、他の5 HT2アンタゴニストとしては、ケタンセリン、リタンセリンおよびペランセリ ン等がある。これらのリガンドは5HT2部位のラベル化に使用され、該5HT 2部位に対してナノモルレベルのアフィニティを有しており、さらに、目的組織 内における5HT媒介のフォスファチジルイノントールのターンオーバーを阻害 スる(12−13)。We have also identified specific agonists that bind exclusively to the 5HT1a site. these Two of them are 80H-DPAT and Ibusavirone (ipsap irone) It is. Furthermore, whether 5HT binds to the 5HT1c or 5HT2 site or It can increase the turnover of tidylinositol and the movement of intracellular Ca+ Understood. It also has equivalent affinity with 5HT1c and 5HT2. A number of 5HT2 antagonists that interact with each other have been identified. In addition, the person concerned Examples of agonists include methazine and mianserin. Also, the other 5 HT2 antagonists include ketanserin, ritanserin and pelanceri There are many examples. These ligands are used to label the 5HT2 site, and the 5HT It has nanomole-level affinity for two sites, and also inhibits 5HT-mediated phosphatidylinonthole turnover in Suru (12-13).

なお、当該5HT2群には付加的に異種因子が含まれても良い。また、フォスフ ァチジルイノシトールのターンオーバーを媒介する5HT部位を脳の海馬領域並 びに前脳において同定した。ただし、これらの組織においては、当該フォスファ チジルイノシトールターンオーバーは極めて高濃度(5HT2部位に対する正常 なアフィニティ11−1Onに対して1−10HM)のケタンセリンによっての み阻害される(27−28)。一方、5HT3受容体は主に末梢神経系に存在し ているように見える。Note that the 5HT2 group may additionally include a heterologous factor. Also, Phosph The 5HT site that mediates the turnover of atidylinositol is located in the hippocampal region of the brain. It was identified in the forebrain. However, in these organizations, the phosphor Tidylinositol turnover is extremely high (normal for 5HT2 site) by ketanserin with an affinity of 1-10HM to 11-1On). (27-28). On the other hand, 5HT3 receptors are mainly found in the peripheral nervous system. It looks like it is.

なお、これらの受容体は5HT1および/または5 HT2選択リガンドの影響 を受けない。しかしながら、IC3205903等の特定リガンドは末梢神経系 において5HTの影響を阻止できることを確認した(12−13)。Note that these receptors are affected by 5HT1 and/or 5HT2 selective ligands. I don't receive it. However, certain ligands such as IC3205903 It was confirmed that the effects of 5HT can be blocked in (12-13).

なお、ジュルカソト細胞に対する5HT結合におけるKd値はスキャッチャード 分析により決定した場合は90nMであり、反応速度分析により決定した場合は 180nMであった。さらに、5HT受容体の部位の密度はジュルカソト細胞1 06個にっき130Imolまたは1個の細胞につき5oooo部位であった。In addition, the Kd value for 5HT binding to Jurkasoto cells is determined by Scatchard. 90 nM as determined by analysis and 90 nM as determined by kinetic analysis. It was 180 nM. In addition, the density of 5HT receptor sites in Jurcasoto cells 1 There were 130 Imol per 06 cells or 5oooo sites per cell.

すなわち、5HTはフォスファチジルイノシトールのターンオーバーを刺激し、 これら細胞における細胞内Ca+十を増加する。さらに、該5HT結合の飽和と 最大のCa+十応答とが1−3μMの5HTにおいて観察できた。また、該最大 Ca+十応答の半分に相当する状態が200nMの5HTにおいて見られ、この 値はジュルヵット細胞への5HTの結合についてのKd値に近い。なお、3H− 5HTの結合および5HT媒介のCa+十移動は特定の5HT1aアゴニスト8 0 H−D P A Tや特定の5HT3リガンドI C5−205930によ って影響されながった。さらに、該5HTや80H−DPATはジュルヵノト細 胞におけるcAMPの濃度を変化しながった(データ示さず)。これらのデータ は5HTの上記5HT2受容体群に対する結合に一貫している。加えて、5HT 2アゴニストであるアルファメチルセロトニンマレエートは結合した5 HTを 置換し、ジュルヵット細胞におけるCa+十移動を刺激した。しがし、ケタンセ リンは弱いアフィニティ (100n、 MのKd)で当該ジュルヵット細胞に 結合し、また、125I−LSD (5HTにより置換される)のジュルカット 細胞に対する結合は検出されなかった。また、ミアンセリン、メスラジン、ペラ ンセリンおよびリタンセリン(すべて5HT2アンタゴニスト)は≦20μMの 濃度では該ジュルヵット細胞への5HTの結合を阻害せず、また、5HT媒介の Ca++移動も阻害しなかった。ただ、ケタンセリンのみが高濃度で5HTを置 換し、Ca+十移動を阻害した(10HMで50%)。さらに、特定5 HT  2 aリガンドの3H−DOBはジュルカット細胞のラベル化をしながった。That is, 5HT stimulates the turnover of phosphatidylinositol, Increases intracellular Ca + + in these cells. Furthermore, saturation of the 5HT bond and The largest Ca++ responses could be observed at 1-3 μM 5HT. Also, the maximum A state corresponding to half of the Ca + + response was observed at 200 nM 5HT; The value is close to the Kd value for binding of 5HT to Jurkat cells. In addition, 3H- 5HT binding and 5HT-mediated Ca+ mobilization are inhibited by specific 5HT1a agonists8. 0 H-D P AT and specific 5HT3 ligand I C5-205930. It didn't affect me. Furthermore, the 5HT and 80H-DPAT are The concentration of cAMP in the cells remained unchanged (data not shown). These data is consistent with the binding of 5HT to the above-mentioned 5HT2 receptor group. In addition, 5HT 2 agonist alpha methyl serotonin maleate inhibits bound 5HT. and stimulated Ca+ mobilization in Jurkat cells. Shigashi, Ketanse Phosphorus has a weak affinity (Kd of 100n, M) for the Jurkat cells. Jurkat of 125I-LSD (substituted by 5HT) No binding to cells was detected. Also, mianserin, methazine, pela nserin and ritanserin (all 5HT2 antagonists) at ≦20 μM concentration does not inhibit 5HT binding to Jurkat cells and also inhibits 5HT-mediated binding of 5HT to Jurkat cells. Ca++ movement was also not inhibited. However, only ketanserin placed 5HT at high concentrations. and inhibited Ca+ mobilization (50% at 10HM). Furthermore, specific 5 HT The 2a ligand 3H-DOB did not label Jurkat cells.

なお、該5HT結合をCa+十移動度と対比して考えると、当該5HTアンタゴ ニストによる効果は等価であると見なせる。以上の結果から、当該ジェルカット 細胞上の5HT受容体は5HT1c、5)fT2若しくは5HT2bの受容体の いずれでもないといえる。さらに、それは、5 HTを結合しフォスファチジル ーイノシトールのターンオーバーを媒介するが、ミクロモル程度の濃度でのキタ ンセリンによってのみ阻害される、上記海馬領域上に見られるものにより近いよ うに見える( 27−28)。このことは、付加的な異種因子が該5HT2群に 存在することを示唆するものである。In addition, when considering the 5HT binding in comparison with the Ca+ mobility, the 5HT antagonist The effect of the list can be considered to be equivalent. From the above results, the gel cut 5HT receptors on cells are 5HT1c, 5) fT2 or 5HT2b receptors. It can be said that it is neither. Furthermore, it binds 5HT and phosphatidyl - mediates the turnover of inositol, but at micromolar concentrations more similar to that seen on the hippocampal region mentioned above, which is only inhibited by encerin. It looks like a sea bream (27-28). This indicates that additional heterologous factors may affect the 5HT2 group. This suggests that it exists.

ここに示すデータはヒト科ジュルカット細胞上の5HT受容体を説明し、また、 当該受容体かフォスファチジルーイノシトールターンオーハーを刺激し、かつ、 これらの細胞内における細胞内Ca+十濃度を増加することを示すものである。The data presented here describe 5HT receptors on hominid Jurkat cells and also The receptor stimulates phosphatidyl-inositol turnover, and This shows that the intracellular Ca+ concentration in these cells is increased.

当該5HTにより引き起こされるリン酸イノシトールのレベル増加は0KT3に より引き起こされる増加に類似している。また、5HTによるCa+十濃度の増 加は2分以内で175nMから400nMであった。一方、0KT3によるCa +十濃度の増加は2分以内で最大2μMであった。さらに、この増加値はその後 の付加的な1分以内に700nMに急速に減少した。たたし、これらのデータは 、該ジェルカット細胞上の5HTとその受容体との間の生物学的または免疫学的 相互作用の結果を示すものではない。しかし、上記フオスファチジルーイノシト ールのターンオーバーはT細胞活性(29参照)におけるシグナル形質転換の重 要な要素の一つであり、5HTによるこの経路の刺激は重要な免疫学上の結果を もたらす。さらに、5HTはまた炎症の部位において充分に存在して該T細胞の 機能を変性することができる。。また、5HTは血小板の主要な蓄積生成物であ り、該炎症部位における血小板の凝集時に放出される。注目すべきは、当該血小 板における5HTのレベルがリューマチ様関節炎および全身性紅斑性狼癒等の自 己免疫症により低下することである(30)。さらに、5HT2アンタゴニスト が通常の抵抗力を有するラットにおける連鎖球菌細胞壁抽出物に対する炎症や関 節炎の応答を悪化させることが示されている(31)。しかし、現時点では、こ れらの作用がT細胞上の5HT受容体を介して発現することが明らかではない。The 5HT-induced increase in inositol phosphate levels is associated with 0KT3. Similar to the increase caused by. In addition, the increase in Ca + + concentration due to 5HT The addition was from 175 nM to 400 nM within 2 minutes. On the other hand, Ca due to 0KT3 The +10 concentration increase was up to 2 μM within 2 minutes. Furthermore, this increased value is then rapidly decreased to 700 nM within an additional minute. However, these data , the biological or immunological relationship between 5HT and its receptor on the gel-cut cells. It does not represent the results of interactions. However, the above-mentioned phosphatidyl inosites Turnover of protein plays a role in signal transduction in T cell activity (see 29). stimulation of this pathway by 5HT has important immunological consequences. bring. Furthermore, 5HT is also abundant at sites of inflammation and stimulates the T cells. Function can be altered. . In addition, 5HT is a major accumulation product of platelets. It is released upon aggregation of platelets at the site of inflammation. What should be noted is that the blood The level of 5HT in the lamina is associated with diseases such as rheumatoid arthritis and systemic erythematous lupus. It is decreased by autoimmunity (30). Furthermore, 5HT2 antagonist Inflammation and association with streptococcal cell wall extracts in rats with normal resistance It has been shown to exacerbate the joint inflammation response (31). However, at present, this It is not clear that these effects are expressed through 5HT receptors on T cells.

そこで、該5HTの特定アンタゴニスト若しくはアゴニストの有効性により、活 性化T細胞上での5HTと5HT受容体との免疫学的相互作用を把握することが 可能になり、さらに、当該T細胞上のインビボでの免疫および炎症の応答におけ る該5HT受容体の役割がより明確になると考えられる。最後に、(実験的にで はあるが)5HT受容体の類似体はヒト科末梢T細胞の坏土には存在するが、休 止しているヒト科末梢T細胞上には存在しない。Therefore, depending on the effectiveness of the specific 5HT antagonist or agonist, It is important to understand the immunological interaction between 5HT and 5HT receptors on sexualized T cells. and furthermore, in the in vivo immune and inflammatory response on such T cells. It is thought that the role of the 5HT receptor will become clearer. Finally, (experimentally) 5HT receptor analogues exist in human peripheral T cell cultures, but they are dormant. It is not present on stopped human peripheral T cells.

形性転換された細胞(ジュルカット細胞)上に新規な5HT2類似受容体が存在 するということの証明に続いて、当該受容体がヒト科Tリンパ球(活性化T細胞 )上に存在することを証明するためにさらに実験を行った。Novel 5HT2-like receptor exists on transformed cells (Jurkat cells) Following the demonstration that the receptor acts on human T lymphocytes (activated T cells), ) We conducted further experiments to prove that it exists.

T の5 HT瓜0 ジェルカット細胞上の5HT受容体は、従来の5HT2受容体に比して、”H− 5HT (100nM)やケタンセリン(100nM)に対して弱いアフィニテ ィを持っている。3 H−5HTのT細胞の胚に対する特定結合は検出可能であ り、飽和可能である。すなわち、結合した3H−5HTのうちの約80%が10 0μMの5HTにより置換され、該結合は1−3μMの5HTで飽和した。飽和 時には、10個のT細胞当たり200−250fmolの5HTが結合した。ま た、5HTの結合は1−3μMの5 HTで飽和した。この場合のKd値はスキ ャソチャード分析により決定され、その値は180nM(3回の別々の実験値の 平均)であった。ここ結果、T細胞の胚は106個の細胞当たり224fmol の5HTと結合し、1個の細胞当たり120000個の受容体の部位密度である ことがわかる。この結果を第6A図に示す。第6A−1図は該結合データのスキ ャッチャード分析を示している。すなわち、該3回の別々の実験データにより、 解離定数の平均が200nMとなった。また、第6B図はT細胞の胚に対するケ タンセリンの結合を示している。該結合は飽和可能であり、T細胞の胚は同一数 のケタンセリンと5HT受容体とを表現した。また、該ケタンセリンの特定結合 が100μMの58Tの存在下または非存在下において決定された。第6B−1 図は当該ケタンセリンの結合データのスキャッチャード分析を示し、その平均解 離定数は400nMとなっている。T no 5 HT melon 0 5HT receptors on gel-cut cells have a “H- Weak affinity for 5HT (100nM) and ketanserin (100nM) I have a 3. Specific binding of H-5HT to T cell embryos is detectable. and saturable. That is, about 80% of the bound 3H-5HT is 10 Displaced by 0 μM 5HT, the binding was saturated with 1-3 μM 5HT. saturation Sometimes 200-250 fmol of 5HT was bound per 10 T cells. Ma In addition, 5HT binding was saturated at 1-3 μM 5HT. In this case, the Kd value is The value was 180 nM (values from three separate experiments). average). As a result, the T cell embryo has 224 fmol per 106 cells. of 5HT, with a site density of 120,000 receptors per cell. I understand that. The results are shown in Figure 6A. Figure 6A-1 shows the skim of the combined data. This shows the Catchard analysis. That is, based on the three separate experimental data, The average dissociation constant was 200 nM. In addition, Figure 6B shows the effects of T cells on embryos. The binding of tanserine is shown. The binding is saturable and the embryos of T cells have the same number expressed ketanserin and 5HT receptors. In addition, the specific bond of ketanserin was determined in the presence or absence of 100 μM 58T. No. 6B-1 The figure shows the Scatchard analysis of the ketanserin binding data, and the average solution The separation constant is 400 nM.

以上より、これらのデータはT細胞の坏土に単一の受容体が存在し、それが5H Tとケタンセリンとの両方にそれらの所定の濃度範囲においてそれぞれ結合する ことを概念的に示している。From the above, these data indicate that a single receptor exists on the T cell matrix, and that it is 5H. binds both T and ketanserin, respectively, in their defined concentration ranges. This is shown conceptually.

種々の5HT受容体リガンドを使った競争実験を行った結果、5 HT 、アル ファメチルセロトニンおよびケタンセリンがT細胞に対する結合についてH−5 HTに匹敵し得ることがわかった(第7図)。なおIC50の値はそれぞれ0. 1HM、0.06μMおよび20HMだった。さらに、80H−DPAT (5 HT1 a受容体に対して特定) 、IC3−205930(5HT3受容体に 対して特定)、ミアンセリン(5HT1cおよび5HT2の受容体に対して特定 )およびスピベロン(5HT2受容体に対して特定)等の5HT受容体リガンド は当該T細胞の胚に対する結合について5HTには匹敵しなかった。また、該5 )(T受容体のT細胞の坏土での特性は当該5HT受容体のジェルカット細胞上 での特性に匹敵し、神経組織において見られる受容体の特性からは明確に区別で きる。As a result of competitive experiments using various 5HT receptor ligands, we found that 5HT, alcohol H-5 for binding of phamethylserotonin and ketanserin to T cells It was found that it was comparable to HT (Fig. 7). Note that the IC50 values are 0. They were 1 HM, 0.06 μM and 20 HM. Furthermore, 80H-DPAT (5 specific for HT1a receptor), IC3-205930 (specific for 5HT3 receptor) specific for 5HT1c and 5HT2 receptors), mianserin (specific for 5HT1c and 5HT2 receptors); ) and 5HT receptor ligands such as spiberone (specific for 5HT2 receptors) was not comparable to 5HT in binding of the T cells to the embryo. Also, said 5 ) (The characteristics of the T receptor on the clay of the T cell are those of the 5HT receptor on the gel cut cell. It is comparable to the properties of receptors found in nerve tissue, and is clearly distinguishable from the properties of receptors found in nervous tissue. Wear.

次いで、該5HT受容体の存在について、多くの異なるT細胞ポピユレーション を評価した。この場合、休止しているリンパ球は、T細胞の胚(150000/ 細胞)に比して、受容体の低いレベル(24000/細胞)を示した。また、C D4+とCDB+のT細胞系は共に5HT受容体の高いレベルを示しく1430 00および171000受容体/細胞)、また、CD3+4−8−T細胞系は5 3000受容体/細胞のレベルを示し、この値は休止しているリンパ球上で観察 されたものよりも僅かに高いだけである。さらに、異なるT細胞マイトゲンを用 いた刺激を加えた後に、当該5HT受容体の表現を時間の関数として調へた。そ の結果、受容体の増加は刺激後72時間は線形であった。また、3種のT細胞マ イトゲン、PHΔ、PWM、0KT3は該T細胞上での5HT受容体数の増加に おいて実質的差異を示さなかった(表8)。The presence of the 5HT receptor is then investigated in many different T cell populations. was evaluated. In this case, the resting lymphocytes are T-cell embryos (150,000/ (24,000/cell) showed lower levels of receptors (24,000/cell). Also, C Both D4+ and CDB+ T cell lines exhibit high levels of 5HT receptors1430 00 and 171,000 receptors/cell), and the CD3+4-8- T cell line has 5 Shows a level of 3000 receptors/cell, a value observed on resting lymphocytes It is only slightly higher than what was reported. Furthermore, using different T cell mitogens, The expression of the 5HT receptor was examined as a function of time after the application of the stimulus. So As a result, the increase in receptors was linear for 72 hours after stimulation. In addition, three types of T cell togen, PHΔ, PWM, and 0KT3 increase the number of 5HT receptors on the T cells. showed no substantial difference (Table 8).

表8 細胞 1几工亙澄 Fmo l/細胞108個 受容体/細胞PBL 40± 3 24000 T細l包の胚 250±11 150000CD4+T細胞系 238± 9  143000CD8+T細胞系 285± 5 171000リンパ球において は、細胞内cAMPの増加は、当該リンパ球の増殖およびイフエクタ(effe ctor)機能の阻害に一般的に関係する(57)。逆に、細胞内Ca++の増 加は、抗原若しくはマイトゲンのシグナルによるリンパ球の活性化、これに続く リンパ球の増殖およびイフェクタ機能において一般的に必要であると認識されて いる。なお、ここで示す結果としては、5Hb増加に媒介し得るということであ る。したがって、これにより、リンパ球の増殖およびそのイフエクタ機能が当然 向上する。また、該5Hb けるアデニル酸シクラーゼとcAMPのレベル値を調節する。すなわち、該アデ ニル酸シクラーゼの活性化の状態により、5HT1aアゴニストがcAMPのレ ベルを高めたり抑制したりすることができ、また、リンパ球の増殖や機能を向上 したり抑制したりすることができる。Table 8 Cell 1 liter Kosumi Kogyo Fmol/108 cells Receptor/cell PBL 40±3 24000 T-cell embryo 250±11 150,000 CD4+ T cell line 238±9 143,000 CD8+ T cell line 285± 5 171,000 lymphocytes The increase in intracellular cAMP is associated with proliferation and effecta of the lymphocytes. ctor) function (57). Conversely, an increase in intracellular Ca++ activation of lymphocytes by antigen or mitogen signals, followed by Generally recognized as necessary for lymphocyte proliferation and effector function There is. Furthermore, the results shown here indicate that it can mediate the increase in 5Hb. Ru. Therefore, this naturally limits the proliferation of lymphocytes and their effector functions. improves. In addition, the 5Hb It regulates the levels of adenylate cyclase and cAMP. That is, the ad Depending on the state of activation of nilate cyclase, 5HT1a agonists may affect cAMP levels. It can increase or suppress the lymphocytes, and also improve the proliferation and function of lymphocytes. can be suppressed or suppressed.

5 HT、特定5HT1aアゴニストの80HDPATおよび5HT1aアンタ ゴニストのスピベロンに対するンユルカット細胞およびT細胞の胚の生物学的応 答ジュルカット細胞 T細胞胚 条件 Ca++ cAMP Ca++ cAMP=−−’−’ (nM) (m ol) (nM) (ユ■−−2004,72601,8 5HT+ 610 4.9 260 0.65HT+スビベロン 225 4, 7 250 1.480T(DPAT 470 4.8 255 0.58 0 0 D P A T + Z工ζベニ−と− −2804,6265[6なお、Ca+十測定については、 上記細胞をインド−1によりラベル化し、5μT3μMおよび80HDPAT  10 n M存在下または非存在下で、1100nのスビベロン存在下または非 存在ドに、当該細胞内Ca+十濃度を5分間にわたりモニタした。結果を細胞内 Ca++の濃度値と(2て示した。一方、c A M Pは上記種々の処理後に 細胞から抽出し、かつ、その値は記載の如く定量的であった。この場合、アデニ ル酸シクラーゼを活性化するために、すべての細胞を10μMのフォルスコリン (forskolin)で前処理した。結果をpmo 1(cAMP/106個 の細胞)として示した。5HT, specific 5HT1a agonist 80HDPAT and 5HT1a antagonist Embryonic Biological Responses of Nyurkat Cells and T Cells to the Gonist Spiberone Answer Jurkat cell T cell embryo Conditions Ca++ cAMP Ca++ cAMP=--'-' (nM) (m ol) (nM) (Yu ■--2004, 72601, 8 5HT+ 610 4.9 260 0.65HT+ Subiberon 225 4, 7 250 1.480T (DPAT 470 4.8 255 0.58 0 0 D P A T + Z engineering ζ Benny and -2804,6265[6. The above cells were labeled with Indo-1, 5μT3μM and 80HDPAT. In the presence or absence of 10nM, in the presence or absence of 1100n subiveron. The intracellular Ca concentration was monitored for 5 minutes. Intracellular results The concentration value of Ca++ and (2) are shown. On the other hand, c A M P is It was extracted from cells and the value was quantitative as described. In this case, Adeni All cells were treated with 10 μM forskolin to activate lactate cyclase. (forskolin). PMO 1 (cAMP/106 pieces) cells).

T細胞−中における5HTと5HT1a特定アゴニストの80HDFATとの生 物学的および薬理学的応答の比較生物学的応答 薬理学的応答 EC50IC50IC50 リガンド ca++ cAMP Ca++ cAMP 1E釦尤9)−80HD PA、T 5日M 3日M 1.5日M5 HT 200nM 400nM 3 .OnMスビベロン 60nM 70nM 50.OnM細胞細胞内Ca+側定 をジュルカット細胞を用いて行い、c A、 M Pの測定を活性化T細胞を用 いて行った。さらに、ジュルカット膜を1日Mの80 HD P A Tにより ラベル化し、置換処理を種々の濃度の所定リガンドの存在下に行った。Production of 5HT and 5HT1a specific agonist 80HDFAT in T cells Comparison of physical and pharmacological responses Biological responses Pharmacological responses EC50IC50IC50 Ligand ca++ cAMP Ca++ cAMP 1E button 9)-80HD PA, T 5 days M 3 days M 1.5 days M5 HT 200nM 400nM 3 .. OnM Subiveron 60nM 70nM 50. OnM cell intracellular Ca+ level determination was carried out using Jurkat cells, and c A and M P were measured using activated T cells. I went there. Furthermore, the Jurkat membrane was treated with 80 HD P AT of M for one day. Labeling and displacement treatments were performed in the presence of various concentrations of the given ligand.

旦」」2−における5μ皿(7)皿淀 休止状態のPBLをPHA、PWMまたは0KT3の存在下または非存在下に、 種々の時間で培養し、採取し、5HT含有量を分析した。これらの結果を第8図 に示す。5μ plate (7) plate in 2- quiescent PBL in the presence or absence of PHA, PWM or 0KT3; Cultured at various times, harvested and analyzed for 5HT content. These results are shown in Figure 8. Shown below.

PBLは培養初期において5HTを4μmol/10細胞で含有していた。当該 レベルは4日間維持されたか7日までに消失した。一方、0KT3またはPHA のいずれかによるPBLの刺激により5HTの含有量は72時間以内に75%以 上消失し、概ねその時間に5μT受容体が最大レベルに到達していた。また、P WMによるPBLの刺激では、最初の48時間は5 HTのレベルが50%程度 まで増加し、その後、徐々に減少した。なお、これらの細胞は7日目の時点で約 2pmo15HT/10細胞に維持されていた。PBL contained 5HT at 4 μmol/10 cells at the early stage of culture. concerned Levels were maintained for 4 days or disappeared by day 7. On the other hand, 0KT3 or PHA The 5HT content decreases to 75% or more within 72 hours due to stimulation of PBL by either of the following: 5μT receptors had reached maximum levels at approximately that time. Also, P When PBL is stimulated by WM, the level of 5HT is approximately 50% for the first 48 hours. It increased until then, and then gradually decreased. In addition, these cells are approximately 7 days old. It was maintained in 2pmol5HT/10 cells.

PBLの増りおける」一旦二りのゴ[IP HAによって刺激されたPBLの増 殖は比較的高濃度の5 HTによって部分的に阻害される。第9図はこの知見を 示し、また、他のT細胞マイトゲン0KT3およびP W Mに対する該P B  Lの増殖についての5 HTの作用を示している。すなわち、0KT3存在下 の当該PBLの増殖は5 HTの添加に影響されない。これに反して、P W  Mで刺激された培養体への5HTの添加は”H−TdRの取込みを3倍増加させ た。また、当該最大取込み増大の半分が5μT15μMに対応していた。また、 この現象は培養期間のうち3日から5日に5HTが添加された場合に観察でき、 この時点で、5μT受容体が最大に表現される(表V参照)。また、当該培養期 間の初期に5HTを添加すると、増殖が3倍に高められるが、この作用を成すた めにさらに多くの5HT (100μM)か必要となる。この差を説明するため の可能性としては、当該5HTの活性が3日目まで出現しない5μT受容体によ り媒介され、かつ、培養期間の初期における該5HTの代謝または酸化か3日目 までに該培養媒体中において当該5HTの効果的な濃度を減少するということが 考えられる。Once the PBL is increased, the increase in PBL stimulated by the Growth is partially inhibited by relatively high concentrations of 5HT. Figure 9 shows this finding. and also the P B against other T cell mitogens 0KT3 and P W M The effect of 5HT on the proliferation of L. That is, in the presence of 0KT3 The proliferation of these PBLs is not affected by the addition of 5HT. On the contrary, PW Addition of 5HT to M-stimulated cultures increased H-TdR uptake by 3-fold. Ta. Moreover, half of the maximum uptake increase corresponded to 5 μT and 15 μM. Also, This phenomenon can be observed when 5HT is added from day 3 to day 5 of the culture period. At this point, 5μT receptors are maximally expressed (see Table V). In addition, the culture period Addition of 5HT early in the period increases proliferation three-fold; More 5HT (100 μM) is required for this purpose. To explain this difference One possibility is that the 5HT activity is due to the 5μT receptor, which does not appear until the third day. mediated by the metabolism or oxidation of 5HT at the beginning of the culture period on day 3. reducing the effective concentration of 5HT in the culture medium by Conceivable.

さらに、5 HT受容体に結合し、活性化T細胞上において該5μT受容体と相 互作用するいくっがの類似体について、上記PWMにより刺激したPBLの増殖 を促進若しくは阻害する能力を試験した。これら試験したもののうち、5HT、 ケタンセリン(5HT2受容体アンタゴニスト)およびアルファメチルセロトニ ン(5HT 2受容体アゴニスト〕は該T細胞の増殖を10乃至30μMの濃度 範囲において約3倍に促進した。しがし、他の2種の51(T 2受容体アンタ ゴニスト、すなわち、リタンセリン(5HT 2に対して選択的)およびミアン セリン(5HT 2および5HT1cに対して選択的)は該T細胞増殖を刺激し なかった。ただし、リタンセリンは高い濃度においていくらか阻害性を示したよ うに思えた。Furthermore, it binds to the 5HT receptor and interacts with the 5μT receptor on activated T cells. Proliferation of PBL stimulated by PWM as described above for interacting analogues of were tested for their ability to promote or inhibit Of these tested, 5HT, Ketanserin (5HT2 receptor antagonist) and alpha methyl serotonin (5HT2 receptor agonist) inhibits the proliferation of T cells at a concentration of 10 to 30 μM. The range was increased approximately three times. Shigashi and two other 51 (T2 receptor antagonists) agonists, namely ritanserin (selective for 5HT2) and mian Serine (selective for 5HT2 and 5HT1c) stimulates the T cell proliferation. There wasn't. However, ritanserin showed some inhibitory properties at high concentrations. It seemed like a sea urchin.

これらの結果を第10に示す。次に、PBLの培養におけるCD4+およびCD 8+T細胞の増殖をPWMで刺激した。この場合、CD4+およびCDS+92 8球の混合培養においては、CDS+928球の細胞の方が7日目において主に 増殖されていた。第5図示の結果はまた、もしもCDS+928球が抗体および 補体処理により除去されると、5HTまたは5μT受容体リガンドでのPBL培 養の増殖を刺激する能力が失われることを示している。These results are shown in number 10. Next, CD4+ and CD4+ in culture of PBL Proliferation of 8+ T cells was stimulated with PWM. In this case, CD4+ and CDS+92 In the mixed culture of 8 cells, the cells of CDS+928 cells mainly showed higher growth on the 7th day. It was being proliferated. The results shown in Figure 5 also indicate that if the CDS+928 spheres PBL culture with 5HT or 5μT receptor ligands when removed by complement treatment. This indicates that the ability to stimulate the growth of nutrients is lost.

また、上述の結果はT細胞胚が5μT受容体を表現すること、5HTかPWMで 刺激されたT細胞増殖を高めること、および、該T細胞が5HTを含むことを示 している。このことは当該5HTがPWMによって活性化されたT細胞の正常な 増殖に対して重要であることの可能性を示している。この場合、トリプトファン ヒドロキシラーゼのインヒビター、5HT合成における速度制限段階を細胞内の 5HTの蓄積を枯渇するために使用した。The above results also indicate that T cell embryos express 5μT receptors and that either 5HT or PWM Enhances stimulated T cell proliferation and shows that the T cells contain 5HT. are doing. This means that the 5HT is normal in T cells activated by PWM. This indicates that it may be important for proliferation. In this case, tryptophan Inhibitors of hydroxylase, which inhibit the rate-limiting step in 5HT synthesis in cells It was used to deplete 5HT accumulation.

表9における結果はp−クロロフェニルアラニン(pCPA)による5HT合成 の阻害がPWMにより刺激した細胞増殖をも部分的に阻害することを示している 。なお、5F(Tやケタンセリンをこれらの培養体に添加すると、当該pCPA の阻害効果が逆転する。The results in Table 9 are for 5HT synthesis with p-chlorophenylalanine (pCPA). show that inhibition of PWM also partially inhibits cell proliferation stimulated by PWM. . Furthermore, when 5F(T or ketanserin is added to these cultures, the pCPA The inhibitory effect of is reversed.

表9 5HT合成の阻害によるT細胞増殖の抑制PBL PWM pCPA 5HT  ケタンセリン 3H−TdR−−一−−−℃μ頭μ+咀しバ10mm) 兵〃バ ー−+ −−−−1728±210 + + −−−11954±1022 十 + + −−4,306± 688+ + + + 9726±1614 ± + + + 10068±469 pWMによるCD8+迭1°レソサT皿烙立孟並孔玉上ける5HTの 、− CDS+サプレッサT細胞はPWMで刺激したPBLの培養における増殖細胞の 最も多くの割合を占める。pCPAによる5HT合成の阻害がPWMで刺激され た培養における増殖を阻害するため、該pCPAがサプレッサ細胞機能の表現を も阻害すると考えられる。これらの結果を第11図に示す。5HT含有量を減少 するために、PBLの培養体をpCPAの存在下または非存在下においてP W  Mにより刺激した。また、5HT受容体に対するアゴニストを生成して該pC PAの作用を逆転するために、いくつかの培養体をケタンセリンで処理した。さ らに、7日後に培養体を洗浄し、ミドマイシンCで処理し、PWMで刺激した新 鮮なCD4+T細胞に添加して、抑制細胞活性を試験した。その結果、PWMで 刺激した培養体に対応する細胞が該PWMの存在下にCD4+T細胞の増殖を該 サプレッサ細胞と該対応する細胞との比を1=2として最大70%まで抑制した 。また、50%までの増殖の抑制が7×10個の細胞若しくは1個のサプレッサ 細胞に対して7個の対応する細胞により達成された。さらに、当該サプレッサ細 胞を生成するために使用された主培養体におけるpCPAの存在は該サプレッサ 細胞の活性発生を完全に阻止した。一方、ケタンセリンをpCPAと共に該培養 体に加えた場合は、当該サプレッサ細胞の活性は調節の点で正常であった。Table 9 Suppression of T cell proliferation by inhibiting 5HT synthesis PBL PWM pCPA 5HT Ketanserin 3H-TdR--1---℃μ head μ+massage bar 10mm) military bar --+ ----1728±210 + + ---11954±1022 10 + + −-4,306± 688+ + + + 9726±1614 ±+++10068±469 CD8 + 1° Resosa T plate heated by pWM, 5HT, - CDS+ suppressor T cells are the most proliferating cells in PWM-stimulated PBL cultures. It accounts for the largest proportion. Inhibition of 5HT synthesis by pCPA was stimulated by PWM. In order to inhibit proliferation in culture, the pCPA inhibits expression of suppressor cell function. It is also thought to inhibit These results are shown in FIG. Reduced 5HT content To do this, PBL cultures were incubated with PW in the presence or absence of pCPA. Stimulated by M. In addition, agonists for 5HT receptors can be produced to To reverse the effects of PA, some cultures were treated with ketanserin. difference Furthermore, after 7 days, cultures were washed, treated with mydomycin C, and stimulated with PWM. Suppressor cell activity was tested by adding fresh CD4+ T cells. As a result, in PWM Cells corresponding to the stimulated cultures showed proliferation of CD4+ T cells in the presence of the PWM. Suppression was achieved up to 70% by setting the ratio of suppressor cells and corresponding cells to 1=2. . In addition, inhibition of proliferation by up to 50% was achieved with 7 x 10 cells or 1 suppressor. This was achieved with 7 corresponding cells per cell. Furthermore, the suppressor details The presence of pCPA in the main culture used to generate cells indicates that the suppressor Cell activity was completely inhibited. Meanwhile, ketanserin was cultured with pCPA. When added to the body, the activity of the suppressor cells was normal in terms of regulation.

PHAあるいは0K73等の他のT細胞マイトゲンはCD4+およびCD8+T 細胞の両方の増殖を刺激するが、培養の最初の1週間以内にCD8+T細胞によ りサプレッサ細胞の活性を表現するには至らない。さらに、該0KT3またはP  HAのいずれかにより刺激されたPB Lは72時間以内にその5 HT含有 量が低下するが、PWMにより刺激された培養体は少なくとも7日間当該5HT 含有量を維持する。また、該P HAまたは0KT3のいずれかにより刺激され た培養体にpCPAを添加すると、増殖か阻害されない(図示せず)。なお、該 5HT含有量のサプレッサ細胞活性に対する関連性を調べるために、PBLをT 細胞の5HT受容体アゴニストであるケタンセリン(5HT受容体アンタゴニス ト)存在下または非存在下て0KT3により刺激し、培養の5日後にサプレッサ 細胞の活性を試験した。その結果、該0KT3て刺激した培養体から得たT細胞 胚からは検出可能な程度のサプレッサ細胞活性が存在しなかった。これに対して 、0KT3およびケタンセリンの両方により刺激した培養体から得たT細胞胚は 、二次培養において試験した際に、サプレッサ細胞活性を発現した。これらの結 果を第12図に示す。Other T cell mitogens, such as PHA or 0K73, target CD4+ and CD8+ T cells. stimulates both proliferation of cells, but within the first week of culture, CD8+ T cells However, it is not possible to express the activity of suppressor cells. Furthermore, said 0KT3 or P PBL stimulated by any of the HAs loses its 5HT content within 72 hours. PWM-stimulated cultures retain the 5HT for at least 7 days, although the amount decreases. Maintain content. Also, stimulated by either PHA or 0KT3 Addition of pCPA to cultured cultures did not inhibit growth (not shown). In addition, applicable To investigate the relationship of 5HT content to suppressor cell activity, PBL was Ketanserin, a cellular 5HT receptor agonist g) Stimulate with 0KT3 in the presence or absence of suppressor after 5 days of culture. Cell activity was tested. As a result, T cells obtained from the culture stimulated with the 0KT3 There was no detectable suppressor cell activity in the embryos. On the contrary , T cell embryos obtained from cultures stimulated with both 0KT3 and ketanserin , expressed suppressor cell activity when tested in secondary culture. These consequences The results are shown in Figure 12.

見旦J−±Tリンパ球EU応 る マイトゲンとしての5HT PWMに応じたCD8+Tリンパ球の増殖はCD4+T細胞を必要とする。上記 5HTまたは5 HT受容体リガンドによるPBL増殖培養の3倍増加は該CD 8+T細胞の除去後は消失する。それゆえ、5HTが該CD8+T細胞に対する 共通マイトゲン(co−mitogen)として作用し、PWMの存在下におけ る増殖を刺激する可能性があると考えられる。これらの結果を第9図に示す。な お、CD8+T細胞の培養体はPWMの存在下またはPWMおよびIL2の存在 下では増殖しない。Mitan J-±T lymphocytes EU responds to 5HT as a mitogen Proliferation of CD8+ T lymphocytes in response to PWM requires CD4+ T cells. the above A 3-fold increase in PBL growth cultures with 5HT or 5HT receptor ligands It disappears after removal of 8+ T cells. Therefore, 5HT acts on the CD8+ T cells. Acts as a co-mitogen and in the presence of PWM It is thought that it has the potential to stimulate proliferation. These results are shown in FIG. Na The culture of CD8+ T cells was cultured in the presence of PWM or in the presence of PWM and IL2. It does not grow below.

これに対して、CD8+T細胞含有の培養体およびPwNlは5HTまたはケタ ンセリンの存在下に増殖する。さらに、該増殖の程度はCD4+T細胞が該CD 8+T細胞の培養体に添加された場合に匹敵する。また、5HTまたはケタンセ リンのみの添加は該CD8+T細胞の増殖を刺激しない。以上のことがら、これ らのデータは5HTがCD8+サプレツサT細胞に対する共通マイトゲンである ことを示すと考えられる。In contrast, CD8+ T cell-containing cultures and PwNl Proliferates in the presence of encerine. Furthermore, the degree of proliferation is such that CD4+ T cells 8+ when added to a culture of T cells. Also, 5HT or Ketanse Addition of phosphorus alone does not stimulate proliferation of the CD8+ T cells. Above all, this data show that 5HT is a common mitogen for CD8+ suppressor T cells. This is considered to indicate that

5 HTによる活性 T細 におけるcAMPレベルの特定の5HT受容体亜類 型に連結する二つのシグナルトランスダクション経路はアデニル酸シクラーゼの 変性およびフォスフォリパーゼCの活性化である。この場合、フォスフォリバー ゼCの活性化はリン酸イノシトールを増加し、かつ、細胞内Ca+十濃度を高め る。また、ジュルカット細胞においては、5HTが該リン酸イノシトールと細胞 内Ca+十濃度の増加を促す。それゆえ、リン酸イノシトールのレベルおよび細 胞内Ca+十の変化を5HTに呼応するT細胞胚(PHA)内で測定し、さらに 、当該変化を0KT3に呼応する陽性調節として測定した。これらの結果を表7 に示す。ジュルヵソト細胞に比して、5HTは上記リン酸イノシトール量の変化 や細胞内Ca+十濃度の変化を引き起こさない。また、陽性調節として、0KT 3はT細胞胚内のリン酸イノシトールの濃度や細胞内Ca+十濃度の増加を促進 する。したかって、該T細胞腫は当該リン酸イノシトールのレベルや細胞内Ca +十濃度の変化により5HTに応答しないので、細胞内cAMPの量を5HTの 存在下および非存在下の場合において比較した。すなわち、休止T細胞、T細胞 腫およびンユルカット細胞の3種について比較を行い、CAMPレベルをフォル スコリンの存在下および非存在下の場合で比較した。これらの結果を表8に示す 。Activation by 5HT cAMP levels in specific 5HT receptor subclasses Two signal transduction pathways linked to the adenylate cyclase denaturation and activation of phospholipase C. In this case, the phosphor Activation of ZeC increases inositol phosphate and increases intracellular Ca+ concentration. Ru. In addition, in Jurkat cells, 5HT interacts with the inositol phosphate. Promotes an increase in internal Ca+1 concentration. Therefore, the level of inositol phosphate and Changes in intravesicular Ca + + were measured in T cell embryos (PHA) in response to 5HT, and , the change was measured as a positive regulation in response to 0KT3. These results are shown in Table 7. Shown below. Compared to Jurca Soto cells, 5HT showed a change in the amount of inositol phosphate mentioned above. and does not cause changes in intracellular Ca+ concentration. Also, as a positive regulation, 0KT 3 promotes increases in the concentration of inositol phosphate and intracellular Ca+ concentration in T cell embryos do. Therefore, the T-cell tumor is affected by the level of inositol phosphate and intracellular Ca. Since the amount of intracellular cAMP does not respond to 5HT due to a change in concentration, the amount of intracellular cAMP Comparisons were made in the presence and absence. i.e., resting T cells, T cells Comparisons were made between three types of tumor and Nyurkat cells, and the CAMP level was determined by folding. A comparison was made in the presence and absence of skolin. These results are shown in Table 8. .

この結果、休止T細胞は5HTに呼応して細胞内cAMPレヘルレベ化しないが 、活性化T細胞は5111°(5μM)に呼応して2倍以上までc A M P を増加した。また、ンユルカノト細胞は5 HTに呼応してcAMPレベルを変 化(、なかった。つまり、フォルスコリンかアデニル酸ンクラーゼを活性化し、 細胞内cAMPを増加したと考えられる。それゆえ、フォルスコリンは休止T細 胞、活性化′r細胞およびジュルカット細胞においてcAMP濃度を増加した。As a result, resting T cells do not raise intracellular cAMP levels in response to 5HT; , activated T cells more than doubled in response to 5111° (5 μM). increased. In addition, Nyurukanoto cells change cAMP levels in response to 5HT. (, there was no activation of forskolin or adenylate nucrase, It is thought that intracellular cAMP was increased. Therefore, forskolin is cAMP concentration was increased in cells, activated 'r cells and Jurkat cells.

なお、該フォルスコリン依存のcAMP量の増加は活性化T細胞への5HTの添 加により阻害されたが、休止T細胞またはジュルカット細胞への添加では当該阻 害反応は生しなかった。第2図は活性化T細胞におけるcAMPレベルの増加を 引き起こすに要する5HTの濃度を示しており、また、フォルスコリン存在下に おける、当該活性化T細胞でのcAMPレベルの減少を示している。該cAMP レベルの変化は30nMがら3μMの範囲での5 HT濃度に比例している。ま た、最大応答の半分の値が200から800nMの間の5HT量に相当しており 、このことは、結合データから得られるKd値の場合と同様である。また、PM Aの添加も該T細胞腫やジュルカット細胞におけるcAMPレベルの増加をもた らす。ただし、フォルスコリンの場合に比して、5HTは、いずれの細胞種にお いても、当該PMA依存のcAMP増加を阻害しない。これらの結果も表9上記 細胞内cAMP濃度の変化は活性化T細胞の機能および増殖に影響することが知 られている(53)。上述の結果に基つき、5 HTは、活性T細胞上の異なる サブポピユレーションまたは異なる刺激因子に作用された活性T細胞において、 異なる細胞内cAMP量の調節ができると考えられる。表VIIに示す結果はP HA、OK、 T 3またはPWMで初期的に刺激したT細胞腫におけるcAM P濃度の変化の比較を示す。該T細胞は増殖応答のピークにおいて採取され、5 HTの存在下または非存在下でのc AMP含有量をアッセイした。また、該培 養体を最後の48時間5HTの存在下で培養して、増殖についての影響を調べた 。この結果、該5HTはPHAで刺激したT細胞ではcAMPのレベルを2倍に 増加し、また、0KT3で刺激した細胞培養体では該cAMP量を僅かに増やし たが、PWMで処理したT細胞においてはc A M Pの量を60%減少した 。つまり、5HT存在下または非存在下での異なる刺激因子によるT細胞培養に おける増殖応答は細胞内cAMPのレベルに影響することがわかった。したがっ て、5HTはPHAに応答するT細胞の増殖を僅かに阻害するか、PWMに応答 するT細胞の増殖を3倍以上に促進する。加えて、該PWMによる刺激に先立っ てCD8+T細胞を除去すると、これらの培養体における5HTの上記共通マイ トゲンとしての効果か消滅する。それゆえ、5. HTはc A M Pレベル の調整により、明らかに該T細胞増殖の促進もしくは抑制のいずれも行うことか できる。ただし、当該応答の方向はマイトゲンとしての作用と上記刺激因子に応 答するT細胞のサブポピユレーションとによって定まると考えられる。第3図は 5HTに対するPWM活性T細胞の増殖応答が比較的速められた結果を示してい る。なお、咳5 HTの存在下における増殖促進は数時間以内に検出てき、40 時間でその最大ピークに到達する。また、CへNIPのレベルは30分で対照量 の60%まで減少し、さらに後続の40時間において、対照量の40%が減少す る。第4図は該PWM活性T細胞上の5HTの共通マイトケンとしての効果にお ける濃度依存性を示している。The forskolin-dependent increase in cAMP amount is due to the addition of 5HT to activated T cells. However, addition to resting T cells or Jurkat cells inhibited the inhibition. No adverse reactions occurred. Figure 2 shows the increase in cAMP levels in activated T cells. It shows the concentration of 5HT required to cause Figure 2 shows a decrease in cAMP levels in the activated T cells. The cAMP The change in level is proportional to 5HT concentration ranging from 30 nM to 3 μM. Ma In addition, the value of half the maximum response corresponds to a 5HT amount between 200 and 800 nM. , this is similar to the case of the Kd value obtained from the combined data. Also, PM Addition of A also increased cAMP levels in the T cell tumors and Jurkat cells. Ras. However, compared to forskolin, 5HT is effective against all cell types. However, the PMA-dependent increase in cAMP is not inhibited. These results are also shown in Table 9 above. Changes in intracellular cAMP concentration are known to affect activated T cell function and proliferation. (53) Based on the above results, 5HT has different effects on activated T cells. In subpopulations or activated T cells affected by different stimulatory factors, It is believed that different levels of intracellular cAMP can be regulated. The results shown in Table VII are P cAM in T cell tumors initially stimulated with HA, OK, T3 or PWM A comparison of changes in P concentration is shown. The T cells were harvested at the peak of the proliferative response and cAMP content was assayed in the presence or absence of HT. In addition, the culture Cultures were cultured in the presence of 5HT for the last 48 hours to determine the effect on proliferation. . As a result, 5HT doubled the level of cAMP in T cells stimulated with PHA. and slightly increased the amount of cAMP in cell cultures stimulated with 0KT3. However, in T cells treated with PWM, the amount of cAMP was reduced by 60%. . In other words, T cell culture with different stimulatory factors in the presence or absence of 5HT It was found that the proliferative response in cells affects the level of intracellular cAMP. Therefore Therefore, 5HT slightly inhibits T cell proliferation in response to PHA or inhibits T cell proliferation in response to PWM. Promotes the proliferation of T cells by more than 3 times. In addition, prior to stimulation by the PWM Depletion of CD8+ T cells by The effect as a togen disappears. Therefore, 5. HT is c A M P level Does the regulation clearly promote or suppress T cell proliferation? can. However, the direction of the response depends on the mitogenic action and the above stimulating factors. It is thought that this is determined by the subpopulation of T cells that respond to this problem. Figure 3 is The results show that the proliferation response of PWM-activated T cells to 5HT is relatively accelerated. Ru. Furthermore, the promotion of proliferation in the presence of cough 5 HT was detected within a few hours, and 40 reach its maximum peak in time. In addition, the level of NIP to C was determined by the control amount at 30 minutes. 60% of the control amount, and in the subsequent 40 hours, the control amount decreased by 40%. Ru. Figure 4 shows the effect of 5HT as a common mitogen on the PWM activated T cells. It shows the concentration dependence of

この場合、5HTは増殖アッセイの48時間前に培養体に添加した。なお、最大 の増殖促進は5HT30μMにおいて観られ、IC50は10μMであった。In this case, 5HT was added to the cultures 48 hours before the proliferation assay. In addition, the maximum Growth promotion was observed at 30 μM of 5HT, and the IC50 was 10 μM.

当該5 HTのT細胞への添加の結果は該応答細胞の表現型に依存する。すなわ ち、0KT3またはPHAにょるT細胞増殖の促進によりCD4およびCD8表 現型のT細胞腫が生じ、PWMによるT細胞培養の促進によりCD8表現型のT 細胞腫が主に生じる。なお、5HTに対するこれら2種の培養体の応答は異なる 。また、当該P HAまたは0KT3により刺激された培養体への5HTの添加 はc A M PO量を増加し、該T細胞増殖を僅かに阻害する。これに対して 、PWMで刺激した培養体への5 HTの添加はcAMP量を60%減少し、T 細胞増殖を3乃至4倍に高める。なお、これらの培養体における細胞増殖はFM S (図示せず)により計測した限りにおいてはCD8+T細胞が主体的であり 、サプレッサ細胞を発現するが細胞障害作用は呈示しない。また、CD8+Tl 1B胞を除(ことにより、これらの培養体における5HTの共通マイトゲンとし ての効果が消失する。該5HTはまた平滑筋細胞若しくは繊維芽細胞等の特定種 細胞の成長因子として作用する(46.47)。このことは、当該5HTの成長 因子としての特性が免疫系細胞に限定されないことを示すと考えられる。The outcome of adding 5HT to T cells depends on the phenotype of the responding cells. Sunawa Furthermore, promotion of T cell proliferation by 0KT3 or PHA increases CD4 and CD8 levels. A current T-cell tumor is generated, and promotion of T cell culture by PWM results in a CD8-phenotype T cell tumor. Cytomas primarily occur. Note that the responses of these two cultures to 5HT are different. . Additionally, addition of 5HT to cultures stimulated with the PHA or 0KT3 increases the amount of cAMPO and slightly inhibits the T cell proliferation. On the contrary , addition of 5HT to PWM-stimulated cultures decreased cAMP levels by 60% and T Increases cell proliferation 3-4 times. In addition, cell proliferation in these cultures is based on FM. As measured by S (not shown), CD8+ T cells were predominant. , express suppressor cells but do not exhibit cytotoxic effects. Also, CD8+Tl 1B cells (thereby acting as a common mitogen for 5HT in these cultures) effect disappears. The 5HT can also be used to target certain types of cells such as smooth muscle cells or fibroblasts. Acts as a growth factor for cells (46.47). This indicates that the growth of the 5HT This is thought to indicate that its properties as a factor are not limited to immune system cells.

以上のことから、T細胞は活性時において5HTに対応する受容体を表現し、該 5HTは活性T細胞の増殖および機能に影響することがわかる。さらに、5HT が血小板の分泌顆粒の主成分であり、それゆえ、炎症部位において放出されるこ とが明らかになっている(2−4)。From the above, T cells express receptors corresponding to 5HT when activated, and 5HT is shown to affect activated T cell proliferation and function. Furthermore, 5HT is the main component of platelet secretory granules and is therefore likely to be released at sites of inflammation. It has been revealed that (2-4).

したがって、該5HTは炎症部位において存在してT細胞の機能に影響を及ぼす と考えられる。さらに、最近では、精製した休止T細胞もまた5HTを含むこと が明らかになっている(50)。そして、該T細胞はガンマ■FNに呼応して媒 体中に5HTを放出する。なお、このような条件下においては、該媒体中の濃度 は約3oonM / m l / T細胞10個となる。このことはT細胞5H T受容体のKdの場合に極めて近似している。そして、5 HTかT細胞により 放出されると、該5HTはT細胞により当該T細胞機能の調節において重要な役 割を果たすようになる。また、CD8+T細胞はCD4+T細胞の非存在下にお いてP W Mに呼応して増殖しないことが明らかになっている(54−56) 。したがって、5HTかガンマIFNに呼応してCD4+T細胞により放出でき 、かつ、CD8+T細胞の成長因子として作用するという仮定が興味深くなる。Therefore, the 5HT is present at sites of inflammation and influences T cell function. it is conceivable that. Furthermore, it has recently been shown that purified resting T cells also contain 5HT. has been revealed (50). Then, the T cells respond to gamma FN and become mediators. Releases 5HT throughout the body. Note that under such conditions, the concentration in the medium is approximately 3oonM/ml/10 T cells. This means that T cell 5H This is very similar to the case of the Kd of the T receptor. And by 5 HT or T cells Once released, the 5HT plays an important role in the regulation of T cell function by T cells. They begin to fulfill their duties. Furthermore, CD8+ T cells are activated in the absence of CD4+ T cells. It has been shown that P.W.M. does not proliferate in response to PWM (54-56). . Therefore, it can be released by CD4+ T cells in response to 5HT or gamma IFN. , and the hypothesis that it acts as a growth factor for CD8+ T cells becomes interesting.

リューマチ様関節炎はリューマチ症状において大きな群を成す主要病状である。Rheumatoid arthritis is a major disease that forms a large group of rheumatic symptoms.

自己免疫成分を伴うリューマチ症状としては、リューマチ様関節炎、全身性紅斑 性狼癒、ショーグレン(Sjogren’ S)症候群、硬皮症、混合結合組織 病、皮膚筋炎、多発性筋炎、ライター(Reiter’ s)症候群およびベセ ット(Behcet’ s)病が挙げられる。Rheumatic symptoms with autoimmune components include rheumatoid arthritis and systemic erythema. Sexual lupus, Sjogren's syndrome, scleroderma, mixed connective tissue disease, dermatomyositis, polymyositis, Reiter's syndrome, and Besse's syndrome. An example is Behcet's disease.

該リューマチ様関節炎における関節炎は後因子的奇形を伴う関節部の破壊により 生じる。また、患部は関節部に限らず、免疫症候群により引き起こされる脈管炎 では皮膚、目および肺が含まれる。The arthritis in rheumatoid arthritis is caused by destruction of the joints accompanied by postfactorial deformities. arise. In addition, the affected areas are not limited to the joints, but also vasculitis caused by immune syndrome. This includes the skin, eyes, and lungs.

該関節炎は滑液細胞と循環する体液中から関節の滑液層内に浸透する種々の細胞 要素(およびそれらの可溶生成物)との複雑な相互作用により引き起こされる。This arthritis is caused by synovial fluid cells and various cells that penetrate into the synovial layer of the joint from circulating body fluids. caused by complex interactions with the elements (and their soluble products).

このことは大量の細胞増殖を引き起こし、また、該滑液細胞の活性化をもたらす 。さらに、組織培養中における当該滑液細胞の特性は形質転換した細胞のそれら と同一視されてきた。なお、関節障害につながる一連の作用についての詳細な議 論は基礎免疫学(FundamentalImmunoiogy 2ed、、P aul、(1989)pp846−849)を参照されたい。This causes massive cell proliferation and also leads to activation of the synovial fluid cells. . Furthermore, the properties of the synovial fluid cells in tissue culture are similar to those of transformed cells. has been equated with. In addition, a detailed discussion of the series of effects that lead to joint disorders is provided. The theory is Fundamental Immunology 2ed, P. aul, (1989) pp 846-849).

実験的関節炎の発現対象には、純粋にT細胞媒介された自己免疫症であるアジュ バント関節炎を選択(また。なお、該関節炎は、油液中のマイコバクテリウム結 核菌(完全なフロイント(Freund)のアジュバント)の注射によるラット (例ニルイスラット(Lewisrats))の筋肉緊張により誘発できる。な お、関節部分におけるマイコバクテリウムのペプチドグリカンとプロテオグリカ ンとの間には構造的類似点がある。すなわち、該マイコバクテリウム結核菌の非 ペプチドにはT細胞媒介のアジュバント関節炎により認識されるエピトープが含 まれる。加えて、リューマチ様関節炎を伴う親細胞からのT細胞は該共通のエピ トープに応答する。上記文献(Paul)参照。Subjects with experimental arthritis include adjuvant, a purely T cell-mediated autoimmune disease. Bunt's arthritis was selected (also note that this arthritis is caused by mycobacterium condensation in oily fluids). Rats by injection of Mycobacterium mycobacterium (complete Freund's adjuvant) It can be induced by muscle tension in (eg Lewis rats). Na Mycobacterium peptidoglycan and proteoglycan in joints There are structural similarities between the two. In other words, the Mycobacterium tuberculosis The peptide contains an epitope recognized by T cell-mediated adjuvant arthritis. be caught. In addition, T cells from a parent with rheumatoid arthritis share this common epitope. Reply to Tope. See above (Paul).

害J:アンユバント B: 熱殺菌したマイコバクテリウムブチリラム(Myc。Harm J: Unjuvant B: Heat-killed Mycobacterium butirirum (Myc.

bacterium butyrium)若しくはマイコバクテリウム結核菌H 37Ra、10mg/mlと共に超重鉱物油を加えて完全フロインドアジュバン ト(CFA)を作成した。0日目に、雌のルイスラット(200−225g)の 右の後ろ脚の足裏(投与部)に該アジュバントを0.1ml皮下注射投与した( 100μg/動物個体)。まず、初期炎症反応が投与した足に生じた。bacterium butyrium) or Mycobacterium tuberculosis H Complete Freund's adjuvant by adding extra heavy mineral oil with 37Ra, 10mg/ml (CFA) was created. On day 0, female Lewis rats (200-225 g) 0.1 ml of the adjuvant was subcutaneously injected into the sole (administration site) of the right hind leg ( 100 μg/animal). First, an initial inflammatory response occurred in the treated paw.

この症状は5日目までに治まり、9日目から12日月まで二次的な継続炎症/関 節炎症状か投与した足と鎮定と対を成す非投与の左足の両方に生した。鎮定の裏 および踵の直径の計測を2日目の初期症状および12日月と16日目の二次的症 状(両足)について、手持ち式の技術者用カリパスにより行った。測定結果を0 日目の足の直径を基準とする腫れの変化+または−S、E、の平均値として表現 した。This symptom subsides by the 5th day, with secondary ongoing inflammation/inflammation occurring from the 9th to the 12th day. Symptoms of inflammation occurred in both the treated leg and the untreated left leg. Behind the pacification and heel diameter measurements for initial symptoms on the 2nd day and secondary symptoms on the 12th and 16th day. (both feet) using hand-held engineer's calipers. Set the measurement result to 0 Change in swelling relative to the diameter of the foot on day + or - expressed as the mean value of S, E, did.

次いで、薬物を水、生理食塩水またはこれらのいずれかと2%ポリエチレングリ コール40010.1%ツイーン(Tween)80との混合液に溶解若しくは 懸濁し、症状の発現前または発現後に、正規の方法(経口、点滴、筋肉内)で投 与した。The drug is then mixed with water, saline, or either of these with 2% polyethylene glycol. Cole 400 10.1% Dissolved in a mixture with Tween 80 or Suspended and administered by regular means (orally, intravenously, intramuscularly) before or after the onset of symptoms. gave.

この結果、当該アジュバント関節炎は明らかにT細胞によって媒介され、該病状 を健全な動物体に転移し得る活性化T細胞を単利することができた。さらに、リ タンセリンは10または30 m g / k gで当該病状の進展を阻害し、 ケタンセリンは該病状の進展を阻止しないことがわかった。As a result, the adjuvant arthritis is clearly mediated by T cells and the disease state We were able to obtain activated T cells that can be transferred to healthy animals. In addition, Tanserine inhibits the progression of the disease at 10 or 30 mg/kg, It was found that ketanserin did not prevent the progression of the disease state.

表10 アジュバント R;に・ る1タンセリンのデータ実験1 2 症状−16日目 平均踵径 % 阻害状態 ±S、Emm 対照 2.55±、44 対照 極めて +リタンセリン 0.93±、3163.5 活性30mg/kg i、p。Table 10 Adjuvant R; 1 Tanserine Data Experiment 1 2 Symptoms - Day 16 Average heel diameter % inhibition state ±S, Emm Control 2.55±, 44 contrast extremely + Ritanserin 0.93±, 3163.5 Activity 30mg/kg i, p.

(日数−1,0,1,5,7,9,12)十ケタンセリン 2.09±、462 3.7 \1実験2 対照 2.35±、56 対照 +リタンセリン 1.39±、3040.3* 活性30mg/に、g p、。(Number of days - 1, 0, 1, 5, 7, 9, 12) Ten ketanserin 2.09±, 462 3.7 \1 Experiment 2 Control 2.35±, 56 contrast + Ritanserin 1.39±, 3040.3* Activity 30mg/gp.

(日数−1,0,3,6,8,10,13)+ペランセリン 2.44±、34  4.3 \活性実験3 対照 3.28±、44 対照 +リタンセリン 2.33±、4329.0 不活性3.0mg/kg +)、 o。(Number of days - 1, 0, 3, 6, 8, 10, 13) + Perancerin 2.44±, 34 4.3 \Activity experiment 3 Control 3.28±, 44 contrast +ritanserin 2.33±, 4329.0 inactive 3.0mg/kg +), o.

+リタンセリン 0.89±、2172.9 極めて10m k 、o、 ’− *当該活性の差はわずかに異なる投与スケジュールによると説明できる。+ Ritanserin 0.89±, 2172.9 extremely 10m k, o, ’- *The difference in activity can be explained by a slightly different dosing schedule.

精製した組み換えヒト科IFNをアムゲン(Amgen)(Thousand  0aksSCA)から購入し、使用前に媒体により希釈した。5−0H−)リブ トファン、5HT、)リブトファン、5−0H−インドール酢酸およびメラトニ ンをシグマ(S i gma)から入手し、p−クロロフェニルアラニン(pC PA)をリサーチバイオケミカル社(Research Biochemica ls、Inc、)(Natick、MA)から入手した。また、RPM1164 0媒体、ウシ胎児結成(Fe2)、ピルビン酸ナトリウムおよびグルタミン酸ナ トリウムをギブコ(GIBCO)から入手した。平底マルチウェル組織培養皿を ベクトンデイツキンソン(Beeton Dickinson)またはコスタ− (Costar)から人手した。さらに、HPLC用の溶媒をアルドリッチ(A  l d r i c h)から入手した。Purified recombinant human IFN was obtained from Amgen (Thousand). 0aksSCA) and diluted with vehicle before use. 5-0H-) Rib tophan, 5HT,) ribtophan, 5-0H-indoleacetic acid and melatoni p-chlorophenylalanine (pC) was obtained from Sigma (Si gma). Research Biochemical Co., Ltd. (PA) ls, Inc.) (Natick, MA). Also, RPM1164 0 medium, bovine fetal formation (Fe2), sodium pyruvate and sodium glutamate. Thorium was obtained from GIBCO. flat bottom multiwell tissue culture dish Becton Dickinson or Costa (Costar). Furthermore, the solvent for HPLC is Aldrich (A Obtained from l d r ic h).

1紅亙1 ヒト科頸管癌腫細胞系ME180をアメリカンタイプカルチャーコレクション( Ame r i can TypeCulture Co11ection)( Rockvi l le、MD)から入手し、組織培養フラスコ内において、1 0%FSC存在下、無抗体で、5%CO2含有空気中37℃の人体条件下にRP M11640媒体中で保持した。1 red light 1 The human cervical carcinoma cell line ME180 was collected from the American Type Culture Collection ( Amer    can TypeCulture Co11ection)( Rockville, MD) and in tissue culture flasks. RP in the presence of 0% FSC, without antibodies, under human body conditions at 37°C in air containing 5% CO2. Maintained in M11640 medium.

炙良延亙ヱ二書A ME180細胞を完全な培地内にlX105細胞/m1.100μm/ウェル( 96ウエルプレート)で加え、異なる量のIFHの存在下または非存在下に3日 間培養した。3日目に、該培養体を1μCiの”H−TdRで5時間処理し、フ ィルタ紙上に採取した。なお、該培養は二重に最低3回行い、同様の結果を得た 。また、大部分は次の実験に対する陽性調節として繰り返された。二重に作成し たものは互いに10%以内で等しかった。また、3■(−TdRの取り込みは液 体シンチレーションスペクトロメータにより検出した。Furyanobu Eiji A ME180 cells were grown in complete medium at 1X105 cells/ml.100 μm/well ( 96-well plate) for 3 days in the presence or absence of different amounts of IFH. It was cultured for a period of time. On day 3, the culture was treated with 1 μCi of “H-TdR” for 5 hours and Collected on filter paper. The culture was performed in duplicate at least three times and similar results were obtained. . Most were also repeated as positive controls for the next experiment. Create double were equal within 10% of each other. In addition, 3■ (-TdR uptake is Detected by body scintillation spectrometer.

LIJ−ズ訃二乙ヱ身ム一旦二り1旦二ニヒ及)1ヒフ1−4求、11Σ】HT の および テキストに記載のような種々の時間における種々の処理の後、細胞および培地を 分離し、エタノールと混ぜて最終の濃度を70%にした。次いで、サンプルを0 −4°Cで一晩保存した後、沈殿物および細胞片を遠心分離により除去した。そ の後、サンプルを濃縮してからスピードバック(Speed−vac)を用いて 乾燥し、さらに、20μmのバッフyAに溶解してHPLC(Hewlet−P ackard)による分析にかけた(13)。HT of and Cells and media after various treatments at various times as described in the text. It was separated and mixed with ethanol to give a final concentration of 70%. Then set the sample to 0 After overnight storage at −4°C, the precipitate and cell debris were removed by centrifugation. So Afterwards, the sample was concentrated using a Speed-vac. It was dried, further dissolved in 20 μm buffer yA, and analyzed by HPLC (Hewlett-P Ackard) (13).

該HPLC装置は280nm励起フィルタと360nm発光フィルタとを備える 蛍光検出器(Gilson)を備えている。なお、2種の移動相は、Aニリン酸 でpH3,0に調節したトリエチルアミン50nMと、B:40%メタノール含 有のバッファAとから成る。さらに、溶出勾配はA100%からB100%まで 25分間にわたり線形である。既知の標準保持時間は、5HTで3゜50分、5 −0H−トリプトファンで4.77分、トリプトファンで9.11分、5−0H −インドール酢酸で12.51分、さらに、メラトニンで21.69分であった 。また、既知標準での細胞抽出物におけるピークの同定は既知量の標準物質と該 細胞抽出物とを混合することとクロマトグラフ上のピークの同定を示すことによ って行った。該細胞抽出物からのトリプトファンと5HTの回収率は当該抽出処 理を開始する前に該細胞と既知量の標準物質とを混合することにより決定した値 の90%以上であった。該5HTおよびトリプトファンの定量的処理は3回行わ れ同様な結果を得た。The HPLC device is equipped with a 280nm excitation filter and a 360nm emission filter. Equipped with a fluorescence detector (Gilson). In addition, the two types of mobile phases are A diphosphoric acid 50 nM of triethylamine adjusted to pH 3.0 and B: containing 40% methanol. It consists of a buffer A and a buffer A. Furthermore, the elution gradient is from A100% to B100%. Linear over 25 minutes. Known standard retention times are 3°50 minutes at 5HT, 5 -0H-4.77 minutes for tryptophan, 9.11 minutes for tryptophan, 5-0H - Indoleacetic acid took 12.51 minutes, and melatonin took 21.69 minutes. . In addition, the identification of peaks in cell extracts using known standards can be performed using known amounts of standard substances. by mixing with cell extracts and demonstrating the identification of peaks on the chromatogram. So I went. The recovery rate of tryptophan and 5HT from the cell extract was determined by the extraction process. A value determined by mixing the cells with a known amount of standard substance before starting the treatment. It was over 90% of the time. The quantitative treatment of 5HT and tryptophan was carried out three times. We obtained similar results.

トリプトファンまたは5HトリプトフアンによるIF世」庄双l且1Ll上 IFHによる細胞増殖の阻害は特定種の腫瘍細胞系においてインドールアミン2 .3−ジオキシゲナーゼにより促進されるトリプトファンの損失によるものであ る。IF by tryptophan or 5H tryptophan" Inhibition of cell proliferation by IFH is associated with indoleamine 2 in certain tumor cell lines. .. This is due to loss of tryptophan promoted by 3-dioxygenase. Ru.

したがって、外因性トリプトファンの添加は該IFNによる細胞増殖の阻害を低 減する(参考6−9および第1図)。該トリプトファンは必須アミノ酸であり、 蛋白合成に必要とされ、また、神経伝達物質5HTやメラトニンの合成にも必要 である。第1図示の結果は当該トリプトファン並びに5I(トリプトファンか細 胞増殖のIFN媒介阻害を低減することを示している。分子構造学的には、当該 5H)リブトファンはトリプトファンよりも太き(ME180に対するIFNの 活性を阻害する点で該トリプトファンよりも500倍の作用効果がある(17B 図)。また、該5Hトリプトフアンは5HT合成における前駆体であり、蛋白合 成には使用されない。このことは、5 HT合成の阻害がIFNで処理された細 胞の培養においてトリプトファンの枯渇の重要な結果であるという可能性を示し ている。第2図の結果は細胞増殖のIFN媒介阻害を比較するためのものである 。最適な結果は該化合物が当該3日間の培養における1日目および2日目に添加 された場合に得られる。なお、これらの条件下では、5H1−リブトファンのみ がIFNの活性を阻害する。また、他の5)(トリプトファン代謝物質、5HT 。Therefore, addition of exogenous tryptophan reduces the inhibition of cell proliferation by the IFN. (Reference 6-9 and Figure 1). The tryptophan is an essential amino acid, Required for protein synthesis and also for the synthesis of neurotransmitters 5HT and melatonin It is. The results shown in Figure 1 indicate that the tryptophan and 5I (tryptophan or has been shown to reduce IFN-mediated inhibition of cell proliferation. In terms of molecular structure, the 5H) Ribtophan is thicker than tryptophan (the effect of IFN on ME180) It is 500 times more effective than tryptophan in inhibiting the activity (17B figure). In addition, the 5H tryptophan is a precursor in 5HT synthesis, and is a precursor in protein synthesis. It is not used for construction. This indicates that the inhibition of 5HT synthesis was caused by IFN-treated cells. We show that this may be an important consequence of tryptophan depletion in cell culture. ing. Results in Figure 2 are for comparison of IFN-mediated inhibition of cell proliferation. . Optimal results are obtained when the compound is added on days 1 and 2 of the 3-day culture. obtained if Note that under these conditions, only 5H1-ributophane inhibits IFN activity. In addition, other 5) (tryptophan metabolites, 5HT .

メラトニン、N−Ac−5HTまたは5−0H−インドール酢酸は5Hトリプト フアン代謝を生じるが、上記細胞増殖のIFN媒介阻害を阻+h Lない。Melatonin, N-Ac-5HT or 5-0H-indoleacetic acid is 5H trypto It induces FAN metabolism but does not inhibit the IFN-mediated inhibition of cell proliferation.

上記の結果から、培養地におけるトリプトファンの損失は5Hトリプトフアンま たはその代謝物質である5H′r等の損失につながり、細胞増殖の阻害をもたら す。第3図はIFN存在下の培養での種々の異なる時間における細胞内のトリプ トファンおよび5HTのレベルを示している。すなわち、該トリプトファンおよ び5HTの両方を含有する細胞の場合、これらの両方がIFN存在下の培養にお いて損失する。なお、5Hトリプトフアンは細胞抽出物内において検出できなか った。つまり、該5Hトリプトフアンの合成は5HT合成における速度制限段階 であるため、当該5H)リブトファンは一般に細胞内に蓄積されないのである。From the above results, the loss of tryptophan in the culture medium is caused by 5H tryptophan or or its metabolite 5H'r, resulting in inhibition of cell proliferation. vinegar. Figure 3 shows intracellular tripod levels at different times in culture in the presence of IFN. Levels of tophane and 5HT are shown. That is, the tryptophan and For cells containing both 5HT and 5HT, both of these can be cultured in the presence of IFN. and lose money. Furthermore, 5H tryptophan could not be detected in the cell extract. It was. In other words, the synthesis of 5H tryptophan is the rate-limiting step in 5HT synthesis. Therefore, the 5H)ributophane is generally not accumulated within cells.

5H)リプトファンによるIFN の5HT濃 と 増殖の回′ 5Hトリプトフアンが5 HTレベルを回復するかを調べるために、腫瘍細胞を 阻害量のIFN存在下、5■(トリプトファンの存在下または非存在下に培養し た(表5)。IFNの処理により5HTは検出不能のレベルまで減少するが、5 Hトリプトフアンが存在している場合は、該5HTのレベルは維持される。実際 、該IFNと5Hトリプトフアンとを含む培養体では、未処理の培養体に比して 、5HTのレベルが4倍高かった。なお、5H)リプトファンを添加しても、こ れらの培養体における細胞増殖を回復することができた。5H) 5HT concentration of IFN and proliferation cycle due to liptophan To see if 5H tryptophan restores 5HT levels, tumor cells were In the presence of an inhibitory amount of IFN, 5 μg (incubated in the presence or absence of tryptophan) (Table 5). Treatment with IFN reduces 5HT to undetectable levels; When H-tryptophan is present, the level of 5HT is maintained. actual , in cultures containing the IFN and 5H tryptophan, compared to untreated cultures. , 5HT levels were four times higher. Note that even if 5H) liptophan is added, this We were able to restore cell proliferation in these cultures.

漫HトリプトファンはIFN存在」シp」亀1り堆φ2−仮9」−丈グトファン  を L集子 5H1−リプトファンのIFN媒介による細胞増殖の阻害の阻止能力については 二つの有力な説明が存在し、一つは、それが培養地からのトリプトファンの損失 を防止するためであるということ、また、他の一つは、それが細胞内5HTのレ ベルを回復するためであるということである。第4図の結果は、IFNで処理し た細胞の培養において5Hトリプトフアンは細胞外トリプトファンの損失を阻止 しないということを示している。ME180細胞の対照培養では、72時間の培 養において、有意量のトリプトファンは消費されない。他方、IFNで処理した 細胞の培養では、50%のトリプトファンか24時間で消費され、さらに、48 時間以内に95%が消費される。さらに、該IFNで処理された培養での培養地 におけるトリプトファンの損失速度を5H1−リプトファンの添加によって低減 することはできなかった。ただし、これらの条件下では、5HTのレベルおよび 細胞増殖は対照値まで回復した。Man H tryptophan exists in IFN "Sip" Kame 1 Ritsu φ2-Kari 9"- Length Gutphan  L Shuko Regarding the ability of 5H1-lyptophan to block IFN-mediated inhibition of cell proliferation. There are two likely explanations, one is that it is a loss of tryptophan from the culture medium. Another reason is that it is intended to prevent intracellular 5HT levels. This is to recover Bell. The results in Figure 4 are processed using IFN. 5H tryptophan prevents the loss of extracellular tryptophan in cultured cells. It shows that it does not. For control cultures of ME180 cells, 72 hours of culture In nutrition, no significant amount of tryptophan is consumed. On the other hand, treated with IFN In cell culture, 50% of tryptophan is consumed in 24 hours; 95% is consumed within hours. Furthermore, the culture medium in the culture treated with said IFN The rate of loss of tryptophan in is reduced by the addition of 5H1-lyptophan I couldn't. However, under these conditions, the levels of 5HT and Cell proliferation returned to control values.

f4又のトリプトファンによる 増殖のJ’fil! 5 Hト去ブートファン により 減される 種々の濃度のメチオニンまたはロイシンの存在下における腫瘍細胞の増殖が1. 0−20HMのアミノ酸において最大速度に到達する。これに対して、種々の濃 度のトリプトファンの存在下における腫瘍細胞の増殖が50−100μMのアミ ノ酸において最大速度に到達する(6)。第5図は異なる濃度のトリプトファン の存在下で、3μMの5Hl−リブトファンの存在下または非存在下に行ったM E180細胞の増殖の比較を示している。また、5Hトリプトフアンの非存在下 では、最大増殖は50HMのトリプトファンにの存在下に生じた。また、5Hト リプトフアンの存在下では、最大増殖が10HMのトリプトファン存在下で生じ た。これらの条件から、5H)リブトファンの添加は細胞の3H−トリプトファ ンの蛋白への取り込み能力に影響しないことがわかった。このことは、5Hトリ プトフアンがME180細胞によってトリプトファンに変換されず、また、蛋白 合成にも使用されないことを示している(図示せず)。J’fil multiplication by f4 tryptophan! 5 H to boot fan reduced by Growth of tumor cells in the presence of various concentrations of methionine or leucine was shown in 1. Maximum rate is reached at 0-20 HM amino acids. On the other hand, various concentrations Growth of tumor cells in the presence of tryptophan at 50-100 μM maximum velocity is reached in noic acids (6). Figure 5 shows different concentrations of tryptophan M performed in the presence or absence of 3 μM 5Hl-ributophane. A comparison of proliferation of E180 cells is shown. Also, in the absence of 5H tryptophan In this case, maximum proliferation occurred in the presence of 50 HM tryptophan. Also, 5H In the presence of tryptophan, maximum proliferation occurs in the presence of 10 HM of tryptophan. Ta. From these conditions, the addition of 5H)ributophane increases the cellular 3H-tryptophan content. It was found that this did not affect the ability of the protein to be incorporated into proteins. This means that the 5H tri- Ptophan is not converted to tryptophan by ME180 cells, and protein It also indicates that it is not used for synthesis (not shown).

5HT令皿よM E 180 詐による増殖を且−を玉 上記の結果は細胞内5 HTの減少がME180細胞の増殖を阻害するというこ とを示している。それゆえ、ME1870細胞をトリプトファンヒドロキシラー ゼの特定インヒビターであるpCPΔ存在下に培養し、このことが細胞内5HT の損失および細胞増殖の阻害をもたらすかを調べた。結果を表6に示す。pCP A存在下48時間のME180細胞の培養はtHTの損失と細胞増殖の阻害をも たらしたが、細胞外1〜リブトフアンの損失は生しなかった。さらに、当該5  HTの損失および細胞増殖の阻害は5Hトリプトフアンの添加により阻止された 。5HT order plate M E 180 Proliferation by fraud and - The above results indicate that a decrease in intracellular 5HT inhibits the proliferation of ME180 cells. It shows. Therefore, ME1870 cells were treated with tryptophan hydroxyl. 5HT in the presence of pCPΔ, a specific inhibitor of 5HT. We investigated whether this resulted in loss of cell growth and inhibition of cell proliferation. The results are shown in Table 6. pCP Culturing ME180 cells for 48 hours in the presence of A also resulted in loss of tHT and inhibition of cell proliferation. However, no loss of extracellular 1-ributophane occurred. Furthermore, the said 5 Loss of HT and inhibition of cell proliferation was prevented by addition of 5H tryptophan .

したがって、二種の独立したメカニズム、すなわち、インドールアミン−2,3 −ジオキシゲナーゼを触媒とするトリプトファンの酸化、あるいは、トリプトフ ァンヒドロキシラーゼの阻害、による5HTの枯渇は腫瘍細胞の増殖の阻害をも たらした。また、両方の場合において、該腫瘍細胞の増殖は5H)リプトファン による5HTレベルの回復により回復した。Therefore, two independent mechanisms, namely indoleamine-2,3 - Tryptophan oxidation catalyzed by dioxygenase or tryptophan Depletion of 5HT by inhibition of hydroxylase also inhibits tumor cell proliferation. I got it. Also, in both cases, the growth of the tumor cells is due to 5H) liptophan Recovery occurred due to recovery of 5HT levels.

他の付加的な腫瘍細胞系並びに正常な二倍体細胞についても、これらが5HTを 含有するか、あるいは、pcPAが細胞内5HT濃度を低下し、細胞増殖を阻害 するか、さらには、5H)リブトフ7ンが5HTレベルを回復し、当該細胞増殖 の阻害を逆転するかを調べるために試験した。これらの結果を表7に示す。この 結果、試験したすべての腫瘍細胞系は5HTを含み、5種の細胞系のうちの4種 の増殖がcCPAによって阻害された。さらに、当該腫瘍細胞系の増殖阻害は5 Hトリプトフアンの添加により大きく逆転した。このことは、多くの腫瘍細胞系 において、その増殖に5HT若しくは当該5HTの代謝物質が必要であることを 示している。これに対して、正常な二倍体のいくつかの異なる種類はcCPAに よって阻害されなかった。Other additional tumor cell lines, as well as normal diploid cells, may also be affected by 5HT. Contains or pcPA reduces intracellular 5HT concentration and inhibits cell proliferation. Furthermore, 5H) Libutofun restores 5HT levels and stimulates the cell proliferation. was tested to see if it could reverse the inhibition of These results are shown in Table 7. this The results showed that all tumor cell lines tested contained 5HT, and four of the five cell lines proliferation was inhibited by cCPA. Furthermore, the growth inhibition of the tumor cell line was 5 The addition of H-tryptophan significantly reversed the effect. This is true for many tumor cell lines. , that 5HT or a metabolite of 5HT is required for its proliferation. It shows. In contrast, several different types of normal diploids have cCPA Therefore, it was not hindered.

表5 5Hトリプトフアン(5Htp)はIFN処理したME180細胞における5H Tレベルとその増殖を回復する。Table 5 5H tryptophan (5Htp) is 5H tryptophan (5Htp) in IFN-treated ME180 cells. Restores T levels and their proliferation.

細胞内レベル* 培養条件 5HT 増殖 口V「ガ1−ロエー−−」−リL二工1」(ハ)−ME180細胞 18 98 069±1025+IFN、 1 19789± 874+IFN+5Htp  80 99672±1984すHt 32 96331±l593 *ME 180細胞培養を3日間行い、2X105個細胞/mlに阻害した。I FN (300u/ml)を初期に添加し、5Htp(最終濃度=3μM)を毎 日添加した。Intracellular level* Culture conditions 5HT growth Mouth V "Ga1-roe--"-LiL Niko-1" (c)-ME180 cells 18 98 069±1025+IFN, 1 19789±874+IFN+5Htp 80 99672±1984Ht32 96331±l593 *ME180 cell culture was carried out for 3 days and inhibited to 2X105 cells/ml. I FN (300u/ml) was added initially, and 5Htp (final concentration = 3μM) was added every Added daily.

その後、サンプルを採取し5HTをHPLCにより分析トリプトファンヒドロキ シラーゼの阻害は5 HTレベルを低下し、細胞増殖を阻害する。Then, a sample was taken and analyzed by HPLC for 5HT tryptophan hydroxyl. Inhibition of silase reduces 5HT levels and inhibits cell proliferation.

培養条件 細胞内水 細胞外* 増殖 5HT トリプトファン (3H−TdR)(molm (m ME180細胞 16.5 12 44443±2244+ p CP A 3 .1 25 16642±1723+pCPA +5Htp 37.1 検出不能 42221±4128+ 5 HtJ2□− −ユ恢↓−1辿\ 42982±2629*NiE180wI胞をpCPA2m Mおよび/または5Hトリプトファン10μMの存在下48時間培養した。培養 地または細胞を採取し、HPLCによりトリプトファンおよび5 HTを分析し た。Culture conditions Intracellular water Extracellular* Growth 5HT Tryptophan (3H-TdR) (molm (m ME180 cells 16.5 12 44443±2244+p CP A 3 .. 1 25 16642±1723+pCPA +5Htp 37.1 Undetectable 42221±4128+ 5 HtJ2□- -Yu ↓-1 trace\ 42982±2629*NiE180wI cells to pCPA2m Cultured for 48 hours in the presence of 10 μM M and/or 5H tryptophan. culture Cells or cells were collected and analyzed for tryptophan and 5HT by HPLC. Ta.

5HT合成の阻害は腫瘍細胞による増殖を阻害する。Inhibition of 5HT synthesis inhibits proliferation by tumor cells.

細胞 5HT含有量 増殖(cpmXlooo)ポピユレーション (mol/mg蛋白) 対照 +pCPA +pCPA+5−0H−tyrp 胆】コL換JJL系 E180 13±2 44,7 12,6 42.2T29 24±3 56,7 14.1 47.4ジユルカツト 31±3 85.6 24.0 40.2M OL T −4 22±5 34.3 36,5 31.539±6 194.0 71.8 1 55.6T20 検出不能 29.0 6.5 29.7正3工≧倍」す1胞 T細胞胚 25±2 45.9 37.1 41.4繊維芽細胞 29±4. 10.3 9.3 10.2(肺) 繊維芽細胞 検出不能 4.8 3.9 4.5 (滑液) 内皮細胞 \ 7.5 7.9 7.5 *異なるヒト細胞系をATCCから入手した。これらの培養条件は既に記述のも のである(6)。血清を5HTを除くために使用する前に透析した。ME180 (頚管癌腫細胞)、BT20 (胸部癌種細胞)、HT29(結腸腺癌細胞)、 U937(組織法リンパ腫、単球種)、ジュルカソト(T細胞リンパ腫細胞)  、MOLT−4(急性リンパ芽球白血病)、内皮細胞(−次培養体)、滑液繊維 芽細胞(−次培養体)、肺繊維芽細胞(MRC−5;長期系列)またT細胞腫の 一次培養体を48時間培養した。Cell 5HT content proliferation (cpmXlooo) population (mol/mg protein) Control +pCPA +pCPA+5-0H-tyrp Bile] KoL exchange JJL type E180 13±2 44,7 12,6 42.2T29 24±3 56,7 14.1 47.4 31±3 85.6 24.0 40.2M OL T-4 22±5 34.3 36.5 31.539±6 194.0 71.8 1 55.6T20 Undetectable 29.0 6.5 29.7 3 times ≧ 1 cell T cell embryo 25±2 45.9 37.1 41.4 fibroblasts 29±4. 10.3 9.3 10.2 (lungs) fibroblast Undetectable 4.8 3.9 4.5 (synovial fluid) endothelial cells \ 7.5 7.9 7.5 *Different human cell lines were obtained from ATCC. These culture conditions are the same as those already described. (6) Serum was dialyzed before use to remove 5HT. ME180 (cervical carcinoma cells), BT20 (thoracic carcinoma cells), HT29 (colon adenocarcinoma cells), U937 (histological lymphoma, monocytosis), Julcasoto (T-cell lymphoma cells) , MOLT-4 (acute lymphoblastic leukemia), endothelial cells (subculture), synovial fibers Blasts (subculture), lung fibroblasts (MRC-5; long-term lineage) and T cell tumors The primary culture was cultured for 48 hours.

セロトニンは悪性細胞若しくは腫瘍細胞において存在することかわかり、5HT 2類似受容体は腫瘍細胞上に存在することがわかった。さらに、該腫瘍細胞の増 殖は、活性T細胞と同様に、セロトニン受容体アゴニストおよびアンタゴニスト により、あるいは、セロトニン合成の阻害により調節できることが示された。Serotonin has been shown to be present in malignant or tumor cells, and 5HT Two similar receptors were found to be present on tumor cells. Furthermore, the tumor cells increase. Activated T cells as well as serotonin receptor agonists and antagonists It has been shown that it can be regulated by serotonin synthesis or by inhibition of serotonin synthesis.

神経組織においては、セロトニン(5−ヒドロキシトリプタミン、5HT)がト リプトファンのヒドロキシル化および脱炭酸化により合成され、顆粒組織に蓄積 される(35−36)。さらに、該5HTは適当な刺激により放出され、近接細 胞上の特定受容体に結合して二次メツセンジャー経路を活性化する(37−39 )。該セロトニン合成の速度制限段階はトリプトファンヒドロキシラーゼの活性 のレベルである。さらに、該トリプトファンヒドロキシラーゼの特定酵素インヒ ビターすなわちp−クロロフェニルアラニン(pCPA)は細胞内におけるセロ トニンのレベルを枯渇するために使用されてきた(40−41)。そこで、ヒト 頚管癌腫細胞(ME180)を5−0H−)リブトファンの存在下または非存在 下にpCPAで48時間処理し、5 I(T含有量や細胞増殖の速度を調べた。In nervous tissue, serotonin (5-hydroxytryptamine, 5HT) is Synthesized by hydroxylation and decarboxylation of liptophan and accumulates in granule tissue (35-36). Furthermore, the 5HT is released by appropriate stimulation and is binds to specific receptors on cells and activates the secondary messenger pathway (37-39 ). The rate-limiting step in serotonin synthesis is the activity of tryptophan hydroxylase. level. Furthermore, a specific enzyme inhibitor of the tryptophan hydroxylase Bitter, or p-chlorophenylalanine (pCPA), is a cellulose It has been used to deplete levels of tonin (40-41). Therefore, humans Cervical carcinoma cells (ME180) in the presence or absence of 5-0H-)ributophane The cells were then treated with pCPA for 48 hours, and the 5I (T content and rate of cell proliferation were examined).

その結果、当該培養細胞中では、13±2pmol/mg蛋白の5HTがpCP Aの処理後に4±1 p m o I / m g蛋白に減少した。同様に、該 培養細胞の培地において、44 n Mの5 HTがpCPAの作用により10 nMに減少した。しかし、5−0H−)−リブトファンの添加により、対照細胞 の5 HTのレベルまで5 HTを回復できた。また、該ME180細胞のpC PAによる処理では、H−TdRの取り込み量が70%減少した。さらに、当該 5−0H−トリプトファンによって増殖阻害も大幅に逆転した(表VI I I )。また、いくつかの他の腫瘍細胞系および正常な二倍体細胞系の5HT含有量 についても調べ、それらをpCPA存在下に48時間培養して5HTレベルを減 少しようとした(表IX)。その結果、当該細胞の抽出物における5 HTの濃 度は10−40 pmo I/mg蛋白の範囲であった。また、5HTの前駆体 である5−0H−1−リプトファンは当該細胞抽出物中に検出できなかった。さ らに、pCPA存在下の培養細胞では、試験した6種の腫瘍細胞系列のうち5種 において細胞増殖が阻害されたか、正常な二倍体細胞においては有意な作用効果 が見られなかった。さらに、pCPAで処理した細胞培養体に5−0H−1−リ プトファンを添加すると、腫瘍細胞の培養体では増殖の阻害が大幅に逆転したが 、正常な二倍体細胞の培養体では、細胞増殖への影響が特に見られなかった。As a result, in the cultured cells, 13±2 pmol/mg protein of 5HT was transferred to pCP. After treatment with A, it decreased to 4±1 p m o I/m g protein. Similarly, the applicable In the culture medium of cultured cells, 44 nM of 5HT is reduced to 10 by the action of pCPA. decreased to nM. However, addition of 5-0H-)-ributophane caused control cells to I was able to recover 5 HT to the level of 5 HT. In addition, pC of the ME180 cells Treatment with PA reduced H-TdR uptake by 70%. Furthermore, the said Growth inhibition was also significantly reversed by 5-0H-tryptophan (Table VI ). Also, the 5HT content of some other tumor cell lines and normal diploid cell lines were also investigated and cultured in the presence of pCPA for 48 hours to reduce 5HT levels. Tried a little (Table IX). As a result, the concentration of 5HT in the extract of the cells was The concentration ranged from 10-40 pmo I/mg protein. In addition, the precursor of 5HT 5-0H-1-lyptophan could not be detected in the cell extract. difference Furthermore, in cultured cells in the presence of pCPA, 5 of the 6 tumor cell lines tested Cell proliferation was inhibited in normal diploid cells, or there was no significant effect in normal diploid cells. was not seen. Additionally, 5-0H-1-reactive cells were added to pCPA-treated cell cultures. Addition of putophane significantly reversed growth inhibition in tumor cell cultures; , no particular effect on cell proliferation was observed in normal diploid cell cultures.

したがって、5HTの枯渇は腫瘍細胞の増殖阻害につながるが、正常な細胞増殖 ではそのような影響はなく、さらに、5− OH−1−リブトファンの添加によ り5HTレベルを回復すれば、これらの細胞における増殖が回復する。Therefore, depletion of 5HT leads to inhibition of tumor cell growth, but normal cell growth There was no such effect, and furthermore, the addition of 5-OH-1-ributophane Restoring 5HT levels restores proliferation in these cells.

セロトニンは培地中で種々の濃度に蓄積され、5HT受容体を介して二次メツセ ンジャー経路を形質転換できる(37−38)。なお、該二次メツセンジャー経 路(リン酸イノントールの放出および細胞内Ca+十の変化)を形質転換する5  HT受容体はジェルカット細胞上において同定されるがMo l t−4細胞 −Lではされない(42)。そこで、多くの5HT受容体アゴニストおよびアン タゴニストを試験して、それらが5HTとは逆に該腫瘍細胞の増殖を阻害するか を調べた。試験したもののうち、5HT2受容体アンタゴニスト40であるリタ ンセリンは10−50μMの範囲において腫瘍細胞の増殖を(試験した6系列の うちの5種において)70乃至95%まで聞書したか、正常な二倍体細胞の増殖 は阻害しなかった。ただし、低濃度(〈10μM)のリタンセリンでは腫瘍細胞 の増殖は阻害されなかった。なお、5HTを添加すると、該リタンセリンによる 阻害作用は部分的に逆転した(表X)。さらに、腫瘍細胞の1種であるMo1t −4の増殖はpCPAによって阻害されず、また、リタンセリンによっても阻害 されなかった。加えて、pCPAは細胞抽出物中の5HTの濃度を低下するが、 リタンセリンは当該細胞抽出物中の5 HT含有量を実質的に増加した。例えば 、ME180細胞からの抽出物は15.5 pmo 17mg蛋白の5HTを含 むが、リタンセリンで処理した培養体からの抽出物は58.8pmol/mg蛋 白の5HTを含む。したがって、5HT合成のインヒビターと5HT受容体アン タゴニストは共に腫瘍細胞による増殖を阻害するが、正常な二倍体細胞による増 殖は阻害しない。さらに、当該5HT受容体を結合する多種類のリガンドを試験 し、それらのリタンセリン媒介による腫瘍細胞の増殖阻害の阻止能力を調べた。Serotonin accumulates in the culture medium to various concentrations and is released through 5HT receptors into secondary stimulants. (37-38). In addition, the secondary Metsenger 5 that transforms the tract (release of inonthole phosphate and changes in intracellular Ca+) HT receptors are identified on gel-cut cells, but MoI t-4 cells - Not done in L (42). Therefore, many 5HT receptor agonists and antagonists are available. Test antagonists to see if they inhibit the growth of the tumor cells as opposed to 5HT. I looked into it. Among those tested, the 5HT2 receptor antagonist 40 Nserin inhibited tumor cell proliferation (in the six lines tested) in the range of 10-50 μM. (in 5 species) 70-95% transcription or normal diploid cell growth did not interfere. However, at low concentrations (<10 μM) of ritanserin, tumor cells growth was not inhibited. In addition, when 5HT is added, the ritanserin The inhibitory effect was partially reversed (Table X). Furthermore, Mo1t, a type of tumor cell, -4 proliferation was not inhibited by pCPA and was also inhibited by ritanserin. It wasn't done. In addition, pCPA reduces the concentration of 5HT in cell extracts, but Ritanserin substantially increased the 5HT content in the cell extracts. for example , the extract from ME180 cells contains 5HT of 15.5 pmo and 17 mg protein. However, the extract from the culture treated with ritanserin contained 58.8 pmol/mg protein. Contains white 5HT. Therefore, inhibitors of 5HT synthesis and 5HT receptor antagonists Both antagonists inhibit proliferation by tumor cells, but inhibit growth by normal diploid cells. Does not inhibit growth. Furthermore, various types of ligands that bind the 5HT receptor were tested. and investigated their ability to prevent ritanserin-mediated inhibition of tumor cell growth.

これらの結果を第14図に示す。これによれば、別の5HT2受容体アンタゴニ ストであるケタンセリンおよびペランセリン、5HT1c受容体アンタゴニスト であるミアンセリン、および、5HT1受容体アゴニストおよびアンタゴニスト である8−0H−DPATおよびブロプラノロールはそれぞれリタンセリンによ る増殖阻害を濃度依存による態様において部分的に阻止した。これらのデータは 概ねジュルカット細胞についてのデータと等しいが、これらの5HT受容体を1 種類に特徴付けられた5HT受容体亜類型に分類することはできなかった(42 )。なお、興味ある点は、リタンセリン、ケタンセリンおよびペランセリンがす べて類似の薬理学的および生物学的特性を有する5HT2受容体アンタゴニスト である反面、リタンセリンは腫瘍細胞の増殖を阻害し、ケタンセリンおよびペラ ンセリンは該リタンセリンによる阻害を阻止することである。このことはこれら のデータが新しい5HT受容体亜類型を規定するに充分であることを意味してい るのではない。なお、これらの5HT受容体の型を完全に規定するためには、さ らに詳細な分析がこれら受容体にとって必要とされる。また、これらのデータか ら、当該5HTと5 HT受容体とかある組織培養における特定種類の腫瘍細胞 系の増殖に必要となる可能性か現出したと考えられる。この種の増殖の特性には 、細胞が、該細胞表面受容体に結合し細胞機能を刺激する、当該細胞の成長因子 を放出するような成長因子作用のオートクリン(autocrine)経路にお いて一貫しているものがある(43−44)。ここで示すデータでは、該5HT が腫瘍細胞により生成され、増殖に必要とされることが示されている。さらに、 当該5HT受容体に結合するために知られるリガンドの研究により、5HTが細 胞表面受容体を介して増殖を刺激する作用を有すると考えられるようになった。These results are shown in FIG. According to this, another 5HT2 receptor antagonist ketanserin and perancerin, 5HT1c receptor antagonists mianserin, and 5HT1 receptor agonists and antagonists 8-0H-DPAT and bropranolol are each treated with ritanserin. The inhibition of proliferation was partially prevented in a concentration-dependent manner. These data are Roughly equivalent to the data for Jurkat cells, but with these 5HT receptors It was not possible to classify the 5HT receptor subtypes characterized by type (42 ). It is interesting to note that ritanserin, ketanserin, and peranserin all 5HT2 receptor antagonists with similar pharmacological and biological properties On the other hand, ritanserin inhibits tumor cell proliferation, and ketanserin and nserin is to block the inhibition by ritanserin. This means these This means that the data are sufficient to define a new 5HT receptor subtype. It's not about doing it. In order to completely define the types of these 5HT receptors, it is necessary to More detailed analysis is required for these receptors. Also, these data The 5HT and 5HT receptors are associated with certain types of tumor cells in tissue culture. It is thought that the possibility that this is necessary for the propagation of the system has emerged. The characteristics of this type of growth include , a growth factor for the cell that binds to the cell surface receptor and stimulates cell function. The autocrine pathway of growth factor action, which releases There are some consistent results (43-44). In the data shown here, the 5HT has been shown to be produced by tumor cells and required for proliferation. moreover, Studies of ligands known to bind to the 5HT receptor have shown that 5HT is It has come to be thought that it has the effect of stimulating proliferation through cell surface receptors.

この点から、該5HTが非活動性の繊維芽細胞と平滑筋細胞の両方に対応する成 長因子であることが示されていることを知ることが重要となる(45−47)。From this point of view, it can be seen that the 5HT is responsible for both inactive fibroblasts and smooth muscle cells. It is important to know that this has been shown to be a long factor (45-47).

これらの例においては、内因性5HTに対する外因性5HTがDNA合成を促進 するために使用される。さらに、これらの結果は、正常な二倍体細胞がそれらの 成長因子や成長因子受容体を生成する能力を得ることにより形質転換され得ると いう現在の多くの腫瘍形成についての概念上で一貫している(48−49)。す なわち、当該5HTおよび5HT受容体の生成は正常な細胞が永久の形質転換表 現型を得るための一つの方法となり得る。そして、当該腫瘍細胞がセロトニンを 合成し、かつ、インビボにおける増殖のために該セロトニンを必要とするかは未 解決の重要な問題である。In these instances, exogenous 5HT versus endogenous 5HT promotes DNA synthesis. used to. Furthermore, these results demonstrate that normal diploid cells can be transformed by acquiring the ability to produce growth factors or growth factor receptors. This is consistent with many current concepts of tumorigenesis (48-49). vinegar That is, the production of 5HT and 5HT receptors is a permanent transformation of normal cells. This can be one way to obtain the current model. The tumor cells then release serotonin. It remains unclear whether the serotonin is synthesized and required for proliferation in vivo. This is an important problem to solve.

培養体 5HT 増殖 細胞内 細胞外 (cpm) −〇■旦号麺ヱ蛋 ) (nM) ME180細胞 13±2 44±3 44700±5620+pCPA 4±1 10±2 12600+1220+pCPA+5−0H−t ryp 16±4 56±4 42200±4220表12 5 HT合成の阻害は腫瘍細胞による増殖を阻害するが正常な二倍体細胞による 増殖を阻害しない。異なる種類のヒト細胞系をATCCから入手した。これらの 培養条件は(50)に示す通りである。まず、5HTを除くために使用する前に 血清を透析した。ME180(頚管癌腫細胞)、BT20(胸部癌種細胞) 、 HT29 (結腸腺癌細胞)、U937(組織法リンパ腫、単球種)、ジュルカ ット(T細胞リンパ腫細胞) 、MOLT−4(急性リンパ芽球白血病)、内皮 細胞(−次培養体)、滑液繊維芽細胞(−次培養体)、肺繊維芽細胞(MRC− 5:長期系列)またT細胞腫の一次培養体を48時間培養した。他の条件は表1 1に記載の通りである。Culture 5HT growth Intracellular Extracellular (cpm) −〇■Dango noodles (nM) ME180 cells 13±2 44±3 44700±5620+pCPA 4±1 10±2 12600+1220+pCPA+5-0H-tryp 16±4 56±4 42200±4220 Table 12 5 Inhibition of HT synthesis inhibits proliferation by tumor cells but not by normal diploid cells Does not inhibit proliferation. Different types of human cell lines were obtained from ATCC. these The culture conditions are as shown in (50). First, before using to remove 5HT Serum was dialyzed. ME180 (cervical carcinoma cells), BT20 (thoracic carcinoma cells), HT29 (colon adenocarcinoma cells), U937 (histological lymphoma, monocytic type), Julka (T-cell lymphoma cells), MOLT-4 (acute lymphoblastic leukemia), endothelial cells (-subculture), synovial fluid fibroblasts (-subculture), lung fibroblasts (MRC- 5: long-term series) The primary culture of T cell tumor was also cultured for 48 hours. Other conditions are in Table 1 As described in 1.

5HT含有量 増殖 細胞 (pmol/mg蛋白) (cpm X 1000)ポピユレーション 対照 +pCPA +cCPA + p CP A + 5− OH− r 胆JLj=撚JJL系 E180 13±2 44.7 12.6 42,2T29 24±3 56.7 14,1 47.4ンユルカソト 31±3 85゜ 6 24,0 40,20LT−4 22±5 34.3 36.5 31.539±6 194.0 71.8 1 55.6T20 検出不能 29,0 6.5 29.7正1ど;倍jlL胞 T細胞胚 25±2 45.9 37,1 41.4繊維芽細胞(肺) 29±4 10.3 9,3 10.2繊維芽細胞(滑液) 検出不能 4.8 3.9 4.5 内皮細胞 : 7.5 7.9 7.5 表13 5HT受容体アンタゴニストによる腫瘍細胞の増殖の阻害と5HTによるその逆 転作用 腫瘍細胞系列と正常二倍体細胞を30μMのリタンセリン(1−40nMの濃度 において5HT2部位に対して活性を有する5HT2受容体アンタゴニスト)の 存在下または非存在下で、1μMの5HTの存在下または非存在下に48時間培 養した。この場合、5HTの添加は対照の増殖処理には影響しなかった。また、 培養は三重に行い、標準誤差は10%以下であった(データ示さな細胞 3H− TdRの取り込み ポピユレーション (cmpxLOOo)対照 +リタンセリン +リタンセリ ンME180 40.7 2.2 21.4ジユルカソト 75.8 0.4  51.6HT29 159.5 25,3 58.40937 68.9 15 .2 45.8M0LT−434,532,855,5BT20 27.3 3 .1 19.1正−常≦;侶−木皿1 繊維芽細胞 10.3 8.7 8.。5HT content proliferation Cells (pmol/mg protein) (cpm x 1000) Population Control +pCPA +cCPA + p CP A + 5-OH- r Bile JLj = Twisted JJL series E180 13±2 44.7 12.6 42,2T29 24±3 56.7 14.1 47.4 31±3 85° 6 24,0 40,20LT-4 22±5 34.3 36.5 31.539±6 194.0 71.8 1 55.6T20 Undetectable 29.0 6.5 29.7 positive 1 etc; double jlL cell T cell embryo 25±2 45.9 37.1 41.4 Fibroblasts (lung) 29±4 10.3 9,3 10.2 Fibroblasts (synovial fluid) Undetectable 4.8 3.9 4.5 endothelial cells : 7.5 7.9 7.5 Table 13 Inhibition of tumor cell proliferation by 5HT receptor antagonists and vice versa by 5HT conversion effect Tumor cell lines and normal diploid cells were treated with 30 μM ritanserin (1-40 nM concentrations). 5HT2 receptor antagonists with activity against the 5HT2 site in Culture for 48 hours in the presence or absence of 1 μM 5HT. fed. In this case, the addition of 5HT did not affect the control growth treatment. Also, Cultures were performed in triplicate, and the standard error was less than 10% (cells not shown, 3H- TdR uptake Population (cmpxLOOo) control + ritanserin + ritanserin ME180 40.7 2.2 21.4 Jyurukasoto 75.8 0.4 51.6HT29 159.5 25,3 58.40937 68.9 15 .. 2 45.8M0LT-434,532,855,5BT20 27.3 3 .. 1 19.1 Normal - normal ≦; partner - wooden plate 1 Fibroblasts 10.3 8.7 8. .

T細胞胚 43.9 40,5 45.5繊維芽細胞(滑液) なお、科学的に合成できるアゴニストやアンタゴニストに加えて、上記5 HT  2類似受容体に対する多種類のミモトーブおよび/または抗体が本発明の範囲 に及ぶ。T cell embryo 43.9 40.5 45.5 Fibroblast (synovial fluid) In addition to the agonists and antagonists that can be synthesized scientifically, the above 5 HT The scope of the present invention includes multiple types of mimotobes and/or antibodies directed against two similar receptors. It extends to.

該新規5HT2類似受容体の同定は当該受容体に対する抗体の発生を可能にする 。さらに、該抗体は研究用プローブとして、また、治療用に利用できる。なお、 該抗体の発生技術は当業界において周知の方法である。当該方法については、上 述の文献(Fundamen t a IImmunology、5econd  Editi。Identification of the novel 5HT2-like receptor allows for the generation of antibodies against the receptor . Furthermore, the antibodies can be used as research probes and for therapeutic purposes. In addition, Techniques for generating such antibodies are well known in the art. Regarding this method, see above. References (Fundament II Immunology, 5th century)  Editi.

n)の12章を参照されたい。また、当該抗体には、ポリクローナル、モノクロ ーナル、キメラ、人体適用型およびヒト型を含む多くの「型」が発生可能である ことを認識した。さらに、これらの抗体の「型」は共通に当該新規5HT2類似 受容体に特定の1種以上のエピトープを認識する能力を備えている。Please refer to Chapter 12 of n). In addition, the antibodies include polyclonal and monoclonal antibodies. Many "types" can occur, including null, chimeric, humanized and humanized. I realized that. Furthermore, the “type” of these antibodies is similar to the novel 5HT2. The receptor has the ability to recognize one or more specific epitopes.

また、当該新規5HT2類似受容体の同定により、精製した受容体を、特定的に 蛋白に結合するペプチドを同定するために、ランダムなペプチドシーケンスのラ イブラリをスクリーニングするためのプローブとして使用することができる。さ らに、該精製した受容体に対して発生された抗体もプローブとして使用すること ができる。In addition, the identification of the novel 5HT2-like receptor allows us to specifically identify the purified receptor. To identify peptides that bind to proteins, we use a random array of peptide sequences. It can be used as a probe for screening libraries. difference Additionally, antibodies raised against the purified receptor may also be used as probes. Can be done.

この場合のペプチドのライブラリを構成するための技法については、クイラ(C wirla)他の文献「ベプチ)”J (Pept 1des ;Proc、N at I、Acad、Sci、USA、Vol、87.6378−6382、A ugust 1990)のリガンドを同定するためのペプチドの広大なライブラ リを参照されたい。また、上記のスクリーニングの方法については、デブリン( Devlin)他の[ランダムペプチドライブラリJ (Random Pep tide Libraries;5ience、Vol、249,404−40 6.27July 1990)の特定蛋白結合分子の種、および、スコツト他( Scot t、Smi th)の「エピトープライブラリによるペプチドリガン ドの調査J (Searching for Peptide Ligands ;5cience、Vol、249,386−390゜27 July 199 0)を参照されたい。For techniques for constructing libraries of peptides in this case, see Quilla (C wirla) Other documents “Bepti)” J (Pept 1des; Proc, N at I, Acad, Sci, USA, Vol, 87.6378-6382, A a vast library of peptides to identify ligands for Please refer to li. For the above screening method, please refer to Devlin ( Devlin) et al. [Random Peptide Library J (Random Pep tide Libraries; 5ience, Vol, 249, 404-40 6.27July 1990) and species of specific protein binding molecules, and Scott et al. Scot, Smith) “Peptide ligand analysis using epitope libraries” Searching for Peptide Ligands ;5science, Vol, 249, 386-390゜27 July 199 Please refer to 0).

参考文献 1.Plaut、M、1987.Annu、Rev、Immnol、5:621 2、Hen5on、P、M、1970.J、Immunol、105:476 抗原−抗体複合体および補体によるラビットの血小板から組成物を放出するメカ ニズム。References 1. Plaut, M., 1987. Annu, Rev. Immunol, 5:621 2, Hen5on, P. M., 1970. J. Immunol. 105:476 Mechanism of release of composition from rabbit platelets by antigen-antibody complexes and complement ism.

3、Essman、W、B、1978.5pect rum、(W、B、Ess man、ed、)New York、p、15 健康体および病体における組織中および体液中のセロトニン。3, Essman, W, B, 1978.5 pect rum, (W, B, Ess man, ed,) New York, p. 15 Serotonin in tissues and body fluids in healthy and diseased bodies.

4.01son、P、S、、U、Ljungvist。4.01son, P.S., U.Ljungvist.

and S、−E、Bergentz、1974.Thromb、Res、5: 1 実験的動脈および静脈トロンビン中における血小板、赤血球およびフィブリン含 有量の分析。and S,-E, Bergentz, 1974. Thromb, Res, 5: 1 Platelet, red blood cell, and fibrin content in experimental arterial and venous thrombin. Quantitative analysis.

5、Sternberg、E、M、、H,J、Wender、M、に、Leun g、 and C,W、Parker、1987.J、Immunol、138 :43マウスマクロファージ上のセロトニン(5−HT)および他のモノアミン の作用゛インターフェロンーガンマ誘導食菌作用のモジュレーション。5. Sternberg, E.M., H.J., Wender, M., Leun. G, and C, W, Parker, 1987. J. Immunol, 138 :43 Serotonin (5-HT) and other monoamines on mouse macrophages Effect of ``modulation of interferon-gamma-induced phagocytosis.

6、Sternberg、E、M、、J、Trtalandl C,W、Par ker、1986. J、Tmmunol、137:276 マウスマクロファージ上のセロトニンの作用:セロトニンによるIa表現の抑制 および5−HT2セロトニン性受客受容体アンタゴニストる該抑制作用の逆転。6. Sternberg, E.M., J.Trtalandl C.W., Par. ker, 1986. J, Tmmunol, 137:276 Effects of serotonin on mouse macrophages: suppression of Ia expression by serotonin and reversal of the inhibitory effect by 5-HT2 serotonergic receptor antagonists.

7、He1lstrand、に、、and S、Hermodsson、198 7.J、Immunol、139 : 869 ヒト科天然キラー細胞の細胞毒性の調節におけるセロトニンの役割。7, Helstrand, , and S. Hermodsson, 198 7. J. Immunol. 139: 869 Role of serotonin in regulating cytotoxicity of hominid natural killer cells.

8、Choquet、D、、and H,Korn、1988、Proc、Na t 1.Acad、Sci、USA、85:4557 リンパ球における電圧−ゲートコンダクタンス上のセロトニンの二つの作用。8. Choquet, D., and H. Korn, 1988, Proc., Na. t1. Acad, Sci, USA, 85:4557 Two effects of serotonin on voltage-gate conductance in lymphocytes.

9.8onnet、M、、G、Lespinats、and C,Burtin 、1984.Ce1l、rmmunol、83:280 フィトヘムアグルチニンおよび抗原に応答するリンパ球のヒスタミンおよびセロ トニン抑制。9.8onnet, M., G. Lespinats, and C. Burtin , 1984. Ce1l, rmmunol, 83:280 Phytohemagglutinin and antigen-responsive lymphocyte histamine and sero Tonin suppression.

10、Gershorn、R,に、、P、W、Askenase、and M、 D、Gershon、1975゜J、Exp、Med、142ニア32 遅延型過敏症皮膚反応の発生のための血管作用性アミンの要求。10. Gershorn, R., P. W., Askenase, and M. D, Gershon, 1975゜J, Exp, Med, 142 near 32 Requirement of vasoactive amines for the development of delayed-type hypersensitivity skin reactions.

11、Ame 1sen、J、−C,、R,Meade。11, Ame 1sen, J,-C,, R,Meade.

and P、W、Askenase、1989. J、Immunol、198 9:3171 遅延型過敏症におけるセロトニン関与についての新しい解釈二T細胞の作用によ る接触感度のセロトニン−2受容体アンタゴニストの阻害。and P, W, Askenase, 1989. J, Immunol, 198 9:3171 A new interpretation of the involvement of serotonin in delayed-type hypersensitivity: the action of two T cells. Inhibition of touch sensitivity by serotonin-2 receptor antagonists.

12、Schmidt、A、W、、and S、J、Peroutka、198 9.Faseb J、3:225−ヒドロキシトリプタミン受容体群。12. Schmidt, A.W., and S.J., Peroutka, 198 9. Faseb J, 3:225-hydroxytryptamine receptor group.

13、Peroutka、S、J、1988、Ann。13, Peroutka, S. J., 1988, Ann.

Rev、Neurosci、11:455−ヒドロキシトリプタミン受容体並類 型。Rev, Neurosci, 11:455-Hydroxytryptamine receptor parallelism Type.

1.4.Kadan、M、J、、A、M、Krohn、M。1.4. Kadan, M.J., A.M., Krohn, M.

J、Evans、R,L、Wa l t z、and P、R。J., Evans, R.L., Wa  tz, and P.R.

Ha r t i g、J、Neu rochem、43 : 601ラツト前 脳皮質におけるセロトニン受容体への1251−リセルグ酸ジエチルアミンの結 合特性。Hartig, J, Neurochem, 43: 601 Rat ago Binding of 1251-lysergic acid diethylamine to serotonin receptors in the brain cortex combination characteristics.

15、Morett 1−Rojas、I、、E、G、Ezrai 1son、 L、Birnbaumer、M、L。15, Morett 1-Rojas, I, E, G, Ezrai 1son, L., Birnbaumer, M.L.

Entman、and A、J、Garber、1983、J、Biol、Ch em、258:12499ラツトにおける骨格筋のセロトニン性およびアドレナ リン性調節:II、サルコレンマ受容体の機能および特異性のプローブとしての [125I]インドリセルグ酸ジエチルアミンおよび[125I]イオドプイン ドロールの用途。Entman, and A. J. Garber, 1983, J. Biol, Ch. Em, 258:12499 Skeletal muscle serotonergic and adrenergic activity in rats. Phosphoregulation: II as a probe of sarcolemma receptor function and specificity [125I]diethylamine indolisergic acid and [125I]iodopuin Uses of drawl.

16、Rabinovitch、P、S、、C,H,June、A、Gross man、and J、A、Ledbetter、1986.J、Immunol 、137:952 PHAまたはアンチCD3によるマイトゲン刺激後の細胞内遊離カルシウム応答 におけるT細胞の異種体。フローサイトメトリーによるインド−1と免疫蛍光法 の同時使用。16. Rabinovitch, P.S., C.H., June, A.Gross. man, and J. A. Ledbetter, 1986. J, Immunol , 137:952 Intracellular free calcium response after mitogenic stimulation with PHA or anti-CD3 Heterologous forms of T cells in. Indo-1 and immunofluorescence by flow cytometry simultaneous use of.

17、Ke I Iey、に、A、1989.Cytometry、10(印刷 中) オンライン試薬添加とフローサイトメーターのサンプル遷移時間の短縮を実現す るサンプルの状態調節。17, Ke I Iey, A, 1989. Cytometry, 10 (Print During) Achieve online reagent addition and shorten flow cytometer sample transition times. conditioning of samples.

18、Grynkiewicz、G、、M、Poenie and R,Y、T sien、1985.J、Biol、Chem、260:3440 大幅に改良した蛍光特性によるCa+十指示体の新しい発生。18. Grynkiewicz, G., M. Poenie and R.Y.T. sien, 1985. J, Biol, Chem, 260:3440 New generation of Ca+10 indicators with significantly improved fluorescence properties.

19、Sm1th、C,D、、and R,Snyderman、1987.M ethods in Enzymo l ogy、141 : 261ヒト白血 球におけるポリフォスフォイノシチトの受容体媒介による加水分解におけるグア ニンヌクレオチド調節蛋白。19, Smlth, C, D, and R, Snyderman, 1987. M methods in Enzymo lgy, 141: 261 human leukemia Guar in receptor-mediated hydrolysis of polyphosphoinositites in spheres Nin nucleotide regulatory protein.

20、Rosoff、P、M、、N、Savage and C,A、Dina rello、1988. Ce11、 54ニア3 新規メカニズムによる1928球におけるインターロイキン−1刺激のジアシル グリセロール生成。20. Rosoff, P. M., N. Savage and C. A. Dina Rello, 1988. Ce11, 54 Near 3 Diacyl stimulation of interleukin-1 in 1928 bulbs by a novel mechanism Glycerol production.

21、We i ss、A、、R,L、Wiskoc i +and J、5t obo、1984.J、Immun。21, We i ss, A,, R, L, Wiskoc i + and J, 5t obo, 1984. J, Immun.

1133・123 ヒト科T細胞の活性におけるT3表面分子の役割:■L−2生成のための2種の 刺激要求が予備翻訳段階において発生する状態を反映する。1133・123 Role of T3 surface molecules in the activity of human T cells: ■ Two species for L-2 production This reflects the situation in which stimulus requests occur during the pre-translation stage.

22、Berridge、M、J、1987.Ann。22, Berridge, M. J., 1987. Ann.

Rev、Biochem、56:159イノシトールトリフオスフエートおよび ジアシルグリセロール二二種の相互作用二次メツセンジャー。Rev, Biochem, 56:159 inositol triphosphate and Interacting secondary metsengers of two diacylglycerols.

23、Fargin、A、、J、R,Raymond。23. Fargin, A., J.R., Raymond.

M、J、Lohse、M、に、Kob i Ika、M、G。M.J., Lohse, M., Kob i Ika, M.G.

Caron、and R,J、Leftkowitz。Caron, and R.J., Leftkowitz.

1988、Nature (London)335:35ベーターアドレナリン 受容体シーケンスに類似のゲノムクローンG−21が5− HT 1 a 受容 体ヲエンコードする。1988, Nature (London) 335:35 Beta Adrenaline Genomic clone G-21 with similar receptor sequence was found to accept 5-HT1a. Encode the body.

24、Ju I ius、D、、A、B、MacDe rm。24, Ju I ius, D, , A, B, MacDerm.

tt、R,Axel and T、Jessel、1988、−3cience  241:558セロトニン1c受容体をエンコードする機能c DNAの分子 特性。tt, R, Axel and T, Jessel, 1988, -3science 241:558 Functional c DNA molecule that encodes the serotonin 1c receptor Characteristic.

25、Pri tchett、D、B、、A、W、Bach、M、Wozny、 O,Ta l eb、R,Da I Toso、J、C,5hin and P 、H,Seeburg、1988.EMBO,J、7:4135クローン化した ラットセロトニン5HT2受容体の構造および機能表現。25. Pritchett, D. B., A. W. Bach, M. Wozny. O, Tal eb, R, Da I Toso, J, C, 5hin and P , H., Seeburg, 1988. EMBO, J, 7:4135 cloned Structural and functional representation of rat serotonin 5HT2 receptor.

26、DeVivo、M、、and S、Maayani、1986.J、Ph armacol、Exp、Ther、238:248 ギニア豚およびラットの大脳海馬膜におけるフォルスコリン刺激アデニル酸シク ラーゼ活性の5 HT 1 a受容体媒介による阻害特性。26, DeVivo, M., and S. Maayani, 1986. J.Ph. armacol, Exp, Ther, 238:248 Forskolin-stimulated adenylate in the cerebral hippocampal membranes of Guinean pigs and rats 5HT1a receptor-mediated inhibitory properties of Rasase activity.

27、Conn、P、J6.and E、5anders−Bush、1985 .J、Pharm、and Exp、Therap、234:195 セロトニン刺激フオスフオイノシチドターンオー/(−二ラットの皮質下を含ま ない大脳皮質内の82結合部位による媒介。27, Conn, P., J6. and E, 5 anders-Bush, 1985 .. J, Pharm, and Exp, Therap, 234:195 Serotonin-stimulated phosphoinositide turnover/(-2 rats including subcortical Not mediated by 82 binding sites within the cerebral cortex.

28、Conn、P、J、、and E、5anders−Bush、1984 .Neuropharm、23=993 大脳皮質におけるセロトニン刺激のフォスフォチジルイノシトール代謝を阻害す る選択的5−HT2アンタゴニスト。28, Conn, P. J., and E. 5anders-Bush, 1984 .. Neuropharm, 23=993 Inhibits serotonin-stimulated phosphotidylinositol metabolism in the cerebral cortex. A selective 5-HT2 antagonist.

29、Berridge、M、J、and R,F、Irvine、1989. Nature、341:197リン酸イノシトールおよび細胞シグナル作用30 、Zel ler、J、、E、Weissbarth。29, Berridge, M.J., and R.F., Irvine, 1989. Nature, 341:197 Inositol Phosphate and Cell Signaling Effects 30 , Zel ler, J., , E., Weissbarth.

B、Baruth、H,Mielke and H,Deicher、1983 、Arthritis andRheumatism、26:532 リユーマチ症炎症における血小板のセロトニン含有量:臨床活性の補正。B, Baruth, H, Mielke and H, Deicher, 1983 , Arthritis and Rheumatism, 26:532 Platelet serotonin content in rheumatoid inflammation: correction for clinical activity.

31゜Sternberg、E、M、、J、M、、HiI 1.G、P、Chr ousos、T、Kami faris、S、J、Listwak、P、W、G old、and R,L、Wi Ider、1989.Proc、Nat l、 Acad、Sci、IJSA、86:2374関節炎症のルイスラットの連鎖球 菌細胞壁における炎症性媒介誘導の視床下部−下垂体一副腎軸推活性の欠陥。31゜Sternberg, E.M., J.M., HiI 1. G, P, Chr. ousos, T., Kami faris, S. J., Listwak, P. W., G. old, and R, L, Wi Ider, 1989. Proc, Natl, Acad, Sci, IJSA, 86:2374 Chain balls in Lewis rats with joint inflammation. Defects in inflammatory-mediated induction of hypothalamic-pituitary-adrenal axis activity in bacterial cell walls.

32、Baylin、S、B、and Mendes。32, Baylin, S. B. and Mendes.

hn、G、Endocrine Reviews 1.33、Jul ius、 D、、Live l l i、 T、J、。hn, G, Endocrine Reviews 1.33, Julius, D,, Live l l l i, T, J,.

Jessel I、T、M、and Axel、R,5cience 244. 1057−1062 (1989)34゜Ju l ius、D、、Huang 、に、N、、Livelli、T、J、、Axel、R,、and Jesse  I !、T、M、Proc Nat 1.Acad。Jessel I, T, M, and Axel, R, 5science 244. 1057-1062 (1989) 34゜Julius, D., Huang ,N., ,Livelli, T., J., ,Axel, R., ,and Jesse. I! , T, M, Proc Nat 1. Acad.

Sci、87. 928−932 35、Buc−Caron、M、H,、Lauray。Sci, 87. 928-932 35, Buc-Caron, M.H., Lauray.

J、M、、Lamblin、D、、and Kellermann、O,Pro c、Nat I、、Acad、Sc i、87. 1922−1926 (19 90)36、Laubsher、A、and Pletscher、A、J、P arm、Pharmacol、31゜37、Peroutka、S、J、Ann 、Rev、Neurosci、11. 45−60 (1988)38、Sch midt、A、W、、and Peroutka、S、J、Fed、Am、So c、Exp、Bio 1. J、3. 2242−2249 (1989)39 、Glennon、R,A、J、Med、Chem。J. M., Lamblin, D., and Kellermann, O. Pro. c, Nat I, Acad, Sc i, 87. 1922-1926 (19 90) 36, Laubscher, A. and Pletscher, A.J.P. arm, Pharmacol, 31°37, Peroutka, S. J., Ann. , Rev. Neurosci, 11. 45-60 (1988) 38, Sch midt, A.W., and Peroutka, S.J., Fed.Am.So. c, Exp, Bio 1. J, 3. 2242-2249 (1989) 39 , Glennon, R.A., J., Med., Chem.

30、 1−12 (1987) 40、Hamon、M、、Bourgoin、S、、Hery、S、、and  Simonnet、G、 Mol。30, 1-12 (1987) 40, Hamon, M., Bourgoin, S., Hery, S., and Simonnet, G., Mol.

Pharmacol、14. 99−110 (1978)41、Koe、B、 K、 、and Weissman。Pharmacol, 14. 99-110 (1978) 41, Koe, B. K., and Weissman.

A、J、Pharmacol、Exp、Sci、154゜42、Aune、T、 M、、Kel Iey、K、A、。A, J, Pharmacol, Exp, Sci, 154°42, Aune, T. M,,Kel Iey,K,A,.

Ranges、G、E、、and Bombara、M。Ranges, G.E., and Bombara, M.

P、J、Immuno 1.(1990)(印刷中)43.DeLarco、J 、E、、and Todaro、G、J、Proc、Nat 1.Acad、S c i。P, J, Immuno 1. (1990) (in press) 43. DeLarco, J. , E., and Todaro, G. J., Proc., Nat. 1. Acad, S c i.

U、S、A、75.4001−4005 (1978)44、Todaro、G 、J、、DeLarco、J。U, S, A, 75.4001-4005 (1978) 44, Todaro, G. , J., ,DeLarco, J.

E、、and Fryling、C,M、FASEBJ、41. 2996−3 003 (1982)45、Seuwen、に、、Magnaldo、1.。E., and Fryling, C.M., FASEBJ, 41. 2996-3 003 (1982) 45, Seuwen, in, Magnaldo, 1. .

and Pouyssegur、J、Nature、335、 254−256  (1988)46、Seuwen、に、、and Pouyssegur、J 、Biochem、 Pharmacol、39゜47、Nemecek、G、 M、、Coughl in。and Pouyssegur, J., Nature, 335, 254-256. (1988) 46, Seuwen, N., and Pouyssegur, J. , Biochem, Pharmacol, 39°47, Nemecek, G. M., Coughl in.

S、R,、Hand Iey、D、A、、and Moskowi tz、M、 A、Proc、Nat 1.Acad。S, R,, Hand Iey, D, A,, and Moskowi tz, M, A, Proc, Nat 1. Acad.

Sc i、83,674−678 (1986)48、B15hop、J、M、 Annu、Rev、Biochem、52. 301−354 (1983)4 9、Varmus、H,E、Annu、Rev、Genet、18. 553− 587 (1984)50、Aune、T、M、、and Pogue、S。Sc, 83, 674-678 (1986) 48, B15hop, J.M. Annu, Rev. Biochem, 52. 301-354 (1983) 4 9. Varmus, H.E., Annu, Rev. Genet, 18. 553- 587 (1984) 50, Aune, T. M., and Pogue, S.

L、J、Cl1n、Invest、84. 863−8751、Finocch iaro、L、M、E、、Arzt、E、S、、Fernandez−Cast elo。L, J, Cl1n, Invest, 84. 863-8751, Finocch iaro, L.M.E., Arzt., E.S., Fernandez-Cast elo.

S、、Cr1scuolo、M、、Finkielman、S、、and Na hmod、V、E、J、Interferon Res、8. 705−716 52、Walker、R,F、、Friedman、D。S., Cr1scuolo, M., Finkielman, S., and Na. hmod, V, E, J, Interferon Res, 8. 705-716 52, Walker, R.F., Friedman, D.

W、 、and Jimenez、A、Life Sci。W., and Jimenez, A., Life Sci.

33、 1915−1924 (1983)53、 Altman、A、、T、  Mustelin and K、M、Coggeshal 1. 1990.  Cr1tical Rev、 in Immunol、10:Tリンパ球活性 :シグナルトランスダクションの生物学的モデル。33, 1915-1924 (1983) 53, Altman, A., T. Mustelin and K, M, Coggeshal 1. 1990. Crltical Rev, in Immunol, 10: T lymphocyte activity : Biological models of signal transduction.

54、Puck、J、M、、and R,R9Rich。54, Puck, J.M., and R.R.Rich.

1984、J、Immunol、132:1106ポークウイードマイトゲンに より刺激されたT細胞サブセットの増殖を支配する調節的相互作用。1984, J. Immunol, 132:1106 to porkweed mitogen. Regulatory interactions governing proliferation of more stimulated T cell subsets.

55、Aune、T、M、and S、L、Pogue。55, Aune, T. M. and S. L., Pogue.

1989、J、Immunol、142:3731CD8+サプレッサTリンパ 球の連続系の発生および特性。1989, J. Immunol, 142:3731 CD8+ suppressor T lymph. Occurrence and properties of continuous systems of spheres.

56、Fox、E、J、、R,G、Cook、D、E。56. Fox, E. J., R. G., Cook, D. E.

Lewis、and R,R,Rich、1986.J。Lewis, and R.R. Rich, 1986. J.

Cl1n、Invest、78:214サプレツサT細胞の増殖シグナル:イン ビトロでホークライードマイトゲンにより刺激されたヘルパー細胞はサプレッサ 細胞成長因子を生成する。Cl1n, Invest, 78:214 Suppressor T cell proliferation signals: In Helper cells stimulated by Hawklide mitogen in vitro are suppressors Produces cell growth factors.

57、Kammer、G、M、、1988.Immunology Today 、9,222−229アデニル酸シクラーゼ−c A M P−蛋白キナーゼ。57, Kammer, G. M., 1988. Immunology Today , 9, 222-229 Adenylate cyclase-c A M P-protein kinase.

免疫応答の経路および調節。Pathways and regulation of immune responses.

シーrr(gu) 時間(分) 時間(分) FIG、 4 時間(分) FIG、 5 FIG、 6A ケタンセリン6Mノ FIG、 6B FIG、 7 FIG、 8 FIG、 77 添加した調節用細胞 FIG、12 稲W隆or/’!!毎尊 Iotu、、qFIG、 13B FIG、 14 FIG、 15 FIG、 1B IFN7 FIG、 ’f7A FIG、 1B アッセイロ数 FIG、 20 EG、 21 国際調査報告 Fcrm PcT4SA7)10 j#mmJ+ Item (ill 、 P &11210Wフロントページの続き (51) [nt、 CL、5 識別記号 庁内整理番号A61K 31150 5 ADS 9360−4C39/395 D 9284−4C U 9284−4C Isearr(gu) Time (minutes) Time (minutes) FIG. 4 Time (minutes) FIG. 5 FIG, 6A Ketanserin 6M FIG, 6B FIG. 7 FIG.8 FIG. 77 Added regulatory cells FIG. 12 Ina W Takashi or/’! ! Everyson Iotu, qFIG, 13B FIG. 14 FIG. 15 FIG, 1B IFN7 FIG,’f7A FIG, 1B Assayro number FIG. 20 EG, 21 international search report Fcrm PcT4SA7)10j#mmJ+Item (ill, P &11210W Front page continuation (51) [nt, CL, 5 Identification symbol Internal office reference number A61K 31150 5 ADS 9360-4C39/395 D 9284-4C U 9284-4C I

Claims (15)

【特許請求の範囲】[Claims] 1.5HT1a受容体結合部位の有効性を低下することから成ることを特徴とす る5HT1a受容体を呈示する活性化T細胞の機能を調節する方法。1.5, characterized in that it consists of reducing the effectiveness of the HT1a receptor binding site. A method of modulating the function of activated T cells exhibiting 5HT1a receptors. 2.前記5HT1a受容体結合部位の有効性を、5HTリガンドの群から選択し た少なくとも一種のアンタゴニストの効果量を投入することによって低下するこ とを特徴とする請求項1に記載の方法。2. The effectiveness of the 5HT1a receptor binding site is determined by selecting from the group of 5HT ligands. The effectiveness of at least one antagonist can be reduced by administering an effective dose of at least one antagonist. The method according to claim 1, characterized in that: 3.前記5HT受容体リガンドの群がスピペロン、ミモトープおよび前記5HT 1a受容体に対する抗体を含むことを特徴とする請求項2に記載の方法。3. The group of 5HT receptor ligands includes spiperone, mimotope and the 5HT receptor ligand. 3. The method according to claim 2, characterized in that it comprises an antibody against the 1a receptor. 4.5HT1a受容体に対して結合可能なセロトニンの量を機能的に減少するこ とから成ることを特徴とする5HT1a受容体を呈示する活性化T細胞の機能を 調節する方法。4.5 Functionally reducing the amount of serotonin that can bind to HT1a receptors The function of activated T cells exhibiting 5HT1a receptor characterized by How to adjust. 5.前記活性化T細胞の機能を、酵素トリプトファンヒドロキシラーゼの活性を 阻害する化合物の効果量を投与してセロトニン合成を阻害することにより低下す ることを特徴とする請求項4に記載の方法。5. The function of the activated T cells and the activity of the enzyme tryptophan hydroxylase are It is reduced by inhibiting serotonin synthesis by administering an effective dose of an inhibiting compound. 5. The method according to claim 4, characterized in that: 6.5HT1a受容体結合部位の有効性を機能的に増加することから成ることを 特徴とする5HT1a受容体を呈示する活性化T細胞の機能を増進的に調節する 方法。6.5 consists of functionally increasing the availability of the HT1a receptor binding site. Increased regulation of the function of activated T cells exhibiting the characteristic 5HT1a receptor Method. 7.前記活性化T細胞の機能を、8−ヒドロキシジプロピルアミノテトラリンH Brを含む5HT1a受容体リガンドの群から選択した少なくとも一種のアゴニ ストの量を投入することによって高めることを特徴とする請求項6に記載の方法 。7. The function of the activated T cells is controlled by 8-hydroxydipropylaminotetralin H. at least one agonist selected from the group of 5HT1a receptor ligands including Br; 7. A method according to claim 6, characterized in that the amount of sterilization is increased by inputting . 8.5HT1a受容体結合部位の有効性を低下することによって5HTla受容 体を呈示する細胞の機能を抑制的に調節することから成ることを特徴とする哺乳 類におけるT細胞依存症を治療する方法。8.5HTla receptor by reducing the effectiveness of the 5HT1a receptor binding site. Breastfeeding characterized by consisting of suppressive regulation of the functions of cells presenting the body A method of treating T cell dependence in patients. 9.前記細胞の機能を、当該細胞の機能を阻害するために前記5HT受容体に結 合するに足る、5HT受容体リガンドの群から選択した少なくとも一種のアンタ ゴニストの効果量を投入することによって低下することを特徴とする請求項8に 記載の方法。9. binding to the 5HT receptor to inhibit the function of the cell. at least one 5HT receptor ligand selected from the group of 5HT receptor ligands. Claim 8, characterized in that the effect is reduced by administering an effective amount of agonist. Method described. 10.前記5HT受容体リガンドの群がスピペロン、ミモトープおよび当該5H T受容体の抗体を含むことを特徴とする請求項9に記載の方法。10. The group of 5HT receptor ligands includes spiperone, mimotope and the 5H 10. The method according to claim 9, characterized in that it comprises an antibody to the T receptor. 11.5HT受容体に結合し得るセロトニンの量を機能的に減少することによっ て5HT1a受容体を呈示する細胞の増殖を抑制的に調節することから成る哺乳 類におけるT細胞依存症を治療する方法。11.5HT receptors by functionally reducing the amount of serotonin that can bind to them. 5HT1a receptor A method of treating T cell dependence in patients. 12.前記活性化T細胞の増殖を、酵素トリプトファンヒドロキシラーゼの活性 を阻害する化合物の効果量を投与してセロトニン合成を阻害することにより低下 することを特徴とする請求項11に記載の方法。12. The proliferation of the activated T cells is controlled by the activity of the enzyme tryptophan hydroxylase. by inhibiting serotonin synthesis by administering effective doses of compounds that inhibit 12. The method according to claim 11, characterized in that: 13.前記活性化T細胞の増殖を、リタンセリン、ミアンセリン、スピペロン、 ミモトープおよび前記5HT1a受容体の抗体を含む5HT受容体リガンドの群 から選択した少なくとも一種のアンタゴニストの効果量を投入することによって 低下することを特徴とする請求項12に記載の方法。13. The proliferation of the activated T cells is inhibited by ritanserin, mianserin, spiperone, A group of 5HT receptor ligands comprising mimotopes and antibodies of the 5HT1a receptor. by introducing an effective amount of at least one antagonist selected from 13. The method according to claim 12, characterized in that: 14.5HT、リタンセリンおよびL−メチル5HTを含む5HT1a受容体リ ガンドの群から選択した少なくとも一種のアゴニストの効果量を投入することに より、5HT1a受容体結合部位の有効性を機能的に増加することによって、当 該5HT1a受容体を呈示する活性化T細胞の機能を増進的に調節することから 成り、該効果量が細胞機能を高めるに足ることを特徴とする哺乳類における免疫 欠損症の治療方法。5HT1a receptor receptors including 14.5HT, ritanserin and L-methyl 5HT. Injecting an effective amount of at least one agonist selected from the group of by functionally increasing the effectiveness of the 5HT1a receptor binding site. Because it enhances the function of activated T cells presenting the 5HT1a receptor. immunization in mammals, characterized in that the effective amount is sufficient to enhance cell function. How to treat deficiencies. 15.細胞機能を高めるに足るセロトニンの効果量から成ることを特徴とする5 HT1a受容体を呈示する活性化T細胞のサブポピユレーションCD8+の機能 を増進的に調節する方法。15. 5 characterized by comprising an effective amount of serotonin sufficient to enhance cell function. Function of activated T cell subpopulation CD8+ presenting HT1a receptor How to modulate additively.
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* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5461054A (en) * 1993-12-09 1995-10-24 Bayer Aktiengesellschaft Anthracene-spiro-pyrrolindines
US5409932A (en) * 1993-12-09 1995-04-25 Bayer Ag Piperazine-substituted pyrroloanthracenes
US5411960A (en) * 1993-12-09 1995-05-02 Bayer Aktiengesellschaft Substituted pyrroloanthracenes and -diones
WO1996001106A1 (en) * 1994-07-06 1996-01-18 Bo Arne Hofmann Use of pharmaceutical agents for alleviation or treatment of the immune dysfunction related to infection with human immunodeficiency viruses (hiv) or related viruses
WO1996001107A1 (en) * 1994-07-06 1996-01-18 Bo Arne Hofmann Use of pharmaceutical agents for restoring, alleviation, or treatment of immunodeficiency, including the alleviation or treatment of the immune dysfunction related to infection with human immunodeficiency viruses (hiv) or related viruses
DE69710258T2 (en) * 1996-06-17 2002-08-22 Mitsubishi Chem Corp Agent for accelerating the flow of tears containing a serotonin ligand, in particular aminoalkoxybibenzyls
JP4427253B2 (en) 2001-03-30 2010-03-03 フイラデルフイア・ヘルス・アンド・エデユケーシヨン・コーポレーシヨン Implications for cellular processes related to immune regulation and serotonin family receptors
MX2009011068A (en) * 2007-04-13 2010-01-13 Southern Res Inst Anti-angiogenic agents and methods of use.
CN113599370B (en) * 2021-08-03 2023-12-08 复旦大学附属肿瘤医院 Application of 8-OH-DPAT and derivatives thereof in preparation of antitumor drugs

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* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE69025943T2 (en) * 1989-08-21 1996-09-19 Beth Israel Hospital Use of Spiperone derivatives for immunosuppression

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