JPH0636741B2 - Method for separating human protein C - Google Patents

Method for separating human protein C

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JPH0636741B2
JPH0636741B2 JP1288684A JP28868489A JPH0636741B2 JP H0636741 B2 JPH0636741 B2 JP H0636741B2 JP 1288684 A JP1288684 A JP 1288684A JP 28868489 A JP28868489 A JP 28868489A JP H0636741 B2 JPH0636741 B2 JP H0636741B2
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Description

【発明の詳細な説明】 a.産業上の利用分野 本発明はヒト・プロテインCに対してカルシウムイオン
(Ca )の非存在下では認識せず、カルシウムイオ
ン(Ca )存在下で認識するモノクローナル抗体を
産生するハイブリドーマ及びヒト・プロテインCの分離
方法に関する。
DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION a. INDUSTRIAL APPLICABILITY The present invention is not recognized by the absence of calcium ions (Ca + +) against human protein C, and hybridomas which produce the monoclonal antibodies recognizing the presence of calcium ions (Ca + +) The present invention relates to a method for separating human protein C.

b.従来技術 プロテインCはビタミンK依存性血漿蛋白質すなわちγ
−カルボキシグルタミン酸含有蛋白の一つであり、血管
内皮細胞表層のトロンボモジュリン存在下トロンビンに
より活性されて[Esmon,C,T&Owen,W.G:Pro
c.Natl.Acad.Sci.USA.78:2249-2251(1981)参
照]活性化プロテインC(APC)となる。活性化プロ
テインCはセリンプロテアーゼの一種であり、血液凝固
系の補酵素である第V因子(FV.FVa)と第VIII因
子(FVIII,FVIIIa)を分解し、強い抗凝固作用[S
uzuki.K.et.al.:J.Biol.Chem.258:1914-192
0(1983).Vehar,G.A.&Davie,E.W.:Bioc
hemistry.19:401-409(1980)参照]を示すと共に血管
壁からプラスミノーゲン・アクチベータを放出させ、線
溶系を促進させる[Comp,P.C.&Esmon,C.T:
J.Clin.I nvest.68:1221-1228(1981)参照]ことが
知られている。
b. Prior Art Protein C is a vitamin K-dependent plasma protein or γ
-A carboxyglutamic acid-containing protein, which is activated by thrombin in the presence of thrombomodulin on the surface of vascular endothelial cells [Esmon, C, T & Owen, W. G: Pro
c.Natl.Acad.Sci. USA. 78 : 2249-2251 (1981)] Activated protein C (APC). Activated protein C is a type of serine protease, which decomposes coenzymes of the blood coagulation system, factor V (FV.FVa) and factor VIII (FVIII, FVIIIa), and has a strong anticoagulant action [S
uzuki.K. et. al. : J. Biol. Chem. 258 : 1914-192
0 (1983). Vehar, G .; A. & Davie, E. W. : Bioc
hemistry. 19 : 401-409 (1980)] and release plasminogen activator from the blood vessel wall to promote the fibrinolytic system [Comp, P. et al. C. & Esmon, C.I. T:
J. Clin. Invest. 68 : 1221-1228 (1981)].

さらにプロテインC欠損症は重度の血栓症を呈すること
も報告されており、[Griffin,J.H.et al:J.C
lin.Invest.,68,1370-1373(1980),Bertina,R.
M.et al:Thromb.Haemostas.,481〜5(1982)]
プロテインCは血液凝固線溶系の重要な制御因子である
ことが明らかにされている。
Furthermore, protein C deficiency has also been reported to exhibit severe thrombosis, [Griffin, J. et al. H. et al: J. C
lin. Invest., 68 , 1370-1373 (1980), Bertina, R .;
M. et al: Thromb. Haemostas., 48 1-5 (1982)]
Protein C has been shown to be an important regulator of the blood coagulation and fibrinolysis system.

したがってプロテインCの作用機構を明らかにするこ
と、また、プロテインCの血中における抗原量、活性量
を測定し、その動向を把握することができれば、それは
基礎医学、臨床医学の領域において非常に重要な意味を
持つと考えられる。
Therefore, if the mechanism of action of protein C can be clarified, and the amount of antigen and activity of protein C in blood can be measured and its trends can be grasped, it is very important in the fields of basic medicine and clinical medicine. It is thought to have meaning.

一方モノクローナル抗体は単一の抗原決定基にたいして
特異的であり、かつ同一のの特異性を有する抗体を安定
的に産生できるという利点から抗原蛋白質の機能および
構造の解析、あるいは免疫測定(EAI,RIA)に近
時一般的に広く利用されるようになって来た。特に抗原
蛋白質の機能解析、分子解析には抗原蛋白の機能に関与
する部位、または特殊な構造部位を認識する抗体を見出
すことが有力な手段となり得る。
On the other hand, a monoclonal antibody is specific to a single antigenic determinant and can stably produce an antibody having the same specificity. Therefore, the function and structure of an antigen protein can be analyzed or immunoassay (EAI, RIA) can be performed. Recently, it has become widely used. In particular, for functional analysis and molecular analysis of an antigen protein, finding an antibody that recognizes a site involved in the function of the antigen protein or a special structural site can be a powerful means.

ヒト・プロテインCの構造は、分子量約41000のH鎖と
分子量約21000のL鎖がS−S架橋で結合されており、
H鎖にセリンプロテアーゼ活性部位を有し、また、L−
鎖アミノ末端には、9個のカルシウムイオン結合性アミ
ノ酸、すなわち、γ−カルボキシグルタミン酸(Gla)
残基を含むGlaドメインが存在することが知られてい
る。Glaドメインを有する血液凝固因子は、プロテイン
Cを含め、第II因子(プロトロンビン)、第VII因子、
第IX因子、第X因子いずれもカルシウムイオン(Ca
)存在下でGlaに依存した立体的構造変化を生じるこ
とが知られており、この機構は、血液凝固系発現の上で
重要な役割を果していることが知られている。
In the structure of human protein C, an H chain having a molecular weight of about 41000 and an L chain having a molecular weight of about 21000 are linked by an SS crosslink,
It has a serine protease active site in the H chain and L-
At the amino terminus of the chain, nine calcium ion-binding amino acids, namely γ-carboxyglutamic acid (Gla)
It is known that there is a Gla domain containing residues. Blood coagulation factors having a Gla domain include Factor II (prothrombin), Factor VII, including protein C.
Both factor IX and factor X are calcium ions (Ca +
In the presence of + ), it is known to cause a Gla-dependent three-dimensional structural change, and this mechanism is known to play an important role in the expression of the blood coagulation system.

従来、ヒト・プロテインCのモノクロナール抗体は鈴木
らにより作成されたことが報告されており、[鈴木宏治
他:“血液と脈管”,15:171-174(1984)参照]、こ
の抗体はヒト・プロテインCの抗原量の測定、活性の測
定に利用されているが、カルシウムイオン(Ca
存在下で構造変化を受けたヒト・プロテインCを認識す
るモノクロナール抗体についての報告はまだなされてい
ない。
Previously, it has been reported that a monoclonal antibody against human protein C was produced by Suzuki et al. [Koji Suzuki et al .: “Blood and Vascular”, 15: 171-174 (1984)]. measurement of the amount of antigen human protein C, have been used to measure the activity, calcium ions (Ca + +)
No report has yet been made on a monoclonal antibody that recognizes human protein C that has undergone a structural change in the presence thereof.

そこで本発明らは、プロテインCがカルシウムイオン
(Ca )存在下で立体的構造変化を受けることに着
目し、カルシウムイオン(Ca )の存在下で構造変
化を受けたプロテインCを特異的に認識するモノクロー
ナル抗体について研究を進めた結果本発明に到達した。
The present invention found that, paying attention to the protein C undergoes a three-dimensional structural change in the presence of calcium ions (Ca + +), calcium ion (Ca + +) presence specifically the protein C undergoes a conformational change in the The present invention has been achieved as a result of research on monoclonal antibodies that recognize specifically.

c.発明の構成 すなわち、本発明は、カルシウムイオン(Ca )の
非存在下ではヒト・プロテインCに対して認識せず且つ
カルシウムイオン(Ca )の存在下ではヒト・プロ
テインCに対して特異的に認識するヒト・プロテインC
に対するモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマ
である。
c. Configuration of the Invention Namely, the present invention is to provide a calcium ion (Ca + +) of human protein C in the presence of and calcium ions not recognized in the absence with respect to human protein C (Ca + +) Human protein C that specifically recognizes
A hybridoma that produces a monoclonal antibody against

さらに他の本発明は、カルシウムイオン(Ca )の
非存在下ではヒト・プロテインCに対して認識せず且つ
カルシウムイオン(Ca )の存在下ではヒト・プロ
テインCに対して特異的に認識するヒト・プロテインC
に対するモノクローナル抗体を不溶性担体と結合させた
吸着体に、ヒト・プロテインC含有混合物を、カルシウ
ムイオン(Ca )の存在下に接触せしめて、該吸着
体にヒト・プロテインCを結合せしめることを特徴とす
るヒト・プロテインC含有混合物からのヒト・プロテイ
ンCの分離法である。
Yet another of the present invention, specific for human protein C in the presence of calcium ions (Ca + +) in the absence and calcium ions not recognized for human protein C (Ca + +) Recognizes human protein C
Monoclonal antibodies adsorbent obtained by binding to an insoluble carrier for the human protein C-containing mixture is contacted in the presence of calcium ions (Ca + +), that allowed to bind human protein C in the adsorption body A method for separating human protein C from a characteristic mixture containing human protein C.

本発明のモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマ
細胞はケーラーとミルシュタインの方法[Khler &
Milstein,Nature:256495-497(1975) ]として知ら
れた方法によって得られる。すなわち、ヒト・プロテイ
ンCでマウスを免疫した後、このマウスの脾臓細胞をマ
ウス・ミエローマ細胞と融合させ、得られたハイブリド
ーマ細胞はマイクロタイタープレートに固定されたヒト
・プロテインCと反応する抗体に対し、系統的に検査
し、選択される。この際に、カルシウムイオン(Ca
)存在下における検査と、カルシウムイオン非存在下
における検査を同時に行い前者においてのみ陽性を示す
ハイビリドーマを選別することにより、目的とする抗体
を合成し分泌するハイブリドーマを単離することができ
る。
The hybridoma cells producing the monoclonal antibody of the present invention can be prepared by the method of Kohler and Milstein [Khler &
Milstein, Nature: 256 495-497 (1975)]. That is, after immunizing a mouse with human protein C, the spleen cells of this mouse are fused with mouse myeloma cells, and the obtained hybridoma cells react with human protein C immobilized on a microtiter plate. Systematically inspected and selected. At this time, calcium ions (Ca +
+ ) The test in the presence of calcium ion and the test in the absence of calcium ion are simultaneously carried out to select hybridomas showing positive only in the former case, whereby a hybridoma that synthesizes and secretes the target antibody can be isolated.

かかる新規なハイブリトーマ細胞が産生する産生物から
得られるモノクローナル抗体は、カルシウムイオン(C
)の存在下におけるヒト・プロテインC分子上の
特定の抗原決定基に対して単一特異的に作用する。
The monoclonal antibody obtained from the product produced by such a novel hybridoma cell is calcium ion (C
a + + ) acts monospecifically for a particular antigenic determinant on a human protein C molecule.

本発明によって得られるノモクローナル抗体はその特性
からヒト・プロテインCの精製に利用する場合非常に有
利である。すなわち、不溶性担体に本発明によって得ら
れるモノクローナル抗体を固定化し、カルシウムイオン
(Ca )が存在する溶液中で血漿(カルシウムイオ
ン存在下で凝固しないように調製したもの)または、他
のヒト・プロテインCを含む原料、あるいはそれらの粗
抽出物、粗精製物および溶液からヒト・プロテインCを
吸着・分離しカルシウムイオン(Ca )存在下で洗
浄後、溶液をカルシウムイオンを含まないもの(例えば
EDTAが存在する溶液)に置き換えて、ヒト・プロテ
インCを溶出することができる。この方法によれば、従
来の不溶化抗体による抗原蛋白質の精製のように、過激
な条件下(例えば、0.2Mグリシン塩酸あるいは8M尿
素のような)に蛋白質をさらすことなく、穏和な条件下
で精製を行うことができる。
The characteristics of the nomoclonal antibody obtained by the present invention are very advantageous when used for the purification of human protein C. That is, a monoclonal antibody obtained by the present invention to an insoluble carrier immobilized, calcium ions (Ca + +) (as prepared as not solidified in the presence of calcium ions) plasma in a solution exists, or, other human material containing protein C or crude extract thereof, a crude product and adsorb human protein C from a solution, the separated calcium ions (Ca + +) after washing in the presence, the solution containing no calcium ions ( For example, human protein C can be eluted by substituting it with a solution containing EDTA). According to this method, unlike the conventional purification of an antigen protein with an insolubilized antibody, purification is performed under mild conditions without exposing the protein to extreme conditions (for example, 0.2 M glycine hydrochloride or 8 M urea). It can be performed.

また、ヒト・プロテインCその他のγ−カルボキシルグ
ルタミン酸含有蛋白質にはGlaを含まず、Glaに依存す
る構造変化を受けない異常分子が存在することが知られ
ているが、本発明によって得られるモノクローナル抗体
を用いることにより、この異常分子の測定が可能になる
と考えられる。すなわち、カルシウムイオン(C
)の存在の有無に拘らず、ヒト・プロテインCを
認識する抗体を用いて免疫学的手段(例えばEIA,R
IA)により血漿その他の試料中のヒト・プロテインC
抗原量を測定し、更に本発明によるモノクローナル抗体
を用いて、血漿、その他の試料中のヒト・プロテインC
をカルシウムイオン存在下で免疫学的手法(EIA,R
IA)により測定すれば、その測定値の差から、異常ヒ
ト・プロテインCの量を把握することができる。
It is known that human protein C and other .gamma.-carboxyglutamic acid-containing proteins contain an abnormal molecule which does not contain Gla and does not undergo a Gla-dependent structural change. It is considered that this abnormal molecule can be measured by using. That is, calcium ion (C
a + + ), the presence or absence of an antibody that recognizes human protein C is used for immunological means (eg EIA, R).
Human protein C in plasma and other samples by IA)
The amount of antigen is measured, and the monoclonal antibody according to the present invention is used to detect human protein C in plasma or other samples.
Immunoassay in the presence of calcium ions (EIA, R
If measured by IA), the amount of abnormal human protein C can be grasped from the difference between the measured values.

次に本発明によって得られるモノクローナル抗体を作成
する具体的方法について詳細に説明する。
Next, a specific method for producing the monoclonal antibody obtained by the present invention will be described in detail.

A.抗原の単離・精製; 抗原に用いるヒト・プロテインCは鈴木らの方法[Suz
uki.K.et al,J.Biol.Chem.258:1914-1920(198
3)]によりヒト・血漿から単離・精製される。
A. Isolation / purification of antigen; Human protein C used for antigen is the method of Suzuki et al. [Suz
uki.K. et al, J.M. Biol. Chem. 258 : 1914-1920 (198
3)] isolates and purifies from human plasma.

B.ヒト・プロテインCによるマウスの免疫; 雌Balb/Cマウスを用いることができるが他の系(St
rain)のマウスを使用してもよい。その際、免疫計画、
及びヒト・プロテインCの濃度は十分な量の抗原刺戟を
受けた、リンパ球が形成されるように選ばれるべきであ
る。例えばマウスに50μgのヒト・プロテインCを2週
間間隔で腹腔に3回投与の後、さらに30μgを静脈に投
与する。最終免疫の数日後に融合の為に脾臓細胞をとり
出す。
B. Immunization of mice with human protein C; female Balb / C mice can be used but other systems (St
rain) mouse may be used. At that time, the immune plan,
And the concentration of human protein C should be chosen such that lymphocytes are formed that have received a sufficient amount of antigen stimulation. For example, 50 μg of human protein C is intraperitoneally administered to mice three times at 2-week intervals, and then 30 μg is intravenously administered. Spleen cells are removed for fusion a few days after the final immunization.

C.細胞融合; 上記の如く免疫したマウスの脾臓を無菌的に取り出し、
そこから単細胞懸濁液を調製する。それらの脾臓細胞を
適当なラインからマウス骨髄腫細胞と適当な融合促進剤
の使用により、細胞融合させる。脾臓細胞対、骨髄腫細
胞の好ましい比率は約20:1〜約2:1の範囲である。
約108個の脾臓細胞について0.5〜1.5mの融合媒体の
使用が適当である。
C. Cell fusion; Aseptically remove the spleen of a mouse immunized as described above,
From there, a single cell suspension is prepared. The spleen cells are fused with mouse myeloma cells from an appropriate line by using an appropriate fusion promoter. The preferred ratio of spleen cells to myeloma cells is in the range of about 20: 1 to about 2: 1.
The use of 0.5-1.5 m fusion medium for about 10 8 spleen cells is suitable.

細胞融合に用いるマウス骨髄腫細胞は、良く知られてい
るが、本発明では、P3−X63−Ag8−U1細胞(P
3−U1)[Yelton,D.E et al,Current.Top
ics in Microbiology and Immunology,81 1(1978)
参照]を用いた。
Mouse myeloma cells used for cell fusion are well known, but in the present invention, P3-X63-Ag8-U1 cells (P
3-U1) [Yelton, D .; E et al, Current. Top
ics in Microbiology and Immunology, 81 1 (1978)
Reference] was used.

好ましい融合促進剤としては、例えば、平均分子量1000
〜4000のポリエチレングルコールを有利に使用できる
が、この分野で知られている他の融合促進剤を使用する
こともできる。本発明においては、平均分子量1540のポ
リエチレングルコールを用いた。
As a preferable fusion promoter, for example, an average molecular weight of 1000
Advantageously, ~ 4000 polyethylene glycols can be used, but other fusion promoters known in the art can also be used. In the present invention, polyethylene glycol having an average molecular weight of 1540 was used.

D.融合した細胞の選択; 別の容器内(例えばマイクロタイタープレート)で未融
合の脾臓細胞、未融合のマウス骨髄腫細胞および融合し
たハイブリドーマ細胞の混合物を未融合のマウス骨髄腫
細胞を支持しない選択培地で希釈し、未融合の細胞を死
滅させるのに十分な時間(約1週間)培養する。培地は
未融合のマウス骨髄腫細胞を支持しないもの、(例えば
HAT培地)が使用される。この選択培地中では、未融
合の骨髄腫細胞は死滅する。この未融合の脾臓細胞は非
腫瘍性細胞なので、ある一定期間後(1週間後)死滅す
る。これらに対して融合した細胞は、骨髄腫の親細胞の
腫瘍性と、脾臓細胞の性質を合わせ持つため、選択培地
中で存在できる。
D. Selection of fused cells; selection medium that does not support unfused mouse myeloma cells with a mixture of unfused spleen cells, unfused mouse myeloma cells and fused hybridoma cells in a separate container (eg, a microtiter plate) And incubate for a sufficient time (about 1 week) to kill unfused cells. A medium that does not support unfused mouse myeloma cells (eg, HAT medium) is used. In this selective medium, the unfused myeloma cells die. Since these unfused spleen cells are non-neoplastic cells, they die after a certain period of time (1 week). The cells fused to these have the neoplastic properties of the parental cells of myeloma and the properties of spleen cells, and therefore can exist in the selective medium.

E.各容器中のヒト・プロテインC抗体の確認; かくして、ハイブリドーマ細胞が検出された後、その培
養上清を採取し、ヒト・プロテインCに対する抗体につ
いて酵素免疫定量法(EnzymeLinked I mmunosoben
t A ssay)によりスクリーニングする。この際、培
養上清、酵素標識抗体溶液および洗浄液に一定濃度のC
aCを加えた条件下の測定と、CaCを加えない
条件下の測定の両方を行い、前者に対してのみ陽性を示
すハイブリドーマを選択することにより、カルシウムイ
オン非存在下では、ヒト・プロテインCを認識せず、カ
ルシウムイオン存在下で、ヒト・プロテインCを認識す
る抗体を産生、分泌するハイプリドーマを選別すること
ができる。
E. Confirmation of human protein C antibody in each container; Thus, after the hybridoma cells were detected, the culture supernatant thereof was collected and the enzyme immunoassay (EnzymeLinked Immunosoben) for the antibody to human protein C was collected.
t assay). At this time, a certain concentration of C was added to the culture supernatant, the enzyme-labeled antibody solution and the washing solution.
By carrying out both the measurement under the condition that aC 2 was added and the condition under which no CaC 2 was added, and selecting a hybridoma that showed positive only to the former, human protein was detected in the absence of calcium ion. It is possible to select a hybridoma that does not recognize C but produces and secretes an antibody that recognizes human protein C in the presence of calcium ions.

F.目的の抗体を産生するハイブリドーマ細胞のクロー
ン化と抗体の産生 目的の抗体を産生するハイブリドーマ細胞を適当な方法
(例えば限界希釈法)でクローン化すると、抗体は2つ
の異なった方法で産生される。その第1の方法によれ
ば、ハイブリドーマ細胞を一定時間、適当な培地で培養
することにより、その内容上清からそのハイブリドーマ
細胞の産生するモノクローナル抗体を得ることができ
る。第2の方法によれば、ハイブリドーマ細胞は同質遺
伝子、又は半同質遺伝子を持つマウスの腹腔に注射する
ことができる。一定時間後の宿主動物の血液中および腹
水中より、そのハイブリドーマ細胞の産生するモノクロ
ーナル抗体を得ることができる。
F. Cloning of Hybridoma Cells Producing the Antibody of Interest and Production of the Antibody When the hybridoma cells producing the antibody of interest are cloned by an appropriate method (eg, limiting dilution method), the antibody is produced by two different methods. According to the first method, by culturing the hybridoma cells in an appropriate medium for a certain period of time, the monoclonal antibody produced by the hybridoma cells can be obtained from the content supernatant. According to the second method, the hybridoma cells can be injected into the abdominal cavity of a mouse having an isogenic or semiisogenic gene. The monoclonal antibody produced by the hybridoma cells can be obtained from the blood and ascites of the host animal after a certain period of time.

G.ヒト・プロテインC含有混合物からのヒト・プロテ
インCの分離; 本発明によって得られるモノクローナル抗体は、前記し
た如く、カルシウムイオン(Ca )の非存在下では
ヒト・プロテインCに対して認識せず、且つカルシウム
イオン(Ca )の存在下ではヒト・プロテインCに
対して特異的に認識するという性質を有しているので、
この性質を利用して、ヒト・プロテインCを含有してい
る混合物(例えばヒト血漿など)からヒト・プロテイン
Cを簡単に分離することができる。
G. Separation of human protein C from human protein C-containing mixture; monoclonal antibody obtained by the present invention, as described above, in the absence of calcium ions (Ca + +) not recognized for human protein C because and in the presence of calcium ions (Ca + +) have the property of recognizing specifically against human protein C,
Utilizing this property, human protein C can be easily separated from a mixture containing human protein C (eg, human plasma).

そのため、先ず前記ヒト・プロテインCに対するモノク
ローナル抗体を不溶性担体に固定化又は結合させて吸着
体を得る。その際使用される不溶性担体としてじは、モ
ノクローナル抗体を用いた測定試薬又は測定用キットの
基材として一般的使用されるものであればよい。例えば
材質としてアガロース,ポリアクリルアミド,セルロー
ス,デキストラン,またはマレイン酸ポリマー或いはこ
れらの混合物が好ましく用いられる。これら不活性担体
の形態としては、粉末状,粒状,ペレット状,ビーズ
状,フイルム状,繊維状など種々の形態であることがで
きる。また一般に血漿、またはその分画成分の測定や分
離に用いられる多数の凹状のくぼみを有するプレート
(ウエル)を用いることが有利である。
Therefore, first, the monoclonal antibody against human protein C is immobilized or bound to an insoluble carrier to obtain an adsorbent. The insoluble carrier used at this time may be one commonly used as a base material of a measurement reagent or a measurement kit using a monoclonal antibody. For example, agarose, polyacrylamide, cellulose, dextran, maleic acid polymer or a mixture thereof is preferably used as the material. The form of these inert carriers can be various forms such as powder, granules, pellets, beads, films and fibers. Further, it is advantageous to use a plate (well) having a large number of concave depressions that are generally used for measuring or separating plasma or its fractional components.

前記吸着体を用い、これにヒト・プロテインC含有混合
物を、カルシウムイオン(Ca )の存在下に接触せ
しめると、該吸着体に固定化したモノクローナル抗体と
ヒト・プロテインCとが結合して、結果的にヒト・プロ
テインCが該吸着体に結合する。かくすることによりヒ
ト・プロテインCを分離、除去することが可能である。
Using the adsorbent, the human protein C-containing mixture to and brought into contact in the presence of calcium ions (Ca + +), and the monoclonal antibody immobilized on adsorption body and human protein C is bound to As a result, human protein C binds to the adsorbent. By doing so, human protein C can be separated and removed.

又前記の如くしてヒト・プロテインCを吸着体に結合さ
せ、出来れば残余の混合物を洗滌して除去し、次いで吸
着体に結合したヒト・プロテインCをカルシウムイオン
(Ca )を実質的に含まない液体と接触又は洗滌す
ると、ヒト・プロテインCが該吸着体から離脱し、これ
を取得することによって、ヒト・プロテインCを単離す
ることができる。
The Human Protein C is bound to the adsorbent and the above-mentioned manner, if possible a mixture of the remainder is removed by washing, then essentially the calcium human protein C bound to the adsorbent ion (Ca + +) Human protein C is isolated from the adsorbent by contact with or washing with a liquid that does not contain human protein C, and human protein C can be isolated.

かくして前記本発明の分離法によれば、ヒト・プロテイ
ンCを含有する混合物からのヒト・プロテインCの除
去、該混合物からのヒト・プロテインCの分離及び精
製、該混合物中のヒト・プロテインCの含有量の測定な
どが極めて簡単な操作で達成される。
Thus, according to the above-mentioned separation method of the present invention, removal of human protein C from a mixture containing human protein C, separation and purification of human protein C from the mixture, removal of human protein C from the mixture, The measurement of the content can be achieved by an extremely simple operation.

以下実施例を上げ本発明を詳細に説明する。以下実施例
ではプロテインCをPCと略称することがある。
The present invention will be described in detail below with reference to examples. In the following examples, protein C may be abbreviated as PC.

実施例1 精製したヒト・PCの雌のBalb/Cマウス(4週齢)
2匹に対して14日間隔で4回免疫した。
Example 1 Purified human / PC female Balb / C mice (4 weeks old)
Two animals were immunized four times at 14-day intervals.

初回の免疫はPBSに溶解した。50μgのヒト・PCを
等量のフロイントの完全アジュバント(Complete Fr
enud's adjuvant)と混合し、そのエマルジョンを、腹
腔内に投与した(0.5mg/head)、2回目,3回目は、
同じく50μgのヒト・PCをフロイントの不完全アジュ
バント(F renud's incomplete adjuvant)と混合
し、同じく腹腔内に投与した。最終免疫は30μgのヒト
・PCをPBC溶液のまま、マウス尾静脈から投与し
た。最終免疫の3日後に免疫したマウスの脾臓細胞を細
胞融合に用いた。
The first immunization was dissolved in PBS. An equal volume of Freund's complete adjuvant (Complete Fr)
enud's adjuvant), and the emulsion was administered intraperitoneally (0.5 mg / head).
Similarly, 50 μg of human PC was mixed with Freund's incomplete adjuvant and intraperitoneally administered. For the final immunization, 30 μg of human PC was administered from the tail vein of the mouse as a PBC solution. Spleen cells of immunized mice were used for cell fusion 3 days after the final immunization.

免疫したマウスの脾臓細胞と、同系マウスの骨髄腫細胞
(P3U1)を約2:1〜15:1の割合で混合し、50%
ポリエチレングリコール1540(和光)を融合促進剤とし
てKhlerとMilsteinの方法に従い細胞融合を行っ
た。融合後の細胞は、1×106cell/mの細胞濃度とな
るように10%FCS−RPMI−1640培地に懸濁し、96
wellsマイクロプレート(Coster)に1ウエル当り100
μずつ分注した。
Spleen cells of immunized mouse and myeloma cells (P3U1) of syngeneic mouse were mixed at a ratio of about 2: 1 to 15: 1, and the mixture was 50%.
Cell fusion was performed according to the method of Khler and Milstein using polyethylene glycol 1540 (Wako) as a fusion accelerator. The fused cells were suspended in 10% FCS-RPMI-1640 medium at a cell concentration of 1 × 10 6 cells / m 2
100 wells per wells microplate (Coster)
Dispensed by μ.

融合細胞は、COインキュベーター(5%CO,37
℃)中で培養し、ヒポキサチン,アミノプテリン;チミ
ジンを含む培地(HAT培地)で培地交換を行い、HA
T培地中で増殖させて、脾臓細胞と、骨髄腫細胞から成
るハイブルドーマのスクリーニングを行った。
The fused cells were in a CO 2 incubator (5% CO 2 , 37
C.), the medium is replaced with a medium containing hypoxatin, aminopterin and thymidine (HAT medium), and HA
After growing in T medium, spleen cells and myeloma cells were screened for hybridomas.

ハイブリドーマの培養上清中の抗体は抗原ヒト・PCを
コーティングしたマイクロタイタープレートを用いEL
ISA法により検出した。第2抗体には、アルカリホス
ファターゼ標識ウサギ抗マウスIgG抗体を用い、カル
シウムイオン存在下非存在下におけるヒト・PCとの結
合の違いを見るため、一方の培養上清には5mMCaC
を添加したTBS(0.02M Tris/HC,0.14M
Na C,pH 7.4)またもう一方にはTBSを加え
た。更に第2抗体の希釈液、及び洗浄液には、5 mM
Ca C添加TBS,0.05%Tween20,0.02%N
a NまたはTBS,0.05%Tween20,0.02%Na
を使用した。
Antibodies in the culture supernatant of hybridomas were prepared using a microtiter plate coated with the antigen human / PC.
It was detected by the ISA method. As the second antibody, an alkaline phosphatase-labeled rabbit anti-mouse IgG antibody was used. To observe the difference in binding with human PC in the presence or absence of calcium ions, one culture supernatant contained 5 mM CaC.
TBS with 2 added (0.02M Tris / HC, 0.14M
Na C, pH 7.4) and TBS was added to the other. Furthermore, 5 mM for the diluent of the second antibody and the washing solution
Ca C 2 added TBS, 0.05% Tween 20, 0.02% N
a N 3 or TBS, 0.05% Tween 20, 0.02% Na
Using the N 3.

融合細胞をまいた合計541のウエルのうち523のウエルに
コロニーの形成が認められた。このうち抗体産生陽性ウ
エルは下記表−1に示すようにカルシウムイオン存在下
で44,カルシウムイオン非存在下で32であった。
Formation of colonies was observed in 523 wells out of a total of 541 wells in which the fused cells were seeded. Of these, the number of antibody production positive wells was 44 in the presence of calcium ions and 32 in the absence of calcium ions as shown in Table 1 below.

これらの抗体産生陽性ウエルのうち12のウエルにつてい
限界希釈法によるクローニングを2回繰り返して行な
い、13個のクローンを得た。得られたクローンは90%F
CS−10%DMSO中に懸濁させ液体窒素中に保存し
た。
Twelve of these antibody production positive wells were cloned twice by the limiting dilution method to obtain 13 clones. The resulting clone is 90% F
Suspended in CS-10% DMSO and stored in liquid nitrogen.

各クローンの産生するモノクローナル抗体はクローンを
Balb/Cマウス腹腔内で増殖させ、その腹水からプロ
テインA−Sepharose4Bカラムを用いて精製した。
The monoclonal antibody produced by each clone was obtained by growing the clone in the abdominal cavity of Balb / C mouse and purifying it from the ascites using a protein A-Sepharose 4B column.

実施例2.(精製したIgGの性質) マウス腹水から精製した各クローンのIgGについてサ
ブクラス,ヒト・PC活性への影響L鎖あるいはH鎖へ
の結合性を調べた。
Example 2. (Characteristics of purified IgG) IgG of each clone purified from mouse ascites was examined for binding to subclass, human / PC activity, and binding to L chain or H chain.

サブクラスは、各クラス特異性の抗マウス抗血清を用い
て、オクタロニー法により決定した。ヒト・PC活性へ
の影響は、ヒト・PCにIgGをモル比1:5で加えて
4℃で一夜インキュベーションし、トロンビン−トロン
ボジュリンコンプレックスによりヒトPCを活性化し、
その活性は次の合成基質の分解活性を測定することによ
り測定した。この合成基質としは [ここではVel−D形の光学活性のバリン,LeuはL形
の光学活性のロイシン,ArgはL形の光学活性のアルギ
ンを示す。KabiVitrumAB(スウェーデン)社製のS
−2266を用いた]を使用した。L鎖、H鎖への結合性
は、ヒト・PCを還元条件で電気泳動し、ニトロセルロ
ース膜及びHRP標識Goat anti-mouseIgGを用いた
イムノブロッティングを行って判定した。
The subclass was determined by the Ouchterlony method using anti-mouse antiserum of each class specificity. The effect on human / PC activity was to add IgG to human / PC at a molar ratio of 1: 5 and incubate overnight at 4 ° C. to activate human PC by thrombin-thrombodulin complex.
The activity was measured by measuring the decomposition activity of the following synthetic substrate. As this synthetic substrate [Here, Vel-D type optically active valine, Leu is L type optically active leucine, and Arg is L type optically active algin. S manufactured by KabiVitrum AB (Sweden)
−2266 was used] was used. L-chain and H-chain binding properties were determined by subjecting human PC to electrophoresis under reducing conditions and performing immunoblotting using a nitrocellulose membrane and HRP-labeled Goat anti-mouse IgG.

各性質について得られた結果を下記表−2に示した。カ
ルシウムイオン依存性抗体はいずれもL鎖結合性であ
り、ヒト・PCの活性には影響を及ぼさなかった。
The results obtained for each property are shown in Table 2 below. All the calcium ion-dependent antibodies were L chain-binding and did not affect the activity of human PC.

実施例3.(カルシウムイオンの影響) ヒト・PCと精製したIgGとの反応に及ぼすカルシウ
ムイオンの影響について検討した。
Example 3. (Effect of Calcium Ion) The effect of calcium ion on the reaction between human PC and purified IgG was examined.

ヒト・PCをコーティングしたELISA法においてカ
ルシウムイオン依存性の抗体7B12及び10E12を5mM
CaC添加TBS−Tween(0.02M Tris/HC
,0.14M Na C,pH7.4 0.05%Tween20,0.02
%Na N)またはTBS−Tweenで希釈してヒト・
PCと反応させアルカリホスファターゼ標識ウサギ抗マ
ウスIgGを用いた発色から結合量を測定すると、5m
M Ca Cを添加したバッファーで希釈した場合
には抗体濃度に依存したヒト・PCとの結合を示した
が、Ca Cを添加しないバッファーで希釈した場
合には、抗体濃度を高くしても結合は認められなかっ
た。その結果を下記表−3に示した。
5 mM of calcium ion-dependent antibodies 7B12 and 10E12 in ELISA coated with human PC
CaC 2 added TBS-Tween (0.02M Tris / HC
, 0.14M Na C, pH7.4 0.05% Tween20, 0.02
% Na N 3 ) or TBS-Tween and diluted with human
It was 5 m when the amount of binding was measured by the reaction with PC and the color development using alkaline phosphatase labeled rabbit anti-mouse IgG.
When it was diluted with a buffer containing M Ca C 2 , binding with human PC depending on the antibody concentration was shown, but when it was diluted with a buffer without addition of Ca C 2 , the antibody concentration was increased. No binding was observed. The results are shown in Table 3 below.

なおカルシウムイオン非依存性の抗体6B10−1及び10H1
1を用いて同様にカルシウムイオンの影響について調べ
た結果も同表−3に併記して示した。
The calcium ion-independent antibodies 6B10-1 and 10H1
The results of investigating the effect of calcium ions using 1 were also shown in Table 3 below.

実施例4.(カルシウムイオン濃度の影響) 前記実施例3におけるカルシウムイオン依存性の抗体7B
12及び10E12を用い、それらの濃度を一定(1μg/m
)とし、抗体溶液中のカルシウムイオン濃度を変化さ
せたところ、ヒト・PCとの結合はCa C濃度が
高まるにつれて増加し、約1mMの濃度で飽和となっ
た。その結果を下記表−4に示した。またカルシウムイ
オン非依存性の抗体6E2を用い同様にCa C
度の変化の影響を調べた結果を、下記表−5に示した。
表−5の結果からカルシウムイオン非存在性の抗体で
は、カルシウムイオン濃度に影響なく、ヒト・PCとの
結合はほぼ一定の値を示していることがわかる。
Example 4. (Influence of Calcium Ion Concentration) Calcium Ion Dependent Antibody 7B in Example 3
12 and 10E12 were used and their concentrations were kept constant (1 μg / m
), When the calcium ion concentration in the antibody solution was changed, the binding to human / PC increased as the Ca C 2 concentration increased and became saturated at a concentration of about 1 mM. The results are shown in Table 4 below. Table 5 below shows the results of investigating the effect of changes in Ca C 2 concentration in the same manner using the calcium ion-independent antibody 6E2.
From the results shown in Table 5, it can be seen that the calcium ion-absent antibody shows almost constant binding to human PC without affecting the calcium ion concentration.

なお、測定は、所定濃度のCa Cを含むTBS−
Tweenで1μg/mIgG溶液を調製し、100μを、
ヒト・PCをコーティングしたwellに加えて行った。イ
ンキュベーション後のwellの洗浄にも各濃度のCa C
を含むTBS−Tweenを用いた。
The measurement was performed using TBS- containing a predetermined concentration of Ca C 2.
Prepare 1 μg / mIgG solution with Tween and add 100 μ
It was performed by adding it to the well coated with human / PC. After washing the wells after incubation, each concentration of Ca C
TBS-Tween containing 2 was used.

実施例.5 (1)抗体の不溶性担体への固定化; ブロムシアン活性化セファロース4B(ファルマシア・
ファイン・ケミカルズ社製)の乾燥ゲル0.5gを、G3
グラスフィルター上で100mの1mM HCを用いて
膨潤、洗浄し、更にカップリングバッファー(0.5M
Na Cを含む0.1M Na HCOpH8.3)で洗浄
した。カップリングバッファーを吸引除去した後、直ち
にゲルを抗体(6H2)のカップリングバッファー溶液
(3mg/m)2m中に加えて懸濁させ、4℃で一夜ゆ
るやかに振とうした。次にゲルを1Mエタノールアミン
−HC(pH8.0、2m)中に移し、室温で2時間振と
うして残存する活性基をブロックした。ブロッキング
後、抗体結合セファロースゲルをグラスフィルター上
で、0.5M Na Cを含む0.1M酢酸バッファーpH4.0
と0.5M Na Cを含む0.1Mホウ酸バッファーpH8.0
を交互に用いて洗浄した。濾液の280nmにおける吸光度
が0.01以下になったところで、5mM Ca C
および1mMベンザミジンを含む0.05M Tris/HC
pH7.4で平衡化し、カラムに充てんした。このように
して調製した抗ヒトPCモノクローナル抗体(6H2)
結合セファロース4Bカラムを用いてアフィニティクロ
マトを行った。
Example. 5 (1) Immobilization of antibody on insoluble carrier; Bromcyan-activated Sepharose 4B (Pharmacia
0.5 g of dry gel (manufactured by Fine Chemicals Co., Ltd.)
Swell and wash with 100 mM 1 mM HC on a glass filter, and then use coupling buffer (0.5 M
It was washed with 0.1 M NaHCO 3 pH 8.3 containing Na C). After the coupling buffer was removed by suction, the gel was immediately added to 2 m of the coupling buffer solution (3 mg / m) of the antibody (6H2) and suspended, and the mixture was gently shaken overnight at 4 ° C. The gel was then transferred into 1 M ethanolamine-HC (pH 8.0, 2 m) and shaken at room temperature for 2 hours to block residual active groups. After blocking, the antibody-coupled Sepharose gel was placed on a glass filter, and 0.1 M acetate buffer pH 4.0 containing 0.5 M Na C was added.
0.1M borate buffer pH 8.0 containing 0.5M Na C
Were used alternately to wash. When the absorbance at 280 nm of the filtrate became 0.01 or less, 5 mM Ca C 2 ,
And Tris / HC containing 1 mM benzamidine
Equilibrated to pH 7.4 and packed on the column. Anti-human PC monoclonal antibody (6H2) thus prepared
Affinity chromatography was performed using a bound Sepharose 4B column.

(2)プロテインCの抗体結合セファロース4Bへの吸
着、溶出; 血漿100mに1M Ba C溶液8mを加え4℃で
1時間攪拌した。沈澱を遠心分離して集め5mM Ba
C,5mMベンザミジンを含む0.1M Na C
で洗浄した後、15mの5mMベンザミジンを含む0.2M
EDTA pH7.4で沈澱物を溶解し、バリウム吸着分
画を得た。このバリウム吸着分画を1mMベンザミジン
を含む0.05MTris/HC pH7.4に透析し、終濃度5
mMとなるようにCa C溶液を加え、5mM C
aCおよび1mMベンザミジンを含む0.05MTris/
HCで平衡化した抗体(6H2)結合カラムにかけ
た。5mM Ca C,1mMベンザミジンおよび
1M Na Cを含む0.05 MTris/HCで洗浄
し、50mM EDTAおよび1mMベンザミジンを含む
0.05M Tris/H Cで溶出したところ、PCを含む
シングルピークが得られた。抗体セファロース4B溶出
分画中のPCはバリウム吸着分画に比べ約52倍に精製さ
れており、回収率は約48.2%であった。
(2) adsorption to the antibody-conjugated Sepharose 4B of protein C, eluted; and stirred for 1 hour at 4 ° C. was added a 1M Ba C 2 solution 8m plasma 100 m. The precipitate was collected by centrifugation and 5 mM Ba
0.1 M Na C containing C 2, 5 mM benzamidine
After washing with, 0.2M containing 15m of 5mM benzamidine
The precipitate was dissolved with EDTA pH 7.4 to obtain a barium adsorption fraction. The barium adsorption fraction was dialyzed against 0.05 M Tris / HC pH 7.4 containing 1 mM benzamidine to give a final concentration of 5
Add Ca C 2 solution to make 5 mM C
0.05 M Tris / containing aC 2 and 1 mM benzamidine
It was applied to an antibody (6H2) binding column equilibrated with HC. Washed with 0.05 M Tris / HC containing 5 mM Ca C 2 , 1 mM benzamidine and 1 M Na C, containing 50 mM EDTA and 1 mM benzamidine
When eluted with 0.05 M Tris / H C, a single peak containing PC was obtained. The PC in the fraction eluted with the antibody Sepharose 4B was purified about 52 times as much as the fraction adsorbed with barium, and the recovery rate was about 48.2%.

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (72)発明者 青木 延雄 東京都文京区本郷4―20―2―304 (56)参考文献 特開 昭60−120825(JP,A) ─────────────────────────────────────────────────── ─── Continuation of the front page (72) Inventor Nobuo Aoki 4-20-2-304 Hongo, Bunkyo-ku, Tokyo (56) References JP-A-60-120825 (JP, A)

Claims (1)

【特許請求の範囲】[Claims] 【請求項1】カルシウムイオン(Ca )の非存在下
では、ヒト・プロテインCに対して認識せず且つカルシ
ウムイオン(Ca )の存在下ではヒト・プロテイン
Cに対して特異的に認識するヒト・プロテインCに対す
るモノクローナル抗体を不溶性担体と結合させた吸着体
に、ヒト・プロテインC含有混合物をカルシウムイオン
(Ca )存在下に接触せしめて、該吸着体にヒト・
プロテインCを結合せしめることを特徴とするヒト・プ
ロテインC含有混合物からのヒト・プロテインCの分離
方法。
In the absence of 1. A calcium ion (Ca + +), specifically for human protein C in the presence of and calcium ions not recognized for human protein C (Ca + +) monoclonal antibodies to recognize human protein C in adsorbent obtained by binding to an insoluble carrier, brought into contact with the presence of calcium ions (Ca + +) to human protein C-containing mixture, human to adsorption body
A method for separating human protein C from a mixture containing human protein C, which comprises binding protein C.
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