JPH06277074A - Expression vector - Google Patents

Expression vector

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Publication number
JPH06277074A
JPH06277074A JP7441693A JP7441693A JPH06277074A JP H06277074 A JPH06277074 A JP H06277074A JP 7441693 A JP7441693 A JP 7441693A JP 7441693 A JP7441693 A JP 7441693A JP H06277074 A JPH06277074 A JP H06277074A
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JP
Japan
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promoter
cistron
protein
expression vector
expression
Prior art date
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Application number
JP7441693A
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Japanese (ja)
Inventor
Yutaka Takebe
豊 武部
Akio Nomoto
明男 野本
Yoshihiro Fujiwara
佳浩 藤原
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Terumo Corp
Original Assignee
Terumo Corp
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Publication date
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Publication of JPH06277074A publication Critical patent/JPH06277074A/en
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Abstract

PURPOSE:To provide a new expression vector useful for getting a desired protein in sufficiently high production efficiency. CONSTITUTION:The expression vector (e.g. pACELltat) is composed of a promoter, a 1st cistron coding the objective protein, a 2nd cistron coding a protein having autocatalytic promotion action of the promoter and an internal translation initiation signal positioned between both cistrons. The exemplified expression vector can be produced by constructing an IRES of an HCV group at the downstream side of an HIV-1LTR promoter originated from HIV virus, a luciferase gene as an upstream side cistron interposing the IRES and a tat gene as a downstream side cistron of the IRES by conventional construction process.

Description

【発明の詳細な説明】Detailed Description of the Invention

【0001】[0001]

【産業上の利用分野】本発明は、目的タンパク質を効率
良く生産することのできる新規な発現ベクターに関す
る。
FIELD OF THE INVENTION The present invention relates to a novel expression vector capable of efficiently producing a target protein.

【0002】[0002]

【従来の技術】真核細胞における発現ベクターの開発
は、多くの分子生物学的研究の基礎となる重要な課題で
ある。目的に応じて効率的な大量発現や誘導可能な一過
的発現が要求される。そのような要求を満たすために、
これらの発現系において従来の発現ベクター構築概念で
はプロモーターやエンハンサーの生来の機能に依存して
いた。すなわち、目的タンパク質の生産効率を上げる手
段としては、天然の遺伝子から強力なプロモーターある
いはエンハンサーを探してきて、目的タンパク質のDN
Aに連結することによりmRNAの転写効率を上昇させ
ることがもっぱら行われていた。大量発現を効率的に行
わせる場合には、SV40(Simian Virus40)やSR
α等のプロモーターが強力なプロモーターとして知られ
ており、これらを組み込んだ発現ベクターを主に哺乳動
物細胞に対して使用することが行われている。また、エ
ンハンサー配列をベクターに組み込むことにより遺伝子
の転写効率を上昇させ、タンパク質の生産効率を上昇さ
せることも行われている。一方、一過的発現を行わせる
場合には、発現誘導物質を使用する方法が知られてお
り、例えばマウス乳頭ガンウイルス(MMTV=Mouse
Mammalian Tumour Virus)プロモーターを用いた発現系
に発現誘導物質であるデキサメタゾン(dexamethason
e)を発現させたいときに添加する方法等が行われてい
る。
2. Description of the Related Art The development of expression vectors in eukaryotic cells is an important subject that underlies many molecular biological studies. Depending on the purpose, efficient large-scale expression or inducible transient expression is required. To meet such demands,
In these expression systems, the conventional concept of constructing an expression vector depends on the innate functions of the promoter and enhancer. That is, as a means for increasing the production efficiency of a target protein, a strong promoter or enhancer is searched for in a natural gene, and the DN of the target protein is searched for.
It has been exclusively performed to increase the transcription efficiency of mRNA by linking to A. For efficient large-scale expression, SV40 (Simian Virus 40) or SR
Promoters such as α are known as strong promoters, and expression vectors incorporating these promoters are mainly used for mammalian cells. In addition, it has also been attempted to increase the transcription efficiency of a gene and the protein production efficiency by incorporating an enhancer sequence into a vector. On the other hand, in the case of performing transient expression, a method using an expression inducer is known, for example, mouse papillary cancer virus (MMTV = Mouse).
Dexamethason (dexamethason), an expression inducer, in an expression system using the Mammalian Tumour Virus promoter
Methods such as addition when e) is desired to be expressed are used.

【0003】[0003]

【発明が解決しようとする課題】しかし、これらの手法
によって得られる発現ベクターからは必ずしも十分な生
産効率が得られておらず、より効率の良い発現ベクター
の登場が渇望されていた。従って本発明は、目的タンパ
ク質の生産効率を上げるために、本発明者等は従来の発
現ベクター構築概念にとらわれない新規な発現ベクター
を提供することを目的とする。
However, the expression vectors obtained by these methods do not always provide sufficient production efficiency, and there has been a long-felt demand for the appearance of more efficient expression vectors. Therefore, it is an object of the present invention to provide a novel expression vector which is not bound by the conventional concept of constructing an expression vector in order to increase the production efficiency of the target protein.

【0004】[0004]

【課題を解決するための手段】上記課題を解決するため
本発明者等は鋭意検討の結果、プロモーターと、目的タ
ンパク質をコードする第1シストロンと、前記プロモー
ターの自己触媒的増強作用をもつタンパク質をコードす
る第2シストロンと、前記第1シストロンと第2シスト
ロンとの間に設けられた内部翻訳開始シグナルとを有す
る発現ベクターによって上記課題を解決するに至った。
[Means for Solving the Problems] In order to solve the above-mentioned problems, the present inventors have conducted extensive studies and as a result, have found a promoter, a first cistron encoding a target protein, and a protein having an autocatalytic enhancing effect on the promoter. The above problems have been solved by an expression vector having a second cistron that encodes and an internal translation initiation signal provided between the first cistron and the second cistron.

【0005】なお、上記第1シストロンと上記第2シス
トロンとの位置関係は上記第1シストロンが上流側に、
上記第2シストロンが下流側となるようにすることが好
ましい。また、上記プロモーターと第2シストロンとの
組み合わせは、上記プロモーターがHIVウイルス由来
HIV−1LTRプロモーターで、第2シストロンがt
atDNAであることが好ましい。さらに、内部翻訳開
始シグナルはC型肝炎ウイルス由来であることが好まし
い。また、上記課題は上記発現ベクターで形質転換した
形質転換体によっても解決される。
The positional relationship between the first cistron and the second cistron is that the first cistron is on the upstream side,
It is preferable that the second cistron is on the downstream side. In addition, in the combination of the above promoter and the second cistron, the above promoter is the HIV-1 HIV-1 LTR promoter derived from the HIV virus, and the second cistron is t.
It is preferably atDNA. Furthermore, the internal translation initiation signal is preferably derived from hepatitis C virus. The above problem can also be solved by a transformant transformed with the above expression vector.

【0006】以下に本発明の発現ベクターについて詳細
に説明する。本発明は、プロモーターとそのプロモータ
ーの自己触媒的増強作用(autocatalytic expression a
ction)を有するタンパク質の性質と、内部翻訳開始シ
グナルの性質を利用したものである。なお、一般に「自
己触媒」とは酵素反応において生産物がその反応自体を
促進することをいうが、本発明における「自己触媒的増
強作用」とはその発現がプロモーターによって支配され
る遺伝子産物がプロモーターの活性を増強し、遺伝子発
現を促進することをいう。
The expression vector of the present invention will be described in detail below. The present invention is directed to a promoter and its autocatalytic expression effect.
ction) and the properties of the internal translation initiation signal. In general, "autocatalysis" means that a product promotes the reaction itself in an enzymatic reaction, but "autocatalytic enhancing action" in the present invention means that a gene product whose expression is controlled by a promoter is a promoter. It means to enhance the activity of and to promote gene expression.

【0007】プロモーターとその自己触媒的増強作用を
有するタンパク質は、例えばエイズ(以下、HIVとい
う)ウイルスのプロモーターとtatタンパク質、HT
LVプロモーターとtaxタンパク質との組み合わせが
知られている。これらのプロモーターは、tatタンパ
ク質あるいはtaxタンパク質が微量に存在すると爆発
的にプロモーター活性を増強する。プロモーターと自己
触媒的増強作用を有するタンパク質の機構をHIVウイ
ルスのプロモーターとtatタンパク質の組み合わせを
例にとって説明する。tatタンパク質は、HIVのト
ランスアクチベーション(trans-activation)に働く転
写活性化因子であり、HIV遺伝子から転写されるmR
NAの5’側1〜57番目までのTAR−RNAと呼ば
れるステムループ構造にtatタンパク質が付着し転写
を促進することが知られている(Haseltine.W.A. et a
l.:in Harvard AIDS Institute Series on Gene Regul
ation of Human Retroviruses,Vol.1,Raven Press,New
York 1991)。このtatタンパク質のDNA配列は、A
rya etal. Science 229 69-73,1985に詳しい。
The promoter and the protein having its autocatalytic enhancing action include, for example, the promoter of the AIDS (hereinafter referred to as HIV) virus, the tat protein, and HT.
A combination of LV promoter and tax protein is known. These promoters explosively enhance the promoter activity when the tat protein or the tax protein is present in a trace amount. The mechanism of the promoter and the protein having the autocatalytic enhancing action will be described by taking the combination of the HIV virus promoter and the tat protein as an example. The tat protein is a transcriptional activator that acts on trans-activation of HIV, and is a mR transcribed from the HIV gene.
It is known that tat protein attaches to the stem-loop structure called TAR-RNA from the 1st to 57th positions on the 5'side of NA to promote transcription (Haseltine.WA et a
l .: in Harvard AIDS Institute Series on Gene Regul
ation of Human Retroviruses, Vol.1, Raven Press, New
York 1991). The DNA sequence of this tat protein is A
See rya et al. Science 229 69-73, 1985.

【0008】また、内部翻訳開始シグナル(IRES=
Internal Ribosome Entry Site)は、ピコルナウイルス
等に見いだされるシグナルで、C型肝炎ウイルスでは1
992年に小原恭子らにより発見された(J.Viol. 66.1
476-1483 1992)。mRNAにおけるタンパク質の合成
の開始は真核細胞が通常行っているキャップ依存的な翻
訳の開始と、上記ピコルナウイルス等にみられる非依存
的な翻訳の開始とがある。キャップ依存的な翻訳の開始
はmRNAに結合したリボゾームが翻訳を開始するとき
にキャップ構造を認識することが必要条件となって、m
RNAの翻訳を開始させる。これに対し、キャップ非依
存的な翻訳の開始はリボゾームが翻訳開始点の上流のあ
る結合点に入り込み、それが移動して翻訳開始点に到達
し翻訳を開始すると考えられていて、内部翻訳開始シグ
ナルはキャップ非依存的な翻訳の開始を行うもののひと
つであるであるとされている。次に、内部翻訳開始シグ
ナルの構造をC型肝炎ウイルス(以下、HCVという)
の内部翻訳開始シグナルを例にとって説明する。HCV
のゲノムは、プラスの一本鎖RNAで、約10,000
ヌクレオチドからなっている。このRNAは、約301
0アミノ酸からなる大きな単鎖タンパク質の合成の唯一
の転写解読枠(ORF=Open reading frame)である。
HCVは非依存的な翻訳の開始を行い、リボゾームが翻
訳開始点の上流、すなわち、5’UTR(非翻訳領域)
のイニシアル シークエンス(Initial-Sequence)にリ
ボゾームが結合し、それが移動して翻訳開始点に到達す
ることにより翻訳が開始されることがわかり、その配列
をIRESとして特定した(小原恭子ら J.Viol. 66.1
476-1483,1992 および 小原恭子ら Virus Gene.Viol.
5.243-254,1991)。
Further, an internal translation initiation signal (IRES =
Internal Ribosome Entry Site) is a signal found in picornaviruses, etc., and is 1 in hepatitis C virus.
Was discovered by Kyoko Ohara et al. In 992 years (J.Viol. 66 .1
476-1483 1992). The initiation of protein synthesis in mRNA includes the initiation of cap-dependent translation that is usually performed by eukaryotic cells, and the initiation of independent translation that is observed in the above picornavirus and the like. The cap-dependent initiation of translation is a prerequisite that the ribosome bound to the mRNA recognizes the cap structure at the initiation of translation.
Initiate RNA translation. On the other hand, cap-independent translation initiation is thought to occur when the ribosome enters a certain binding point upstream of the translation initiation point, moves to reach the translation initiation point, and initiates translation. Signals are said to be one of the ones that initiate cap-independent translation. Next, the structure of the internal translation initiation signal is shown as hepatitis C virus (hereinafter referred to as HCV).
The internal translation initiation signal of will be described as an example. HCV
The genome of is a single-stranded positive RNA, about 10,000
It consists of nucleotides. This RNA is about 301
It is the only open reading frame (ORF = Open reading frame) for the synthesis of large single-chain proteins consisting of 0 amino acids.
HCV carries out independent translation initiation, and the ribosome is located upstream of the translation initiation site, that is, 5'UTR (untranslated region).
It was found that the ribosome binds to the Initial-Sequence of E.coli and the translation starts when the ribosome moves to reach the translation start point, and that sequence was identified as IRES (Kyoko Ohara et al. J. Viol. .66 .1
476-1483, 1992 and Kyoko Ohara et al. Virus Gene.Viol.
5 .243-254, 1991).

【0009】以下、図1を参照して本発明の発現プラス
ミドの発現機構について説明する。pUC19等のプラ
スミドに組み込まれた図1の外来遺伝子列は、HIV−
1LTRプロモーターの指令により、プロモーターに支
配された構造遺伝子のmRNAへの転写が行われる。こ
の転写によってルシヘラーゼ−IRES−tatタンパ
ク質をコードするmRNAが得られる。そして、このm
RNAが翻訳されてタンパク質すなわち、ルシヘラーゼ
およびtatタンパク質がそれぞれ合成される。以上の
ようにしてHIV−1LTRプロモーターの指令により
合成されたtatタンパク質は、プロモーターの働きを
増強するように作用し、目的タンパク質であるルシヘラ
ーゼの大量発現を引き起こさせる。
The expression mechanism of the expression plasmid of the present invention will be described below with reference to FIG. The foreign gene sequence of FIG. 1 incorporated in a plasmid such as pUC19 is HIV-
The 1LTR promoter directs transcription of a structural gene under the control of the promoter into mRNA. This transcription gives the mRNA encoding the luciferase-IRES-tat protein. And this m
RNA is translated to synthesize proteins, luciferase and tat protein, respectively. As described above, the tat protein synthesized by the instruction of the HIV-1 LTR promoter acts to enhance the function of the promoter, and causes large-scale expression of the target protein luciferase.

【0010】[0010]

【発明の効果】本発明の発現ベクターは、IRESの特
性を用いた自己触媒的増強作用を持つ発現ベクターであ
るので、プロモーターやエンハンサーの生来の機能に依
存した従来の構築概念にはなかった新規な発現ベクター
を提供し、該発現ベクターを導入した形質転換体は高い
発現効率を示すことができる。
INDUSTRIAL APPLICABILITY Since the expression vector of the present invention is an expression vector having an autocatalytic enhancing action using the characteristics of IRES, it is a novel construction concept that does not depend on the innate functions of the promoter and enhancer. And a transformant into which the expression vector is introduced can exhibit high expression efficiency.

【0011】[0011]

【実施例】以下に本発明の発現ベクターの調整方法と、
該ベクターの発現を確認するために行った該ベクターを
含有する形質転換細胞による目的タンパク質の産生につ
いて、目的タンパク質としてルシヘラーゼを例にとって
より詳細に説明する。 《実施例》
EXAMPLES The following is a method for preparing the expression vector of the present invention,
The production of the target protein by the transformed cells containing the vector, which was carried out to confirm the expression of the vector, will be described in more detail with reference to luciferase as the target protein. "Example"

【0012】プロモーターとしてHIVウイルス由来H
IV−1LTRプロモーター、その下流側にHCVグル
ープ1のIRES、このIRESを挟んで上流側のシス
トロンとして目的タンパク質としてのルシヘラーゼをコ
ードするルシヘラーゼ遺伝子を、そしてIRESの下流
側のシストロンとしてtat遺伝子を有する発現プラス
ミド、pACELItatを構築した。
HIV virus-derived H as a promoter
Expression having an IV-1LTR promoter, an IRES of HCV group 1 on the downstream side thereof, a luciferase gene encoding a luciferase as a target protein as a cistron on the upstream side of the IRES, and a tat gene as a cistron on the downstream side of the IRES The plasmid, pACELItat, was constructed.

【0013】すなわち、各DNA断片を次のようにして
調整した。ベクターDNA部分はpUC19由来Sal
(1065)〜Sal(3721)を、HIV−1LT
RプロモーターはHIVcDNAからPCR法で分離し
たものを、スプライス ジャンクション(Splice Junct
ion)はpSV2由来の10s Splice Junctionを、I
RES部分はHCVグループ1のp22 ATGより上
流域342bpを、ルシヘラーゼORFはプラスミドp
GEM−lucDNA(商品名:Promega社製)から分
離したものを、tatORFはHIVcDNAからPC
R法で分離したものを、またpoly AはpCD系ベクタ
ー由来のものを用いて常法に従って調整した。これらを
常法に従って、構築し発現ベクターを作製した。この発
現プラスミドpACE LItatの制限酵素地図を第
2図に示した。なお、HIV−1LTRプロモーター
と、tat遺伝子は、Arya et al. Scien
ce229 69−73,1985にその塩基配列が記載
されている。
That is, each DNA fragment was prepared as follows. The vector DNA portion is Sal derived from pUC19.
(1065) -Sal (3721) to HIV-1LT
The R promoter is a splice junction (Splice Junct) that was isolated from HIV cDNA by PCR.
ion) is a 10s Splice Junction derived from pSV2,
The RES part is upstream of 342 bp from p22 ATG of HCV group 1, and luciferase ORF is plasmid p.
What was separated from GEM-lucDNA (trade name: manufactured by Promega) was tatORF from HIV cDNA to PC.
Those separated by the R method and poly A derived from a pCD vector were prepared according to a conventional method. These were constructed according to a conventional method to prepare an expression vector. The restriction enzyme map of this expression plasmid pACE LItat is shown in FIG. The HIV-1 LTR promoter and tat gene are described in Arya et al. Science.
The base sequence is described in ce 229 69-73,1985.

【0014】《試験例》上述のようにして作製された発
現プラスミドのタンパク質生産能を確認するため、発現
プラスミドを常法に従って、HeLa細胞に形質転換し
て形質転換体を作製し、以下のようにして生産能を測定
した。なお、構築されたそれぞれの発現プラスミドは、
リン酸カルシウム法またはリポフェクチン法でHeLa
細胞に形質転換した。
<Test Example> In order to confirm the protein-producing ability of the expression plasmid prepared as described above, HeLa cells were transformed with the expression plasmid according to a conventional method to prepare a transformant. And the productivity was measured. In addition, each of the constructed expression plasmids,
HeLa by calcium phosphate method or lipofectin method
The cells were transformed.

【0015】(1)細胞抽出液の調整 形質転換後、24〜48時間後、培養液を取り除く。細
胞をPBS(−)で2度洗った。0.25ml(60m
mφプレートを使用)の細胞溶解液−25mMTris
緩衝液(pH7.8)/2mM DTT/2mM 1,2
−diaminocyclohexane−N,N,N',N'−tetraaceti
c acid/10%glycerol/1%TritonX
−100−を加え、室温で10〜15分放置した。細胞
の懸濁液をシャーレから掻き取り、エッペンドルフチュ
ブに移し、10,000r.p.mにて5秒間遠心した。
遠心後の上清をサンプルとした。
(1) Preparation of cell extract The culture medium is removed 24-48 hours after the transformation. The cells were washed twice with PBS (-). 0.25 ml (60 m
cell lysate (using mφ plate) -25 mM Tris
Buffer solution (pH 7.8) / 2mM DTT / 2mM 1,2
-Diaminocyclohexane-N, N, N ', N'-tetraaceti
c acid / 10% glycerol / 1% TritonX
-100- was added and the mixture was left at room temperature for 10 to 15 minutes. The cell suspension was scraped from the petri dish, transferred to an Eppendorf tube, and centrifuged at 10,000 rpm for 5 seconds.
The supernatant after centrifugation was used as a sample.

【0016】(2)タンパク質生産能の測定 目的タンパク質として産生されるルシヘラーゼを、Co
enzyme Aを用いたルシヘラーゼアッセイ法によ
り測定した。すなわち、発光基質液−[PBSバッファ
ー(137mM NaCl/2.7mM KCl/4.3m
M Na2HPO4/1.4mM KH2PO4)に発光基質
(20mM Tricine/1.07mM (MgCO3)
4Mg(OH)2・5H2O/2.67mM MgSO4/0.
1mM EDTA/33.3mM DTT/270μM co
enzyme A/470μM luciferin/530μM AT
P)を溶解する。あるいは調整済みの発光基質としてP
romega社より入手できる]−100μlに(1)
で得た細胞抽出サンプルを適量加え、混和した。混和後
30秒後から計測を始め20秒間の発光量を汎用ルミノ
メーターまたはシンチレーションカウンターにて相対的
光量単位として測定した。相対的光量単位は、pSV2
/L−AΔ5’を対照とした。
(2) Measurement of protein productivity A luciferase produced as a target protein was labeled with Co
It was measured by the luciferase assay method using enzyme A. That is, luminescent substrate solution- [PBS buffer (137 mM NaCl / 2.7 mM KCl / 4.3 m
M Na 2 HPO 4 /1.4 mM KH 2 PO 4 ) with luminescent substrate (20 mM Tricine / 1.07 mM (MgCO 3 ))
4 Mg (OH) 2 · 5H 2 O / 2.67mM MgSO 4/0.
1 mM EDTA / 33.3 mM DTT / 270 μM co
enzyme A / 470μM luciferin / 530μM AT
Dissolve P). Alternatively, P is used as a prepared luminescent substrate.
available from Romega] -100 μl (1)
An appropriate amount of the cell extract sample obtained in step 1 was added and mixed. The measurement was started 30 seconds after mixing, and the amount of luminescence for 20 seconds was measured as a relative light amount unit with a general-purpose luminometer or a scintillation counter. The relative light intensity unit is pSV2
/ L-AΔ5 ′ was used as a control.

【0017】結果を図3に示した。対照として代表的な
SV40ウイルスプロモーターを用いたpSV2/L−
AΔ5’と比較した。IRESの欠損したtat遺伝子
の発現が見込まれず、HIVプロモーター単独の働きを
示すpACE/LΔItatでは、0.33と相対的に
弱いプロモーター活性を示すが、pACE/LItat
では、tat遺伝子産物により自己触媒的にプロモータ
ー活性が増強され11.69と非常に高い活性が得られ
た。これらのことから明らかにtat遺伝子産物による
自己触媒的な発現増強のメカニズムが働いていることが
わかる。
The results are shown in FIG. PSV2 / L- using a typical SV40 viral promoter as a control
It was compared with AΔ5 ′. Expression of the IRES-deficient tat gene is not expected, and pACE / LΔItat, which shows the function of the HIV promoter alone, shows a relatively weak promoter activity of 0.33, but pACE / LItat
, The promoter activity was autocatalytically enhanced by the tat gene product, and a very high activity of 11.69 was obtained. From these, it is clear that the mechanism of autocatalytic expression enhancement by the tat gene product is working.

【図面の簡単な説明】[Brief description of drawings]

【図1】 本発明の発現ベクターの概念図FIG. 1 is a conceptual diagram of the expression vector of the present invention.

【図2】 本発明の発現ベクターの制限酵素地図FIG. 2 Restriction enzyme map of the expression vector of the present invention

【図3】 本発明の発現ベクターの目的タンパク質の産
生能を示した図
FIG. 3 is a diagram showing the ability of the expression vector of the present invention to produce a target protein.

Claims (1)

【特許請求の範囲】[Claims] 【請求項1】プロモーターと、目的タンパク質をコード
する第1シストロンと、該プロモーターの自己触媒的増
強作用をもつタンパク質をコードする第2シストロン
と、該第1シストロンと第2シストロンとの間に設けら
れた内部翻訳開始シグナルとを有することを特徴とする
発現ベクター。
1. A promoter, a first cistron encoding a protein of interest, a second cistron encoding a protein having an autocatalytic enhancing action of the promoter, and provided between the first cistron and the second cistron. And an internal translation initiation signal obtained.
JP7441693A 1993-03-31 1993-03-31 Expression vector Pending JPH06277074A (en)

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Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2008307056A (en) * 1997-03-12 2008-12-25 Virogenetics Corp Vector having enhanced expression, and method of making and using the same

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Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2008307056A (en) * 1997-03-12 2008-12-25 Virogenetics Corp Vector having enhanced expression, and method of making and using the same

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