JPH06197762A - Method for extracting dna of onion - Google Patents

Method for extracting dna of onion

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JPH06197762A
JPH06197762A JP34791592A JP34791592A JPH06197762A JP H06197762 A JPH06197762 A JP H06197762A JP 34791592 A JP34791592 A JP 34791592A JP 34791592 A JP34791592 A JP 34791592A JP H06197762 A JPH06197762 A JP H06197762A
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JP
Japan
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dna
onion
nuclei
solution
extraction
Prior art date
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Application number
JP34791592A
Other languages
Japanese (ja)
Inventor
Fumiyuki Goto
文之 後藤
Tamayo Konishi
珠世 小西
Yoichi Ido
洋一 井戸
Haruki Otsuki
晴樹 大月
Koichi Katsuyama
浩一 勝山
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Iseki and Co Ltd
Iseki Agricultural Machinery Mfg Co Ltd
Original Assignee
Iseki and Co Ltd
Iseki Agricultural Machinery Mfg Co Ltd
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Publication date
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Abstract

PURPOSE:To enhance the extraction rate of the highly pure DNA of the onion by solving the subjects of conventional techniques. CONSTITUTION:The method for extracting the DNA of onion is characterized by adding the solution of a composition not decomposing the nuclei of the onion, collecting only the nuclei, finely grinding the collected nuclei and subsequently starting the extraction of the DNA with an extraction solution containing a surfactant, after lyophilizing the sliced scaly leave of the mother bulb of the onion and before adding the DNA extraction solution. The addition of the solution not decomposing the nuclei enables to collect the nuclei and remove organelle and polysaccharides in the cells, thereby permitting to provide the DNA having higher purity.

Description

【発明の詳細な説明】Detailed Description of the Invention

【0001】[0001]

【産業上の利用分野】本発明はタマネギの品種改良をア
シストするRFLPマップや、組み替えDNA技術の開
発に利用するためのDNAの抽出方法に関するものであ
る。
BACKGROUND OF THE INVENTION 1. Field of the Invention The present invention relates to an RFLP map for assisting onion breed improvement and a DNA extraction method for use in developing recombinant DNA technology.

【0002】[0002]

【従来の技術】タマネギのDNAの抽出に成功すると、
このDNAを用いて遺伝子工学的手法により、既知の遺
伝子をプローブとして、新しい遺伝子をクローニングす
ることができる。そしてこのクローニング遺伝子を改変
するか、あるいは他の生物の遺伝子をゲノムへ導入する
ことにより、新品種を育成することができる。また、タ
マネギのDNAの抽出により、RFLP地図を作り、育
種年限の短縮が可能となる。このようにタマネギのDN
Aの抽出に成功すると、タマネギの品種の改良技術の開
発に測り知れない利点がある。しかも、より純粋なDN
Aが得られると、より少量の制限酵素、リガーゼ等とこ
のDNAを反応させることができ、遺伝子工学を利用し
た育種改良研究において、DNA量の見積りが正確に行
え、実験精度が向上し、また、その結果蓄積された技術
を用いる育種コストが低減できる。しかし、タマネギD
NAの抽出方法については現在まで知られていない。
2. Description of the Related Art Upon successful extraction of onion DNA,
Using this DNA, a new gene can be cloned by a genetic engineering technique using a known gene as a probe. Then, a new variety can be bred by modifying this cloning gene or introducing a gene of another organism into the genome. Further, extraction of onion DNA makes it possible to create an RFLP map and shorten the breeding period. Like this onion DN
Successful extraction of A has immeasurable advantages in developing techniques for improving onion varieties. Moreover, more pure DN
When A is obtained, this DNA can be reacted with a smaller amount of restriction enzyme, ligase, etc., and in the breeding improvement research utilizing genetic engineering, the amount of DNA can be accurately estimated, the experimental accuracy is improved, and As a result, breeding costs using the accumulated technology can be reduced. But onion D
Until now, the method of extracting NA has not been known.

【0003】日本生化学会編、「生化学実験講座2、核
酸の化学I」76頁、(株)東京化学同人、1975年
5月発行によるとDNA抽出のための核の分離方法とし
て肝臓にショ糖−CaCl2水溶液を用いて核を分離す
る方法が記載されている。しかし、この方法は動物生細
胞を材料としているものであり、細胞壁を破壊して、同
時に無傷の核を分離する必要性のため、そのまま植物に
適用することは難しい。また、高濃度のショ糖を使用す
るので操作しにくい欠点がある。
According to "Biochemistry Experiment Course 2, Nucleic Acid Chemistry I", page 76, edited by The Biochemical Society of Japan, Tokyo Kagaku Dojin, May 1975, a method for separating nuclei for DNA extraction into liver was used. A method for separating nuclei using a sugar-CaCl 2 aqueous solution is described. However, this method uses living animal cells as a material, and since it is necessary to destroy the cell wall and at the same time separate intact nuclei, it is difficult to directly apply it to plants. In addition, since high concentration of sucrose is used, it is difficult to operate.

【0004】また、本発明者らは先にタマネギの母球の
鱗葉をスライスしたものを凍結乾燥した後、微粉末にし
た上で界面活性剤を含む抽出液でDNA抽出を開始する
タマネギのDNA抽出方法について発明した(特願平4
−129473号)。しかし、この方法では細胞から核
を分離せず直接DNA抽出を行うので多糖類の混入が多
く、後の研究に障害となることが多かった。
Further, the present inventors previously lyophilized sliced scaly leaves of onion mother spheres, pulverized them into fine powder, and then started DNA extraction with an extract containing a surfactant. Invented a DNA extraction method (Japanese Patent Application No.
-129473). However, in this method, since DNA is directly extracted without separating nuclei from cells, polysaccharides are often mixed, which often hinders subsequent studies.

【0005】[0005]

【発明が解決しようとする課題】より純粋なDNAが得
られると、より少量の制限酵素、リガーゼ等とこのDN
Aを反応させることができ、遺伝子工学を利用した育種
改良研究において、DNA量の見積りが正確に行え、実
験精度が向上し、また、その結果蓄積された技術を用い
る育種コストが低減できる。そこで、本発明の目的は前
記従来技術の持つ課題を解決し、純度の高いタマネギの
DNAの抽出率を高める方法を確立することである。
If a purer DNA can be obtained, a smaller amount of this restriction enzyme, ligase, etc. and this DN can be obtained.
A can be reacted, the amount of DNA can be accurately estimated in the breeding improvement research using genetic engineering, the accuracy of the experiment can be improved, and the breeding cost using the accumulated technology can be reduced as a result. Therefore, an object of the present invention is to solve the problems of the above-mentioned conventional techniques and to establish a method for increasing the extraction rate of highly pure onion DNA.

【0006】[0006]

【課題を解決するための手段】本発明の上記目的はタマ
ネギの母球の鱗葉をスライスしたものを凍結乾燥した
後、DNA抽出液を添加する前段において、核を破壊し
ない組成の溶液を加え、核のみを集め、その後界面活性
剤を含む抽出液でDNA抽出を開始するタマネギのDN
A抽出方法によって達成される。
The above object of the present invention is to freeze-dry sliced scaly leaves of onion mother spheres, and then add a solution having a composition that does not destroy the nucleus before adding the DNA extract. , Collect the nuclei only, and then start DNA extraction with an extract containing detergent DN of onion
A method of extraction.

【0007】[0007]

【作用】一般に、植物体のDNAを抽出する方法として
液体窒素存在下で植物組織を破砕してDNAを抽出する
方法が行われている。しかし、この方法は、鱗葉のよう
に水分含量が多い組織を液体窒素中で凍結処理すると組
織中の水分が凍結してしまうため、破砕しにくくなると
同時に、液体窒素で破砕すると、材料の一部が溶けた
り、再度氷結したりすることがある。そのため、染色体
に著しい損傷を与える。そこで、タマネギの母球から核
DNAを抽出する場合には、母球の鱗葉を1〜3mm幅
にスライスした後、冷却アセトン等で凍結させ、その
後、凍結乾燥処理をすることで、組織中の水分が凍結す
ることがなくなり、以後の組織の微粉末化が容易とな
り、抽出液によるDNA抽出が可能となる。
In general, as a method for extracting plant DNA, a method in which plant tissue is crushed in the presence of liquid nitrogen to extract DNA is used. However, this method makes it difficult to crush the tissue when freezing it in liquid nitrogen such as scales because the water in the tissue freezes. The parts may melt or freeze again. Therefore, it causes significant damage to the chromosome. Therefore, in the case of extracting nuclear DNA from onion mother spheres, the scaly leaves of the mother spheres are sliced into a width of 1 to 3 mm, frozen with chilled acetone or the like, and then freeze-dried to remove the tissue in the tissue. The water of the above does not freeze, the subsequent fine pulverization of the tissue is facilitated, and the DNA extraction with the extract becomes possible.

【0008】上記の知見は本発明者らの先の特許出願
(特願平4−129473号)に開示した通りである
が、本発明では、さらに、DNA抽出液を添加する前
に、核を破壊しない溶液を加えることに特徴がある。こ
の、核を破壊しない溶液により核を集めることが可能と
なり、また、細胞中のオルガネラや多糖類を除去できる
ので、より精製度の高いDNAを得ることができる。
The above findings are as disclosed in the present inventors' previous patent application (Japanese Patent Application No. 4-129473). However, in the present invention, the nucleus is further added before adding the DNA extract. It is characterized by adding a non-breaking solution. This solution that does not destroy the nuclei makes it possible to collect the nuclei and remove the organelles and polysaccharides in the cells, so that a highly purified DNA can be obtained.

【0009】[0009]

【実施例】本発明の一実施例を説明する。以下に、タマ
ネギのDNAの抽出の手順を示す。 冷蔵貯蔵していたタマネギ(品種:七宝甘球)母球の
表皮根部を切除し、鱗葉組織176gをスライスする。 で得られた鱗葉組織のスライスを500mlのナス
型フラスコに入れ、予め、冷却しておいたアセトン中で
凍結させる。その後、凍結乾燥器(東京理化機械(株)
製FD−1)で4日間処理する。 凍結乾燥したサンプルを乳鉢、乳棒で細かく砕く。 サンプル1gを50mlファルコンチューブに入れ
て、下記のA液20mlを加え、かきまぜる。 この溶液を3000rpmで15分間遠心分離処理を
した後、上清液を除き、下記のB液15mlをくわえ
て、沈殿をけん濁させる。
EXAMPLE An example of the present invention will be described. The procedure for extracting onion DNA is shown below. The epidermal root part of the onion (variety: Cloisonne sweet bulb) mother ball that had been stored refrigerated is excised, and 176 g of scaly tissue is sliced. The slice of the scaly tissue obtained in the above step is placed in a 500 ml eggplant-shaped flask and frozen in acetone that has been cooled in advance. After that, freeze dryer (Tokyo Rika Kikai Co., Ltd.)
FD-1) manufactured for 4 days. Crush the freeze-dried sample with a mortar and pestle. Put 1 g of sample in a 50 ml Falcon tube, add 20 ml of solution A below, and stir. After centrifuging this solution at 3000 rpm for 15 minutes, the supernatant liquid is removed, and 15 ml of the following solution B is added to suspend the precipitate.

【0010】次に、溶液を遠心用チューブに移し、2
mlの10%ドデシル硫酸ナトリウム(SDS)を加
え、ゆっくり撹拌する。 60℃で10分間撹拌した後に、5ml、5モルの酢
酸カリウムを加え撹拌する。 次いで、氷冷10分後に、10000rpmで20分
間遠心分離処理をした後、上清液を新しいチューブへ移
し、等量のイソプロパノールを加えて、10000rp
mで20分間遠心分離して、ペレットを得る。 得られたペレットを70%エタノールで2回リンスし
た後、真空乾燥し、1mlのTEバッファー(10mM
のTris−HCl((pH8.0))にペレットを溶か
す。
Next, the solution was transferred to a centrifuge tube, and
Add 10 ml of 10% sodium dodecyl sulfate (SDS) and stir slowly. After stirring at 60 ° C. for 10 minutes, 5 ml and 5 mol of potassium acetate are added and stirred. Then, after 10 minutes of ice cooling, centrifugation was performed at 10,000 rpm for 20 minutes, the supernatant was transferred to a new tube, an equal amount of isopropanol was added, and 10,000 rp was added.
Centrifuge at m for 20 minutes to obtain a pellet. The pellet obtained was rinsed twice with 70% ethanol, then vacuum dried and 1 ml TE buffer (10 mM
Dissolve the pellet in Tris-HCl (pH 8.0).

【0011】 A液 B液 0.2M ショ糖 100mM Tris-HCl(pH8.0) 2.5mM EDTA 50mM EDTA 2.5mM DTT 500mM NaCl 10mM NaCl 10mM 2-メルカプトエタノール 10mM KClSolution A Solution B 0.2 M sucrose 100 mM Tris-HCl (pH 8.0) 2.5 mM EDTA 50 mM EDTA 2.5 mM DTT 500 mM NaCl 10 mM NaCl 10 mM 2-mercaptoethanol 10 mM KCl

【0012】上記プロセスにより得られた本実施例のタ
マネギのDNAの収量は103μg/生重量10g(乾
重量1g)であった。このDNAは図1の吸光度による
と262nm付近にピークを示すので、高純度のDNA
が得られたものと言える。本発明者らの先の発明(特願
平4−129473号)での収量は37μg/生重量1
gであったので本実施例の方法は収量は約1/4である
が、原料のタマネギを多量に用いれば大量のDNA抽出
が可能であり、収率はさして問題とならない。それより
も、先の発明(特願平4−129473号)に比べ、本
実施例の方法では多糖類を著しく低減することができる
ということがより重要である。
The yield of onion DNA of this example obtained by the above process was 103 μg / 10 g fresh weight (1 g dry weight). This DNA shows a peak near 262 nm according to the absorbance shown in FIG.
Can be said to have been obtained. The yield of the present inventors' previous invention (Japanese Patent Application No. 4-129473) is 37 μg / fresh weight 1
Since the amount was g, the yield of the method of this example is about 1/4, but a large amount of DNA can be extracted by using a large amount of onion as a raw material, and the yield is not a problem. Rather, it is more important that the method of the present example can significantly reduce the polysaccharide, as compared with the previous invention (Japanese Patent Application No. 4-129473).

【0013】次に、上記本発明に関連したタマネギDN
A抽出法について述べる。ネギ類は一般に粘質物を含ん
でいるが、その粘質物の構成物質はセルロース、ヘミセ
ルロース、プロトペクチン、水溶性ペクチンなどであ
り、それらの結合様式はα−1,4−グルコシド結合や
β−1,4−またはβ−1,3−グルコシド結合であ
る。ところで、「実験生物学講座17,植物生理学[I
II]」278頁、丸善(株)発行にはSDSを含む含
む抽出液でDNA粗抽出した後、きょう雑物の除去を目
的として各種酵素を添加する方法でブンドウ(Phaseolu
s aureus)のDNAを抽出する方法が開示されている。
この方法ではαアミラーゼを用いているが、このα−ア
ミラーゼはα−1,4−グルコシド結合を分解するもの
で、ネギ類の粘質物中のセルロースやペクチンなどは分
解できない。
Next, the onion DN related to the present invention described above.
The A extraction method will be described. Leeks generally contain mucilage, and constituent substances of the mucilage are cellulose, hemicellulose, protopectin, water-soluble pectin, etc., and their binding modes are α-1,4-glucoside bond and β-1. , 4- or β-1,3-glucosidic bond. By the way, "Experimental Biology Course 17, Plant Physiology [I
II] "278 pp, after the issuance Maruzen extracted DNA crude extraction liquid containing containing SDS, Bundou a method of adding various enzymes for the purpose of removal of today matters (Phaseolu
a method for extracting DNA of s aureus) is disclosed.
Although α-amylase is used in this method, this α-amylase decomposes α-1,4-glucoside bonds and cannot decompose cellulose and pectin in the mucilage of leek.

【0014】そこで、タマネギなどの粘質物を含有する
植物体からDNAを大量抽出するために、次のような手
段でDNA抽出を試みた。すなわち、DNA粗製液へ加
水分解酵素を添加することを特徴とするDNA抽出法で
ある。上記加水分解酵素はタマネギなどのα−1,4−
グルコシド結合、β−1,4−グルコシド結合およびβ
−1,3−グルコシド結合をランダムに加水分解する酵
素を用いる。その具体例はα−アミラ−ゼ(α−1,4
−結合を切断する)、セルラーゼ(β−1,4−結合を
切断する)、ペクチナーゼ(α−1,4−結合を切断す
る)である。
Therefore, in order to extract a large amount of DNA from a plant body containing a mucilage such as onion, an attempt was made to extract DNA by the following means. That is, it is a DNA extraction method characterized by adding a hydrolase to a crude DNA solution. The above-mentioned hydrolase is α-1,4-such as onion.
Glucoside bond, β-1,4-glucoside bond and β
An enzyme that randomly hydrolyzes the 1,3-glucoside bond is used. Specific examples thereof include α-amylase (α-1,4
-Cleavage of bond), cellulase (cleavage of β-1,4-bond), pectinase (cleavage of α-1,4-bond).

【0015】また、用いる酵素の濃度は酵素標品中に含
有されているDNase活性が通常のDNA抽出法と同
程度の活性を示す範囲であり、望ましくはα−アミラー
ゼ100μg/ml、セルラーゼ50μg/ml、ペク
チナーゼ200μg/ml以下で使用する。加水分解酵
素を作用させるバッファ液のpHは5.5〜6.5、望
ましくは6.0とする。このpHの調整は前記実施例の
ステップにおけるpH7〜8のTEバッファ液のpH
を途中でpH6に置換することで行う。
The concentration of the enzyme to be used is such that the DNase activity contained in the enzyme preparation shows the same level of activity as in the usual DNA extraction method, and preferably 100 μg / ml of α-amylase and 50 μg / cellulase. ml, pectinase less than 200 μg / ml. The pH of the buffer solution on which the hydrolase acts is 5.5 to 6.5, preferably 6.0. This adjustment of pH is carried out by adjusting the pH of the TE buffer solution having a pH of 7 to 8 in the steps of the above-mentioned example
Is replaced by pH 6 on the way.

【0016】一般に、DNAの抽出、精製時によく用い
られる酵素はRNase(RNA分解酵素)だが、この
酵素は活性が強く、pHに対する特異性が低い。そのた
め特別なバッファを必要としていないため、RNase
を用いるとDNA抽出バッファのpHは前記実施例のス
テップの7〜8で十分であり、バッファの置換は必要
としていない。しかし、上記加水分解酵素を用いると当
該酵素の最適pHで作用させることができ、少量の酵素
で多糖類を除去できる。このように、上記DNA粗製液
へ加水分解酵素を添加することを特徴とするDNA抽出
法により、物理的手法では限界がある多糖類の除去を化
学的手法により効果的に行え、物理的切断力がDNAに
加えられないのでDNAの低分子化がさけられる。
Generally, an enzyme often used for extraction and purification of DNA is RNase (RNA degrading enzyme), but this enzyme has strong activity and low specificity to pH. Therefore, no special buffer is required, so RNase
Is used, the pH of the DNA extraction buffer may be 7 to 8 in the steps of the above-mentioned example, and the buffer replacement is not necessary. However, when the above-mentioned hydrolase is used, it can be allowed to act at the optimum pH of the enzyme, and a small amount of enzyme can remove the polysaccharide. Thus, by the DNA extraction method, which is characterized by adding a hydrolase to the above-mentioned crude DNA solution, the removal of polysaccharides, which is limited by the physical method, can be effectively performed by the chemical method, and the physical cutting force Since it is not added to DNA, it is possible to avoid lowering the molecular weight of DNA.

【0017】具体例で上記DNA粗製液へ加水分解酵素
を添加するDNA抽出法を説明すると、次のような手順
で行う。 (1)冷蔵貯蔵していたタマネギ(品種:七宝甘球)母
球の表皮根部を切除し、鱗葉組織をスライスし、300
mlナスフラスコへ入れる。 (2)約50mlの純水(dDW)を加え7日間凍結乾
燥させる。 (3)7日経過後乳鉢で破砕し、途中で、0.84m/
m(メッシュNo.20)でふるい分けして、メッシュ
を通過したものを50mlのチューブに移し、−20℃
で保存し(すぐに次のスフップに移行する場合は、この
低温保存は必要ない)、その中の1gを50ml遠心チ
ューブに入れる。 (4)25mlの下記のバッファー液であるC液を加
え、かくはんした後、10分間静置し、1500rpm
で10分間遠心分離して、上清液を捨てる。 (5)前記(4)の操作を繰り返した後、15mlのバ
ッファー液である下記のD液を加えて懸濁させ、さら
に、2150μlの10%SDS加える。
A DNA extraction method in which a hydrolase is added to the above-mentioned crude DNA solution will be described as a specific example. (1) The epidermal root of the onion (variety: Cloisonne sweet bud) mother ball that had been stored refrigerated was excised, and the scaly tissue was sliced to obtain 300
Place in a ml eggplant flask. (2) Add about 50 ml of pure water (dDW) and freeze-dry for 7 days. (3) After 7 days, crush in a mortar and 0.84m /
After sieving with a m (mesh No. 20) and passing through the mesh, it is transferred to a 50 ml tube at -20 ° C.
(If you are going to the next hoop immediately, this cryopreservation is not necessary), and 1 g of it is put in a 50 ml centrifuge tube. (4) Add 25 ml of the following buffer solution C, stir it, and let it stand for 10 minutes at 1500 rpm.
Centrifuge at 10 minutes and discard the supernatant. (5) After repeating the operation of (4), 15 ml of the buffer solution D described below is added and suspended, and 2150 μl of 10% SDS is added.

【0018】(6)この液をゆっくり撹拌して、60℃
で10分間静置させ、5.4mlの5モルの酢酸カリウ
ムを加え、ゆっくり撹拌する。 (7)次いで、氷中に10分間静置させ、途中、ゆっく
り撹拌する。 (8)10分経過後に10000rpmで20分間、4
℃で遠心分離する。 (9)上清液をミラクロス2枚でろ過し、50mlチュ
ーブへ移す。 (10)同容量のイソプロパノールを加えてゆっくり撹
拌し30分間静置する。 (11)2500rpmで20分間、15℃で遠心す
る。沈殿物を冷70%エタノールで2回洗い、その後、
風乾を40分間行い、真空乾燥を5分間行う。 (12)この乾燥したペレットに5mlのバッファー液
である下記のF液を加え、4℃で一昼夜静置後、溶液を
15mlのチューブへ移す。 (13)105μlの1mg/mlRNase、25μ
lの20mg/mlのα−アミラーゼ、25μlの下記
の酵素液を加え、37℃で90分間置く。
(6) This solution is slowly stirred to 60 ° C.
Allow to stand for 10 minutes, add 5.4 ml of 5 molar potassium acetate and stir slowly. (7) Next, leave it in ice for 10 minutes, and slowly stir on the way. (8) After 10 minutes, 10,000 rpm for 20 minutes, 4
Centrifuge at ° C. (9) The supernatant liquid is filtered with two pieces of Miracloth and transferred to a 50 ml tube. (10) Add the same volume of isopropanol, stir slowly, and let stand for 30 minutes. (11) Centrifuge at 2500 rpm for 20 minutes at 15 ° C. Wash the precipitate twice with cold 70% ethanol, then
Air dry for 40 minutes and vacuum dry for 5 minutes. (12) To the dried pellet, 5 ml of the following buffer solution F is added, and the mixture is left standing at 4 ° C. for one day and then transferred to a 15 ml tube. (13) 105 μl of 1 mg / ml RNase, 25 μ
1 20 mg / ml α-amylase and 25 μl of the following enzyme solution were added, and the mixture was kept at 37 ° C. for 90 minutes.

【0019】(14)次いで、150μlの10%SD
S、10μlの20mg/mlプロティナーゼKを加え
て、37℃に90分間置く。 (15)その後、同容量のフェノール−クロロホルムを
加えて、20分間ゆっくりと撹拌し、次いで、2800
rpmで15分間遠心分離する。 (16)得られた水相を新しいチューブに移し、同容量
のクロロホルムを加えて、20分間撹拌する。 (17)次いで、2800rpmで20分間遠心分離処
理をした後、水相を新しいチューブへ移す。 (18)1/10容量の3モルの酢酸ナトリウムを加
え、さらに、同容量のイソプロパノールを加えて、てい
ねいに撹拌し、その後、30分間静置しておき、280
0rpmで20分間、4℃で遠心分離する。得られる沈
殿物を70%の冷エタノールで2回洗い、風乾30分間
の後、デシケーターに5分間置いた後、1mlのTEバ
ッファー液を加えて4℃で保存する。
(14) Next, 150 μl of 10% SD
S, add 10 μl of 20 mg / ml proteinase K and place at 37 ° C. for 90 minutes. (15) Then, add the same volume of phenol-chloroform, stir slowly for 20 minutes, and then add 2800
Centrifuge at rpm for 15 minutes. (16) Transfer the obtained aqueous phase to a new tube, add the same volume of chloroform, and stir for 20 minutes. (17) Then, after centrifuging at 2800 rpm for 20 minutes, the aqueous phase is transferred to a new tube. (18) 1/10 volume of 3 mol sodium acetate was added, and the same volume of isopropanol was further added, and the mixture was carefully stirred and then allowed to stand still for 30 minutes to give 280
Centrifuge at 0 rpm for 20 minutes at 4 ° C. The obtained precipitate is washed twice with cold 70% ethanol, air-dried for 30 minutes, placed in a desiccator for 5 minutes, added with 1 ml of TE buffer solution, and stored at 4 ° C.

【0020】 Dバッファー液 Eバッファー液 0.2M ショ糖 100mM Tris-HCl(pH8) 1.0mM EDTA 50mM EDTA 2.5mM DTT 500mM NaCl 10mM pH緩衝剤MES 10mM 2-メルカプトエタノール 10mM NaCl (pH6) 10mM KCl(pH6)D buffer solution E buffer solution 0.2 M sucrose 100 mM Tris-HCl (pH 8) 1.0 mM EDTA 50 mM EDTA 2.5 mM DTT 500 mM NaCl 10 mM pH buffer MES 10 mM 2-mercaptoethanol 10 mM NaCl (pH 6) 10 mM KCl (pH 6)

【0021】 Fバッファー液 酵素液 1mM EDTA 1% セルラーゼ オノズカ RS 10mM MES(pH6) 0.5% マセロザイム R-10 0.2% ペクトリアーゼ Y-23 10mM MES(pH6) 37℃、1hr.のインキュベーション なお、Tris-HClとはトリス(ヒドロキシメチル)ア
ミノメタンを水溶液として、HClでpHを調節したも
のである。
F buffer solution Enzyme solution 1 mM EDTA 1% Cellulase Onozuka RS 10 mM MES (pH 6) 0.5% Macerozyme R-10 0.2% Pectolyase Y-23 10 mM MES (pH 6) 37 ° C., 1 hr. Incubation of Tris-HCl is an aqueous solution of tris (hydroxymethyl) aminomethane whose pH is adjusted with HCl.

【0022】こうして上記加水分解酵素を用いると当該
酵素の最適pHで作用させることができ、少量の酵素で
多糖類を除去できる。また、上記DNA粗製液へ加水分
解酵素を添加することを特徴とするDNA抽出法によ
り、物理的手法では限界がある多糖類の除去を化学的手
法により効果的に行え、物理的切断力がDNAに加えら
れないのでDNAの低分子化がさけられる。
In this way, when the above-mentioned hydrolase is used, the enzyme can be allowed to act at the optimum pH and the polysaccharide can be removed with a small amount of the enzyme. In addition, by the DNA extraction method characterized by adding a hydrolase to the crude DNA solution, the removal of polysaccharides, which is limited by the physical method, can be effectively performed by the chemical method, and the physical cutting force is Since it is not added to the DNA, it is possible to avoid lowering molecular weight of DNA.

【0023】[0023]

【発明の効果】液体窒素による凍結が不要であり、繁雑
な操作を必要としない。また、核を集めることにより細
胞中のオルガネラや多糖類を除去できるのでより精製度
の高いDNAを得ることができる。プロトプラストから
でも核を集められるが大量の核を得るためには高価な酵
素が必要となるが本方法ではそのようなものは必要とし
ない。
EFFECTS OF THE INVENTION Freezing with liquid nitrogen is unnecessary, and complicated operations are not required. In addition, organelles and polysaccharides in the cells can be removed by collecting the nuclei, so that a highly purified DNA can be obtained. Although nuclei can be collected from protoplasts, expensive enzymes are required to obtain a large amount of nuclei, but such a method is not necessary in this method.

【図面の簡単な説明】[Brief description of drawings]

【図1】 本発明の実施例で得られたタマネギDNA溶
液の吸光度分布。
FIG. 1 is an absorbance distribution of onion DNA solutions obtained in Examples of the present invention.

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (72)発明者 大月 晴樹 茨城県稲敷郡阿見町大字阿見4818 井関農 機株式会社筑波研究所内 (72)発明者 勝山 浩一 茨城県稲敷郡阿見町大字阿見4818 井関農 機株式会社筑波研究所内 ─────────────────────────────────────────────────── ─── Continuation of the front page (72) Inventor Haruki Otsuki 4818 Ami, Ami-cho, Inashiki-gun, Ibaraki Izumi Seki Agricultural Machinery Co., Ltd. Tsukuba Research Institute (72) Koichi Katsuyama 4818 Ami, Ami-cho, Inami-gun, Ibaraki Prefecture Machine Tsukuba Research Institute

Claims (1)

【特許請求の範囲】[Claims] 【請求項1】 タマネギの母球の鱗葉をスライスしたも
のを凍結乾燥した後、DNA抽出液を添加する前段にお
いて、核を破壊しない組成の溶液を加え、核のみを集
め、その後界面活性剤を含む抽出液でDNA抽出を開始
することを特徴とするタマネギのDNA抽出方法。
1. A slice of onion mother scaly leaves is freeze-dried, and then a solution having a composition that does not destroy the nuclei is added before the addition of the DNA extract, and only the nuclei are collected, and then the surfactant is added. A method for extracting onion DNA, which comprises initiating DNA extraction with an extract containing
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Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2022031810A (en) * 2018-06-04 2022-02-22 イルミナ インコーポレイテッド High-throughput single-cell transcriptome libraries and methods of making and using the same

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