JPH0588114B2 - - Google Patents

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JPH0588114B2
JPH0588114B2 JP59209930A JP20993084A JPH0588114B2 JP H0588114 B2 JPH0588114 B2 JP H0588114B2 JP 59209930 A JP59209930 A JP 59209930A JP 20993084 A JP20993084 A JP 20993084A JP H0588114 B2 JPH0588114 B2 JP H0588114B2
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JP
Japan
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ring
group
heterocyclic
phospholipase
formula
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JP59209930A
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Japanese (ja)
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JPS6188891A (en
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Sumitaka Kokusho
Mineo Nakayama
Akira Tsunoda
Shigeaki Kato
Haruo Machida
Shinjiro Iwasaki
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Meito Sangyo KK
Original Assignee
Meito Sangyo KK
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Publication of JPH0588114B2 publication Critical patent/JPH0588114B2/ja
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    • Y02TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02PCLIMATE CHANGE MITIGATION TECHNOLOGIES IN THE PRODUCTION OR PROCESSING OF GOODS
    • Y02P20/00Technologies relating to chemical industry
    • Y02P20/50Improvements relating to the production of bulk chemicals
    • Y02P20/52Improvements relating to the production of bulk chemicals using catalysts, e.g. selective catalysts

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  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Description

【発明の詳細な説明】 本発明は、従来酸素法により製造できることの
全く知られていなかつた、スフインゴリン脂質複
素環化合物誘導体の酸素法により製法に関し、該
誘導体は例えばリポソーム形成基材、乳化剤、生
理活性物質及びそのキヤリヤーなどの分野に有用
な、酸素法スフインゴリン脂質複素環化合物誘導
体の製法に関する。 更に詳しくは、従来の、他のリン脂質について
の酸素法で使用されたキヤベツ由来のホスホリパ
ーゼD(至適温度40℃以下、至適PH5.4〜5.6)と
は異つて至適温度60〜70℃、至適PH7付近のホス
ホリパーゼDMの存在下で、スフインゴリン脂質
と従来、酸素法によつて製造できないとされてい
たアルコール性水酸基を有する複素環化合物とを
反応させるスフインゴリン脂質複素環化合物誘導
体の製法に関する。 尚、本発明に於てスフインゴリン脂質複素環化
合物誘導体とは、出発物質であるスフインゴリン
脂質のリン酸構造部分と該スフインゴリン脂質の
アルコール構造部分とのエステル結合を、ホスホ
リパーゼDMの作用で加水分解すると同時に上記
反応に用いるアルコール性水酸基を有する複素環
化合物へ転移させて誘導した、出発物質とは異る
新しいスフインゴリン脂質を意味する。 特に、本発明は、下記式() 【式】 式中、Aは下記式(i)又は(ii) 【化】 又は 【化】 の基を示し、ここで、Rは飽和もしくは不飽和の
C12〜C24の脂肪族炭化水素基を示し、A′はオキシ
ドアニオン又は水酸基を示し、Bは−(CH22N+
(CH33、−(CH22NH2又は−CH2CH(OH)CH2
(OH)を示す。 で表わされるスフインゴリン脂質を、下記(1)〜(3)
に示すアルコール性水酸基を有する複素環化合
物、すなわち、 (1) 一級アルコール性OHに結合した鎖状側鎖を
有し、且つテトラヒドロフラン環、ジオキソラ
ン環、チオフエン環、ピロリジン環、イミダゾ
ール環、イミダゾリジン環、オキサゾール環、
チアゾール環、ピラン環、オキサン環、チアン
環、ピペリジン環、トリアジン環、テトラヒド
ロフタルイミド環、ベンゾオキソラン環及びヘ
キサメチレンイミン環よりなる群からえらばれ
る複素環を持つ複素環一級アルコール化合物、
ここで、該化合物の複素環部分はC1〜C3アル
キル基、C1〜C3アルキレン基、水酸基、カル
ボキシル基、カルボル基、ハロゲン、アミノ
基、オキソ基、ベンジル基、フエニル基及び
C1〜C3のアルキレンスルホン酸基より成る群
からえらばれる置換基を有していてもよい、 (2) 環に直接結合した二級アルコール性OHもし
くは二級アルコール性OHに結合した鎖状側鎖
を有し且つピペリジン環、モルホリン環、ピペ
ラジン環、ピロリジン環、オキサン環及びフタ
ルイミド環よりなる群からえらばれた複素環を
持つ複素環二級アルコール化合物、ここで、該
化合物の複素環部分はC1〜C3のアルキル基、
水酸基及びC1〜C3のアルキレンスルホン環基
より成る群からえらばれた置換基を有してもよ
い。 (3) ピリジン環、ピリミジン環、トリアジン環、
プリン環及び8−アザプリン環からえらばれる
複素環を置換基として有するペントース誘導体
又はデオキシペントース誘導体、ここで、該誘
導体の複素環部分はメルカプト基、ハロゲン、
水酸基、カルボキシル基、オキソ基、アミノ
基、C1〜C3のアルキル基、メトキシ基、エト
キシ基、カルボキシメチル基、アセチル基及び
アソイル基よりなる群からえらばれる置換基を
有してもよい、ただし、アデノシン、シチジ
ン、ウリジン、グアノシン及びアラビノシチジ
ンより成る群からえらばれる糖を持つ複素環化
合物を除外する、より成る群からえらばれるア
ルコール性水酸基を有する複素環化合物と、ス
フインゴリン脂質と複素環アルコールとの間の
転移反応を触媒しうるホスホリパーゼD(以下、
ホスホリパーゼDMという)の存在下で反応さ
せることを特徴とする下記式() 【式】 式中、A及びA′は上記の意味を有し、 Cは上記(1)〜(3)に示すアルコール性水酸基を
有する複素環化合物から該アルコール性水酸基
を除いた残基を示す、 で表わされるスフインゴリン脂質複素環化合物誘
導体及びその塩類の製法に関する。 従来、ホスホリパーゼDがスフインゴリン脂質
Dがスフインゴリン脂質たとえばスフインゴミエ
リンのコリン塩基−リン酸エステルを加水分解
し、コリンとN−アシルスフインゴシン−1−リ
ン酸を生ずる反応を触媒することが知られている
〔F.M Davidson「Biochem,J.vol69、458−466
(1958)」(キヤベツホスホリパーゼD);Y,
OKAWA等「J.Biochem.,78,363−372(1975)」
(Strepto−myces hachijoeusisのホスホリパーゼ
D)〕。 更にグリセロリン脂質については、たとえばレ
シチンとエチルアルコールとをホスホリパーゼD
の存在下に反応させるとリン脂質のリン酸構造部
分と該リン脂質のアルコール構造部分とのエステ
ル結合が加水分解され、同時にホスフアチジル基
転移作用によりホスフアチジルエタノールを生成
する作用のあることが報公されている〔R.M.
Dawson;Biochem.J.102、205(1967);Yaug;
J.Biol chem.,242、477(1967)〕。又キヤベツ由
来のホスホリパーゼDのホススフアチジル基転移
作用を利用する英国特許No.1581810(対応西ドイツ
国公開No.2717547)には“ホスホリピツドの製法”
が提案されているが、この中ではグリセロリン脂
質とC5以下の鎖状一級アルコールとの間でのみ
ホスホリパーゼDの作用によつて転移誘導体が生
起する事について述べているだけであつてスフイ
ンゴリン脂質とアルコールとの転移作用について
は全く記載も示唆もされていない。即ちこの提案
によれば、この提案の一般式で示されたグリセロ
リン脂質と水酸基、ハロゲン、アミノその他置換
基で置換されていてもよいC5までの直鎖もしく
は、分枝のアルキル基を有する一級アルコールと
の前記キヤベツ由来のホスホリパーゼDの酵素作
用を利用した一級アルコール転移反応について開
示されているのみであつて非極性部分の構造をグ
リセリン脂質とは全く異にするスフインゴリン脂
質については全く言及されていない。唯一、
Robert J.CHALIFOUR,等はスフインゴミエリ
ンを基質としグリセロールを受容体アルコールと
して、ホスホリパーゼDの作用によりグリセリン
転移の生成を試みたが生成しなかつたと報告して
いる。(Can.J.Biochem.,vol58、1189(1980))。
この様に従来、スフインゴリン脂質についてはア
ルコール性水酸基を有する化合物の共存下にホス
ホリパーゼDを作用された時、スフインゴリン脂
質のリン酸構造部分と該スフインゴリン脂質のア
ルコール構造部分とのエステル結合が加水分解さ
れると同時にN−アシルスフインゴシン−1−リ
ン酸転移作用により出発スフインゴリン脂質とは
異なる新しいスフインゴリン脂質誘導体を生成す
る事は全く知られていなかつた。 本発明者等は、従来公知のキヤベツのホスホリ
パーゼDとは、その至適温度、至適PH等で異なる
ホスホリパーゼD生産能を有する微生物の存在を
発見して既に、特開昭58−63388号、特開昭58−
67183号に提案した。 この提案の中では、該ホスホリパーゼD生産菌
より得られるホスホリパーゼDはC5以下の一級
アルコールを包合して、更に従来全く言及された
ことのない広範囲なアルコール化合物に対してリ
ン脂質を転移させる作用を持つことが記載されて
いる。そしてこの中で、基質となるリン脂質とし
てグリセリン脂質、スフインゴリン脂質が記載さ
れ、又転移の起るアルコールの中で複素環アルコ
ールとしては複素環一級アルコールが記載され、
該複素環一級アルコールの複素環としてフラン
環、フタルイミド環、ピロール環、インドール
環、ピリジン環、モルホリン環、ピリミジン環、
ピペラジン環、イミダゾピリミジン環(プリン
環)が記載されている。 しかし上記提案の中にはテトラヒドロフラン
環、ジオキソラン環、チオフエン環、ピロリジン
環、イミダゾール環、イミダゾリジン環、チオキ
サゾール環、チアゾール環、ピラン環、オキサン
環、チアン環、ピペリジン環、トリアジン環、テ
トラヒドロフタルイミド環、ベンゾオキソラン
環、ヘキサメチレンイミン環を有する複素環一級
アルコール、及び複素環二級アルコールについて
は全く記載されていないし、示唆もされていな
い。又上記提案の中に記載されている複素環アル
コールについては、置換基の種類についてはとく
に言及されていないが、直換基を有する複素環一
級アルコールとして、ピリドキシン、チアミン及
びアデノシンの三種のみが記載されている。 本発明者等は、さらに研究を重ねた結果、該ホ
スホリパーゼDMは前記式()で表わされるス
フインゴリン脂質を加水分解すると同時に、上記
提案に全く記載されていない前記(1)、(2)及び(3)よ
り成る群からえらばれたアルコール性水酸基を有
する複素環化合物に転移するという新しい事実を
発見した。 本発明者等の研究によれば、スフインゴリン脂
質としてたとえばスフインゴミエリンと複素環一
級アルコールであるN−(2−ヒドロキシエチル)
ピロリジンとの間におけるスフインゴリン脂質複
素環化合物誘導体の形成を触媒する本発明に於て
新たにホスホリパーゼDMと呼称する酵素が存在
し、このホスホリパーゼDMの存在下に、前記式
()で表わされるスフインゴリン脂質と前記(1)
〜(3)のアルコール性水酸基を有する複素環化合物
とを反応させることにより、従来製造できること
の知られていなかつた新しいスフインゴリン脂質
複素環化合物誘導体が製造できる事が発見され
た。 斯して、煩雑且つ不利益な化学的合成手段を要
することなしに、温和且つ容易な条件及び、手段
で、副反応を伴うをおそれもなしに、一段階反応
で酵素法によつて新しいスフインゴリン脂質複素
環化合物誘導体を好収率で製造できることがわか
つた。 従つて本発明の目的は新しい酵素法スフインゴ
リン脂質複素環化合物誘導体の製法を提供するこ
とにある。 本発明の上記目的及び更に多くの他の目的なら
びに利点は以下の記載から一層明らかとなるであ
ろう。 本発明方法で利用するスフインゴリン脂質は下
記式()で表わされる。 【化】 但し式中Aは下記(i)又は(ii) 【化】 又は 【化】 を示し、 ここでRは飽和もしくは不飽和のC12〜C24の脂
肪族炭化水素基を示し、 A′はオキシドアニオン又は水酸基を示し、B
は、−(CH22N+(CH3)、−(CH22NH2もしくは
−CH2・CH(OH)CH2(OH)を示す。 上記式()原子スフインゴリン脂質は公知化
合物であつて、市場でも入手可能であり、それ自
体公知の方法によつて天然物より抽出採取又は合
成することが出来る。例えば動植物及び微生物組
織から公知の手段で抽出して得られるスフインゴ
ミエリン、セラミドホスホリルエタノールアミ
ン、セラミドホスホリルグリセロール等の単独或
いは混合物をそのまま若しくは精製して用いるこ
とができるし、それ自体公知の方法によつてその
構造の一部もしくは全部を化学合成して利用する
ことが出来る。 本発明方法に於て上記式()原料スフインゴ
リン脂質とホスホリパーゼDMの存在下に反応せ
しめる複素環アルコールとしては以下に例示する
(1)〜(3)のアルコール性水酸基を有する複素環化合
物を利用することが出来る。 (1) 複素環M級アルコール化合物として下記の化
合物をあげられる。一級アルコール性OHに結
合した鎖状側鎖を有し且つ下記複素環 テトラヒドロフラン環、ジオキソラン環、チオ
フエン環、ピロリジン環、イミダゾール環、イ
ミダゾリジン環、オキサゾール環、チアゾール
環、ピラン環、オキサン環、チアン環、ピペリ
ジン環、トリアジン環、テトラヒドロフタルイ
ミド環、ベンゾオキソラン環及びヘキサメチレ
ンイミン環 よりなる群からえらばれた複素環を持つ複素環
一級アルコール化合物残基、ここで該残基の複
素環部分はC1〜C3アルキル基、C1〜C3アルキ
レン基、水酸基、カルボキシル基、カルボニル
基、ハロゲン、アミノ基、オキソ基、ベンジル
基、フエニル基及びC1〜C3のアルキレンスル
ホン酸基より成る群からえらばれた置換基を有
してもよい; 上記において、置換基を持たない場合はチオフ
エン環、ピロリジン環、イミダゾール環、ピペリ
ジン環、テトラヒドロフタルイミド環、ベンゾオ
キソラン環及びヘキサメチレンイミン環が好まし
く、その例としてはN−(2−ヒドロキシエチル)
ピロリジン、N−(2−ヒドロキシエチル)ピペ
リジン、2−(2−ヒドロキシエチル)ピペリジ
ン、2−ヒドロキシメチルピペリジン、3−ヒド
ロキシメチルピペリジン、N−(2−ヒドロキシ
エチル)ヘキサメチレンイミン、2−チオフエン
メタノール、2−チオフエンエタノール、N−ヒ
ドロキシメチルテトラヒドロフタルイミド、4−
ヒドロキシメチルイミダゾール、ピペロニルアル
コールなどがあげられる。 上記において、置換基としてC1〜C3のアルキ
ル基を有する場合はジオキソラン環、ピロリジン
環、チアゾール環、オキサゾール環、イミダゾー
ル環及びイミダゾリジン環が好ましく、その例と
してはN−メチル−2−ヒドロキシエチルピロリ
ジン、2,2−ジメチル−1,3−ジオキソラン
−4−メタノール、1−(ヒドロキシメチル)−
5,5−ジメチルヒダントイン、2,4−ジメチ
ル−4−ヒドロキシオキサゾリン、5−(2−ヒ
ドロキシエチル)−4−メチルチアゾールなどが
あげられる。 上記において置換基としてC1〜C3のアルキレ
ン基を有する場合は、該アルキレン基は2つの複
素環を結ぶ結合を意味し、ピペリジン環が好まし
く、その例としては1,3−ビス(N−2−ヒド
ロキシエチル−4−ピペリジル)プロパン、1−
(N−2−ヒドロキシエチル−4−ピペリジル)−
3−(4′−ピペリジル)プロパンなどがあげられ
る。 上記において置換基として水酸基を有する場合
は、ピペリジン環、テトラヒドロフラン環及びオ
キサン環が好ましく、その例としては、N−(2
−ヒドロキシエチル)−4−(ヒドロキシプロピ
ル)ピペリジン、5−チオグルコース、コージ
酸、アルコルビン酸、イソアスコルピン酸、グル
コノ−δ−ラクトン、ガラクノ−γ−ラクトン、
α−グルコヘプトニツクアシツド−γ−ラクトン
などがあげられる。 上記において、置換基としてオキソ基を有する
場合はピロリジン環が好ましく、その例としては
N−(2−ヒドロキシエチル)−2−ピロリドン、
N−(2−ヒドロキシプロピル)−2−ピロリドン
などがあげられる。 上記において、置換基としてアミノ基を有する
場合はピリミジン環が好ましく、その例として、
トキソピリミジンなどがあげられる。 上記において置換基としてフエニル基を有する
場合はピペリジン環が好ましく、その例としては
スコポラミン、アトロピンなどがあげられる。 (2) 複素環二級アルコール化合物として下記の化
合物をあげられる。環に直接結合した二級アル
コール性OHもしくは二級アルコール性OHに
結合した鎖状側鎖を有し且つピペリジン環、モ
ルホリン環、ピペラジン環、ピロリジン環、オ
キサン環及びフタルイミド環よりなる群からえ
らばれた複素環を持つ複素環二級アルコール化
合物残基、ここで該残基の複素環部分はC1
C3のアルキル基、水酸基及びC1〜C3のアルキ
レンスルホン酸基より成る群からえらばれた置
換基を有してもよい:− 上記において環に直接結合した二級アルコール
性OHを持つ複素環としては、ピペリジン環及び
ピロリジン環が好ましく、その例としては3−ヒ
ドロキシピペリジン、4−ヒドロキシピペリジ
ン、3−ヒドロキシピロリジンなどがあげられ
る。 上記において二級アルコール性OHに結合した
鎖状側鎖を有する複素環としては、フタイミド環
及びモルホリン環、好ましくは、その例としては
N−(2−ヒドロキシプロピル)フタルイミド、
N−(2−ヒドロキシプロピル)モルホリンなど
があげられる。 上記において置換基として、C1〜C3のアルキ
ル基を有する場合はピペリジン環が好ましく、そ
の例としてはN−メチル−4−ヒドロキシピペリ
ジンなどがあげられる。 上記において置換基としてC1〜C3のアルキレ
ンスルホン酸基を有する場合はピペラジン環及び
モルホリン環が好ましく、その例としてはピペラ
ジン−N,N′−ビス(2−ヒドロキシプロパン
−3−スルホン環)、3−(N−モルホリン)−2
−ヒドロキシプロパンスルホン酸などがあげられ
る。 (3) 糖を持つ複素環化合物として下記のものがあ
げられる。ピリジン環、ピリミジン環、トリア
ジン環、プリン環及び8−アザプリン環からえ
らばれた複素環を置換基として有するペントー
ス残基又はデオキシペントース残基、ここで該
残基の複素環部分はメルカプト基、ハロゲン、
水酸基、カルボキシル基、オキソ基、アミノ
基、C1〜C3のアルキル基、メトキシ基、エト
キシ基、カルボキシメチル基、アセチル基及び
アニソイル基よりなる群からえらばれた置換基
を有してもよい:一 上記においてピリジン環を置換基として有する
ペントース残基及びデオキシペントース残基とし
ては、3−デアザウリジンなどがあげられる。 上記においてトリアジン環を置換基として有す
る、ペントース残基及びデオキシペントース残基
としては、5−アザシチジンなどがあげられる。 上記においてピリミジン環を置換基として有す
るペントース残基及びデオキシペントース残基と
しては、4−チオウリジン、5−ブロモウリジ
ン、5−ヒドロキシウリジン、6−フルオロデオ
キシウリジン、3−メチルウリジン、5−カルボ
キシメチルウリジン、5−メチルウリジン、N4
−アセチルシチジン、55−メトキシウリジン、5
−ブロモ−2′−デオキシシチジン、N4−アニソ
イル−2′−デオキシシチジン、3′−O−メチルシ
チジン、オロチジン、サイクロシチジン、チミン
デオキシリボシド、ラウシルデオキシリボシド、
シトシンデオキシリボシド、などがあげられる。 上記においてプリン環を置換基として有するペ
ントース残基及びデオキシペントース残基として
は、6−メルカプトグアノシン、1−メチル−グ
アノシン、キサントシン、6−メルカプトプリン
リボシド、6−メチルアミノプリン−9−リボシ
ド、N6−メチル−2′−デオキシアデノシン、8
−プロモアデノシン、N6−エタノアデノシン、
2′−クロロアデノシン、1−メチルアデノシン、
N6,N6−ジメチルアデノシン、2′−O−メチル
アデノシン、イノシン、グアニンデオキシリボシ
ド、アデニンデオキシリボシドなどがあげられ
る。 上記において8−アザプリン環を置換基として
有するペントース残基及びデオキシペントース残
基としては8−アザアデノシンなどがあげられ
る。 上記例示の如き(1)〜(3)からえらばれたアルコー
ル性水酸基を有する複素環化合物が例示出来る
が、前記(1)〜(3)までの範囲がみたされる限り、ア
ルコール類の選択に制限はない。 上記例示の如き(1)〜(3)のアルコール性水酸基を
有する複素環化合物は天然物、合成品、いづれで
も利用できるが、目的とする化合物以外のアルコ
ール性水酸基を有する複素環化合物を含まないよ
うに、予め適当な手段を利用して精製して利用す
るのが好ましい。このような精製手段の例として
たとえば蒸留、再結晶、アルミナ、シリカゲル活
性炭、イオン交換樹脂などを用いたカラムクロマ
トグラフイー、薄層クロマトグラフイー及びこれ
等の適当な組合わせによる精製手段を例示でき
る。 本発明方法によれば前記例示の如き式()ス
フインゴリン脂質と上記例示の如き(1)〜(3)の群か
らえらばれたアルコール性水酸基を有する複素環
化合物とをホスホリパーゼDMの存在下に反応さ
せる。 この際利用するホスホリパーゼDMとしては、
従来公知のキヤベツから抽出されたホスホリパー
ゼDの至適温度40℃以下、至適PH5.4〜5.6に対し
て、至適温度60〜70℃、至適PH7付近である点で
公知ホスホリパーゼDと区別ができるホスホリパ
ーゼDM生産菌の生産するホスホリパーゼDMが
例示できるが、N−アシルスフインゴシン脂質−
1−リン酸転移作用を有するホスホリパーゼDM
であればその起源にかかわらずすべて利用でき
る。 該ホスホリパーゼDMは式()スフインゴリ
ン脂質とN−(2−ヒドロキシエチル)ピロリジ
ンとの間におけるスフインゴリン脂質誘導体の形
成を触媒する点で公知ホスホリパーゼDと区別で
きる。 このようなホスホリパーゼDM生産菌の例とし
ては、同一出願人の出願に係わる特開昭58−
63388号に開示されたノカルデイオプシス
(Nocardiopsis)属に属するホスホリパーゼDM
生産菌たとえばノルカデイオプシス属No.779株
〔FERM−BP−512〕、同一出願人の出願に係わ
る特開昭58−67183号に開示されたアクチノマデ
ユーラ(Actinomadu−ra)属に属するホスホリ
パーゼDM生産菌たとえばアクチノマデユーラ属
No.362株〔FERM−BP−511〕等を挙げることが
できるが前記式()のリン脂質を原料として前
記(1)〜(3)のアルコール性水酸基を有する複素環化
合物の転移反応を起す作用を有するホスホリパー
ゼDであれば如何なる起源のホスホリパーゼDで
もホスホリパーゼDMとして用いることが出来
る。至適温度及び至適PHの相違と共に他のいくつ
かの相違点と共に、下掲第1表に、本発明方法で
利用するホスホリパーゼDMと公知ホスホリパー
ゼDとの酵素学的性質の差異を示す。なお、酵素
学的性質は上記特開昭58−63388号公報及び特開
昭58−67183号公報記載の方法により測定したも
のである。 【表】 するサンライト株式会社の商品名である。
公知ホスホリパーゼDを用いては得られなかつ
たスフインゴリン脂質複素環化合物誘導体が、本
発明方法を形成できる理由には、この酵素的触媒
反応に関与する公知ホスホリパーゼDと本発明方
法で用いるホスホリパーゼDMとの上記の如き酵
素学的性質の差異が関与しているものと推測され
る。勿論、本発明方法はこのような作用の推測に
よつて何等の制約もうけるものではない。 本発明方法で利用するホスホリパーゼDMは後
記転移作用の実験方法〔TLCによる転移生成物
の生成確認方法〕に従つて反応を行つて例えば複
素環一級アルコールのN−(2−ヒドロキシエチ
ル)ピロリジンとスフインゴリン脂質であるスフ
インゴミエリンとの間におけるスフインゴリン脂
質誘導体形成反応を触媒して、該スフインゴリン
脂質の該複素環化合物誘導体を形成する。公知キ
ヤベツホスホリパーゼDは上記誘導体を形成しな
い。 本発明方法によれば、前記例示の如き式()
スフインゴリン脂質と前記例示の如き(1)〜(3)のア
ルコール性水酸基を有する複素環化合物とを、上
記に詳しく述べたホスホリパーゼDMの存在下に
反応させることにより、下記式() 【化】 但し式中、A,A′及びCは前記したと同義で
ある、 で表わされるスフインゴリン脂質複素環化合物誘
導体を製造することができる。この際、ホスホリ
パーゼDMは精製品として使用する必要はなく粗
製品であつてもよい。更に、適当な固定化担体た
とえばポリプロピレン膜、セライト粒、ガラスピ
ーズなどの如き各種の重合体樹脂類や無機材料の
粒状物やフイルム状物に担持固定化して利用する
こともできる。 反応は、ホスホリパーゼDMの存在下で、好ま
しくは溶媒の存在下に、式()スフインゴリン
脂質と前記(1)〜(3)アルコール性水酸基を有する複
素環化合物とを接触せしめることにより行うこと
ができる。利用する溶媒の例としては、水性溶媒
及び水性溶媒と有機溶媒との混合溶媒を例示する
ことができる。又、アルコール性水酸基を有する
複素環化合物によつてはそれ自体に溶媒の役目を
兼ねさせることができる。また、ホスホリパーゼ
DMの酵素学的触媒作用を阻害しない任意の他の
添加剤を含む溶媒も利用でき、たとえば該作用を
促進したり、酵素の安定化に役立つ適当な添加剤
を含有した溶媒であることができる。例えば、ア
ルブミン、カゼイン等の蛋白質、酢酸、クエン
酸、リン酸などの緩衝剤を含有したり、塩化カル
シウムその他の中性塩を含有したり又、タウロコ
ール酸ソーダ等の胆汁酸塩類を含有した水性溶媒
であることができる。更に、有機溶媒の例として
は、例えば、n−ヘプタン、n−ヘキサン、イソ
オクタンなどの如き脂肪族炭化水素類;シクロペ
ンタン、シクロヘキサン、シクロブタンなどの如
き脂環族炭化水素類;ベンゼン、トルエン、キシ
レンなどの如き芳香族炭化水素類;アセトン、メ
チルイソプロピルケトンなどの如きケトン類;ジ
メチルエーテル、ジエチルエーテル、ジイソプロ
ピルエーテルなどの如きエーテル類;酢酸メチ
ル、酢酸エチルなどの如きエステル類;四塩化炭
素、クロロホルム、塩化メチレンなどの如きハロ
ゲン化炭化水素類;ジメチルホルムアミドの如き
アミド溶媒類;ジメチルスルホキシドの如きスル
ホキシド溶媒類などを例示することができる。 水性溶媒と有機溶媒との混合溶媒の形で利用す
る場合の両者の混合比は適当に選択できるが、例
えば水性溶媒:有機溶媒(V/V比)の比で
100:0〜1:99の如き混合比を例示することが
できる。 反応モル比、ホスホリパーゼDMの使用量、溶
媒の使用量などは、適宜に選択できるが、例え
ば、式()スフインゴリン脂質1モルに対して
前記(1)−(3)アルコール性水酸基を有する複素環化
合物約1:1〜約1:1000モルの反応モル比を例
示することができる。また、ホスホリパーゼDM
の使用量としては、例えば、式()スフインゴ
リン脂質1g当り約10〜約100000単位、好ましく
は約100〜約1000単位程度の使用量を例示するこ
とができる。さらに、溶媒の使用量としては、例
えば、式()スフインゴリン脂質に対して約2
〜約100容量倍程度の使用量を例示できる。 反応は、室温で進行するので、とくに冷却或は
加熱の必要はないが、所望により適宜に冷却もし
くは加温条件を採用することができる。例えば、
約0℃〜約90℃、好ましくは、約20℃〜約60℃の
如き反応温度を例示することができる。また反応
時間も適宜に選択できるが、例えば約1分〜約10
日、好ましくは約1時間〜第72時間の如き反応時
間を例示することができる。所望により、たとえ
ばTLC(薄層クロマトグラフイー)などの手法を
利用して反応経過を追跡し、所望の目的物の形成
を確認することにより反応時間を適宜に変更する
ことができる。 ホスホリパーゼDMの存在下で式()スフイ
ンゴリン脂質と前記(1)〜(3)アルコール性水酸基を
有する複素環化合物とを接触せしめる態様は適宜
に選択できるが、撹拌もしくは振盪条件下で行う
のが普通である。又、酸化分解を受け易い基質又
はアルコール性水酸基を有する複素環化合物を用
いて反応する場合は窒素気流中等で行う事が望ま
しい。又、前記のように適当な粒状物やフイルム
状物担体に担持固定化した固定化酵素の形でホス
ホリパーゼDMを利用する場合には、例えば、固
定化酵素膜もしくは固定化酵素粒子層を介して反
応組成液を循環ポンプを用いて通過させる態様で
行うことができる。 上述のようにして反応を行つた後、形成された
式()のようにして反応を行つた後、形成され
た式()スフインゴリン脂質複素化合物誘導体
は、そのまま又は塩の形で沈殿させて分離して利
用することができる。尚、ここで式()スフイ
ンゴリン脂質複素環化合物誘導体の塩としては、
例えば塩酸、臭化水素酸、硫酸、燐酸等の無機酸
との塩、シユウ酸、マレイン酸、乳酸、酒石酸、
フマール酸、メタンスルホン酸、ベンビンスルホ
ン酸、トルエンスルホン酸等の有機酸との塩、ア
ルギニン、アスパラギン酸、グルタミン酸等のア
ミノ酸との塩、ナトリウム、カリウムなどのアル
カリ金属との塩、マグネシウム、カルシウム等の
アルカリ士類金属との塩及びアンモニウム塩等が
あげられる。更に、該誘導体及びその塩はケイ酸
カラムクロマト、アルミナカラムクロマト、イオ
ン交換クロマト、高速液体クロマト、向流分配、
ゲル過、吸着クロマト等の適当な公知の方法を
利用して分離精製することができる。 本発明方法によれば、上述したようにして、式
()スフインゴリン脂質と前記(1)〜(3)のアルコ
ール性水酸基を有する複素環化合物とを、ホスホ
リパーゼDMの存在下に反応させて式()スフ
インゴリン脂質複素化合物誘導体を製造すること
ができる。得られる式()スフインゴリン脂質
複素環化合物誘導体は、すぐれた界面活性作用を
有し細胞膜の透過性に大きな影響を持つ。この意
味から、該式()誘導体はリポソーム形成基材
として又、リポソーム表面の修飾基材として利用
出来る他、化粧品たとえばクリーム、乳液に配合
して皮膚生理に役立つ乳化剤として、更に脂肪系
薬剤の乳化剤、殺虫剤、除草剤など乳化剤などの
広い乳化剤用途に有用である。 更にスフインゴリン脂質は、植物細胞と動物細
胞の重要な膜成分であり、動物では特に脳と伸経
組織に多量に存在している他、臓器や血球中にも
存在する。スフインゴリン脂質の中で最も豊富に
見られるのはスフインゴミエリンでありその誘導
体と考えられるものとしてセラミドホスホリルエ
タノールアミン、セラミド2−アミノエチルホス
ホネート等が知られているが天然に見出されるス
フインゴリン脂質の種類はまだ、きわめて少な
い。スフインゴリン脂質の生理的役割について
は、神経伝達に関与していると考えられている
が、この分野での解明はまだあまりなされていな
い。 むしろそのアナログとも言えるスフインゴグリ
コリピツドについては、様々な抗原として、又は
細菌毒素、インターフエロン、ホルモンなどのリ
セプターとして知られている。 又最近では細胞の分化誘導、増殖に関与してい
る事も考えられている。 本発明で誘導しうる式()スフインゴリン脂
質複素環化合物誘導体は多くの異つた構造を有す
る新規なスフインゴリン脂質誘導体であり、これ
等のスフインゴリン脂質アナログの中には神経系
薬剤として有効な作用を有する誘導体が期待出来
る。又これ等の誘導体、特に糖を持つ複素環を誘
導したスフインゴリン脂質アナログの中には細胞
培養に用いた時その分化誘導を促進したり細胞の
増殖を進めたりする効果を有するものが存在する
可能性が考えられる。又逆に分化あるいはガン化
の進行を阻止する効果を発現する可能性も考えら
れる。又、一、二級アルコール水酸基を有する複
素環化合物或は一、二級アルコール水酸基を導入
した複素環薬理活性化合物を、スフインゴリン脂
質に転移させることによつて、該化合物の薬理的
副作用を弱めたり或は薬理効果を高めてその投与
量を低減させたりすることも期待できる。さらに
又、上記薬理活性化合物をスフインゴリン脂質に
転移させて、該化合物を患部に的確に集中させる
ための薬理活性化合物のキヤリヤーとして、さら
には、薬理活性化合物の保護基として有用な役割
をはたすことも期待できる。 又更に、各種医薬品をはじめとする化学合成の
中間体として有用であり、例えば、反応性の高い
ハロゲンやアミノ置換基を有するアルコールを転
移させた誘導体を利用出来る。更に又三重水素や
14Cでラベルしたアルコール性水酸基を有する複
素環化合物を転移することによつてラベルされた
スフインゴリン脂質複素環化合物誘導体が得ら
れ、スフインゴリン脂質の代謝経路の解明に移用
する事も出来る。 以下、実施例により本発明方法実施の数態様に
ついて、更に詳しく例示する。 参考例1 ホスホリパーゼDMの調製。 きな粉3.0%、コーンスターチ−プリカー1.0
%、ペプトン0.5%、粉末酵母エキス0.1%、グル
コース1.0%、NH4NO30.25%、K2HPO40.4%、
MsSO4・7H2O0.01%、ツウイン(Tween)−85
0.1%から成る培地(PH6.0)約15を30ジヤー
フアーメンターに入れ、120℃で15分間滅菌後、
シード培養液1.5を植菌し、27℃で40時間培養
を行つた。尚、上記シード培養液は、殿粉1%、
(NH4)H2PO40.25%、ペプトン0.25%、
K2HPO30.2%、MgSO4・7H2O0.01%を含む水溶
液培地(PH6.8)100mlを500ml坂口フラスコに入
れ、蒸気殺菌後、ノカルデイオプシス属NO.779
株〔FERM.BP512〕又はアクチノマデユーラ属
NO.362株〔FERM・BP−511〕の胞子を一白金
耳接種し、培養温度30℃、120回転/分の条件で
2日間振盪培養して調製した。 培養後、菌体固形物を遠心分離により除去し、
遠心上清13(ノカルデイオプシス属FERM・
BP−512を用いた場合は0.54u/ml;アクチノマ
デユーラ属FERM・BP−511株を用いた場合は
1.7u/mlであつた。)を得た。この遠心上清を5
℃に冷却した後、−20℃のアセトンを加えてアセ
トン濃度30〜70%画分に相当するホスホリパーゼ
DMを含む沈殿物を遠心分離により集めた。この
沈殿物を、ノカルデイオプシス属FERM・BP−
512株を用いた場合にはPH6.0、アクチノマデユー
ラ属FERM・BP−511株を用いた場合はPH6.5の
トリス・マレイン酸に溶解し、0.02Mの同緩衝液
に対して透析した後、同緩衝液で平衡化した
DEAE−セルロースに通塔し、通過区分を集め
た。次に堀内等の方法〔J.Biochem.81、1639
(1977)〕で調整したパルミトイルガーゼをカラム
に充填し、充分に水洗してから上記DEAE−セル
ロース通過液を注入し、活性を吸着した。これを
0.05Mトリス−塩酸緩衝液(PH7.2)で洗浄後、
0.2%Triton X−100を含む同緩衝液を加え活性
を溶出した。活性区分を集めてバイオエンジエア
リング社製の限外過膜(Type G−10T)を用
いて濃縮した後、ゲル過担体としてトヨパール
HW−55F〔東洋曹達(株)製〕充填カラムに注入し、
蒸留水を用いて通塔し、活性区分を集めて凍結乾
燥を行つた。 この乾燥粉末を、ノカルデイオプシス属ホスホ
リパーゼDMの場合には0.025Mイミダゾール・
塩酸(PH7.4)に溶解後、アクチノマデユーラ属
ホスホリパーゼDMの場合には0.025Mトリス−
酢酸(PH8.3)に溶解後、フアルマシア・フアイ
ンケミカルス社製のポリバツフア交換体PBETN94
(20ml)充填カラムに通塔して活性を吸着後、同
社製の溶出用ポリバツフア(PH5.0)を用いてPH
勾配により溶出した。溶出したホスホリパーゼ
DMの活性区分を集めて限外過膜にて濃縮し、
セフアデツクスG−75充填カラムに通塔し、ホス
ホリパーゼDM活性区分を集めて凍結乾燥した。 斯くて、ノカルデイオプシス属ホスホリパーゼ
DMの場合には、約40%の活性回収率で、比活性
178.3u/mg蛋白質として、アクチマデユーラ属ホ
スホリパーゼDMの場合には約43%の活性回収率
で、比活性218.3u/mg蛋白質として、ホスホリポ
ーゼDMが回収された。 実施例1 (Run No.1〜No.50) スフインゴミエリン、卵黄由来(シグマ社製)
と後掲第2表に示した多数種の複素環アルコール
とを、後記TLCによる転移生成物の生成確認方
法に従つて、ホスホリパーゼDMの存在下で反応
させて、転移生成物の形成を確認した。そのRf
値を後掲第2表に示した。 TLCによる転移生成物の生成確認方法:一下
記組成 1%スフインゴミエリン乳化液 0.1ml 0.2M酢酸緩衝液(PH5.7)、 0.1ml 1M塩化カルシウム水溶液 0.01ml 20%複素環アルコール水溶液 0.2ml の反応液にホスホリパーゼDM水溶液0.01ml
(IU)を加え、30℃で2日静置した。 尚上記1%スフインゴミエリン乳化液はスフイ
ンゴミエリン100mgにジエチルエーテル−石油エ
ーテル(1:1V/V)1ml及び蒸留水10mlを加
え氷冷条件下に600W、20KHzの条件で5分間超
音波処理して形成した。又上記20%複素環アルコ
ール水溶液は、必要に応じて1N塩酸もしくは1N
カセイソーダでPHを6.0に調整した後に用いた。 上記静置後0.1N塩酸0.5mlを加え反応を停止し
た後激しく撹拌し、脂質(生成物)を抽出した。
この懸濁液を数分静置し、下層のクロロホルム層
を分取し、30℃で減圧乾固した後、クロロホルム
−メタノール混液(2:1V/V)100に溶解し
て、TLCの試料とした。このうち10をシリカ
ゲル薄層(メルク社製、シリカゲル60TLCプレ
ート、20×20cm)にスポツトし、クロロホルム−
メタノール−水(60:30:5V/V)、クロロホル
ム−メタノール−アンモニア−水(50:20:1:
2V/V)又はジイソブチルケトン−酢酸−水
(40:25:5V/V)を展開溶媒として展開した。 スポツトの検出は下記の試薬を用いた。 検出されたスポツトで末分解の基質及びその加
水分解物であるN−アシルスフインゴシン−1−
リン酸以外のリン脂質のスポツトが検出された場
合、これを転移生成物と認めた。 展開溶媒としてクロロホルム−メタノール−水
(60:30:5V/V)を用いた時のRf値を第2表に
示した。(Run No.1〜50) 検出試薬: リンの呈色:Zinzadeの試薬(Beiss U.J.
Chromatog.13、104、1964) プリン及びピリミジンの呈色:フルオレツセイン
−アンモニア試薬(Wieland T.らAngew.
63、511、1951) 有機化合物の呈色:50%硫酸。 【表】 【表】 実施例2 (Run No.1〜No.15) スフインゴミエリン(卵黄由来 シグマ社製)
500mg、ジエチルエーテル1ml、蒸留水10mlを超
音波用セルに入れ、氷冷しながら600W20KHzで
5分間音波処理をし、乳化液を調整した。 このスフインゴミエリン乳化液0.2ml、0.2M酢
酸緩衝液(PH5.7)0.2ml、1M塩化カルシウム水
溶液0.1ml、20%N−(2−ヒドロキシエチル)ピ
ロリジン水溶液0.5ml、を共栓付き試験管中に入
れ、PHを5.7に合した後、ホスホリパーゼDM水
溶液0.1ml(20U)を加えよく混合した後、30℃
で、2日静置した。次に反応液に0.1N塩酸を2
ml加えて反応を停止した後更にクロロホルム−メ
タノール混液(2:1V/V)10mlを加え激しく
混合し、リン脂質を抽出した。この混合液を2000
×g10分間遠心し、下層のクロロホルム層を分取
し、分取したクロロホルム層を更に5mlの水で洗
つた。この混合液から遠心によつて再びクロロホ
ルム層を分取し、30℃で減圧乾燥した後、0.5ml
のn−ヘキサン−2−プロパノール−水(60:
80:14V/V)混液に溶解した。この試料10mlを
シリカゲル薄層(メルク社製シリカゲル60TLC
プレート20×20cm)にスポツトしクロロホルム−
メタノール−水(60:30:5V/V)の溶媒系で
展開したところ3種類のリン脂質が検出され、そ
のうち2つのスフインゴミエリン及び、N−アシ
ルスフインゴシン−1−リン酸とRf値が一致し
た。 そこでこの試料を高速液体クロマトグラフイー
によつて分離、精製した。 カラムはラジアルパツクカートリツジシリカ8
mm×10cm、(ウオーターズ社製)、溶媒はn−ヘキ
サン−イソプロパノール−水(60:80:14V/
V)で、ピークの検出には441型紫外線検出器
(ウーターズ社製)による214nmの吸収、及び、
R401型示差屈析計(ウオーターズ社製)を用い
た。試料は0.1mlづつ5回に分け注入した。この
溶媒によりN−アシルスフインゴシン−1−リン
酸、スフインゴミエリン、N−アシルスフインゴ
シン−1−リン酸−N−(2−ヒドロキシエチル)
ピロリジンエステルの3成分を分取した。 得られたN−アシルスフインゴシン−1−リン
酸−N−(2−ヒドロキシエチル)ピロリジンエ
ステルはもう一度同様な操作により精製し、精製
物3mgを得た。これはTLC及び高速液クロで単
一であることを確認した。 この化合物のIRスペクトルは日本分光A202型
赤外分光光度計を用い、液膜法で測定した。その
結果を第3表(Run No.3)に示した。 更に第3表に示した各種複素環アルコールにつ
いて同様な方法で転移生成物を調製してIRスペ
クトルを測定した。 その結果を第3表に示した。(Run1〜2、4〜
15) 【表】 【表】 実施例3 (Run No.1〜No.2) 実施例2と同様にして調整した5%スフインゴ
ミエリン乳化液10mlに0.2M酢酸緩衝液10ml(PH
5.7)と1M塩化カルシウム水溶液1mlを共栓付き
三角フラスコに入れエタノール塩酸塩5gを加え
更にホスホリパーゼDM水溶液10ml20U/ml)を
加え30℃で2日間静置した。上記静置後1N塩酸
を加えてPHを2.0に合し反応を止め更に50mlのク
ロロホルム−メタノール混液(2:1V/V)を
加え激しく撹拌し、生成物を抽出した。この混合
液を2000×g2分間遠心し、下層のクロロホルム
層を分取した。 分取した抽出液を30℃で減圧乾固した後2mlの
n−ヘキサン−2−プロパノール−水(60:80:
14V/V)混液に溶解した。以下実施例2と同様
な操作によりN−アシルスフインゴシン−1−リ
ン酸エタノールアミンエステルを精製し、精製物
150mgを得た。 同様な操作により精製N−アシルスフインゴシ
ン−1−リン酸グリセロールエステル130mgを得
た。 上記のようにして得られた 基質:N−アシルスフインゴシン−1−リン酸
エタノールアミンエステル、(セラミドホス
ホリルエタノールアミン) 基質:N−アシルスフインゴシン−1−リン酸
グリセロールエステル(セラミドホスホリル
グリセロール) の5%乳化液を0.2mlをそれぞれ別の共栓付き試
験管に入れ20%N−(2−ヒドロキシエチル)−2
−ピロリドン水溶液0.2ml、0.2M酢酸緩衝液(PH
5.7)0.2ml、1M塩化カルシウム水溶液0.1mlを加
えPHを5.7に合したホスホリパーゼDM水溶液0.1
ml(20U)を加え30℃で2日間静置した。 この反応液を実施例2と同様に処理し、共通の
転移生成物であるN−アシルスフインゴシン−1
−リン酸N−(2−ヒドロキシエチル)−2−ピロ
リドンエステルを得た。そのIRスペクトルを第
4表に示した。 【表】
DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION The present invention relates to a method for producing a sphingophospholipid heterocyclic compound derivative by an oxygen method, which has not been previously known to be able to be produced by an oxygen method. This invention relates to a method for producing oxygen-method sphingophospholipid heterocyclic compound derivatives, which are useful in the field of active substances and their carriers. More specifically, unlike the cabbage-derived phospholipase D used in the conventional oxygen method for other phospholipids (optimal temperature below 40°C, optimum pH 5.4-5.6), the optimum temperature is 60-70°C. A method for producing a sphingophospholipid heterocyclic compound derivative by reacting a sphingophospholipid with a heterocyclic compound having an alcoholic hydroxyl group, which was conventionally thought to be unable to be produced by the oxygen method, in the presence of phospholipase DM at a temperature of approximately 7°C and an optimum pH of 7. Regarding. In the present invention, the sphingophospholipid heterocyclic compound derivative is defined as a sphingophospholipid heterocyclic compound derivative that is obtained by simultaneously hydrolyzing the ester bond between the phosphoric acid structure moiety of the sphingophospholipid as a starting material and the alcohol structure moiety of the sphingophospholipid by the action of phospholipase DM. It means a new sphingophospholipid different from the starting material, derived by transfer to a heterocyclic compound having an alcoholic hydroxyl group used in the above reaction. In particular, the present invention provides the following formula () [Formula] where A represents a group of the following formula (i) or (ii) [Chemical formula] or [Chemical formula], where R is a saturated or unsaturated
Represents a C12 to C24 aliphatic hydrocarbon group, A' represents an oxide anion or a hydroxyl group, and B represents -( CH2 ) 2N +
( CH3 ) 3 , -( CH2 ) 2NH2 or -CH2CH ( OH) CH2
Indicates (OH). The sphingophospholipids represented by the following (1) to (3)
A heterocyclic compound having an alcoholic hydroxyl group shown in (1) having a chain side chain bonded to a primary alcoholic OH, and having a tetrahydrofuran ring, a dioxolane ring, a thiophene ring, a pyrrolidine ring, an imidazole ring, an imidazolidine ring , oxazole ring,
a heterocyclic primary alcohol compound having a heterocycle selected from the group consisting of a thiazole ring, a pyran ring, an oxane ring, a thian ring, a piperidine ring, a triazine ring, a tetrahydrophthalimide ring, a benzoxolane ring and a hexamethyleneimine ring;
Here, the heterocyclic moiety of the compound is a C1 - C3 alkyl group, a C1 - C3 alkylene group, a hydroxyl group, a carboxyl group, a carbol group, a halogen, an amino group, an oxo group, a benzyl group, a phenyl group, and
may have a substituent selected from the group consisting of C 1 to C 3 alkylene sulfonic acid groups; (2) a secondary alcoholic OH directly bonded to the ring or a chain bonded to the secondary alcoholic OH; a heterocyclic secondary alcohol compound having a side chain and a heterocyclic ring selected from the group consisting of a piperidine ring, a morpholine ring, a piperazine ring, a pyrrolidine ring, an oxane ring, and a phthalimide ring, wherein the heterocyclic moiety of the compound is a C1 - C3 alkyl group,
It may have a substituent selected from the group consisting of a hydroxyl group and a C 1 -C 3 alkylene sulfone ring group. (3) Pyridine ring, pyrimidine ring, triazine ring,
A pentose derivative or deoxypentose derivative having a heterocycle selected from a purine ring and an 8-azapurine ring as a substituent, wherein the heterocyclic moiety of the derivative is a mercapto group, a halogen,
It may have a substituent selected from the group consisting of a hydroxyl group, a carboxyl group, an oxo group, an amino group, a C1 - C3 alkyl group, a methoxy group, an ethoxy group, a carboxymethyl group, an acetyl group, and an azoyl group. However, heterocyclic compounds having a sugar selected from the group consisting of adenosine, cytidine, uridine, guanosine and arabinocytidine are excluded, heterocyclic compounds having an alcoholic hydroxyl group selected from the group consisting of sphingophospholipid and heterocyclic Phospholipase D (hereinafter referred to as
The following formula () [Formula] wherein A and A' have the above meanings, and C is the alcohol shown in (1) to (3) above. The present invention relates to a method for producing a sphingophospholipid heterocyclic compound derivative represented by the following formula, which represents a residue obtained by removing the alcoholic hydroxyl group from a heterocyclic compound having an alcoholic hydroxyl group, and salts thereof. It has been known that phospholipase D catalyzes a reaction in which sphingophospholipid D hydrolyzes the choline base-phosphate ester of sphingophospholipids, such as sphingomyelin, to produce choline and N-acylsphingosine-1-phosphate. [FM Davidson, “Biochem, J.vol69, 458-466
(1958)” (cabbage phospholipase D); Y,
OKAWA et al. “J.Biochem., 78, 363-372 (1975)”
(Strepto-myces hachijoeusis phospholipase D)]. Furthermore, regarding glycerophospholipids, for example, lecithin and ethyl alcohol can be treated with phospholipase D.
It has been reported that when reacted in the presence of phospholipid, the ester bond between the phosphoric acid structure part of the phospholipid and the alcohol structure part of the phospholipid is hydrolyzed, and at the same time, phosphatidyl ethanol is produced by the phosphatidyl group transfer action. Publicly available [RM
Dawson; Biochem. J. 102, 205 (1967); Yaug;
J. Biol chem., 242, 477 (1967)]. Furthermore, British Patent No. 1581810 (corresponding to West German Publication No. 2717547), which uses the phospholipase D derived from cabbage to transfer the phospholipid group, describes a method for producing phospholipids.
has been proposed, but this only describes the generation of transfer derivatives by the action of phospholipase D between glycerophospholipids and chain primary alcohols with C5 or less; There is no description or suggestion of a transfer effect with alcohol. That is, according to this proposal, a glycerophospholipid represented by the general formula of this proposal and a primary having a straight chain or branched alkyl group up to C 5 which may be substituted with a hydroxyl group, halogen, amino or other substituent. It only discloses a primary alcohol transfer reaction with alcohol using the enzymatic action of the cabbage-derived phospholipase D, and there is no mention at all of sphingophospholipids whose nonpolar moiety structure is completely different from that of glycerinolipids. do not have. Only,
Robert J. CHALIFOUR et al. reported that they attempted to generate glycerol transfer by the action of phospholipase D using sphingomyelin as a substrate and glycerol as an acceptor alcohol, but it was not possible. (Can.J.Biochem., vol58, 1189 (1980)).
Conventionally, when sphingophospholipids are treated with phospholipase D in the presence of a compound having an alcoholic hydroxyl group, the ester bond between the phosphoric acid structure of the sphingophospholipid and the alcohol structure of the sphingophospholipid is hydrolyzed. At the same time, it was completely unknown that a new sphingophospholipid derivative different from the starting sphingophospholipid was produced by N-acylsphingosine-1-phosphoryl transfer. The present inventors have discovered the existence of a microorganism that has a phospholipase D production ability that differs from the conventionally known cabbage phospholipase D in terms of its optimum temperature, optimum pH, etc., and has already published JP-A No. 58-63388, Japanese Unexamined Patent Publication 1983-
Proposed in No. 67183. In this proposal, phospholipase D obtained from the phospholipase D-producing bacteria encapsulates primary alcohols with C5 or less, and further transfers phospholipids to a wide range of alcohol compounds that have never been mentioned before. It has been described that it has an effect. Among these, glycerin lipids and sphingophospholipids are described as phospholipids that serve as substrates, and heterocyclic primary alcohols are described as heterocyclic alcohols among alcohols in which rearrangement occurs.
The heterocycle of the heterocyclic primary alcohol includes a furan ring, a phthalimide ring, a pyrrole ring, an indole ring, a pyridine ring, a morpholine ring, a pyrimidine ring,
A piperazine ring and an imidazopyrimidine ring (purine ring) are described. However, some of the above proposals include tetrahydrofuran ring, dioxolane ring, thiophene ring, pyrrolidine ring, imidazole ring, imidazolidine ring, thioxazole ring, thiazole ring, pyran ring, oxane ring, thian ring, piperidine ring, triazine ring, and tetrahydrophthalimide ring. Heterocyclic primary alcohols and heterocyclic secondary alcohols having a ring, benzoxolane ring, or hexamethyleneimine ring are neither described nor suggested at all. Regarding the heterocyclic alcohols mentioned in the above proposal, there is no particular mention of the types of substituents, but only three types of heterocyclic primary alcohols having direct substituent groups are described: pyridoxine, thiamine, and adenosine. has been done. As a result of further research, the present inventors found that the phospholipase DM hydrolyzes the sphingophospholipid represented by the above formula (), and at the same time, the above (1), (2) and ( 3) We discovered a new fact that this transfer occurs to heterocyclic compounds having an alcoholic hydroxyl group selected from the group consisting of: According to the research of the present inventors, examples of sphingophospholipids include sphingomyelin and the heterocyclic primary alcohol N-(2-hydroxyethyl).
In the present invention, there is an enzyme newly called phospholipase DM that catalyzes the formation of a sphingophospholipid heterocyclic compound derivative with pyrrolidine, and in the presence of this phospholipase DM, the sphingophospholipid represented by the formula ( and the above (1)
It has been discovered that a new sphingophospholipid heterocyclic compound derivative, which was previously unknown to be able to be produced, can be produced by reacting with the heterocyclic compound having an alcoholic hydroxyl group (3). In this way, a new sphingoline can be produced by an enzymatic method in a one-step reaction, without the need for complicated and disadvantageous chemical synthesis means, under mild and easy conditions, and without the fear of side reactions. It was found that lipid heterocyclic compound derivatives can be produced in good yield. Therefore, an object of the present invention is to provide a new enzymatic method for producing sphingophospholipid heterocyclic compound derivatives. The above objects and many other objects and advantages of the present invention will become more apparent from the following description. The sphingophospholipid used in the method of the present invention is represented by the following formula (). [C] However, in the formula, A represents the following (i) or (ii) [C] or [C], where R represents a saturated or unsaturated C 12 to C 24 aliphatic hydrocarbon group, and A ' represents an oxide anion or a hydroxyl group, B
represents -( CH2 ) 2N + ( CH3 ), -( CH2 ) 2NH2 or -CH2.CH (OH) CH2 (OH). The atom sphingophospholipid of the formula () is a known compound and is available on the market, and can be extracted from natural products or synthesized by methods known per se. For example, sphingomyelin, ceramide phosphorylethanolamine, ceramide phosphorylglycerol, etc., which are extracted from animal, plant, and microbial tissues by known means, can be used alone or in mixtures, and can be used as they are or after being purified. Therefore, part or all of its structure can be chemically synthesized and utilized. Examples of the heterocyclic alcohols to be reacted with the raw material sphingophospholipid of formula () in the presence of phospholipase DM in the method of the present invention are listed below.
Heterocyclic compounds having an alcoholic hydroxyl group (1) to (3) can be used. (1) The following compounds can be mentioned as heterocyclic M-class alcohol compounds. A heterocyclic ring having a linear side chain bonded to a primary alcoholic OH and having the following heterocycles: tetrahydrofuran ring, dioxolane ring, thiophene ring, pyrrolidine ring, imidazole ring, imidazolidine ring, oxazole ring, thiazole ring, pyran ring, oxane ring, thiane ring. a heterocyclic primary alcohol compound residue having a heterocyclic ring selected from the group consisting of a ring, a piperidine ring, a triazine ring, a tetrahydrophthalimide ring, a benzoxolane ring, and a hexamethyleneimine ring, where the heterocyclic portion of the residue is Consisting of C 1 - C 3 alkyl group, C 1 - C 3 alkylene group, hydroxyl group, carboxyl group, carbonyl group, halogen, amino group, oxo group, benzyl group, phenyl group, and C 1 - C 3 alkylene sulfonic acid group It may have a substituent selected from the group; In the above, when there is no substituent, a thiophene ring, a pyrrolidine ring, an imidazole ring, a piperidine ring, a tetrahydrophthalimide ring, a benzoxolane ring and a hexamethyleneimine ring are used. Preferred examples include N-(2-hydroxyethyl)
Pyrrolidine, N-(2-hydroxyethyl)piperidine, 2-(2-hydroxyethyl)piperidine, 2-hydroxymethylpiperidine, 3-hydroxymethylpiperidine, N-(2-hydroxyethyl)hexamethyleneimine, 2-thiophene Methanol, 2-thiopheneethanol, N-hydroxymethyltetrahydrophthalimide, 4-
Examples include hydroxymethylimidazole and piperonyl alcohol. In the above, when the substituent has a C1 to C3 alkyl group, dioxolane ring, pyrrolidine ring, thiazole ring, oxazole ring, imidazole ring and imidazolidine ring are preferable, examples of which include N-methyl-2-hydroxy Ethylpyrrolidine, 2,2-dimethyl-1,3-dioxolane-4-methanol, 1-(hydroxymethyl)-
Examples include 5,5-dimethylhydantoin, 2,4-dimethyl-4-hydroxyoxazoline, and 5-(2-hydroxyethyl)-4-methylthiazole. When a C 1 to C 3 alkylene group is used as a substituent in the above, the alkylene group means a bond connecting two heterocycles, and a piperidine ring is preferable, and an example thereof is 1,3-bis(N- 2-hydroxyethyl-4-piperidyl)propane, 1-
(N-2-hydroxyethyl-4-piperidyl)-
Examples include 3-(4'-piperidyl)propane. When having a hydroxyl group as a substituent in the above, a piperidine ring, a tetrahydrofuran ring and an oxane ring are preferable, and examples thereof include N-(2
-hydroxyethyl)-4-(hydroxypropyl)piperidine, 5-thioglucose, kojic acid, ascorbic acid, isoascorbic acid, glucono-δ-lactone, galacno-γ-lactone,
Examples include α-glucoheptonic acid-γ-lactone. In the above, when having an oxo group as a substituent, a pyrrolidine ring is preferable, and examples thereof include N-(2-hydroxyethyl)-2-pyrrolidone,
Examples include N-(2-hydroxypropyl)-2-pyrrolidone. In the above, when having an amino group as a substituent, a pyrimidine ring is preferable, as an example,
Examples include toxopyrimidine. In the above, when a phenyl group is included as a substituent, a piperidine ring is preferable, and examples thereof include scopolamine and atropine. (2) The following compounds can be mentioned as heterocyclic secondary alcohol compounds. It has a secondary alcoholic OH directly bonded to the ring or a linear side chain bonded to the secondary alcoholic OH, and is selected from the group consisting of a piperidine ring, a morpholine ring, a piperazine ring, a pyrrolidine ring, an oxane ring, and a phthalimide ring. a heterocyclic secondary alcohol compound residue having a heterocyclic ring, where the heterocyclic portion of the residue is C 1 -
It may have substituents selected from the group consisting of C 3 alkyl groups, hydroxyl groups and C 1 to C 3 alkylene sulfonic acid groups: - a hetero with a secondary alcoholic OH directly bonded to the ring in the above The ring is preferably a piperidine ring or a pyrrolidine ring, examples of which include 3-hydroxypiperidine, 4-hydroxypiperidine, and 3-hydroxypyrrolidine. In the above, the heterocycle having a linear side chain bonded to the secondary alcoholic OH includes a phthaimide ring and a morpholine ring, and examples thereof include preferably N-(2-hydroxypropyl)phthalimide,
Examples include N-(2-hydroxypropyl)morpholine. In the above, when the substituent has a C1 to C3 alkyl group, a piperidine ring is preferable, and an example thereof is N-methyl-4-hydroxypiperidine. In the above, when a C 1 to C 3 alkylene sulfonic acid group is used as a substituent, a piperazine ring and a morpholine ring are preferable, examples of which include piperazine-N,N'-bis(2-hydroxypropane-3-sulfone ring). , 3-(N-morpholine)-2
-Hydroxypropanesulfonic acid, etc. (3) Examples of heterocyclic compounds with sugar include the following: A pentose residue or deoxypentose residue having as a substituent a heterocycle selected from a pyridine ring, a pyrimidine ring, a triazine ring, a purine ring, and an 8-azapurine ring, where the heterocyclic portion of the residue is a mercapto group, a halogen ,
It may have a substituent selected from the group consisting of hydroxyl group, carboxyl group, oxo group, amino group, C1 - C3 alkyl group, methoxy group, ethoxy group, carboxymethyl group, acetyl group, and anisoyl group. :1 In the above, examples of the pentose residue and deoxypentose residue having a pyridine ring as a substituent include 3-deazauridine. In the above, examples of the pentose residue and deoxypentose residue having a triazine ring as a substituent include 5-azacytidine. In the above, the pentose residue and deoxypentose residue having a pyrimidine ring as a substituent include 4-thiouridine, 5-bromouridine, 5-hydroxyuridine, 6-fluorodeoxyuridine, 3-methyluridine, and 5-carboxymethyluridine. , 5-methyluridine, N4
-acetylcytidine, 55-methoxyuridine, 5
-Bromo-2'-deoxycytidine, N4 -anisoyl-2'-deoxycytidine, 3'-O-methylcytidine, orotidine, cyclocytidine, thymine deoxyriboside, laucyl deoxyriboside,
Examples include cytosine deoxyriboside. In the above, the pentose residue and deoxypentose residue having a purine ring as a substituent include 6-mercaptoguanosine, 1-methyl-guanosine, xanthosine, 6-mercaptopurine riboside, 6-methylaminopurine-9-riboside, N 6 -methyl-2'-deoxyadenosine, 8
- promoadenosine, N 6 - ethanoadenosine,
2'-chloroadenosine, 1-methyladenosine,
Examples include N6 , N6 -dimethyladenosine, 2'-O-methyladenosine, inosine, guanine deoxyriboside, and adenine deoxyriboside. In the above, examples of the pentose residue and deoxypentose residue having an 8-azapurine ring as a substituent include 8-azaadenosine. Heterocyclic compounds having an alcoholic hydroxyl group selected from the above examples (1) to (3) can be exemplified, but as long as the above ranges (1) to (3) are met, the selection of alcohols is There are no restrictions. Heterocyclic compounds having an alcoholic hydroxyl group as exemplified above (1) to (3) can be used as natural products or synthetic products, but do not include heterocyclic compounds having an alcoholic hydroxyl group other than the target compound. Therefore, it is preferable to use it after purifying it in advance using an appropriate means. Examples of such purification means include distillation, recrystallization, column chromatography using alumina, silica gel activated carbon, ion exchange resin, etc., thin layer chromatography, and appropriate combinations of these. . According to the method of the present invention, a sphingophospholipid of the formula () as exemplified above is reacted with a heterocyclic compound having an alcoholic hydroxyl group selected from the groups (1) to (3) as exemplified above in the presence of phospholipase DM. let The phospholipase DM used at this time is:
It is distinguished from known phospholipase D by having an optimum temperature of 60 to 70°C and an optimum pH of around 7, compared to the conventional phospholipase D extracted from cabbage which has an optimum temperature of 40°C or less and an optimum pH of 5.4 to 5.6. An example of this is phospholipase DM produced by a phospholipase DM-producing bacterium that can produce N-acylsphingosine lipids.
Phospholipase DM with 1-phosphoryl transfer action
All can be used regardless of their origin. The phospholipase DM is distinguishable from the known phospholipase D in that it catalyzes the formation of a sphingophospholipid derivative of the formula () between a sphingophospholipid and N-(2-hydroxyethyl)pyrrolidine. Examples of such phospholipase DM-producing bacteria include Japanese Patent Application Laid-Open No. 1983-1999 filed by the same applicant.
Phospholipase DM belonging to the genus Nocardiopsis disclosed in No. 63388
For example, the producing bacteria include the genus Norcadeiopsis strain No. 779 [FERM-BP-512], and the phospholipase belonging to the genus Actinomadu-ra disclosed in Japanese Patent Application Laid-open No. 58-67183 filed by the same applicant. DM-producing bacteria such as Actinomadeura spp.
No. 362 strain [FERM-BP-511], etc., which uses the phospholipid of the above formula () as a raw material to carry out the transfer reaction of the heterocyclic compound having an alcoholic hydroxyl group of the above (1) to (3). Phospholipase D of any origin can be used as phospholipase DM as long as it has an action. Table 1 below shows the differences in enzymatic properties between the phospholipase DM used in the method of the present invention and the known phospholipase D, as well as the differences in optimum temperature and optimum PH, as well as some other differences. The enzymatic properties were measured by the methods described in the above-mentioned JP-A-58-63388 and JP-A-58-67183. [Table] Product names of Sunlight Co., Ltd.
The reason why a sphingophospholipid heterocyclic compound derivative that cannot be obtained using the known phospholipase D can be formed in the method of the present invention is due to the combination of the known phospholipase D, which is involved in this enzymatic catalytic reaction, and the phospholipase DM used in the method of the present invention. It is presumed that the difference in enzymatic properties as described above is involved. Of course, the method of the present invention is not subject to any restrictions based on the assumption of such effects. The phospholipase DM used in the method of the present invention is prepared by reacting, for example, N-(2-hydroxyethyl)pyrrolidine, a heterocyclic primary alcohol, with sphingoline in accordance with the experimental method for rearrangement action described below [method for confirming the formation of rearrangement products by TLC]. The heterocyclic compound derivative of the sphingophospholipid is formed by catalyzing a sphingophospholipid derivative formation reaction with the lipid sphingomyelin. Known cabbage phospholipase D does not form the above derivatives. According to the method of the present invention, the formula () as exemplified above
By reacting a sphingophospholipid with a heterocyclic compound having an alcoholic hydroxyl group as exemplified above (1) to (3) in the presence of the phospholipase DM detailed above, the following formula () is obtained. A sphingophospholipid heterocyclic compound derivative represented by the following formula, where A, A' and C have the same meanings as described above, can be produced. At this time, phospholipase DM does not need to be used as a purified product, and may be a crude product. Furthermore, it can also be used by being supported and fixed on a suitable immobilization carrier, such as various polymer resins such as polypropylene membranes, celite particles, glass beads, etc., or granular or film-like materials of inorganic materials. The reaction can be carried out by bringing the sphingophospholipid of formula () into contact with the heterocyclic compound having an alcoholic hydroxyl group (1) to (3) in the presence of phospholipase DM, preferably in the presence of a solvent. . Examples of the solvent to be used include aqueous solvents and mixed solvents of aqueous solvents and organic solvents. Further, some heterocyclic compounds having an alcoholic hydroxyl group can themselves serve as a solvent. Also, phospholipase
Solvents containing any other additives that do not inhibit the enzymatic catalytic action of DM can also be used, such as solvents containing suitable additives that promote this action or help stabilize the enzyme. . For example, aqueous solutions containing proteins such as albumin and casein, buffers such as acetic acid, citric acid, and phosphoric acid, neutral salts such as calcium chloride, and bile salts such as sodium taurocholate. It can be a solvent. Furthermore, examples of organic solvents include aliphatic hydrocarbons such as n-heptane, n-hexane, and isooctane; alicyclic hydrocarbons such as cyclopentane, cyclohexane, and cyclobutane; benzene, toluene, and xylene. Aromatic hydrocarbons such as acetone, methyl isopropyl ketone, etc.; ethers such as dimethyl ether, diethyl ether, diisopropyl ether, etc.; esters such as methyl acetate, ethyl acetate, etc.; carbon tetrachloride, chloroform, Examples include halogenated hydrocarbons such as methylene chloride; amide solvents such as dimethylformamide; and sulfoxide solvents such as dimethylsulfoxide. When using a mixed solvent of an aqueous solvent and an organic solvent, the mixing ratio of both can be selected appropriately, but for example, the ratio of aqueous solvent to organic solvent (V/V ratio)
A mixing ratio such as 100:0 to 1:99 can be exemplified. The reaction molar ratio, the amount of phospholipase DM used, the amount of solvent used, etc. can be selected as appropriate, but for example, the above (1)-(3) heterocycle having an alcoholic hydroxyl group is A reaction molar ratio of about 1:1 to about 1:1000 moles of compound may be exemplified. Additionally, phospholipase DM
Examples of the usage amount include about 10 to about 100,000 units, preferably about 100 to about 1,000 units per gram of the sphingophospholipid of formula (). Furthermore, the amount of solvent to be used is, for example, about 2
An example of usage is approximately 100 times the capacity. Since the reaction proceeds at room temperature, there is no particular need for cooling or heating, but cooling or heating conditions can be adopted as appropriate, if desired. for example,
Examples of reaction temperatures include about 0°C to about 90°C, preferably about 20°C to about 60°C. The reaction time can also be selected as appropriate, for example from about 1 minute to about 10 minutes.
Examples of reaction times include days, preferably from about 1 hour to 72 hours. If desired, the reaction time can be changed as appropriate by tracking the reaction progress using a technique such as TLC (thin layer chromatography) and confirming the formation of the desired target product. The mode of contacting the sphingophospholipid of formula () with the heterocyclic compound having an alcoholic hydroxyl group (1) to (3) in the presence of phospholipase DM can be selected as appropriate, but it is usually carried out under stirring or shaking conditions. It is. Furthermore, when reacting using a substrate that is susceptible to oxidative decomposition or a heterocyclic compound having an alcoholic hydroxyl group, it is desirable to carry out the reaction in a nitrogen stream or the like. In addition, when phospholipase DM is used in the form of an immobilized enzyme supported and immobilized on a suitable granular or film-like carrier as described above, for example, it can be transferred via an immobilized enzyme membrane or an immobilized enzyme particle layer. The reaction can be carried out in such a manner that the reaction composition liquid is passed through using a circulation pump. After carrying out the reaction as described above, the sphingophospholipid complex derivative of the formula () formed is precipitated and separated as it is or in the form of a salt. and can be used. In addition, as the salt of the formula () sphingophospholipid heterocyclic compound derivative here,
For example, salts with inorganic acids such as hydrochloric acid, hydrobromic acid, sulfuric acid, phosphoric acid, oxalic acid, maleic acid, lactic acid, tartaric acid,
Salts with organic acids such as fumaric acid, methanesulfonic acid, benvinsulfonic acid, and toluenesulfonic acid; salts with amino acids such as arginine, aspartic acid, and glutamic acid; salts with alkali metals such as sodium and potassium; magnesium and calcium. Examples include salts with alkali metals such as, ammonium salts, etc. Furthermore, the derivatives and their salts can be used in silicic acid column chromatography, alumina column chromatography, ion exchange chromatography, high performance liquid chromatography, countercurrent distribution,
Separation and purification can be carried out using appropriate known methods such as gel filtration and adsorption chromatography. According to the method of the present invention, as described above, the sphingophospholipid of the formula () and the heterocyclic compound having an alcoholic hydroxyl group of the above (1) to (3) are reacted in the presence of phospholipase DM, and the formula ( ) Sphingophospholipid complex derivatives can be produced. The resulting sphingophospholipid heterocyclic compound derivative of the formula () has excellent surfactant action and has a large effect on the permeability of cell membranes. In this sense, the derivatives of formula () can be used as liposome-forming base materials and liposome surface modification base materials, as well as as emulsifiers useful for skin physiology when incorporated into cosmetics such as creams and emulsions, and as emulsifiers for fatty drugs. It is useful for a wide range of emulsifier applications, including emulsifiers, insecticides, herbicides, etc. Furthermore, sphingophospholipids are important membrane components of plant cells and animal cells, and in animals, they are present in large amounts particularly in the brain and elongated tissues, as well as in organs and blood cells. The most abundant sphingophospholipid is sphingomyelin, and its derivatives include ceramide phosphorylethanolamine and ceramide 2-aminoethylphosphonate. Types of sphingophospholipids found in nature are still extremely rare. The physiological role of sphingophospholipids is thought to be involved in neurotransmission, but little has been elucidated in this field yet. Rather, its analogs, sphingoglycolipids, are known as various antigens or as receptors for bacterial toxins, interferons, hormones, etc. Recently, it has also been thought that it is involved in cell differentiation induction and proliferation. The sphingophospholipid heterocyclic compound derivatives of the formula () that can be derived in the present invention are novel sphingophospholipid derivatives having many different structures, and some of these sphingophospholipid analogs have effective effects as nervous system drugs. Derivatives can be expected. Furthermore, it is possible that some of these derivatives, especially sphingophospholipid analogues derived from sugar-bearing heterocycles, have the effect of promoting differentiation induction or promoting cell proliferation when used in cell culture. Possible gender. It is also conceivable that it may have the effect of inhibiting the progression of differentiation or canceration. Furthermore, by transferring a heterocyclic compound having a primary or secondary alcohol hydroxyl group or a heterocyclic pharmacologically active compound into which a primary or secondary alcohol hydroxyl group has been introduced to a sphingophospholipid, the pharmacological side effects of the compound may be weakened. Alternatively, it can be expected to enhance the pharmacological effect and reduce the dosage. Furthermore, the above-mentioned pharmacologically active compound may be transferred to sphingophospholipids, which may serve as a carrier for the pharmacologically active compound to accurately concentrate the compound in the affected area, and may also play a useful role as a protective group for the pharmacologically active compound. You can expect it. Furthermore, it is useful as an intermediate for chemical synthesis including various pharmaceuticals, and for example, derivatives obtained by transferring alcohols having highly reactive halogen or amino substituents can be used. Furthermore, tritium
By transferring a heterocyclic compound having an alcoholic hydroxyl group labeled with 14 C, a labeled sphingophospholipid heterocyclic compound derivative can be obtained, which can also be used to elucidate the metabolic pathway of sphingophospholipid. Hereinafter, several embodiments of carrying out the method of the present invention will be illustrated in more detail with reference to Examples. Reference Example 1 Preparation of phospholipase DM. Soy flour 3.0%, corn starch liquor 1.0
%, peptone 0.5%, powdered yeast extract 0.1%, glucose 1.0%, NH4NO3 0.25 %, K2HPO4 0.4 %,
MsSO 4・7H 2 O0.01%, Tween −85
A medium (PH6.0) consisting of approximately 0.1% was placed in a 30 jar fermentor, and after sterilization at 120°C for 15 minutes,
Seed culture solution 1.5 was inoculated and cultured at 27°C for 40 hours. In addition, the above seed culture solution contains 1% starch,
( NH4 ) H2PO4 0.25 %, peptone 0.25%,
Pour 100 ml of aqueous medium (PH6.8) containing 0.2% K 2 HPO 3 and 0.01% MgSO 4 7H 2 O into a 500 ml Sakaguchi flask, and after steam sterilization, Nocaldeiopsis sp. NO.779
Strain [FERM.BP512] or Actinomadeura sp.
A loopful of spores of the NO.362 strain [FERM・BP-511] was inoculated and cultured with shaking at a culture temperature of 30° C. and 120 rpm for 2 days. After culturing, the bacterial solids are removed by centrifugation,
Centrifugal supernatant 13 (Nocardiopsis FERM・
0.54u/ml when using BP-512; when using Actinomadeula sp. FERM/BP-511 strain
It was 1.7u/ml. ) was obtained. This centrifuged supernatant was
After cooling to °C, add acetone at -20 °C to collect phospholipase corresponding to the acetone concentration 30-70% fraction.
The precipitate containing DM was collected by centrifugation. This precipitate was collected from Nocardiopsis FERM・BP−.
When strain 512 was used, it was dissolved in Tris-maleic acid at pH 6.0, and when strain Actinomadeula FERM/BP-511 was used, it was dissolved in Tris-maleic acid at pH 6.5 and dialyzed against the same buffer at 0.02M. After that, it was equilibrated with the same buffer.
The DEAE-cellulose was passed through the column and the flow-through fraction was collected. Next, the method of Horiuchi et al. [J.Biochem. 81 , 1639
(1977)] was packed into a column, thoroughly washed with water, and the above DEAE-cellulose permeate was injected to adsorb the activity. this
After washing with 0.05M Tris-HCl buffer (PH7.2),
The same buffer containing 0.2% Triton X-100 was added to elute the activity. After collecting the active fraction and concentrating it using an ultrafiltration membrane (Type G-10T) manufactured by Bioengineering Co., Ltd., Toyopearl was used as a gel carrier.
Inject into HW-55F (manufactured by Toyo Soda Co., Ltd.) packed column,
Distilled water was used to pass through the column, and the active fraction was collected and freeze-dried. This dry powder was mixed with 0.025M imidazole in the case of Nocardiopsis phospholipase DM.
After dissolving in hydrochloric acid (PH7.4), add 0.025M Tris for Actinomadeula phospholipase DM.
After dissolving in acetic acid (PH8.3), use the polybuffer exchanger PBE TN 94 manufactured by Pharmacia Fine Chemicals.
(20 ml) was passed through a packed column to adsorb the activity, and then the pH
Eluted by gradient. Eluted phospholipase
The active fraction of DM is collected and concentrated using an ultrafiltration membrane.
The mixture was passed through a Sephadex G-75 packed column, and the phospholipase DM active fraction was collected and freeze-dried. Thus, Nocardiopsis phospholipase
In the case of DM, the specific activity is approximately 40%.
Phospholipase DM was recovered as 178.3 u/mg protein, with an activity recovery rate of about 43% in the case of Actimadeula phospholipase DM, and as specific activity 218.3 u/mg protein. Example 1 (Run No. 1 to No. 50) Sphingomyelin, derived from egg yolk (manufactured by Sigma)
and various types of heterocyclic alcohols shown in Table 2 below were reacted in the presence of phospholipase DM according to the method for confirming the formation of a transfer product by TLC described below, and the formation of a transfer product was confirmed. . That Rf
The values are shown in Table 2 below. Method for confirming the formation of transfer products by TLC: - The following composition: 1% sphingomyelin emulsion 0.1ml 0.2M acetate buffer (PH5.7), 0.1ml 1M calcium chloride aqueous solution 0.01ml 20% heterocyclic alcohol aqueous solution 0.2ml Add 0.01ml of phospholipase DM aqueous solution to the reaction solution.
(IU) was added and left at 30°C for 2 days. The above 1% sphingomyelin emulsion was prepared by adding 100 mg of sphingomyelin, 1 ml of diethyl ether-petroleum ether (1:1 V/V) and 10 ml of distilled water, and ultrasonicating at 600 W and 20 KHz for 5 minutes under ice-cooling conditions. It was formed by In addition, the above 20% heterocyclic alcohol aqueous solution may be diluted with 1N hydrochloric acid or 1N as necessary.
It was used after adjusting the pH to 6.0 with caustic soda. After the above-mentioned standing, 0.5 ml of 0.1N hydrochloric acid was added to stop the reaction, and the mixture was vigorously stirred to extract lipids (products).
This suspension was allowed to stand for several minutes, the lower chloroform layer was collected, dried under reduced pressure at 30°C, and then dissolved in 100% of a chloroform-methanol mixture (2:1 V/V) to be used as a TLC sample. did. Ten of these were spotted on a thin layer of silica gel (Merck, silica gel 60TLC plate, 20 x 20 cm), and chloroform-
Methanol-water (60:30:5V/V), chloroform-methanol-ammonia-water (50:20:1:
2V/V) or diisobutylketone-acetic acid-water (40:25:5V/V) as a developing solvent. The following reagents were used to detect spots. The substrate that was partially degraded at the detected spot and its hydrolyzate N-acylsphingosine-1-
If a spot of phospholipid other than phosphoric acid was detected, this was recognized as a transfer product. Table 2 shows the Rf values when chloroform-methanol-water (60:30:5V/V) was used as the developing solvent. (Run No. 1 to 50) Detection reagent: Phosphorus coloration: Zinzade reagent (Beiss UJ
Chromatog. 13 , 104, 1964) Color development of purines and pyrimidines: fluorescein-ammonia reagent (Wieland T. et al. Angew.
63, 511, 1951) Coloration of organic compounds: 50% sulfuric acid. [Table] [Table] Example 2 (Run No. 1 to No. 15) Sphingomyelin (derived from egg yolk, manufactured by Sigma)
500 mg, diethyl ether 1 ml, and distilled water 10 ml were placed in an ultrasonic cell, and sonicated at 600 W and 20 KHz for 5 minutes while cooling on ice to prepare an emulsion. 0.2ml of this sphingomyelin emulsion, 0.2ml of 0.2M acetate buffer (PH5.7), 0.1ml of 1M calcium chloride aqueous solution, 0.5ml of 20% N-(2-hydroxyethyl)pyrrolidine aqueous solution, and a test tube with a stopper. After adjusting the pH to 5.7, add 0.1 ml (20 U) of phospholipase DM aqueous solution, mix well, and heat at 30℃.
So I let it sit for 2 days. Next, add 2 0.1N hydrochloric acid to the reaction solution.
ml was added to stop the reaction, and then 10 ml of a chloroform-methanol mixture (2:1 V/V) was added and vigorously mixed to extract phospholipids. Add this mixture to 2000
After centrifugation at ×g for 10 minutes, the lower chloroform layer was separated, and the separated chloroform layer was further washed with 5 ml of water. From this mixture, separate the chloroform layer again by centrifugation, dry it under reduced pressure at 30°C, and then
of n-hexane-2-propanol-water (60:
80:14V/V) was dissolved in the mixed solution. 10ml of this sample was added to a thin layer of silica gel (Merck Silica Gel 60TLC).
Spot chloroform on a plate (20 x 20 cm).
When developed with a solvent system of methanol-water (60:30:5V/V), three types of phospholipids were detected, two of which were sphingomyelin, N-acylsphingosine-1-phosphate, and Rf values. matched. Therefore, this sample was separated and purified using high performance liquid chromatography. Column is radial pack cartridge silica 8
mm x 10cm, (manufactured by Waters), solvent: n-hexane-isopropanol-water (60:80:14V/
V), the peak was detected using a 441 type ultraviolet detector (manufactured by Wouters) at 214 nm, and
A model R401 differential spectrometer (manufactured by Waters) was used. The sample was divided into 5 injections of 0.1 ml each. With this solvent, N-acylsphingosine-1-phosphate, sphingomyelin, N-acylsphingosine-1-phosphate-N-(2-hydroxyethyl)
Three components of pyrrolidine ester were separated. The obtained N-acylsphingosine-1-phosphate-N-(2-hydroxyethyl)pyrrolidine ester was purified once again by the same operation to obtain 3 mg of purified product. This was confirmed to be single by TLC and high performance liquid chromatography. The IR spectrum of this compound was measured by the liquid film method using a JASCO Model A202 infrared spectrophotometer. The results are shown in Table 3 (Run No. 3). Furthermore, the rearrangement products of various heterocyclic alcohols shown in Table 3 were prepared in the same manner and their IR spectra were measured. The results are shown in Table 3. (Run 1~2, 4~
15) [Table] [Table] Example 3 (Run No. 1 to No. 2) Add 10 ml of 5% sphingomyelin emulsion prepared in the same manner as in Example 2 to 10 ml of 0.2 M acetate buffer (PH
5.7) and 1 ml of 1M calcium chloride aqueous solution were placed in an Erlenmeyer flask with a stopper, 5 g of ethanol hydrochloride was added, and 10 ml of phospholipase DM aqueous solution (20 U/ml) was added, and the flask was allowed to stand at 30°C for 2 days. After the above-mentioned standing, 1N hydrochloric acid was added to adjust the pH to 2.0 to stop the reaction, and 50 ml of a chloroform-methanol mixture (2:1 V/V) was added and vigorously stirred to extract the product. This mixture was centrifuged at 2000×g for 2 minutes, and the lower chloroform layer was separated. The fractionated extract was dried under reduced pressure at 30°C, and then 2 ml of n-hexane-2-propanol-water (60:80:
14V/V) was dissolved in a mixed solution. Hereinafter, N-acylsphingosine-1-phosphate ethanolamine ester was purified by the same operation as in Example 2, and the purified product was
Obtained 150 mg. 130 mg of purified N-acylsphingosine-1-phosphate glycerol ester was obtained by the same operation. Substrate obtained as above: N-acylsphingosine-1-phosphate ethanolamine ester, (ceramide phosphorylethanolamine) Substrate: N-acylsphingosine-1-phosphate glycerol ester (ceramide phosphorylglycerol) ) 0.2 ml of 5% emulsion of 20% N-(2-hydroxyethyl)-2 into separate stoppered test tubes.
−0.2 ml of pyrrolidone aqueous solution, 0.2 M acetate buffer (PH
5.7) Add 0.2ml of 1M calcium chloride aqueous solution to 0.1ml of phospholipase DM aqueous solution and adjust the pH to 5.7.
ml (20 U) was added and left to stand at 30°C for 2 days. This reaction solution was treated in the same manner as in Example 2, and the common rearrangement product, N-acylsphingosine-1, was
-Phosphate N-(2-hydroxyethyl)-2-pyrrolidone ester was obtained. Its IR spectrum is shown in Table 4. 【table】

Claims (1)

【特許請求の範囲】 1 下記式() 【式】 式中、Aは下記式(i)又は(ii) 【化】 又は 【化】 の基を示し、ここで、Rは飽和もしくは不飽和の
C12〜C24の脂肪族炭化水素基を示し、 A′はオキシドアニオン又は水酸基を示し、B
は−(CH22N+(CH33、−(CH22NH2 又は−CH2CH(OH)CH2(OH)を示す、 で表わされるスフインゴリン脂質を、下記(1)〜(3)
に示すアルコール性水酸基を有する複素環化合
物、すなわち、 (1) 一級アルコール性OHに結合した鎖状側鎖を
有し、且つテトラヒドロフラン環、ジオキソラ
ン環、チオフエン環、ピロリジン環、イミダゾ
ール環、イミダゾリジン環、オキサゾール環、
チアゾール環、ピラン環、オキサン環、チアン
環、ピペリジン環、トリアジン環、テトラヒド
ロフタルイミド環、ベンゾオキソラン環及びヘ
キサメチレンイミン環よりなる群からえらばれ
る複素環を持つ複素環一級アルコール化合物、
ここで、該化合物の複素環部分はC1〜C3アル
キル基、C1〜C3アルキレン基、水酸基、カル
ボキシル基、カルボニル基、ハロゲン、アミノ
基、オキソ基、ベンジル基、フエニル基及び
C1〜C3のアルキレンスルホン酸基より成る群
からえらばれる置換基を有していてもよい、 (2) 環に直接結合した二級アルコール性OHもし
くは二級アルコール性OHに結合した鎖状側鎖
を有し且つピペリジン環、モルホリン環、ピペ
ラジン環、ピロリジン環、オキサン環及びフタ
ルイミド環よりなる群からえらばれる複素環を
持つ複素環二級アルコール化合物、ここで、該
化合物の複素環部分はC1〜C3のアルキル基、
水酸基及びC1〜C3のアルキレンスルホン酸基
より成る群からえらばれる置換基を有してもよ
い、 (3) ピリジン環、ピリミジン環、トリアジン環、
プリン環及び8−アザプリン環からえらばれる
複素環を置換基として有するペントース誘導体
又はデオキシペントース誘導体、ここで、該誘
導体の複素環部分はメルカプト基、ハロゲン、
水酸基、カルボキシル基、オキソ基、アミノ
基、C1〜C3のアルキル基、メトキシ基、エト
キシ基、カルボキシメチル基、アセチル基及び
アニソイル基よりなる群からえらばれる置換基
を有してもよい、ただし、アデノシン、シチジ
ン、ウリジン、グアノシン及びアラビノシチジ
ンより成る群からえらばれる糖を持つ複素環化
合物を除外する、より成る群からえらばれるア
ルコール性水酸基を有する複素環化合物と、ス
フインゴリン脂質と複素環アルコールとの間の
転移反応を触媒しうる、非イオン性界面活性剤
ポリオキシエチレン(10)オクチルフエニルエーテ
ルによつて賦活されるホスホリパーゼDの存在
下で反応させることを特徴とする下記式() 【式】 式中、AおよびA′は上記の意味を有し、C
は上記(1)〜(3)に示すアルコール性水酸基を有す
る複素環化合物から該アルコール性水酸基を除
いた残基を示す、 で表わされるスフインゴリン脂質複素環化合物誘
導体及びその塩基の製法。
[Claims] 1 The following formula () [Formula] In the formula, A represents a group of the following formula (i) or (ii) [Chemical formula] or [Chemical formula], where R is a saturated or unsaturated group.
represents a C12 to C24 aliphatic hydrocarbon group, A' represents an oxide anion or a hydroxyl group, and B
represents −(CH 2 ) 2 N+(CH 3 ) 3 , −(CH 2 ) 2 NH 2 or −CH 2 CH(OH)CH 2 (OH). (3)
A heterocyclic compound having an alcoholic hydroxyl group shown in (1) having a chain side chain bonded to a primary alcoholic OH, and having a tetrahydrofuran ring, a dioxolane ring, a thiophene ring, a pyrrolidine ring, an imidazole ring, an imidazolidine ring , oxazole ring,
a heterocyclic primary alcohol compound having a heterocycle selected from the group consisting of a thiazole ring, a pyran ring, an oxane ring, a thian ring, a piperidine ring, a triazine ring, a tetrahydrophthalimide ring, a benzoxolane ring and a hexamethyleneimine ring;
Here, the heterocyclic moiety of the compound is a C1 - C3 alkyl group, a C1 - C3 alkylene group, a hydroxyl group, a carboxyl group, a carbonyl group, a halogen, an amino group, an oxo group, a benzyl group, a phenyl group, and
may have a substituent selected from the group consisting of C 1 to C 3 alkylene sulfonic acid groups; (2) a secondary alcoholic OH directly bonded to the ring or a chain bonded to the secondary alcoholic OH; A heterocyclic secondary alcohol compound having a side chain and a heterocycle selected from the group consisting of a piperidine ring, a morpholine ring, a piperazine ring, a pyrrolidine ring, an oxane ring, and a phthalimide ring, wherein the heterocyclic moiety of the compound is C1 - C3 alkyl group,
(3) a pyridine ring, a pyrimidine ring, a triazine ring, which may have a substituent selected from the group consisting of a hydroxyl group and a C 1 to C 3 alkylene sulfonic acid group;
A pentose derivative or deoxypentose derivative having a heterocycle selected from a purine ring and an 8-azapurine ring as a substituent, wherein the heterocyclic moiety of the derivative is a mercapto group, a halogen,
It may have a substituent selected from the group consisting of hydroxyl group, carboxyl group, oxo group, amino group, C1 - C3 alkyl group, methoxy group, ethoxy group, carboxymethyl group, acetyl group and anisoyl group, However, heterocyclic compounds having a sugar selected from the group consisting of adenosine, cytidine, uridine, guanosine and arabinocytidine are excluded, heterocyclic compounds having an alcoholic hydroxyl group selected from the group consisting of sphingophospholipid and heterocyclic The following formula is characterized in that the reaction is carried out in the presence of phospholipase D activated by the nonionic surfactant polyoxyethylene (10) octyl phenyl ether, which can catalyze the transfer reaction between alcohol and alcohol. ) [Formula] In the formula, A and A' have the above meanings, and C
represents a residue obtained by removing the alcoholic hydroxyl group from the alcoholic hydroxyl group-containing heterocyclic compound shown in (1) to (3) above, and a method for producing a sphingophospholipid heterocyclic compound derivative and its base.
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