JPH05507414A - Method for producing human monoclonal antibodies with high antigen-specific affinity - Google Patents

Method for producing human monoclonal antibodies with high antigen-specific affinity

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JPH05507414A
JPH05507414A JP91512269A JP51226991A JPH05507414A JP H05507414 A JPH05507414 A JP H05507414A JP 91512269 A JP91512269 A JP 91512269A JP 51226991 A JP51226991 A JP 51226991A JP H05507414 A JPH05507414 A JP H05507414A
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Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるため要約のデータは記録されません。 (57) [Summary] This bulletin contains application data before electronic filing, so abstract data is not recorded.

Description

【発明の詳細な説明】 抗原特異的な高い親和力を有するヒトモノクローナル抗体の製造方法参 照 本出願は、1990年5月22日出願の米国特許出願第071527.203号 の35 U、S、C,120/121に基づ(継続出願である。[Detailed description of the invention] See method for producing human monoclonal antibodies with high antigen-specific affinity This application is filed in U.S. Patent Application No. 071,527.203, filed May 22, 1990. 35 U, S, C, 120/121 (continuation application).

承 認 本発明は、国立衛生研究所(NIH)からの譲渡という形式で米国政府の支持の 下になされた発明である。政府は本発明について特定の権原を有している。Approval This invention was made with support from the United States Government in the form of an assignment from the National Institutes of Health (NIH). This invention was made below. The Government has certain rights in this invention.

発明の分野 本発明はバイオテクノロジーの分野に属しており、より詳細に説明すれば、本発 明は、臨床応用に適した有用な親和力を備えている抗原特異的なIgG及びIg Mヒトモノクローナル抗体が得られるなどの特定の性質を有しているヒトリンパ 球(リンパ細胞)をインビトロにおいて製造及び培養するための新規な方法に関 する。field of invention The present invention belongs to the field of biotechnology, and more specifically, the present invention belongs to the field of biotechnology. Antigen-specific IgG and Ig with useful affinity suitable for clinical applications Human lymph that has specific properties such as the ability to obtain human monoclonal antibodies Concerning a new method for producing and culturing lymphocytes (lymphocytes) in vitro. do.

発明の背景 多くの研究活動は、医薬の分野にて明らかに産業として利用できるモノクローナ ル抗体を製造する努力に向かっている。ケーラー(Kehler)及びミルスタ イン(Milstein)は、体細胞ハイブリダイゼーション法によって特異的 なモノクローナル抗体を製造し、その先駆者となった[Nature 356. 495(1976)]。この手法は、特定の抗原に対して生体内にて免疫したリ ンパ球を骨髄腫細胞などの融合相手と融合させることを包含する。次いで、融合 した細胞を選択培地において生育させる。Background of the invention Much of the research work is focused on monoclonal monoclonals, which have obvious industrial applications in the pharmaceutical field. Efforts are underway to produce such antibodies. Kehler and Milsta In (Milstein) specific He produced monoclonal antibodies and became a pioneer [Nature 356. 495 (1976)]. This method uses a human body that has been immunized in vivo against a specific antigen. It involves fusing lymphocytes with fusion partners such as myeloma cells. Then fusion The cells are grown in selective media.

生存しているハイブリドーマを所望のモノクローナル抗体の産生について検定し 、選択した陽性のものをサブクローンし、発育させ、凍結する。Surviving hybridomas are assayed for production of the desired monoclonal antibody. , subclone selected positives, grow and freeze.

初期の研究は生体内の免疫に指向し、そのための努力が続けられていた。免疫応 答をインビトロにて誘導するための再現方法が利用できるようになっていたなら 、モノクローナル抗体を生産するための努力は実質的により少ないものになった と期待されるであろう。従って、インビトロ免疫の研究が追及された。Early research focused on in vivo immunity, and efforts in that direction continued. immune response If a reproduction method had been available to induce the answer in vitro. , the effort to produce monoclonal antibodies became substantially less That would be expected. Therefore, in vitro immunization studies were pursued.

組織異種発生性マウスリンパ球を同時培養することによる混合リンパ球培養(M LC)の使用を報告したのは、スウェーデンにおけるランド大学のポルベック[ B。Mixed lymphocyte culture (M Polbeck of RAND University in Sweden reported the use of B.

rrebaeck]とその共同研究者が最初であると考えられる。最初の報告で は、彼らは細胞凝集を防止するような方法て培養した。Borrebaeckの 5cand、 J、 Immunol、 18゜9(1983)を参照のこと。Rrebaeck] and his collaborators are believed to have been the first. in the first report They were cultured in such a way as to prevent cell aggregation. Borrebaeck's See 5cand, J. Immunol, 18°9 (1983).

その後の報告では、彼らは、上記の混合リンパ球培養から誘導されたB細胞の増 殖因子及び分化因子のための要件の分析にその研究を広げた。ここでも、彼らは 組織異種発生性マウスの膵臓組織から入手したリンパ球を用いて研究を行った。In a subsequent report, they described the expansion of B cells derived from the mixed lymphocyte cultures described above. The research was extended to the analysis of the requirements for growth and differentiation factors. Again, they Studies were performed using lymphocytes obtained from pancreatic tissue of tissue-xenogeneic mice.

彼らがどのようにして膵臓組織を調製したかは正確には定かでないが、彼らは非 接着細胞の除去と結合細胞の回収とを報告している。彼らはまた、MLCリンパ 球に誘導リンホカインを加えることの重要性を報告し、これらがその研究に使用 した調製物であることを報告している。彼らは、リンホカインなどの増殖因子の 助けが無ければ、有意な抗原特異的な免疫応答はインビトロ免疫によって記録さ れ得ないであろうと報告している。It is unclear exactly how they prepared the pancreatic tissue, but they reported removal of adherent cells and recovery of bound cells. They also have MLC lymph We report the importance of adding inducible lymphokines to the globules and these are used in that study. It has been reported that the preparation was They are linked to growth factors such as lymphokines. Without help, no significant antigen-specific immune response was recorded by in vitro immunization. It is reported that it will not be possible.

米国特許第4661586号及び第4816249号は比較的最近のこの分野の 文献であるが、これらは実施例として免疫したマウスの膵臓細胞を使用し、次い てそれを不滅の系統と融合することに限られている。U.S. Pat. Nos. 4,661,586 and 4,816,249 are relatively recent additions to this field. These documents use immunized mouse pancreatic cells as an example, and then limited to merging it with the immortal lineage.

これらのケーラーとミルスタイン法及びインビトロ免疫法は、薩歯目動物起源の リンパ球を使用するものであった。このような非ヒトモノクローナル抗体の使用 は、薩歯目動物の抗体がヒト宿主にとって外来性であり、従って宿主の免疫応答 及びその後の治療効果の減少を誘起させかねないと予期される点から、ヒトの臨 床応用の場では最適でない。These Köhler and Milstein methods and in vitro immunization methods are It used lymphocytes. Use of such non-human monoclonal antibodies The reason is that the antibodies of the Sectoptera are foreign to the human host and therefore interfere with the host's immune response. However, since it is expected that it may induce a decrease in the subsequent therapeutic effect, Not optimal for floor applications.

従って、研究の努力は、ヒトモノクローナル抗体を製造することにも向けられて いた。しかし、ヒト細胞はインビトロにて培養するのが困難である。Larri ck6年の概論が提示されている。ジェームス(James)らのJ、 Imm un、 Methods 100.5(1987)も参照のこと。この評論文献 は、ヒトモノクローナル抗体が薩歯目動物のモノクローナル抗体の効能を有する 代替物であり得るか否かについて考察することによって(このことは、臨床上有 用である純粋な形態にあるこのようなヒトモノクローナル抗体の入手可能性の容 易さに大きく依存するが)、特異抗原に対して効果的に免疫されたヒト細胞を安 定な培養物として維持させるという問題が主要な障害であると、結論付けた。Therefore, research efforts are also being directed towards producing human monoclonal antibodies. there was. However, human cells are difficult to culture in vitro. Larri An overview of ck6 is presented. James et al., J.Imm. See also Un, Methods 100.5 (1987). This review literature shows that human monoclonal antibodies have the efficacy of monoclonal antibodies from Sectarian animals. By considering whether there are possible substitutes (this may be clinically relevant) The availability of such human monoclonal antibodies in pure form for (depending largely on ease of use) to stabilize human cells effectively immunized against specific antigens. It was concluded that the problem of maintaining a stable culture was the main obstacle.

CroceらのNature 288.488(1980)及び01.son及 びKaplanのPNAS 77.5429(1980)はA Kohler及びMflstein法をヒト細胞に適用することについて報告し た。欧州特許出願公開第44722号及び米国特許第4668629号も参照の こと。これらの文献には、インビボ又はインビトロ免疫のいずれかにおいて膵臓 細胞を調製するだめの別の方法が開示されている。しかし、その実験データは、 接着細胞を明らかに除去し、フィコール−ハイバーク(Ficoll−取paq ue)遠心によって膵臓組織を調製するために準備されたものであり、またリン パ球単核細胞懸濁物の産物が特異的なヒト骨髄腫セルラインと融合された。Croce et al., Nature 288.488 (1980) and 01. son and son and Kaplan's PNAS 77.5429 (1980) are A We report on the application of the Kohler and Mflstein method to human cells. Ta. See also European Patent Application No. 44722 and US Pat. No. 4,668,629. thing. These documents include studies on pancreatic cancer either in vivo or in vitro immunization. Another method for preparing cells is disclosed. However, the experimental data Adherent cells were clearly removed and Ficoll-Hiberk ue) prepared for preparing pancreatic tissue by centrifugation and The product of a Palytic mononuclear cell suspension was fused with a specific human myeloma cell line.

同様の操作がLarrickらの米国特許第4624921号に開示されている 。末梢血リンパ球のフィコール調製物も使用し、リンパ球をエプスタイン−パー ルウィルス(EBV)で形質転換している欧州特許出願公開番号第157574 号も参照のこと。ここでは、多くの先行研究者によって継続的に増殖できる細胞 を調製するよう意図された手段が記載されているが、この手段は比較的短い時間 で免疫グロブリン(Ig)の分泌能を喪失させることが多い。欧州特許出願公開 第62409号は、より特異的な方法によるハイブリドーマの調製において融合 相手として機能できるヒトリンパ芽球腫セルラインを開示している。A similar operation is disclosed in U.S. Pat. No. 4,624,921 to Larrick et al. . A Ficoll preparation of peripheral blood lymphocytes was also used, and lymphocytes were European Patent Application Publication No. 157574 See also issue. Here, many previous researchers have demonstrated that cells that can continuously proliferate A method has been described that is intended to prepare In many cases, the ability to secrete immunoglobulin (Ig) is lost. European patent application publication No. 62409, fusion in the preparation of hybridomas by a more specific method. Discloses a human lymphoblastoma cell line that can serve as a partner.

米国特許第44.51570号も同様に、ヒトモノクローナル抗体を調製するた めのヒトセルラインの使用を開示しているが、フィコール法によりリンパ細胞を 融合し、調製するために非接着リンパ様細胞培養物を使用する点を、強調してい る。US Pat. No. 44,51570 also describes the preparation of human monoclonal antibodies. discloses the use of a human cell line of We emphasize the use of non-adherent lymphoid cell cultures to prepare and fuse Ru.

欧州特許出願公開第0162918号に対応する特許出願WO85102413 は、フイニ7−・ルーハイバーク勾配によって分離した末梢血リンパ細胞(PB L)を使用し、ヒトRh (D)抗原に特異的であるヒトモノクローナル抗体を 調製することを報告し、でいる。欧州特許出願公開第1.74204号も参照の こと。Patent application WO85102413 corresponding to European Patent Application Publication No. 0162918 Peripheral blood lymphocytes (PB L) and a human monoclonal antibody specific for the human Rh (D) antigen. Report that it will be prepared. See also European Patent Application No. 1.74204 thing.

欧州特許出願第292965号は、エプスタイン−バールウィルスで形質転換し たヒトリンパ芽球腫Bセルライン融合物から内生IgM抗体を40%g1mlu 下で分泌する、安定であり継続的なヒトセルラインの調製を報告している。European Patent Application No. 292965 is based on Epstein-Barr virus transformed 40% g/mlu of endogenous IgM antibody from a human lymphoblastoma B cell line fusion. report the preparation of a stable and continuous human cell line that secretes under

ヤマウラらの1. Immunol、 Methods 84.105(198 5)は、igM及びIgGの両者のモノクローナル抗体産生と組み合わされた膵 臓細胞の初代免疫を報告している。彼らは、抗原特異的なクローンの拡大、同位 体スイッチング及びその後のハイブリドーマ産生のためにはERV形質転換工程 が必須であると述べている。1 of Yamaura et al. Immunol, Methods 84.105 (198 5) Pancreatic stimulation combined with both igM and IgG monoclonal antibody production reported primary immunization of visceral cells. They are antigen-specific clonal expansions, isotopic ERV transformation step for body switching and subsequent hybridoma production states that it is essential.

関連した系のためには次ぎに記載する文献にも留意すればよい二BoらのJ、  ImmuTechnol、og)・、エルセ・イー・サイエンス出版社、アムス テルダム、 1988.277頁。For related systems, you may also take note of the following references: Bo et al., J. ImmuTechnol, og), Else E Science Publishing, AMS Terdam, 1988. 277 pages.

5trike+;の報告では、扁桃リンパ細胞の同種培養の免疫が使用されてい る。In the report of 5trike+, immunization of allogeneic cultures of tonsil lymph cells was used. Ru.

BorrelyaeckらのPNAS F3F4.3995(198g)は後に 、T細胞依存抗原に対し、てインビトロ免疫し5た末梢血リンパ細胞からヒトモ ノ゛り[1−ナル抗体を製造するためのヒ)・〜ヒトバイブ+1ドーマの調製を 報告り、ている。ここでも、そのインビトロ免疫には既知の種々の増殖及び分化 因子による助けが必要であった。さらに、関連PB本発明の結果とは対照的に、 Banchereauらの5cience 251.70(1991)では、リ ンパ細胞は約10週後に死亡した。Borrelyaeck et al.'s PNAS F3F4.3995 (198g) was later human cells from peripheral blood lymphocytes immunized in vitro against T cell-dependent antigens. Preparation of Human Vibe + 1 Doma I'm reporting it. Again, the in vitro immunization involves various known proliferation and differentiation techniques. Help from factors was needed. Furthermore, in contrast to the results of the related PB invention, Banchereau et al., 5science 251.70 (1991), The lymphocytes died after about 10 weeks.

最後に、本出願の共同発明者は、本発明に至るまでの研究について、ある予備的 な知見を開示している。この予備的な知見は1988年4月23日から30日に 開かれた会合にて出版され、次いでHuman Tumor Antigens  and 5pecific Tum。Finally, the co-inventors of this application would like to share some preliminary information regarding the research leading up to the present invention. We are disclosing our knowledge. This preliminary finding was made between April 23 and 30, 1988. It was published at a meeting held and then Human Tumor Antigens and 5 specific Tum.

r Therapy、 Alan R,Li5s、二、−ヨーク、ニューヨーク (1,989)、 147頁にて1989年の初めに再版された。ここに記載さ れた状況は、おそらくは今では必須であることが知られているものの1つである 接着細胞を枯渇させてしまったために、高い親和力の抗原特異的な升ツノローナ ル抗体を製造するのに十分でなか−)たのであろう。r Therapy, Alan R, Li5s, 2 - York, New York (1,989), reprinted in early 1989, p. 147. listed here This situation is probably one of those now known to be essential. Due to the depletion of adherent cells, high affinity antigen-specific It is likely that there were not enough antibodies to produce the necessary antibodies.

これらの知見が開示されて以来、本発明者らは研究を大幅に広げ、ここに、ヒト 抗原などの特異的抗原に対する有用な親和力を有するヒトモノクローナル抗体抗 体を製造する。二とのできる方法であって、本発明の対象である発明を完成する に至った。モノクローナル抗体の中で有効なものは、初代インビトロ免疫によっ ては頻繁に得られない抗体クラスのIgGである。本発明は、特定の疾患症状に 特異的である抗原に対する検定又は(ヒトの)処置のために臨床的に使用するの に適した、安定であり、かつ効能を有するモノクローナル抗体を充分な量で生産 するための主要な工程に当たると考えられる。Since the disclosure of these findings, we have significantly expanded our research and hereby present Human monoclonal antibodies with useful affinity for specific antigens such as antigens Manufacture the body. A method for completing the invention that is the subject of the present invention reached. Among monoclonal antibodies, those that are effective are IgG is an antibody class that is not frequently obtained. The present invention aims to treat specific disease symptoms. Used clinically for assays or (human) treatments against specific antigens. Producing sufficient quantities of stable and efficacious monoclonal antibodies suitable for This is considered to be the main process for achieving this goal.

本発明の要旨 本発明は、必須の数の自己由来の接着細胞などの補助細胞を存している、リンパ 組織から得られるヒトリンパ細胞を含有するインビトロ培養を提供するものであ る。こわらのリンパ細胞は特異抗原に対してインビトロにて免疫する。より具体 的には、リンパ細胞調製及び培養の条件は、不滅化後に得られるモノクローナル 抗体が特異抗原に対する有用な親和力、即ち1モル当たり少なくとも約5×10 7リソトル[CがIL(リットル)当たりの濃度又はM(モル)である場合の1 7Cに等しい親和定数にという表現法]を有しているIgG、の有効な数を包含 するようなものである。この系によれば、抗原特異的な抗体の調製のために必須 であると従来報告されてきた種々の増殖因子又は他の因子の添加を必要とするこ となく、有効な数のモノクローナル抗体が得られる。本発明の特定の態様は、同 種リンパ細胞、即ち例えば組織不適合な個体から採取した膵臓細胞を同時培養す ることを包含する。Summary of the invention The present invention provides that lymph nodes that contain a requisite number of auxiliary cells, such as autologous adherent cells, Provides an in vitro culture containing human lymphocytes obtained from tissues. Ru. Stiff lymphocytes are immunized against specific antigens in vitro. more specific Generally speaking, the lymphocyte preparation and culture conditions are suitable for monoclonal cells obtained after immortalization. If the antibody has a useful affinity for a specific antigen, i.e. at least about 5 x 10 7 lysotole [1 where C is the concentration per IL (liter) or M (mol) includes a valid number of IgGs, with an affinity constant equal to 7C. It's like doing. According to this system, essential for the preparation of antigen-specific antibodies Requiring the addition of various growth factors or other factors that have been previously reported to be Therefore, an effective number of monoclonal antibodies can be obtained. Certain aspects of the invention include Seed lymphocytes, i.e. pancreatic cells harvested from, for example, histocompatible individuals, are co-cultivated. It encompasses things.

本発明は、具体的には上記のリンパ細胞の調製法、得られる培養物自身、及び必 須成分、及び例えば不滅融合相手との融合又は組換えDNAによって調製される 抗原特異的なモノクローナル抗体を産生ずる安定な継続的セルラインの調製方法 などの、あらゆる場合におけるこのようなリンパ細胞調製及び培養方法を目的と するものである。例えば、セルラインは、所望の抗体の可変領域をコードしてい るDNAによって機能的にトランスフェクトすることができる。本発明はまた、 このような安定な継続ラインから産生されるヒトモノクローナル抗体及び、同種 膵臓リンパ細胞を同時培養するなどによるこのような抗原特異的なモノクローナ ル抗体を調製するための方法をも目的とする。The present invention specifically relates to the above-mentioned method for preparing lymphocytes, the resulting culture itself, and the necessary components and, for example, by fusion with an immortal fusion partner or by recombinant DNA. Method for preparing stable continuous cell lines that produce antigen-specific monoclonal antibodies For the purpose of such lymph cell preparation and culture methods in all cases, such as It is something to do. For example, the cell line encodes the variable region of the desired antibody. can be functionally transfected with DNA. The present invention also provides Human monoclonal antibodies produced from such stable continuous lines and allogeneic such antigen-specific monoclonal cells, such as by co-culturing pancreatic lymphoid cells. A method for preparing such antibodies is also contemplated.

さらに本発明は、本明細書に記載するようにして得られる、細胞の発育を調節で きる物質と結合された抗体又はレポーター分子を有する抗体をも目的とする。Furthermore, the present invention provides methods for regulating cell development, obtained as described herein. Also of interest are antibodies conjugated to substances capable of binding or having a reporter molecule.

前者の場合、例えば腫瘍抗原による免疫によって誘導された本発明モノクローナ ル抗体は腫瘍細胞レセプターに部位特異的に指向させることにより、腫瘍細胞を 死滅させ、又はその発育を阻止することができる物質で腫瘍細胞を処置するのに 有用である。同様に、本発明のモノクローナル抗体をレポーター分子と結合させ た場合、それは、疾患症状に特異的な抗原を産生する細胞の存在を同定するため の診断手段として利用することができよう。In the former case, for example, monoclonal clones of the present invention induced by immunization with tumor antigens Antibodies target tumor cells by site-specifically targeting tumor cell receptors. To treat tumor cells with substances that can kill them or prevent their development Useful. Similarly, a monoclonal antibody of the invention can be coupled to a reporter molecule. in order to identify the presence of cells that produce antigens specific to disease symptoms. It could be used as a diagnostic tool.

リンパ細胞を調製するための3つの特定の手段を使用することにより、本発明を 支持する最小限の数の補助細胞が得られることが見いだされた。1つの手段は、 リンパ細胞を嵐離するために普通に利用されている方法であるフィコール処置を 行わず、その代わりに赤血球細胞の低浸透圧的な細胞溶解を利用すること、例え ば塩化ア〉モニウムの使用である。第2の手段は、室温インキュベーションを最 小限にすることにより調製時の接着性補助細胞の損失を減少させて、暴露された 血管表面に対する細胞結合に資する条件を最小限にすることである。第3の手段 は、凍結前に最終的な細胞懸濁液中にリンパ組織の小さな断片を保持させ、及び /又は添加することである。以下で詳細に説明するこれらの有益な手段及びその 類似手段は、本発明を説明する可能な方法である。By using three specific means for preparing lymphocytes, the present invention It has been found that a minimal number of supporting accessory cells can be obtained. One means is Ficoll treatment, a commonly used method to detach lymphatic cells, and instead use hypotonic cell lysis of red blood cells, e.g. An example is the use of ammonium chloride. The second method is to optimize room temperature incubation. Reduce the loss of adherent accessory cells during preparation by minimizing the exposed The goal is to minimize conditions conducive to cell attachment to the vascular surface. Third means allow small pieces of lymphoid tissue to be retained in the final cell suspension before freezing, and /or addition. These useful measures and their Analogous means is a possible way to explain the invention.

ここに説明している本発明を以下の事項によってさらに詳細に特性化する:1記 載している方法は、インビトロにおけるヒトリンパ細胞による初代免疫応答を助 けるものである。新しい局面は、特異的な免疫応答の基礎となる条件が抗原誘発 性のIgG−及びIgM−分泌性B細胞を発達させるのに役立つことである。2 ゜この方法は良好な条件下にてヒトリンパ細胞に適用した場合、ヒト及び外来抗 原に対するヒトの免疫応答を発達させるのに役立つ。31本明細書に記載のプロ トコールに従って免疫及び融合したヒトリンパ細胞は、インビトロ免疫ヒトリン パ細胞について従来報告されていたものよりも5−10倍高い頻度(#産生され る雑種/100万の融合されたリンパ細胞)で雑種クローンを産生ずることがで きる。産生されるハイブリドーマのうち最低的3から10%は抗原の性質に応じ て抗原反応性である。産生される抗原反応性モノクローナル抗体のうち約20− 90%はIgGであった。The invention described herein is further characterized by the following: The methods described support primary immune responses by human lymphocytes in vitro. It is something that can be done. A new aspect is that the conditions underlying a specific immune response are antigen-induced. IgG- and IgM-secreting B cells. 2 ゜This method, when applied to human lymphocytes under favorable conditions, is effective against human and foreign antibodies. helps develop a human's immune response to the antigen. 31 Pros described herein Human lymphocytes immunized and fused according to the protocol are in vitro immunized with human lymphocytes. 5-10 times higher frequency (# produced) than previously reported for (1 million fused lymphocytes) can produce hybrid clones. Wear. A minimum of 3 to 10% of the hybridomas produced depend on the nature of the antigen. It is antigen-reactive. Of the antigen-reactive monoclonal antibodies produced, approximately 20- 90% was IgG.

従って、本発明の手法に従えば、ヒトリンパ細胞の培養に接着細胞などの補助細 胞を確かに高い数で存在させる手法を使用するよう努力をするのは明らかである 。このような成功を収める手法又は本明細書にて詳細に説明するその同等な手法 の最終目的は、抗原特異的であり、かつ1モル当たり少なくとも約5X107リ ツトルのオーダーの有用な親和力を有し、IgGクラスの有効な数を有している モノクローナル抗体を生産することである。この最終目的は、当業者に既知の手 法、例えば競合ELISA検定によって測定される。Therefore, according to the method of the present invention, auxiliary cells such as adherent cells can be added to the culture of human lymphocytes. It is clear that efforts should be made to use methods that ensure the presence of high numbers of cells. . Such successful methods or equivalent methods described in detail herein. The ultimate goal is to be antigen-specific and to contain at least about 5 It has a useful affinity of the order of Tutle and has an effective number of IgG classes. The goal is to produce monoclonal antibodies. This end goal can be achieved by means known to those skilled in the art. eg a competitive ELISA assay.

培養懸濁液中に多くの補助細胞、例えば接着細胞を存在させることを強調する本 発明の教示は、リンパ組織の断片を特別に含有させることによって履行される。Books that emphasize the presence of many auxiliary cells, e.g. adherent cells, in the culture suspension The teachings of the invention are implemented by special inclusion of fragments of lymphoid tissue.

このような断片を排除しない手法を使用し、及び/又はリンパ組織断片を含有す る培養物を特異的に添加することにより、上記の手法を行うことができる。特定 の理論に固執するつもりはないが、目的の量のリンパ組織を含有する系を用いた 実験の観察により、結果として生じた多くの補助細胞が判明した。この細胞は明 らかに不確定物質のばらばらな凝集体部分を形成しており、これは数週間以内で 十分に確定される縁を有する堅い形態へと発展する。このことは、推定原始中心 の存在を想起させ、これは「牌様体」と定義される。この胛様体は膜である「ブ レブ(小胞)コ由来のアウト−ポケットに発展し、それ自身で移動してさらなる 補助細胞凝集体などを形成することができる。また、このような系はIgGの分 泌を数カ月にわたって助け、またその間におけるIgMからの生としてIgGへ のクラススイッチを描くことも観察された。Use techniques that do not exclude such fragments and/or eliminate all lymph tissue fragments. The above technique can be carried out by specifically adding a culture containing identification Although we do not intend to adhere to the theory of Observation of the experiment revealed a number of resulting auxiliary cells. This cell is bright It clearly forms loose agglomerates of indeterminate material, which will disappear within a few weeks. Develops into a rigid morphology with well defined edges. This means that the estimated primordial center This is defined as a ``tile-like body.'' This spider-like body is a membrane called Develops into an out-pocket derived from the vesicle and moves on its own to further Auxiliary cell aggregates and the like can be formed. In addition, such a system It helps secretion for several months, and during that time it converts from IgM into IgG. It was also observed that drawing a class switch.

従って、本発明の培養系にリンパ球断片を使用することにより、6力月及びそれ 以上にわたって長期に生存する主としてIgGを分泌する培養物が得られる。Therefore, by using lymphocyte fragments in the culture system of the present invention, it is possible to Long-term viable, predominantly IgG-secreting cultures are obtained.

ik良と考えられる態様の開示として、ヒト及びウマ・フェリチン抗原に特異的 なヒトモノクローナル抗体を生産するのに成功した成績を記載する。抗原特異的 な高い親和力を有する本発明のモノクローナル抗体を生産できる特定の培養条件 についても同様に詳しく説明する。しかし、この開示の提供を受けた当業者なら ば、他の抗原に対する特異性を有する他のヒト高度親和的モノクローナル抗体を 調製するために本発明をどのようにして利用するかは十分に理解できると考えら れる。同様に、膵臓細胞以外の代替のヒトリンパ細胞も、その特定のリンパ組織 を用いて最初に適用した本発明の手法に従えば使用することができる。さらに、 他の融合相手も、特定の融合不滅ラインを使用する本発明の手法に従えば使用す ることができる。Disclosure of embodiments considered to be good for human and equine ferritin antigens Here, we describe the results of successful production of human monoclonal antibodies. antigen specific Specific culture conditions that can produce monoclonal antibodies of the present invention with high affinity will also be explained in detail. However, if one of ordinary skill in the art is provided with this disclosure, For example, using other human high affinity monoclonal antibodies with specificity for other antigens. It is believed that it is well understood how to utilize the present invention to prepare It will be done. Similarly, alternative human lymphocytes other than pancreatic cells can also be found in that particular lymphoid tissue. It can be used according to the method of the present invention, which was first applied using . moreover, Other fusion partners can also be used according to the method of the present invention using specific fusion immortal lines. can be done.

また、抗原特異的なモノクローナル抗体を調製するための方法であって、可変領 域を特性化し、配列決定するのに当業界で利用されている方法を本発明の教示か ら予測することもできる。その情報を用意することにより、可変領域又はこのよ うな可変領域を有するIg分子全体のDNAをクローンするため、及びコード化 rg分子を発現させ採取するためにこのようなりNAを安定な組換え宿主細胞に 作動可能に挿入するために、既知の組換えDNA手法を適用することができる。Also, a method for preparing antigen-specific monoclonal antibodies, comprising: The teachings of the present invention incorporate methods utilized in the art to characterize and sequence It is also possible to predict from By preparing that information, variable regions or To clone the DNA of an entire Ig molecule with variable regions such as In order to express and harvest rg molecules, these NAs are introduced into stable recombinant host cells. For operative insertion, known recombinant DNA techniques can be applied.

同様に、適当な安定宿主にて発現させる前、又はそれと同時に例えばポリメラー ゼ連鎖反応(PCR)法を使用してDNAを増幅できる。これらはすべて、高い 親和力の抗原特異的ヒト免疫グロブリンを担持する免疫化Bリンパ細胞を生成さ せるための手段を提供している本明細書の開示に従って行うことができる。Similarly, prior to or simultaneously with expression in a suitable stable host, e.g. DNA can be amplified using the PCR chain reaction (PCR) method. All these are expensive Generate immunized B lymphocytes carrying affinity antigen-specific human immunoglobulin This can be done in accordance with the disclosure herein which provides means to do so.

本発明の教示に従って当業者が同等な手段に拡大することのできる(上述の)本 発明の特異的なインビトロ免疫培養法によれば、接着細胞などの補助細胞の必須 の数を含有するリンパ組織調製物が実質的に提供される。この成績は実際上、抗 原特異的なIgG担持B細胞及びIgG分泌性の形質細胞の生成及び初代免疫を 助けることのできるインビボ環境を機能的に再現する培養物を与えることとなる 。The book (mentioned above) can be extended to equivalent means by a person skilled in the art in accordance with the teachings of the present invention. According to the specific in vitro immunoculture method of the invention, essential auxiliary cells such as adherent cells A lymphoid tissue preparation containing a number of . This result is actually Generation of original-specific IgG-bearing B cells and IgG-secreting plasma cells and primary immunization This results in cultures that functionally reproduce the in vivo environment that can help .

インビボにおける後期−次又は二次応答(ブースターンでは、イクコゾーム(i ccosomes) [免疫複合体被覆体]と呼ばれる抗原抗体複合体を形成す る特異的抗体によって抗原暴露が即座に行われ、濾胞樹枝状細胞の表面のリンパ 器官内に取り込まれる。抗原特異的なり細胞の拡大及び成熟は、いわゆる胚中心 において起こると考えられ、それらにはクラススイッチの現象(免疫グロブリン IgMからIgG。Late-secondary or secondary responses in vivo (in the booster turn, the ichcosome (i ccosomes) forms an antigen-antibody complex called an immune complex coat. Antigen exposure occurs immediately with specific antibodies, and lymph nodes on the surface of follicular dendritic cells taken up into organs. The expansion and maturation of antigen-specific cells occurs in so-called germinal centers. These include the phenomenon of class switching (immunoglobulin IgM to IgG.

IgA及びIgEへの)、及び(可変領域における点突然変異を介した)親和力 成熟が包含される。これら2つの現象は有効な後期−次及び二次応答に必須であ ると考えられる。affinity for IgA and IgE) and (through point mutations in the variable region) Maturity is included. These two phenomena are essential for effective late-order and secondary responses. It is thought that

既述のように、上記のインビボ免疫応答系は本発明のインビトロによって機能的 に再現されると考えられる。クラススイッチイング及び親和力成熟というより高 い親和力の抗原特異的な抗体(好ましくはIgG)の最も有効な生産にとって重 要な現象のためには、少なくとも部分的にも濾胞及び胚中心の形成を再生する条 件が必要とされると推測される。最適なインビトロ応答にとって必要であると考 えられる要素は、特異抗原を認識しそれと結合できるようにする表面免疫グロブ リンを担持するB細胞の存在、種々の因子の局在分泌によるB細胞の増殖を刺激 するTヘルパー細胞の存在、抗原を摂取し加工し提示するマクロファージの存在 、マクロファージ及びTヘルパー細胞から産生される適当なリンホカインの存在 、並びに同種及び異種の混合リンパ細胞応答(MAR)反応及び細胞凝集を促進 する樹枝状細胞のすべての重要な存在、である。As mentioned above, the above in vivo immune response system is functionalized by the in vitro method of the present invention. It is thought that it will be reproduced in High class switching and affinity maturation Important for the most efficient production of high affinity antigen-specific antibodies (preferably IgG). For the essential phenomenon, conditions that at least partially regenerate the formation of follicles and germinal centers are required. It is assumed that the requirements are required. considered necessary for optimal in vitro response. The resulting element is a surface immunoglobulin that allows it to recognize and bind to specific antigens. Presence of B cells carrying phosphorus, stimulating B cell proliferation through localized secretion of various factors The presence of T helper cells that ingest, process and present antigens, and the presence of macrophages that ingest, process and present antigens. , the presence of appropriate lymphokines produced by macrophages and T helper cells , as well as promoting allogeneic and heterogeneous mixed lymphocyte response (MAR) responses and cell aggregation. is the all important presence of dendritic cells.

本発明の好ましい態様では、膵臓細胞を使用する。このような膵臓細胞培養物の 調製は、当業界において従来普通に使用されていた赤血球を白血球と分離するの に役立つフィコ−リングの代わりに、例えば塩化アンモニウム細胞溶解を使用す る穏やかな態様によって行う。リンパ細胞の調製及び培養は、血管表面への細胞 結合を助ける条件を最小限にするであろう。ある態様では、単一の膵臓の代わり に混合膵臓が同種培養に使用され、それにより初めて高い応答性の系が提供され る。本発明の好ましい態様について記載しているこれらの複合的な方法は、抗原 に遭遇する際にヒト組織内のインビボにおいて産生されるものを少なくとも部分 的に代表するインビトロにおける一次その後の二次応答の成功のために必須と考 えられるすべての要素を提供するものである。上述のように、自己由来の樹枝状 及び接着細胞などの補助細胞を必要な数で保持させる方法によってリンパ組織か ら得られるヒトリンパ細胞を実質的に使用することにより、好ましい態様におい てこれらの必須要素のいくつもの局面が提供される。In a preferred embodiment of the invention pancreatic cells are used. Such pancreatic cell cultures The preparation is performed by separating red blood cells from white blood cells, which has been commonly used in the industry. For example, using ammonium chloride cell lysis instead of Ficoling, which is useful for This is done in a gentle manner. Preparation and culture of lymphoid cells involves attaching cells to the surface of blood vessels. Conditions that favor binding will be minimized. In some embodiments, a single pancreas replacement mixed pancreas was used for allogeneic culture, which provided a highly responsive system for the first time. Ru. These multiplex methods described for preferred embodiments of the invention at least in part those produced in vivo in human tissues when encountering considered essential for the success of a representative in vitro primary and subsequent secondary response. It provides all the elements that can be obtained. As mentioned above, autologous dendritic lymphoid tissue by retaining the necessary number of auxiliary cells such as adhesion cells. In a preferred embodiment, by substantially using human lymphocytes obtained from provides several aspects of these essential elements.

これは、主に、リンパ組織、例えば膵臓細胞の調製方法にて使用できる特異的な 要素故に可能となる: (a) 手作業、例えば鉗子及び適当な滅菌プラスチック製シリンジの(ゴム先 端)平滑末端のプランジャーの使用による、リンパ組織の切断片由来のリンパ細 胞及び補助細胞の穏やかな解離。This is mainly due to the specific This is possible because of the element: (a) Manual use, e.g. with forceps and a suitable sterile plastic syringe (rubber tip). a.) Lymphoid cells derived from dissected sections of lymphoid tissue by using a blunt-ended plunger. Gentle dissociation of cysts and accessory cells.

(b) フィコ−リング(ficolling)の代わりの穏やかな低浸透圧細 胞溶解による赤血球細胞の除去。(b) Mild hypoosmolarity instead of ficolling Removal of red blood cells by cyst lysis.

(、c) 約4℃以上の温度における平坦表面に対する暴露を最小限にすること による、接着細胞の損失の予防 (d) 最終的な細胞調製物内の膵臓結合組織の小断片(約1平方ミリメートル 又はそれ以下)の保持、及び/又はその添加。(,c) Minimize exposure to flat surfaces at temperatures above about 4°C. Prevention of loss of adherent cells by (d) Small fragments of pancreatic connective tissue (approximately 1 square millimeter) within the final cell preparation or less) and/or their addition.

これらをまとめると、作用(a) −(d)により、健康な膵臓細胞、及びマク ロファージ、濾胞及びリンパ樹枝状細胞などの補助細胞、並びにフィブロブラス トの混合物が得られる。この細胞の混合物は、全膵臓からそれらを穏やかに解離 させることにより得られる活性の状態の点で、従来記載されているリンパ細胞調 製工程又は培養方法のあらゆる組合わせよりもより厳密にインビボ膵臓環境を再 現するものである。To summarize, effects (a) to (d) promote healthy pancreatic cells and macrophages. Auxiliary cells such as lophages, follicles and lymphoid dendritic cells, and fibroblasts A mixture of This cell mixture gently dissociates them from the whole pancreas. In terms of the state of activity obtained by Re-creates the in vivo pancreatic environment more closely than any combination of manufacturing processes or culture methods. It is something that is expressed.

本発明の系により、免疫応答の後期−次又は二次段階のインビボ胚中心と同等の インビトロ等個物と考えられる牌様体(splenoids)が明らかとなり、 またクラススイッチ及び長期生存のIgG分泌培養によるこのような応答の結果 が明らかとされる。The system of the present invention allows for the equivalent of in vivo germinal centers in the late-next or secondary stages of the immune response. Splenoids, which are thought to be individual objects, have been revealed in vitro. Such responses also result from class switching and long-term survival of IgG-secreting cultures. It is clear that

説明してきた方法の王な用途は、ヒト抗原などの目的とする抗原と特異的に反応 するヒトモノクローナル抗体を産生ずる、不滅である継続的に分泌するハイブリ ド−マクローンを生産することである。The main use of the method described is to react specifically with a target antigen such as a human antigen. An immortal, continuously secreted hybrid that produces human monoclonal antibodies that The purpose is to produce dormer clones.

従って、本発明は、安定な継続セルラインに変換した場合に高い親和力の抗原特 異的であるモノクローナル抗体を比較的高い数で産生ずるインビトロ免疫培養系 であって、臨床適用において有用である系を初めて提供するものである。Therefore, the present invention provides a high affinity antigen profile when converted into a stable continuous cell line. An in vitro immune culture system that produces relatively high numbers of heterologous monoclonal antibodies For the first time, we provide a system that is useful in clinical applications.

2、パラメーターの説明 本発明は、インビトロにおける培養及び免疫のためにはリンパ細胞の調製方法が 必須であるという知見に基づくものである。本質的な局面は、補助細胞の必要な 数をリンパ細胞培養物内に確実に保持させる方法を使用することである。このよ うな補助細胞は、効能を有する抗原の提示、クラススイッチ及び親和力成熟を助 けるリンパ濾胞タイプの環境を少なくとも部分的にでも再現するために必須であ る。必須の数の自己由来の補助細胞の存在は、「必須の数」の接着細胞が培養物 に存在することによって顕在化される。要すればその数の非リンパ(非T1非B )細胞、即ち必須の補助細胞を含有する細胞の集合が最終的な調製物において全 細胞数の約10%以下であるべきではないことが、研究結果から見いだされた。2. Explanation of parameters The present invention provides a method for preparing lymphocytes for in vitro culture and immunization. This is based on the knowledge that it is essential. An essential aspect is the necessary The method is to ensure that the number is retained within the lymphocyte culture. This way Auxiliary cells assist in efficacious antigen presentation, class switching and affinity maturation. essential for at least partially reproducing the lymphoid follicular type environment Ru. The presence of a requisite number of autologous accessory cells indicates that a “required number” of adherent cells are present in culture. It is manifested by being present in . If required, the number of non-lymphoids (non-T1, non-B) ) cells, i.e., the collection of cells containing essential accessory cells, is completely eliminated in the final preparation. Studies have found that it should not be less than about 10% of the cell number.

さらに、培養のために選択されるリンパ組織内における必須の接着単球/マクロ ファージ細胞の数は、全細胞集合のうち約2%よりも少なくなってはならないこ とも観察された。このような数の算定は、蛍光性標識物を付けた特異的モノクロ ーナル抗体によって単球及びマクロファージを標識し、そして蛍光活性化細胞選 別(FACS)分析によって標識細胞のパーセンテイジを測定することにより行 われる。Additionally, essential adherent monocytes/macro cells within the lymphoid tissue selected for culture The number of phage cells should not be less than approximately 2% of the total cell population. It was also observed that Calculation of such numbers is performed using specific monochromatic monochromes with fluorescent labels. Label monocytes and macrophages with natural antibodies and perform fluorescence-activated cell selection. performed by measuring the percentage of labeled cells by separate (FACS) analysis. be exposed.

培養手法は、必須と考えられる補助細胞の有効な数を確実に保持させるために本 明細書において詳細に説明しているものから種々変わり得る。さらに、過度の実 験を必要としないさらなる研究によって、本明細書にて必須であると説明してい る接着細胞の数は提示した最小範囲を若干外れる程に変動し得ることも見いだす ことができた。従って、このような限界を規定する場合には、「およそ(約)」 なる用語を使用している。Culture methods have been developed to ensure the retention of effective numbers of auxiliary cells considered essential. Various variations may be made from those specifically described in the specification. In addition, excessive fruit Further research without the need for a We also find that the number of adherent cells can vary slightly outside the suggested minimum range. I was able to do that. Therefore, when defining such limits, "approximately" It uses the following terms.

必須の数の接着細胞を使用する培養条件により、有効な数のIgGクラス免疫グ ロブリンが得られることが、本明細書に記載の研究から見いだされた。この研究 に基づけば、本発明モノクローナル抗体のIgGクラスについての約10%とい う最小限度は「有効な数」であろうと考えられる。5.0−80%のレベルは、 臨床的に有用であるモノクローナル抗体を同定するのに最も有効であると考えら れる。また、培養条件を本発明の一般的な範囲内で変動させても、有効であるが 特定している範囲から若干外れているIgG分子の数を得ることもてきることが 理解される。これらの数が有効である場合、十分な抗原特異的なrgGモノクロ ーナル抗体が生成され、その結果有用な親和力及び良好な特異性を有する抗体を 選択することができると考えられる。従って、「約(およそ)」なる用語はこれ らの価値を表現する場合に用いる。Culture conditions using the requisite number of adherent cells allow for effective number of IgG class immunoglobulins. It has been found from the studies described herein that Robulin can be obtained. this research Based on the IgG class of the monoclonal antibodies of the present invention, approximately It is thought that the minimum number that can be used is a "valid number." 5.0-80% level is considered to be the most effective for identifying monoclonal antibodies that are clinically useful. It will be done. It is also effective to vary the culture conditions within the general range of the present invention. It is also possible to obtain numbers of IgG molecules that are slightly outside the specified range. be understood. If these numbers are valid, sufficient antigen-specific rgG monochrome null antibodies are generated, resulting in antibodies with useful affinity and good specificity. It seems possible to choose. Therefore, the term "approximately" Used to express the value of

3、定義及び一般的な操作 本発明の特定方法においては、ヒト膵臓組織からの慎重な解離によって得られる 膵臓細胞を異種又は同種いずれかの抗原のμg量によって免疫、即ち特異的に刺 激する。次いて、刺激B細胞を抗原暴露後の特定の時点で採取し、異型骨髄腫( heteromyeloma)ヒト融合相手であるに6H6/B5(公に入手可 能: J、 Immunolileth、 89:61−72.1986も参照 のこと)と高い効率て融合させ、免疫した抗原と特異的に反応するヒトモノクロ ーナル抗体を分泌する雑種クローンを産生させる。特異的に免疫した培養物から 抗原を枯渇させることもでき、次に通常のELISA手法によって検出できる抗 体を分泌させる。免疫後の検定により、広範な免疫条件下に産生される免疫グロ ブリンのクラス及び応答の半定量(semi−quantitative)の評 価を行う。次に、これらの結果を使用して融合する前の免疫の最適な条件を同定 し、次いで以後の融合の結果を評価する。3. Definitions and general operations In the specific method of the present invention, the Pancreatic cells are immunized, i.e., specifically stimulated, with μg doses of either xenogeneic or allogeneic antigen. Intense. Stimulated B cells are then harvested at specific time points after antigen exposure and atypical myeloma ( heteromyeloma) human fusion partner 6H6/B5 (publicly available See also Noh: J, Immunolith, 89:61-72.1986 human monochrome that reacts specifically with the immunized antigen by highly efficient fusion with Generate hybrid clones that secrete null antibodies. from specifically immunized cultures. It is also possible to deplete the antigen, which can then be detected by conventional ELISA techniques. Make the body secrete. Post-immunization assays show that immunoglobulins produced under a wide range of immunization conditions Semi-quantitative evaluation of Brin classes and responses do the value. These results are then used to identify optimal conditions for immunization prior to fusion. and then evaluate the results of subsequent fusions.

「インビトロ免疫培養物」なる用語は、特異抗原を用いた免疫をヒト又は他のあ らゆる動物では行っていない培養物を意味し、代わってヒト起源の組織から誘導 した培養物を生体外(ex vivo)で培養するものである。The term "in vitro immunization culture" refers to the immunization of humans or other animals with specific antigens. refers to cultures that are not performed on any animal, and instead are derived from tissues of human origin. The resulting culture is then cultured ex vivo.

培養のために本発明のヒトリンパ細胞が得られる「リンパ組織」なる用語は、多 くのT−/B−細胞、並びに膵臓組織、扁桃及びリンパ節などの補助細胞を含有 すると期待することのできるあらゆるヒトリンパ組織を意味する。The term "lymphoid tissue" from which the human lymphoid cells of the invention are obtained for culture includes a number of Contains many T-/B-cells and accessory cells such as pancreatic tissue, tonsils and lymph nodes This means any human lymphoid tissue that can be expected.

本明細書における自己由来の接着細胞の「必須の数」なる用語は、非ヒト及び顕 著にはヒトの両者の特定抗原に対する有用な親和力を有した本発明に係るIgG モ、7クロ一ナル抗体を産生ずることが認められる数を意味する。これらの成績 は、培養系にリンパ組織断片を使用する手段によって本発明にて保証されている 。The term "required number" of autologous adherent cells as used herein refers to non-human and The author describes the IgG according to the present invention having useful affinity for both specific antigens in humans. This means the number of antibodies that are recognized to produce 7 clonal antibodies. These results is guaranteed in the present invention by means of using lymph tissue fragments in the culture system. .

従って、この用語は、上述の適切な範囲内にある機能的な意義を有しており、特 定の好ましい手段によって達成することができる。Accordingly, this term has a functional meaning within the appropriate scope described above and is This can be achieved by certain preferred means.

「自己由来の補助細胞」なる用語は本明細書においては、T及びBリンパ細胞を 得た同じ個体から誘導される、免疫応答を助は又は増大させる非T、非B細胞を 意味する。The term "autologous accessory cells" is used herein to refer to T and B lymphocytes. non-T, non-B cells that assist or augment the immune response, derived from the same individual obtained. means.

「特異抗原jなる用語は、本発明のヒトモノクローナル抗体と特異的に反応する のに望ましいあらゆる抗原、例えばフェリチン、癌胎児性抗原(CEA)、TA G72などの種々の腫瘍抗原を意味する。The term "specific antigen j" refers to antigens that specifically react with the human monoclonal antibodies of the present invention. Any antigen desired for refers to various tumor antigens such as G72.

本発明の培養物にはリンホカインなどの従来必須と考えられていた「増殖因子又 は池の因子の添加」が必要とされないという本明細書の引用文は、本明細書に記 載の条件によればこれらの物質を外部から培養物に添加することが不必要となる ことを意味している。このことは、本発明がこのような物質の添加を予期してい ないことを意味するものでな(、単に本発明の利益のためには必須でないことを 意味するのみである。The culture of the present invention contains "growth factors" or "growth factors" that were previously thought to be essential, such as lymphokines. References herein that "the addition of a pond factor is not required" are incorporated herein by reference. The conditions described above make it unnecessary to add these substances externally to the culture. It means that. This indicates that the present invention contemplates the addition of such substances. This does not imply that the It only means.

本発明のモノクローナル抗体の親和力に関して使用している「少な(とも約(お よそ)」の用語にお(プる「少なくとも」なる用語は、特定した値が、モノクロ −カル抗体が臨床応用における利用性を獲得するであろう値以上であることを示 す普通に信じられている閾値を意味している。この用語についての「およそ」部 分は、使用する宿主細胞、使用する融合相手、選択する抗原及び本明細書の詳細 な説明から導かれる培養条件などの生物系の本質的な変動に起因し、この用語の 解釈に当たってのある程度の許容範囲を与えるためのものである。当業者であれ ば理解されようが、本明細書が与える最適な閾値親和力の値とは異なる値を有す る場合のある、臨床的に有用である本発明のヒトモノクローナル抗体を調製し、 そのような手法に変えられることは想像できると思われる。Regarding the affinity of the monoclonal antibodies of the present invention, The term ``at least'' in the term ``other'' means that the specified value is monochrome. - Demonstrate that the Cal antibody is above the level at which it will gain utility in clinical applications. It refers to the commonly believed threshold. About this term The details include the host cell used, the fusion partner used, the antigen selected and the details herein. Due to the inherent variations in biological systems such as culture conditions that can be derived from This is to provide a certain degree of latitude in interpretation. Be a person skilled in the art It will be understood that the optimal threshold affinity value differs from the value given herein. preparing a human monoclonal antibody of the invention that is clinically useful in some cases; It seems conceivable that it could be changed to such a method.

IgGクラス抗体についての「有効な数」なる用語は、既述の定義を有する。The term "effective number" for IgG class antibodies has the definition given above.

「肉眼で見える多くの凝集体」なる用語は、B及びTリンパ細胞並びに補助細胞 を含有し得るリンパ組織から誘導される細胞の塊りが数時間の培養物のインキュ ベート時間内に形成し始め、拡大することなく見えるという観察事項を規定する ために使用している。The term "many macroscopic aggregates" refers to B and T lymphocytes and accessory cells. Cell clumps derived from lymphoid tissue that may contain Specifies the observation that it begins to form within the bating time and is visible without enlargement. It is used for.

「牌様体(splenoids)Jは培養の1から2週又はそれ以上の週以内に 発達し、リンパ組織のどの断片が培養物中に特異的に含有されているかが観察さ れる。これは、後期−次又は二次免疫応答のインビボ胚中心についての模擬物と なることができる。“Splenoids J. within 1 to 2 or more weeks of culture. It is observed which fragments of lymphoid tissue are specifically contained in the culture. It will be done. This mimics the in vivo germinal centers of late-secondary or secondary immune responses. can become.

「同種同時培養」なる用語は、組織不適合性の組織、例えば1つよりも多い非同 −個体由来の膵臓又は他のリンパ組織の培養を意味する。The term "allogeneic co-culture" refers to tissue that is histoincompatible, e.g. more than one non-synonymous culture. - refers to the culture of pancreatic or other lymphoid tissue from an individual.

rIgGJなとの引用は、IgG、IgM、Ig、AS rgD及びIgEと呼 ばれる免疫グロブリン分子のクラスを決定する5つの主要なりラスの定常領域の うちの1つの免疫グロブリンを表す標準的なものである。The reference to rIgGJ refers to IgG, IgM, Ig, AS rgD and IgE. The constant regions of the five major classes of immunoglobulin molecules that determine the classes of immunoglobulin molecules It is a standard representation of one of the immunoglobulins.

「不滅融合細胞相手」なる用語は、独立して自身を再生する細胞から構成される セルラインであって、リンパ細胞を担持する機能的免疫グロブリン遺伝子と融合 させると、その遺伝子によってコードされている免疫グロブリン分子の不定かつ 一定の分泌のためのビヒクルを提供するものを意味する。このような融合相手に は、骨髄腫及び形質細胞腫セルライン、並びに異型骨髄腫及び異型ハイブリドー マなどがある。The term "immortal fused cell partner" is composed of cells that independently reproduce themselves. A cell line fused with a functional immunoglobulin gene that carries lymphocytes When the immunoglobulin molecule encoded by that gene is indeterminate and Means something that provides a vehicle for constant secretion. For such a fusion partner myeloma and plasmacytoma cell lines, and atypical myeloma and atypical hybrids. There are ma etc.

「組換え手段によって」及び「操作可能に担持する」なる用語は、適当な宿主細 胞をDNA、好ましくは、発現を誘導してコード化ポリペプチドを形成させるD NA要素とコード化DNAが結合しているベクター内にあるDNAで形質転換す るという一般的に知られている文献記載の方法を意味する。このような発現ベク ターは一般に複製可能であり、エビソーム又は宿主の染色体の組込み部分として 保持され得る。The terms "by recombinant means" and "operably carried" refer to DNA, preferably D whose expression is induced to form the encoded polypeptide. Transformation with DNA in a vector in which the NA element and the encoding DNA are linked. This refers to the generally known method described in literature. Such expression vectors The target is generally replicable and can be found in shrimpsomes or as an integrated part of the host chromosome. can be retained.

一般にはマニアチス[1lanitias]らのMo1ecular Clon ing、 A Laboratory 1lanual。In general, Molecular Clon by Maniatis et al. ing, A Laboratory 1lanual.

Co1d Spring Harbar Laboratoriy、 = ニー ヨーク、 1982及び本明細書にて引用している種々の引用文献、特にコロウ ィック[Co1ovickコらのMethod in Enzymology、  152巻、アカデミツク・プレス(1987)を参照のこと。Co1d Spring Harbor Laboratory, = Knee York, 1982 and various references cited herein, especially Collou Co1ovic et al.'s Method in Enzymology, See Volume 152, Academic Press (1987).

「細胞の発育を調節できる物質」なる用語は、2つの基準、即ちキレート結合又 は直接的な共有結合などによって抗体と特異的に連結できること、及び細胞レベ ルのインビボにおいて細胞毒性又は細胞増殖抑制作用を有していること、を満足 する物質を意味する。このような物質としては、イツトリウム90、ヨウ素In などの放射活性物質、及びリンノなどの毒素が例示される。The term "substances capable of modulating cell development" is defined by two criteria: chelate binding or can be specifically linked to antibodies through direct covalent bonds, etc., and can be linked to antibodies at the cellular level. It satisfies that the cell has cytotoxic or cell proliferation inhibitory effect in vivo. means a substance that Such substances include yttrium-90, iodine In Examples include radioactive substances such as, and toxins such as linno.

「レポータ一部分」なる用語は、2つの基準、即ちキレート結合又は直接的な共 有結合などによって抗体と特異的に連結できること、及びバイオアッセイ、又は より普通には発色検定などにおいてその存在を幾分でも同定できること、を満足 する物質を意味する。このような部分としては、インジウム2目などの放射活性 標識物、又はアルカリホスファターゼなどの酵素が例示される。The term "reporter moiety" refers to two criteria: chelate binding or direct collaboration. It is possible to specifically link to the antibody by binding etc., and bioassay, or More commonly, it satisfies the fact that its presence can be identified to some extent in color assays, etc. means a substance that Such parts include radioactive materials such as indium Examples include labels and enzymes such as alkaline phosphatase.

レポータ一部分は、それ自身当業者に既知の通常の手法によって本発明の抗体に 結合させることができる。例えば、抗体における1級アミン基なとの核性の基は 蛍光性又は酵素的な基と反応して共有結合を形成でき、あるいはそれ自身当業者 に既知の2機能性のカップリング試薬を使用することができる。The reporter moiety itself can be made into an antibody of the invention by conventional techniques known to those skilled in the art. Can be combined. For example, a nuclear group such as a primary amine group in an antibody is can react with fluorescent or enzymatic groups to form covalent bonds, or as such can be Bifunctional coupling reagents known in the art can be used.

他の有用なレポータ一部分はビオチン、フルオロフォア、化学ルミネッセント部 分、酵素又はコロイド化合物である。フルオロフォア基としては、フルオレセイ ン−5−イソチオシアネート、ジアシル・フルオレセイン−5及び/又は6カル ボン酸ペンタフルオロフエニルエステル、テトラメチルローダミン−5(及び6 )イソチオシアネート、エオシン−イソチオシアネート、エリスロンンー5−イ ソチオシアネート、4−クロロ−7−二トロベンズー2−オキサ−1,3−ジア ゾール、スクシンイミジル・12−(N−メチル−N−(7−ニドロベンズー2 −オキサ−1,3−ジアゾール−4−イル)アミノドデヵノエート、7−ヒトロ キシクマリンー4−酢酸、4−アセトアミド−4゛−イソチオ−シアナトスチル ベン−2−2′−ジスルホン酸、9−クロロアクリジン、p−ニトロフェニル・ 1−ピレンブチレート、9−アントラセンプロピオン酸、又は2−アントラセン スルホニル・クロライドなどが例示される。Other useful reporters include biotin, fluorophores, and chemiluminescent moieties. components, enzymes or colloidal compounds. As a fluorophore group, fluorescein -5-isothiocyanate, diacyl fluorescein-5 and/or hexacal Bonic acid pentafluorophenyl ester, tetramethylrhodamine-5 (and 6 ) isothiocyanate, eosin-isothiocyanate, erythron-5-i Sothiocyanate, 4-chloro-7-nitrobenzo-2-oxa-1,3-dia sol, succinimidyl 12-(N-methyl-N-(7-nidrobenzo2) -oxa-1,3-diazol-4-yl)aminododecanoate, 7-hydro xycoumarin-4-acetic acid, 4-acetamido-4'-isothio-cyanatostyl Ben-2-2'-disulfonic acid, 9-chloroacridine, p-nitrophenyl. 1-pyrenebutyrate, 9-anthracenepropionic acid, or 2-anthracene Examples include sulfonyl chloride.

酵素レポータ一部分には、β−ガラクトシダーゼ、西洋ワサビペルオキシダーゼ 、アルカリホスファターゼ、デヒドロゲナーゼ、ルンフェラーゼ、及び炭酸脱水 酵素などがある。The enzyme reporter part contains β-galactosidase, horseradish peroxidase , alkaline phosphatase, dehydrogenase, rumferase, and carbonic anhydration There are enzymes, etc.

4、図面の説明 第1図、 インビトロにおけるプライム化(感作)ヒトリンパ細胞からのフェリ チン反応性1gM抗体の分泌: 単一(A、B)及び同種の混合(A十B)培養 の比較。以下で説明するようにしてヒト膵臓細胞を、接着細胞を枯渇させること なく調製し、1μg/mlウマ牌臓フェリチンの存在又は不存在下に3X10( 6)細胞/Ilの密度で培養した。同種培養物は、膵臓A及びBから調製された 細胞のl:1μ合物から構成されていた。4. Explanation of drawings Figure 1. Fertilization from primed (sensitized) human lymphocytes in vitro. Secretion of Chin-reactive 1 gM antibody: single (A, B) and homogeneous mixed (A + B) cultures comparison. Deplete human pancreatic cells of adherent cells as described below. 3×10 ( 6) Cultured at a density of cells/Il. Allogeneic cultures were prepared from pancreas A and B. It consisted of a l:1μ mixture of cells.

第2図、 インビトロにおけるプライム化ヒトリンパ細胞からのフェリチン反応 性rgM抗体の分泌・ 単−及び同種混合培養物による特異的免疫応答に対する 失活性X放射線の影響。Figure 2, Ferritin reaction from primed human lymphocytes in vitro Secretion of sexual rgM antibodies against specific immune responses by mono- and allogeneic mixed cultures Effects of inactivated X radiation.

以下で説明するようにしてヒト膵臓細胞を、接着細胞を枯渇させることなく調製 し、調製の1.−2時間以内に2000レイのX線照射で暴露した。照射後1時 間以内に正常及び/又は照射細胞の同系又は1:1同時培養を0又は2μg/m lウマ牌臓フェリチンで3日間プライムした。洗浄によりフェリチンを除去した 後、得られた細胞をさらに2日間培養した。上清を採取し、吸着されるフェリチ ンとの反応性についてELISAによって分析した。Human pancreatic cells were prepared as described below without depleting adherent cells. Preparation 1. - Exposure to 2000 Rays of X-ray radiation within 2 hours. 1 hour after irradiation Syngeneic or 1:1 co-culture of normal and/or irradiated cells within 0 or 2 μg/m Primed with horse spleen ferritin for 3 days. Ferritin was removed by washing. Thereafter, the obtained cells were further cultured for 2 days. Collect the supernatant and adsorb the ferritic acid. The reactivity with the compound was analyzed by ELISA.

第3図、 インビトロにおけるプライム化ヒトリンパ細胞からのフェクチン反応 性1gM抗体の分泌: フェリチンブライミングの時間依存性及びフェリチン反 応性抗体の分泌。Figure 3, fectin reaction from primed human lymphocytes in vitro Secretion of 1gM antibody: time dependence of ferritin briming and ferritin reaction secretion of reactive antibodies.

ヒト膵臓細胞を接着細胞を枯渇させることなく調製し、この図面にて明記してい る濃度のウマ膵臓フェリチン(0−1,0μg/厘l)と共に1.5X10(6 )細胞/mlで培養した。図面の最上列は、1Bプライムし、抗原を洗い流し、 明記したようにさらに1.2.3、又は5日間培養してフェリチンの不存在下に 抗体を分泌させた細胞を示している。この図面中における第2、第3及び第4の 列はそれぞれ2.3及び4日間の抗原プライミングを示しており、その後抗原は 除去し、得られた細胞を明記したようにさらに2.3又は5日間フェリチンの不 存在下に培養した。培養上清を採取し、吸着したフェリチンとの反応性について ELISAによって分析した。Human pancreatic cells were prepared without depleting adherent cells and were 1.5 x 10 (6 ) cells/ml. The top row of the drawing shows 1B primed, antigen washed away, Incubate for additional 1.2.3 or 5 days as specified in the absence of ferritin. It shows cells that secreted antibodies. The second, third and fourth in this drawing The columns show antigen priming for 2.3 and 4 days, respectively, after which the antigen cells were removed and the resulting cells were incubated for an additional 2.3 or 5 days in the absence of ferritin. cultured in the presence of Collect culture supernatant and examine reactivity with adsorbed ferritin Analyzed by ELISA.

第4図、 インビトロにおけるプライム化ヒトリンパ細胞からのフェリチン反応 性1gM及びTgG抗体の分泌: 3日間免疫後の分泌の時間依存性。Figure 4, Ferritin reaction from primed human lymphocytes in vitro Secretion of 1gM and TgG antibodies: Time dependence of secretion after 3 days of immunization.

ヒト膵臓細胞を接着細胞を枯渇させることな(調製した。1μg/mA’ウマ牌 臓フェリチンの存在又は不存在下に2群のウェルを3X10θ細胞/llで3日 間培養した。洗浄によりフェリチンを除去し、フェリチンの不存在下に細胞をさ らに13日間培養した。ELISAによるフェリチン反応性分析のために、5. 7.9.11.13及び16日目に上清を採取した。それぞれの採取後に、培養 物に培養培地1.5mlを再追加した。各日に採取した培養上清は、以前の再追 加と上清採取の時点の間に分泌された免疫グロブリンを主として含有していた。Human pancreatic cells were prepared without depleting adherent cells (prepared at 1 μg/mA’ horse tile). Two groups of wells were incubated with 3X10θ cells/ll for 3 days in the presence or absence of visceral ferritin. It was cultured for a period of time. Ferritin is removed by washing and cells are grown in the absence of ferritin. The cells were further cultured for 13 days. For ferritin reactivity analysis by ELISA, 5. Supernatants were collected on day 7.9.11.13 and 16. After each collection, culture Re-add 1.5 ml of culture medium to the culture medium. Culture supernatants collected each day were collected from previous repurchases. It mainly contained immunoglobulins secreted between the time of injection and the time of supernatant collection.

白抜き及び斜線領域はそれぞれIgM及びIgGの応答を示している。Open and shaded areas indicate IgM and IgG responses, respectively.

第5図、 インビトロにおけるプライム化ヒトリンパ細胞から分泌された)エリ チン反応性IgM抗体の親和力/結合活性分析。ヒト膵臓細胞を接着細胞を枯渇 させることな(調製した。1:1同時培養物をO又は1μg/llウマ伴臓フェ リチンで3日間プライムし、次いで洗浄してフェリチンを除去し、フェリチンの 不存在下にさらに2日間培養した。分泌された抗体のフェリチン反応性をELI SAによって分析し、相対的な親和力/結合活性を算定した。示していない標準 誤差のバーは記号内に包含されている。Figure 5. Eri secreted from primed human lymphocytes in vitro Affinity/avidity analysis of Chin-reactive IgM antibodies. Deplete adhering human pancreatic cells A 1:1 co-culture was incubated with Primed with lytin for 3 days, then washed to remove ferritin; Culture was continued for an additional 2 days in the absence of phthalate. ELI to measure ferritin reactivity of secreted antibodies Analyzed by SA and relative affinity/avidity calculated. Standard not shown Error bars are included within the symbols.

第6図4 接着細胞の存在又は不存在下におけるインビトロプライム化ヒトリン パ細胞からのフェリチン反応性IgM抗体の分泌:ウマ及びヒトフェリチンに対 する応答の比較。Figure 6 4 In vitro primed human line in the presence or absence of adherent cells Secretion of ferritin-reactive IgM antibodies from paracells: against horse and human ferritin Comparison of responses.

ヒト膵臓細胞を、接着細胞を枯渇させることなく(B及びD)、又は枯渇させて (A及びC)vR製した。2つのR臓から得た細胞の1:1同時培養を明記した 濃度のウマ膵臓フェリチン(A及びB)によって、又はヒトフェリチン(C及び D)によって3日間プライムした。洗浄によってフェリチンを除去した後、得ら れた細胞をさらに2日間培養し、上清を採取して、それを、吸着されたフェリチ ンとの反応性についてELISAによって分析した。Human pancreatic cells were cultured without (B and D) or with depletion of adherent cells. (A and C) vR was produced. Specified 1:1 co-culture of cells from two R organs. concentrations of horse pancreatic ferritin (A and B) or human ferritin (C and D) for 3 days. After removing ferritin by washing, the obtained The cells were cultured for another 2 days, the supernatant was collected, and it was added to the adsorbed ferritic acid. The reactivity with the compound was analyzed by ELISA.

第7図、 インビトロにおけるプライム化ヒトリンパ細胞からのフェリチン反応 性抗体の分泌・ 接着細胞の存在及び不存在下におけるウマ及びヒトフェリチン に対するrgM及びIgG応答の比較。接着細胞を枯渇させ、又は枯渇させずに ヒト膵臓細胞を調製した。1.1同時培養物を、明記した濃度のウマ又はヒトフ ェリチンを用いて3日間、3X10’細胞/翼lてプライムした。フェリチンを 除去した後、得られた細胞を2日間培養し、上清をフェリチン活性についてEL ISAにより分析した。Figure 7, Ferritin reaction from primed human lymphocytes in vitro Secretion of sexual antibodies/Equine and human ferritin in the presence and absence of adherent cells Comparison of rgM and IgG responses to. Depleting or not depleting adherent cells Human pancreatic cells were prepared. 1.1 Co-cultures were added to horse or human fish at the specified concentrations. Primed with eritin for 3 days at 3X10' cells/wing. Ferritin After removal, the resulting cells were cultured for 2 days and the supernatant was subjected to EL for ferritin activity. Analyzed by ISA.

第8図、 精製したネズミモノクローナル抗体1番又は2番でインビトロプライ ムしたヒトリンパ細胞から分泌される抗原反応性IgM抗体。Figure 8. In vitro plating with purified murine monoclonal antibody No. 1 or No. 2. An antigen-reactive IgM antibody secreted from human lymphocytes that have been stimulated.

接着細胞を枯渇させることなくヒ1−ff臓細胞を調製し、この図面にて明記し ている濃度の精製ネズミモノクローナル抗体と共に3日間、3X10(6)細胞 /冨!で培養した。洗浄により抗原を除去した後、細胞をさらに2日間培養した 。上清をELIS、Aによって免疫抗原との反応性について分析した。抗体lと 2とは軽鎖成分が異なっていた(1番はラムダ軽鎖を含有しており、2番はカッ パ軽鎖を含有していた)。Human 1-ff visceral cells were prepared without depleting adherent cells and were 3X10(6) cells for 3 days with purified murine monoclonal antibody at a concentration of /Tomi! It was cultured in After removing antigen by washing, cells were cultured for an additional 2 days. . Supernatants were analyzed for reactivity with immunizing antigens by ELIS, A. antibody l and The light chain components differed from No. 2 (No. 1 contained a lambda light chain, and No. 2 had a cut-off). (contains light chains).

第9図、 フェリチン反応性の特異的モノクローナル抗体(A)とフェリチン反 応性の非特異的モノクローナル抗体(B)とのELISAによる反応性の比較。Figure 9, Ferritin-reactive specific monoclonal antibody (A) and ferritin anti-ferritin antibody Comparison of reactivity by ELISA with a reactive non-specific monoclonal antibody (B).

24ウエル平板にて発育させた各クローンの最終培養物から培養上清を採取し、 以下で説明するようにしてELI SAにより検定した。培養上清中の免疫グロ ブリン濃度は1−10μg/wlの範囲にあった。図面に示しているように、検 定平板に被覆した増大濃度のフェリチンとの反応性(X軸に沿って示した値)を 、増大濃度のフェリチン非関連タンパク質に対する反応性と比較した。Collect the culture supernatant from the final culture of each clone grown in a 24-well plate, Tested by ELI SA as described below. Immunoglobin in culture supernatant Brine concentrations ranged from 1-10 μg/wl. As shown in the drawing, the inspection The reactivity (value shown along the X-axis) with increasing concentrations of ferritin coated on a flat plate is , compared with reactivity to increasing concentrations of ferritin-related proteins.

第10図、 2つの精製抗−フエリチンヒトモノクローナル抗体のフェリチン反 応性の滴定。プロティンGのアフィニティークロマトグラフィーにより、モノク ローナル抗体を精製し、明記した濃度の抗体のELISA分析を以下で説明する ようにして行った。Figure 10. Two purified anti-ferritin human monoclonal antibodies against ferritin. Titration of reactivity. By protein G affinity chromatography, monochrome Purification of local antibodies and ELISA analysis of antibodies at the specified concentrations are described below. That's how I went.

第11図、 競合ELISAによる選択したフェリチン特異的1gGヒトモノク ローナル抗体の親和力分析。Figure 11. Selected ferritin-specific 1gG human monochromes by competitive ELISA Affinity analysis of local antibodies.

この分析は以下で説明するようにして行った。最初のグラフは、溶液中の競合フ ェリチンの濃度(X軸)の関数として、ELISA平板と結合する抗体の阻害程 度(Y軸)を示すものである。Aoは可溶性抗原の不存在下における抗体反応性 を示しくインキュベート混合物のELISA分析によって得られる490nmに おける吸光度の形態)、Aは、明記した濃度の可溶性抗原の存在下にインキュベ ートした抗体の反応性を示す。第2のグラフは、第1パネルに示すデータのK  1otzプロット分析を示す(1/VはAo−A/Aoに相当しており、aOは 遊離の抗原の総濃度を示している)。白抜きの円は、ウシフェリチンにより免疫 されたリンパ細胞から産生される、計算値Kd=0.86xlO−”Mを有して いるモノクローナル抗体14.2.2.59を示す。黒色四角は、ヒトフェリチ ンにより免疫されたリンパ細胞から産生される、計算値Kd=1.90X10− 8Mを有しているモノクローナル抗体21.1.8.9を示す。This analysis was performed as described below. The first graph shows the competitive flow in solution. Inhibition of antibody binding to ELISA plate as a function of concentration of erythin (X-axis) It shows degrees (Y axis). Ao is antibody reactivity in the absence of soluble antigen 490 nm obtained by ELISA analysis of the incubation mixture. A is the form of the absorbance at This shows the reactivity of the tested antibody. The second graph shows K for the data shown in the first panel. 1otz plot analysis is shown (1/V corresponds to Ao-A/Ao, and aO is The total concentration of free antigen is shown). The white circle indicates immunity with bovine ferritin. produced from lymphocytes, with a calculated value of Kd = 0.86xlO-''M. Monoclonal antibody 14.2.2.59 is shown. The black square is a human fertilizer. Calculated Kd = 1.90X10- Monoclonal antibody 21.1.8.9 with 8M is shown.

第12図は、例えば培養時にリンパ様の断片を確実に存在させることにより多数 の補助細胞を保持させる本発明に従って調製した24ウエル平板における長期間 膵臓細胞培養物からの蓄積1g分泌の時間経過を示している。(全1gMからI gGへの)クラススイッチの成熟免疫応答及び長期化が明らかである。Figure 12 shows that, for example, by ensuring the presence of lymphoid fragments during culture, a large number of Long term in 24-well plates prepared according to the present invention to retain accessory cells of The time course of cumulative 1 g secretion from pancreatic cell cultures is shown. (Total 1gM to I A mature immune response and prolongation of the class switch (to gG) is evident.

第13図は、T25フラスコにおける長期膵臓細胞培養によって分泌された免疫 グロブリン(Ig)の抗原反応性(フェリチンとの反応性)を表すものであり、 分泌されたrgの特異的な抗原反応性を示している。第12図、第14図及び第 15図のデータは蓄積した全1g分泌を示している。第13図のデータは、免疫 する抗原、フェリチンと反応する分泌1gのその成分のみを示しており、それは 蓄積性でない。示したOD値は、プライム化及び非プライム化対照培養物間のフ ェリチ〉・反応性の違いを示している。これらのデータは、フェリチンがフェリ チン反応性1gMの分泌を0−25日の早い時点で刺激すること、及びフェリチ ンが70−85日の第2ブースターの後でのみフェリチン反応性1gGを顕著に 刺激することを示している。抗原反応性のIgM分泌が培養段階の初期の7エリ チンによって刺激される一方で、抗原反応性のIgG分泌はブースター後にのみ フェリチンによって刺激されるという事実は、インビトロにおけるクラススイッ チングのさらなる証拠である。Figure 13 shows the immunity secreted by long-term pancreatic cell culture in T25 flasks. It represents the antigen reactivity of globulin (Ig) (reactivity with ferritin), The specific antigen reactivity of secreted rg is shown. Figures 12, 14, and The data in Figure 15 shows the total 1g secretion accumulated. The data in Figure 13 are It shows only the secreted 1g of its components that react with the antigen, ferritin, which is Not cumulative. The OD values shown are the differences between primed and non-primed control cultures. It shows the difference in reactivity. These data indicate that ferritin Stimulating the secretion of 1 gM of Chin responsiveness as early as 0-25 days and significantly increased ferritin reactivity 1gG only after the second booster of 70-85 days. It shows that it stimulates. Antigen-reactive IgM secretion occurs early in the culture stage. antigen-reactive IgG secretion only after booster The fact that it is stimulated by ferritin suggests that it is a class switch in vitro. Further evidence of ching.

第14図は、T25フラスコ内の長期膵臓細胞培養物からの蓄積性全1gM分泌 の時間経過を示している。ブライミング抗原であるウマ膵臓フェリチンの分泌速 度に対する影響を表す。フェリチンでプライムした培養物は、対照培養物と比較 して最初の0−30日にわたってJgMの分泌速度の増大を示した。30日後で は、両培養物の速度は第2のブースター後短期間まで明らかに酷似しており、プ ライム化/ブースター培養物の速度も対照培養物と比較して増大しているようで あった。100日ちょっと過ぎには、対照培養物のIgM分泌速度は著しい増大 を示した。対照培養物におけるこの増大は、約110日目に明らかとなったカビ による全体的汚染に由来すると考えられ、この培養物は廃棄すべきであった。Figure 14. Cumulative total 1 gM secretion from long-term pancreatic cell cultures in T25 flasks. It shows the passage of time. Secretion rate of horse pancreatic ferritin, a briming antigen represents the influence on degree. Ferritin primed cultures compared to control cultures showed an increase in the secretion rate of JgM over the first 0-30 days. after 30 days The velocities of both cultures were clearly very similar up to a short period after the second booster; The rate of lymeization/booster cultures also appeared to be increased compared to control cultures. there were. After just over 100 days, the IgM secretion rate of control cultures increased significantly. showed that. This increase in control cultures was due to mold growth that became apparent at approximately day 110. This culture should have been discarded.

(分泌速度は、上昇にわたる水平の距離で垂直上昇を割り算した商として定義さ れる、線の勾配から計算する。勾配が険しい程、速度は増大することになる。) 第15図は、第13図に示している同じ長期膵臓細胞培養物からの蓄積性の全I gG分泌の時間経過を示している。プライミング抗原、ウマ膵臓フェリチンがI gG分泌速度に与える影響を示している。フェリチンは0−40日ではIgGの 分泌速度に対して有意な効果を持っておらず、これはその時にフェリチンが全I gM分泌に対して最も大きな効果を示すのとは対照的である。およそ44日目に 、プライム化培養物のIgG分泌速度は、対照培養物と比較して小さいが有意な 増大を示した。72日目には、第2のブースターの直後の洗浄の後に、プライム 化培養物のrgG分泌速度は対照培養物と比較して劇的に増大した。フェリチン が初期にIgM分泌をプライム的に刺激し、また後期にIgG分泌をプライム的 に刺激することは、インビトロにおけるクラススイッチングの証拠である。(Secretion rate is defined as the quotient of the vertical rise divided by the horizontal distance across the rise. Calculated from the slope of the line. The steeper the slope, the higher the speed will be. ) Figure 15 shows cumulative total I from the same long-term pancreatic cell culture shown in Figure 13. The time course of gG secretion is shown. Priming antigen, horse pancreatic ferritin I The effect on gG secretion rate is shown. Ferritin is less than IgG on days 0-40. had no significant effect on secretion rate, indicating that at that time ferritin In contrast, it has the greatest effect on gM secretion. Approximately on the 44th day , the IgG secretion rate of primed cultures was small but significant compared to control cultures. showed an increase. On day 72, after washing immediately after the second booster, prime The rgG secretion rate of cultured cultures was dramatically increased compared to control cultures. ferritin stimulates IgM secretion in a prime manner in the early stage, and primes IgG secretion in the late stage. stimulation is evidence of class switching in vitro.

第16図(顕微鏡写真)は、第2の構造体の発達を助ける副産物である、関与し ている接着細胞を示している。3つの別種の第2構造体も示されている:(1) 大きな集密な中心を有する右側にある中型のもの、(2)小さな集密な暗い中心 であって、それから比較的滑らかな物質が外側に向かって広がっているものを有 する左上方にある中型のもの、及び(3)小さな集密な暗い中心及び外側に向か って広がっている少量の比較的滑らかな物質を有する左下方の小さいもの。Figure 16 (micrograph) shows the involved microorganisms, which are by-products that help develop the second structure. It shows adherent cells. Three different types of secondary structures are also shown: (1) a medium-sized one on the right with a large confluent center, (2) a small confluent dark center; , with a relatively smooth substance extending outward from it. (3) a small dense dark center and outwards; The small one on the lower left with a small amount of relatively smooth material spread out.

第17図(顕微鏡写真)は、第2構造体の2つの例を示している=(1)右側に ある比較的集密な暗い結合構造体であって、上部に見える明るいブレブ(気泡) を有しているもの、及び(2)比較的集密でなく明るい非結合構造体であって、 比較的大きな褐色の細胞の滑らかな集合体から明らかに構成されているものが左 側に認められ、底部及び左側の個々の褐色細胞は外側に拡散しているか、又は凝 集過程にあるかのいずれかである。Figure 17 (micrograph) shows two examples of the second structure = (1) on the right side; A relatively dense, dark bonded structure with bright blebs visible at the top. and (2) a relatively loose and bright non-bonded structure, The one on the left is clearly composed of smooth aggregates of relatively large brown cells. The individual brown cells on the bottom and left side are either diffused outward or aggregated. Either they are in the process of being assembled.

第18図(顕微鏡写真)は、集密な暗い中心(リンパ細胞の層の下に見ることが できない)に未だ発展しておらず、基礎となる接着細胞の層のままである右側の 第2構造体であって、リンパ細胞と思われる不規則な形状の細胞又は多くの小さ な円い細胞のいずれかに取り囲まれているものを示している。これらの小さな細 胞の集密な集合体は、描写された第2の構造体の回りに、又はそれに隣接して時 折観察され、このことは第2の構造体がこれら小さなリンパ細胞の多重部位であ るかもしれないことを示している。Figure 18 (micrograph) shows a dense dark center (visible below the layer of lymphocytes). on the right side, which has not yet developed into a layer (not possible) and remains an underlying layer of adherent cells. A secondary structure consisting of irregularly shaped cells or many small cells that appear to be lymphocytes. It shows something surrounded by one of the round cells. these small thin A dense collection of cells may be formed around or adjacent to the second structure depicted. This suggests that the second structure is a multilayered site of these small lymphoid cells. This indicates that there may be

第16図から第18図に示している種々の細胞及び構造体は培養の時間と共に成 熟する。接着細胞の成長及び第2構造体の発達は膵臓断片をフラスコに接種する か又はプレートし、最小限数カ月の間継続させた後1−2週に始まる。接着細胞 の成長及び認められる第2構造体のタイプの発達が認められない場合は、抗体の 分泌は観察されない。これらの第2構造体は、インビトロ胚中心の機能を示し、 又はそれを演じる別個のタイプの細胞の凝集体であると考えられる。The various cells and structures shown in Figures 16 to 18 develop over time in culture. ripen Growth of adherent cells and development of secondary structures inoculate flasks with pancreatic fragments or plate and continue for a minimum of several months starting 1-2 weeks later. adherent cells If there is no growth of the antibody and no development of the type of second structure observed, the antibody No secretion is observed. These second structures exhibit in vitro germinal center function; or aggregates of distinct types of cells that perform this function.

5 !裡例 以下に、タンパク質抗原を用いたヒト膵臓細胞の一次(初代)免疫、培養及び調 製のためのプロトコールなどを示す。ウマ膵臓フェリチンのタンパク質は十分に 特性化されており、またウマフェリチンに対するヒト免疫応答はヒトフェリチン に対するヒト応答に匹敵し得、さらにヒトフェリチンの癌胎児型は腫瘍関連抗原 として特性化されているため、上記の方法を行うためにはこのウマ膵臓フェリチ ンタンパク質を使用した。なお、フェリチン反応性ヒトモノクローナル抗体は治 療応用することができよう。フェリチンのために開発した条件は他のタンパク質 抗原による免疫に適用できることも見いだされている。既述のようにして免疫し たリンパ細胞はヒト/マウス異型骨髄腫融合相手と高い効率で融合でき、それに より抗原特異的なIgG及びIgMヒトモノクローナル抗体を産生させられるこ とが証明されている。5! example The following describes the primary immunization, culture, and preparation of human pancreatic cells using protein antigens. The protocol for manufacturing is shown. Equine pancreatic ferritin protein is sufficient The human immune response to horse ferritin has been characterized and Furthermore, the carcinoembryonic form of human ferritin may be comparable to human responses to tumor-associated antigens. In order to perform the above method, this equine pancreatic ferritic acid has been characterized as protein was used. Furthermore, ferritin-reactive human monoclonal antibodies are not therapeutic. It could be used for therapeutic purposes. The conditions developed for ferritin also apply to other proteins. It has also been found to be applicable to immunization with antigens. Immunize as described above. lymphoid cells can fuse with human/mouse atypical myeloma fusion partners with high efficiency, and It is possible to produce more antigen-specific IgG and IgM human monoclonal antibodies. It has been proven that

CarrollらのJ、 Immuno、 Methods 89.61(19 86)によって構築された異型雑種の1つであるに6H6/B5との高い効率の 融合によって、タンパク質抗原によりインビトロ免疫したヒト膵臓細胞を不滅化 し、特異抗原反応性のヒトモノクローナル抗体を製造した。得られた結果は、良 好な融合効率と雑種子孫の発育、0.5−50μghlの範囲の免疫グロブリン 分泌のレベル、雑種()1イブリツド)の約50%の免疫グロブリン分泌の安定 性、並びにIgG及びIgMクラス抗体産生を明らかに示した。Carroll et al., J. Immuno, Methods 89.61 (19 A highly efficient hybrid with 6H6/B5, one of the heterogeneous hybrids constructed by (86) Fusion immortalizes human pancreatic cells immunized in vitro with protein antigens Then, a human monoclonal antibody with specific antigen reactivity was produced. The results obtained are good. Good fusion efficiency and hybrid progeny development, immunoglobulin range from 0.5-50 μghl Level of secretion, stable immunoglobulin secretion of about 50% of hybrids (1 hybrid) sex, as well as IgG and IgM class antibody production.

(a) 手術後1時間以内に偶発的な犠牲者から入手された膵臓組織を、Uni versity of Ca1ifornia San Diego (UC3 D) Ti5sue Bankから提供を受けた。(a) Pancreatic tissue obtained from an accidental victim within 1 hour after surgery was varsity of California San Diego (UC3 D) Provided by Ti5sue Bank.

(b) 得られた組織を約1インチ平方の断片に切断した。(b) The resulting tissue was cut into approximately 1 inch square pieces.

(C) 膵臓断片を50メツシユのワイヤースクリーンに押し通すことで、RP MI発育培発育培地−細胞懸濁液を得る。(C) RP by pushing the pancreatic fragment through a 50-mesh wire screen. MI Growth Medium Growth Medium - Obtain cell suspension.

(d) 細胞懸濁液が生成されるに連れ、それを氷上の滅菌ボトル中に採取し、 次いで幾層にも重ねた滅菌チーズクロスを通して滅菌ガラスビーカー中に濾過し 、大きな組織断片を除去する。(d) as the cell suspension is produced, collect it in a sterile bottle on ice; It is then filtered through layers of sterile cheesecloth into a sterile glass beaker. , remove large tissue fragments.

(e) 次いで、得られた細胞懸濁液を25014!容量遠心ボトルに移し、1 0分間の11000rpによる遠心によって細胞を採取する。上清を捨て、滑ら かなペレットをRPMIの最小容量で再懸濁し、10Chl容量滅菌ボトルに移 した。(e) Next, the obtained cell suspension was added to 25014! Transfer to a volumetric centrifuge bottle and Harvest cells by centrifugation at 11000 rpm for 0 minutes. Discard the supernatant and slide Resuspend the Kana pellet in the minimum volume of RPMI and transfer to a 10 Chl capacity sterile bottle. did.

(f) その細胞を低浸透圧性塩化アンモニウムに30−90秒間さらし、赤血 球細胞(RBC)を細胞溶解し、数回洗浄する。(f) Expose the cells to hypotonic ammonium chloride for 30-90 seconds to remove red blood cells. RBCs are lysed and washed several times.

(g) 好ましくは、約0. 1から1.0ミリメーターのサイズのリンパ組織 断片をその細胞懸濁液中に慎重に保持させる。(g) Preferably about 0. Lymphoid tissue with a size of 1 to 1.0 mm Carefully keep the fragments in the cell suspension.

(h) 最終的な洗浄の後、細胞を計数し、凍結培地に再懸濁し、極低温チュー ブに区分けし、1バイアルについて1ミリリツトル当たり約100−600百万 個の細胞として凍結する。(h) After the final wash, count the cells, resuspend them in freezing medium, and place them in a cryotube. Approximately 100-600 million yen per milliliter per vial. Freeze as individual cells.

2、免疫: すべでの工程は滅菌条件下で行う。2. Immunization: All steps are performed under sterile conditions.

(a)2つの別の膵臓調製物からそれぞれ得た100−300百万個の細胞を、 37℃の温浴中で穏やかに振盪させて解凍する。得られた細胞をRPMIで2回 洗浄する。(a) 100-300 million cells, each obtained from two separate pancreatic preparations, Thaw by gentle shaking in a 37°C warm bath. The resulting cells were treated with RPMI twice. Wash.

(b) 細胞を培地5111中に再懸濁し、計数する。(b) Resuspend cells in medium 5111 and count.

(C) 細胞濃度を0.5−5.0XIO(6)細胞の間に素早く調節し、次い でその細胞懸濁液を24ウエルのコスタ−平板に2Nl/ウエルとなるように移 す。(C) Quickly adjust the cell concentration between 0.5-5.0XIO(6) cells, then Transfer the cell suspension to a 24-well Costa plate at a concentration of 2Nl/well. vinegar.

(d) 所望の濃度の抗原を加える(領 1−10.0μg/菖j!が有効な範 囲として認められている)。(d) Add the desired concentration of antigen (range 1-10.0μg/Iris j! is the effective range) (recognized as an enclosure).

(e)RPMI発育培地(市販されている培地)の組成物は、10%ウシ胎仔血 清(Fe2)、2mMグルタミン、及びギブコ・アミノ酸及びビルベー1−(1 : 100希釈)を含有していた。(e) The composition of RPMI growth medium (commercially available medium) was 10% fetal bovine blood. serum (Fe2), 2mM glutamine, and Gibco amino acids and bilbas 1-(1 : 100 dilution).

(f) 抗原への暴露は、少なくとも2日間続行する。(f) Exposure to antigen continues for at least 2 days.

(g) 抗原に暴露させない以外は既述のようにして、対照培地も作成する。(g) A control medium is also prepared as described above, except that it is not exposed to antigen.

3、ELTSAプロトコール・ 免疫応答の分析(a)3−5日後に、次のよう にして培養物から抗原を除去する:各培養物から得られる細胞をRPMI 10 g/+2%FCSと共に吸引して再懸濁し、それを15w1容量遠心管に移す。3. ELTSA protocol / Analysis of immune response (a) After 3-5 days, the following Remove antigens from cultures by incubating cells from each culture with RPMI 10 Aspirate and resuspend with g/+2% FCS and transfer it to a 15w1 volume centrifuge tube.

(b)10分間の約1100Orpの遠心によって細胞を採取し、そして洗浄し てもよく、次いでIChiピペットにより吸引して再懸濁する。(b) Cells were harvested by centrifugation at approximately 1100 Orp for 10 minutes and washed. and then resuspend by aspirating with an IChi pipette.

(c) 得られた細胞を新たな発育培地2al中に再懸濁し、元の培養ウェルに 戻し、抗原の不存在下に抗体を分泌させる。(c) Resuspend the obtained cells in fresh growth medium 2al and transfer them to the original culture well. and secrete antibodies in the absence of antigen.

(d) 2−4日後に、ピペットによる吸引によって上清1.5mlを採取し、 それを、競合ELISA法によって免疫原−特異的反応について検定するまで、 0゜01%アンドと共に4℃にて保存する。(d) After 2-4 days, collect 1.5 ml of supernatant by aspiration with a pipette, until it is assayed for immunogen-specific response by competitive ELISA method. Store at 4°C with 0°01% AND.

(e) 非免疫化培養物にて測定される応答レベル(これはバックグランド反応 性を表し、培養条件に大きく左右される)を、免疫細胞を使用して測定された応 答から差し引く。この差は、抗原誘導反応の半一定量的測定値を表し、そしてこ れは、同様の条件下で免疫したリンパ細胞の融合物から入手され得る雑種クロー ンの数及び主要な免疫グロブリンクラスの大まかな目安として使用することがで きる。(e) Response level measured in non-immunized cultures (this is the background response) (which is highly dependent on culture conditions) is a response measured using immune cells. Subtract from the answer. This difference represents a semi-quantitative measure of the antigen-induced response, and this This is a hybrid clone that can be obtained from fusions of lymphoid cells immunized under similar conditions. can be used as a rough guide to the number of immunoglobulins and major immunoglobulin classes. Wear.

4、不滅化: インビトロ免疫したリンパ細胞からの雑種クローンの産生。4. Immortalization: Production of hybrid clones from in vitro immunized lymphocytes.

(a) 免疫抗原に対する最小2日の暴露後、細胞をRP M I 5 m l 中に再懸濁し、計数し、K6F6/B5異型骨髄腫細胞と混合する。(a) After a minimum of 2 days of exposure to the immunizing antigen, RP MI 5ml resuspend in K6F6/B5 atypical myeloma cells.

(b) グルタミン、ピルベート及び非必須アミノ酸を含有する既述のRPMI を用いて、得られた細胞を5Q菖1にまで希釈し、10分間の1100Orpで 遠心する。(b) RPMI as described above containing glutamine, pyruvate and non-essential amino acids The resulting cells were diluted to 5Q irises using Centrifuge.

(c) 上記の溶液で細胞を1回以上洗浄し、融合し、雑種を通常の融合プロト コールに従って選択する。(c) Wash the cells one or more times with the above solution, fuse, and hybridize using the normal fusion protocol. Choose according to the call.

ウマ膵臓フェリチン(F−4503)、BSA(A−7906)、Tween  20(P−1379)及びチオシアン酸カリウム(P−3011)をジグ7 [ Sigma]から入手した。肝癌組織から精製したヒトフェリチンは、ジョーン ズ・ホプキンス大学(ボルチモア、MD)のシェリー・クライン博士(Dr、  Jerry Klein)から有り難く拝受した。ネズミモノクローナル抗体は 、Rossell Park Memorial In5titute(バッフ ァロー、ニューヨーク)のMalaya Bhattacharya−Chat terjee博士から(4DC6)、及びBen K、5eon博士から(SN 2)からそれぞれ有り難く拝受した。抗−ヒトIgM(4102)、IgG(4 100)、IgM−HRP(2392)及びIgG−HRP(2390)はTA GO[バーリンバム、CA]から入手した。初代抗体は、Coulter Im munology(Hialea、フロリダ)からの精製モノクローナル抗体と して入手するか、又はATCCから入手されるセルラインCRL 8001(抗 −CD3)及びCRL8014(抗−CD8)から産生される培養上清として使 用した。Horse pancreatic ferritin (F-4503), BSA (A-7906), Tween 20 (P-1379) and potassium thiocyanate (P-3011) in jig 7 [ Sigma]. Human ferritin purified from liver cancer tissue is Dr. Sherry Klein of Hopkins University (Baltimore, MD) Jerry Klein). Murine monoclonal antibodies , Rossell Park Memorial In5 titute (buff Malaya Bhattacharya-Chat (New York) from Dr. terjee (4DC6), and from Dr. Ben K, 5eon (SN 2) were gratefully received. Anti-human IgM (4102), IgG (4 100), IgM-HRP (2392) and IgG-HRP (2390) are TA Obtained from GO [Burlingbum, CA]. The primary antibody was Coulter Im purified monoclonal antibodies from Munology (Hialea, FL) and or cell line CRL 8001 (antibiotics) obtained from ATCC. -CD3) and CRL8014 (anti-CD8). used.

膵臓細胞の調製物 手術後数時間以内に偶発的な犠牲者から入手した膵臓組織は、UC5Dカンサー ・センター・ティッシュ’バンク[UC3D Cancer Center T i5sue Bank]から得た。Pancreatic cell preparation Pancreatic tissue obtained from an accidental victim within hours of surgery was ・Center Tissue Bank [UC3D Cancer Center T i5sue Bank].

単一の細胞上清は、ワイヤー・スクリーンに断片を押し通すことにより調製した 。Single cell supernatants were prepared by pushing the fragments through a wire screen. .

得られた細胞を10分間の11000rpの遠心によって採取し、RBCを塩化 アンモニウム細胞溶解によって除去した。残った細胞を洗浄し、40%RPMI 。The resulting cells were collected by centrifugation at 11,000 rpm for 10 minutes, and the RBCs were Ammonium was removed by cell lysis. Wash remaining cells and add 40% RPMI .

50%FC81及び10%DMSoからなる凍結培地中に、100−300百万 細胞/mA’で再懸濁し、l、5厘1’容量にて凍結し、液体窒素中で保存した 。長期間の培養を行うためには、膵臓組織の断片を凍結する前に細胞懸濁液中に 保持させることが必須である。100-300 million in freezing medium consisting of 50% FC81 and 10% DMSo. resuspended at cells/mA', frozen in 5 l, 1' volume, and stored in liquid nitrogen. . To perform long-term culture, pancreatic tissue fragments are placed in cell suspension before freezing. It is essential to maintain it.

インビトロ免疫 すべての工程は滅菌条件下で行った。各膵臓調製物から得た凍結した細胞を37 ℃で穏やかに振盪させて解凍し、RPMI 15ipで2回洗浄した。in vitro immunization All steps were performed under sterile conditions. Frozen cells from each pancreatic preparation were Thaw with gentle shaking at °C and wash twice with RPMI 15ip.

解凍し洗浄した直後に、免疫培養物2mlを用意した。混合培養では、各膵臓は 同数の細胞を最終濃縮物に分配した。次いで、得られた細胞懸濁液を24ウエル の組織培養ざらの内部ウェルに2*l/ウエルで移した。フェリチン又は他の抗 原を明記しているように0−10μg/ml!で加えた。試験する各条件のため に、少なくとも4つのウェルを用意した。多くの抗原濃縮物を使用する場合は、 1つのウェルには抗原を加えなかった。これは、生体内(インビボ)免疫の免疫 前血清と類似している非免疫の対照試料であった。残りの3つのウェルにそれぞ れ異なる量の抗原を加えた。1つの抗原濃縮物のみを使用した場合、2つのウェ ルには抗原を加えず、残りの2つのウェルに明記した濃縮物を加えた。Immediately after thawing and washing, 2 ml of immune cultures were prepared. In mixed cultures, each pancreas is Equal numbers of cells were distributed into the final concentrate. Next, the obtained cell suspension was placed in 24 wells. 2*l/well into the inner wells of a tissue culture dish. ferritin or other anti- 0-10μg/ml as specified in the original! I added it. For each condition to test At least four wells were prepared. When using many antigen concentrates, No antigen was added to one well. This is an in vivo immune system. This was a non-immune control sample similar to the pre-serum. in each of the remaining three wells. Different amounts of antigen were added. If only one antigen concentrate was used, two No antigen was added to one well, and the specified concentrate was added to the remaining two wells.

特に明記しない限り、細胞を抗原と共に3日間培養した。ブライミングの後、各 ウェルから得た細胞を15友A容量遠心管に穏やかに移し、RPMI+2%FC 315++nで1回洗浄し、次いで特に明記しない限りさらに2日間それらを除 去しておいたウェルに戻した。培養上清を5日目に採取し、7日目に抗体の産生 について2日目の分析を行うため、細胞を捨てるか又は再添加した。標準的な発 育培地は、10%FC311%非必須アミノ酸、(Irvine 5cient ific) 2 mMグルタミン、1mMピルビン酸ナトリウム、15oMHE PES、及びジェンタミシンを加えたRPMIから構成されている。Cells were cultured with antigen for 3 days unless otherwise specified. After briming, each Gently transfer the cells from the wells to a 15-volume centrifuge tube and add RPMI + 2% FC. 315++n and then remove them for an additional 2 days unless otherwise specified. I returned it to the well I had left it in. Culture supernatant was collected on the 5th day, and antibody production was detected on the 7th day. Cells were discarded or re-added for day 2 analysis. standard release The growth medium is 10% FC3, 11% non-essential amino acids, (Irvine 5cient ific) 2mM glutamine, 1mM sodium pyruvate, 15oMHE It consists of PES and RPMI with gentamicin added.

抗−フェリチン検定 培養上清中における抗体の抗−フェリチン反応性は以下のようにして評価した。Anti-ferritin assay The anti-ferritin reactivity of the antibody in the culture supernatant was evaluated as follows.

精製フェリチンを0.05M炭酸ナトリウム緩衝液pH9,3中、10μghl にまで希釈した。96ウ工ル丸底1mmulon I平板[Dynatechコ を使用し、0.05 ml/ウェルを4℃で一晩インキユベートした。各上清を フェリチンについて3回、及びラン血清アルブミン(BSA)について2回検定 した。BSAを用いて観察された0D−490値は非特異的なタンパク質反応性 と考えられ、それをフェリチンにて観察された0D−490値から差し引いた。Purified ferritin was added at 10 μghl in 0.05 M sodium carbonate buffer pH 9.3. Diluted to . 96 wool round bottom 1mmulon I flat plate [Dynatech Co., Ltd. 0.05 ml/well was incubated overnight at 4°C. Each supernatant Assayed three times for ferritin and twice for orchid serum albumin (BSA) did. The 0D-490 value observed with BSA is due to non-specific protein reactivity. and was subtracted from the 0D-490 value observed for ferritin.

フェリチン及びBSA結合間のOD値の差はフェリチン反応性と呼ばれる。非免 疫試料及びプライム化試料間のフェリチン反応性の差はフェリチン誘発フェリチ ン反応性と呼ばれる。−晩被覆した後、平板をリン酸緩衝化食塩水(PBS)で 3回洗浄し、PBS中1%のBSAでブロックした。同様の結果が得られる別の 方法では、BSAのブロック工程を省き、0.05%Tveen 20/P B  S中で試料及び試薬を希釈する。The difference in OD values between ferritin and BSA binding is called ferritin reactivity. non-exemption Differences in ferritin reactivity between primed and primed samples indicate ferritin-induced ferritin This is called reactivity. - After overnight coating, the plates were soaked in phosphate buffered saline (PBS). Washed three times and blocked with 1% BSA in PBS. Another with similar results In the method, the BSA blocking step is omitted and 0.05% Tveen 20/P B Dilute the sample and reagents in S.

37℃にて2時間経過後、ブロッキング溶液を除去し、上清0.Q5mfを適当 なウェルに加えた。37℃にて2時間経過後、得られた平板をPBS−0,1% Tween20で5回洗浄し、ペルオキシダーゼ接合化ヤギ抗−ヒトIgMのI mg/ml溶液の1 : 1000希釈物0.05m1を加えた。この第2の試 薬をPBS中10%FC8中に希釈した。37℃にて45分間経過後、得られた 平板をPBS−Tweenで5回洗浄し、0.4菖g/翼lO−フェニレンジア ミン[シグマP−1526]の0.15011/ウエルを0.05Mクエン酸ナ トリウム緩衝液1]H5゜0中に溶解し、0.0175%過酸化水素を加えた。After 2 hours at 37°C, the blocking solution was removed and the supernatant was 0. Q5mf suitable well. After 2 hours at 37°C, the obtained plate was soaked in PBS-0.1%. Washed 5 times with Tween 20 and injected with peroxidase-conjugated goat anti-human IgM. Added 0.05 ml of a 1:1000 dilution of the mg/ml solution. This second test Drugs were diluted in 10% FC8 in PBS. After 45 minutes at 37°C, the obtained Wash the plate 5 times with PBS-Tween and add 0.4 g/wing lO-phenylenedia. 0.15011/well of Min [Sigma P-1526] was added to 0.05M sodium citrate. Thorium Buffer 1] was dissolved in H5°0 and 0.0175% hydrogen peroxide was added.

15−60分後に、2.5M硫酸領 025w1を添加して発色を停止させた。After 15-60 minutes, 2.5M sulfuric acid 025w1 was added to stop color development.

モレキュラー・デバイス[Mo1ecular Devices](マウンテン ビュー、CA)Vマックス速度論平板記録器を使用して0D−490値を記録し た。検定ウェルを50μghlフェリチン又はBSAで被覆し、タンパク質を3 7℃で一晩接着させ、そして第2の試薬がペルオキシダーゼ接合化ヤギ抗−ヒト IgGである以外は、上記と同様にしてヒト1ビG抗−フエリチン反応性を検定 した。Molecular Devices View, CA) Record 0D-490 values using a Vmax kinetic plate recorder. Ta. Assay wells were coated with 50 μghl ferritin or BSA and protein Allow to adhere overnight at 7°C, and the second reagent is peroxidase-conjugated goat anti-human. Human 1 big G anti-ferritin reactivity was assayed in the same manner as above except for IgG. did.

抗−ネズミ免疫グロブリン検定 5ug/mlネズミモノクローナル免疫グロブリンを捕獲抗原として使用する以 外は、抗−フェリチン反応性の検出について既述した基本的な上記の操作を使用 するELISAによって、ポリクローナルヒト抗−マウス免疫グロブリン反応性 を検定した。Anti-murine immunoglobulin assay Using 5ug/ml murine monoclonal immunoglobulin as the capture antigen. Otherwise, use the basic procedures described above for the detection of anti-ferritin reactivity. Polyclonal human anti-mouse immunoglobulin reactivity was determined by ELISA. was tested.

ヒトIgG及びrgMの定量 ヒトIgG及びIgMを以下のようにしてELrSAによって定量した。ヤギ抗 −t: ト1gM又はIgG[Tago](7)3−wg/ml溶液の1=1o o希釈物(7)Q、Q5xl/ウェルを4℃で一晩吸着さ也ヒトIgG又はIg Mについての捕獲剤として利用する。未知の量の免疫グロブリンを含有する上清 を反応性が検出できなくなるまで連続希釈した。この検定プロトコールは、ベル オキシダーゼ接合化第2試薬、ヤギ抗−ヒトHRP−接合化IgM又it1gG を1 : 1000(7)代t)リニl : 5000の希釈度で使用する以外 は抗−フェリチン反応性について記載している方法と同様のものであった。、0 .01がら2.OIIg/xiの範囲で使用する精製ポリクローナルヒトIgM 又はIgGの標準試料によって規定される標準曲線の一次関数の範囲内にOD値 が帰属される希釈度から、未知の試料の濃度を計算した。Quantification of human IgG and rgM Human IgG and IgM were quantified by ELrSA as follows. goat anti -t: 1gM or 1=1o of IgG [Tago] (7) 3-wg/ml solution o Dilution (7)Q, Q5xl/well was adsorbed overnight at 4°C or human IgG or Ig. It is used as a capture agent for M. Supernatant containing unknown amount of immunoglobulin was serially diluted until no reactivity was detected. This assay protocol Oxidase conjugated second reagent, goat anti-human HRP-conjugated IgM or it1gG 1: 1000 (7) t) Rini l: Except for using at a dilution of 5000 The method was similar to that described for anti-ferritin reactivity. ,0 .. 01 Gara 2. Purified polyclonal human IgM for use in the OIIg/xi range or an OD value within the linear function range of the standard curve defined by the IgG standard sample. The concentration of the unknown sample was calculated from the dilution to which it was assigned.

チオンアネートによる抗原−抗体結合の破壊を利用する検定を、既述の抗−フェ リチンELI SAと融和させたMacDonaldらのJ Immuno、  Methods 106.191(1988)から改作し、それを使用してイン ビトロ免疫応答の量を特性化した。免疫した後、培養上清を、検定平板と結合さ せたフェリチンと共にインキュベートし、その平板をP B S −Tween で5回洗浄し、PBSに溶解した明記した濃度のチオシアン酸カリウム1mlを 各ウェルに加え、得られた平板を室温で15分間インキユベートシた。その平板 をP B S −Tweenで5回洗浄し、抗−フェリチン検定を既述のように して終わらせた。高い結合活性を有する上清を検定前に希釈し、試料ごとのフェ リチン結合活性が比較的均一になるようにした。それぞれのチオシアネート濃度 について各上清を2回づつ検定し、別個であるが同一である2つの免疫から得ら れた上溝をそれぞれ試験条件Jこついて分析した。[KSCN]−50値は、フ ェリチンに結合する抗体の量を50%にまで減少させるのに必要とされるチオシ アネートの濃度と規定した。The assay, which utilizes the disruption of antigen-antibody binding by thionanates, was MacDonald et al.'s J Immuno integrated with Lithin ELI SA. Adapted from Methods 106.191 (1988) and using it The amount of in vitro immune response was characterized. After immunization, the culture supernatant was combined with the assay plate. The plate was incubated with PBS-Tween. Wash 5 times with 1 ml of potassium thiocyanate at the specified concentration dissolved in PBS. were added to each well and the resulting plates were incubated for 15 minutes at room temperature. the flat plate were washed 5 times with PBS-Tween and anti-ferritin assay was performed as previously described. I finished it. The supernatant with high binding activity is diluted before assay, and the phase of each sample is The lithin binding activity was made to be relatively uniform. Each thiocyanate concentration Each supernatant was assayed in duplicate for each supernatant obtained from two separate but identical immunizations. The superior grooves were analyzed under test conditions J. [KSCN]-50 value is Thiosycin required to reduce the amount of antibody binding to eritin by 50%. It was defined as the concentration of anate.

リンパ細胞マーカー分析 約1百万個の細胞を試験ごとに使用した。プライミング開始後の明記した時点に 細胞を採取し、発育培地で1回洗浄し、冷PBS十%BSA十0.02Mアジ化 ナトリウム(洗浄緩衝g&)1*i’中に再懸濁した。ヒト重鎖mu、重鎖ガン マ、PCA−1、B1、CD3、CD4、CD訳又はCD25と反応するネズミ モノクローナル抗体と共に、リンパ細胞を4℃で30分間インキュベートした。Lymph cell marker analysis Approximately 1 million cells were used per test. At specified times after priming begins The cells were harvested and washed once with growth medium, then diluted with cold PBS 10% BSA and 0.02M azide. Resuspend in sodium (wash buffer g&) 1*i'. human heavy chain mu, heavy chain cancer Mouse that reacts with Ma, PCA-1, B1, CD3, CD4, CD25 or CD25 Lymphocytes were incubated with monoclonal antibodies for 30 minutes at 4°C.

得られた細胞を、フルオレセイン・イソチオシアネート(F I TC)標識化 アフィニティー単離ヒト吸収ヤギF(ab’)2抗−ネズミIgG[TAGO, バーリンガム、CAEを含有する洗浄緩衝液で3回洗浄し、4℃で30分間その 中に再懸濁した。The obtained cells were labeled with fluorescein isothiocyanate (FITC) Affinity isolated human absorbed goat F(ab')2 anti-murine IgG [TAGO, Wash three times with wash buffer containing Burlingham, CAE and incubate for 30 min at 4°C. resuspended in

次いで、得られた細胞をPBS+1%バラホルムアルデヒド0. 4.ysl中 で4回洗浄し、再懸濁した。EPICSプロフィル・フロー・サイトメーターを 用いる同じ日に、すべての試料について蛍光量を測定した。前方及び90度光り 散乱手段によって、死亡した細胞を排除した。シグナルの感度及び増幅を、蛍光 対照試料(初代抗体として非特異的マウス免疫グロブリンにより標識した細胞) の棚温記録が5%となるように設定した。提示しているデータの計算は、細胞表 面特異的抗体と反応する試料についての記録値から非特異的マウスIgによって 標識した細胞のバックグランド値を差し引(ことによって行った。The obtained cells were then washed with PBS + 1% paraformaldehyde 0.5%. 4. in ysl The cells were washed four times and resuspended. EPICS profile flow cytometer Fluorescence was measured for all samples on the same day of use. Front and 90 degree light Dead cells were eliminated by scattering means. Fluorescent signal sensitivity and amplification Control sample (cells labeled with non-specific mouse immunoglobulin as primary antibody) The shelf temperature record was set to be 5%. Calculations for the data presented are based on the cell table By non-specific mouse Ig from the recorded values for samples that react with surface-specific antibodies. This was done by subtracting the background value of the labeled cells.

B、結 果 単−及び同種混合培養物による免疫応答の比較抗原によってプライムした培養物 由来の上清及び抗原によってプライムした対照培養物由来の上清及び抗原に暴露 させていない対照培養物由来の上清中におけるポリクローナル抗体の抗原反応性 の差異として、抗原依存性の免疫応答をELISAによって測定した。関連のな い2つの膵臓からWI製したリンパ細胞の同時培養により、抗原誘導性の抗原反 応性免疫グロブリンの産生を助け、かつそれを検出するための最良の方法の1つ が提供される。8つの膵臓由来のリンパ細胞を個別に及びまとめて調査した。特 定の膵臓調製物を個別に培養した場合に、低い1gM応答が観察され、これは膵 臓A及び膵臓Bについての第1図に示されている。これとは対照的に、ある膵臓 調製物は試験した殆どの条件下において応答を示さなかった(例えば、第1表の 膵臓D)。しかし、応答性又は非応答性の膵臓2由来の細胞を同時培養した場合 、フェリチン依存性の1gM応答が一定して観察された(第1図、第1表)。抗 原を暴露させていない培養物から評価される非特異的な結合活性も同種培養条件 下で増大した(第1図〕。しかし、非免疫培養物の活性が増大したにも拘わらず 、抗原の存在下における同種刺激により、各膵臓単独で観察される寄与の総計か ら期待されるシグナルよりも大きな抗原誘導シグナルが常に導かれた。B. Results Comparison of immune responses by mono- and allogeneic mixed cultures Antigen-primed cultures Exposure to supernatant and antigen from control cultures primed with supernatant and antigen from Antigen reactivity of polyclonal antibodies in supernatants from untreated control cultures. Antigen-dependent immune responses were measured by ELISA. Not related Antigen-induced antigen reaction was achieved by co-culturing WI-derived lymphocytes from two different pancreases. One of the best ways to help produce and detect reactive immunoglobulin is provided. Lymphocytes from eight pancreases were investigated individually and collectively. Special A low 1 gM response was observed when a given pancreatic preparation was cultured separately; Shown in Figure 1 for Viscera A and Pancreas B. In contrast, some pancreas The preparation showed no response under most of the conditions tested (e.g. in Table 1). pancreas D). However, when cells from responsive or non-responsive pancreas 2 are co-cultured , a ferritin-dependent 1 gM response was consistently observed (FIG. 1, Table 1). anti Non-specific binding activity assessed from cultures that have not been exposed to homogeneous culture conditions (Fig. 1). However, despite the increased activity of non-immune cultures. , is the sum of the contributions observed in each pancreas alone due to allostimulation in the presence of antigen? Antigen-induced signals were always derived that were larger than the expected signals.

計算され観察された応答を、膵臓ASB、C及びDのすべての組合わせに関して 第1表に示す。一般には、2つ以上又は1つのみの膵臓の培養物を用いるよりも 、2つの膵臓を用いるほうが観察される抗原誘導シグナルは大きかった。従って 、2つの膵臓を用いることにより、検出可能な特異的応答を誘導するのに十分で ない活性化と、強力であるために低い量の非特異的抗体応答が抗原誘導反応を抑 える同種活性化との間の最適なバランスが得られると結論された。Calculated and observed responses for all combinations of pancreatic ASB, C and D. Shown in Table 1. In general, rather than using two or more or only one pancreatic culture, , the antigen-induced signal observed using two pancreases was greater. Therefore , by using two pancreases, sufficient to induce a detectable specific response. No activation and a strong and therefore low amount of nonspecific antibody response suppresses antigen-induced responses. It was concluded that an optimal balance between activation and cognate activation can be obtained.

放射線照射した単−及び同種混合膵臓培養物によるフェリチン反応抗体のフェリ チン依存性産生 膵臓1又は膵臓2のいずれかから調製した非免疫同系培養物(第2図)は、フェ リチンと交叉反応する抗体を僅かなレベルで産生じた。フェリチンによるプライ ミングの後は、低いレベルのフェリチン反応性抗体の誘導が観察された。同時培 養により、非特異的な及び特異的な反応性が増大された。単−及び同種混合培養 物に放射線照射すると、すべての応答が破棄された。しかし、混合培養物の1成 分のみを抗原プライミングの前に照射すると、特異的反応性の喪失は無かった。Determination of ferritin-reactive antibodies by irradiated mono- and allogeneic mixed pancreatic cultures Chin-dependent production Non-immune syngeneic cultures (Figure 2) prepared from either pancreas 1 or pancreas 2 were It produced small levels of antibodies that cross-reacted with lytin. Ply with ferritin After treatment, low levels of induction of ferritin-reactive antibodies were observed. simultaneous cultivation The non-specific and specific reactivity was increased by the supplementation. Mono- and homogeneous mixed culture When the object was irradiated, all responses were discarded. However, one member of the mixed culture There was no loss of specific reactivity when irradiating only 1 minute before antigen priming.

膵臓2を放射線照射した場合は、抗原による特異的誘導は約2倍に増大した。こ れらの結果は、同種刺激の成功には機能的B細胞とのただ1つの相手を必要とし 、同種培養物中のいずれかの膵臓が抗原によって刺激され特異的抗体を産生でき 、また第2図に示している混合物の膵臓2由来のB細胞が膵臓1由来のB細胞よ りも、フェリチンと交叉反応する非特異的抗体をより多く産生ずることを示して いる。When pancreas 2 was irradiated, specific induction by antigen increased approximately two-fold. child These results demonstrate that successful allogeneic stimulation requires only one partner, a functional B cell. , either pancreas in allogeneic culture can be stimulated by antigen to produce specific antibodies. , and the B cells derived from pancreas 2 in the mixture shown in Figure 2 are different from the B cells derived from pancreas 1. The study showed that ferritin produced more nonspecific antibodies that cross-reacted with ferritin. There is.

抗原ブライミング及び抗原誘導の抗原反応性抗体の検出のための必要時間膵臓2 由来のリンパ細胞の同時培養物をウマフェリチンの0から1.0μg/寞lの4 つの濃縮物に1.2.3又は4日間暴露させ、抗原に対する初期暴N(プライミ ング)に要する最適な時間を決定した。プライミングの後、細胞をウマフェリチ ン不含の培地中で培養し、検出可能なフェリチン反応性抗体の分泌に必要な最適 な時間を決定した(第3図)。分泌されるフェリチン反応性抗体の低いレベルを さえも検出するためには、1日プライムの培養物が最も長期な抗原不含インキュ ベートである3−5日を要した。さらに、1日プライムの培養物は最も低い濃度 の試験フェリチン0.1μg/mllに対して感受性でなかった。2日間プライ ムの細胞は2−3日インキュベート後に検出可能なフェリチン反応性抗体を産生 じ始め、特にプライム後5日間インキュベートした場合に0. 1μg/履lフ ェリチンに対して感受性であった。3日及び4日間プライムの培養物は、ウマフ ェリチン不含の培地中1日のインキュベートの後に検出可能なフェリチン反応性 抗体を産生じた。Required time for antigen priming and detection of antigen-induced antigen-reactive antibodies in the pancreas 2 Co-cultures of lymphoid cells were treated with 0 to 1.0 μg/l of horse ferritin. 1.2.3 or 4 days of initial exposure to the antigen (prime). We determined the optimal time required for After priming, equine fertilize the cells. Optimized for secretion of detectable ferritin-reactive antibodies when cultured in ferritin-free medium. The appropriate time was determined (Figure 3). low levels of secreted ferritin-reactive antibodies 1-day prime cultures are the longest-term antigen-free incubation for It took 3-5 days. Additionally, 1-day primed cultures have the lowest concentration was not sensitive to 0.1 μg/ml of ferritin. 2 days ply cells produce detectable ferritin-reactive antibodies after 2-3 days of incubation. 0.0, especially when incubated for 5 days after priming. 1μg/l foot It was sensitive to eritin. 3-day and 4-day prime cultures were Ferritin reactivity detectable after 1 day of incubation in ferritin-free medium produced antibodies.

一般には、プライミングが長ければ長いほど、抗原を除去した後にフェリチン誘 導のフェリチン反応性抗体が検出可能になるのが早(なる。培養物を3−4日間 ブライミングし、2日以上フェリチンの不存在下に抗体を分泌させれば、2つの 膵臓培養物を使用した場合でさえも、より高いバックグランド反応性は抗原によ る特異的誘導及び過剰の非特異的B細胞活性化の間の区別を妨げる。最も持続的 なフェリチン依存性シグナルは、プライミングを3日間行い、2日間分泌させた 場合、又は4日間ブライミングを行い、1日分泌させた場合に認められる。3日 間ブライミングし、次いで抗原の不存在下に2日間分泌させゐと、免疫及び検出 状態が構成され、これは以後の実験に使用できる。In general, the longer the priming, the more ferritin will be induced after antigen removal. ferritin-reactive antibodies become detectable quickly. By briming and secreting antibodies in the absence of ferritin for more than 2 days, two Even when using pancreatic cultures, higher background reactivity may be due to antigen. precludes the distinction between specific induction and excessive nonspecific B cell activation. most persistent Ferritin-dependent signals were primed for 3 days and secreted for 2 days. It is observed when brimming is performed for 4 days and secretion is allowed for 1 day. 3 days immunization and detection after brining for 2 days and then secreting for 2 days in the absence of antigen. A state is constructed that can be used for further experiments.

3日間の同種培養物のプライミングの後では、フェリチン反応性抗体の産生は1 週間以上持続した。第5図に示す実験では、培養培地を交換し、ブライミングの 後それぞれ2−3日間隔で産生される抗原反応性抗体を測定した。最も高いレベ ルの産生は5−7日目に起こり、その後それぞれ特異的及び非特異的に確かに下 降した。11−13日までに、抗原誘導応答が辛うじて検出でき、13−16日 までにフェリチン反応は観察されなくなった。非特異的反応に対するフエリチン 誘導の反応の比率は明瞭に一定であり、3−5日目に観察される特異性か若干最 適であった。After 3 days of allogeneic culture priming, the production of ferritin-reactive antibodies decreased to 1 Lasted over a week. In the experiment shown in Figure 5, the culture medium was changed and briming Afterwards, the antigen-reactive antibodies produced were measured at intervals of 2-3 days. highest level The production of molecule occurs on days 5-7, after which there is a definite decline in specific and non-specific, respectively. It rained. By days 11-13, antigen-induced responses were barely detectable, and by days 13-16 By then, ferritin reactions were no longer observed. Ferritin for non-specific reactions The rate of induction responses was clearly constant, with a slight peak due to the specificity observed on days 3-5. It was suitable.

抗原誘導の抗原反応性rgG分秘 培養土清を抗原誘導IgG及びIgM分泌に関してモニターした。フエリチン誘 導のフエリチン反応性IgG応答は、抗原反応性のIgMクラス応答よりも低い 頻度であり、それらの検出にはIgM応答に使用したものよりも感度の高いEL ISAを要した。使用した培養条件下では、実験の10−30%にIgG応答が 認められた。この抗原誘導1gG抗体の低い頻度は、一次応答の特徴である;し かじ、他の因子も関与している場合がある。モノクローナル抗体をインビト口免 疫リンパ細胞の融合後に産生させた場合、ポリクローナルIgG応答が観察され ない場合でさえも存効な数のIgGクラスモノクローナルが常に得られた。Antigen-induced antigen-reactive rgG secret Culture medium was monitored for antigen-induced IgG and IgM secretion. Ferritin inducer The primary ferritin-reactive IgG response is lower than the antigen-reactive IgM class response. frequency and their detection requires EL, which is more sensitive than that used for IgM responses. It required an ISA. Under the culture conditions used, IgG responses occurred in 10-30% of experiments. Admitted. This low frequency of antigen-induced 1gG antibodies is characteristic of the primary response; However, other factors may also be involved. In vitro immunoassay of monoclonal antibodies A polyclonal IgG response was observed when produced after fusion of epinephrine lymphocytes. A viable number of IgG class monoclonals was always obtained even when there were no.

rgG応答はある種の牌臓及び牌臓混合物を用いると、他のものを用いるよりも 確実に観察されたが、種々の牌臓から得られた細胞の細胞マーカー分析によって はある1つの牌臓からのIgG分泌が支持され、他の牌臓からのものは支持され ないという相違は認められなかった。IgG応答が観察されると、それらの発現 は1つの実験内では一致している。第4図に示しているように、フェリチン誘導 のフェリチン反応性1gG抗体の出現の動力学はIgM応答の実験と同等(パラ レル)であった。しかし、9−11日までには、非特異的IgG反応は観察され ず、フエリチン反応性1gGの検出はフエリチンに対する暴露に完全に依存して いた。The rgG response is greater with some spleen and spleen mixtures than with others. This was definitely observed, but cell marker analysis of cells obtained from various spleens revealed that IgG secretion from one spleen is supported, but not from another spleen. No difference was observed. Once IgG responses are observed, their expression are consistent within one experiment. As shown in Figure 4, ferritin induction The kinetics of appearance of ferritin-reactive 1gG antibodies is comparable to experiments with IgM responses (para. Rel). However, by days 9-11, no non-specific IgG responses were observed. However, the detection of ferritin-reactive 1gG is completely dependent on exposure to ferritin. there was.

10日を有意に越える同種培養によるIgM又はIgGいずれかの応答の長期化 は、同種の細胞による細胞毒性死滅に由来した細胞死亡率がこのときまでに有意 に増大していたため認められず、又は期待されなかった。Prolonged response of either IgM or IgG by allogeneic culture for significantly more than 10 days By this time, the cell death rate derived from cytotoxic killing by the same type of cells was significant. It was not recognized or expected because it had increased significantly.

種々の条件下に産生されるポリクローナルなフェリチン反応性抗体の相対的親和 力/結合活性の分析 チオンアネートに暴露することにより、ELISA平板に結合した抗原からの抗 体溶出の容易さを定量し、それを用いて種々の抗体調製物の結合の相対強度を評 価した。この方法は、インビトロ産生したフエリチン誘導のフエリチン反応性抗 体が、非免疫培養物にて検出される非特異的なフエリチン反応性免疫グロブリン と定量的に区別できるか否かを決定するために応用した。固相結合フェリチンか らのポリクローナル抗体の溶出の容易さは、フエリチンープライム化培養物及び 非免疫対照培養物由来の上清を使用して評価した。第5図に示されているように 、プライム化培養物由来の抗体は溶出のために非免疫培養物由来の上清よりも高 いレベルのチオシアネートを必要とした。非免疫及びプライム化培養物によって 起こる結合活性の50%を溶出するのに必要なチオシアネートのモル濃度([K SCNコー50)は2.0M及び2.6Mであった。Relative affinity of polyclonal ferritin-reactive antibodies produced under various conditions Analysis of force/binding activity Antigens bound to ELISA plates are removed by exposure to thionanate. quantify the ease of body elution and use it to assess the relative strength of binding of various antibody preparations. I valued it. This method uses ferritin-induced ferritin-reactive antibodies produced in vitro. Non-specific ferritin-reactive immunoglobulin detected in non-immune cultures It was applied to determine whether it is possible to quantitatively distinguish between Solid phase bound ferritin? The ease of elution of these polyclonal antibodies from ferritin-primed cultures and Supernatants from non-immune control cultures were used for evaluation. As shown in Figure 5 , antibodies from primed cultures require higher concentration than supernatants from non-immune cultures for elution. required high levels of thiocyanate. by non-immunized and primed cultures The molar concentration of thiocyanate required to elute 50% of the resulting binding activity ([K SCN code 50) was 2.0M and 2.6M.

この方法を使用すれば、種々の培養条件下に生成させるフェリチン誘導抗体の結 合特性も評価された。高い親和力を有する抗体を産生じたいときには、応答の本 質とは無関係な相対的な特性の評価が誤り導かれる場合がある。種々の培養条件 下に産生されたポリクローナル抗体混合物のフエリチン結合強度をチオシアネー ト溶出により分析すると、抗体結合強度に免疫条件への有意な依存性が認められ た。さらに、この依存性は、上記のELISA分析によって認められるフエリチ ン誘導応答の強さからでは予測することができなかった。種々の条件下に抗原の 存在又は不存在下にプライムした2つの培養物の[KSCN] −50の値を第 2表に示す。応答性の牌臓Bから得た細胞の単一培養物はフェリチン誘導のフェ リチン反応性IgMを産生じたが、[KSCN]−50値は免疫した培養物及び 対照培養物と同様であった。これとは対照的に、10%FCSを含有する培地中 にてフエリチンによってプライムした牌臓A+Bの同時培養物は、非免疫培養物 によって産生された抗体よりも有意に高い[KSCN] 50値の抗体を産生じ た。免疫培養物及び対照培養物間の差は、7−9日に産生抗体のピークに達した が、9日後には産生抗体は微々たるものになった。Using this method, the binding of ferritin-induced antibodies produced under various culture conditions is possible. The joint characteristics were also evaluated. When you want to produce antibodies with high affinity, you need to Evaluations of relative characteristics unrelated to quality may be misleading. Various culture conditions The ferritin binding strength of the polyclonal antibody mixture produced under thiocyanate When analyzed by elution, a significant dependence of antibody binding strength on immunization conditions was observed. Ta. Furthermore, this dependence is consistent with the ferri This could not be predicted based on the strength of the ion-induced response. of antigen under various conditions. The value of [KSCN]-50 for the two cultures primed in the presence or absence of It is shown in Table 2. Monocultures of cells from responsive spleen B showed ferritin-induced effects. produced lytin-reactive IgM, but [KSCN]-50 values were lower than that of immunized cultures and similar to control cultures. In contrast, in medium containing 10% FCS Co-cultures of spleen A+B primed with ferritin in produced antibodies with significantly higher [KSCN]50 values than those produced by Ta. Differences between immune and control cultures reached peak production of antibodies on days 7-9 However, after 9 days, the amount of antibodies produced was negligible.

血清の不存在下に抗原によって同種培養物をNo−20時間暴露すると、ELI SAによって測定されるフエリチン誘導のフェリチン反応性抗体のレベルは通常 増大するが、それは非免疫培養物のバックグランド活性が比較的低いからである 。しかし、免疫培養物及び対照培養物間の[KSCNコ−50値の差は、培養物 にFCSを継続して加える場合と比較して、初期ブライミングの際にFCSを存 在させない場合のように大きくなく、又は首尾一貫したものではなかった(第2 表)。これの結果は、所望の特性及び量の抗体誘導のための種々の活性化の形態 間にバランスを取らせることの重要性を示している。Exposure of allogeneic cultures by antigen in the absence of serum for No-20 hours resulted in ELI Levels of ferritin-induced ferritin-reactive antibodies measured by SA are usually increased because the background activity in non-immune cultures is relatively low. . However, the difference in [KSCN co-50 values between immune and control cultures Preserving FCS during initial brimming compared to continuously adding FCS to was not as large or consistent as it would be if it were not present (Second table). The result of this is that various forms of activation are available for the induction of antibodies of desired properties and amounts. This shows the importance of striking a balance between the two.

抗原誘導の抗原反応性rg分泌及び全Tg分泌に対する非リンホカイン因子の効 果 非リンホカイン因子のムラミル・ジペプチド(MDP)及びアメリカヤマゴポウ ・マイトジェン(PWM)のフェリチン誘導フェリチン特異的応答に対する効果 を、単一培養物及び同種混合培養物の両方を使用して試験した(第3表)。PW Mは全体のIg分泌を刺激したが、抗原による特異的な誘導は増大させなかった 。MDPも全体的にIg分泌を刺激し、第3表に示している実験において抗原の 暴露の効果を増大させた。しかし、MDPによる特異的刺激は首尾一貫しておら ず、次善(sub−optimal)の培養条件下においてのみ普通に観察され た(データは示していない)。これらの結果はさらに、同種の2つの牌臓培養物 は抗原特異的な応答誘導のための充分な刺激を与え、また付加的な非特異的な有 糸分裂誘発性の刺激は抑制されるか又は普通にはそれが必要とされないことを示 していた。Effects of non-lymphokine factors on antigen-induced antigen-reactive RG secretion and total Tg secretion Fruit Non-lymphokine factors muramyl dipeptide (MDP) and pokeweed ・Effect of mitogen (PWM) on ferritin-induced ferritin-specific response were tested using both monocultures and homogeneous mixed cultures (Table 3). P.W. M stimulated global Ig secretion but did not increase specific induction by antigen. . MDP also stimulates Ig secretion globally, and in the experiments shown in Table 3, Increased the effects of exposure. However, the specific stimulation by MDP is inconsistent. However, it is commonly observed only under sub-optimal culture conditions. (data not shown). These results further demonstrate that two spleen cultures of the same species provides sufficient stimulation for the induction of antigen-specific responses and also provides additional non-specific The mitogenic stimulus is suppressed or indicates that it is not normally required. Was.

ウマフェリチンに対するインビトロ応答への接着細胞の影響免疫培養物を作成す るための最初のプロトコールには、抗原によって刺激する前に解凍してそこから 回収できる大型フラスコでの一晩インキュベートが包含される。この工程により 、接着細胞は枯渇される。枯渇培養物と非枯渇培養物とを比較することにより、 非枯渇培養物が枯渇培養物よりもウマフェリチンに対してより良好に応答するこ とが判明した(第6図)。牌臓2単独ではいずれの条件下でも有意に応答しなか ったが、枯渇培養物にて応答しない牌臓1は、低濃度の抗原に対する限定された 応答を示し、接着細胞が枯渇されていない場合は高いレベルに対して大きな応答 を示した。牌臓1及び2の混合培養物では、接着細胞が枯渇されていない場合、 非プライム化細胞の反応性が減少し、低レベルの抗原に対する感受性が増大した 。これらの結果は、最適な数の接着細胞の存在下に免疫を行った場合に、より効 率的に抗原が提示され得ることを示している。The influence of adherent cells on the in vitro response to horse ferritin. The initial protocol for this includes thawing and then thawing the cells before stimulation with antigen. Includes overnight incubation in large flasks that can be harvested. This process , adherent cells are depleted. By comparing depleted and non-depleted cultures, Non-depleted cultures respond better to horse ferritin than depleted cultures. It was found that (Figure 6). Pile 2 alone did not respond significantly under any conditions. However, spleen 1, which did not respond in depleted cultures, showed limited response to low concentrations of antigen. response and a large response to high levels if adherent cells are not depleted showed that. In mixed cultures of spleens 1 and 2, if adherent cells are not depleted, Decreased reactivity of unprimed cells and increased sensitivity to low levels of antigen . These results suggest that immunization is more effective when performed in the presence of an optimal number of adherent cells. This shows that the antigen can be efficiently presented.

ヒトフェリチンに対するインビトロヒト免疫応答ヒトフェリチンに対する応答も 試験し、ヒト及び外来抗原に対するインビトロにおけるヒト免疫応答が検出でき るか否かを決定した。ウマフェリチンに対する継続的な応答に役立つ条件下の接 着細胞の枯渇培養物において、ヒトフェリチンに対する応答が観察されたく第6 C図、第7図)。しかし、解凍したばかりの牌臓細胞を一晩プレインキユベート しなかった場合、その細胞はウマフエリチンに対して良好に応答するばかりでな く、ヒトフェリチンに対しても正に応答していた(第6D図、第7図)。枯渇培 養物をヒトフエリチンで2日間プライムし、次いで3日ではなく5日間の分泌期 間でインキュベートレこ場合、ヒトフエリチンに対する小さな応答が認められた 。ブライミングの際に接着細胞で枯渇培養空を再構成すると、2日間分泌の後に ヒトフエリチンに対する応答がここでも観察された。In vitro human immune response to human ferritinResponse to human ferritin also tested to detect human immune responses in vitro to human and foreign antigens. It was decided whether or not to proceed. Contact conditions that favor a sustained response to equine ferritin No response to human ferritin was observed in cultures depleted of adherent cells. Figure C, Figure 7). However, pre-incubating freshly thawed spleen cells overnight If not, the cells will not only respond well to equine ferritin. In addition, it also responded positively to human ferritin (Figures 6D and 7). Depleted culture Prime the feed with human ferritin for 2 days, then a 5 day secretion period instead of 3 days. In this case, a small response to human ferritin was observed after incubation between . Reconstitution of the depleted culture empty with adherent cells during briming results in a secretion after 2 days. A response to human ferritin was also observed here.

非枯渇培養物によるヒトフエリチン誘導IgG応答も幾つかの実験で観察された (第7A図)。特異的なIgG応答は比較的低いが、IgM応答は匹敵していた 。Human ferritin-induced IgG responses by non-depleted cultures were also observed in some experiments. (Figure 7A). Specific IgG responses were relatively low, but IgM responses were comparable .

外来免疫グロブリンによるインビト口抗原ブライミングフエリチンについて開発 したインビトロ免疫条件が他のタンパク質抗原にも適用できるか否かを評価する ため、ネズミモノクローナルIgG抗体によるブライミングに対する反応性を、 ウマ及びヒトフェリチンに対する応答を支持する条件下で試験した。2つのモノ クローナル調製物に対して応答する抗原誘導の抗原反応性1gM抗体を検出した く第8図)。一般に、モノクローナルネズミ免疫グロブリンについて検定するほ うが、フエリチンについて検定するよりも非免疫化上清のバンクグランド反応性 が低かった。ポリクローナルな抗原依存性1gG反応性はこれらの抗原を用いて は観察されなかったが、ネズミモノクローナル抗体でプライムしたリンパ細胞の 融合により、抗原特異的なIgG及び1gMクラスのモノクローナル抗体が産生 された。Development of in vitro oral antigen briming ferritin using foreign immunoglobulin Evaluate whether the in vitro immunization conditions developed can be applied to other protein antigens. Therefore, the reactivity to briming with murine monoclonal IgG antibody was Tested under conditions supporting response to equine and human ferritin. two things We detected antigen-induced antigen-reactive 1 gM antibodies in response to the clonal preparation. Figure 8). In general, assays for monoclonal murine immunoglobulin bank ground reactivity of non-immunized supernatants than assayed for ferritin. was low. Polyclonal antigen-dependent 1gG reactivity using these antigens was not observed in lymphocytes primed with murine monoclonal antibodies. Fusion produces antigen-specific IgG and 1gM class monoclonal antibodies It was done.

細胞凝集 ブライミングの開始後10−20時間で、培養ざらの底に肉眼で見ることのでき る多くの細胞凝集体が現れた。激しい吸引により解離させると、凝集体は数時間 で再生を始めた。この大きさは、抗原の存在、濃度及び性質、細胞密度、並びに 同種リンパ細胞の存在によって左右された。抗原不含の培養物は、肉眼でかろう じて検出できる程の凝集体を形成した。ウマフェリチンへの暴露により、ヒトフ ェリチンよりも大きな凝集体が誘導された。低分子量の大して複雑でない混合抗 原、例えばネズミ免疫グロブリンは、非プライム化培養物によって認められるよ りも僅かに大きな凝集体を誘導した。また、同種培養物では、単一培養物よりも 大きな凝集体が誘導された。細胞の凝集は、Fe2の存在によっても影響された 。抗原依存性の応答を減少させないならば、ブライミング時の15−20時間、 Fe2の添加を遅らせることができるが、肉眼で見える凝集体はFe2の添加後 数時間が経過するまで形成し始めなかった。cell aggregation 10-20 hours after the start of briming, no visible spots are visible on the bottom of the culture colander. Many cell aggregates appeared. When dissociated by vigorous suction, aggregates remain for several hours. started playing. This size depends on the presence, concentration and nature of the antigen, cell density, and depended on the presence of allogeneic lymphoid cells. Antigen-free cultures are invisible to the naked eye. Aggregates were formed to the extent that they could be detected immediately. Exposure to horse ferritin causes human Larger aggregates than erithin were induced. Low molecular weight, uncomplicated mixed antisense substances, e.g. murine immunoglobulins, as seen by unprimed cultures. Also induced slightly larger aggregates. Also, in allogeneic cultures, compared to monocultures, Large aggregates were induced. Cell aggregation was also affected by the presence of Fe2 . 15-20 hours during briming, unless antigen-dependent responses are reduced. Addition of Fe2 can be delayed, but macroscopic aggregates are visible after addition of Fe2. It did not begin to form until several hours had passed.

細胞マーカー分析 細胞マーカー分析により、ヒト膵臓細胞は適当な条件下で培養すると、限定した 程変で分化できることが示された。ブライミングの開始後、O13,5,7及び 】0日間に膵臓B+Dを使用し、以下の細胞表面マーカーを分析した・IgG。Cell marker analysis Cell marker analysis shows that human pancreatic cells, when cultured under appropriate conditions, have limited It has been shown that it can be differentiated in different stages. After the start of briming, O13, 5, 7 and ] Pancreas B+D was used on day 0 and the following cell surface markers were analyzed: IgG.

IgM、Bl、PCA−1、T3、T4、T8、及びIL−2レセプター(CD 25)。膵臓B及びDは、膵臓り調製物が膵臓Bよりも17%少ない表面1gM 担持細胞を含有している以外は、有意に異なるところは無かった。同種培養物を 用いて観察される時間の関数としての変化は、細胞担持表面IgGS IgM及 びB1のバーセンテイジの約50%の減少であった(第4表)。T8陽性細胞の バーセンテイジは若干増大し、他方T3陽性細胞は相対的に変化せず、T4陽性 細胞は若干減少した。著しい時間依存性の変化には、IL−2レセプター担持細 胞のバーセンテイジが開始3日前から始まって鋭く約10倍に増大し、次いで5 日と7日の間にPCA−1陽性細胞のバーセンテイジが約2倍に増大することが あり、これらはB1担持細胞の減少と類似していた。細胞表面の変化はフェリチ ンによって有意に影響を受けなかった。単一培養物では、類似しているが弱めの 著しい細胞表面の変化が認められた。IgM, Bl, PCA-1, T3, T4, T8, and IL-2 receptors (CD 25). Pancreas B and D have 17% less surface 1 gM than pancreas B. There were no significant differences other than the presence of carrier cells. allogeneic culture The changes as a function of time observed using cell-bearing surface IgG, IgM and This was about a 50% decrease in the percentage of B1 and B1 (Table 4). T8 positive cells The percentage increased slightly, while T3-positive cells remained relatively unchanged and T4-positive The number of cells decreased slightly. Significant time-dependent changes occur in IL-2 receptor-bearing cells. The percentage of cells sharply increased about 10 times starting 3 days before the start, and then increased by 5 times. The percentage of PCA-1 positive cells approximately doubled between days 1 and 7. , and these were similar to the decrease in B1-bearing cells. Changes on the cell surface are ferritic was not significantly affected by In monocultures, a similar but weaker Significant cell surface changes were observed.

ウマフェリチンに対して産生されたモノクローナル抗体ヒトリンパ細胞の同種培 養物をウマ膵臓フェリチンで1.2又は5日間プライムし、次いで融合した(第 1表)。異なっているが同一の2つの融合、4及び5を同一の5日プライム培養 物を用いて行い、融合−融合の再現性を評価した。さらなる組みの細胞を1日間 培養物中にて維持させるが、ウマフェリチンに強(は暴露させなかった(融合1 )。融合頻度、rg分泌、抗原反応性モノクローナル抗体の産生、及び抗原特異 的なモノクローナル抗体の産生を各融合物ごとにモニターした。Monoclonal antibody raised against horse ferritin in homogeneous culture of human lymphocytes Cultures were primed with horse pancreatic ferritin for 1.2 or 5 days and then fused (first (Table 1). Two different but identical fusions, 4 and 5, in the same 5-day prime culture The reproducibility of fusion-fusion was evaluated. Additional sets of cells for 1 day maintained in culture but not exposed to horse ferritin (fusion 1). ). Fusion frequency, rg secretion, production of antigen-reactive monoclonal antibodies, and antigen specificity Production of specific monoclonal antibodies was monitored for each fusion.

融合頻度は、1から5日間のフェリチンによるプライム細胞の場合と同様である が(35’−50クローン/百万リンパ細胞)、非免疫細胞はプライム化細胞よ りも低い頻度で融合された(17クローン/百万リンパ細胞)。非免疫細胞は低 く活性化されるようであり、プライム化細胞よりも小さな肉眼で見ることのでき る凝集体を形成する。フェリチン−プライム化培養物中の細胞の数は、対照培養 物と比較して有意に増大しなかった。Fusion frequency is similar for primed cells with 1 to 5 days of ferritin. (35'-50 clones/million lymphocytes), but non-immune cells are similar to primed cells. They also fused at a low frequency (17 clones/million lymphocytes). Non-immune cells are low They appear to be highly activated and are visible to the naked eye, which are smaller than primed cells. form aggregates. The number of cells in the ferritin-primed cultures was the same as that of the control cultures. It did not increase significantly compared to the actual product.

これらの融合において産生される高いパーセンテイジのハイブリドーマクローン は免疫グロブリンを分泌した(20−60%)。第1表に記載する融合の組みで は、IgG分泌クローンはIgM分泌クローンよりも5−10倍多く存在した。A high percentage of hybridoma clones produced in these fusions secreted immunoglobulins (20-60%). With the fusion combinations listed in Table 1 There were 5-10 times more IgG-secreting clones than IgM-secreting clones.

本発明者らの研究では、大多数の融合物がおよそ同数のIgG及びIgM分泌ハ イブリッドを産生じた(第2表及び第3表を参照のこと)。In our studies, the majority of fusions have approximately equal numbers of IgG and IgM secretors. (See Tables 2 and 3).

一般には、フェリチン特異的な及びフェリチン反応性のモノクローナル抗体の誘 導パターンは類似していた(フェリチン反応性モノクローナル抗体とフェリチン 特異的モノクローナル抗体との結合特異性を比較している第9図を参照のこと) 。IBだけの7エリチンへのaπは、非免疫の対照培養物から産生されるものと 比較してフェリチン反応性又はフェリチン特異的なハイブリドーマのパーセンテ イジを有意に増大させなかった。比較的多くの数のフェリチン反応性ハイブリッ ドが1日免疫の細胞から産生されたが、融合頻度は増大した。ブライミングの2 日後に、フェリチン反応性クローンのバーセンテイジは5−6%から16%に上 昇した。5日後には、そのレベルは10−12%に下降したが、1日培養した細 胞に観察されるバックグランドよりも依存として有意に高かった。8又は15日 と同じ長さでフェリチンを暴露した細胞は同様に高い頻度で融合した。しかし、 試験した93個以外では、いずれも安定なフェリチン反応性モノクローナル抗体 を分泌しなかった。In general, the induction of ferritin-specific and ferritin-reactive monoclonal antibodies The conduction patterns were similar (ferritin-reactive monoclonal antibody and ferritin (See Figure 9 comparing binding specificity with specific monoclonal antibodies) . aπ to 7erithin of IB only was compared to that produced from non-immune control cultures. Percentage of ferritin-reactive or ferritin-specific hybridomas compared to It did not significantly increase the number of bullshit. A relatively large number of ferritin-reactive hybrids was produced from cells immunized for 1 day, but the frequency of fusion increased. Briming 2 After days, the percentage of ferritin-reactive clones increased from 5-6% to 16%. rose. After 5 days, the level had dropped to 10-12%, but in cells cultured for 1 day. The background observed in the cells was significantly higher as a function of the background. 8 or 15 days Cells exposed to ferritin for the same length of time fused with a similarly high frequency. but, Other than the 93 tested, all were stable ferritin-reactive monoclonal antibodies. did not secrete.

最初はELISAによってフェリチンと反応していたすべての抗体分泌クローン をさらにフェリチン特異性について試験した。最初に同定された多(のモノクロ ーナル抗体は他のタンパク質と交叉反応したが(第9図)、本発明者らは、特定 の条件又は抗原が他のものよりも高いパーセンテイジの特異的抗体を誘導するか 否かを決定するための指標をモニターした。このような培養条件は同定されなか ったが、同種抗原がウマフェリチンよりも高いパーセンテイジの特異的抗体を誘 導した(第8表)。All antibody-secreting clones that initially reacted with ferritin by ELISA was further tested for ferritin specificity. The first identified poly(monochrome) Although the null antibody cross-reacted with other proteins (Figure 9), the present inventors condition or antigen induces a higher percentage of specific antibodies than others We monitored indicators to determine whether or not. Such culture conditions have not been identified. However, alloantigens elicited a higher percentage of specific antibodies than equine ferritin. (Table 8).

ヒトフェリチンに対して産生されるモノクローナル抗体同様の一連の融合では、 ウマフェリチンを用いる代わりにヒトフェリチンを用いて免疫したリンパ細胞を 使用した(第6表)。融合1−3では、2日間培養中に維持させたリンパ細胞を 使用した。融合1は、故意にフェリチンに暴露させないリンパ細胞を使用し、融 合2及び3は0.25μgklフェリチンでプライムした。融合2及び3は同一 であったが、融合−融合の変動を評価するために別々に維持させた。融合5及び 6は、0.25μg/xlヒトフェリチンに代わって2゜5μg/真lヒトフェ リチンを用いるブライミングの開始後4日及び6日目に、それぞれ行った。In a series of fusions similar to monoclonal antibodies produced against human ferritin, Lymphocytes immunized with human ferritin instead of horse ferritin (Table 6). In fusion 1-3, lymphocytes maintained in culture for 2 days were used. Fusion 1 uses lymphocytes that are intentionally not exposed to ferritin and is Cases 2 and 3 were primed with 0.25 μg kl ferritin. Fusion 2 and 3 are the same were maintained separately to assess fusion-fusion variation. Fusion 5 and 6 is 2.5 μg/xl human ferritin instead of 0.25 μg/xl human ferritin. Brimming was carried out on the 4th and 6th day after the start of briming using litin, respectively.

0.25μgl譚Rヒトフェリチンで2日間プライムした細胞の融合頻度は、対 照である非免疫細胞の融合頻度よりも高かったが、0.25μg/mlウマフェ リチンで免疫した細胞と同等には高くなかった。さらに、培養物をヒトフェリチ ンでプライムした場合の細胞凝集体も、ウマフェリチンを用いた場合よりも小さ かった。10倍高いレベルのヒトフェリチンで4又は6日間免疫した細胞は、0 .25μg/llウマフェリチンでプライムした培養物と同等の頻度で融合した 。ウマフェリチンでプライムした細胞の融合頻度はブライミングの時間に影響さ れないので、融合2及び3と比較して高い頻度の融合4及び5は使用するヒトフ ェリチンの濃度が比較的高いことに由来していると考えられるが、融合−融合の 変動は排除することができない。The fusion frequency of cells primed for 2 days with 0.25 μg ltanR human ferritin was The fusion frequency was higher than the fusion frequency of non-immune cells, which is the target, but the fusion frequency was higher than that of non-immune cells. It was not as high as in cells immunized with ritin. In addition, the cultures were Cell aggregates were also smaller when primed with horse ferritin than when primed with horse ferritin. won. Cells immunized for 4 or 6 days with 10 times higher levels of human ferritin showed 0 .. fused at a frequency comparable to that of cultures primed with 25 μg/ll horse ferritin. . Fusion frequency of equine ferritin-primed cells is influenced by briming time. Fusions 4 and 5, which have a higher frequency than Fusions 2 and 3, depend on the human fuse used. This is thought to be due to the relatively high concentration of erritin, but the fusion-fusion Fluctuations cannot be excluded.

これらの融合では、2−4日間培養物中に維持されたリンパ細胞から産生される ハイブリッドの30−45%が免疫グロブリンを分泌した。フェリチンは、産生 されるIg分泌ハイブリッドの数には影響を与えなかった。しかし、融合4及び 5を比較すると、6日間プライムした細胞が、4日間プライムした細胞よりも遥 かに少ない分泌性クローンを産生ずることが判明した(8%に対して44%)。These fusions are produced from lymphoid cells maintained in culture for 2-4 days. 30-45% of hybrids secreted immunoglobulin. Ferritin is produced did not affect the number of Ig-secreting hybrids produced. However, fusion 4 and 5, cells primed for 6 days are much more active than cells primed for 4 days. It was found to produce significantly fewer secretory clones (44% versus 8%).

この結果は、8及び15日間ウマフェリチンで免疫した細胞における融合の低い 生産性と類似している。細胞マーカー分析に従って、B1+細胞のパーセントは 減少し、形質(PCA−1+)細胞のパーセントは5及び7日間で2倍増大した 。This result demonstrates the low level of fusion in cells immunized with horse ferritin for 8 and 15 days. Similar to productivity. According to cell marker analysis, the percentage of B1+ cells was The percentage of plasmatic (PCA-1+) cells increased 2-fold over 5 and 7 days. .

これらの結果は、Ig分泌性ハイブリッドが形質細胞への分化後でなく分化前に 融合されるB細胞から産生されるように思われること、及び殆どの生産性融合は 1日以上であるが5日以上でない期間免疫した細胞から得られることを示してい る。These results indicate that Ig-secreting hybrids are produced before, but not after, differentiation into plasma cells. that it appears to be produced from the B cells that are fused, and that most productive fusions indicates that it is obtained from cells that have been immunized for a period of at least 1 day but not at least 5 days. Ru.

ネズミモノクローナル免疫グロブリンに対して産生されるモノクローナル抗体ネ ズミモノクローナル抗体に対するヒト抗−イディオタイプモノクローナル抗体を 生産するために、ネズミモノクローナル抗体に対するヒトインビトロ免疫応答を 試験した。ヒトリンパ細胞の同種培養を2μg/mlネズミモノクローナル抗体 で2.3又は4日間プライムした(第7表、融合2.3.4及び5)。融合1で 使用した細胞は2日間培養したが、特異抗原によってプライムしなかった。融合 3及び4は、融合4細胞を標準的な3百万細胞/瑚lの代わりに1.5百万細胞 /菖lで培養する以外は同一であった。類似した融合頻度がそれぞれの免疫にお いて観察された。プライムされていない細胞はここでも低い融合原性(fuso genic)であった。同定された抗原反応性クローンの中の63%が抗原特異 的であった。Monoclonal antibodies produced against murine monoclonal immunoglobulin Human anti-idiotypic monoclonal antibody against Zumi monoclonal antibody To produce human in vitro immune responses to murine monoclonal antibodies, Tested. Allogeneic cultures of human lymphocytes were incubated with 2 μg/ml murine monoclonal antibody. for 2.3 or 4 days (Table 7, Fusions 2.3.4 and 5). With fusion 1 The cells used were cultured for 2 days but were not primed with specific antigen. fusion 3 and 4, the fused 4 cells were added to 1.5 million cells instead of the standard 3 million cells/a. The cells were the same except that they were cultured in /Iris. Similar fusion frequencies occur in each immune system. It was observed that Unprimed cells also have low fusogenicity (fuso genic). 63% of identified antigen-reactive clones are antigen-specific It was a target.

抗原反応性1gGクローンの92%が抗原特異的であり、IgM抗原反応性クロ ーンは50%しか特異的でなかった。この結果は、IgG抗体の予想される特異 性の増大と一致するものである。92% of antigen-reactive 1gG clones are antigen-specific, whereas IgM antigen-reactive clones are antigen-specific. The sample was only 50% specific. This result supports the expected specificity of IgG antibodies. This is consistent with an increase in sexuality.

融合のまとめ ウマフェリチン、ヒトフェリチン、又はネズミモノクローナルIgG免疫グロブ リンのいずれかによって免疫したリンパ細胞の融合の結果を第8表にまとめる。Fusion summary Equine ferritin, human ferritin, or murine monoclonal IgG immunoglobules The results of fusion of lymphocytes immunized with either phosphorus are summarized in Table 8.

外来タンパク質のいずれかで免疫した細胞から産生されるハイブリッドの中の9 −10%が抗原反応性であった。ヒトフェリチンで免疫した細胞から得られるク ローンの中の3%しか抗原反応性でなく、この結果はヒトタンパク質の比較的低 い免疫原性から予想することができるものであろう。ウマフェリチンでプライム した細胞から産生される抗原反応性ハイブリッドの中の29%は高い抗原反応性 を示す。ヒトフェリチン(65%)又はネズミIgG分子(63%)のいずれか でプライムした細胞から産生されるモノクローナル抗体についての抗原特異性は 、抗原反応性ハイブリドーマの数と比較して非常に高かった。ヒトフェリチン又 はネズミIgGによるよりも大きなウマフェリチンによる見かけのリンパ細胞活 性化は、ウマフェリチンプライム化細胞由来の交差反応性抗体の産生の増大に関 係している場合がある。抗原特異的なIgMとIgG産生の比較により、最も高 い比率のIgM:IgG抗体は同種のヒトフェリチンによる免疫によって得られ ることが示された。異種抗原による免疫は、IgMクラス抗体の産生に対して低 い傾向をフェリチン反応性モノクローナル抗体の産生を、96ウエル平板のハイ ブリッド発育を用いて始めはモニターした。ハイブリッドクローンをまず分泌性 のフェリチン反応性抗体として同定する場合は、最小限の数の3継代としてそれ を48ウエル平板に、次いで24ウエル平板に拡大した。各継代の際にフェリチ ン反応性モノクローナル抗体の存在をモニターした。フェリチン反応性抗体の分 泌について始めは陽性であるクローンの約50%が3回の継代以内でその産生性 を喪失した(第9表)。3つの継代にわたって安定であるハイブリッドの中から 、さらなる研究のために使用するハイブリッド、及び第5表−第7表に示したデ ータを編集するために使用するノゾブリッドを選択した。これらの選択したクロ ーンは殆ど、少なくとも数カ月の間は安定性を保持していた。従って、不安定な ハイブリッドはこの操作の早期に排除され得、残ったハイブリッドは維持された 抗体産生の高い可能性(〉90%)を有している。9 of the hybrids produced from cells immunized with either the foreign protein -10% were antigen-reactive. Clocks obtained from cells immunized with human ferritin Only 3% of the loans were antigen-reactive, a result that reflects the relatively low abundance of human proteins. This could be expected from its low immunogenicity. Primed with equine ferritin 29% of antigen-reactive hybrids produced from cells with high antigen reactivity shows. Either human ferritin (65%) or murine IgG molecules (63%) The antigen specificity of monoclonal antibodies produced from cells primed with , which was very high compared to the number of antigen-reactive hybridomas. human ferritin mata The apparent lymphocyte activation by horse ferritin was greater than that by murine IgG. Sexualization is associated with increased production of cross-reactive antibodies from equine ferritin-primed cells. It may be related. A comparison of antigen-specific IgM and IgG production revealed that the highest A high ratio of IgM:IgG antibodies was obtained by immunization with homologous human ferritin. Rukoto has been shown. Immunization with foreign antigens has a low effect on the production of IgM class antibodies. The production of ferritin-reactive monoclonal antibodies showed a tendency to Breed development was initially monitored. Hybrid clones first become secretory If identified as a ferritin-reactive antibody, identify it as a minimum number of 3 passages. was expanded to a 48-well plate and then to a 24-well plate. Ferici during each passage The presence of reactive monoclonal antibodies was monitored. Ferritin-reactive antibody content Approximately 50% of clones that are initially positive for secretion show their productivity within three passages. (Table 9). Among hybrids that are stable over three passages , the hybrids used for further studies, and the data shown in Tables 5-7. selected Nozobrid to use to edit the data. These selected clones Most of the conditions remained stable for at least several months. Therefore, unstable Hybrids could be eliminated early in this operation and remaining hybrids were retained. Has a high probability (>90%) of antibody production.

抗−フエリチンIgG分泌の定量 フェリチン反応性のIgG抗体を分泌している、全面成長した24ウエルの最終 培養物から得られる上清の抗体濃度を定量的ELISAによって測定した。これ らの条件下で分泌される免疫グロブリンのレベルは1−50μg7mlであった (第10表)。比較的高い親和力の抗−フェリチン抗体の2つをスピナーフラス コにまで規模を拡大し、0. 5 2. OAg/mjl’の産生レベルを得た 。これらのハイブリッド細胞は、フラスコ内よりもスピナー培養において迅速に 発育することが多いが、抗体の産生はより遅かった。この予備的な結果は、コア アクタ−(coreactor) [5ynbiotics、■ncorpor ated、サンジエゴ〕における細胞の発育がスピナー培養における発育よりも 5−10倍高い抗体濃度を導くことを示している。Quantification of anti-ferritin IgG secretion Final fully grown 24-well secreting ferritin-reactive IgG antibody. Antibody concentration in supernatants obtained from cultures was determined by quantitative ELISA. this The level of immunoglobulin secreted under these conditions was 1-50 μg 7 ml. (Table 10). Two relatively high affinity anti-ferritin antibodies were added to a spinner flask. The scale was expanded to 0. 5 2. Obtained the production level of OAg/mjl' . These hybrid cells grow more quickly in spinner cultures than in flasks. They often grew, but antibody production was slower. This preliminary result shows that the core Actor (coreactor) [5ynbiotics, ■ncorpor ated, San Diego] than in spinner culture. It has been shown to lead to 5-10 times higher antibody concentrations.

フェリチン特異的なモノクローナル抗体の特性化プロティンGを用いるアフィニ ティークロマトグラフィーによる1工程によって、IgGクラスのヒトモノクロ ーナル抗体を精製した。5DS−ポリアクリルアミドゲル電気泳動によって、重 鎮及び軽鎖のバンドが認められた。抗−ヒト重鎮及び軽鎖並びに抗−マウス重鎖 及び軽鎖試薬を使用するウェスターン・プロッティングにより、試験したモノク ローナル抗体である、ヒト×マウス異型骨髄腫と融合されたヒトリンパ細胞の産 物はヒト起源であり、ネズミ起源でないことが確認された。Characterization of ferritin-specific monoclonal antibodies using protein G Human monochromatography of IgG class is achieved by one step of tea chromatography. The null antibody was purified. The weight was determined by 5DS-polyacrylamide gel electrophoresis. Light chain and light chain bands were observed. Anti-human heavy and light chains and anti-mouse heavy chains Western plotting using light chain reagents and light chain reagents production of human lymphocytes fused with human x mouse atypical myeloma, which is a local antibody. The substance was confirmed to be of human origin and not of murine origin.

16個の1gMクラスの抗体を軽鎖分析することにより、ラムダ軽鎖を有する6 個、カッパ軽鎖を宵する9個、及びラムダ+カッパを有する1個がそれぞれ認め られた。95個のIgGクラス抗体の分析により、ラムダ軽鎖を有する61個、 カッパ軽鎖を有する31個、及びラムダ+カッパ軽鎖を有する3個が認められた 。By light chain analysis of 16 1 gM class antibodies, 6 with lambda light chains were found. , 9 with kappa light chain, and 1 with lambda + kappa were recognized, respectively. It was done. Analysis of 95 IgG class antibodies revealed 61 with lambda light chain; 31 with kappa light chain and 3 with lambda + kappa light chain were observed. .

ハイブリッドはこの段階ではサブクローンしないので、培養物の幾つかはモノク ローナルでなかった。Hybrids do not subclone at this stage, so some of the cultures are monoclonal. It wasn't Ronal.

サブクローンし精製した高度に特異的な抗−フエリチンIgG抗体2つを使用す る競合ELISAによる親和力測定により、11−2X10(−8)の範囲の解 離定数が判明した(第10図)。ウマフェリチンを利用する競合検定にて、ウマ フェリチンに対してモノクローナル抗体14−2−2−59を惹起させ、ヒトフ ェリチンに対して抗体2l−IB−9を作成した。フェリチン特異性について試 験した1gM上清の中では、13−5−3−18が最も特異的であり、最も高く 反応的であった。このモノクローナル抗体をフェリチン含有組織との反応性につ いて免疫組織学的分析によって試験した。第11図は、ネガティブ対照として使 用するポリクローナルヒトIgM抗体の調製物の反応性と比較して、ヒト肝組織 との1.3−5−3−1.8反応性を示している。異なる抗原に対して産生させ る以外は13−5−3−18と同じ操作によって調製されるヒトIgMモノクロ ーナル抗体から構成される第2の対照も、ネガティブであった。Using two highly specific subcloned and purified anti-ferritin IgG antibodies, Affinity measurements by competitive ELISA revealed solutions in the range of 11-2X10(-8). The separation constant was found (Figure 10). In a competitive assay using horse ferritin, Monoclonal antibody 14-2-2-59 was raised against ferritin, and human Antibody 2l-IB-9 was created against erritin. Test for ferritin specificity Among the 1 gM supernatants tested, 13-5-3-18 was the most specific and the highest It was reactive. This monoclonal antibody was tested for reactivity with ferritin-containing tissues. and tested by immunohistological analysis. Figure 11 shows the results used as a negative control. compared to the reactivity of a preparation of polyclonal human IgM antibodies used in human liver tissue. It shows 1.3-5-3-1.8 reactivity with. produced against different antigens Human IgM monochrome prepared by the same procedure as 13-5-3-18 except for A second control consisting of a null antibody was also negative.

C考察 この研究は、インビトロにおける初代免疫反応を助ける条件を目的としている。C Consideration This study is aimed at conditions that favor primary immune responses in vitro.

成績は、Ts細胞を枯渇させず、T二B細胞比率を調節することな(得たが、こ の成績は、同種刺激によってリンホカインが生成されるならば、Th細胞15− 25%、B細胞40−60%(第4表)、及び最小限レベル以上の接着細胞の存 在下、30−40%Ts細胞の初期レベルが抗原プライミングを支持することを 示している。これらの細胞の数はBAT細胞比率が約1=1となっている。接着 細胞又はI L−2などの接着細胞から分泌される因子を添加することは、別の 異なった要件であった。膵臓又は扁桃調製物を使用するプロトコールは、接着細 胞又は単球から分泌される因子のいずれの添加も特別に要しない。フェリチン、 特にヒトフェリチンによる免疫が接着細胞を保持させた場合に良好になるという 本発明の知見は、これらの細胞及び/又はその産物がT細胞依存性のタンパク質 抗原による効果的なプライミングを助け(ウマフェリチン)、又はそのための絶 対的な要件(ヒトフェリチン)であることを示している。The results were obtained without depleting Ts cells and without regulating the T2B cell ratio. The result is that if lymphokines are produced by allogeneic stimulation, Th cells 15- 25%, B cells 40-60% (Table 4), and the presence of adherent cells above minimal levels. In the present study, initial levels of 30-40% Ts cells support antigen priming. It shows. The number of these cells has a BAT cell ratio of approximately 1=1. Adhesion Adding factors secreted from cells or adherent cells such as IL-2 may be another The requirements were different. Protocols using pancreatic or tonsil preparations No special addition of any factors secreted from cells or monocytes is required. ferritin, This is especially true when immunization with human ferritin retains adherent cells. The findings of the present invention indicate that these cells and/or their products contain T cell-dependent proteins. aids in effective priming by antigen (equine ferritin) or This shows that this is a requirement for human ferritin.

最小限のレベルのリンホカイン刺激は、インビトロプライミングを成功させるた めに必要であり、種々の方法で殆どの組織調製物のための適当な刺激を得ること ができるようである。このリンホカインを生成させる方法は、適切な時間に最適 レベルを達成することほどには重要でない場合があり得る。本発明のプロトコー ルに従って調製する膵臓組織にとっては、添加なしの同系培養物は特定の膵臓に とって最適状態に及ばないもの(suboptiIIlal)であり、他のもの にとっても全く無効である。しかし、2つの膵臓の同種培養は、試験した2つの 膵臓のあらゆる組合わせにとって十分であったようであり、2以上の培養は、P WMを免疫培養物中に含有させた場合に観察される効果と同様の、過剰の非特異 的刺激を招来するようであった。Minimal levels of lymphokine stimulation are necessary for successful in vitro priming. to obtain suitable stimulation for most tissue preparations in a variety of ways. It seems possible. This method of producing lymphokines is optimal at the right time. It may not be as important as achieving the level. Protocol of the invention For pancreatic tissue prepared according to the standard, syngeneic cultures without supplements are suboptimal condition for some people (suboptiIIlal), and other things It is completely ineffective. However, allogeneic cultures of the two pancreas It appeared to be sufficient for all combinations of pancreas, and cultures of two or more Excess non-specificity, similar to the effect observed when WM is included in immune cultures. It seemed to bring about physical stimulation.

リンホカインによる抗原プライミングを助ける他の潜在的に重要な因子は、個々 の因子の細胞暴露のタイミングである。細胞マーカー試験によれば(第4表)、 多くの細胞は培養物中において応答の進行に伴って分化する。ある状態にある細 胞のリンホカインに対する応答は、分化期又は分化後の応答と有意に異なってい るようである。この実験では、上清(MLC8)の形態にある外来的に生成させ たリンホカイン、又はT細胞の非特異的な細胞分裂促進性刺激による内生生成の リンホカインを添加することは、同時共同培養よりも効果的でなかった。これら の結果は、プライミングの際の同種刺激によって生成されるリンホカイン暴露の レベル及び動力学が、インビボ免疫応答を最も厳密に模擬することができること を示している。Other potentially important factors that aid antigen priming by lymphokines include timing of cellular exposure of the factor. According to the cell marker test (Table 4), Many cells differentiate in culture as the response progresses. details in a certain state The response of cells to lymphokines is significantly different from that during or after differentiation. It seems that In this experiment, the exogenously produced lymphokines, or endogenous production by nonspecific mitogenic stimulation of T cells. Adding lymphokines was less effective than simultaneous co-culture. these The results demonstrate that lymphokine exposure generated by cognate stimulation during priming Levels and kinetics that most closely mimic in vivo immune responses It shows.

細胞をフェリチンでプライムする本発明者らの実験の10−30%において、免 疫後の培養上清をELI SA分析することにより、低いが検出可能なIgG応 答が見いだされたが、ネズミ免疫グロブリンタンパク質で細胞をプライムした実 験では何らの応答も見いだされなかった。しかし、いずれかの抗原によって免疫 したリンパ細胞の融合により、抗原特異的なIgG及びIgMモノクローナル抗 体が産生された。最も多い数の抗原反応性IgGモノクローナル抗体は、ポリク ローナルな抗原誘導IgG応答が融合前に最も容易に検出されたウマフェリチン により免疫したリンパ細胞の融合によって誘導された。ここに観察された実験に おける抗原誘導IgG応答の初期の様相は驚くべきものであった。In 10-30% of our experiments in which cells were primed with ferritin, ELI SA analysis of post-epidemic culture supernatant revealed a low but detectable IgG response. The answer has been found, but the researchers have found that the cells have been primed with murine immunoglobulin proteins. No response was found in the experiment. However, immunization with either antigen By fusion of lymphocytes, antigen-specific IgG and IgM monoclonal antibodies are generated. body was produced. The largest number of antigen-reactive IgG monoclonal antibodies are polyclonal antibodies. Equine ferritin, where local antigen-induced IgG responses were most easily detected before fusion. was induced by fusion of lymphocytes immunized with In the experiment observed here The initial appearance of the antigen-induced IgG response in 2000 was surprising.

適当な条件下における抗原ブライミング後に産生されるポリクローナルIgM抗 体(第2表)は、非免疫培養物から産生されるポリクローナル抗体よりもフェリ チンと有意に良好に結合した。フェリチンよりも複雑でない抗原は、非特異的な 結合レベルが低いことが示された。しかし、チオシアネート分析の結果は、抗− フェリチン免疫応答のフェリチン誘導成熟が適切な条件下にプライムされた培養 物において起こることを強く示していた。観察される1gM応答の成熟はおそら くは主として、未感作B細胞に対するフェリチンの特異的な結合、活性化、並び にそれらの抗体分泌性の形質細胞への及びあるいは記憶細胞への以後の成熟に由 来するものであろう。抗原特異的なIgGモノクローナル抗体のインビトロ免疫 リンパ細胞の融合からの産生は、IgG分泌ハイブリッド(雑種)が交叉反応性 のハイブリドーマクローンから生成されないならば、抗原誘導のクラススイッチ 及び親和力成熟がインビトロにおいて起こり得ることを示している。Polyclonal IgM antibodies produced after antigen priming under appropriate conditions body (Table 2), compared with polyclonal antibodies produced from non-immune cultures. It bound significantly better to Chin. Antigens less complex than ferritin are non-specific It was shown that the level of binding was low. However, the results of the thiocyanate analysis Cultures primed under appropriate conditions for ferritin-induced maturation of ferritin immune responses It was a strong indication of what happens in things. The observed maturation of the 1 gM response is likely due to This is mainly due to the specific binding, activation, and alignment of ferritin to naive B cells. due to their subsequent maturation into antibody-secreting plasma cells and/or memory cells. It will come. In vitro immunization with antigen-specific IgG monoclonal antibodies Production from fusion of lymphoid cells results in IgG-secreting hybrids being cross-reactive. antigen-induced class switch if not generated from a hybridoma clone of and affinity maturation can occur in vitro.

この結果は、インビトロ活性化ヒトリンパ細胞がマウス:ヒト異型骨髄腫と効率 的に融合し、高いバーセンティジのIgG及びIgM分泌性の異型ハイブリドー マセルラインが得られることを示している。These results demonstrate that in vitro activated human lymphocytes are effective in mice: human atypical myeloma and A heterotypic hybrid with a high percentage of IgG and IgM secretion. This shows that the Maseru line can be obtained.

本発明は、CarrollらのJ、 Immuno、 Methods 89. 61(1986)によって開発されたに6H6/B5セルラインと、1−6日間 インビトロ培養したヒト膵臓細胞との融合を詳細に説明するものである。平均的 な融合頻度は35であり、15個の別個の融合の範囲は、17−50のハイブリ ッド含有ウェル/百方リンパ細胞であった。リンパ細胞のインビトロ培養物は、 特に同種刺激と組み合わせた場合、高度に融合原性な状態の活性化を導く。免疫 培養物について観察される事項が対照培養物と比較して高い融合頻度及び大きな 細胞凝集体(第5表−第7表)であることは、融合の効率がリンパ細胞活性化の 程度及び性質によって影響され得ることを示している。The present invention is based on Carroll et al., J. Immuno, Methods 89. 61 (1986) and the 6H6/B5 cell line for 1-6 days. This figure describes in detail the fusion with human pancreatic cells cultured in vitro. average The average fusion frequency is 35 and the range of 15 distinct fusions is 17-50 hybrids. wells containing cells/hypermal lymphocytes. In vitro cultures of lymphocytes are Especially when combined with cognate stimuli, leading to activation of a highly fusogenic state. immunity What was observed for the cultures was a high fusion frequency and large The cell aggregates (Tables 5-7) indicate that the efficiency of fusion is lower than that of lymphoid cell activation. This shows that it can be influenced by the degree and nature.

1g産生のレベルは、各ハイブリッドについて正確に統一的であるが、24個の ハイブリッドの範囲は50倍にも変動した。ある種のセルラインによる産生は、 他のヒトハイブリッド及びネズミモノクローナル抗体の培養物中の産生に十分に 匹敵していた。産生されるハイブリッドの約50%において1g産生は不安定で あったが、得られる多数のものは不安定なハイブリッドを早期に排除せしめ、分 泌レベル、特異性及び親和力の評価のための多くの選択物を残した。K6H6/ B5融合相手のG−結合性を用いた予備的核型分析では、平均染色体数が91( 範囲=77−97)、驚くほどに少ない同定可能なマウス又はヒト染色体、及び キメラ的なマウス:ヒト染色体であるらしい多くの構造体が示された。この遺伝 子母体とヒトリンパ細胞との融合はネズミ(W歯頚)系統のB細胞との融合より もヒト染色体を良好に保持させ得るが、ハイブリッドの50%における分泌の初 期の不安定性はに6H6/B5相手の核型の複雑性及び異常性の観点から理解す ることができた。The level of 1g production is exactly uniform for each hybrid, but for 24 The range of hybrids varied by a factor of 50. Production by certain cell lines is Sufficient for production in culture of other human hybrid and murine monoclonal antibodies It was comparable. 1g production is unstable in approximately 50% of hybrids produced. However, the large number of obtained products allows for the early elimination of unstable hybrids and facilitates separation. This left many options for evaluation of secretion levels, specificity and affinity. K6H6/ Preliminary karyotype analysis using G-linked B5 fusion partner revealed an average chromosome number of 91 ( range = 77-97), surprisingly few identifiable mouse or human chromosomes, and Chimeric mouse: Many structures were shown that appeared to be human chromosomes. this inheritance The fusion between the child mother and human lymphocytes is more likely to occur than the fusion with B cells of the murine (W tooth and neck) lineage. can also retain human chromosomes well, but the first secretion in 50% of hybrids Phase instability can be understood from the perspective of the complexity and abnormality of the 6H6/B5 partner karyotype. I was able to

上記の結果はさらに、多くの抗原特異的なIgG分泌性のハイブリッドは、イン ビトロ免疫したリンパ細胞の融合によっても調製できることを示している。活性 化リンパ細胞はIgM分泌性ハイブリッドを惹起せしめることができ、又はクラ ススイッチを受けて一次応答の一部としてのIgG分泌性の形質細胞となること ができるので、これらの実験において観察されるIgG分泌性クローンは、イン ビトロ−次応答から発達したもののようである。従って、これらの発達期におけ る未だ確定されていない時点又は複数の時点におけるいずれかのタイプの細胞の 融合によって、IgM又はIgG分泌性のハイブリッド細胞が産生され得る。お そらくは、異なる個体由来の膵臓細胞の同時培養によって誘導される同種刺激に より、インビトロにて前もって観察されるものよりも良好なりラススイッチング のための支持が提供されたのであろう。The above results further demonstrate that many antigen-specific IgG-secreting hybrids It has been shown that it can also be prepared by fusion of lymphocytes immunized in vitro. activity lymphocytes can give rise to IgM-secreting hybrids or clusters. undergo a plasma switch to become an IgG-secreting plasma cell as part of the primary response. Therefore, the IgG-secreting clones observed in these experiments are It appears to have developed from a vitro-induced response. Therefore, during these developmental periods of any type of cell at an as-yet-undefined time point or at multiple time points. By fusion, IgM- or IgG-secreting hybrid cells can be produced. oh Possibly due to allogeneic stimulation induced by co-culture of pancreatic cells from different individuals. Las switching is better than that previously observed in vitro. Support may have been provided for.

抗原特異的なIgGクラスの抗体を融合物から回収するための別の解釈には、こ のようなハイブリッドが記憶細胞の2次刺激から誘起される可能性が絡んでいる 。膵臓細胞調製物中における特定の記憶細胞のrgレセプターは、以前に出会っ た活性化を導く決定基と充分に類似しているブライミング抗原の決定基を認識す ることができる。Another interpretation for recovering antigen-specific IgG class antibodies from fusions includes this The possibility that such hybrids are induced from secondary stimulation of memory cells is involved. . The rg receptors of specific memory cells in pancreatic cell preparations have been previously encountered. recognizes a determinant on the priming antigen that is sufficiently similar to the determinant that leads to its activation. can be done.

ブライミングに使用される抗原の性質は、抗原反応性のハイブリッド誘導/産生 される全ハイブリッドのバーセンテイジに影響を与えた。外来タンパク質である ウマフェリチン及びマウスIgGは9−10%の抗原反応性クローン/全ハイブ リッドを誘発し、他方同種ヒトフェリチンは3−4%のフェリチン反応性クロー ン/全ハイブリッドしか誘発しなかった(第8表)。ヒトフェリチンに対する応 答は外来タンパク質に対するよりも低いが、このような応答は高度に保存された タンパク質、及びインビトロ免疫による自己タンパク質に対してさえもモノクロ ーナル抗体を産生させることができることを示している。ヒトフェリチンに対し て産生された2l−IB−9の親和力と、ウマフェリチンに対して産生される最 も良好な抗体の1つ、14−2−2−59の親和力との類似性は、自己に対して 産生されるインビトロ抗体が外来タンパク質に対して産生される抗体と同様の特 性を有し得ることを示している。The nature of the antigen used for briming is dependent on hybrid induction/production of antigen reactivity. This affected the percentage of all hybrids produced. is a foreign protein Horse ferritin and mouse IgG have 9-10% antigen-reactive clones/total hives while allogeneic human ferritin induces 3-4% ferritin-reactive clot. (Table 8). Response to human ferritin Although the response is lower than for foreign proteins, such responses are highly conserved. monochromatic for proteins and even self-proteins by in vitro immunization. This shows that it is possible to produce natural antibodies. against human ferritin The affinity of 2l-IB-9 produced for horse ferritin and the affinity of 2l-IB-9 produced for horse ferritin Similarity to the affinity of one of the best antibodies, 14-2-2-59, for self- The in vitro antibodies produced have similar properties to antibodies produced against foreign proteins. This indicates that it can have a sexual nature.

選択されるIgG抗体をプロティンGによってアフィニティー精製した。フェリ チン及びフェリチン含有組織の抽出物に対する免疫プロット分析は、10(7) −10(8)/l1olの結合親和力を要する反応性の、ハイブリチック[Hy britech、 Inc、 ]から製造されている高度な親和力のネズミ抗− フエリチンモノクローナル抗体を用いて観察される事項と類似した反応性パター ンを示した。2つの精製抗−フエリチンIgG抗体の抗原結合性の強度を競合E LISAによって直接分析すると(第11図)、さらに範囲が10(7) 10 (8)/molであることも示された。Selected IgG antibodies were affinity purified by protein G. Ferri Immunoplot analysis for extracts of ferritin- and ferritin-containing tissues showed that 10(7) -10(8)/l1ol of reactive, hybridic [Hy A high affinity murine anti-inflammatory manufactured by Britech, Inc. Reactivity pattern similar to that observed using ferritin monoclonal antibodies showed. Competing antigen binding strength of two purified anti-ferritin IgG antibodies Direct analysis by LISA (Figure 11) further shows that the range is 10 (7) 10 (8)/mol.

この強度の見かけの親和力を有するIgGモノクローナル抗体の誘導は、クラス スイッチングと組み合わせた特異的な一次応答と適合するが、おそらくは広範な 体細胞突然変異とは関連していないであろう。あるいは、抗原反応性のIgG分 泌性ハイブリッドは交叉反応性の記憶応答の産物であろうが、そこでは−次抗原 に対する親和力は高いが、交叉反応性の誘導抗原に対する親和力は通常低(、常 には低くない。The induction of IgG monoclonal antibodies with this strong apparent affinity Compatible with a specific first-order response combined with switching, but perhaps a widespread It is unlikely to be associated with somatic mutations. Alternatively, antigen-reactive IgG Secretory hybrids may be the product of a cross-reactive memory response, in which the next antigen The affinity for cross-reactive inducing antigens is usually low (although the affinity for cross-reactive inducing antigens is usually low). is not low.

第1表 インビトロにおけるプライム化同系及び同種リンパ細胞培養物のフェリチン反応 性1gM抗体分泌の分析:観察応答と予測応答との比較フェリチン依存性応答( △OD*s。)牌 臓 実測値 計算値 A十B 、34 .10 A十C,33,25 A+D 、13 .08 B十C,28,10 B+D 、05 .03 C十D 、18 .07 A十B+C,21,12 B十C+D 、16 .07 A+B+D 、15 .10 A+B+C+D 、 19 、09 既述のようにして接着細胞を枯渇させることなくヒト膵臓細胞を調製し、lμg hllウマ膵臓フェリチンの存在又は不存在下に培養した。実測値は、対照及び フェリチンプライム化培養物間の0DJQO値の差を示している。混合培養物に ついての計算値は、同系培養物の応答の適切な関数の合計釦から導いた(即ち、 によって計算された値である)ND=検出せず。Table 1 Ferritin response of primed syngeneic and allogeneic lymphocyte cultures in vitro. Analysis of 1 gM antibody secretion: Comparison of observed and predicted responses Ferritin-dependent response ( △OD*s. )Tile Visceral Actual value Calculated value A10B, 34. 10 A10C, 33, 25 A+D, 13. 08 B10C, 28, 10 B+D, 05. 03 C1D, 18. 07 A ten B + C, 21, 12 B10C+D, 16. 07 A+B+D, 15. 10 A+B+C+D, 19, 09 Human pancreatic cells were prepared as described previously without depleting adherent cells, and lμg hll horse pancreas was cultured in the presence or absence of ferritin. Actual values are for control and Differences in 0DJQO values between ferritin primed cultures are shown. into a mixed culture The calculated value for was derived from the summation button of the appropriate function of the response of the isogenic culture (i.e. ) ND = not detected.

第2表 インビトロ抗原プライミングのための種々の培養条件を評価することにおける親 和力/結合活性の算定の使用 膵臓 血清時間 分泌対照 [KSCN]3゜fMl免疫(%) (日数) 実 施例1 実施例2 実施例1 実施例2B 10% 3−5 2.0 2.1  1.8 2.3A+810% 3−5 2.0 2.0 2.6 2.65−7  2.6 ’2.6 2.9’ 2.87−9 2.2 1.7 2.9 29 9−11. 1.5 1.2 ’ 2.2 ]、、4A+B 0% 3−5 2 .1 2.2 2.3 2.35−7 1.8 2.4 2.9 2.57−9  2.1 ’ 2.4 2.7 2.49−11 1..5 1.8 1.5  2.0既述のようにして接着細胞を枯渇させることなくヒト膵臓細胞を調製した 。膵臓2つの同系又は1:1同時培養物を0又は1μgklウマ牌臓フェリチン で3日間プライムした。洗浄によってフェリチンを除去し、明記した時点で上清 を採取した。分泌された免疫グロブリンのフェリチン反応性をELISAによっ て分析し、既述のようにして相対的親和力/結合結果の算定値を作成した。示し た数字は、検定平板においてフェリチンと結合する抗体の量を50%に減少させ るに必要なKSCNのモル濃度を表す([KSCN]−50)。Table 2 Parents in evaluating various culture conditions for in vitro antigen priming Using force/avidity calculations Pancreas serum time secretion control [KSCN] 3゜fMl immunity (%) (days) actual Example 1 Example 2 Example 1 Example 2B 10% 3-5 2.0 2.1 1.8 2.3A+810% 3-5 2.0 2.0 2.6 2.65-7 2.6 '2.6 2.9' 2.87-9 2.2 1.7 2.9 29 9-11. 1.5 1.2' 2.2], 4A+B 0% 3-5 2 .. 1 2.2 2.3 2.35-7 1.8 2.4 2.9 2.57-9 2.1’ 2.4 2.7 2.49-11 1. .. 5 1.8 1.5 2.0 Human pancreatic cells were prepared as described above without depleting adherent cells. . Two syngeneic or 1:1 co-cultures of pancreas were treated with 0 or 1 μg kl horse spleen ferritin. I primed it for 3 days. Remove ferritin by washing and remove supernatant at specified time points. was collected. The ferritin reactivity of the secreted immunoglobulin was measured by ELISA. The relative affinity/binding results were calculated as described above. show The number reduced the amount of antibody binding to ferritin in the assay plate by 50%. ([KSCN]-50) represents the molar concentration of KSCN required to

第3表 (A、)全1gの分W及び(B)フェリチン反応性抗体のフェリチン誘導に対す る非特異的なマイトジェン作用 膵臓1 膵臓2 膵臓1&2 A4 μg/ml 全免疫グロブリン 添加せず 2.4±0.4 0.6±0.1. 12.3±1.5+PWM 3 0.8±3.7 2.6±1.0 20.1±0.8+MDP 5.8土1.4  4.0±1.0 21.5±1.8B、フェリチン誘導のフェリチン反応性0 Das。Table 3 (A,) total 1 g of W and (B) ferritin induction of ferritin-reactive antibodies. non-specific mitogenic effects Pancreas 1 Pancreas 2 Pancreas 1 & 2 A4 μg/ml total immunoglobulin Not added 2.4±0.4 0.6±0.1. 12.3±1.5+PWM 3 0.8±3.7 2.6±1.0 20.1±0.8+MDP 5.8 Sat 1.4 4.0±1.0 21.5±1.8B, ferritin-induced ferritin reactivity 0 Das.

添加せず 0 0 (1,28±0.14+PWM OOO,13±0,08 +MDP 0.29±0.8 0.04±0.02 0.46±0.09第4表 培養時間の関数としてのヒト膵臓細胞の細胞マーカー分析TgG 49 17  16 15 14 9 12 If gTgM 30 22 20 17 15  8 10 7 10Bl 51 44 41 37 35 17 15 11  12PCA−1,141413271531243323T3 37 40  42 45 42 46 36 46 40T4 20 17 18 17 1 6 12 9 20 16T8 34 38 40 47 46 43 44  49 46既述のようにしてヒト膵臓を接着細胞を枯渇させることなく調製し、 培養した。Not added 0 0 (1,28 ± 0.14 + PWM OOO, 13 ± 0,08 +MDP 0.29±0.8 0.04±0.02 0.46±0.09 Table 4 Cell marker analysis of human pancreatic cells as a function of culture time TgG 49 17 16 15 14 9 12 If gTgM 30 22 20 17 15 8 10 7 10Bl 51 44 41 37 35 17 15 11 12PCA-1, 141413271531243323T3 37 40 42 45 42 46 36 46 40T4 20 17 18 17 1 6 12 9 20 16T8 34 38 40 47 46 43 44 49 46 Human pancreas was prepared as described above without depleting adherent cells, Cultured.

各表面マーカーについての同様の実験を3.5.7及び10日目に行い、それを 第1表又は第2表に示す。培養物を採取し、既述のようにして分析した。Similar experiments for each surface marker were performed on days 3.5.7 and 10; Shown in Table 1 or Table 2. Cultures were harvested and analyzed as previously described.

第5表 ウマ膵臓フェリチンによってインビトロ免疫したヒトリンパ細胞からのハイブリ ドーマクローンの産生 培養時間(日)11255 雑種含有ウェルの数 86 249 230 177 1.99融合頻度 17  50 46 35 40分泌体 IgM 1159 5/173 14/137 7/88 6/90(2%)( 3%)(10%)(8%)(7%)IgG 12159 49/173 80/ 137 46/88 48/90(20%)(28%)(58%)(52%)( 53%)再確認したフェリチン反応性 IgM 1 0 4 6 5 TgG 4 10 33 ]、6 14フエリチン特異性(対 β−ガラクトシ ダーゼ)TgM 0 0 1 1 0 IgG 2 4 11 5 3 既述のようにして免疫、融合及びハイブリドーマのスクリーニングを行った。Table 5 Hybrids from human lymphocytes immunized in vitro with horse pancreatic ferritin. Production of domaclones Culture time (days) 11255 Number of wells containing hybrids 86 249 230 177 1.99 Fusion frequency 17 50 46 35 40 Secretory body IgM 1159 5/173 14/137 7/88 6/90 (2%) 3%) (10%) (8%) (7%) IgG 12159 49/173 80/ 137 46/88 48/90 (20%) (28%) (58%) (52%) ( 53%) Reconfirmed ferritin reactivity IgM 1 0 4 6 5 TgG 4 10 33], 6 14 Ferritin specificity (vs. β-galactosycin) Dase) TgM 0 0 1 1 0 IgG 2 4 11 5 3 Immunization, fusion and hybridoma screening were performed as previously described.

リンパ細胞を0又は0.25μgklウマ牌臓フェリチンのいずれかで1日(融 合1及び2)、2日間(融合3)、又は5日間(融合4及び5)の間プライムし た。IgM又はIgGを分泌する雑種の数をIgM又はIgG分泌について試験 したクローンの数当たりの分泌体の数として示す。Lymphocytes were incubated with either 0 or 0.25 μg kl horse spleen ferritin for 1 day. prime for 2 days (fusion 3) or 5 days (fusion 4 and 5). Ta. Number of hybrids secreting IgM or IgG tested for IgM or IgG secretion It is expressed as the number of secretors per number of clones obtained.

第6表 ヒトフェリチンによってインビトロ免疫したヒトリンパ細胞からのハイブリドー マクローンの産生 培養時間(日)22246 雑種含有ウェルの数 31 49 64 266 268IgM 3 4 12  62 6 (10%)(8%)(9%)(23%)(2%)IgG 11 12 19 5 5 15(35%)(24%)(30%)(21%)(6%)フェリチン反応性 rgM 0 2 4 8 1 1gG 1 1 1 3 2 フエリチン特異性(対 β−ガラクトシダーゼ及びBSA)IgM −1181 免疫、融合及びハイブリドーマのスクリーニングを既述のようにして行った。Table 6 Hybrids from human lymphocytes immunized in vitro with human ferritin Macrone production Culture time (days) 22246 Number of wells containing hybrids 31 49 64 266 268 IgM 3 4 12 62 6 (10%) (8%) (9%) (23%) (2%) IgG 11 12 19 5 5 15 (35%) (24%) (30%) (21%) (6%) Ferritin reactivity rgM 0 2 4 8 1 1gG 1 1 1 3 2 Ferritin specificity (vs. β-galactosidase and BSA) IgM-1181 Immunization, fusion and hybridoma screening were performed as previously described.

明記している0、25又は2.5μg/諺!ヒトフェリチンの存在下にリンパ細 胞を3X10’細胞/婁lで2日間(融合1−3)、4日間(融合4)、又は6 日間(融合5)の間培養した。Specified 0, 25 or 2.5 μg/proverb! Lymphocytes in the presence of human ferritin cells at 3X10' cells/ml for 2 days (fusion 1-3), 4 days (fusion 4), or 6 Cultured for 5 days (fusion 5).

第7表 ネズミモノクローナルIgGによってインビトロ免疫したヒトリンパ細胞からの ハイブリドーマクローンの産生 融合 12345 培養時間(日)2 2 3 3 4 抗原(μg/ml) 0 2 2 2 2細胞密度 3 3 3 1.5 3 (XIO’/+1) 雑種含有ウェルの数 27 107 116 98 1.26融合頻度 7 2 7 29 25 32抗原反応性 IgM l 10 12 5 2 IgG O4810 抗原特異性 IgM 1 5 4 4 1 1gG O4710 免疫、融合及びハイブリドーマのスクリーニングは既述のようにして行った。Table 7 from human lymphocytes immunized in vitro with murine monoclonal IgG. Production of hybridoma clones Fusion 12345 Culture time (days) 2 2 3 3 4 Antigen (μg/ml) 0 2 2 2 2 Cell density 3 3 3 1.5 3 (XIO’/+1) Number of wells containing hybrids 27 107 116 98 1.26 Fusion frequency 7 2 7 29 25 32 Antigen reactivity IgM 10 12 5 2 IgG O4810 antigen specificity IgM 1 5 4 4 1 1gG O4710 Immunization, fusion, and hybridoma screening were performed as previously described.

第8表 ウマフェリチン、ヒトフェリチン、又はネズミモノクローナルIgGによって免 疫したリンパ細胞からの雑種産生の比較抗原 クトン反応性 抗原特異性 抗原 −IgM IgGウマ 941 93 27 2 25 フエリチン ヒト 678 23 15 11 4 フエリチン ネズミ 474 43 27 15 12モノタロ一ナルIgG 免疫、融合及びハイブリドーマのスクリーニングは既述のようにして行った。Table 8 Immunization with horse ferritin, human ferritin, or murine monoclonal IgG. Comparative antigen production of hybrids from infected lymphocytes Chtonic reactivity Antigen specificity Antigen -IgM IgG horse 941 93 27 2 25 Ferritin Human 678 23 15 11 4 Ferritin Mouse 474 43 27 15 12 monotalonal IgG Immunization, fusion, and hybridoma screening were performed as previously described.

リンパ細胞は、第5表−第7表に記載されているようにして培養し、免疫した。Lymphocytes were cultured and immunized as described in Tables 5-7.

第9表 ヒトハイブリドーマからの免疫グロブリン産生の安定性免疫原 初期陽性クロー ン 再確認(継代3X)ウマフェリチン 192 92 (48%)ヒトフェリ チン 40 24 (60%)免疫、融合及びハイブリドーマのスクリーニング は既述のようにして行った。Table 9 Stable immunogen for immunoglobulin production from human hybridomas Early positive clones Reconfirmation (passage 3X) Horse ferritin 192 92 (48%) Human ferritin Chin 40 24 (60%) Immunization, fusion and hybridoma screening was performed as described above.

第10表 IgG分泌性ヒトハイブリドーマクローンからの免疫グロブリン産生の定量2  42± 9 1.65 8 20± 5.6 ハイブリドーマスクリーニング及び定量検定は既述のようにして行った。Table 10 Quantification of immunoglobulin production from IgG-secreting human hybridoma clones 2 42±9 1.65 8 20± 5.6 Hybridoma screening and quantitative assay were performed as previously described.

(ニジ 以上の説明は、本発明を行うのに使用できる特定の方法を詳細にしたものである 。抗原特異的な高い親和力を有するモノクローナル抗体を使用し、特性化し、単 離し、調製するためにこのような特定の方法をまず使用し、特別のモデルの操作 及びその本質に関する記載を使用することによって、この同じ情報及びこのよう なモノクローナル抗体を製造するための他の関連方法にまでこの情報を拡張させ るための代替の信頼のおける方法をいかにして創作すればよいかは、当業者なら ば十分に理解されよう。従って、前記の詳細は明文に現れているか否かに拘わら ず、本発明の範囲全体を限定するものと解してはならず、むしろ本発明の範囲は 、以下の請求の範囲の法的構成によってのみ決定されると解すべきである。(Niji The foregoing description details specific methods that can be used to carry out the invention. . Antigen-specific, high-affinity monoclonal antibodies are used, characterized, and First use such a specific method to prepare and release special model manipulations By using this same information and description of its nature, This information can be extended to other related methods for producing monoclonal antibodies. Those skilled in the art will know how to create alternative and reliable methods to It will be fully understood. Therefore, the above details may or may not appear in the text. However, the scope of the invention should not be construed as limiting the scope of the invention as a whole, but rather , should be understood to be determined solely by the legal construction of the following claims.

1″″!N″″! q〜づ 輩〜−史哨大輩〜づO) ψ −r 〜 9 史 1 ゞ 〜 9==−−ロ 6 6 ロ ロ 免疫 第1 ブースh 第2ブースト FIG、−14 免疫 第1ブースト 第2ブースト FIG、−15 要 約 書 本発明はモノクローナル抗体生産における利点を提供し、より詳細にはハイブリ ドーマ生成に先立つ培養方法における利点を提供するものである。具体的には、 リンパ断片を培養系に保持させることにより、IgG分泌性の長期に生存する培 養物が優先的に得られる。1″″! N″″! q~zu hai~- Shipodai hai~zuO) ψ −r ~ 9 History 1ゞ ~ 9==--Ro 6 6 Ro Ro Immunity 1st booth h 2nd boost FIG.-14 Immunity 1st boost 2nd boost FIG. -15 Summary book The present invention provides advantages in monoclonal antibody production, and more particularly in hybrid antibody production. This provides advantages in culture methods prior to doma formation. in particular, By retaining lymph fragments in a culture system, a long-lived IgG-secreting culture is created. Nutrients are preferentially obtained.

国際調査報告 1+lWIMI Ae−ml−If・PCT八Eへ1103406international search report 1+lWIMI Ae-ml-If・PCT8E1103406

Claims (33)

【特許請求の範囲】[Claims] 1.増殖因子又は他の因子の添加を必要としない培養条件下に特異抗原によって 免疫された、必須の数の自己由来の補助細胞を存するリンパ組織誘導化ヒトリン パ細胞を含有しているインビトロ免疫培養物であって、少なくとも約5×107 リットル/モルの特異抗原に対する親和力を有しているヒトモノクローナルIg G抗体の有効数が該リンパ細胞から誘導される該培養物。1. by specific antigen under culture conditions that do not require the addition of growth factors or other factors. immunized lymphoid tissue derivatized human cells containing the requisite number of autologous accessory cells an in vitro immune culture containing at least about 5 x 107 Human monoclonal Ig with affinity for specific antigen of liter/mole said culture in which an effective number of G antibodies are derived from said lymphocytes. 2.該リンパ組織かヒト脾臓である請求項1に記載の培養物。2. The culture according to claim 1, wherein the lymph tissue is human spleen. 3.該リンパ細胞がヒト脾臓細胞である請求項1に記載の培養物。3. The culture according to claim 1, wherein the lymphocytes are human spleen cells. 4.肉眼で見える多数の凝集体を有するリンパ細胞のインビトロ免疫物から該抗 体が産生される請求項1に記載の培養物。4. The antibody was isolated from in vitro immunization of lymphocytes with large numbers of aggregates visible to the naked eye. 2. The culture according to claim 1, wherein the culture is produced. 5.該リンパ細胞が脾臓細胞である請求項4に記載の培養物。5. 5. The culture according to claim 4, wherein the lymphocytes are spleen cells. 6.同種の同時培養物である請求項4に記載の培養物。6. 5. The culture according to claim 4, which is a co-culture of the same species. 7.多くの脾様体を含有している請求項4に記載の培養物。7. 5. The culture according to claim 4, containing many splenoid bodies. 8.請求項1に記載の抗原特異的なヒトモノクローナル抗体を産生する安定な継 続的セルライン。8. A stable strain producing the antigen-specific human monoclonal antibody according to claim 1. continuous cell line. 9.該リンパ細胞が不滅融合細胞の相手との融合によって不滅化されている請求 項8に記載の安定な継続的セルライン。9. A claim that the lymphatic cell is immortalized by fusion with a partner of the immortal fusion cell Stable continuous cell line according to item 8. 10.該抗体の可変領域をコードしているDNAを操作可能に収容している組換 え手段によって製造された請求項8に記載の安定な継続的セルライン。10. A recombinant antibody operably containing DNA encoding the variable region of the antibody. 9. A stable continuous cell line according to claim 8, produced by means of. 11.該抗体の可変領域をコードしている核酸かポリメラーゼ連鎖反応の応用に よって増幅され、固定される請求項8に記載の安定な継続的セルライン。11. The nucleic acid encoding the variable region of the antibody is applied to polymerase chain reaction. 9. A stable continuous cell line according to claim 8, which is thus amplified and fixed. 12.該不滅融合の細胞相手が、不滅化リンパ細胞、骨髄腫及び異型ハイブリド ーマセルラインの中から選ばれる請求項9に記載のハイブリドーマ。12. The cell partner of the immortal fusion is an immortalized lymphoid cell, a myeloma, or a heterogeneous hybrid. 10. The hybridoma according to claim 9, which is selected from among the cell lines. 13.少なくとも約5×107リットル/モルの抗原親和力を有する抗原特異的 なヒトモノクローナル抗体を産生できる請求項9に記載のハイブリドーマ。13. antigen-specific with an antigen affinity of at least about 5 x 107 liters/mole The hybridoma according to claim 9, which is capable of producing a human monoclonal antibody. 14.該モノクローナル抗体がIgG抗体である請求項9に記載のハイブリドー マ。14. The hybrid according to claim 9, wherein the monoclonal antibody is an IgG antibody. Ma. 15.ヒト抗原に対するヒトモノクローナル抗体を分泌する請求項9に記載のハ イブりドーマ。15. The plant according to claim 9, which secretes human monoclonal antibodies against human antigens. Eve Dorma. 16.非ヒト抗原に対するヒトモノクローナル抗体を分泌する請求項9に記載の ハイブリドーマ。16. according to claim 9, which secretes human monoclonal antibodies against non-human antigens. hybridoma. 17.請求項8、9、10、11、12、13又は14のいずれかに記載のセル ラインから産生されるヒトモノクローナル抗体。17. The cell according to any one of claims 8, 9, 10, 11, 12, 13 or 14. Human monoclonal antibodies produced from this line. 18.ヒト抗原に特異的である請求項17に記載のヒトモノクローナル抗体。18. 18. The human monoclonal antibody according to claim 17, which is specific for a human antigen. 19.請求項18に記載のヒトモノクローナルIgG抗体。19. The human monoclonal IgG antibody according to claim 18. 20.増殖因子又は他の因子の添加を必要としない条件下に特異抗原によって免 疫された、必須の数の自己由来の補助細胞を有するリンパ組織誘導化ヒトリンパ 細胞であって、少なくとも約5×107リットル/モルの抗原親和力を有してい るヒトモノクローナルIgG抗体の有効数が該リンパ細胞から誘導されている該 リンパ細胞をインビトロ培養することを特徴とする、該リンパ細胞由来のヒトモ ノクローナル抗体を製造させて該ヒトモノクローナル抗体を回収する手段である 抗原特異的なヒトモノクローナル抗体を製造するための方法。20. Immunization by specific antigens under conditions that do not require the addition of growth factors or other factors. lymphoid tissue-derived human lymph with a requisite number of autologous accessory cells cells having an antigen affinity of at least about 5 x 107 liters/mole; The effective number of human monoclonal IgG antibodies derived from the lymphocytes A human model derived from lymph cells, characterized in that the lymph cells are cultured in vitro. It is a means for producing a human monoclonal antibody and recovering the human monoclonal antibody. A method for producing antigen-specific human monoclonal antibodies. 21.該培養が同種の同時培養である請求項20に記載の方法。21. 21. The method of claim 20, wherein the cultures are homogeneous co-cultures. 22.(a)赤血球細胞の低浸透圧細胞溶解を使用し、(b)補助細胞が喪失し ないように室温インキュベートを最小限に抑え、(c)得られたリンパ組織の小 さな断片を凍結する前に最終細胞懸濁液中に保持し、そして (d)その細胞懸濁液中にリンパ組織の小さな断片を含め、又は添加すること、 によって該ヒトリンパ細胞を調製し、培養する請求項20に記載の方法。22. (a) using hypotonic cytolysis of red blood cells; (b) accessory cells are lost; (c) Minimize room temperature incubation to avoid small fragments are kept in the final cell suspension before freezing, and (d) including or adding small pieces of lymphoid tissue to the cell suspension; 21. The method according to claim 20, wherein the human lymphocytes are prepared and cultured by. 23.該手段が該リンパ細胞を不滅融合細胞相手と融合させることを特徴とする 請求項20に記載の方法。23. characterized in that the means fuses the lymphoid cell with an immortal fusion cell partner 21. The method according to claim 20. 24.該不滅融合細胞相手が、不滅化骨髄腫、形質細胞腫、異型骨髄腫、及び異 型ハイブリドーマセルラインの中から選ばれる請求項23に記載の方法。24. The immortal fused cell partner may be immortalized myeloma, plasmacytoma, atypical myeloma, and atypical myeloma. 24. The method of claim 23, wherein the method is selected from among type hybridoma cell lines. 25.請求項22に記載の方法によって製造した場合に少なくとも約5×107 リットル/モルの抗原親和力を有しているヒト抗原特異的なヒトモノクローナル 抗体。25. at least about 5 x 107 when produced by the method of claim 22. Human antigen-specific human monoclonal with antigen affinity of liter/mole antibody. 26.IgG抗体である請求項25に記載の抗体。26. The antibody according to claim 25, which is an IgG antibody. 27.細胞の成長を調節することのできる物質と結合されている請求項25に記 載の抗体。27. Claim 25, wherein the compound is combined with a substance capable of regulating cell growth. Antibodies listed above. 28.該物質がイットリウム90である請求項27に記載の抗体。28. 28. The antibody of claim 27, wherein the substance is yttrium-90. 29.レポーター部分と結合している請求項25に記載の抗体。29. 26. The antibody of claim 25 conjugated to a reporter moiety. 30.該部分がインジウム111である請求項29に記載の抗体。30. 30. The antibody of claim 29, wherein said moiety is indium-111. 31.癌、細菌又はウイルス疾患に罹患している個体に請求項27に記載の抗体 を投与することを特徴とする、該疾患を処置するための方法。31. The antibody of claim 27 in an individual suffering from a cancer, bacterial or viral disease. A method for treating said disease, characterized in that said disease is administered. 32.請求項29に記載の抗体を該個体に投与することを特徴とする、該個体に おける該疾患の存在を試験するための方法。32. administering to the individual the antibody according to claim 29; A method for testing the presence of the disease in patients. 33.請求項25に記載の抗体の抗イディオタイプであるヒトモノクローナル抗 体。33. A human monoclonal anti-idiotype of the antibody according to claim 25. body.
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