JPH05506351A - Antibodies to human breast cell growth inhibitors and methods of production and use thereof - Google Patents

Antibodies to human breast cell growth inhibitors and methods of production and use thereof

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JPH05506351A
JPH05506351A JP89506374A JP50637489A JPH05506351A JP H05506351 A JPH05506351 A JP H05506351A JP 89506374 A JP89506374 A JP 89506374A JP 50637489 A JP50637489 A JP 50637489A JP H05506351 A JPH05506351 A JP H05506351A
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inhibitor
cells
cell growth
breast
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アービン,ポール,アール.ジュニア
ウィッチャ,マックス,エス.
カミンスキー,マーク,エス.
コディ,ロバート,エル.
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ザ リージェンツ オブ ザ ユニバーシティー オブ ミシガン
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Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるため要約のデータは記録されません。 (57) [Summary] This bulletin contains application data before electronic filing, so abstract data is not recorded.

Description

【発明の詳細な説明】 ヒト乳房細胞成長インヒビターに対する抗体ならびにその製造方法および使用 関連8願 本出願は、アーヴイン(Ervin )による1986年7月61日付出願の’  Difactin ” (シフアクチン)と題する第891,135号の一部 継続出願であるアーヴインらによる1988年5月20日付出厘の@Human Mammary Ce1l Growth Inhibitorand Met hods ofProduction and Use @(ヒト乳房細胞成長 インヒビターならびにその製造方法および使用)と題する第196,657号の 一部継続出願であるアーダインらによる1988年5月27日付出願のAn t  i bod i e s。[Detailed description of the invention] Antibodies to human breast cell growth inhibitors and methods of production and use thereof 8 related petitions This application is filed by Ervin on July 61, 1986. Part of No. 891,135 entitled “Difactin” Continuing application by Irvine et al. published May 20, 1988 @Human Mammary Ce1l Growth Inhibitorand Met hods of Production and Use @(Human breast cell growth No. 196,657 entitled "Inhibitors and Methods of Their Preparation and Uses" Ant filed May 27, 1988 by Ardine et al., which is a continuation-in-part application. i bod i e s.

to Human Mammary Ce1l Growth Inhibit or and Metbo−ds of Production and Us e ’ (ヒト乳房細胞成長インヒビターに対する抗体ならびにその製造方法お よび使用)と題する第i 99.6 CJ 8号の一部継続出願である。to Human Mammary Ce1l Growth Inhibit or and Metbo-ds of Production and Us e’ (Antibodies against human breast cell growth inhibitors and their production methods) This is a continuation-in-part application no.

発明の分野 本発明は一般的には細胞成長調節に関し、さらに特定すれば、ヒト乳房細胞成長 インヒビターに特異的な抗体ならびにその製造方法および使用に関する。field of invention FIELD OF THE INVENTION The present invention relates generally to cell growth regulation, and more particularly to human breast cell growth. Antibodies specific for inhibitors and methods for their production and use.

以下のハイプリドーマがAmerican Type Cu1turaColl ection (12301Parklawn Drive、Rockvi−1 1e、 Maryland 20825 )に寄託された。The following hyperdomas are American Type CulturaColl ection (12301Parklawn Drive, Rockvi-1 1e, Maryland 20825).

ハイプリドーマ 受入番号 寄 託 日DF1 /3C6HB9722 198 8年5月24日DF1/1 o4 Hs9723 1988年5月24日DF1 /6E8 HBi01!52 1989年5月22日発明の背景 ヒト乳房組織には、初潮開始時にまた各月経周期時に増殖活性の爆発的な促進が 起こる。乳房組織および腫瘍に対するエストロデンの作用に関する研究から、ニ ストロビンは乳房組織に対する一次的成長開始因子であることが示されている( たとえば、Martin、 L、。Hypuridoma Accession Number Deposit Date DF1/3C6HB9722 198 May 24, 1988 DF1/1 o4 Hs9723 May 24, 1988 DF1 /6E8 HBi01!52 May 22, 1989 Background of the invention Human breast tissue undergoes an explosion of proliferative activity at the onset of menarche and during each menstrual cycle. happen. Studies on the effects of estroden on breast tissue and tumors have shown that Strobin has been shown to be the primary growth initiation factor for breast tissue ( For example, Martin, L.

gstrogen in the gnvlronm8nt、 105〜150 頁および5onnenschein、 C,ら、J、 Mat、 Canc、  rnst、。gstrogen in the gnvlronm8nt, 105-150 Page and 5onnenschein, C., et al., J., Mat., Canc. rnst,.

64 : 211〜214,198C1参照)。エストラジオール感受性の成長 因子の存在も確立されている(たとえば5oto、 A、M、ら、Cancer  Ras、、 46 : 2271〜2275,1.986参M)。さらに、本 来ホルモンではない乳房細胞成長因子も報告されている(たとえば、Dicks on、 R,B、ら、5cience、 232 : 1540〜1543,1 986)。乳房組織の成長に対して刺激作用を有することが明らかにされている 特異的な成長因子には、血小板由来成長因子、インスリン様成長因子(IGF  −1)および形質転換成長因子(TGF )αβは乳房組織の成長を抑制するこ とが明らかにされた(たとえば、Robert、 A、B、ら、PNAS US 、 82 : 119〜125.1985)。64: 211-214, see 198C1). Growth of estradiol sensitivity The existence of factors has also been established (e.g., 5oto, A, M, et al., Cancer Ras, 46: 2271-2275, 1.986 M). Furthermore, the book Breast cell growth factors that are not hormones have also been reported (e.g., Dicks on, R, B, et al., 5science, 232: 1540-1543, 1 986). It has been shown to have a stimulatory effect on breast tissue growth. Specific growth factors include platelet-derived growth factor and insulin-like growth factor (IGF). -1) and transforming growth factor (TGF) αβ can suppress breast tissue growth. (e.g., Robert, A. B., et al., PNAS US , 82: 119-125.1985).

乳房細胞の成長には学問的な興味以上のものがある。Breast cell growth is of more than academic interest.

乳房組織の新生物成長は、抑制されないと、制御不能の増殖ヲ続ける悪性腫瘍へ と進展し、年間側千人もの婦人の死因となっている。乳房組織に特異的に細胞増 殖を抑制できる成長抑制因子があれば、このような悪性腫瘍の予防および乳癌の 処置に強方な道具となるものと考えられる。このような乳房細胞成長インヒビタ ーは、上述の1988年5月20日付出願の親出願第196,657号および厘 出M第891.13i5号に記載されている。両出願の記述は参考として本明細 書に導入する。If unchecked, neoplastic growth in breast tissue can lead to malignant tumors that continue to grow uncontrollably. This has progressed to become the cause of death for as many as 1,000 women each year. Cell increase specifically in breast tissue If there is a growth inhibitory factor that can inhibit growth, it would be possible to prevent such malignant tumors and breast cancer. It is thought to be a powerful tool for treatment. Breast cell growth inhibitors such as - Parent Application No. 196,657 filed May 20, 1988 and No. 891.13i5. The descriptions of both applications are incorporated herein by reference. Introduce it into the book.

乳房細胞成長インヒビターの免疫学的精製および濃Nは、乳癌に対する予防およ び治療剤としてのこのインヒビターの使用を著しく容易にするものである。乳房 組織および血清中のインヒビターの存在および濃度の検出のためのイムノアッセ イはまた、乳癌の診断、乳癌の危険性が高い対象のスクリーニング、および処置 時に患者のインヒビター濃度のモニタリングニキわめて有利である。体液または 組織サンプル中の乳房成長インヒビターの検出用EIJSAキットもこのような 診断およびスクリーニングに便利である。Immunological purification and concentrated N of breast cell growth inhibitors may be useful for prevention and protection against breast cancer. This greatly facilitates the use of this inhibitor as a therapeutic agent. breast Immunoassay for the detection of the presence and concentration of inhibitors in tissues and serum It also helps in the diagnosis of breast cancer, screening of subjects at high risk of breast cancer, and treatment. Monitoring a patient's inhibitor concentration is sometimes highly advantageous. body fluids or The EIJSA kit for the detection of breast growth inhibitors in tissue samples is also Convenient for diagnosis and screening.

発明の要約 本発明は、ヒト乳房細胞成長インヒビターに特異的な抗体ならびにその製造方法 および使用に関する。このインヒビターに特異的なモノクローナル抗体を産生ず る・・イブリドーマ細胞系が、細胞融合および選択技術音用いて作成された。こ のインヒビターに対するポリクローナル抗体も、動物のin vivo免疫処置 およびその血清からの抗体の回収によって、作成された。本発明の原理に従い、 インヒビターに対して作成された抗体はまた、本発明のインヒビターの精製およ び濃縮に、またさらにヒト乳房および非乳房細胞ならびにヒト血清中におけるイ ンヒビターの存在の検定に使用される。Summary of the invention The present invention provides antibodies specific for human breast cell growth inhibitors and methods for producing the same. and regarding use. does not produce monoclonal antibodies specific to this inhibitor. A hybridoma cell line was created using cell fusion and selection techniques. child Polyclonal antibodies against inhibitors of and the recovery of antibodies from its serum. In accordance with the principles of the invention, Antibodies generated against the inhibitors can also be obtained by purifying and treating the inhibitors of the invention. and concentration in human breast and non-breast cells and human serum. used to test for the presence of inhibitors.

本発明の抗体がそれに対して作成されるヒト乳房細胞成長インヒビターは易熱性 蛋白質からなる。NHMC!IiJ!培地からイオン交換クロマトグラフィーに よって単離されるインヒビターの活性ピークは、分子篩カラム分画のMCF − 7成長アツセイで測定すると、分子量約40,000〜約45,000 fルト ンオLび約50.Q11〜約60,000ダルトンの範囲に認められた。しかし ながら、抗体アフィニティークロマトグラフィーで精製されたインヒビターは、  5DS−PAGEで測定した場合、活性−一りを約45,000〜約50,0 00ダルトンの範囲および約60,000〜約70.D CI Oダルトンの範 囲に示す。The human breast cell growth inhibitor against which the antibodies of the invention are made is thermolabile. Consists of protein. NHMC! IiJ! From media to ion exchange chromatography Therefore, the active peak of the isolated inhibitor is the MCF of the molecular sieve column fraction. 7 growth assay, the molecular weight is about 40,000 to about 45,000 f. Approximately 50. It was observed in the range of Q11 to about 60,000 Daltons. but However, inhibitors purified by antibody affinity chromatography When measured by 5DS-PAGE, the activity is about 45,000 to about 50,000 00 Dalton range and about 60,000 to about 70.00 Daltons. D CI O Dalton range Shown in the box.

本発明の機能性インヒビターの産生増加は、インヒビター分泌乳房細胞の低カル シウム濃度における生育によって誘導された。インヒビターの活性も、カルシウ ム依存性、用量依存性、また可逆性である。インヒビターは正常女性の血清中に 存在するが、正常男性および乳癌患者の血清中には全く存在しないかまたは低濃 度しか存在しない。したがって、インヒビターは、乳房細胞の増Nを予防するた めまたは乳癌処置用の治療剤として、単独でまたは他の薬剤と配合して投与する ことができる。Increased production of the functional inhibitors of the invention results from low calcium levels in inhibitor-secreting mammary cells. induced by growth in sium concentrations. Inhibitor activity also It is time-dependent, dose-dependent, and reversible. The inhibitor is present in the serum of normal women. However, it is absent or at low concentrations in the serum of normal men and breast cancer patients. There are only degrees. Therefore, inhibitors may be used to prevent breast cell expansion. Administered alone or in combination with other drugs as a therapeutic agent for the treatment of cancer or breast cancer be able to.

乳房細胞成長インヒビター濃度と乳癌の関連性から、ヒ)M織および血清におけ るインヒビターの存否および濃度を検出する本発明のイムノアッセイは、乳癌ま たは前癌性細胞増殖状態の診断、乳癌に対する素因のスクリーニング、および処 置時の患者のインヒビター濃度のモニタリングに使用できる。Based on the relationship between breast cell growth inhibitor concentration and breast cancer, The immunoassay of the present invention detects the presence or absence and concentration of inhibitors in breast cancer or breast cancer. diagnosis of or precancerous cell growth conditions, screening for predisposition to breast cancer, and treatment. It can be used to monitor a patient's inhibitor concentration during treatment.

本発明およびその利点は、本発明の好ましい態様の記述を図面および特定例を参 照しながら一読すればよりよく理解できるものと信じる。The invention and its advantages may be further understood by reference to the drawings and specific examples, which describe preferred embodiments of the invention. I believe that you will be able to understand it better if you read it with reference to it.

図面の簡単な説明 第1図は、低および高カルシウム中で生育させたMCF −7培養体中で測定さ れたNHMCmM培地の抑制活性の棒グラフであり、抑制活性のカルシウム依存 性を例示するものである。Brief description of the drawing Figure 1 shows the measurements in MCF-7 cultures grown in low and high calcium. It is a bar graph of the inhibitory activity of the NHMCmM medium, which shows the calcium dependence of the inhibitory activity. It is an example of gender.

第2図に、形質転換ヒト乳房細胞の成長抑制のNHMC調整培地による用量反応 曲線である。Figure 2 shows the dose response of NHMC-conditioned medium in inhibiting the growth of transformed human breast cells. It is a curve.

第3図は、NHMCi!Il整培地の分子篩カラム分画の、形質転換ヒト乳房細 胞に対する抑制活性のグラフであり、分子量約40,000〜約45,000の 範囲および約50.000〜約60,00 CJの範囲の分画の抑制活性のピー クを例示する。Figure 3 shows NHMCi! Transformed human mammary cells of molecular sieve column fraction of Il culture medium. This is a graph of inhibitory activity against cells with a molecular weight of about 40,000 to about 45,000. range and the peak of inhibitory activity of the fractions ranging from about 50,000 to about 60,00 CJ. Here are some examples.

第4図は、疎水性相互作用カラム上で分離し、10係ポリアクリルアミドデル上 で電気泳動を行った各攬サンプルの銀染色の結果金示す。Figure 4 shows separation on a hydrophobic interaction column and a 10-column polyacrylamide gel. The results of silver staining of each sample subjected to electrophoresis are shown.

第5図は、モノクローナル抗体親和性で選択されたヒト乳房細胞成長インヒビタ ーの容量の増加に伴う、形質転換ヒト乳房細胞の成長抑制の増強を例示する用量 反応曲線である。Figure 5 shows human breast cell growth inhibitors selected for monoclonal antibody affinity. Doses illustrating enhanced growth inhibition of transformed human breast cells with increasing doses of This is a reaction curve.

第6図は、正常ヒト乳房細胞によって産生された353−メチオニン標識ヒト乳 房細胞成長インヒビターのフルオログラムである。Figure 6 shows 353-methionine labeled human milk produced by normal human breast cells. Fluorogram of tuft cell growth inhibitor.

第7図は、ヒト乳房細胞成長インヒビターに対するモノクローナル抗体を用い、 ヒト細胞溶解物および血清中のインヒビターを検出するためのウェスタンプロッ トである。Figure 7 shows the use of monoclonal antibodies against human breast cell growth inhibitors. Western Probe for Detecting Inhibitors in Human Cell Lysates and Serum It is.

第8図は、ヒト乳房細胞成長インヒビターに対するモノクローナル抗体を用い、 正常者および乳癌患者の血清におけるインヒビターを検出するためのウェスタン プロットである。FIG. 8 shows that using a monoclonal antibody against human breast cell growth inhibitor, Western for detecting inhibitors in the serum of normal subjects and breast cancer patients It's a plot.

第9図は、乳房細胞成長インヒビター活性の、精製モノクローナル抗体による脱 抑制の用量反応曲線である。Figure 9 shows the inhibition of breast cell growth inhibitor activity by purified monoclonal antibodies. Dose-response curve of inhibition.

第10図は、MCF −7の成長に対する調整培地の影響のグラフである。FIG. 10 is a graph of the effect of conditioned medium on the growth of MCF-7.

第11図は、アフィニティー精製ヒト乳房成長インヒビターの抑制活性と、抑制 活性の3C6抗体による阻害を例示する棒グラフである。Figure 11 shows the inhibitory activity and inhibition of affinity-purified human breast growth inhibitors. Figure 2 is a bar graph illustrating inhibition of activity by 3C6 antibody.

第12図は、アフィニティー精製インヒビターの銀染色、および358−メチオ ニン標識アフィニティー選択ヒト乳房成長インヒビターのフルオログラムである 。Figure 12 shows silver staining of affinity purified inhibitors and 358-methio Fluorogram of a nin-labeled affinity-selected human breast growth inhibitor. .

第13図は、アフィニティー精製インヒビターの熱およびトリプシン感受性を例 示するグラフである。Figure 13 illustrates the heat and trypsin sensitivity of affinity purified inhibitors. This is a graph showing.

第14図は、3C6抗体を用いた免疫ペルオキシダーゼ染色正常ヒト乳房細胞お よびMCF −7細胞である。Figure 14 shows normal human breast cells and immunoperoxidase staining using 3C6 antibody. and MCF-7 cells.

発明の好ましい態様の説明 本発明は、一般的には、ヒト乳房細胞成長インヒビターに特異的な抗体、ならび にその製造方法および使用に関する。「ヒト乳房細胞成長インヒビター」の語は 、その活性型がヒト乳房細胞の成長と抑制できる本発明のインヒビターの特徴を 有するインヒビターを意味する。「ヒト」の語は、インヒビターの起源をヒトに 限定することまたはその抑制効果がヒトのみに必ず限定されることを意図するも のではないことを理解すべきである。Description of preferred embodiments of the invention The present invention generally relates to antibodies specific for human breast cell growth inhibitors; relating to its manufacturing method and use. What does the term “human breast cell growth inhibitor” mean? , the characteristics of the inhibitor of the present invention, the active form of which can suppress the growth of human breast cells. means an inhibitor that has The word “human” refers to the origin of inhibitors in humans. It is not intended that the limiting effect or the suppressive effect necessarily be limited to humans only. It should be understood that this is not the case.

このインヒビターに特異的なモノクローナル抗体を産生ずるハイプリドーマ細胞 系は、細胞融合および選択技術によって作成された。インヒビターに対するポリ クローナル抗体は動物のin vivo免疫処置およびその血清からの抗体の回 収によって作成された。ポリクローナルおよびモノクローナル両抗体とも、イン ヒビターの抑制活性を遮断し、筐たインヒビター全分泌する正常ヒト乳房細胞に よる調整培地からの抑制活性全消失させる。インヒビターの高濃度、精製組成物 はまた、本発明の抗体を使用して製造された。「高濃度」の語は、インヒビター の正常生理的レベルを越えるインヒビターの濃度を意味する。本発明の原理に従 い、インヒビターに対する抗体は、ヒト細胞および血清中におけるインヒビター の存否のアッセイに使用された。Hybridoma cells that produce monoclonal antibodies specific for this inhibitor The system was created by cell fusion and selection techniques. Poly for inhibitors Clonal antibodies are produced by in vivo immunization of an animal and the production of antibodies from its serum. Created by the collection. Both polyclonal and monoclonal antibodies Blocks the inhibitory activity of the inhibitor and induces normal human breast cells to secrete the inhibitor. completely eliminates the inhibitory activity from the conditioned medium. High concentration, purified composition of inhibitor were also produced using antibodies of the invention. The term "high concentration" refers to the inhibitor refers to the concentration of an inhibitor that exceeds the normal physiological level of . In accordance with the principles of the invention Antibodies against the inhibitor can be used to detect the inhibitor in human cells and serum. was used to assay for the presence or absence of

それに対する抗体が作成された乳房細胞成長インヒビターは、活発に増殖してい るヒト乳房細胞によって分泌され、上述の1988年5月20日付出願の親出願 第196.657号および原出H第891,135号に記載されている。機能性 乳房細胞成長インヒビターは、培養液中「正常」すなわち非形質転換ヒト乳房細 胞によって分泌されて、「正常」女性すなわち乳癌をもたない女性の血清中に存 在する。しかしながら、正常ヒト乳房細胞により標準培養条件下に産生されるレ ベルおよびヒト血清中に存在するレベルは元来、標準技術音用いたインヒビター の単離には不適当であった。しかしながら、正常ヒト乳房細胞を低カルシウム環 境に置くことによって、機能性インヒビターの産生増加が達成された。「低カル シウム」環境の語は、生理的レベルより低いカルシウム濃度を有する環境全意味 する。Breast cell growth inhibitors, for which antibodies have been created, are actively proliferating. is secreted by human breast cells and is the parent application of the above-mentioned May 20, 1988 application. No. 196.657 and Original H. No. 891,135. Functionality Breast cell growth inhibitors are used to treat "normal" or non-transformed human breast cells in culture. secreted by breast cancer cells and present in the serum of “normal” women, i.e. women without breast cancer. Exists. However, the levels produced by normal human breast cells under standard culture conditions The levels present in human serum and the levels of inhibitors originally used in standard technology It was unsuitable for isolation. However, normal human breast cells are Increased production of functional inhibitors was achieved by placing the inhibitors in the “Low Cal The term ``calcium'' refers to any environment that has a calcium concentration below physiological levels. do.

さらに特定すれば、少なくとも1nvitroでの低カルシウム環境に関しては 、このような環境は約[1,1mMカルシウム未満、好ましくは約Q、Q 4  mMカルシウム未満のカルシウム濃度を包含する。More specifically, for at least one in vitro low calcium environment, , such an environment contains less than about [1,1mM calcium, preferably about Q,Q4 Includes calcium concentrations below mM calcium.

正常ヒト乳房細胞(NHMC)から得られる乳房細胞成長インヒビターは、イオ ン交換クロマトグラフィー、疎水性相互作用クロマトグラフィー、および分子篩 クロマトグラフィーにより、約90%の純度に単離精製された。さらに約り5% 純度までの精製はイオン交換クロマトグラフィー、ついでモノクローナル抗体ア フィニティークロマトグラフィーによって達成された。Breast cell growth inhibitors obtained from normal human breast cells (NHMC) are exchange chromatography, hydrophobic interaction chromatography, and molecular sieves It was isolated and purified to approximately 90% purity by chromatography. Approximately 5% more Purification to purity is achieved by ion exchange chromatography, followed by monoclonal antibody Achieved by affinity chromatography.

ヒト乳房細胞成長インヒビターは5熱性蛋白質からなることが見出され、DEA Eイオン交換クロマトグラフィーで調整されたNE(MCから単離されたインヒ ビターは、分子篩カラム分画のMCF −7成長アツセイにより測定して約40 ,000〜約45,000グルトンMWおよび約50.0 [1C1〜6 G、 000グルトンMwの範囲に抑制活性のピークを示す。本明細書における分子量 はすべてダルトンで表示する。Human breast cell growth inhibitor was found to consist of a pentathermal protein, DEA NE prepared by E ion exchange chromatography (inhibitor isolated from MC) Bitter is approximately 40% as determined by MCF-7 growth assay of molecular sieve column fractionation. ,000 to about 45,000 gluton MW and about 50.0 [1C1-6G, It shows a peak of inhibitory activity in the range of 000 gluton Mw. Molecular weight herein are all displayed in Daltons.

しかしながら、モノクローナル抗体アフイニテイークロマトグラフィーによって NHMCW4整培地から精製されたインヒビターは、SDSポリアクリルアミド デル電気泳動で測定した抑制活性ピーク’t、45.000〜約50.OOOM W(7)範囲オヨび約60,000〜70,000MWの範囲に示す。さらに詳 しくは、DEAE 5epharyLイオン交換クロマトグラフイ一ついでモノ クローナル抗体アフィニティークロマトグラフィーによってNKMC−調整培地 から精製したインヒビターの銀染色では、約47,000と約65,000の一 定のバンドが観察された。このように精製されたインヒビターは以下「アフィニ ティー精製インヒビター」と呼ぶ。直接モノクローナル抗体アフィニティークロ マトグラフィー(すなわち、イオン交換全行わない)によるNHMC−調整培地 から単離精製されたインヒビター(以下、「アフィニティー選択インヒビターと 呼ぶ)のフルオログラムは、約471O口0と約67,000 M Wにおける 一定のバンドおよび約63,000 M Wに一定しない小さなバンドを示した 。すなわち、本発明の乳房細胞成長インヒビターは、同様に乳房組織の成長に対 して抑制作用を有する他の細胞成長インヒビター、たとえばTGF−βから、そ の分子量、易熱性および細胞特異性によって識別される。However, monoclonal antibody affinity chromatography Inhibitors purified from NHMCW4 culture medium were purified using SDS polyacrylamide. Inhibitory activity peak 't measured by del electrophoresis, 45,000 to about 50. OOOM The W(7) range is approximately 60,000 to 70,000 MW. More details Alternatively, DEAE 5epharyL ion exchange chromatography can be used to NKMC-conditioned medium by clonal antibody affinity chromatography Silver staining of the inhibitor purified from A certain band was observed. Inhibitors purified in this way are referred to as ``affinity''. It is called "tea refining inhibitor". Direct monoclonal antibody affinity cloning NHMC-conditioned medium by matography (i.e. without any ion exchange) Inhibitors isolated and purified from The fluorogram of It showed a constant band and a small inconsistent band at about 63,000 MW. . That is, the breast cell growth inhibitor of the present invention also inhibits breast tissue growth. From other cell growth inhibitors, such as TGF-β, which have an inhibitory effect on identified by their molecular weight, thermolability and cell specificity.

正常ヒト乳房細胞(NHMC)によって調整され、乳房細胞成長インヒビターを 含有する培地の粗製および精製プレバレージョンの抑制活性はまた、乳房細胞特 異的であることが見出された。「細胞特異的」活性の語は、一般的に、インヒビ ターが他の細胞型に対するLりもそれが特異性を示す細胞型に対して強力な抑制 作用を発揮することを意味する。本発明の乳房細胞成長インヒビターは、NHM Cならびに形質転換された乳房細胞系MCF−7,BT−20,ZR−75−1 。Regulated by normal human breast cells (NHMCs) to inhibit breast cell growth inhibitors The inhibitory activity of the crude and purified prevolamination of the media contained also It was found to be different. The term "cell-specific" activity generally refers to It is a powerful inhibitor for the cell type for which it exhibits specificity, even if the target is active against other cell types. It means to exert an effect. Breast cell growth inhibitors of the invention are NHM C and transformed breast cell lines MCF-7, BT-20, ZR-75-1 .

@VejO8およびMDA −M B −231の成長を抑制するが、11種の 非乳房細胞型のこのインヒビターによる成長抑制はほとんどまたは全く認められ なかった。様々なカルシウム濃度における抑制活性の研究から、抑制活性はまた 、カルシウム依存性であり、カルシウムレベルの上昇を要求することが明らかに されている。@VejO8 and MDA-MB-231 growth is suppressed, but 11 species Little or no growth inhibition was observed with this inhibitor in non-mammary cell types. There wasn't. From the study of inhibitory activity at various calcium concentrations, the inhibitory activity also , is clearly calcium dependent and requires elevated calcium levels has been done.

用量反応研究でもインヒビターによる乳房細胞成長抑制は用量反応性であること が示されている。別の試験により、乳房細胞のインヒビターによる成長抑制は、 インヒビターの除去に際して可逆性を示すことが明らかにされている。Dose-response studies also show that inhibition of breast cell growth by inhibitors is dose-responsive. It is shown. Another study showed that inhibition of breast cell growth by inhibitors It has been shown that the inhibitor is reversible upon removal.

本発明の乳房細胞成長インヒビターが示す調節作用は、処置細胞の細胞死を介す るものではない。インヒビターで処理された細胞は肉眼的観察では健康にみえる が、核の大きさは低下し、細胞は分化細胞に典型的な、安定した休眠期の形態的 特徴を示すように思われる。しかしながら、本発明の乳房細胞成長インヒビター の正確な作用機構はまだわかっていない。The regulatory effects of the breast cell growth inhibitors of the present invention are mediated by cell death of treated cells. It's not something you can do. Cells treated with inhibitors appear healthy to the naked eye However, the nuclear size decreases and the cells exhibit a stable dormant morphology typical of differentiated cells. It seems to show characteristics. However, the breast cell growth inhibitors of the present invention The exact mechanism of action is still unknown.

本発明の原理に従い、乳房細胞成長インヒビターに対して作成されたポリクロー ナルおよびモノクローナル抗体は、さらにインヒビターの特性決定および精製を 行うために使用された。少なくとも約95%筐での純度のインヒビターがモノク ローナルアフィニティーカラムを用いて得られた。インヒビターに対するポリク ローナルおよびモノクローナル抗体はいずれも、脱抑制実験によって明らかなよ うに抑制活性を消失させ、あるいは枯渇試験から明らかなようにNHMC−調整 培地からインヒビター全除去することが示された。インヒビターに対して作成さ れた抗体による脱抑制は抗体用量依存性であることも明らかにされた。明らかに 非機能性インヒビターを産生ずるBT−20およびMC’F−7形質転換ヒト乳 房細胞系は、補体の存在下に、インヒビターに対する動物抗血清で溶解され、一 方インヒビターを産生じない非乳房細胞系は影響を受けず、細胞表面におけるイ ンヒビターの存在を示唆している。Polyclonal clones made for breast cell growth inhibitors in accordance with the principles of the present invention. monoclonal and monoclonal antibodies for further inhibitor characterization and purification. used to do. Monochrome inhibitors of at least about 95% purity Obtained using a lonal affinity column. Polik against inhibitors Both local and monoclonal antibodies are NHMC-modulation abolished the inhibitory activity or as evidenced by the depletion test. It was shown to completely remove the inhibitor from the culture medium. Created for inhibitors It was also revealed that the disinhibition by the antibody was dependent on the antibody dose. clearly BT-20 and MC'F-7 transformed human milk producing non-functional inhibitors The tuft cell line is lysed with animal antiserum against the inhibitor in the presence of complement and then incubated. Non-breast cell lines that do not produce the anti-inhibitor are unaffected and do not produce the inhibitor on the cell surface. suggests the presence of an inhibitor.

この所見はまた、間接免疫螢光法によっても1窮されている。このデータは、イ ンヒビターに対する細胞受容体部位が細胞表面上に存在することを示唆している 。This finding has also been confirmed by indirect immunofluorescence. This data is suggests that cellular receptor sites for inhibitors exist on the cell surface .

本発明の抗体を利用するイムノアッセイはまた、乳房細胞成長インヒビターの存 否の検出および定量に使用される。インヒビターは、正常ヒト乳房細胞(N)( MC)に、ある種の形質転換乳房細胞系に非機能型として、また正常女性の血清 中に見出されているが、他の形質転換乳房細胞系、非乳房細胞系、男性血清およ び女性乳癌患者の血清中には全くまたは低レベルしか検出されなかった。Immunoassays utilizing antibodies of the invention also detect the presence of breast cell growth inhibitors. used for detection and quantification of The inhibitor is normal human breast cells (N) ( MC), as a non-functional form in certain transformed breast cell lines, and in serum from normal women. However, other transformed breast cell lines, non-breast cell lines, male serum and None or only low levels were detected in the serum of women with breast cancer.

血流中または乳房組織における機能性ヒト乳房細胞成長インヒビターの低レベル または不存在は、乳癌または乳癌の素質を示すものである。すなわち、上述の出 願第196.657号および第891,135号に述べたように、乳房細胞成長 インヒビターは、乳癌の危険を低下させるためまたは良性および悪性の乳房細胞 増殖状態の処置のため、患者に投与して血fiまたは乳房組織中のインヒビター のレベルを上昇させることができる。ヒト組織および血清中のインヒビターの存 在を検出する本発明のイムノアッセイは、乳癌の診断方法として、乳癌の危険が 高い集団の検診に、また処置時に患者のインヒビターのレベルをモニタリングす るために有用である。乳房細胞成長インヒビターに対する抗体の結合を検出する ためのインヒビターと試薬を使用する本発明のEL、ISAキットは、上述の診 断および検診を容易にする。Low levels of functional human breast cell growth inhibitors in the bloodstream or breast tissue or its absence is indicative of breast cancer or a predisposition to breast cancer. In other words, the above output Breast cell growth, as described in Application Nos. 196.657 and 891,135. Inhibitors are used to reduce the risk of breast cancer or to inhibit benign and malignant breast cells. For the treatment of proliferative conditions, administering to a patient to inhibit inhibitors in the blood or breast tissue. can increase the level of. Presence of inhibitors in human tissues and serum The immunoassay of the present invention, which detects breast cancer, can be used as a diagnostic method for breast cancer. For screening high population populations and for monitoring patient inhibitor levels during procedures. It is useful for Detecting binding of antibodies to breast cell growth inhibitors The EL and ISA kits of the present invention, which use inhibitors and reagents for facilitate diagnosis and examination.

特定例 特定例1〜26においては、とくに指示のない限り、以下の一般的な実験プロト コールを使用した。とくに指示のない限り、百分率はすべて容量百分率である。specific example In Specific Examples 1-26, unless otherwise indicated, the following general experimental protocol is used: I used call. All percentages are by volume unless otherwise indicated.

細胞培養および培地の調整: 整復乳房形成からの正常ヒト乳房細胞は、 MichiganCancer F oundationのHerb 5ouleから入手した。細胞は、(低カルシ ウム)40〜60 nM塩化カルシウム、5%Sigma Chalex処理ウ マ血清、20n、9/mCoLlaborative EGF、 98 n&  / +114!コレラトキシン、10μi/Mlインスリンおよび1μg/IL tハイドロコーチシンを含有するGibco I)MEM / F 12培地中 に維持した。細胞は、茄湿CO2インキュベーター中、37℃でインキュベート した。NHMC−調整培地が必要な場合には、細胞を少なくとも96時間、低カ ル7ウム培地に馴化させた。Cell culture and media preparation: Normal human breast cells from reduction mammoplasty were obtained from Michigan Cancer F. Obtained from Foundation's Herb 5 Oule. cells (low calci 40-60 nM calcium chloride, 5% Sigma Chalex-treated Mass serum, 20n, 9/mCoLlaborative EGF, 98n& /+114! Cholera toxin, 10 μi/Ml insulin and 1 μg/IL In Gibco I) MEM/F12 medium containing t-hydrococcinin maintained. Cells were incubated at 37°C in a humidified CO2 incubator. did. If NHMC-conditioned medium is required, cells are incubated at low temperature for at least 96 hours. The cells were adapted to Le 7um medium.

McF−7m胞は、10%ウシ胎仔血清(Fe2 ) オよび1μEl/Ill インスリンを補充したMEM中、加湿co□インキュベーター内において37° Cに維持した。McF-7m cells were prepared with 10% fetal bovine serum (Fe2) and 1μEl/Ill. 37° in a humidified co□ incubator in MEM supplemented with insulin. It was maintained at C.

成長および抑制検定: MCF −7細胞は保存培養液からトリプシン除去後、10容量%FC3および 所望により1μg/1jLlインスリンヲ補充したMEM中、12ウエルのコス タ−培養プレートラ用い、1〜2X10’細胞/ m/ 、 1 rttl/  ウxルで三重にブレーティングし、37℃で一夜接着させた。Growth and inhibition assays: After removing trypsin from the stock culture medium, MCF-7 cells were treated with 10 volume% FC3 and Prepare 12 wells in MEM supplemented with 1 μg/1jLl insulin as desired. Using a tar culture plate, 1-2 x 10' cells/m/, 1 rttl/ It was triple plated with Uxul and allowed to adhere overnight at 37°C.

培地を新たに追加し、培養液は適当なサンプルを添加して処置した。細胞は37 ℃で7日間静置して生育させ、ついで計数した。Fresh medium was added and the cultures were treated by adding the appropriate samples. 37 cells The cells were allowed to grow for 7 days at ℃ and then counted.

細胞計数: 細胞を室温のリン酸緩衝食塩溶液(PBS )で洗浄し、ついでSigma C atrimide界面活性剤溶液により37°Cで溶解させて核を遊離させ、コ ールタ−カウンターで計数した。細胞数は、平均細胞数から5%t−越える偏差 を示す値を不適正として除いで平均した。Cell counting: Cells were washed with room temperature phosphate-buffered saline (PBS) and then incubated with SigmaC The nuclei were released by lysis at 37°C with atrimide surfactant solution, and the core Counted with a router counter. The cell number deviates by more than 5% t from the average cell number. The values were averaged after excluding values showing inappropriateness.

計算(細胞数平均値全使用): 憾抑制率=〔i−c処置サンプル細胞数/非処置サンプル細胞数)3X100 壬回復率−[1−(!ll整培地除去処置サンプルの壬抑制率/調整培地処置サ ンプルのチ抑制率)〕X1 Clf] チ脱抑制率−〔1−(サンプルの%抑制軍/調整培地の憾抑制率)]X100 特定例1 NHMC−調整培地処置NHMCの成長抑制および細胞形態の変化 処置に使用したNHMC−調整培地は、正常ヒト乳房細胞(諏c ) t−以下 の第1表に示した各培地中で5日間生育させることによって得られた。ついで培 地を除去し% 8.00 Orpmで15分間遠心し、凍結乾燥し、最初の濃度 の10分の1になる↓うに水中に再構築した。再構築された培地を滅菌濾過し、 培養細胞の処置に使用した。処置細胞は、11:lウシ胎仔血清(Fe2)を補 充したDMlffl / F 12中で2週間−次培讐して成長させた整復乳房 形成から得られた正常ヒト乳房細胞(NHMC)であった。−次培養液からトリ プシンを除去したのち、細胞t4X105個/’r 257ラスコでブレーティ ングしで一夜付着させたのち、第1表に挙げた種類の10幅調整培地を補充しf  rMDM特定培地中で成長させた。細胞はついでさらに成長が観察されなくな るまで追跡し、次にトリプシン処理して細胞をプレートから除き、血球計数計で 計数した。Calculation (using all cell count average values): Inhibition rate = [number of cells in ic treated sample/number of cells in untreated sample] 3X100 Jin recovery rate - [1-(!ll) Jin suppression rate of conditioned medium removal treatment sample/conditioned medium treatment sample Qi suppression rate of sample)〕X1 Clf] Chi deinhibition rate-[1-(% inhibition of sample/depression inhibition rate of conditioned medium)]X100 Specific example 1 NHMC-conditioned medium-treated NHMC growth inhibition and cell morphology changes The NHMC-conditioned medium used for treatment was normal human breast cells (SUCC) below t- were obtained by growing for 5 days in each medium shown in Table 1. Then cultivate Remove the base, centrifuge at 8.00 rpm for 15 minutes, lyophilize, and reduce to the initial concentration. ↓The sea urchin was rebuilt underwater. Sterile filter the reconstituted medium; It was used to treat cultured cells. Treated cells were supplemented with 11:l fetal bovine serum (Fe2). Reduced breasts grown for 2 weeks in DMlffl/F12. Normal human mammary cells (NHMC) obtained from the tumor. - Birds from the next culture After removing psin, t4×105 cells/’r were plated with 257 rascos. After allowing the mixture to adhere overnight, supplement with a 10-width conditioned medium of the type listed in Table 1. Grown in rMDM specific medium. Cells are then no longer observed to grow. The cells are then trypsinized to remove them from the plate and counted in a hemocytometer. I counted.

第1表のデータから明らかなように、低カルシウム濃度でNHMC−調整した培 地i IMDM生育培地中NHMCに添加した場合には、カルシウム濃度が高い 場合と異なり、正常ヒト乳房細胞に対して非毒性の成長抑制作用全示し、低カル シウム濃度で生育されたNHMC細胞はより多量の機能性乳房細胞成長インヒビ ターを産生ずることが示唆された。第1表はまた、低カルシウムWC−調整培地 で阻害された細胞は、形態的に区別される特性も帯びたことを示している。As is evident from the data in Table 1, NHMC-conditioned media with low calcium concentrations High calcium concentration when added to NHMC in IMDM growth medium Unlike other cases, it exhibits non-toxic growth-inhibitory effects on normal human breast cells and is a low-cal NHMC cells grown at concentrations of Cium have higher amounts of functional breast cell growth inhibitors. It was suggested that it produced tar. Table 1 also shows the low calcium WC-conditioned medium The results show that the cells inhibited by this method also took on morphologically distinct characteristics.

F12培地 さな核を有する 縮小 ao、04 mMカルシウム bカルシウムの生理的濃度 特定例2 抑制活性のカルシウム依存性 ヒト乳房細胞成長インヒビターの抑制活性がカルシウム依存性かどうかを試験す るためKは、MCF −7形質転換ヒト乳房細胞を、低カルシウムNHMC−調 整培地のカラム分画を補光した0、04 mMカルシウム(低)および24mM カルシウム(高)αMEN含有DMEM /Fl 2培地で生育させた。カラム 分画は、限外濾過濃縮(10X)調整培地2dt負荷したG −1[1Q 5e phadaxカラムのPBS溶出から得られた。分画け、低および高カルシウム 生育培地中MCF −7細胞に対する10容量係補充物として使用した。MCF ’ −7細胞は補充培地中で4日間生育させ、ついでコールタ−カウンターで計 数した細胞数の減少によって抑制活性を測定した。F12 medium with small nuclei reduction ao, 04mM calcium b Physiological concentration of calcium Specific example 2 Calcium dependence of inhibitory activity To test whether the inhibitory activity of human breast cell growth inhibitors is calcium dependent. In order to 0, 04mM calcium (low) and 24mM supplemented column fraction of culture medium The cells were grown in DMEM/Fl2 medium containing calcium (high) αMEN. column The fraction is G-1 [1Q 5e loaded with 2 dt of ultrafiltration concentrated (10X) conditioned medium. Obtained from PBS elution of a phadax column. Fractionation, low and high calcium It was used as a 10 volume supplement for MCF-7 cells in growth medium. MCF '-7 cells were grown for 4 days in supplemented medium and then counted in a Coulter counter. Inhibitory activity was measured by the decrease in number of counted cells.

第1図に示すよりに、ヒト乳房細胞成長インヒビ、ターの抑制活性は高濃度のカ ルシウムを含有する培地中の方が高く、この活性がカルシウム依存性であること を示している。As shown in Figure 1, the inhibitory activity of the human breast cell growth inhibitor Tar higher in media containing lucium, indicating that this activity is calcium dependent. It shows.

特定例3 NHMC−pi整培地で処理したMCF −7細胞の用量反応 MCF −7細胞を、10%FC8補充MEM中104細胞/ゴでブレーティン グした。第2図に示した範囲の容量の調整培地を添加したのち、細胞を7日間生 育させた。使用し念調整培地は、NHMCの生育によって予め96時間調整した 低カルシウムDMEM / F 12とした。Specific example 3 Dose response of MCF-7 cells treated with NHMC-pi culture medium MCF-7 cells were plated at 104 cells/go in MEM supplemented with 10% FC8. I clicked. After adding the volume of conditioned medium shown in Figure 2, cells were allowed to grow for 7 days. I let it grow. The conditioned medium used was previously conditioned for 96 hours by growth of NHMC. Low calcium DMEM/F12.

第2図の用量反応曲線から明らかなように、MCF −7培地の補充に使用する 調整培地の容量を増加させると抑制活性のレベルが増大し、抑制活性のレベルは 用量依存性であることが示されている。As is clear from the dose-response curve in Figure 2, MCF-7 is used to supplement the medium. Increasing the volume of conditioned medium increases the level of inhibitory activity; It has been shown to be dose dependent.

特定例乙 ヒト乳房細胞成長インヒビターの抑制活性の可逆性10個のT25フラスコを用 い、10%FC3補充MEM 5 m中、MCF−7M胞t 1 x 10’m 胞/mlテフレーティングした。6個のフラスコは、1容量覧の低カルシウムN HMC−調整培地も補充し、残りの4個は非処理対照として使用した。細胞は加 湿CO□インキュベーター中、37℃で5日間生育した。5日後、非処理対照フ ラスコ2個と処理フラスコ2個の細胞を、Csrtimidaで細胞膜を溶解し 、遊離した核上コールターカウンターで計数し、細胞数を平均し、前述のように してチ抑制率をめた。同じく5日後に、残りのフラスコの培地に10壬FC8添 加MEM培地を新たに加え、残りの2個の処理培養液にはN)(MC−調整培地 を補充し、2個の前処理培養液と残りの2個の非処理培養液には何の処理も行わ なかった。細胞をさらに5日間生育させ、つめで細胞全溶解させ、核上コールタ ーカウンターで計数し、細胞数を平均し、憾抑制率および回復率上京めた。Specific example B Reversibility of the inhibitory activity of human breast cell growth inhibitors using 10 T25 flasks. MCF-7M cells t 1 x 10’m in 10% FC3 supplemented MEM 5m Cells/ml were teflated. 6 flasks contain 1 volume of low calcium N HMC-conditioned medium was also supplemented and the remaining four were used as untreated controls. cells add Grow for 5 days at 37°C in a humid CO□ incubator. After 5 days, untreated control The cell membranes of the cells in two flasks and two treated flasks were lysed with Csrtimida. , count with a free supranuclear Coulter counter and average the cell number as described above. The chi suppression rate was increased. Similarly, after 5 days, 10 μm of FC8 was added to the remaining flask medium. Add fresh MEM medium and add N)(MC-conditioned medium to the remaining two treated cultures. The two pre-treated cultures and the remaining two untreated cultures were not treated. There wasn't. Cells were grown for an additional 5 days, lysed with nails, and supranuclear coulter The cells were counted using a counter, the cell numbers were averaged, and the inhibition rate and recovery rate were determined.

第2表および第3表のデータから明らかなように、第0日に処理し、第5日から 第10日までは処理しなかった細胞では、阻止から40憾の回復が認められた。As is clear from the data in Tables 2 and 3, the treatment was carried out on day 0 and from day 5 onwards. For cells that were not treated until day 10, a 40-fold recovery from inhibition was observed.

第 2 表 憾抑制率 1チCM” 2a係 “CM =低カルシウムNHMC−調整培地第3表 抑制の可逆性 1%CM 1チCM 30% 1壬CM なし 18憾 ヒト乳房細胞成長イ/ヒビターの熱変性およびトリMCP−78胞を、10容量 憾FC’S補充MKM中104細胞/ゴでブレーティングした。細胞は24時間 後、PBS中2.5μg7rntト+)プシン含有溶液5%を加えて予め37℃ 1時間処理したか、または70℃に1時間加熱した10%低カルシウムNThC −調整培地で処理した。ただし、対照の補充に用いた調整培地は最初トリフノン インヒビターで処理し、ついでトリプシンとインキュベートした。細胞は7日間 生育させ、ついでコールタ−カウンターで計数し、係脱抑制率をめた。Table 2 Regret suppression rate 1chi CM” 2a person “CM = Low Calcium NHMC-conditioned medium Table 3 Reversibility of inhibition 1% CM 1chi CM 30% 1 CM None 18 regrets Heat-denatured human breast cell growth inhibitor/inhibitor and avian MCP-78 cells were added in 10 volumes. The cells were plated at 104 cells/go in MKM supplemented with FC'S. cells for 24 hours After that, add 2.5μg7rnt+)pusin-containing solution 5% in PBS and pre-incubate at 37°C. 10% low calcium NThC treated for 1 hour or heated to 70°C for 1 hour - treated with conditioned medium. However, the conditioned medium used for control supplementation was initially Treated with inhibitor and then incubated with trypsin. cells for 7 days The cells were allowed to grow and then counted using a Coulter counter to determine the rate of inhibition of detachment.

以下の第4表のデータに例示されるように、ヒト乳房細胞成長インヒビター活性 は熱およびトリプシンに感受性で、このインヒビターが蛋白質性の性質をもっ0 とを示している。Human breast cell growth inhibitor activity as exemplified by the data in Table 4 below. is sensitive to heat and trypsin, and this inhibitor has proteinaceous properties. It shows.

第 4 表 インヒビターの不活性化 ヒト乳房細胞成長インヒビターの特異性ヒト乳房細胞成長インヒビターの特異性 を試験し、その活性か単なる普遍的な細胞毒性代謝副生物のそれによるものでは ないことを示すため、インヒビターの抑制活性を、乳房細胞および非乳房細胞の 両者について試験しな。以下の第5表に掲げる様々なヒト細胞系または型を、コ スタ−プレート中104細胞/WLtでブレーティングし、つhで非調整低カル シウム(0,04mM)培地または予めNHMCで調整した低カルシウム培地で 処理し念。細胞は1週間生育させたのち、コールタ−カウンターで計数し、憾抑 制率をめた。Table 4 Inactivation of inhibitors Specificity of human breast cell growth inhibitor Specificity of human breast cell growth inhibitor and whether its activity is due to just that of a universal cytotoxic metabolic by-product. To demonstrate that the inhibitor's inhibitory activity was inhibited in mammary and non-mammary cells, Test both. The various human cell lines or types listed in Table 5 below are Plate at 104 cells/WLt in star plates and unadjusted low-cal with calcium (0.04mM) medium or low calcium medium adjusted in advance with NHMC. Please handle it. After the cells were grown for one week, they were counted using a Coulter counter and then quenched. Achieved the control rate.

ヒト乳房細胞に対するインヒビターの特異性は、第5表のデータによって示され るように、乳房紙層の成長抑制と非乳房紙層における阻害の欠落筐たは低下に・  よって例示される。2穫類の乳房細胞型、MDA −M B−231およびD σ4475における阻害の欠落は、これらの形質転換細胞が、インヒビターに対 するそれらの応答またはインヒビター認識に、たとえば、それらの表面における インヒビターのレセプター部位における欠陥またはこれらの細胞により抑制効果 を消失させるのに適当な量のステイミュレータ−が産生されることによる何らか の障害音もつという事実に由来するものと思われる。The specificity of the inhibitor for human breast cells is demonstrated by the data in Table 5. As shown in the figure, growth inhibition of the mammary paper layer and lack or reduction of inhibition in the non-mammary paper layer. Therefore, it is exemplified. Breast cell types of two harvested animals, MDA-M B-231 and D The lack of inhibition in σ4475 makes these transformed cells resistant to the inhibitor. their response to or inhibitor recognition on their surface, e.g. Suppressive effect due to defects in the receptor site of the inhibitor or these cells by producing an appropriate amount of stimulator to eliminate This is thought to be due to the fact that it has an obstructive sound.

第5表 HHMC調整培地の抑制効果の特異性 乳房 NHMC50 乳房BT−2050 乳房 MCF−778 乳房 HBL−10029 乳N ZR−75−126 乳房 MDA−MB−2!+1 < 5乳房 DU−4475< 5 11、%H,m 5w948 <!5 線維肉II HT1080 < 5 上皮性癌 HeLa < 5 黒色腫 wM164〈5 リンパ腫 U937 < 5 骨髄性白血病 K562 < 5 細胞球 HF (5 前骨髄性白血病 J774−2 < 5T−細胞 Mo1t4〈5 ヒト乳房細胞成長インヒビターの精製および活性低カルシウムNHMC−調整培 地からのヒト乳房細胞成長インヒビターを、以下に詳述する標準蛋白質精製法を 用いて精製した。すなわち、MCF −7抑制検定で測定して最も高い活性を示 すNHMC−調整培地をまず分子量カットオフ 10,000のアミコンフィル ターを通す限外濾過によって濃縮し、ついでPBS緩衝液中、分子量標準ととも に8ephadex G −1[I Qカラムを通過させて分画した。この分離 からの様々の分子量分画t−0,22μm Ge1manアクロディスクを用い て滅菌し、ついで10容量憾で、培養液中で生育させたMCF −7細胞の処理 に使用した。処理MCF −7細胞を7日間生育させたのち、コールタ−カウン ターで計数し、抑制率を測定した。抑制活性を示した分画は、見掛けの分子量約 4 a、a a aO分画であった。Table 5 Specificity of suppressive effect of HHMC conditioned medium Breast NHMC50 Breast BT-2050 Breast MCF-778 Breast HBL-10029 Milk N ZR-75-126 Breast MDA-MB-2! +1 < 5 Breast DU-4475 < 5 11,%H,m 5w948<! 5 Fibrous meat II HT1080 <5 Epithelial cancer HeLa <5 Melanoma wM164〈5 Lymphoma U937 <5 Myeloid leukemia K562 <5 Cell sphere HF (5 Promyelocytic leukemia J774-2<5T-cell Molt4<5 Purification and activity of human breast cell growth inhibitors Low calcium NHMC-conditioned media Human breast cell growth inhibitors from natural sources were purified using standard protein purification methods detailed below. It was purified using In other words, it shows the highest activity as measured by the MCF-7 inhibition assay. The NHMC-conditioned medium was first added to Amiconfil with a molecular weight cutoff of 10,000. Concentrated by ultrafiltration through a filter and then combined with molecular weight standards in PBS buffer. The mixture was fractionated by passing through an 8ephadex G-1[IQ column. This separation Various molecular weight fractions t-0, 22 μm from Ge1man Acrodisc Treatment of MCF-7 cells sterilized and then grown in culture in 10 volumes used for. After growing treated MCF-7 cells for 7 days, Coulter counter The inhibition rate was determined by counting using a micrometer. The fraction that showed inhibitory activity had an apparent molecular weight of approx. 4a, aa aO fraction.

NHMC−調整培地を低塩濃度でDEAEイオン交換カラムを通過させることに より、さらに高度の精製が達成された。次にNaC1濃度の段階勾配またはNa C1!1度の直線上昇勾配を用いて、蛋白質をこのカラムから溶出させた。この 分離からの分画の抑制活性は、分画のPBSに対する透析、分百の濾過による滅 醒、および本例で前述したMCF −7細胞の処理へのその溶液の使用によって 測定した。抑制活性をめると、蛋白質の活性は、段階勾配では3.5 M Na C4分直において、直線勾配では約0.3 M NaCtの分画において、最大 の活性を示した。NHMC-conditioned medium was passed through a DEAE ion exchange column at low salt concentration. A higher degree of purification was achieved. Then a step gradient of NaCl concentration or Na Protein was eluted from this column using a C1!1 linear ascending gradient. this The inhibitory activity of the fractions from the separation was determined by dialysis of the fractions against PBS and filtration of the fractions. by the use of the solution in the treatment of MCF-7 cells as described above in this example. It was measured. Considering the inhibitory activity, the protein activity is 3.5 M Na in a step gradient. In the C4 minute direct, the linear gradient reached a maximum of about 0.3 M in the fraction of NaCt. activity.

抑制活性を含むDEAgカラムからの分画をさらに5uperose i 2F PLC力ラム上分子篩クロマトグラフィーによって分離し、大きさの順に並べ、 分画の活性を測定した。この検定では、抑制は、24時間の標識期間ののち分画 に48時間暴露して、MCF −7細胞による3H−チミジンの取ジ込みを測定 した。第3図に示すように、この分離から2個の主たる抑制活性ピーク、すなわ ち見掛けの分子量約40.000〜45.[10[1のピークと、さらに見掛け の分子量約50,000〜60.000のピークが認められた。フェニル5ep harO8e疎水性相互作用カラム上でさらに分離すると、インヒビターに銀染 色で検出できないレベルまで精製されたが、以下の第6表のデータから明らかな ように、ピーク抑制活性は1M NaC2で溶出された分画に存在した。The fraction from the DEAg column containing inhibitory activity was further 5uperose i 2F Separated by molecular sieve chromatography on a PLC power ram and arranged in order of size, The activity of the fractions was measured. In this assay, inhibition occurs in fractions after a 24-hour labeling period. Measurement of 3H-thymidine uptake by MCF-7 cells after 48 hours of exposure to did. As shown in Figure 3, this separation yields two main inhibitory activity peaks, viz. The apparent molecular weight is about 40.000-45. [10[1 peak and further apparent A peak with a molecular weight of approximately 50,000 to 60,000 was observed. phenyl 5ep Further separation on a harO8e hydrophobic interaction column gave the inhibitors a silver stain. It has been purified to a level that cannot be detected by color, but it is clear from the data in Table 6 below. As such, peak suppression activity was present in the fraction eluted with 1M NaC2.

しかしながら、第4図のレーンDに示すように、疎水性相互作用カラムついで1 0 ’l SDSポリアクリルアミドrル上電気泳動で分離したサンプルの銀染 色では、この分画には、インヒビター蛋白質は検出されなかった。However, as shown in lane D of FIG. 0'l Silver staining of samples separated by electrophoresis on SDS polyacrylamide By color, no inhibitor protein was detected in this fraction.

第 6 表 疎水性相互作用クロマトグラフィー で分離された分画のチ抑制率 (Bl 2 M NaCt溶出 (C11,5M NaC6溶出 fDl I M NaC6溶出 (El O,5M NaC6溶出 (CM)低カルシウムNHMC−調整培地特定例8 ヒト乳房細胞成長インヒビターに対する抗体の製造およびインヒビター活性の消 失 上述のように調製した、活性を含むDEAE分画を製造ポリアクリルアミドデル 上に負荷した。40,000〜45,000の阻止ピークを包含する分子量範囲 35、D Q O〜50.D 01:lK相当−rルrk領域(DflfLfc 純度から、デルのこの部分を切り出し、この完全なデル7ラグメントから蛋白質 を電気溶出させた。溶出蛋白質20〜50μI/1llfr−次に50容量優の 70インド完全アジユバントと混合し、ニューシーラント白色家兎およびBa1 b / Cマウスに注射した。家兎にはこけ腹腔内にこの溶液0.2d?注射し て免疫処置した。Table 6 Hydrophobic interaction chromatography Chi inhibition rate of fractions separated by (Bl 2 M NaCt elution (C11,5M NaC6 elution fDl I M NaC6 elution (El O, 5M NaC6 elution (CM) Low calcium NHMC-conditioned medium specific example 8 Production of antibodies against human breast cell growth inhibitors and elimination of inhibitor activity loss The DEAE fraction containing activity was prepared as described above using a polyacrylamide gel. Loaded on top. Molecular weight range encompassing inhibition peaks from 40,000 to 45,000 35, DQ O~50. D01: lK equivalent -r rrk area (DflfLfc For purity reasons, we excised this portion of Del and extracted the protein from this complete Del 7 fragment. was electroeluted. Elute protein 20-50μI/1llfr - then 50 volumes 70 India Complete Adjuvant mixed with New Sealant White Rabbit and Ba1 b/C mice were injected. 0.2 d of this solution in the peritoneal cavity of a rabbit? injection were immunized.

動物には2週後、同じ蛋白質濃度を50容量壬の70インド不完全アゾユバント と混合して、ブースター投与した。ブースター1週後、これらの動物の血清につ いて、ELrSAアッセイを用いて接電溶液の認識を試験した。ブースター2週 後、マウスの尾静脈に20〜50μg/1116の蛋白質溶液を注射した。3日 後に、マウスを層殺し、牌臓全摘出した。Two weeks later, the animals were treated with 50 volumes of 70 indo-incomplete azojuvant at the same protein concentration. A booster was administered by mixing with One week after the booster, the serum of these animals was The recognition of electroconductive solutions was tested using the ELrSA assay. booster 2 weeks Afterwards, a protein solution of 20-50 μg/1116 was injected into the tail vein of the mouse. 3 days Afterwards, the mice were sacrificed and the entire spleen was removed.

マウス牌臓から摘出した牌臓細胞と、マウス骨髄腫Co、、 San Fran cisco、 Ca1ifornia (j 980 )に記載されているよう な標準的免疫学的技術を用い、ポリエチレングリコールの存在下に融合し、ハイ プリドーマを生成させた。細胞融合からのハイプリドーマを15%FC3含有R PMI中で培養し、これにヒボキサンチンおよびアゾセリンを適当な濃度で加え て96−ウェルマイクロタイタープレート中で2週間生育させ、非融合親細胞に 対して選択した。各培養液からの上澄液について次に、以下のELISAにより 、個々の培養液からのインヒビターに対する抗体の産生能を試験した。Spleen cells extracted from mouse spleen and mouse myeloma Co, San Fran As described in Cisco, Ca1ifornia (j980) fused in the presence of polyethylene glycol using standard immunological techniques. Generated a predoma. Hybridomas from cell fusion were prepared in R containing 15% FC3. Cultured in PMI, to which hyboxanthin and azoserine were added at appropriate concentrations. The unfused parental cells were grown for 2 weeks in 96-well microtiter plates. selected against. The supernatant from each culture was then subjected to the following ELISA. , tested the ability of individual cultures to produce antibodies against the inhibitor.

Dynatsch Laboratories、 Inc、 (Chantil ly、 Vir−ginia )製96−ウェルImmulon 2マイクロタ イタープレート’l、上述の動物の免疫処置に使用したのと同じ電気泳動ポリア クリルアミドデルスライスから得られた部分精製成長インヒビターのPBS中5 μl//1rLlでコーティングした。−夜4°Cでインキュベートしたのち、 プレートを肌9 % NaC1および0.05%Triton X−100の洗 浄溶液で洗浄した。各ハイプリドーマ培養液の土管液50μtをついでウェルに 加え、室温で2時間インキュベートした。プレートラ洗浄溶液で洗浄し、アルカ リホスファターゼに接合したヤイ抗−マウスIgGおよびIgMvL体(5ou thern BiotechnologyAssociates、 Birmi ngham、 Alabama )と、PBS中2憾BSA中i:1oooの希 釈度において、室温で2時間インキュベートした。プレートをついで再び洗浄溶 液で洗浄し、発色物質p−ニトロフェニルリン酸二ナトリウム塩(Sigma、  St、 Louis、 Missouri ) 10 @g/ゴの溶液100 μtを加えた。1〜20時間発色させた。次に、Dynatsch M R70 0マイクロプレートリーダーを用いて、波長410」における光学密度を測定し た。培養液をパックグランドの少なくとも4倍の活性に基づいてスクリーニング し、この基準で150個の陽性培養液全選択した。Dynatsch Laboratories, Inc. (Chantil Ly, Vir-ginia) 96-well Immulon 2 microta Iterplate’l, the same electrophoretic polypeptide used to immunize the animals described above. 5 in PBS of partially purified growth inhibitor obtained from crylamide del slices. Coated with μl//1rLl. -After overnight incubation at 4°C, Wash the plate with 9% NaCl and 0.05% Triton X-100. Washed with cleaning solution. Then add 50 μt of clay tube solution from each hybridoma culture solution to the well. and incubated for 2 hours at room temperature. Clean with Platera wash solution and remove alkaline Yai anti-mouse IgG and IgMvL bodies conjugated to lyphosphatase (5ou thern Biotechnology Associates, Birmi ngham, Alabama) and PBS Middle School, BSA Middle School i:1ooo Nozomi. The cells were incubated for 2 hours at room temperature in a diluted solution. Then wash the plate again. The chromogenic substance p-nitrophenyl phosphate disodium salt (Sigma, St, Louis, Missouri) 10 @g/go solution 100 μt was added. Color was developed for 1 to 20 hours. Next, Dynatsch M R70 Measure the optical density at a wavelength of 410" using a microplate reader. Ta. Screen cultures based on activity at least 4 times that of PacGrande Based on this criterion, all 150 positive cultures were selected.

ELISA陽性細胞液のクローン化集団をついで増殖させた。増殖培養液を洗浄 してアゾセリンを除去し、培地を調整したのち、成長抑制検定で試験した。試験 培養液からの、抑制を示さないかまたは抑制活性を遮断した細胞を限定希釈によ って単一細胞クローンにサブクローニングし、次に抑制活性への影響を再試験し た。The cloned population of ELISA positive cells was then expanded. Wash the growth medium After removing azoserine and adjusting the medium, it was tested in a growth inhibition assay. test Cells from the culture that showed no suppression or had blocked suppressive activity were collected by limited dilution. subcloned into single cell clones and then retested for effects on suppressive activity. Ta.

抑制を示さないかまたは抑制活性ta断したサデクローンt5X10’細胞まで 増殖させ、プリスタン刺激C3H/ HsN x Ba1b / C(Fl)  マウスの腹腔内に注射し、腹水中に抗体を産生させた。インヒビターに対するモ ノクローナル抗体には一般名称DFii与えた。Up to Sadeclonal t5X10' cells that do not show suppression or have abolished suppressive activity. Proliferated and pristane-stimulated C3H/HsN x Ba1b/C(Fl) It was injected intraperitoneally into mice to produce antibodies in ascites fluid. against inhibitors The noclonal antibody was given the generic name DFii.

本例に従って作成され、以下の試験に使用された3種のモノクローナル抗体およ びこれらの抗体を産生ずるハイプリドーマはDF1/3C6,DF1/ID4お よびD F 1 / 688と命名した。これらの抗体およびハイプリドーマは ミシがン大学メディカルセンター(Ann Arbor、 Michigan  48109 )のMax Wicha博士から入手できる。また、このハイプリ ドーマ細胞系は、American Type Cu1ture Co11ec tion (i 2501Parklawn Drive、 Rockvill e、 Maryland 2Q 352)に受入番号HB9722(DF1/3 C6)、HB9723(DF1/1 o4)およびHB10152(DF1/6 B8)として寄託されている。Three types of monoclonal antibodies prepared according to this example and used in the following tests. and the hybridomas that produce these antibodies are DF1/3C6, DF1/ID4, and and DF1/688. These antibodies and hybridomas University of Michigan Medical Center (Ann Arbor, Michigan) 48109) from Dr. Max Wicha. Also, this Hypuri The doma cell line is American Type Culture Co11ec. tion (i 2501 Parklawn Drive, Rockville e, Maryland 2Q 352) with accession number HB9722 (DF1/3 C6), HB9723 (DF1/1 o4) and HB10152 (DF1/6 B8).

35.000〜50,000分子量領域で免疫処置した家兎からの免疫血清は、 調整培地をウェスタンブロッティングで分析した場合、蛋白質に対する単一特異 性抗体を含有することが明らかにされた。この免疫血清はまた、特定例乙に記載 の疎水性相互作用カラムから1M NaC4で溶出された精製インヒビターを、 第4図Fに示すように認識した。Immune serum from rabbits immunized with a molecular weight range of 35,000 to 50,000 was When conditioned media are analyzed by Western blotting, monospecificity for proteins It was revealed that it contains sexual antibodies. This immune serum is also described in specific case B. The purified inhibitor eluted with 1M NaC4 from the hydrophobic interaction column of It was recognized as shown in Figure 4F.

ポリクローナル抗体を含有する家兎免疫血清およびマウスから誘導されたモノク ローナル抗体はいずれも、低カルシウムNHMC−調整培地によるMCF −7 細胞の抑制を遮断する能力について試験した。MCF −7細胞t1X10’細 胞/dでブレーティングして、2eS家兎免疫血清または硫安沈降で部分精製し た腹水からの306モノクローナル抗体5%で処理した。これらの細胞はついで 10容量壬低カルシウムNHMC−’tA 整培地によっても処理して、7日間 生育させた。ついで細胞を計数し、免疫血清筐たは3C,lS抗体による係脱抑 制率全測定した。Rabbit immune serum containing polyclonal antibodies and monoclonal antibodies derived from mice Both local antibodies were prepared using MCF-7 with low calcium NHMC-conditioned medium. It was tested for its ability to block cellular inhibition. MCF-7 cells t1X10' cells/d and partially purified with 2eS rabbit immune serum or ammonium sulfate precipitation. The cells were treated with 5% 306 monoclonal antibody from ascitic fluid. These cells then Also treated with 10 volumes of low calcium NHMC-'tA culture medium for 7 days. I let it grow. Cells were then counted and inhibited with immune serum or 3C, IS antibody. All control rates were measured.

以下の第7表のデータから明らかなように、ポリクローナル抗体を含む免疫血清 も、3C6モノクローナル抗体も、インヒビターの抑制活性t−遮断した。免疫 血清はまた、特定例6記載の疎水性相互作用カラムからi M NaC2で溶出 された精製インヒビターも、第4図Fに示すように認識した。他の試験により、 免疫血清が抑制応答を用量依存性に遮断することも明らかに抑制に対する抗体の 作用 処 理 係脱抑制率 調整培地 0 免疫血清 42 3C6モノクローナル抗体 100 調整培地から単離された精製インヒビターによる抑制の用量反応 硫安沈降によってマウス腹水から精製した3C6モノクローナル抗体を使用し、 特定例14にさらに詳細に記載する方法によってCNBr活性化5epharo se上モノクローナル抗体アフィニティーカラムを作成した。Immune serum containing polyclonal antibodies, as evidenced by the data in Table 7 below. Both the 3C6 monoclonal antibody and the 3C6 monoclonal antibody t-blocked the inhibitory activity. immunity Serum was also eluted with iM NaC2 from the hydrophobic interaction column described in Specific Example 6. The purified inhibitor was also recognized as shown in Figure 4F. Other tests have shown that It is also clear that immune serum blocks the inhibitory response in a dose-dependent manner. action Treatment-related disinhibition rate Conditioned medium 0 Immune serum 42 3C6 monoclonal antibody 100 Dose response of inhibition by purified inhibitors isolated from conditioned media Using 3C6 monoclonal antibody purified from mouse ascites by ammonium sulfate precipitation, CNBr-activated 5epharo by the method described in further detail in Specific Example 14 A monoclonal antibody affinity column on se was created.

カラムはyI整培地をそれに通して抑制活性を除去するのに使用し、このカラム から抑制活性を溶出させた。A column is used to pass the yI culture medium through it to remove inhibitory activity, and this column The inhibitory activity was eluted from.

MCF −7細胞をグレーティングし、3c6モノクローナルアフイニテイーカ ラム上で精製した低カルシウムNHMC−調整培地、すなわち「アフィニティー 選択インヒビター」の容量を増加させて処理し、7日間生育させたのち、細胞を 計数した。精製調整培地の容量の増加による抑制を、10%PBS処理MCF  −7細胞サンプルによる抑制と比較した。第5図に示すように、インヒビター含 有溶液がほぼ90壬の成長抑制を生じるのに十分な高用量に違するまでは、抑制 は用量依存性を示した。Grating MCF-7 cells and adding 3c6 monoclonal affinity low calcium NHMC-conditioned medium purified on After 7 days of growth and treatment with increasing amounts of "selective inhibitor", cells were I counted. Suppression by increasing the volume of purified conditioned medium was suppressed by 10% PBS-treated MCF. -7 cell samples compared to inhibition. As shown in Figure 5, inhibitor-containing inhibition until the solution is at a dose high enough to produce approximately 90 mm of growth inhibition. showed dose dependence.

モノクローナル抗体によって認識された蛋白質がNHMC細胞によって産生され たものであることを確証するため、NHMCによって産生される蛋白質を、35 s−メチオニンの使用により代謝的に標識した。細胞蛋白質は、メチニン不含G ibco DMEM中、353〜メチオニン200μci/mzを月いて、37 ℃で20時間標識した。標識培地をついで取り出し、PESに対して透析した。The protein recognized by the monoclonal antibody is produced by NHMC cells. To ensure that the protein produced by NHMC was Metabolically labeled by the use of s-methionine. Cellular proteins are methinine-free G In ibco DMEM, add 353 to 200μci/mz of methionine, 37 Labeling was carried out for 20 hours at ℃. The labeled medium was then removed and dialyzed against PES.

標識v4S培地を次に30(5モノクローナルアフイニテイーカラム上に通し、 保持された蛋白質を溶出し九。次に溶出蛋白質をポリアクリルアミドグル電気泳 動によって分画した。第6図のフルオログラムに示すように、3C6モノクロー ナル抗体アフィニティーカラムは358−メチオニン標識蛋白質を、正常ヒト乳 房細胞(Nmc )によって産生された抑制活性?含む分子量と同じ位置に保持 した。The labeled v4S medium was then passed over a 30(5) monoclonal affinity column and Elute the retained proteins. Next, the eluted protein was subjected to polyacrylamide gel electrophoresis. It was fractionated by motion. As shown in the fluorogram in Figure 6, the 3C6 monochrome The null antibody affinity column allows 358-methionine-labeled proteins to be detected in normal human milk. Inhibitory activity produced by tuft cells (Nmc)? Holds in the same position as the molecular weight it contains did.

特定例10 ヒト細胞溶解物および血清中におけるヒト乳房細胞成長インヒビターの存在 インヒビターはヒト起源であり、乳房細胞から排出されたことが明らかであるこ とがら、ヒト乳房細胞系およびヒト血清について、インヒビター蛋白質の存在を ウェスタンプロッティングによって試験した。細胞はPBS中216DSで溶解 し、ヒト血清サンプルは個々に還元緩衝液と混合し、10%SDSポリアクリル アミドrル上電気グルに付した。グルからの蛋白質は、10壬メタノール、0. 15Mグリシン、25 mM Tris中、180ミリアンペアで一夜、ニトロ セルロースに移した。濾紙をPB8溶液溶液中2シウシ血清アルデミンBSA)  10 CJmlでゾロツクした。3C6モノクローナル抗体をまずPBS中2 優BSA 10ゴとともに加えた。Specific example 10 Presence of human breast cell growth inhibitors in human cell lysates and serum The inhibitor is of human origin and is clearly excreted from breast cells. Togara, human breast cell lines and human serum were tested for the presence of inhibitor proteins. Tested by Western blotting. Cells were lysed with 216DS in PBS Human serum samples were individually mixed with reducing buffer and washed with 10% SDS polyacrylate. It was attached to an electric glue over an amidol. The protein from the protein was mixed with 10 liters of methanol, 0. 15M glycine in 25mM Tris at 180mA overnight on nitro. Transferred to cellulose. Filter paper in PB8 solution (2 bovine serum aldemin BSA) 10 I tried using CJml. 3C6 monoclonal antibody was first dissolved in PBS. Added with Yu BSA 10 Go.

濾紙をPBS溶液100Mで2回洗浄した。125I−標識ヒツジ抗−マウス第 二抗体をPBS中5重量壬脱脂乾燥粉乳(NFDM )により1oμC’i/1 0ゴに希釈して加えた。濾紙をPBS溶液により各回3o分、5回洗浄した。す べての洗浄は、PBSプラス[]、l % Baker Tween20によっ て実施した。The filter paper was washed twice with 100M PBS solution. 125I-labeled sheep anti-mouse The two antibodies were incubated at 1 μC’i/1 in PBS with 5 g of non-fat dry milk powder (NFDM). It was diluted to 0.0 g and added. The filter paper was washed 5 times with PBS solution for 30 minutes each time. vinegar All washes were performed with PBS Plus [ ], 1% Baker Tween 20. It was carried out.

第7図に示すウェスタンプロットから明らかなように、インヒビターは、正常ヒ ト乳房細胞溶解物、MCF−7およびBT−20ヒト乳房細胞溶解物、ならびに 正常ヒト女性血清中には存在したが、MDA−MB−231およびHBL −i  Q Qヒト乳房細胞溶解物および男性血清中には存在しないかまたは検出可能 なレベルは存在しなかった。As is clear from the Western plot shown in Figure 7, the inhibitor human breast cell lysate, MCF-7 and BT-20 human breast cell lysate, and Although present in normal human female serum, MDA-MB-231 and HBL-i Q: Absent or detectable in human breast cell lysate and male serum There was no such level.

特定例11 乳癌患者におけるヒト乳房細胞成長インヒビターの不存在筐たはレベル低下 第8図の説明に記載した型の患者血清におけるインヒビターの存在またはレベル を、ウェスタンプロットをm−で測定した。ヒト血清の各サンプル2μtをサン プル負荷緩衝液I Q Q tttと混合し、10優SDS −ポリアクリルア ミドゲル上電気泳動に付した。グルからの蛋白質を、10%メタノール%0.1 5Mグリシンおよび2 S mM Tris中、180ミリアンペアで一夜を要 シ、ニトロセルロース濾紙上にエレクトロプロットした。ついで濾紙t 2 ( l BSA含有pBs100mf3時間ブロックして、濾紙への非特異的蛋白結 合を低下させた。硫安沈降によって腹水から部分精製した3C6モノクローナル 抗体100μtと2%BSA含有PBS 10dを濾紙に加え、4℃で一夜イン キュベートシ、ライでPBSで3回洗浄した。5%脱脂粉乳含有PBS i Q  dと125ニーヒツジ抗−マウスIgG10μC1/1011Ltを次に濾紙 に加え、室温で2時間インキュベートした。Specific example 11 Absence or reduced levels of human breast cell growth inhibitors in breast cancer patients Presence or level of inhibitors in patient serum of the type described in the legend to Figure 8. was determined by Western blot m-. Sample 2 μt of each sample of human serum. Mix with pull loading buffer IQQttt, It was subjected to electrophoresis on midgel. Protein from Glue, 10% methanol% 0.1 overnight at 180 mA in 5M glycine and 2S mM Tris. and electroplotted onto nitrocellulose filter paper. Next, filter paper t2 ( l Block with 100mf of BSA-containing pBs for 3 hours to prevent non-specific protein binding to the filter paper. reduced the 3C6 monoclonal partially purified from ascites by ammonium sulfate precipitation Add 100μt of antibody and 10d of PBS containing 2% BSA to the filter paper and incubate overnight at 4°C. The cells were incubated and washed three times with PBS. PBS containing 5% skim milk powder iQ d and 125 knee sheep anti-mouse IgG10μC1/1011Lt then filter paper and incubated for 2 hours at room temperature.

次に濾紙’i PBSとり、 1% Tweenで各回10分、5回洗浄し、つ いで濾紙’klE燥した。濾紙をフィルムに4日間露出し、現像すると第8図の ウェスタンプロットが得られた。Next, take the filter paper in PBS and wash it 5 times for 10 minutes each time with 1% Tween. It was then dried on filter paper. When the filter paper is exposed to film for 4 days and developed, the result shown in Figure 8 is obtained. Western plots were obtained.

第8図に示すように、4例の乳癌患者中3例では(レーン3〜4および7〜10 )、検出可能なレベルのインヒビターは認められなかった。1例(レーン5およ び6)の血清中では、低下していたが検出可能なレベルのインヒビターを認めた 。第2のウェスタンプロットも上記操作に従って調製しfcが、同じ結果を得た 。As shown in Figure 8, in 3 out of 4 breast cancer patients (lanes 3-4 and 7-10) ), no detectable levels of inhibitor were observed. 1 case (lane 5 and A decreased but detectable level of the inhibitor was observed in the serum of both patients and 6). . A second Western plot was also prepared according to the procedure above and obtained the same results. .

特定例12 3C6モノクローナル抗体によるインヒビター活性の脱抑制の用量反応 MCF −7細胞を、10憾FC8および10μg/ゴインスリン含有RPMI 中1 X 104細胞/dでプレーディングし、37℃で一夜付着させた。つい で細胞を、標準方法で調製した3C6モノクローナル抗体アフィニティーカラム 上で精製した低カルシウムNHMC−N整培地からのインヒビター50μt1お よび第8表に示した各程容量の硫安沈降性部分精製5C6モノクローナル抗体で 処理した。処理後、37℃で7日間、細胞をインキュベートし、ついで計数した 。Specific example 12 Dose response of disinhibition of inhibitor activity by 3C6 monoclonal antibody MCF-7 cells were treated with RPMI containing 10 FC8 and 10 μg/goinsulin. Medium 1×104 cells/d were plated and allowed to attach overnight at 37°C. unintentionally cells on a 3C6 monoclonal antibody affinity column prepared using standard methods. 50 μt1 of inhibitor from the low calcium NHMC-N culture medium purified above. and ammonium sulfate precipitated partially purified 5C6 monoclonal antibody in various volumes shown in Table 8. Processed. After treatment, cells were incubated for 7 days at 37°C and then counted. .

第8表のデータ、および用量反応曲線として示した第9図から明らかなように、 抗体の添加量を増加すると脱抑制も増大し、3C6抗体による脱抑制は用量反応 性であることがわかる。憾抑制率および係脱抑制率は前述のようにして計算した 。As is clear from the data in Table 8 and Figure 9, which is shown as a dose-response curve, Increasing the amount of antibody added also increases disinhibition, and disinhibition by 3C6 antibody is dose-responsive. It turns out that it is sexual. The reluctance inhibition rate and the disengagement inhibition rate were calculated as described above. .

第 8 表 3C6抗体による抑制活性の脱抑制の用量反応50μt 1oOμt 22壬 50μt 5Qμt 1aチ 50μt 25μt 8% 50μtCJpl O% 0μt 5[]μt − MCF −7細胞の免疫血清による補体溶解MCF −7細胞を、10%FC8 および10afi/rttlインスリン含有MEM中1 X 104細胞/dで グレーティンブレ、37°Cで一夜付着させた。ついで細胞は、以下の補充物( 容量壬)を加えた培地で三重に処理した。Table 8 Dose response for disinhibition of suppressive activity by 3C6 antibody 50 μt 100 μt 22 μt 50μt 5Qμt 1a chi 50μt 25μt 8% 50μtCJpl O% 0 μt 5 [] μt − Complement lysis of MCF-7 cells with immune serum MCF-7 cells were treated with 10% FC8 and 1×104 cells/d in MEM containing 10 afi/rttl insulin. Grate tinbure, allowed to adhere overnight at 37°C. The cells are then treated with the following supplements ( The cells were treated in triplicate with medium supplemented with 100ml (100ml).

すなわち、404 PBS ; 10 %低カルシウムNRMC−V@製低カル シウム培地;1o%NFIMC−調整培地グヲス特定例8記載の免疫処置ニュー シーラント白色家兎から得られた10%免疫血清;IC1免疫血清:および免疫 処置前の同一動物から得られたニューシーラント白色家兎10壬血清(免疫前血 清)である。処置細胞を補充培地中で7日間生育させ、ついで溶解し、核上コー ルターカウンターで計数し、それぞれについて計数を平均した。That is, 404 PBS; 10% low calcium NRMC-V@ low calcium 10% NFIMC-adjusted medium Immunization medium described in Guwosu Specific Example 8 10% immune serum obtained from sealant white rabbit; IC1 immune serum: and immunity 10 μm of New Sealant White rabbit serum obtained from the same animal before treatment (pre-immune blood Kiyoshi). Treated cells were grown for 7 days in supplemented medium, then lysed and supranuclear coated. Counts were made with a Luther counter and the counts were averaged for each.

以下の第9表のデータから明らかなように、また培養液の観察により、免疫血清 はヒト乳房細胞の補体溶解を生じさせた0とが示され、これはインヒビターが細 胞表面に存在することを示唆している。しかしながら、MCF −7細胞に存在 するインヒビターはMCF −7細胞の成長を抑制せず、またMCF −7細胞 の成長の抑制は正常ヒト乳房細胞によって産生されたインヒビターによる処理時 には認められることがら、MCF −7細胞のインヒビターは非機能性であると 理解すべきであろう。第9表に示すように、機能性インヒビターを含有するNH MC−調整培地の添加により補体溶解は増大した。上述の試験はさらに2回案施 したが、同じ結果が得られた。As is clear from the data in Table 9 below, and by observation of the culture medium, immune serum It was shown that the inhibitor caused complement lysis in human breast cells, indicating that the inhibitor This suggests that it exists on the cell surface. However, present in MCF-7 cells The inhibitor did not inhibit the growth of MCF-7 cells, and Suppression of growth occurs upon treatment with inhibitors produced by normal human breast cells. , the inhibitor of MCF-7 cells is considered to be non-functional. You should understand. NH containing functional inhibitors as shown in Table 9 Addition of MC-conditioned medium increased complement lysis. The above test was conducted two more times. However, the same result was obtained.

第 9 表 免疫血清によるMCF −7の補体溶解処理 7日後の細抱数 10壬PBC10204 10壬cv;&7386 10壬CM+iQ憾Is 、 997 10憾工s 1984 101psc11680 a 低カルシウムNHMC−調整培地、6 免疫血清、。前免疫血清 特定例14 NHMC−調整培地からの抑制活性の、免疫血清による枯渇 CNB r活性化5apharose 4 B血清結合カラムを標準的免疫学的 方法によって調製した。詳細には、2gのCNBr 5epharose 4  B f 1mM HCl中で15分間膨潤させ、焼結がラス濾斗上同じ溶液で洗 浄し、計200ゴ/yの乾燥rll/l−数回に分けて加え、連続的な添加の間 に上澄液?吸引した。rル溶液ft3個のチューブに分配し、0−5 M Na Ct含有0. i M NaHCO3のカップリング緩衝液(p)18.3)I CIゴで洗浄した。免疫血清(Is)、前免疫血清(ps)および免疫血清から の5taph A−精製IgG (SA−IgG )各11dt−それぞれ10 +1/のカップリング緩衝液に溶解し、この溶液t″3個の2ルチユーブのひと つに加え、絶えず混合しながら室温で2時間インキュベートした。ついでrルを 、がラス綿で連間したシリンソ中に注ぎ、非結合蛋白質を溶出させ、ついでカラ ム1FC0,2Mグリシノ(p[48)10威ですすいだ。次にカラムを、カッ プリング緩衝液、ついで0.5M NaC2含有0.1 M酢酸緩衝液(pH4 )、そして再びカップリング緩衝液で洗浄した。カラムは4”Cに保存し九。Table 9 Complement lysis treatment of MCF-7 with immune serum; count after 7 days 10min PBC10204 10cm cv; &7386 10 CM + iQ Is, 997 10 regrets 1984 101psc11680 a Low calcium NHMC-conditioned medium, 6 Immune serum. preimmune serum Specific example 14 Depletion of suppressive activity from NHMC-conditioned media by immune serum. CNB r-activated 5apharose 4B serum-binding column was used with standard immunological Prepared by method. In detail, 2g of CNBr, 5epharose, 4 Bf Swell in 1mM HCl for 15 minutes and rinse with the same solution on the lath funnel until sintering is complete. dried rll/l for a total of 200 g/y - added in several portions, between successive additions. Supernatant liquid? I aspirated it. Distribute the solution into 3 tubes and add 0-5M Na Ct content 0. i M Coupling buffer of NaHCO3 (p) 18.3) I Washed with CI Go. From immune serum (Is), pre-immune serum (ps) and immune serum 5 taph A-purified IgG (SA-IgG) 11 dt each - 10 each +1/ml of coupling buffer, add this solution t'' to 3 2 tubes. and incubated for 2 hours at room temperature with constant mixing. Then ruru , poured into a syringe lined with lath cotton to elute unbound proteins, and then emptied into a syringe. Rinse with 1FC0,2M Glycino (p[48) 10%. Next, place the column in a cup. Pulling buffer, then 0.1M acetate buffer (pH 4) containing 0.5M NaC2 ) and washed again with coupling buffer. Store the column in a 4”C.

使用前に、Is、PSおよびS A −1gGカラムを調整培地2d/カラムを 加え、カラム上に5回再循環させた。次に培地を排除し、カラムを211Llの PBSで丁子いで、カラム通過培地サンプルあたり4Mの最終容量とした。カラ ムをさらに1回20ゴのPBSで洗浄し、再び4℃に保存した。次に、カラム金 通過したv4m培地について、カラムによるインヒビターの除去を、MCF − 7成長アツセイによって調べた。枯渇の測定には、MCF −7生育培地への添 加物としてカラムから溶出した調整培地10容量係または5憾非枯渇調整培地を 用いて7日間MCF −7脱抑制試験を実施した。枯渇が起こつ九場合には、免 疫アフィニティーカラムを0.2 Mグリシy(pH3)2rntで溶出して、 カラムから抗厘/インヒビターを除去した。抗厘溶出物’i PBSに対して透 析し、ついでMCF −7成長抑制アツセイによってインヒビター活性t−調べ 九。Before use, mix the Is, PS and SA-1gG columns with 2d/column of conditioned medium. and recirculated over the column 5 times. Next, remove the medium and replace the column with 211 Ll. Clove with PBS to a final volume of 4M per column passage medium sample. Kara The cells were washed once more with 20 g of PBS and stored again at 4°C. Next, the column gold For the passed v4m medium, removal of inhibitor by column was performed using MCF- 7 growth assay. To measure depletion, add MCF-7 to the growth medium. Add 10 volumes of conditioned medium or 5 volumes of non-depleted conditioned medium eluted from the column as an additive. A 7-day MCF-7 disinhibition test was conducted using In nine cases where depletion occurs, Elute the affinity column with 0.2 M glycyhydride (pH 3) 2rnt, Antibody/inhibitor was removed from the column. Antioxidant eluate’i Transparent to PBS The inhibitor activity was then examined by MCF-7 growth inhibition assay. Nine.

第10表のデータから明らかなように、免疫血清カラムおよび5taph A− 精製IgGカラムは一部の抑制活性を除去し、これは第11表のデータから明ら かなように、またカラムから溶出した。As is clear from the data in Table 10, the immune serum column and 5taph A- The purified IgG column removed some of the inhibitory activity, which is evident from the data in Table 11. As expected, it eluted from the column again.

第10表 カラムによるインヒビターの枯渇 添加物 7日目の細胞数 憾抑制′L %枯渇率C10優P B S 2607 1 0憾 −5%LcMa26135 0% 100%5%CMb12949  50% 0% ISカラムからの10優CM 14839 43壬 14%psカラムからの1 0係CM 11888 54憾 0%SA−IgG″′5ゝら′) 16352  37 憾 26優10チCM 0非調整、カラム非通過低カルシウム培地5低カルシウムvII4整、カラム非 通過培地0憾脱抑制率として表示 第11表 抗原溶出物の抑制活性 添加物 7日目の細胞数 憾抑制率 10%LCM 41062 0壬 10壬Isカラム抗原溶出物 1583 23%10優psカラムUXIW出物  36993 10チ10%SA−工gG 抗原溶出物 3059625%抑制 活性のハイプリドーマ上澄液による脱抑制54FC3およびヒポキサンチン含有 、−指示薬添加RPMI培地を、46個の個々のハイプリドーマサブクローンに エフ、培養液が酸性状頷になるまで、通常3または4日間、調整した。ついで、 細胞および培地を培養液から除去し、遠心分離し、ハイプリドーマ調整培地上澄 液を回収し念。MCF −7細胞全、10チFC8含有M跋中2 X 10’細 胞/ mlで、12−ウェルコスタ−プレートにプレーティンブレ、37℃で一 夜付着させた。各試験ウェルにハイブリドーマ上溌液50μt/ウェルおよび低 カルシウムNHMC−UF4 JI培地1’0[]μt/ウェルを加え、細胞を 7日間生育させて計数し、係脱抑制率をめた。試験した46の・・イブリドーマ 上M液中、以下の第12表に掲げた13のハイプリドーマ上澄液が、100%ま での抑制活性の脱抑制を示ハイプリドーマ上管液/CMの脱抑制 DF1/1405 50% DF1/15C562幅 DF1/12C539壬 DF1/ 9a8 100% DF’1/ 9A10 41係 DF1/ 7G8 35% DF1/13D3 24% DF1/ 908(サブクローン) 73%DFI/11D7 784 DF1/ 8A11 89% DF1/ 3c6 100% DF1/ 6c6 76% DPI/ 2D2 56憾 特定例16 ハイプリドーマ上澄液の枯渇検定 96−ウェルマイクロタイタープレートt−100μ乙/ ウニhの10 Ag /mlヤeK−?ウス’IgGによ!l14℃で一夜コーティングした。翌日、 プレートt−PBSで2回洗浄し、14個の各ノ・イブリド−マクローンの上述 のようにして調製したl・イブリドーマ上澄液75μt/ウェル金加え、4℃で 一夜インキユベートした。次にウェルi PBSで2回洗浄したのち、各ウェル に低カルシウA )JHMC−調製培地50μt/In1t−加え、4°Cで− fflインキュベートし友。ついで培地を除去踵滅菌し、cae用いてl CI FC8tlrMgM中1 x 10’m胞/dで7日間ブレーティングしたMC F −7細胞を処理し、プレート結合抗体による調製培地からのインヒビターの 枯渇を測定する脱抑制検定に使用した。Table 10 Inhibitor depletion by column Additives Cell number on day 7 Suppression'L % depletion rate C10 YuP B S 2607 1 0 regret -5%LcMa26135 0% 100%5%CMb12949 50% 0% 10 excellent CM from IS column 14839 43 liters 1 from 14% ps column 0 CM 11888 54 0% SA-IgG'''5ゝra') 16352 37 Regret 26 Yu 10chi CM 0 unadjusted, column not passed low calcium medium 5 low calcium vII 4 adjusted, column not passed Expressed as passage medium 0 derepression rate Table 11 Antigen eluate inhibitory activity Additive cell number suppression rate on day 7 10%LCM 41062 0min 10 ps column antigen eluate 1583 23% 10 ps column UXIW eluate 36993 10% SA-gG antigen eluate 3059625% inhibition Disinhibition by active hybridoma supernatant containing 54FC3 and hypoxanthine , - RPMI medium supplemented with indicator to 46 individual hybridoma subclones. F. The culture solution was adjusted until it became acidic, usually for 3 or 4 days. Then, Remove cells and medium from culture medium, centrifuge, and supernatant hybridoma conditioned medium. Make sure to collect the liquid. MCF-7 whole cells, 10 pieces FC8-containing M medium 2 x 10' thin Plate cells/ml in 12-well Costa plates at 37°C. I applied it at night. 50 μt/well of hybridoma supernatant and low Add calcium NHMC-UF4 JI medium 1'0[]μt/well and add cells. The cells were grown for 7 days, counted, and the rate of inhibition of detachment was determined. 46 Ibridomas tested In the supernatant M solution, the 13 hyperidoma supernatants listed in Table 12 below are 100% Disinhibition of hypohyridoma epitubular fluid/CM showing disinhibition of inhibitory activity in DF1/1405 50% DF1/15C562 width DF1/12C539 Jin DF1/9a8 100% DF’1/9A10 41st Section DF1/7G8 35% DF1/13D3 24% DF1/908 (subclone) 73% DFI/11D7 784 DF1/8A11 89% DF1/3c6 100% DF1/6c6 76% DPI/2D2 56 regret Specific example 16 Hyperdoma supernatant depletion assay 96-well microtiter plate t-100μ Otsu/sea urchin h 10Ag /mlyaeK-? Us' IgG! Coating was carried out overnight at 14°C. the next day, Plate washed twice with t-PBS and as described above for each of the 14 hybridoma clones. Add 75 μt/well of gold to the L. hybridoma supernatant prepared as described above and incubate at 4°C. Incubated overnight. Next, after washing well i twice with PBS, each well Add low calcium A) JHMC-prepared medium 50μt/In1t- and incubate at 4°C. ffl incubate friend. Then, remove the medium, sterilize the heel, and use CAE to remove lCI. MC plated for 7 days at 1 x 10 m cells/d in FC8tlrMgM. F-7 cells were treated to remove inhibitors from the conditioned medium with plate-bound antibodies. used in a disinhibition assay to measure depletion.

以下の第13表に示すように、試験した14の・・イブリドーマサデクローン中 、以下のように命名した7個のハイプリドーマサブクローンで、調整培地から、 抑制活性の5G1以上100%1での枯渇が生じた。Among the 14 hybridomasade clones tested, as shown in Table 13 below: , seven hybridoma subclones named as follows, from conditioned media: Depletion of suppressive activity over 5G1 occurred by 100%1.

第 13 表 ・・イブリド−マサデクミーン上澄液による枯渇DF1/9G8 55% DF1/16G9 91% DF1/7C)8 61% oy1/6B8 66% DFI/11D7 100% DF1/1D4 66% DF1/306 57% a%脱抑制率により表示 ヒト乳房細胞成長インヒビターに対するモノクローナル抗体のイソタイプの決定 モノクローナル抗体3C6、I D4および(SBBの111インタイブを決定 するため、EiLISA ’i用いた。Table 13 ...Depleted DF1/9G8 55% with Ibrid-Masadecumin supernatant DF1/16G9 91% DF1/7C) 8 61% oy1/6B8 66% DFI/11D7 100% DF1/1D4 66% DF1/306 57% Displayed by a% disinhibition rate Isotype determination of monoclonal antibodies against human breast cell growth inhibitors Determining the 111 intib of monoclonal antibodies 3C6, ID4 and (SBB) To do this, EiLISA'i was used.

Dynatech Laboratories、 Inc、 (ChantiL ly、 Virginia)製の96−ウェルImmulon 1マイクロタイ タープレートのつxルk、Tago Co、 (Burlingame、 Ca 1ifornia)のヤf抗−マウスIgMおよびIgG抗体、PBS中50μ tと4℃で一夜インキュベートしてコーティングした。Dynatech Laboratories, Inc. (ChantiL 96-well Immulon 1 microtie (Ly, Virginia) Tago Co., Burlingame, Ca. 1ifornia) anti-mouse IgM and IgG antibodies, 50μ in PBS Coating was performed by incubating overnight at 4°C.

インキュベーション後、プレート’t O,9%NaCAと0.Q5(+Tri tonX−10[)の洗浄溶液で洗浄した。上述のようにしてハイプリドーマ細 胞培養液から調製したノ・イプリドーマサブクローン上澄液50μtを各ウェル に、希釈しな論でまた2 4 BSA含有PBS中1=1から1:128までの 2倍希釈系列として添加した。室温で1時間インキュベートしたのち、プレート ラ上述の洗浄溶液で洗浄した。アルカリホスファターぜで標識され几ヤプ抗−マ ウスインタイブ特異的抗体(SouthernBiotechnology A s5ociates、 Birmingham、 Alabama )t−2% BSA含有PBS中1:1000に希釈して50μ乙。After incubation, plate 'tO, 9% NaCA and 0. Q5(+Tri It was washed with a washing solution of tonX-10[). Hypuridoma fine as described above. Add 50 μt of the N. iploidoma subclone supernatant prepared from the cell culture to each well. In addition, without dilution, 24 BSA-containing PBS from 1 = 1 to 1:128 It was added as a 2-fold dilution series. After incubating for 1 hour at room temperature, plate Washed with the washing solution described above. Labeled with alkaline phosphatase Southern Biotechnology A s5ociates, Birmingham, Alabama) t-2% Dilute 1:1000 in PBS containing BSA to 50μ.

各ウェルに加えた。特定のハイプリドーマ上澄液の希釈系列と予めインキュベー トしたウェルに、特定のインタイブに対する抗体の個々のグレ/(レーショyt mえ、一部のウェルには工gMに対する抗体が、一部のウェルにはrgG 3  、 IgG1. IgG 2 bまたはIgG 2aのいずれかに対する抗体が 与えられるようにした。さらに1時間室温でインキュベートしたのち、プレート を洗浄溶液で洗浄し、発色物質p−ニトロフェニルリ/酸二ナトリウム(Sig ma、 St、、 Louis、 Missouri )の10q/rtt!溶 液100μtを加えた。1〜20時間発色させた。ついで、Dynatech  MR700マイクロプレートリーダー金用いて波長410 nmにおける光学密 度を測定した。既知イソタイプのモノクローナル抗体ヲ陽性および陰性対照とし て用いた。この操作により、3C6,ID4および6B8iIgM抗体であるこ とが決定され之。他のイソタイプとの交差反応性は認められなかった。added to each well. Pre-incubation with a dilution series of specific hybridoma supernatants Add individual concentrations of antibodies to specific antigens to the plated wells. Me, some wells contained antibodies against gM, and some wells contained rgG3. , IgG1. Antibodies against either IgG 2b or IgG 2a I made it possible to be given. After incubating for an additional hour at room temperature, the plate was washed with a washing solution and the chromogenic substance p-nitrophenyl lysate/disodium acid (Sig ma, St,, Louis, Missouri) 10q/rtt! melt 100 μt of liquid was added. Color was developed for 1 to 20 hours. Next, Dynatech Optical density at wavelength 410 nm using MR700 microplate reader The degree was measured. Monoclonal antibodies of known isotypes were used as positive and negative controls. I used it. This procedure confirms that the antibodies are 3C6, ID4 and 6B8iIgM. It has been decided that. No cross-reactivity with other isotypes was observed.

特定例18 MCF −7の成長に対する!l整培地の作用ケラチン発現により上皮性と特性 づけられた正常ヒト乳房細胞(NHMC)を整復形成乳房から誘導し、5oul e、 H,S、ら: In vitro、 22 : 6 (1986)の記載 に従い、低カルシウム培地(<60nM)中T連続継代した。培地は、5 %  chelex処理ウシ血清含有、a OnM cact2oMz / F 12 中でNHMCの集密培養液を4日間インキュベートして調整した。Specific example 18 Against the growth of MCF-7! Effect of culture medium: Improves epithelial properties and properties through keratin expression. Normal human breast cells (NHMC) were induced from reduced breasts and 5 oul e, H, S, et al.: In vitro, 22: 6 (1986). T serial passages were carried out in low calcium medium (<60 nM) according to the instructions. Medium is 5% Contains chelex-treated bovine serum, a OnM cact2oMz / F 12 A confluent culture of NHMC was incubated for 4 days to prepare a confluent culture.

MCF −7細胞は、10憾胎仔ウシ血清および10μfi/IIIインスリン 含有M−中、2 X 105細抱/T25フラスコでグレーティングし、−夜付 着させた。MCF-7 cells were incubated with 10 ml of fetal calf serum and 10 μfi/III insulin. Contains M-medium, 2 x 105 cells/grating in T25 flask, - night I made him wear it.

ついで培地を、NHMC細胞で調整した指示濃度の培地に交換した。調整または 非調整培地はアミコン限外濾過によって10倍に濃縮した。指定時間にコールタ −カウンターによって細胞数を測定した。第10図に示すように、これらの細胞 によって調整された培地は、形質転換ヒト乳癌細胞系、MCF −7’fc、時 間および用量依存性に抑制することが見出された。これらの培養液に10壬の調 整培地を添加すると、10憾非調整培地添加培養液に比べて1a日目に細胞の成 長の75%抑制が生じた。The medium was then replaced with medium at the indicated concentrations adjusted with NHMC cells. adjustment or Unconditioned medium was concentrated 10-fold by Amicon ultrafiltration. Coulter at specified time - Cell number was determined by counter. As shown in Figure 10, these cells The medium conditioned by the transformed human breast cancer cell line, MCF-7'fc, It was found that the effect was suppressed in a time-dependent and dose-dependent manner. Add 10 microns to these culture solutions. Addition of conditioned medium increased cell growth on day 1a compared to culture medium supplemented with unconditioned medium. A 75% reduction in length occurred.

特定例19 ヒト乳房成長インヒビターの抗体アフィニティー積装 正常ヒト乳房細胞調整培地中の抑制活性t−DEAES e pha c r  y l上イオン交換クロマトグラフィーにより、ついで5C6モノクローナル尻 体アフィニティーカラム上アフィニティークロマトグラフィーによって精製し念 。1tの調整培地t” 50 mM NaCt中DEAE 5apha−cry l カラム上に負荷し、0.05〜1.0 M NaC2の段階勾配によって溶 出した。透析分画についてMCF −7成長抑制活性を検定した。wRi培地か らの抑制活性は0−25 M NaC2で溶出シタ。Specific example 19 Antibody affinity loading of human breast growth inhibitors Inhibitory activity t-DEAES in normal human breast cell conditioned medium By ion exchange chromatography on yl, then 5C6 monoclonal butt Purified by affinity chromatography on a body affinity column. . 1t of DEAE 5apha-cry in conditioned medium 50mM NaCt l Loaded on the column and eluted with a stepwise gradient of 0.05-1.0M NaC2. I put it out. The dialyzed fraction was assayed for MCF-7 growth inhibitory activity. wRi medium? Their inhibitory activity was eluted at 0-25 M NaC2.

0、1〜0−5 M NaCtで溶出した抑制活性を次に、22〜の3C6モノ クローナル抗体t 1.5 M +7) BioradAffigelビーズに 結合させて製造したモノクローナル抗体アフィニティーカラムに負荷した。次に アフィニティーカラムff1500カラム容量の’PBSで洗浄して非結合蛋白 質を除去し、結合蛋白質は0.1Mグリシン−2,35で溶出した。溶出液は直 ちにTris塩基で中和し、PBSに対して透析した。Next, the inhibitory activity eluted with 0, 1 to 0-5 M NaCt was determined by the 3C6 mono Clonal antibody t1.5M +7) to Biorad Affigel beads It was loaded onto a monoclonal antibody affinity column prepared by binding. next Wash the affinity column FF with 1500 column volumes of PBS to remove unbound proteins. The protein was removed and the bound protein was eluted with 0.1M glycine-2.35. The eluate is directly It was then neutralized with Tris base and dialyzed against PBS.

比活性は、MCF −7細胞の成長の50%抑制に必要な蛋白質の量を1単位と し、単位/■で示した。抑制蛋白質の濃度は、銀染色で可視化したSDS −P AGE rル上およびBiorad蛋白アッセイでアルブミン標品と比較して決 定した。抑制蛋白質の最終純度は50壬以上と測定された。結果は以下の第14 表に示す。上述の精製過糧ヲ反復することにより少なくとも約95%の最終純度 が達成された。Specific activity is defined as the amount of protein required for 50% inhibition of MCF-7 cell growth. and expressed in units/■. The concentration of inhibitory protein was visualized by silver staining on SDS-P. Determined by comparison with albumin standards on AGE and Biorad protein assays. Established. The final purity of the inhibitory protein was determined to be over 50 min. The result is the 14th below. Shown in the table. A final purity of at least about 95% is achieved by repeating the purification process described above. was achieved.

第14表 0.5M O臥F、 〜 分画 20.3 47.7 41倍 40.3MCF −7成長に対するアフィ ニティー精製ヒト乳房成長インヒビターおよび3C6抗体の作用ハイプリドーマ 上澄液について、免疫蛋白質の認識能力およびMCF −7細胞に対するv4整 培地の抑制活性を阻害する能力をスクリーニングした。Table 14 0.5M OwaF, ~ Fraction 20.3 47.7 41x 40.3 MCF -7 Affinity for growth Effect of purified human breast growth inhibitor and 3C6 antibody on hybridoma Regarding the supernatant, the recognition ability of immune proteins and v4 regulation for MCF-7 cells were determined. The ability of the medium to inhibit suppressive activity was screened.

MCF −7細胞は特定例10におけると同様にグレーティンダレ、第1日に以 下の補充物を新鮮培地中で添加した。すなわち、(a110%正常ヒト乳房調整 培地;+b+io壬NHMC調整培地+DF1/!;C6からのハイプリドーマ 上置t 104 ; (cl 10 nl/ldのアフィニティー精製インヒビ ター; (d120 ng/ dのアフィニティー精製インヒビター;(θ11 0nN/11tアフィニティー精製インヒビター+5μm1/ゴ七ツクローナル 抗体3C6である。「アフィニティー精製インヒビターの語は、NHMC−調整 培地から特定例19の記載のように、DEAR5ephacryLイオン交換お よび5C6モノクローナル抗体アフィニティークロマトグラフィー〇組合せで精 製し九インヒビターを意味する。As in Specific Example 10, MCF-7 cells were grown on a grating plate, and after the first day. The supplements below were added in fresh medium. That is, (a110% normal human breast adjustment Medium; +b+io NHMC conditioned medium +DF1/! ;Hyperidoma from C6 Upper setting t104; (cl 10 nl/ld affinity purification inhibitor (d120 ng/d affinity purification inhibitor; (θ11 0nN/11t affinity purification inhibitor + 5μm1/goshi clonal The antibody is 3C6. “The term affinity purification inhibitor is NHMC-regulated. DEAR5ephacryL ion exchange solution was added from the culture medium as described in Specific Example 19. and 5C6 monoclonal antibody affinity chromatography. means 9-inhibitor.

細胞の成長は第7日に測定し、等容量の非調整培地と比較した憾抑制率としてめ た。第11図に示すように、精製物質はMCF −7細胞の成長を用量依存性に 抑制し、インヒビター濃度10ng/IL/で50憾の成長抑制を、20ng/ dで細胞成長の90%以上の抑制を示した。調整培地または精製インヒビターに よる細胞成長の抑制はモノクローナル抗体3C6によって消失した。モノクロー ナル抗体単独では、MCF −7細胞の成長に有意な影響を与えなかった。Cell growth was measured on day 7 and expressed as percent inhibition compared to an equal volume of unconditioned medium. Ta. As shown in Figure 11, the purified substance inhibited the growth of MCF-7 cells in a dose-dependent manner. 50% growth inhibition at inhibitor concentration 10 ng/IL/, 20 ng/IL/ d showed more than 90% inhibition of cell growth. in conditioned media or purified inhibitors The inhibition of cell growth by monoclonal antibody 3C6 was abolished by monoclonal antibody 3C6. monochrome Null antibody alone had no significant effect on the growth of MCF-7 cells.

特定例21 精製ヒト乳房成長インヒビターのSDS −PAGEおよびフルオログラフィー 分析 第12図のレーン(a)および(blは、(a)分子量標品および(bl上述の よりにして調製し九アフィニティー精製インヒビター、それぞれの銀染色の結果 を示す。インヒビターがNEMCによって合成されることも明らかにするため、 培養体は、200μC1/dの358−メチオニン補充メチオニン不含DEME 培地5ゴ中NHMCの集密T−757ラスコt−24時間インキュベートして、 353−メチオニンで標識した。ついで、培養上置液を306モノクローナル抗 体アフィニティーカラム上アフィニティークロマトグラフイーに付してアフィニ ティー選択インヒビターt−調製シ、10%5DS7”ル上SDS −PA−G Eにより分子量を測定した。レーン(C)は306アフイニテイーカラムから溶 出した35B−メチオニン標識NHMC−ill 整培地のフルオログラムであ る。Specific example 21 SDS-PAGE and Fluorography of Purified Human Breast Growth Inhibitor analysis Lanes (a) and (bl) in Figure 12 indicate (a) the molecular weight standard and (bl) the Silver staining results for nine affinity-purified inhibitors prepared by shows. To also clarify that the inhibitor is synthesized by NEMC, Cultures were grown in methionine-free DEME supplemented with 200 μC1/d of 358-methionine. Confluence of NHMCs in medium 5g T-757 was incubated for 24 hours. Labeled with 353-methionine. Next, the culture supernatant was treated with 306 monoclonal anti- Affinity chromatography on a body affinity column Tea selection inhibitor t-preparation sheet, 10% 5DS 7” SDS-PA-G Molecular weight was measured by E. Lane (C) shows the elution from the 306 affinity column. This is a fluorogram of the 35B-methionine labeled NHMC-ill culture medium. Ru.

第12図レーンBに示すように、アフィニティー精製インヒビターの銀染色によ り、2個の卓越したバンドが約47,000および65,000に認められた。As shown in Figure 12, lane B, the affinity purified inhibitor was silver stained. Two prominent bands were observed at approximately 47,000 and 65,000.

アフィニティー選択インヒビターのフルオログラムではレーンCに示すように、 約47,000の卓越したバンドと約67,000の一定のダブレットバンド、 および約63,000に一定しないマイナーなバンドが観察された。これは、4 7.0 [10および63.OCJ O〜67.000穫は同一蛋白質の異なる グロセツシングもしくは切断型であるか、または共通のエピトープをもつ2種の 別個の抑制因子であることを示唆するものである。The fluorogram of the affinity-selective inhibitor is shown in lane C. approximately 47,000 outstanding bands and approximately 67,000 constant doublet bands; and a minor inconsistent band was observed at approximately 63,000. This is 4 7.0 [10 and 63. OCJ O~67.000 harvests are different versions of the same protein grosetted or truncated, or two species with a common epitope This suggests a distinct inhibitory factor.

特定例22 アフィニティー精製ヒト乳房細胞成長インヒビターの熱変性およびトリプシン感 受性 アフィニティー精製インヒビター(10ng/d)ヲ37.55.70または1 00℃に60分間加熱した。Specific example 22 Heat denaturation and tryptic sensitivity of affinity-purified human breast cell growth inhibitors receptivity Affinity purification inhibitor (10ng/d) 37.55.70 or 1 00°C for 60 minutes.

これらのサンプルの抑制活性を前述のようにして測定した。ヒト乳房成長インヒ ビターを70℃に60分間加熱すると活性の50壬低下を生じた。100℃に6 0分間加熱すると抑制活性は完全に消失した。第13図に示したこの熱感受性の パターンは、5porn 。The inhibitory activity of these samples was determined as described above. human breast growth inhibitor Heating the bitters to 70° C. for 60 minutes resulted in a 50 million drop in activity. 6 to 100℃ After heating for 0 minutes, the inhibitory activity completely disappeared. This thermal sensitivity shown in Figure 13 The pattern is 5porn.

M、D、ら: 5cience、 233 : 532 (1986)に記載さ れているように100°Cの加熱にも安定な、TGF−βからのヒト乳房成長イ ンヒビターと異なる。M.D. et al.: 5science, 233:532 (1986). Human breast growth stimulation from TGF-β, which is stable even when heated to 100°C, as shown in Different from inhibitors.

アフィニティー精製インヒビターのトリプシンに対する感受性も試験した。アフ ィニティー精製インヒビター10 On、!i’ / ml 、 1rulに5  all /mlのトリプ’/7f加え、37℃で1時間インキュベートした。The sensitivity of the affinity purified inhibitors to trypsin was also tested. Af Infinity Purification Inhibitor 10 On,! i’ / ml, 5 in 1 rul All/ml of Trip'/7f was added and incubated at 37°C for 1 hour.

1時間インキュベート後、50μg/Illのトリプシン阻害剤を加えてトリプ シンの分解を停止させた。アフィニティー精製インヒビター100n#/ゴ、1 −にトリプシン阻害剤50μgを加えた対照実験も実施した。ついでトリプシン 5μyt対照混合物に加え、全混合物を37℃で1時間インキュベートした。実 験および対照両サンプルともついで滅菌濾過し、特定例18におけるMCF − 7培養液金加え、抑制活性を検定した。第13図に示すように、アフィニティー 精製インヒビターの抑制活性はトリプシン添加によって完全に消失し九。After incubation for 1 hour, trypsin inhibitor was added at 50 μg/Ill. Stopped Shin's decomposition. Affinity purification inhibitor 100n#/go, 1 A control experiment was also performed in which 50 μg of trypsin inhibitor was added to -. Then trypsin 5μyt was added to the control mixture and the entire mixture was incubated at 37°C for 1 hour. fruit Both test and control samples were then sterile filtered and the MCF in Specific Example 18 - 7 culture solution was added with gold, and the inhibitory activity was assayed. As shown in Figure 13, the affinity The inhibitory activity of the purified inhibitor was completely abolished by the addition of trypsin.

特定例23 ヒト細胞系の成長に対するヒト乳房成長インヒビターの作用 各種形質転換乳房および非乳房ヒト細胞系の成長に対するヒト乳房成長インヒビ ターの作用を試験した。Specific example 23 Effects of human breast growth inhibitors on the growth of human cell lines Human breast growth inhibitors for the growth of various transformed breast and non-mammary human cell lines The effect of the tar was tested.

細胞系は、RPMI + 10%ウシ胎仔血清中、12ウエルプレートを用い、 各ウェルあたり2 X 10’細胞/ウエルで三重に培養し、−夜付着させた。The cell line was prepared in RPMI + 10% fetal bovine serum using a 12-well plate. Each well was cultured in triplicate at 2×10′ cells/well and allowed to attach overnight.

第1日に細胞数を計数し、ついで最終濃度1Qn、jil/atgのインヒビタ ー筐たはBSAで処理した。憾抑制率を前述のようにして計算した。On the first day, the cells were counted and then treated with the inhibitor at a final concentration of 1Qn, jil/atg. - The case was treated with BSA. The inhibition rate was calculated as described above.

第15表に示すように、ヒト乳房成長インヒビター(10nJ7/m)は試験し た5種の形質転換ヒト乳房細胞系の成長の有意な抑制音生じた。Gaffney 、 E、W。As shown in Table 15, human breast growth inhibitor (10nJ7/m) was tested. A significant inhibition of the growth of five transformed human breast cell lines resulted. Gaffney , E, W.

に記載された非形質転換乳房細胞系、HBL −1Q Qの成長への抑制には一 定した結果が入られなかった。ニストロビン応答性(MCF−7、ZR−75− 1)およびエストo fif 7非応答性CB T −2Q 、 MDA −M  B −231、evejos (ミシがン犬学において原発性乳癌から確立、 請求により内科部門Paul Ervinから入手可能)]細胞系のいずれにも 成長抑制が認められた。Suppression of the growth of the non-transformed breast cell line, HBL-1Q, described in The specified result was not entered. Nisthrobin responsiveness (MCF-7, ZR-75- 1) and Est o fif 7 non-responsive CB T-2Q, MDA-M B-231, evejos (established from primary mammary cancer in Michigan canine science, available on request from the Department of Internal Medicine, Paul Ervin)] for any of the cell lines. Growth suppression was observed.

乳房細胞に対する作用と異なり、インヒビターは、第15表に示した非乳房組織 由来の11種の形質転像ヒト細胞系の成長に対しては何ら作用を示さなかった。Unlike its action on breast cells, the inhibitors are effective against the non-breast tissues listed in Table 15. No effect was shown on the growth of the 11 derived human cell lines.

インヒビターのこの組織特異性は、Tucker、 R,F、 ラ: 5cie nce、 226 : 115 (1984)の記載のように広範囲の上皮細胞 系の成長を抑制するTGF−βとの識別をさらに可能にするものである。This tissue specificity of the inhibitor was determined by Tucker, R.F. A wide range of epithelial cells, as described in CE, 226: 115 (1984). This further allows for differentiation from TGF-β, which suppresses the growth of the system.

さらに、ヒト乳房成長インヒビターおよびT()F−βのウェスタンプロット解 析g、3C6および抗−TGF−β抗体(R−& D Products )に より実施した。3C6はTGF−βを検出しなかったが、インヒビターを認識し た。逆に、抗−TGF−βはインヒビターを検出しなかったが、TGF−βt− 認識した。すなわち、分子量、熱感受性、組織特異性および抗体反応性により、 本発明のインヒビターはTGF−βと識別される。抑制の組織特異性はさらに、 ヒト乳房成長インヒビターを、乳房細胞から以前に単離された他の小分子量抑制 蛋白質と区別するものである。In addition, Western plot analysis of human breast growth inhibitor and T()F-β analysis, 3C6 and anti-TGF-β antibody (R-&D Products). It was implemented more. 3C6 did not detect TGF-β but recognized the inhibitor. Ta. Conversely, anti-TGF-β detected no inhibitor, but TGF-βt- I recognized it. That is, due to molecular weight, heat sensitivity, tissue specificity, and antibody reactivity, The inhibitor of the present invention is identified as TGF-β. The tissue specificity of inhibition is further Compare human breast growth inhibitors to other small molecular weight inhibitors previously isolated from breast cells. It is distinguished from protein.

乳癌 MCF−76i−17/−g 乳癌 BT−2055+/−17 乳癌 MDA−MB−23125+/−4乳癌 ZR−75−157+/−4 乳癌 Evej as 21−+//−4乳房上皮 HBL−10019+/− 15肺腺癌 A 427 3+/−1 結腸癌 SW 94B −8+/−5 線維肉腫 HT 1080 8+/−16前単球白血病 HL 60 −9+/ −3膀胱癌 1(ill 4+/−7 リンパ芽球白血病 Raj i −2+/−11骨髄性単球白血病 Weh↓− 51+/−6有隷細胞癌 A 253 0+/−6 有線細胞癌 UM−3CC−17a −12+/−11有線細胞癌 四−5ea −38−6+/−8子宮頚癌 He La −17+/−20マイナスの数は成 長刺激を示す 特定例24 ヒト乳房細胞の免疫ペルオキシダーゼ染色正常および形質転換ヒト細胞系による インヒビター産生を調べるため、3C6モノクローナル抗体を用い・ で、界面 活性剤透過正常および形質転換細胞の免疫ペルオキシダーゼ染色を実施し几。Breast cancer MCF-76i-17/-g Breast cancer BT-2055+/-17 Breast cancer MDA-MB-23125+/-4 Breast cancer ZR-75-157+/-4 Breast cancer Evej as 21-+//-4 Breast epithelium HBL-10019+/- 15 Lung adenocarcinoma A 427 3+/-1 Colon cancer SW 94B -8+/-5 Fibrosarcoma HT 1080 8+/-16 Premonocytic leukemia HL 60-9+/ -3 Bladder cancer 1 (ill 4+/-7 Lymphoblastic leukemia Raji -2+/-11 Myeloid monocytic leukemia Weh↓- 51+/-6 Slave cell carcinoma A 253 0+/-6 Wired cell carcinoma UM-3CC-17a -12+/-11 Wired cell carcinoma 4-5ea -38-6+/-8 Cervical cancer He La -17+/-20 Negative numbers are successful. Indicates long stimulation Specific example 24 Immunoperoxidase staining of human breast cells by normal and transformed human cell lines To examine inhibitor production, 3C6 monoclonal antibody was used at the interface. Perform immunoperoxidase staining of active agent permeable normal and transformed cells.

NHMCまたはMCF −7細胞をチェンバースライド上で3日間培養し、PB Sで洗浄し、PBS中2優パラホルムアルデヒド中4℃で10分間固定した。以 後の工程は室温で行った。細胞にPBS中0.1%Triton X −100 t−10分間透過させ、PBS中l5ssAで30分間ゾロツクし、ついで、1 %BSA含有PBS中モノクローナル抗体3C6の1:100希釈液と60分間 インキュベートした。無関係のIgM抗体の等濃度を対照として使用した。次に 細胞を洗浄し、2.5%脱脂粉乳含有PBS中ヤザ抗−マウスIgG抗体接合ペ ルオキシダーゼ1:250溶液中で60分間インキユベートシ、AEC溶液で1 0分間展開した。スライドにアクアマウントを装着し、撮影した。NHMC or MCF-7 cells were cultured on chamber slides for 3 days, and PB The cells were washed with S and fixed in 2% paraformaldehyde in PBS at 4°C for 10 minutes. Below Subsequent steps were performed at room temperature. Cells were treated with 0.1% Triton X-100 in PBS. permeabilize for 10 minutes, soak for 30 minutes with l5ssA in PBS, and then 1:100 dilution of monoclonal antibody 3C6 in PBS containing % BSA for 60 min. Incubated. Equal concentrations of irrelevant IgM antibodies were used as controls. next Cells were washed with Yaza anti-mouse IgG antibody conjugated in PBS containing 2.5% nonfat dry milk. Incubate for 60 minutes in a 1:250 solution of oxidase and 1:1 in an AEC solution. Developed for 0 minutes. I attached an Aquamount to the slide and took pictures.

第14図は、囚正常ヒト乳房細胞(X 100 ) 、(BIMCF −7細胞 (Xl 00)の染色結果を示す。第14A図に示すように、免疫反応性インヒ ビターは、正常ヒト乳房細胞の90%以上存在した。一方、第14B図に示すよ うに、MCF −7細胞は10〜15%のみが弱い染色を示すにすぎなかった。Figure 14 shows captive normal human breast cells (X100) and (BIMCF-7 cells). (Xl 00) staining results are shown. As shown in Figure 14A, the immunoreactive inhibitor Bitter was present in over 90% of normal human breast cells. On the other hand, as shown in Figure 14B, In contrast, only 10-15% of MCF-7 cells showed weak staining.

3C6で染色したサンプルは無関係の抗体には陰性であった。Samples stained with 3C6 were negative for irrelevant antibodies.

第15表に掲げた他の形質転換細胞系の免疫ペルオキシダーゼ染色も同様に実施 した。B T −20、MDA−MB−231およびZR−75−1,evej osならびにHBL −100では10係未満の弱く染色された細胞がみられた 。非乳房細胞系は陰性であった。Immunoperoxidase staining of other transformed cell lines listed in Table 15 was performed in the same manner. did. BT-20, MDA-MB-231 and ZR-75-1, evej In os and HBL-100, weakly stained cells of less than 10 cells were observed. . Non-breast cell lines were negative.

特定例25 形質転換細胞系によるヒト乳房成長インヒビターの試験した3種の形質転換ヒト 細胞系の調整培地には、免疫反応性または生物活性ヒト乳房細胞成長インヒビタ ーはいずれも検出できなかった。Specific example 25 Three transformed humans tested for human breast growth inhibitors using transformed cell lines Cell line conditioned media contains immunoreactive or bioactive human breast cell growth inhibitors. - could not be detected.

調整培地はNHMCについて記載したのと同様にして、MCF −7、B T  −20およびMDA −M D −251細胞系から得られ、前述のようにして MCF −7成長抑制活性を調べた。これらの培地はウェスタンプロットによっ ても分析した。抑制活性もまた免疫反応性ヒト乳房成長インヒビターも検出され なかった。Conditioned medium was prepared in the same manner as described for NHMC, MCF-7, BT -20 and MDA-MD-251 cell lines and as previously described. MCF-7 growth inhibitory activity was investigated. These media were analyzed by Western blot. I also analyzed it. Suppressive activity was also detected in immunoreactive human breast growth inhibitors. There wasn't.

特定例26 ヒト乳房成長インヒビターのレベルのサンドイッチELISAおよび定量 Dyna techマイクロタイタープレートを、特定例7において前述し念よ うにして産生させたハイプリドーマクローンo F 1 / 6 B 8からの rgMモノクローナル抗体、精製688のPBS中10ng/―溶液全ウェルあ たり100μを用い、4°Cで一夜インキユベートした。コーティングされたプ レートラついで、ウェルあたり300μtの1壬ウシ血清アルデミン(BSA  、 Si弘Chemical )含有PBS t−加えて1時間室温でインキュ ベートして非特異的結合全減少させるためにブロックし念。プレート?、ウェル あた!1100μtの、標品としてのアフィニティー精製インヒビターまたはヒ ト血清と、室温で2時間インキュベートした。次にプレートt Q−1%’rr ttQn X −100含有PBSで洗い流して洗浄して非結合蛋白質を除去し 、ついで溶液全プレートから振り落とした。この操作音4回反復した。Specific example 26 Sandwich ELISA and quantification of human breast growth inhibitor levels Please note that the Dynatech microtiter plate was mentioned above in Specific Example 7. from hybridoma clone oF1/6B8 produced in this manner. rgM monoclonal antibody, 10 ng/- solution in PBS of purified 688 in all wells. 100 μl was used and incubated overnight at 4°C. coated plastic Letra was followed by 300 μt of bovine serum aldemin (BSA) per well. , Sihiro Chemical)-containing PBS t- and incubation at room temperature for 1 hour. Bate and block to reduce total non-specific binding. plate? , well Atta! 1100 μt of affinity-purified inhibitor or inhibitor as standard. The cells were incubated with human serum for 2 hours at room temperature. Next plate t Q-1%’rr Rinse and wash with PBS containing ttQn X -100 to remove unbound proteins. , and then the entire solution was shaken off the plate. This operation sound was repeated four times.

結合蛋白質はプレート上で、ウェルあた!1100μ乙の14 BSA含有PB S中ビオチン接合5C6抗体2μm17d溶液を用いて室温にて1時間インキュ ベートすることによって認識された。非結合抗体は、再びプレートe O,1% Triton X −100含有PBSで数回洗い流すことによってプレートか ら除去した。結合蛋白質をついで、i%BsA含有PBS中アルカリホスファタ ーゼ接合ストレプトアビジン(5outhern Biotachnology 。The binding protein is on the plate and per well! 14 BSA-containing PB of 1100μ Incubate for 1 hour at room temperature with 2 μm 17d solution of biotin-conjugated 5C6 antibody in S. Recognized by bate. Unbound antibodies were plated again in O, 1% Clear the plate by rinsing it several times with PBS containing Triton X-100. It was removed. The binding protein was then incubated with alkaline phosphatase in PBS containing i% BsA. -se-conjugated streptavidin (5outhern Biotachnology) .

Inc、) 0.4 ng/ ’溶液、ウェルあたり100μtと室温で1時間 インキュベートした。プレートを振ってストレプトアビジン溶液をグレートから 除去し、再びPBS + Triton X −100で2回洗浄した。Inc.) 0.4 ng/’ solution, 100 μt per well for 1 hour at room temperature. Incubated. Shake the plate to remove the streptavidin solution from the grate. It was removed and washed twice again with PBS + Triton X-100.

捕捉された蛋白質はついで、ビオチン接合体を介して第2の抗体に結合したアル カリホスファターゼを用い、比色法によって認識された。すなわち、プレートを 、アルカIJ IJン酸塩基質緩衝液(400ml dH20。The captured protein is then bound to a second antibody via a biotin conjugate. It was recognized by a colorimetric method using calyphosphatase. That is, the plate , Alka IJ IJ phosphate substrate buffer (400ml dH20.

24−5 rn9 Mget、 48 mlジx l / −h 7 ミニy  f HCL テp)I9.8に調整し、全容500−とする)11dあたり1錠 (5彎)のp−ニトロフェニルリンall 塩錠(Sigma104−105ホ スフアターゼ基質)の溶液、ウェルあたり100μtと黄色が認められるまでイ ンキュベートした。30分および1時間後にDynatecマイクロ乙ISAプ レー) IJ−ダーを用いて読み取りを行い、存在する蛋白質量は発生した黄色 の強度を測定してめた。24-5 rn9 Mget, 48 ml di x l / -h 7 mini y f HCL tep) Adjust to I9.8 and make total 500-) 1 tablet per 11d (5 curvature) p-nitrophenyl phosphorus all salt tablets (Sigma104-105 ho sphatase substrate) solution, 100 µt per well, and incubate until a yellow color is observed. Incubated. After 30 minutes and 1 hour, the Dynatec Micro Read using an IJ-der, the amount of protein present is determined by the generated yellow color. The strength was measured.

蛋白質の実際のnJil / mlの定量化には、この方法をまず、精製インヒ ビターの蛋白質濃度f Biorad蛋白質アッセイまたは類似のアッセイたと えば5DS−PAGE比較を用いて測定し、ついで純粋な蛋白質t−PBS +  1% BSA溶液中連続希釈して標準曲線全作成することによって行った。未 知サンプルを次にこの標準曲線と比較して蛋白質レベルをめた。To quantify the actual nJil/ml of protein, this method is first applied to purified insulin. Bitter protein concentration f Biorad protein assay or similar assay For example, using 5DS-PAGE comparison, then pure protein t-PBS + This was done by serially diluting the sample in a 1% BSA solution and creating a standard curve. Not yet The known samples were then compared to this standard curve to determine protein levels.

本発明は、その精神または必須の特性から逸脱することなく、いくつかの形態に 具現できるものであるから、以上の態様は例示的なものであって、本発明を限定 するものではない。本発明の範囲は添付の請求の範囲によって定められるもので あって、請求の範囲の境操作的に均等物を形成するすべての変化はしたがってこ の請求の範囲に包含されるものである。The present invention may be embodied in several forms without departing from its spirit or essential characteristics. The above embodiments are merely illustrative and do not limit the present invention. It's not something you do. The scope of the invention is defined by the appended claims. Therefore, all changes that constitute operational equivalents within the scope of the claims are hereby included. within the scope of the claims.

浄書(内容に変更なし) G−100力5ム分i1+′−よ&MCF’−、7細胞の成畏!1Wts地の用 量反応 nm to 50 250 500 濃縮用地添加容量 rμり 第2図 分子節カラム分画の活性 MCI”−7の横裂インヒビター1:よる抑制C102550700200 精製インヒビター添加容量 rμ/) 第5図kdABCDE):” 4−・ 第4図 ABC[) (D) 35s−メチオニン憚識1劃整培地ウェスタンプロットで検出したヒト 血清中のインヒビターの存在1、正常女性血清 2正常男性血清 J乳癌患者に、Mcの血清 4、乳癌患者に、Mcの血清 5乳癌患者7.8にの血清 5、乳癌患者T、Bkの血清 2乳癌患者A、Newの血清 a乳癌患者A、Newの血清 9、乳癌患者P、Doの血清 10、乳癌患者P、Doの血清 第8図 0 20 40 60 Bo 100 1200 J7 55 70 100  f+I I4−/第13図 時間(培養日数) 10%非調整培地(10ヌ・ 5%調整培地10丈 10% 四〇1培地 6厘)。Engraving (no changes to the content) G-100 force 5mu i1+'-yo & MCF'-, 7 cells' success! 1Wts ground use quantity response nm to 50 250 500 Concentration land addition capacity rμri Figure 2 Activity of molecular node column fractionation Transverse cleft inhibitor 1 of MCI”-7: Inhibition by C102550700200 Purified inhibitor addition volume rμ/) Figure 5 kdABCDE):” 4-・ Figure 4 ABC[) (D) 35s-methionine detection in human culture medium Western blot detection Presence of inhibitor in serum 1, normal female serum 2 Normal male serum J Breast cancer patients, serum of Mc 4. Mc serum for breast cancer patients 5 Serum from breast cancer patients 7.8 5. Serum of breast cancer patients T and Bk 2 Breast cancer patient A, new serum a Breast cancer patient A, new serum 9. Serum of breast cancer patients P and Do 10. Serum of breast cancer patients P and Do Figure 8 0 20 40 60 Bo 100 1200 J7 55 70 100 f+I I4-/Figure 13 Time (number of culture days) 10% unconditioned medium (10 μ 5% conditioned medium 10 lengths 10% 401 medium 6 liters).

数値は2回反復した三重測定の平均±SEMである。Values are the mean ± SEM of triplicate determinations repeated twice.

抑制活性のモノクロ−カル抗体1こよる遮断手続補正書(自発) 平成3年 1月2Σ日Amendment for blocking procedure due to monoclonal antibody 1 with inhibitory activity (voluntary) January 2Σ, 1991

Claims (1)

【特許請求の範囲】 1.ヒト乳房細胞成長インヒビターに結合するモノクローナル抗体からなる抗体 2.抗体はキメアリツクである請求項(1)記載の抗体5.抗体はインヒビター の活性部位に結合する請求項(1)記載の抗体 4.抗体はインヒビターの不活性部位に結合する請求項(1)記載の抗体 5.抗体はIgQ抗体である請求項(1)記載の抗体6.抗体はIgM抗体であ る請求項(1)記載の抗体7.モノクローナル抗体は、ハイプリドーマ細胞系A TCC受入番号HB9722の特性を有するハイプリドーマの産物である請求項 (1)記載の抗体8.モノクローナル抗体は、ハイプリドーマ細胞系ATCC受 入番号HB9723の特性を有するハイプリドーマの産物である請求項(1)記 載の抗体9.モノクローナル抗体は、ハイプリドーマ細胞系ATCC受入番号H B10152の特性を有するハイプリドーマの産物てある請求項(1)記載の抗 体10.以下の特性、すなわち(a)NHMC,MCF−7,BT−20乳房細 胞の成長に対する抑制作用、(b)抑制活性のカルシウム依存性、(c)抑制活 性の用量依存性、(d)インヒビター濃度の低下に際しての抑制活性の可逆性、 (e)100℃への加熱に際しての抑制活性の実質的低下、および(f)トリプ シン処理に際しての抑制活性の実質的低下、を有する細胞成長インヒビターに結 合するモノクローナル抗体 11.抗体はIgM抗体である請求項(10)記載の抗体12.形質転換細胞と 、ヒト乳房細胞成長インヒビターに対するモノクローナル抗体を産生する脾臟細 胞との融合によつて生成するハイプリドーマ15.ハイプリドーマは、ハイプリ ドーマ細胞系ATCC受入番号HB9722の特性を有する請求項(12)記載 のハイプリドーマ 14.ハイプリドーマは、ハイプリドー細胞ATCC受入番号HB9723の特 性を有する請求項(12)記載のハイプリドーマ 15.ハイプリドーマは、ハイプリドーマ細胞系ATCC受入番号HB1015 2の特性を有する請求項(12)記載のハイプリドーマ 16.(a)ヒト対象から生物学的サンプルを準備し、(b)ヒト乳房細胞成長 インヒビターに特異的な抗体を準備し、(c)インヒビターへの抗体の結合の検 定法を準備し、(d)抗体を生物学的サンプルと、サンプル中にヒト乳房細胞成 長インヒビターが存在すれば抗体がそれに結合するのに十分な時間かつ十分宏量 の抗体量で接触させ、ついで(e)インヒビターへの抗体の結合を検定する各工 程からなるヒト対象の乳癌をスクリーニングする方法17.抗体はモノクローナ ル抗体である請求項(16)記載の方法 18.抗体はポリクローナル抗体である請求項(16)記載の方法 19.生物学的サンプルは乳房組織である請求項(16)記載の方法 20.生物学的サンプルは血清である請求項(16)記載の方法 21.(a)ヒト対象の体液または組織の生物学的サンプルを準備し、(b)ヒ ト乳房細胞成長インヒビターに特異的な抗体を準備し、(c)インヒビターヘの 抗体の結合の検定法を準備し、(d)抗体を生物学的サンブルと、そのサンプル 中にヒト乳房細胞成長インヒビターが存在す九ば抗体がそれに結合するのに十分 な時間かつ十分な量の抗体量で接触させ、(e)インヒビターヘの抗体の結合を 検定し、ついで(f)サンプル中に存在するインヒビターの量を標準レベルとの 関連で測定する各工程から左るヒト対象におけるヒト乳房細胞成長インヒビター のレベルをモニタリングする方法 22.(a)乳房組織に治療有效量のヒト乳房細胞成長インヒビターを供給し、 (b)乳房細胞成長インヒビターのレベルをモニタリングする各工程からなるヒ ト乳癌の予防または処置方法 25.さらに(c)in vivoに存在するインヒビターのレベルをモニタリ ングする工程からなり、in vivoのインヒビターレベルのモニタリング工 程は(1)対象の体液または組織のサンプルを準備し、(ii)ヒト乳房細胞成 長インヒビターに特異的な抗体を準備し、(iii)インヒビターヘの抗体の結 合の検定法を準備し、(iv)抗体を体液または組織と、そのサンプル中に存在 するヒト乳房細胞成長インヒビターに抗体が結合するのに十分な時間かつ十分な 量の抗体量で接触させ、(v)インヒビターヘの抗体の結合を検定し、ついで( vi)サンプル中に存在するインヒビターの量を測定する各工程からなる請求項 (22)記載の方法 24供給工程はin vlvoにおけるインヒビターの治療有効レベルを維持す るため反復される請求項(22)記載の方法 25.インヒビターは循環系を介して乳房組織に供給される請求項(22)記載 の方法 26.インヒビターは乳房組織に注射される請求項(22)記載の方法 27.抗体はモノクローナル抗体である請求項(22)記載の方法 28.生物学的液体中でヒト乳房細胞成長インヒビターに優占的に結合する抗体 、およびインヒビターヘの抗体の結合を検出するための試薬手段からなり、抗体 および試薬手段は検定の実施に十分な量存在するヒト乳房細胞成長インヒビター の存在を検定するためのキット 29.抗体はIgQ抗体である請求項(28)記載のキット30.抗体はIgM 抗体である請求項(28)記載のキット31.検定は酵素連結イムノアツセイで ある請求項(28)記載のキット 32.検定は放射イムノアツセイである請求項(28)記載のキット 33.検定は血球凝集アツセイである請求項(28)記載のキット 34.検定は細胞抑制アッセイである請求項(28)記載のキット 35.抗体はモノクローナル抗体である請求項(28)記載のキット 36.抗体はポリクローナル抗体である請求項(28)記載のキット 37.溶液中のヒト乳房細胞成長インヒビターを精製する方法において、(a) インヒビターに対する精製モノクローナル抗体を準備し、(b)溶液を抗体と、 抗体がインヒビターに結合するのに十分な時間かつ十分量の抗体量で接触させ、 ついで(c)インヒビターを抗体−インヒビター複合体から回収する各工程から なる方法発明の詳細な説明[Claims] 1. Antibodies consisting of monoclonal antibodies that bind to human breast cell growth inhibitors 2. 5. The antibody according to claim (1), wherein the antibody is chimeric. Antibodies are inhibitors The antibody according to claim (1), which binds to the active site of 4. The antibody according to claim (1), wherein the antibody binds to an inactive site of the inhibitor. 5. 6. The antibody according to claim (1), wherein the antibody is an IgQ antibody. The antibody is an IgM antibody. 7. Antibody according to claim (1) The monoclonal antibody was prepared using hybridoma cell line A. A claim that is the product of a hybridoma having the characteristics of TCC Accession No. HB9722 Antibody 8 described in (1). The monoclonal antibody was produced using a hybridoma cell line ATCC. The product according to claim (1) is a product of a hybridoma having the characteristics of serial number HB9723. Antibody 9. The monoclonal antibody is hybridoma cell line ATCC accession number H The antibody according to claim (1), which is a product of a hybridoma having the characteristics of B10152. Body 10. The following characteristics, namely (a) NHMC, MCF-7, BT-20 breast Inhibitory effect on cell growth, (b) Calcium dependence of inhibitory activity, (c) Inhibitory activity (d) reversibility of inhibitory activity upon decreasing inhibitor concentration; (e) a substantial decrease in inhibitory activity upon heating to 100°C; and (f) a binding to cell growth inhibitors with a substantial decrease in inhibitory activity upon treatment with Monoclonal antibodies that match 11. 12. Antibody according to claim (10), wherein the antibody is an IgM antibody. transformed cells and , a splenic gland that produces monoclonal antibodies against human breast cell growth inhibitors. Hybridoma generated by fusion with cysts 15. Hypuridoma is Hypuridoma The Doma cell line has the characteristics of ATCC Accession No. HB9722 as described in claim (12). Hypuridoma 14. Hypridoma is a characteristic of hyperdoma cell ATCC accession number HB9723. The hyperidoma according to claim (12), which has 15. The hybridoma is a hybridoma cell line ATCC accession number HB1015 The hyperidoma according to claim (12), which has the characteristics of 2. 16. (a) preparing a biological sample from a human subject; and (b) growing human breast cells. preparing an antibody specific for the inhibitor; and (c) testing the binding of the antibody to the inhibitor. (d) combining the antibody with a biological sample and human breast cell populations in the sample; If a long inhibitor is present, the inhibitor must be present for a sufficient time and in sufficient quantity for the antibody to bind to it. each step of contacting with an amount of antibody, and then (e) assaying the binding of the antibody to the inhibitor. 17. A method for screening breast cancer in a human subject, comprising: Antibodies are monoclonal The method according to claim (16), wherein the antibody is a polyantibody. 18. The method according to claim (16), wherein the antibody is a polyclonal antibody. 19. The method according to claim (16), wherein the biological sample is breast tissue. 20. The method according to claim (16), wherein the biological sample is serum. 21. (a) preparing a biological sample of body fluid or tissue of a human subject; (c) preparing an antibody specific for a breast cell growth inhibitor; preparing an assay for antibody binding; (d) combining the antibody with a biological sample and the sample; The presence of human breast cell growth inhibitor in the nine-fold antibody is sufficient for the antibody to bind to it. (e) contacting with a sufficient amount of antibody for a sufficient amount of time to inhibit binding of the antibody to the inhibitor; and (f) determine the amount of inhibitor present in the sample relative to standard levels. Human Breast Cell Growth Inhibitor in Human Subjects from Each Step Associated with Measuring How to monitor the levels of 22. (a) providing breast tissue with a therapeutically effective amount of a human breast cell growth inhibitor; (b) a human body consisting of each step of monitoring the level of breast cell growth inhibitor; How to prevent or treat breast cancer 25. and (c) monitoring the level of inhibitors present in vivo. The in vivo inhibitor level monitoring process The process involves (1) preparing a sample of body fluid or tissue of interest; and (ii) preparing a sample of human breast cell tissue. (iii) conjugation of the antibody to the inhibitor; (iv) combining the antibody with the body fluid or tissue present in the sample; for sufficient time and sufficient time for the antibody to bind to the human breast cell growth inhibitor (v) assaying binding of the antibody to the inhibitor, and then (v) assaying the binding of the antibody to the inhibitor. vi) the steps of determining the amount of inhibitor present in the sample; (22) Method described 24 The delivery process maintains therapeutically effective levels of the inhibitor in vlvo. The method according to claim (22), wherein the method is repeated to 25. Claim 22, wherein the inhibitor is supplied to the breast tissue via the circulatory system. the method of 26. The method of claim 22, wherein the inhibitor is injected into breast tissue. 27. The method according to claim (22), wherein the antibody is a monoclonal antibody. 28. Antibodies that bind predominantly to human breast cell growth inhibitors in biological fluids , and reagent means for detecting binding of the antibody to the inhibitor; and the reagent means is a human breast cell growth inhibitor present in sufficient quantity to perform the assay. kit for testing the presence of 29. Kit 30 according to claim (28), wherein the antibody is an IgQ antibody. Antibodies are IgM Kit 31 according to claim (28), which is an antibody. The assay is an enzyme-linked immunoassay. Kit according to claim (28) 32. The kit according to claim (28), wherein the assay is a radioimmunoassay. 33. The kit according to claim (28), wherein the assay is a hemagglutination assay. 34. The kit according to claim (28), wherein the assay is a cell inhibition assay. 35. The kit according to claim (28), wherein the antibody is a monoclonal antibody. 36. The kit according to claim (28), wherein the antibody is a polyclonal antibody. 37. A method of purifying human breast cell growth inhibitor in solution, comprising: (a) preparing a purified monoclonal antibody against the inhibitor; (b) combining the solution with the antibody; contacting the antibody for a sufficient amount of time and in a sufficient amount for the antibody to bind to the inhibitor; and (c) from each step in which the inhibitor is recovered from the antibody-inhibitor complex. Detailed description of the method invention
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