JPH05502178A - Hollow visceral prosthesis and implantation method - Google Patents

Hollow visceral prosthesis and implantation method

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JPH05502178A
JPH05502178A JP3501623A JP50162391A JPH05502178A JP H05502178 A JPH05502178 A JP H05502178A JP 3501623 A JP3501623 A JP 3501623A JP 50162391 A JP50162391 A JP 50162391A JP H05502178 A JPH05502178 A JP H05502178A
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Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるため要約のデータは記録されません。 (57) [Summary] This bulletin contains application data before electronic filing, so abstract data is not recorded.

Description

【発明の詳細な説明】 中空内臓人工器官及び移植方法 切除された器官又は他の体部分の壁の修復又は復元に用いられる製品及び技術に 関する。更に詳しくは、本発明はこのような器官又は体部分か移植又は端部対端 部吻合のような伝統的技術による復元をうけにくい場合に器官壁の一部の復元又 は全器官壁の置換のため周辺組織に組込むことができる移植用人工器官に関する 。[Detailed description of the invention] Hollow visceral prosthesis and implantation method For products and techniques used to repair or restore the walls of excised organs or other body parts. related. More particularly, the present invention relates to transplantation or end-to-end transplantation of such organs or body parts. Restoration of part of the organ wall or relates to an implantable prosthesis that can be integrated into the surrounding tissue for the replacement of whole organ walls. .

技術水準:中空内臓の置換又は器官壁の部分的復元が必要とされる多数の疾患又 は症状がある。更に一般的なこれらの疾患又は症状は食道の非応答性狭窄二発生 率が全悪性障害の1%及び胃腸悪性腫瘍の4%として報告される食道癌、糖尿病 患者の一部約83%に存在する神経因性膀胱である多量法貯留の非応答性神経因 性膀胱、外傷、先天性欠損又は腫瘍形成の結果として尿管又は尿道閉塞を伴う尿 管閉塞:全癌化の2.5%を占める膀胱の腫瘍形成である。State of the art: Numerous diseases or diseases requiring replacement of hollow internal organs or partial restoration of organ walls. has symptoms. A more common of these diseases or conditions is unresponsive stricture of the esophagus. Esophageal cancer, diabetes mellitus, with rates reported as 1% of all malignancies and 4% of gastrointestinal malignancies Neurogenic bladder, a non-responsive neurogenic cause of voluminous retention, present in some 83% of patients. Urine with ureteral or urethral obstruction as a result of sexual bladder, trauma, congenital defect or tumor formation Duct obstruction: Bladder tumor formation that accounts for 2.5% of all cancers.

器官又は組織の置換又は復元か非常に貴重な疾患又は症状は他に多数あるが、但 しそうするための技術は欠けている。これらの例としては装着しなければならな い新しい小孔開口及び回収装置のせいでしばしば大きな痛み、不快感及び不便を 生じる癌又は特発生粘膜潰瘍性大腸炎のような様々な疾患かある。例えば気管か 切除されねばならない情況も存在し、気管8センチメートル以上の除去は端部対 端部吻合修復を妨げる。現在、−貫した気管代替品はない。There are many other diseases or conditions in which organ or tissue replacement or restoration would be invaluable, but The technology to do so is lacking. Examples of these are: New stoma opening and retrieval devices often cause significant pain, discomfort and inconvenience. There are various diseases that occur, such as cancer or idiopathic mucosal ulcerative colitis. For example, the trachea There are situations in which the trachea must be removed, and removal of more than 8 cm of the trachea requires Preventing end-to-end anastomotic repair. Currently, there are no reliable tracheal replacements.

前記疾患及び症状は、移植片復元の場合のように疾患の代わりに他の中空内臓の 外科的置換又は他の器官からの組織の置換により処置されることが多かった。例 えば、食道は結腸の置換部分により又は更に一般的には食道胃切除により置き換 えられる。下部尿管は尿管回腸吻合と共に一部から全部の膀胱切除により処置さ れる。加えて、回腸肛門吻合と共にレザバー回腸フィステル形成及び粘膜直腸切 除の使用は体腔切除後に利用されたか、但し機械的小孔閉塞装置を用いる更に最 近の操作が開発された。Said diseases and symptoms may be caused by other hollow visceral organs instead of diseases, such as in the case of graft reconstruction. It was often treated by surgical replacement or replacement of tissue from other organs. example For example, the esophagus may be replaced by a replacement portion of the colon or, more commonly, by an esophagogastroresection. available. The lower ureter is treated by partial to total cystectomy along with ureteroileal anastomosis. It will be done. In addition, reservoir ileal fistula formation and mucosal rectal incision are performed along with ileoanal anastomosis. The use of ablation has been utilized after body cavity resection; A nearby operation was developed.

これら操作のすべては長時間の手術操作を要し、相当数の術後合併症をおこし、 一部のケースでは外部回収装置を要する。加えて、これら操作のうち一部で満足 しえないある明らかな美的効果かある。All of these operations require long surgical procedures and result in a significant number of postoperative complications. In some cases external collection equipment is required. In addition, some of these operations may be satisfactory. There is a certain obvious aesthetic effect that cannot be helped.

これらの症状を治療するためドナー組織又は器官代替品の使用に加えて、ポリマ ー及び金属が単独で又は組合せて食道又は下部尿管置換のために用いられた。多 数の物質か気管、食道及び尿管置換用の人工器官として使用上示唆されてきた。In addition to the use of donor tissue or organ substitutes to treat these conditions, polymer - and metals have been used alone or in combination for esophageal or lower ureteral replacement. Many A number of materials have been suggested for use as prostheses for tracheal, esophageal and ureteral replacement.

例えば、E、F バーブマン、“プラスチックチューブによる食道の一部の実験 的置換”、第135巻、アンルズ・才ブ・サージエリ−11952年3月、第3 37−43頁(E、 F、 Bergman、 in″The Experim ental Replacementof Portions of the  Esophagus by a Plastic Tube” 、 135 A nnalsof Surgery、 March 1952. pp、337− 43 )では食道手術後の代替品としてメタクリレート又はポリエチレンチュー ビングの使用について示唆した。更に、バッタースビーら、“プラスチックチュ ーブによる食道置換”、A、 M、 A、アーチゲス・オブ・サージエリ−11 954年、第400−09頁(Battersby、 et at、、“Eso phagealReplacement with Plastic Tube s” 、 A、M、A、Archives of Surgery。For example, E. F. Barbman, “Experiments on a part of the esophagus using a plastic tube. ``Replacement'', Volume 135, Ann's Sargieli - March 11952, No. 3 pp. 37-43 (E, F, Bergman, in″The Experiment dental Replacements of Portions of the Esophagus by a Plastic Tube", 135 A nnalsof Surgery, March 1952. pp, 337- 43) used methacrylate or polyethylene tubes as an alternative after esophageal surgery. Suggested the use of Bing. Furthermore, Battersby et al. ``Esophageal Replacement with a Tube'', A, M, A, Arches of Surgery-11 954, pp. 400-09 (Battersby, et at, “Eso Phageal Replacement with Plastic Tube s”, A, M, A, Archives of Surgery.

+954. pp、 400−09 (ポリエチレン及びナイロンの積層につい て開示する)、ハーネスら、“複合人工器官及び大綱によるイヌ食道の一部の置 換”、第64巻、ジャーナル・才ブ・ソーラシック・アンド・カルジオバスキュ シー・サージエリ−,1972年12月、第892−96頁(Barnes、  et al、、“Replacement of Portion of Ca nineEsophagus with Composite Prosthe sis and Greater Omentum、”64 Jr、of 96(ポリウレタンの使用について開示する)・ツクシマら、“イヌにおいて人 工食道による食道の置換後における7年間追跡研究゛、第93巻、サージエリ− 11983年1月、第70−77頁(Fukushima、 et al、、  ’5even−Year Follow−up 5tudy After th eReplacement of the Esophagus with a n Artificial Esophagus 1nthe Dog、” 9 3 SurgerY、 January、 +983. pp、 70−77  (外部ダクロンメツツユを有するシリコーンゴムチューブについて開示する)参 照。E マイケルソン(E、 Michelson)らは“気管復元における実 験”、第41巻、ジャーナル・ソーラシック・アンド・カルジオバスキュシー・ サージエリ−11961年6月、第748−58頁で試験された気管置換用の多 数の装置について検討及び論議している。ボアーテックス(Gore−Tex”  )は尿管置換に用いられたが、成功は限定された。S、バーディら、“新合成 物質、コア・テックスによる尿管置換“第128巻、ジャーナル・オブ・ウロロ ジー・1982年7月、第171−75頁(S、Vardy、 et al、、  ”Ureteral、 Replacement with a New 5 ynthetic Material: Goreイex、” 128 Jr、 of Llrolo(By、July、 1982. pp、 171−175 )。+954. pp, 400-09 (about polyethylene and nylon lamination) ``Placement of a Portion of the Canine Esophagus with a Composite Prosthesis and an Ornament'' ”, Volume 64, Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery C.Surgery, December 1972, pp. 892-96 (Barnes, et al,, “Replacement of Portion of Ca nineEsophagus with Composite Prosthe sis and Greater Omentum,”64 Jr., of 96 (disclosing the use of polyurethane) Tsukushima et al. Seven-year follow-up study after replacement of the esophagus with an engineered esophagus, Volume 93, Surgery Department January 11983, pp. 70-77 (Fukushima, et al., '5even-Year Follow-up 5tudy After th eReplacement of the Esophagus a n Artificial Esophagus 1nthe Dog,” 9 3 SurgerY, January, +983. pp, 70-77 (discloses silicone rubber tubing with external Dacron tube) Light. E. Michelson et al. ”, Volume 41, Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery Tracheal Replacement Polymers Tested in Surg. 1961, June 748-58. A number of devices are discussed and discussed. Gore-Tex” ) has been used for ureteral replacement, but with limited success. S., Birdy et al., “New synthesis Substance, Ureteral Replacement with Core Tex” Volume 128, Journal of Uroro G. July 1982, pp. 171-75 (S. Vardy, et al. “Ureteral, Replacement with a New 5 ynthetic Material: Gore EX,” 128 Jr. of Llrolo (By, July, 1982.pp, 171-175 ).

合成人工器官装置か置換又は復元に用られた場合には、装!と周辺組織との間で 吻合の漏出、感染、人工器官縫合線の披裂後における管腔内又は体外への人工器 官の突出、中空管の出現及び人工器官の移動を含めていくつかの重大な問題が観 察された。これらの問題は用いられる人工器官のタイプ及び移植の技術の結果と して生じる。If a synthetic prosthetic device is used for replacement or restoration, the prosthesis! and surrounding organizations Anastomotic leakage, infection, intraluminal or extracorporeal prosthesis after prosthesis suture line Several significant problems were observed, including protrusion of the tube, appearance of hollow tubes, and migration of the prosthesis. It was noticed. These problems are a result of the type of prosthesis used and the technique of implantation. occurs.

例えば、縫合線の漏出は通常不適正又は不充分な縫合及び人工器官チューブを粘 膜と接触させるために採用された具体的方法の結果である。感染は吻合部位にお ける漏出又は人工器官の移植に際する無菌技術の失敗から生じる。For example, suture leakage usually involves improper or insufficient sutures and viscous closure of the prosthetic tube. The result is the specific method employed to contact the membrane. Infection occurs at the anastomosis site. resulting from leakage or failure of aseptic technique during prosthesis implantation.

しかしなから、移動及び縫合線披裂は上皮の独特な性質の結果である。上皮はそ れが他の上皮と接触するまで基質に沿って生長し続け、上皮は本来粘膜以外の何 ものにも永久に回復することができない。非生分解性人工器官の場合に粘膜は人 工器官の内部に移動し始めるが、但し 血管はあるポリマー、例えばシラスチッ ク(Silastic”)に浸透できないため粘膜はその血液供給にすぐには追 いつけず、縫合線に向けて逆に粘膜が脱落していく。次いで、縫合線の披裂が生 じる。次いで粘膜は人工器官外に生長し、人工器官周囲の結合組織からその血液 供給をうける。これにより管腔内への人工器官の突出又は中空管の形成を生じる 。However, migration and suture arytenoids are a result of the unique properties of the epithelium. The epithelium is The epithelium continues to grow along the stroma until it comes into contact with other epithelium, and the epithelium is essentially nothing other than a mucous membrane. Nothing can be permanently recovered. In the case of non-biodegradable prostheses, the mucous membrane It begins to move inside the endothelial organ, but the blood vessels are coated with certain polymers, such as Silas glue. The mucous membrane cannot quickly replenish its blood supply because it cannot penetrate the silastic membrane. Instead, the mucous membrane falls off toward the suture line. Next, the arytenoids of the suture line are formed. Jiru. The mucous membrane then grows outside the prosthesis and drains its blood from the connective tissue around the prosthesis. Receive supply. This results in protrusion of the prosthesis into the lumen or formation of a hollow tube. .

合成基質物質の移植で生じる問題の一部は合成基質へのコラーゲンの適用により 克服された。結合組織及び骨の主要細胞外構造タンパク質である繊維タンパク質 、コラーゲンは、[織を形成させるため細胞を互いに結合させて構造連続体を形 成する。Y シミズら、“コラーゲンのコポリマー及び合成ポリマーに関する研 究(第一レポート)“、第5巻、バイオマド・メト・デブ・アート・アンド・オ ーガ、1977年、第49−66頁(Y、Shimizu、 et al、”5 tudieson Copolymers of ColCo11a and  a 5ynthetic Polymer(First Rep−ortY、  58ioma1. Med、、 Dev、、 Art and Orq、、 1 977、 pp、49−66)、“コラーゲン及び合成ポリマーの複合材に関す る研究(第ニレポート)”、第6巻、バイオマド・メト・デブ・アート・アンド ・オーガ、1978年、第375−391頁及び“コラーゲン及び合成ポリマー の複合材に関する研究′、プロシーディンゲス・オブ・ザ・セコンド・ミーティ ング・才ブ・l5AO11979年4月(”5tucly on Cr+mpo site of ColCo11a and 5ynthetic Polym er、”Proceedings of the 5econd Meetin g of +SAO,April 1979)の発見では、コラーゲン及び合成 物質のコポリマーがコラーゲンで促進される天然結合組織の形成及び生長のせい で人工器官生体物質として使用上高度に有用であることを示唆した。非吸収性繊 維補強を使用するコラーゲン性人工器官移植体はアータンジ(Artandi) らの米国特許第3.272.204号明細書で開示され、外科処置で使用できる コラーゲン被覆シリコーンゴムは才力ムラらの米国特許第3.955.012号 明細書で開示された。Some of the problems that arise with implantation of synthetic matrix materials are due to the application of collagen to the synthetic matrix. Overcame. Fiber protein, the main extracellular structural protein of connective tissue and bone , collagen forms a structural continuum by binding cells together to form a weave. to be accomplished. Y. Shimizu et al., “Research on Collagen Copolymers and Synthetic Polymers” Research (First Report), Volume 5, Biomad Met Deb Art & O. 1977, pp. 49-66 (Y, Shimizu, et al, “5 tudieson Copolymers of ColCo11a and a 5ynthetic Polymer (First Rep-ortY, 58ioma1. Med, Dev, Art and Orq, 1 977, pp. 49-66), “On Composites of Collagen and Synthetic Polymers” ``Research (Second Report)'', Volume 6, Biomad Met Deb Art and ・Oga, 1978, pp. 375-391 and “Collagen and Synthetic Polymers” Research on Composite Materials', Proceedings of the Second Meet April 1979 ("5tucly on Cr+mpo site of ColCo11a and 5ynthetic Polym er,”Proceedings of the 5th Meeting g of + SAO, April 1979) discovered that collagen and synthetic A copolymer of substances is responsible for the formation and growth of natural connective tissue promoted by collagen. The results suggest that it is highly useful for use as a prosthetic biomaterial. non-absorbable fiber Collagen prosthetic implants using fibrous reinforcement include Artandi et al., U.S. Pat. No. 3,272,204, which can be used in surgical procedures. Collagen-coated silicone rubber is disclosed in U.S. Patent No. 3.955.012 by Saikimura et al. Disclosed in the specification.

従来の合成基質−コラーゲンコポリマーの場合、コラーゲンは基質の全域で上皮 生長を促進することか示された。コラーゲンは最終的に体内で吸収され、合成基 質の上部に位置した上皮組織の層を残す。基質上における上皮化はこれらの装置 で生じるか、重大な問題はなお残っていた。例えば、生長上皮層は血管形成を欠 き、生長は最終的に制限される。上皮化が基質上で完全に生じないこともわかっ た。更に、生長はコントロールできず、過剰の結合組織生長は管の狭窄をおこす 。コラーゲン適用の無効方法も移植体を漏出させる。In traditional synthetic matrix-collagen copolymers, collagen is attached to the epithelium throughout the matrix. It has been shown to promote growth. Collagen is eventually absorbed by the body and converted into synthetic radicals. Leaving a layer of epithelial tissue located on top of the epithelium. Epithelialization on the stroma is caused by these devices. However, serious problems still remained. For example, the growing epithelial layer lacks angiogenesis. growth is eventually restricted. It was also found that epithelialization does not occur completely on the stroma. Ta. Additionally, growth cannot be controlled and excessive connective tissue growth can cause narrowing of the ducts. . Ineffective methods of collagen application also cause graft leakage.

前記のような合成人工器官装置の移植に伴う問題は、人工器官と体結合組織との 一次接触を促進し、人工器官又は臓器の管腔内で上皮生長を促進し、一方で血管 形成を促進して結合組織を合成物質の孔でアンカー固定する人工器官を提供する こと(こより克服される。A problem with implanting synthetic prosthetic devices such as those described above is the interaction between the prosthesis and the body's connective tissues. promotes primary contact and promotes epithelial growth within the lumen of the prosthesis or organ, while vascular Providing a prosthesis that facilitates formation and anchors connective tissue with synthetic pores This will be overcome.

発明の要旨 本発明は従来の合成人工器官形で生しる困難性と取組む体の組織又は内臓への移 植用に独特な物質を提供する。即ち、合成基質へのコラーゲンの制御的適用によ り、本発明では周辺体組織への装置の究極的組込みのために結合組織の調節的生 長を促進する。Summary of the invention The present invention addresses the difficulties encountered with conventional synthetic prosthetic forms in transferring tissue or internal organs of the body. Provides unique substances for planting. That is, by the controlled application of collagen to synthetic matrices, In addition, the present invention utilizes regulated growth of connective tissue for ultimate incorporation of the device into surrounding body tissues. Promote longevity.

本発明は、基質の孔かコラーゲンて閉塞され、それにより液体及び細菌侵入を不 可能にさせ基質を保持するようにコラーゲンか適用された多孔質合成ポリマー基 質にも関する。この不浸透性は本発明か復元又は置換用に尿管、呼吸管又は胃腸 管に用いられた場合に特に重要である。The present invention provides that the pores of the matrix are occluded with collagen, thereby preventing fluid and bacterial entry. Collagen or porous synthetic polymer base applied to allow matrix retention It's also about quality. This impermeability is achieved by the present invention for reconstruction or replacement of the ureteral, respiratory tract or gastrointestinal tract. This is particularly important when used in pipes.

合成基質はポリエチレン〜ポリウレタン、ポリプロピレン、シリコーンゴム又は テフロンのようないずれかの組織適合性でかつ比較的不活性な合成ポリマーから 通常形成される。それで形成された孔は均−又は不規則な形状及び大きさを有す る。しかしながら多孔度の不規則性は基質に対する上皮結合の強度を高め、しか もそれで生成する肉芽組織(初期結合組織)の量を調節する。タンタルのような 多孔質合成金属物質も本発明で用いてよい。ここで用いられる“合成“とは、望 ましい形のとき天然ではなく本発明の目的のため特に加工しなければならない天 然源の又は金属、ポリマーのいずれかの物質である。Synthetic substrates are polyethylene to polyurethane, polypropylene, silicone rubber or From any tissue compatible and relatively inert synthetic polymer such as Teflon Usually formed. The pores formed therein may have uniform or irregular shape and size. Ru. However, irregularity in porosity increases the strength of the epithelial bond to the stroma and only It also regulates the amount of granulation tissue (initial connective tissue) produced. like tantalum Porous synthetic metallic materials may also be used in the present invention. “Synthesis” as used here refers to the desired When in its desired form, it is not natural and must be specially processed for the purposes of this invention. Substances of natural origin, metals, or polymers.

基質の孔内への結合組織の制御的生長は体内への本発明の最適組込みを保証する 上で重要である。即ち、コラーゲンが体で吸収される速度及びそれに関して得ら れる結合組織の形成は基質上の上皮化速度に影響を与え、装置の最終的組込み速 度にも影響を与える。例えば、以前のコラーゲン被覆移植体において、不充分な 結合組織内生長か基質から管腔にかけて生しる場合、縫合線から移植体の中心に 向けた上皮生長は停止することが観察された。これは結合組織における血液供給 の不足のためであり、縫合線に向けて逆に上皮の分離脱落をおこす。上皮が内生 長結合組織を覆うように生長しないならば、結合組織は生長し続け、内臓の管腔 の狭窄を生しる。基質へのコラーゲンの制御的適用は基質内への結合組織の不充 分な内生長又は過剰な内生長を改善し、結合組織の最適な生長を調節する。Controlled growth of connective tissue into the pores of the matrix ensures optimal incorporation of the invention into the body. is important above. That is, the rate at which collagen is absorbed by the body and the resulting The formation of connective tissue on the substrate influences the rate of epithelialization on the substrate, which in turn influences the rate of final incorporation of the device. It also affects the degree. For example, in previous collagen-coated implants, insufficient If connective tissue ingrowth occurs from the stroma to the lumen, it should be Directed epithelial growth was observed to cease. This is the blood supply in connective tissue This is due to a lack of epithelium, which causes the epithelium to separate and fall off toward the suture line. epithelium is endogenous If the connective tissue does not grow over the long connective tissue, it will continue to grow and fill the lumen of the internal organs. This causes stenosis. Controlled application of collagen to the stroma results in a lack of connective tissue within the stroma. Improves insufficient or excessive ingrowth and regulates optimal growth of connective tissue.

基質への結合組織内生長の増加及び制御とその後の上皮化は基質上のコーティン グとしてコラーゲンへの線維芽細胞の添加により促進してもよい。線維芽細胞は 結合組織で豊富にみられる繊維状の細胞であって、結合組織におけるコラーゲン 源である。コラーゲンに加えられた場合、線維芽細胞は基質に対してコラーゲン と相互作用し、それら自体のコラーゲンを産生し、このため基質上で結合組織の 内生長を促進して周辺組織への移植体の完全な組込みを行う。The increase and control of connective tissue ingrowth into the stroma and subsequent epithelialization are caused by the coating on the stroma. This may be promoted by the addition of fibroblasts to the collagen. Fibroblasts are Fibrous cells found abundantly in connective tissue; collagen in connective tissue It is the source. When added to collagen, fibroblasts bind collagen to the matrix. interact with and produce their own collagen, thus increasing the amount of connective tissue on the matrix. Promote ingrowth to ensure complete integration of the graft into the surrounding tissue.

コラーゲンコーティングは放射線、紫外線、グルタルアルデヒド又はポリグリセ ロールポリグリシジルエーテル(PPE)を含めたいくつかの手段のうちいずれ で架橋してもよい。架橋はコラーゲンの密度及び強度を高め、しかもコラーゲン を基質孔内でわずかに拡張させて、基質に対するコラーゲンのアンカー固定を強 める。架橋は基質孔に対するコラーゲンコーティングの密度及び強度を高めるか 、架橋は一部の適用において不必要であるか又は望まれないかもしれない。Collagen coating is exposed to radiation, ultraviolet light, glutaraldehyde or polyglyceride. Any of several means including role polyglycidyl ether (PPE) It may be crosslinked with Cross-linking increases the density and strength of collagen, and expand slightly within the matrix pores to strengthen collagen anchoring to the matrix. Melt. Does cross-linking increase the density and strength of collagen coatings on matrix pores? , crosslinking may be unnecessary or undesirable in some applications.

基質として用いられる多孔質合成ポリマーに加えて、弾性を必要に応じて移植体 又は人工器官に与える他の合成物質も基質に用いてよい。即ち一部の適用におい ては、ある量の弾性が望まれる。11削″Z、L)移植体の拡張及び収縮が充満 及び排出時に要求される膀胱用の人工器官移植体である。使用してよい典型的弾 性物質としてはシリコーンゴム(シラスチック6)又はポリウレタンがある。In addition to the porous synthetic polymer used as the matrix, elasticity can be added to the implant if desired. Alternatively, other synthetic materials may be used as substrates to provide prosthetic devices. i.e. some applications a certain amount of elasticity is desired. 11" Z, L) Implant expansion and contraction filling and prosthetic implants for the bladder required during evacuation. Typical bullets that may be used Examples of the material include silicone rubber (Silastic 6) or polyurethane.

移植体の最良効力は周辺内臓又は組織からの粘膜上皮と移植体の管腔内表面との 結合により達成される。多数の器官の上皮内層化(ライニング)はその器官の機 能にとり重要である。例えば、気管の粘膜ライニングは肺からくずを移動させる 線毛を含む。気管又は鼻洞からの粘膜上皮の移植片は、管腔内に向けられる移植 体又は人工器官の表面に付着させてもよい。合成基質内の血管形成と上皮化とで 、管腔内移植片は最終的にその機能を果たす。The best efficacy of the graft is to combine the mucosal epithelium from the surrounding viscera or tissue with the intraluminal surface of the graft. Achieved by bonding. The epithelial lining of many organs is It is important for Noh. For example, the mucosal lining of the trachea moves debris from the lungs Contains fimbriae. Grafts of mucosal epithelium from the trachea or nasal sinuses are grafts directed into the lumen. It may also be attached to the surface of the body or prosthesis. With angiogenesis and epithelialization within the synthetic matrix , the endoluminal graft ultimately performs its function.

本発明の組込み用物質は様々な医学的又は外科的適用で適合化される。例えば、 組込み用物質は偶発的外傷又は必要な外科的切除により生しる内臓の穴を修復又 は復元するためにあるいは狭窄管腔を拡張するためにバッチの形で製造される。The incorporation materials of the present invention are suitable for a variety of medical or surgical applications. for example, Incorporation materials can be used to repair or repair holes in internal organs caused by accidental trauma or necessary surgical removal. are manufactured in batches to restore or dilate stenotic lumens.

この適用に必要な例として、通風機の前におかれた乳児の9%は声門下狭窄をお こす。これは声門か全体的に閉塞されるところまで進行することか多い。現在、 狭窄された声門を拡張させるために利用しうる人工器官はなく、肋骨軟骨か利用 されねばならない。この操作では通常声門において長時間の気管切開及び車線を 要する。急速に上皮化して全体的に組込まれるパッチの使用は声門下狭窄の更に 重度のケースで罹患率を減少させ、これらの患者で回復させる。As an example for this application, 9% of infants placed in front of a ventilator will have subglottic stenosis. Rub. This often progresses to the point where the entire glottis becomes obstructed. the current, There are no prosthetic devices available to widen the narrowed glottis, and only costal cartilage can be used. must be done. This maneuver usually involves a long tracheostomy and lane cut in the glottis. It takes. The use of a patch that rapidly epithelializes and integrates throughout can further improve subglottic stenosis. Reduce morbidity in severe cases and improve recovery in these patients.

一方、組込み用物質は端部対端部吻合か不可能な気管、食道又は腸への移植のた めチューブに形成してもよい。はとんどの食道切除は食道の癌又は心食道結合部 の癌で行われる。食道切除は一部の良性障害及び化学的熱傷にも要求される。放 射線療法又は化学療法の使用は、個別的にも又は組合せても、食道癌の治療のた め食道の外科的切除に関する断続的必要性を解消できなかった。唾液及び食物の 通過用に管腔を維持するため管腔内食道チューブの非外科的な姑息的使用は通常 食道癌の姑息的手段として不充分であり、外科的切除よりも劣ることがわかった 。管腔内チューブは最後の手段として時々用いられるか又は全(用いられない。On the other hand, incorporation materials may be used for transplantation into the trachea, esophagus or intestine where end-to-end anastomosis is not possible. It may also be formed into a tube. Most esophagectomy is performed for cancer of the esophagus or the cardiooesophageal junction. performed in many cancers. Esophagectomy is also required for some benign lesions and chemical burns. release The use of radiation therapy or chemotherapy, either individually or in combination, is recommended for the treatment of esophageal cancer. The intermittent need for surgical resection of the esophagus could not be resolved. saliva and food Nonsurgical palliative use of endoluminal esophageal tubes to preserve the lumen for passage is usually It was found to be insufficient as a palliative measure for esophageal cancer and inferior to surgical resection. . Endoluminal tubes are sometimes used as a last resort or not used at all.

食道癌の姑息的食道切除及び広域的切除は、化学療法及び放射線の使用と共に及 びそれなしで、はとんどの患者において生存期間を診断時から2年以下と非常に 限定させてしまう。限定された生存期間の予後にもかかわらず、多くの患者は移 植片の産生のため胸郭及び腹部双方の外科的侵入を含めた大きな外科的処置にな お付される。Palliative esophagectomy and wide resection for esophageal cancer are associated with the use of chemotherapy and radiation. Without this, most patients have a very short survival time of less than 2 years from the time of diagnosis. It will be limited. Despite a limited survival prognosis, many patients Major surgical procedures involving surgical invasion of both the thorax and abdomen are required for the production of explants. It will be provided.

現在、うまく切除しつる気管の最大量は張力のために6〜8anである。ネビル (Nevile)人工器官(いずれかの末端にポリエステル被覆ダクロンソーイ ングリングを有する医用グレードシリコーンコポリマーチューブ)が時々用いら れるが、但しこれは管腔内結合組織内生長又は上皮内生長をさせず、突出したり 又はフィステルを形成することが多い。これらの大きな外科的処置はほとんどの 年長又は衰弱患者において高罹患率を育するであろう。食道の人工セグメントの 使用によれば、腹部処置の必要性なしに外科的処置を胸郭及び可能であれば首に 限定することかできる。腹部処置の解消はほとんどの患者において胃腸管による 術後の栄養物摂取を即時に回復させる。それは側腹切開後腸閉塞の問題も解消し 、予後非常に限られた生存期間を有するこれらの患者に関して術後入院期間を短 縮する。Currently, the maximum amount of trachea that can be successfully resected is 6-8 ann due to tension. neville (Nevile) prosthesis (polyester-coated Dacron soy on either end) Medical grade silicone copolymer tubing (with rings) is sometimes used. However, this does not allow for intraluminal connective tissue ingrowth or epithelial ingrowth, and does not cause protrusion or Or, fistulas are often formed. Most of these major surgical procedures It will develop a high morbidity rate in older or debilitated patients. Artificial segment of esophagus According to use, surgical procedures can be performed on the thorax and possibly the neck without the need for abdominal procedures. It can be limited. Resolution of abdominal procedures is through the gastrointestinal tract in most patients. Immediately restores nutritional intake after surgery. It also solves the problem of intestinal obstruction after flank incision. , shortening the postoperative hospital stay for these patients with a very limited prognosis. Shrink.

別の態様において、本発明は全器官又は器官系の人工器官代替品として用いられ る。例えば、膀胱置換は膀胱癌の膀胱切除後に要求さ0る。報告された膀胱癌ケ ースは年間37.000〜40.000件であり、そのうち約25%は最終的に 膀胱切除を要する。加えて、子宮頚部もしくは直腸癌又は萎縮膀胱に関する神経 障害及び骨盤内容除去(選択的臓器摘出)では尿管迂回路形成又は膀胱切除を要 することか多い。膀胱切除検尿迂回路形成に関する現在の方法では通常回腸又は 結腸からの腸導管を利用する。これらの処置は高い合併症発生率を育し、しかも 外部器具の使用を必要とし、患者に泌尿器科学上ハンディキャップを負わせるこ とになる。In another embodiment, the invention is used as a prosthetic replacement for a whole organ or organ system. Ru. For example, bladder replacement is required after cystectomy for bladder cancer. Reported cases of bladder cancer There are 37,000 to 40,000 cases per year, of which about 25% ultimately Cystectomy required. In addition, nerves related to cervical or rectal cancer or atrophic bladder Obstruction and removal of pelvic contents (selective organ removal) may require ureteral diversion or cystectomy. There's a lot to do. Current methods for cystectomy and urinary diversion usually involve the ileum or Utilizes the intestinal conduit from the colon. These procedures carry high complication rates and Requires the use of external instruments and places a urological handicap on the patient. It becomes.

多数の異なる修復法か最近の数十年間で提案かつ試験されてきたか、但しほとん どの方法は感染、炎症、拒絶、突出、閉塞、漏出又はフィステル形成により失敗 したか又は不充分であるとわかった。A number of different repair methods have been proposed and tested in recent decades, although few Which methods fail due to infection, inflammation, rejection, protrusion, obstruction, leakage or fistula formation or was found to be insufficient.

わずかではあるが成功した唯一の方法は、一部の膀胱かそのまま残され、それに より移行細胞上皮の形成源を与える方法である。The only method with limited success has been to leave part of the bladder intact and to This method provides a source for the formation of more transitional cell epithelium.

本発明は周辺組織に組込めることで以前の人工器官装置に伴う結果を克服し、こ のような適用における機能的な装置を提供する。The present invention overcomes the consequences associated with previous prosthetic devices by being able to integrate into surrounding tissues; provides a functional device for applications such as

図1は多孔質合成基質について示す一部切欠斜視図である。FIG. 1 is a partially cutaway perspective view of a porous synthetic substrate.

図2は孔の開放気泡化された配置について示す基質の断面図である: 図3はコラーゲンと接触した基質の断面図である;図4は結合組織の内生長と管 腔内及び管腔外表面上の上皮層について示す移植された人工器官装置の断面図で ある:図5は管腔内表面のホスト移植上皮について示す人工器官装置の断面図で ある; 図6は人工器官パンチからなる本発明の態様の斜視図である:図7は中空チュー ブからなる本発明の態様の斜視図である:及び図8は人工膀胱器官からなる態様 の一部切欠斜視図である。FIG. 2 is a cross-sectional view of a substrate showing an open-celled arrangement of pores: Figure 3 is a cross-sectional view of the matrix in contact with collagen; Figure 4 shows connective tissue ingrowth and tubes. In a cross-sectional view of an implanted prosthetic device showing the epithelial layer on the intraluminal and abluminal surfaces. Figure 5 is a cross-sectional view of the prosthetic device showing the host graft epithelium on the endoluminal surface. be; Figure 6 is a perspective view of an embodiment of the invention comprising a prosthetic punch; Figure 7 is a hollow tube. FIG. 8 is a perspective view of an embodiment of the invention comprising a bladder prosthesis; FIG. FIG.

示された態様の詳細な説明 本発明はコラーゲンあるいはコラーゲン及び線維芽細胞の混合物のいずれかと接 触された多孔質基質物質を通常含む。自家移植片又は組織培養粘膜上皮の層はホ スト粘膜上皮の生長を促進するため物質の一表面、即ち管腔内表面に適用される 。本発明の人工器官物質は移植用パッチ、人工器官チューブ又は人工器官臓器を 含めていずれかの形をとる。基本物質及び人工器官形状は以下で更に詳細に挽物 質の基質は金属物質及び有機ポリマーを含めて組織適合性のいかなる多孔質合成 物質であってもよい。ポリエチレン又はポリウレタンのように体内で不活性であ る有機ポリマーが好ましい。好ましい態様において、基質はポリエチレン物質で あって、それから形成された実質数の不規則形状の開放気泡化さした孔を育する 。このような物質の例はボレックス・メディカル社(Porex Medica l Co、)〔フェアバーン、ジョーシア州(Fairburn、 Ga、)) で製造されたメトボア(Medpor)である。図1で示されるように、このタ イプの合成物質20における孔22は形状及び大きさが不規則な孔であって、必 ずしも直線路に限定しない。開孔幅の径は、そこを通過しうる充分に小さな物体 の径で通常測定されるように、1ミクロンの何分の一以上数百ミクロン以下であ る。本発明の目的のためには、約100〜360ミクロンの孔径か好ましい。Detailed description of the aspects shown The present invention can be applied to either collagen or a mixture of collagen and fibroblasts. Usually includes a porous matrix material that is touched. A layer of autograft or tissue cultured mucosal epithelium is applied to one surface of the substance, i.e. the intraluminal surface, to promote the growth of mucosal epithelium . The prosthetic material of the present invention can be used to implant patches, prosthetic tubes or prosthetic organs. It takes any form, including. The basic materials and prosthetic shapes are detailed below. The quality matrix can be any tissue-compatible porous synthetic material, including metallic materials and organic polymers. It may be a substance. Inert in the body, such as polyethylene or polyurethane. Organic polymers are preferred. In a preferred embodiment, the substrate is a polyethylene material. , and then a substantial number of irregularly shaped open-celled pores are formed. . An example of such a material is Porex Medica. l Co, ) [Fairburn, Georgia (Fairburn, Ga.)] Medpor, manufactured by Medpor. As shown in Figure 1, this type The pores 22 in the synthetic material 20 are irregular in shape and size, and are Zushi is not limited to straight roads either. The diameter of the aperture is small enough to allow objects to pass through it. As usually measured in the diameter of Ru. For purposes of this invention, pore sizes of about 100 to 360 microns are preferred.

基質の厚さは結合組織内生長の速度及び量に影響を与える。即ち、基質が厚くな るに従い、結合組織が生長しなければならない孔の深さは大きくなる。したかっ て、基質の厚さは約0.25 ミリメートル(mm )〜約1.50センチメー トル(ロ)の範囲内である。The thickness of the matrix affects the rate and amount of connective tissue ingrowth. That is, the substrate is thicker. As the size increases, the depth of the pores into which the connective tissue must grow increases. I wanted to The thickness of the substrate is approximately 0.25 millimeters (mm) to approximately 1.50 cm. It is within the range of Tor (Ro).

この多孔質合成ポリマーの薄いシートか図2で示されたように断面図化された場 合、孔24は湾曲した不規則な路を形成していることかわかる。実質数の孔が開 放気泡25化されているが、これは基質の両表面で孔に開口部が存在することを 意味する。しかしながら、独立気泡26化された、即ち一方の表面のみに開口部 を有するいくつかの孔が存在していてもよい。基質において不規則な多孔性は基 質に対するコラーゲン又はコラーゲン及び線維芽細胞の付着を強める。加えて、 不規則形状孔への結合組織の内生長は基質に対する組織の強度及び付着性を強め て、生体組織への人工器官の組込みを確コラーゲンを基質に付着させかつ非液体 浸透性シールを生じるほと充分に孔をコラーゲンで充填させるいずれかの方法に より基質は、コラーゲンと接触させられる。図3で示されたように、コラーゲン 28は基質30の孔を実質上充填し、基質の一方の表面上にコラーゲン32の薄 層を限定する。If a thin sheet of this porous synthetic polymer is cross-sectioned as shown in Figure 2, It can be seen that the holes 24 form a curved and irregular path. A substantial number of holes are opened. The air release bubbles 25 indicate that there are openings in the pores on both surfaces of the substrate. means. However, closed cell 26, i.e. openings on only one surface There may be several pores with . Irregular porosity in the matrix is Enhances the attachment of collagen or collagen and fibroblasts to the tissue. In addition, Ingrowth of connective tissue into irregularly shaped pores increases the strength and adhesion of the tissue to the matrix. The collagen is attached to the matrix and non-liquid to ensure the incorporation of the prosthesis into living tissue. Either method fills the pores with collagen sufficiently to create a permeable seal. The matrix is then brought into contact with the collagen. As shown in Figure 3, collagen 28 substantially fills the pores of matrix 30 and deposits a thin layer of collagen 32 on one surface of the matrix. Limit layers.

本発明の人工器官物質は血管形成される結合組織の内生長をコントロールするこ とで上皮の内生長をコントロールできる。これは基質に適用されるコラーゲンの 厚さ及び/又は密度(即ち、溶液中におけるコラーゲンの濃度)を変えることで 並びに基質の厚さを変えることで行われる。このため基質におけるコラーゲン又 はコラーゲン線維芽細胞コーティングか薄くなるほど、より速い結合組織内生長 かおきる。逆にコラーゲンコーティングかより厚い及び/又はより濃厚である場 合には、結合組織内生長は遅くなる。コラーゲンの厚さは約0.025〜約1. oommである。The prosthetic material of the present invention can control the ingrowth of vascularized connective tissue. can control the ingrowth of the epithelium. This is the collagen applied to the matrix. By varying the thickness and/or density (i.e. the concentration of collagen in solution) as well as by varying the thickness of the substrate. Therefore, collagen or The thinner the collagen fibroblast coating, the faster connective tissue ingrowth I can smell it. Conversely, if the collagen coating is thicker and/or more concentrated, In some cases, connective tissue growth slows down. The thickness of collagen is about 0.025 to about 1. It's oomm.

結合組織内生長か速くなるほど、上皮生長も速くなる。したかって、縫合箇所に おけるより大きな結合組織内生長及び上皮生長はその箇所においてより薄く濃厚 でないコラーゲン層又はより薄い基質によって促進される。逆に、内側で過剰の 結合組織生長により生じる管腔の狭窄はより厚くて濃厚なコラーゲン層又はより 厚い基質で回避される。これで上皮形成化を続けさせることかできる。コラーゲ ンの吸収速度とその後の結合組織の内生長は、コラーゲン又はコラーゲン及び線 維芽細胞が基質の孔において適用される深さを変えることて調節してもよい。コ ラーゲン吸収は下記のようなコラーゲンの架橋ても調節される。The faster the connective tissue ingrowth, the faster the epithelial growth. At the suture site Greater connective tissue ingrowth and epithelial growth are thinner and denser at that location. facilitated by a thinner collagen layer or thinner matrix. On the contrary, there is excess inside Luminal narrowing caused by connective tissue growth results in a thicker, denser collagen layer or more Avoided in thick substrates. This allows epithelialization to continue. collage The absorption rate and subsequent connective tissue ingrowth of collagen or collagen and Adjustment may be made by varying the depth to which the fibroblasts are applied in the pores of the matrix. Ko Collagen absorption is also regulated by cross-linking of collagen as described below.

図4はとのようにしてコラーゲン36が基質42の孔40中に生長する結合組織 38で置換されるかについて示す。結合組織の血管形成44は上皮46が生長す るように組織の生存力を保つ。FIG. 4 shows connective tissue in which collagen 36 grows into pores 40 of matrix 42. 38 will be replaced. Connective tissue angiogenesis 44 occurs as epithelium 46 grows. maintain the viability of the organization.

いかなるタイプの非抗原性コラーゲンも基質を被覆するために用いてよい。好ま しくはアテロコラーゲン(コーケン、東京、日本)か用いられる。アテロコラー ゲンは最強の抗原決定基を欠いた酵素可溶化コラーゲンであり、その結果体に対 する抗原活性をほとんど有しない。アテロコラーゲンは生分解性であり、有意な 炎症反応をほとんど示さず、その粘性のために基質の孔を封じる上で特に適して いる。Any type of non-antigenic collagen may be used to coat the matrix. Like Alternatively, atelocollagen (Koken, Tokyo, Japan) may be used. Atelocholla Gen is an enzyme-solubilized collagen that lacks the strongest antigenic determinants, resulting in a It has almost no antigenic activity. Atelocollagen is biodegradable and has significant It exhibits little inflammatory response and is particularly suitable for sealing pores in matrices due to its viscosity. There is.

コーケン社(161日本、東京都新宿区下落合3丁目5−18)から購入したア テロコラーゲンは約40°Fで冷蔵室中その乾燥形で保たれる。乾燥アテロコラ ーゲンは適切な大きさく通常20−)のスクリューキャップ付ガラスバイアル中 で0. OI M CHsCOOH(氷酢酸)に溶解される。Purchased from Koken Co., Ltd. (161 Japan, 3-5-18 Shimoai, Shinjuku-ku, Tokyo). Telocollagen is kept in its dry form in a refrigerator at about 40°F. dried aterocola -gen in an appropriately sized glass vial with a screw cap, usually 20 mm. So 0. OI M Dissolved in CHsCOOH (glacial acetic acid).

前記のように、コラーゲン吸収の速度は基質に適用されるコラーゲンの密度を変 えることで調節される。この開示で用いられる密度とは溶液中におけるコラーゲ ン分子の濃度に関する。コラーゲンの濃度は1〜5%で変わりうる。As mentioned above, the rate of collagen absorption varies with the density of collagen applied to the matrix. It is adjusted by increasing the amount of water. Density as used in this disclosure refers to collagen in solution. related to the concentration of molecules. The concentration of collagen can vary from 1-5%.

例えば、コラーゲンの5%溶液は可溶化コラーゲンlグラムを0、10 M C HICOOHl 9ミリリツトル(−)に加えることで調製される。その溶液は コラーゲンを完全に溶解させるため約24時間維持される。溶液はこの期間中2 〜3回攪拌される。次いてコラーゲンは冷蔵室内で貯蔵される。コラーゲンか溶 解されると、汚染の徴候か存在しないかぎり、その溶液は調製後4か列以内に使 用することかできる。溶液中におけるコラーゲンの濃度は装置の望ましい使用に 従い決定される。このためコラーゲンの速い溶解か必要である場合には、より低 率のコラーゲンか用いられる。より遅い結合組織内生長か要求されるほど、より 高いコラーゲン率か用いられる。For example, a 5% solution of collagen contains 1 gram of solubilized collagen at 0.10 M C Prepared by adding 9 milliliters (-) of HICOOHl. The solution is It is maintained for about 24 hours to completely dissolve the collagen. The solution is 2 during this period. Stir ~3 times. The collagen is then stored in a refrigerator. Collagen or dissolved Once understood, the solution should not be used within 4 days after preparation unless there are signs of contamination. It can be used. The concentration of collagen in the solution depends on the desired use of the device. determined accordingly. Therefore, if faster dissolution of collagen is required, lower percentage of collagen is used. The slower connective tissue ingrowth is required, the more A high collagen percentage is used.

アテロコラーゲンを基質と接触させる1つの方法は下記実施例で記載された方法 により得られる 実施例A− 約100〜300マイクロメーターの孔径を有するメトボア(ボレ、クス社、フ ェアバーン、ジョーシア州)の片をハサミで2センチメートル(on)X4an のほぼパッチサイズに切断した。バッチを秤量したところ3.14 gであった 。等量の調製された5%可溶化コラーゲン14gを秤量した。コラーゲンをスパ チュラでメトボア上に塗布して、メトボアの上面を被覆した。被覆されたメトボ アを直ちに5%NaCf溶液10〇−中に1時間浸漬した。コラーゲンは濁りだ し、コラーゲンのランダムな非平行フィブリルを形成し始めた。One method of contacting atelocollagen with a matrix is as described in the Examples below. obtained by Example A- Metobore (Bole, Kuss, Fufu) with a pore size of approximately 100 to 300 micrometers Using scissors, cut a 2cm (on) x 4an piece of It was cut to approximately the size of a patch. When the batch was weighed, it was 3.14 g. . An equal amount of 14 g of prepared 5% solubilized collagen was weighed. collagen spa It was applied onto the methobore with a chula to cover the top surface of the methoboa. coated methobo The sample was immediately immersed in a 5% NaCf solution for 1 hour. Collagen is cloudy and began to form random non-parallel fibrils of collagen.

一方、被覆されたメトボア片はメトボア片を被覆した直後にリン酸緩衝液(PB S)100−に浸漬してよい。この操作はコラーゲンの自然又は平行配置フィブ リルを形成する。On the other hand, the coated Methobore pieces were prepared using phosphate buffer (PB) immediately after coating the Methobore pieces. S) May be immersed in 100-. This operation allows collagen to form natural or parallel fibrils. Form a rill.

基質へのコラーゲン付着 不規則多孔性の多孔質基質へのコラーゲン接触は、孔の入り組んだ空洞中に浸透 するコラーゲンのために基質へのコラーゲンのアンカー固定を増強する。この機 械的アンカー固定の結果として、コラーゲン及び基質間のさらなる結合は不要で ある。更にアテロコラーゲンが下記実施例Cで示されたように培地中で線維芽細 胞と混ぜられた場合、線維芽細胞培地は通常ゼラチン物質のアテロコラーゲンを 生し、稠度の点で更に液体化させる。液化状態における基質へのアテロコラーゲ ン及び線維芽細胞の接触は基質の不規則孔中に浸透しうるアテロコラーゲンの能 力を増加させ、このためさらなる結合は不要である。Collagen attachment to matrix Collagen contact with irregular porous matrix penetrates into the intricate cavities of the pores. for collagen to enhance anchoring of collagen to the matrix. This machine As a result of mechanical anchoring, no further bonding between collagen and matrix is required. be. Furthermore, atelocollagen is added to fibroblasts in culture as shown in Example C below. When mixed with cells, the fibroblast culture medium usually contains the gelatinous material atelocollagen. raw and further liquefied in consistency. Atelocollagen to substrate in liquefied state The contact between cells and fibroblasts is due to the ability of atelocollagen to penetrate into the irregular pores of the matrix. increases the force so that no further bonding is required.

コラーゲンの架橋 2.5〜5%アテロコラーゲンは通常非常に可溶性であって、液体環境中では自 身を維持しない。アテロコラーゲンの溶解度を減少させかつ体内で吸収される前 にそれを長く持続させるため、それは架橋させてもよい。架橋はコラーゲンポリ マー鎖間の結合を誘導することによりコラーゲンの密度を増加させる。架橋度か 高くなるほど、コラーゲンはより密でかつより低生分解性である。このため、コ ラーゲンの吸収速度はコーティング中のコラーゲン濃度、これらコラーゲン鏡開 の架橋量及び基質における孔の多孔度又は気孔率に依存していると認識すること ができる。Collagen crosslinking 2.5-5% Atelocollagen is usually very soluble and does not naturally dissolve in liquid environments. not maintain oneself. Reduces the solubility of atelocollagen and before it is absorbed in the body To make it last longer, it may be crosslinked. Crosslinking is collagen poly Increases the density of collagen by inducing bonding between mer chains. Is it the degree of crosslinking? The higher it is, the denser and less biodegradable the collagen is. For this reason, The absorption rate of collagen depends on the concentration of collagen in the coating, and the Recognize that it depends on the amount of crosslinking and the porosity or porosity of the pores in the substrate. Can be done.

架橋は当業界で周知の技術であり、放射線、紫外線又はグルタルアルデヒドのよ うな化学物質を含めた多くの方法で実施できる。Crosslinking is a technique well known in the art and can be achieved by radiation, ultraviolet light, or glutaraldehyde. This can be done in many ways, including using different chemicals.

グルタルアルデヒドの使用による架橋の誘導方法はり、T、チェノ及びM、E、 ニムニ、“グルタルアルデヒドIによるタンパク質の架橋メカニズム:モデル化 合物との反応″、第10巻、コネクティブ・ティシュ・リサーチ、第187−9 9頁、■982年CD、T。Method for inducing crosslinking by the use of glutaraldehyde Hari, T., Cheno and M.E. Nimni, “Mechanism of protein cross-linking by glutaraldehyde I: modeling. "Reaction with Compounds", Volume 10, Connective Tissue Research, Volume 187-9 9 pages, ■982 CD, T.

Cheung及びM、E、Nimn1. ”Mechanism of Cro sslinking of Proteinsby Glutaraldehy de r:Reaction with Model Compounds、” lOConnect。Cheung and M.E., Nimn1. “Mechanism of Cro sslinking of Proteins by Glutaraldehy der:Reaction with Model Compounds,” lOConnect.

Ti5s、 Res、 187−99 (1982) )並びにD T、チェノ 及びM、Eニムニ、“グルタルアルデヒド■によるタンパク質の架橋メカニズム :モノマー及びポリマーコラーゲンとの反応、“第10巻、コネクティブ・ティ ツュ・リサーチ・第201−16頁、1982年で記載されており、それらの内 容は参考のためここに組込まれる。放射線の使用による架橋の誘導方法はRJ、 デビッドソン及びり。Ti5s, Res, 187-99 (1982)) and D.T., Cheno and M., E. Nimni, “Mechanism of protein cross-linking by glutaraldehyde ■. : Reaction with monomeric and polymeric collagen, “Volume 10, Connective T. Tsu Research, pp. 201-16, 1982, and among them: Contents are incorporated herein for reference. The method of inducing crosslinking by the use of radiation is RJ, Davidson and Tori.

Rクーパー、“酸可溶性コラーゲンに関する紫外線照射の効果“、第105巻、 バイオケミカル・ジャーナル、第965−69頁、1967年(R,J、 pa vidson and D、R,Cooper、ゴhe Effect ofU ltraviolet Irradiation on Ac1d−5olub le ColCo11a、” 105 Bioch但し」ユ、 965−69  (1967) ) D、 R,クーパー及びR,J デビッドソン、“可溶性コ ラーゲンに関する紫外線照射の効果“、第97巻、バイオケミカル・ジャーナル 、第139−47頁、1965年並びにT ミャタ、T ソンデ、A、L、ルピ ン及びに、 H,ステンゼル、“天然及びテロペプチド欠乏コラーゲンに関する 紫外線照射の・アクタ、第672−680頁、1971年(T、入1i ya  ta、 T、 5onde。R. Cooper, “Effects of UV irradiation on acid-soluble collagen”, Vol. 105, Biochemical Journal, pp. 965-69, 1967 (R, J, pa vidson and D, R, Cooper, Go he Effect of U ltraviolet Irradiation on Ac1d-5olub le ColCo11a, “105 Bioch However” Yu, 965-69 (1967)) D. R. Cooper and R. J. Davidson, “Soluble CO “Effect of UV irradiation on Lagen”, Volume 97, Biochemical Journal , pp. 139-47, 1965 and T. Myata, T. Sonde, A.L., Lupi. N. and H. Stenzel, “On natural and telopeptide-deficient collagen. Acta of ultraviolet irradiation, pp. 672-680, 1971 (T, entry 1i ya) ta, T, 5onde.

A、L、 Rubin、 and K、H,5tenze1. ’Effect s of Ultraviolet 1rradiation on Nati ve and Te1opeptide−poor ColCo11a、 ”  229 Biochi々の内容は参考のためここに組込まれる。A, L, Rubin, and K, H, 5tenze1. 'Effect s of Ultraviolet 1rradiation on Nati ve and Te1opeptide-poor ColCo11a,” The contents of 229 Biochi are incorporated herein for reference.

誘導された架橋の例は以下である。Examples of induced crosslinks are:

実施例B: 2anX4anの測定する基質を(前実施例Aで記載された)コラーゲンで被覆 し、被覆された基質パッチを5%NaC1溶液に浸漬することにより沈降させた 。グルタルアルデヒド架橋溶液100ミリリツトルはMeOH50ml及びl( ,050−を−緒に加えることで調製した。その溶液を磁気攪拌プレート上15 0−エルシンマイヤーフラスコ中で維持した。溶液のpHはI N NaOHO ,5ydを加えることで11.5に調整した。25%グルタルアルデヒド40ミ リリツトルを溶液に加え、pHをI N NaOHO,Irn1の添加で12に 調整した。溶液をプレート上で1時間ゆっくりと攪拌した。Example B: Coating the substrate to be measured for 2anX4an with collagen (as described in previous Example A) and precipitated the coated substrate patch by immersing it in a 5% NaCl solution. . 100 ml of glutaraldehyde crosslinking solution is mixed with 50 ml of MeOH and 1 ( ,050- was prepared by adding . Transfer the solution onto a magnetic stirring plate for 15 minutes. 0-Ersin Meyer flasks. The pH of the solution is IN NaOHO , 5yd was added to adjust it to 11.5. 25% glutaraldehyde 40mg Add Little to the solution and bring the pH to 12 by adding IN NaOHO, Irn1. It was adjusted. The solution was stirred slowly on the plate for 1 hour.

コラーゲン中NaClで沈降直後に、バッチをキャップ付バイアル内のグルタル アルデヒド溶液中に直ちにいれた。パッチを溶液中で完全に浸水した。Immediately after sedimentation with NaCl in collagen, the batch was added to the glutarium in a capped vial. Immediately placed in aldehyde solution. The patch was completely submerged in the solution.

バイアルを25〜26°Cで振盪水浴中に2時間いれ、高度の架橋を形成させた (コラーゲンの速い溶解か必要な場合はど少ない時間で済む)。The vials were placed in a shaking water bath at 25-26°C for 2 hours to form a high degree of crosslinking. (It takes less time if fast dissolution of collagen is required).

2時間経過後、バッチをグルタルアルデヒド溶液から取出し、アジ化ナトリウム (NaNs)含有リン酸緩衝液100−にいれた(リン酸緩衝液はリン酸カリウ ム(KH,PO4) 0.272 g/12. リン酸ナトリウム(NaJPO −) 1.136 g / l及び塩化ナトリウム(NaC1)8.474g/ j7を蒸留水250mj’に加え、しかる後1000m/の溶液を得るために充 分な量の蒸留水を加えることで調製される。これにアジ化ナトリウム(NaNf ) I g/ lを加える)。After 2 hours, remove the batch from the glutaraldehyde solution and add sodium azide. (NaNs) containing 100% of phosphate buffer (phosphate buffer is potassium phosphate). Mu (KH, PO4) 0.272 g/12. Sodium phosphate (NaJPO -) 1.136 g/l and sodium chloride (NaC1) 8.474 g/l Add j7 to 250 mj' of distilled water and then fill to obtain a solution of 1000 mj'. Prepared by adding sufficient amount of distilled water. This is added to sodium azide (NaNf ) Add I g/l).

PBS及びアジ化ナトリウム中のバッチを振盪水浴中25〜26°Cで5〜7日 間保った。溶液は最初の3日間にわたり1日2回、しかる後1日歩なくとも1回 変えた。この溶液交換操作を行って、コラーゲン中に残存していたかもしれない 未反応グルタルアルデヒドを除去した。Batch in PBS and sodium azide in a shaking water bath at 25-26 °C for 5-7 days. I paused. The solution should be administered twice a day for the first 3 days, then once a day without walking. changed. After performing this solution exchange operation, it may have remained in the collagen. Unreacted glutaraldehyde was removed.

この期間の最後にバッチをアジ化ナトリウム含有塩水溶液中で保ち、外科移植の 24時間前まで冷蔵室中で保った。At the end of this period, the batch is kept in a saline solution containing sodium azide and used for surgical implantation. It was kept in the refrigerator for up to 24 hours.

移植の約24時間前に、バッチをアジ化ナトリウム−温水浴から取出した。次い でそれを無菌塩水含有無菌容器中にいれた。塩水は無菌技術を用いて最初の12 時間に5〜6回変えた。最終交換はセファジル溶液1g/100O+t+j’含 有無菌塩水中にであった。バッチはこの時間中冷蔵室内で貯蔵した。Approximately 24 hours before implantation, the batch was removed from the sodium azide-warm water bath. next It was placed in a sterile container containing sterile saline. Brine the first 12 minutes using aseptic technique. I changed the time 5-6 times. The final exchange included 1 g of cefadil solution/100 O + t + j'. It was in bacteriostatic saline. The batch was stored in the refrigerator during this time.

この時点で前記操作により製造された装置は移植準備できたと考えられ、無菌技 術を用いて取扱われる。At this point, the device manufactured by the above procedure is considered ready for implantation and is It is handled using techniques.

線維芽細胞 基質は前記のようにアテロコラーゲン単独と接触させても又はアテロコラーゲン 及び線維芽細胞の混合物が基質に適用されてもよい。fibroblast The matrix can be contacted with atelocollagen alone or with atelocollagen as described above. and fibroblasts may be applied to the substrate.

線維芽細胞は輪紋状て密な繊維状の弾性組織のようなフィブリル組織及び膜の全 タイプに存在し、コラーゲンフィブリル源である。組織培養された線維芽細胞を アテロコラーゲンに加え、しかる後多孔質基質と接触さぜる。線維芽細胞はそれ ら自身のコラーゲンを産生し、アテロコラーゲンを収縮させ、更に密にさせる。Fibroblasts are ring-shaped dense fibrous elastic tissue-like fibrillar tissues and entire membranes. type and is a source of collagen fibrils. tissue cultured fibroblasts Atelocollagen is added and then brought into contact with the porous matrix. Fibroblasts are that They produce their own collagen, causing atelocollagen to contract and become more dense.

この収縮及び密変増加はコラ−ケン−線維芽細胞コーティングを基質の孔に更に 強く付着させるため、架橋は不要である。加えて、架橋は生存線維芽細胞を損傷 させるか又は殺してしまう。基質内において線維芽細胞で形成される生存細胞内 容物は結合組織の内生長を高める。基質内におけるこの生存膜も架橋されたアテ ロコラーゲ〉より速く基質に栄養素を運ぶ。栄養素の運搬は結合組織の生長にと り重要であり、したかって無粘膜又は組織培養移植片の更に良い生存性を保証す る。This shrinkage and increased density causes the Kolaken-fibroblast coating to further penetrate into the pores of the matrix. No crosslinking is necessary for strong adhesion. In addition, cross-linking damages viable fibroblasts or kill them. Intraviable cells formed by fibroblasts within the stroma The contents increase the ingrowth of connective tissue. This viable membrane within the matrix also contains cross-linked attenuators. Locolage> Transports nutrients to the substrate faster. Transport of nutrients is essential for connective tissue growth. is important and therefore ensures better survival of mucosal or tissue culture grafts. Ru.

多孔質基質をコラーゲン及び線維芽細胞混合物と接触させる1つの方法が下記実 施例で示されている。One method of contacting the porous matrix with the collagen and fibroblast mixture is as described below. Illustrated in the examples.

イヌ口腔粘膜を採取し、リン酸緩衝液(PBS)lリットル(1)で洗浄し、ナ イフで約2anX2anの小外植片に切断した。これらの外植片を25立方ロフ ラスコの上部継目上におき、lO%牛脂児血清(F B S)含有ダルベツコ変 性イーグル培地(DMEM)9mi+を供給した。The dog's oral mucosa was collected, washed with 1 liter (1) of phosphate buffered saline (PBS), and then Once removed, the cells were cut into small explants of approximately 2an x 2an. These explants are 25 cu. Place it on the upper seam of the lasco and add 10% tallow serum (FBS) containing Dulbecco's modified 9mi+ of sexual Eagle's medium (DMEM) was supplied.

ダルベツコ変性イーグル培地はニューヨーク州、グランドアイランドのギブコ・ ラボ(Gibco Labs)から購入される組織培養培地である。その培地は 蒸留脱イオン水1000yd、DMEM粉末(#430−1600、ギブコカタ ログ)10グラム(g)、炭酸水素ナトリウム3;7g、j!−グルタミン0. 3g5N−2−ヒトロキシエチルビベラジンーN′−2−エタンスルホン酸(H EPES)4、76 g、アンホテリシンBZ5■/ 10.5−及びペニシリ ン−ストレプトマイシン10−を−緒に混ぜることで調製される。混合液のpH をIMNaOHで7,3に高める。混合液を無菌技術で濾過する。次いてユタ州 ローガンのハイクローン・ラボ(Hyclone Labs)から購入した牛胎 児血清(FBS)100−を加える。牛胎児血清は牛胎児血液から抽出された血 清であり、それは細胞増殖用の栄養培地を与える。Dulbecco's Modified Eagle Medium is available from Gibco, Grand Island, New York. Tissue culture medium purchased from Gibco Labs. The medium is 1000 yd of distilled deionized water, DMEM powder (#430-1600, Gibko Kata) Log) 10 grams (g), sodium bicarbonate 3; 7g, j! -Glutamine 0. 3g5N-2-hydroxyethylbiverazine-N'-2-ethanesulfonic acid (H EPES) 4,76 g, amphotericin BZ5■/10.5- and penicillin It is prepared by mixing together streptomycin and streptomycin. pH of mixture Increase to 7.3 with IMNaOH. Filter the mixture using aseptic technique. Then Utah Cow fetuses purchased from Hyclone Labs in Logan Add 100 - of baby serum (FBS). Fetal bovine serum is blood extracted from fetal bovine blood. It provides a nutrient medium for cell growth.

これらのフラスコを培地かフラスコの継目のみにくるよう(=やや傾斜させて3 7°摂氏(C)でインキュベートする。線維芽細胞は外植片から生長して、フラ スコ内に下方移動し始める。線維芽細胞が充分に増殖した3週間後に、細胞を培 養皿に移し、DME培地中で7日間増殖させる。Place these flasks so that only the culture medium or the seams of the flasks are located (= slightly tilted 3 Incubate at 7° Celsius (C). Fibroblasts grow from the explant and It begins to move downward into SC. After 3 weeks when the fibroblasts have sufficiently proliferated, culture the cells. Transfer to a culture dish and grow in DME medium for 7 days.

線維芽細胞コーティング メトポア1多孔質合成基質の2anX3anパツチをピペットにより適用される 1、25%アテロコラーゲンl−で被覆する。被覆されたバッチを37°Cで1 6〜24時間放置して、基質の孔をソールする。fibroblast coating A 2anX3an patch of Metopore 1 porous synthetic matrix is applied by pipette. 1. Cover with 25% atelocollagen l-. The coated batch was heated at 37°C for 1 Leave for 6-24 hours to sole the pores in the substrate.

次いで、約4X10’線維芽細胞含有1,25%アテロコラーゲンll711を 各バッチ上にピペットで移す。次いで被覆されたバッチをIO%FBS含有DM E5rnlにいれる。線維芽細胞か増殖するにつれて、それらはそれら自身のコ ラーゲン産生を始める62週間後、バッチを漏出に関して試験する。これは培地 皿上のリング上にバッチをおいて行う。DMEMo、5Eリリツトルをバッチ上 にピベツl□て移し、バッチを5分間観察して、バッチからのDMEM!出を検 出する。Then about 4X10' fibroblasts containing 1,25% atelocollagen 11711 were added. Pipette onto each batch. The coated batch was then treated with DM containing IO% FBS. Put it in E5rnl. As fibroblasts proliferate, they develop their own core. After 62 weeks of starting lagen production, the batch is tested for leakage. This is a medium Place the batch on a ring on a plate. DMEMo, 5E Little on batch Transfer the DMEM from the batch to a container and observe the batch for 5 minutes. Check the output put out

何らかの漏出か観察された場合には、更に1.25%コラーゲン及び線維芽細胞 1dを前記のように各バッチに加える。漏出に関する試験はバッチかノールされ るまで2週間毎に行う。If any leakage is observed, add an additional 1.25% collagen and fibroblasts. Add 1d to each batch as above. Tests for leaks can be batch or normed. Do this every two weeks until the

最皮及び内皮起源の多くのタイプの細胞は、コラーゲンのようなH要様細胞外マ トリックス上におかれた場合、細胞増殖、細胞分化及び遺伝子発現か促進される ような培養環境により増殖する。このような増殖及び分化機能はヒト肝癌及びユ ーイング肉腫、大動脈、肺動脈、へそ血管、大動脈からの牛血管内皮、副腎皮質 、脳皮質、黄体からの牛毛管内皮並びに鼻ポリープからのヒト上部呼吸上皮を用 いて証明された。このような細胞は以前に培養で成功的試みに抵抗した。しかし ながら、コラーゲン上の血清補充培養物中におかれた場合、それらはしっかりと 付着し、移動し、増殖して、平坦な非重複の密に並列された上皮層を形成する。Many cell types of epithelial and endothelial origin contain H-like extracellular matrix such as collagen. When placed on Trix, cell proliferation, cell differentiation and gene expression are promoted. Proliferates in such a culture environment. Such proliferation and differentiation functions are present in human liver cancer and human liver cancer. -Ing sarcoma, aorta, pulmonary artery, umbilical vessel, bovine vascular endothelium from aorta, adrenal cortex , using bovine capillary endothelium from the brain cortex and corpus luteum, and human upper respiratory epithelium from nasal polyps. It has been proven that Such cells have resisted previous successful attempts in culture. but However, when placed in serum-supplemented cultures on collagen, they remain firmly They attach, migrate, and proliferate to form flat, nonoverlapping, closely juxtaposed epithelial layers.

粘液分泌、線毛移動、組織特異的抗原の発現及び他の類似特徴のような機能的特 徴が証明される。通常このような培養物はこれまでに測定された各方法における インビボ(生体内)対応物と似ている。Functional characteristics such as mucus secretion, ciliary migration, expression of tissue-specific antigens and other similar characteristics signs are proven. Typically, such cultures have a Similar to its in vivo counterpart.

口腔粘膜上皮のような上皮組織の自家移植片の使用は人工器官を短期間で生理学 上機能的にすることにより人工器官装置をホスト組織に更に容易に組込むことが できることは明らかである。ここで用いられる“自家″とはホスト内臓又は周辺 m織から摘出されたドナー組織に関する。組織は同様の個体から摘出してもよく 、その場合には外科的処置が行われる。図5はコラーゲン54及び線維芽細胞5 6で被覆された基質52上における移植片上皮50の配置について示す。The use of autografts of epithelial tissue, such as oral mucosal epithelium, improves the physiology of the prosthesis in the short term. By making it more functional, the prosthetic device can be more easily integrated into the host tissue. It is clear that it can be done. “Autologous” as used here refers to internal organs or surrounding areas of the host. The present invention relates to donor tissue extracted from m-tissue. Tissue may be removed from similar individuals. , in which case surgical treatment is performed. Figure 5 shows collagen 54 and fibroblasts 5 6 shows the placement of a graft epithelium 50 on a substrate 52 coated with 6.

自家移植片上皮は直接的に又はインビトロ培養でコラーゲン又はコラーゲン線維 芽細胞被覆基質に適用される。これら2通りの操作は実施例E及び実施例Fで各 々示されている。Autograft epithelium can be directly or in vitro cultured with collagen or collagen fibers. Applied to blast coated substrates. These two operations are performed in Example E and Example F. are shown.

実施例E 移植準備のできたコラーゲン被覆基質を外科用ボウル内にいれる。Example E Place the collagen-coated matrix, ready for implantation, into the surgical bowl.

次いで基質を患者から採取した血液で前凝固させる。口腔又は呼吸粘膜の1 /  2 an幅片を患者から採取する。その片を吸収性縫合糸で基質の管腔表面上 に縫合する。管腔表面は移植片を保護するためフィブリングルのような合成生分 解性物質で被覆してもよい。基質を修復される領域で適所に縫合する。移植操作 後、装置をダルベツコ組織培地で保湿する。The matrix is then precoagulated with blood taken from the patient. Oral or respiratory mucosa 1/ 2. Collect an an-wide piece from the patient. Place the piece on the luminal surface of the stroma with absorbable sutures. suture to. The luminal surface is coated with synthetic materials such as fibrings to protect the graft. It may also be coated with a degradable substance. The matrix is sutured in place in the area to be repaired. transplant operation Afterwards, the device is moisturized with Dulbecco's tissue medium.

実施例F: メドボア(ボレックス社、フェアバーン、ジョーシア州)のパンチをO,1%セ ファジル含有塩水中に約48時間浸漬して、それらか貯蔵されていた残留エタノ ール又はアジ化ナトリウムを除去する。Example F: Medbore (Bolex, Fairburn, Georgia) punch at O.1% They were immersed in brine containing fazil for about 48 hours, and the residual ethanol that had been stored was removed. Remove alcohol or sodium azide.

次いでそれらをダルベツコ変性イーグル組織培地中で約24時間かけて前平衡化 させる。They were then pre-equilibrated in Dulbecco's modified Eagle tissue medium for approximately 24 hours. let

外科的に摘出されたイヌ口腔又は尿管皮組織をリン酸緩衝液(PBS)で洗浄し 、真皮及び上皮の最上部分を500μmで切断するようにセントされたダーマト ーム(スライサー)で取出す。下部真皮は捨てる。次いで上皮−真皮を約1〜2 叩2の小さな外植片に切断する。これらの外植片をバッチのコラーゲン被覆側又 は管腔内表面となる側におく(約5移植片/aIり。次いてバッチを60X15 暉組織培養皿にいれ、組織培養培地〔ケラチノサイト増殖培地(KGM)、クロ ーンティックス社(C1onetics Corp、)、サンジエゴ、カリフォ ルニア化〕 5薊を供給する。尿管皮の場合には、KGMはKGM90% lO %FBS含有DME 10%の比率でダルベツコ変性イーグル培地(DMEM) と混ぜる。バッチを37°で14日間培養する。その時点で、バッチは移植する ために十分上皮化されている。The surgically removed dog oral cavity or ureteral tissue was washed with phosphate buffered saline (PBS). , dermatome centrated to cut the uppermost part of the dermis and epithelium at 500 μm. Remove with a slicer. Discard the lower dermis. Next, the epithelium-dermis is about 1-2 Cut into 2 small explants. Place these explants on the collagen-coated side of the batch. on the side that will be the intraluminal surface (approximately 5 grafts/aI).Then the batch is Place in a tissue culture dish and add tissue culture medium [keratinocyte growth medium (KGM), C1onetics Corp., San Diego, Calif. Luniaization] Supply 5 yam. In the case of ureteric skin, KGM is KGM90% lO Dulbecco's modified Eagle medium (DMEM) with a ratio of 10% DME containing % FBS Mix with. The batch is incubated at 37° for 14 days. At that point, the batch will be ported It is well epithelialized.

人工器官か移植されると、コラーゲン又はコラーゲン−線維芽細胞層は細菌又は 汚染か基質中に浸透することを妨げ、同時に結合組織(肉芽組織)を周辺組織か ら基質中に生長させる。図4で示されるように、コラーゲン、コラーゲン/線維 芽細胞層か侵入結合組織で生分解されたときまでに、孔40は肉芽組織38(未 成熟結合組織)の殺菌層で充填される。この肉芽組織は生存する上で上皮にとり 及び縫合部位から内生長する上で上皮にとり必要な血液供給を行う。コラーゲン 線維芽細胞は上皮を生存かつ生長させるために周辺組織から栄養素の浸透輸送も 行う。When the prosthesis is implanted, the collagen or collagen-fibroblast layer becomes infected with bacteria or It prevents contamination from penetrating into the matrix and at the same time removes connective tissue (granulation tissue) from surrounding tissue. grown in a substrate. As shown in Figure 4, collagen, collagen/fiber By the time the blastema layer has been biodegraded by the invading connective tissue, the pores 40 are filled with granulation tissue 38 (undeveloped). filled with a sterile layer of mature connective tissue). This granulation tissue is essential to the epithelium in order to survive. and provides the necessary blood supply to the epithelium as it grows inward from the suture site. collagen Fibroblasts also osmotically transport nutrients from surrounding tissues to keep the epithelium alive and growing. conduct.

人工器官形状 人工器官の基本物質は潰瘍領域の復元用又は全器官の置換用にかなり多数の装置 に形成することができる。−態様において、その物質は図6で示されたようなパ ンチ、即ち単層のコラーゲン被覆基質に形成される。この具体的なa様は組織又 は内臓の端部対端部吻合が不可能な組織又は内臓において損傷領域を復元するた めに用いられる。バッチは復元される領域で示されるようにいがなる形状又は大 きさで作ってもよい。図6は例えば一部コラーゲン62のフィルムで被覆され、 このため移植準備のできた丸形片の多孔質基質6゜について示す。prosthetic shape The basic material of prosthesis is a fairly large number of devices for reconstruction of ulcerated areas or for replacement of whole organs. can be formed into - In embodiments, the material is a compound as shown in FIG. ie, a single layer of collagen-coated matrix. This specific person a is an organization or is used to restore damaged areas in tissues or organs where end-to-end anastomosis is not possible. It is used for The batch is shaped or sized as indicated by the area being restored. You can also make it from scratch. For example, FIG. 6 is partially covered with a film of collagen 62, For this purpose, a round piece of porous matrix 6° is shown ready for implantation.

もう1つの態様において、図7で示されたようなチューブ64は多孔質合成基質 から形成され、コラーゲン66又はコラーゲン及び線維芽細胞と接触させること ができる。自家移植片上皮層も追加してよい。こうして形成されたチューブは、 端部対端部吻合が過剰な組織切除により不可能となった気管、食道を復元するか 又は腸管の長さを変えるために用いることができる。In another embodiment, the tube 64 as shown in FIG. 7 is a porous synthetic substrate. formed from and contacted with collagen 66 or collagen and fibroblasts. Can be done. An autograft epithelial layer may also be added. The tube thus formed is Is it possible to restore the trachea and esophagus where end-to-end anastomosis has become impossible due to excessive tissue removal? Or it can be used to change the length of the intestinal tract.

更にもう1つの態様において、基本物質は天然臓器の置換のため膀胱のような人 工器官に形成してもよい。図8は一部切欠いて示す多孔質合成基質70から形成 された膀胱68について示す。この態様においては、図8で示されたように例え ば膀胱粘膜組織76の自家層を管腔内表面に付着させることが望ましい。患者の 尿管72及び尿道74か人工器官に縫合された。In yet another embodiment, the base material is used to replace a natural organ, such as the bladder. It may also be formed into a prosthesis. FIG. 8 is formed from a porous synthetic substrate 70 shown partially cut away. The bladder 68 shown in FIG. In this embodiment, the analogy shown in FIG. For example, it is desirable to attach an autologous layer of bladder mucosal tissue 76 to the intraluminal surface. patient's The ureter 72 and urethra 74 were sutured to the prosthesis.

様々な態様の装置の移植に関する操作技術及び装置の組込み結果について示す実 施例は以下で記載されている。Examples of operating techniques and results of device integration related to various aspects of device implantation. Examples are described below.

実施例■: 気管又は声門パッチ移植体 患者の気管又は声門を縦に切開する。欠損と同じ縦方向の長さを存するバッチを 選択する。欠損幅はバッチ当てされる領域の大きさで決定される。5%コラーゲ ン、25%コラーゲン、2.5%コラシーン/線維芽細胞及び2.5%コラシー ン/線維芽細胞と口腔粘膜組織培養物のコーティングを育する2×3−のパンチ を移植した。粘膜を軟骨から切取って、組織の2韮フランジを形成させる。Example ■: Tracheal or glottic patch graft Make a longitudinal incision through the patient's trachea or glottis. A batch with the same vertical length as the defect select. The defect width is determined by the size of the area to be patched. 5% collage 25% collagen, 2.5% colacine/fibroblasts and 2.5% colacine 2 x 3 punches to grow coatings of fibroblasts and oral mucosal tissue cultures was transplanted. The mucosa is cut away from the cartilage to form a two-pronged flange of tissue.

粘膜フランジを連続前置吸収性縫合糸でバッチの管腔面に縫合する。粘膜縫合糸 を結んだ後、軟骨を溝又はフランジ下にいれ、断続的非吸収性縫合糸及び綿撤糸 で固定する。The mucosal flange is sutured to the luminal surface of the batch with a continuous preabsorbable suture. mucosal suture After tying, the cartilage is placed in the groove or under the flange and intermittent non-absorbable sutures and cotton retraction sutures are placed. Fix it with.

空気漏出又は感染の証拠はなかった。5%コラーゲンの第一パッチはずれて、内 生長を示さなかった。z5%コラーゲンのバッチハバッチの端部て内生長を示し たか、但し端部からの上皮生長はなかった。2.5%コラシーン/線維芽細胞の バッチはそのバッチの中央で組織生長を示した。2.5%コラシーン/線維芽細 胞口腔粘膜のバッチはそのバッチの中央で組織生長を示した。2.5%コラシー ン/線維芽細胞口腔粘膜のバッチは組織培養粘膜生存という一部の証拠から組織 内生長も示した。溝形パッチは機械的固定か結合組織内生長なしに生じうること を示した。There was no evidence of air leakage or infection. The first patch of 5% collagen is displaced and inside. It showed no growth. The edges of the 5% collagen batch show ingrowth. However, there was no epithelial growth from the edge. 2.5% colacine/fibroblasts The batch showed tissue growth in the middle of the batch. 2.5% colaseen/fibroblasts A batch of cystic oral mucosa showed tissue growth in the middle of the batch. 2.5% Colacy A batch of fibroblast oral mucosa was isolated from tissue culture based on some evidence of mucosal survival. It also showed endophytic growth. Channel-shaped patches can occur without mechanical fixation or connective tissue ingrowth showed that.

5%コラシーン被覆チューブ製である長さ7国以内の気管チューブ移植体はイヌ において基質及び管腔内結合組織層で完全な結合組織内生長を示した。一部基質 の中央における狭窄は過剰結合組織生長のせいで生した。Tracheal tube implants up to 7 lengths made of 5% colacine-coated tubing are recommended for dogs. showed complete connective tissue ingrowth in the stromal and intraluminal connective tissue layers. Some substrate The narrowing in the center of the lumen resulted from excessive connective tissue growth.

縫合線からの上皮内生長は各端部から2CIl1以内で生じた。遊離口腔粘膜移 植片を有する1つのチューブは長さ7anチユーブの完全上皮化を示した。Intraepithelial growth from the suture line occurred within 2 CI11 from each end. Free oral mucosal transfer One tube with an explant showed complete epithelialization, 7 an tube long.

実施例■・ 長さ50以内の5%コラーゲン被覆チューブをイヌにおいて摘出された腸セグメ ントに移植した。腸セグメントを摘出した。粘膜−粘膜下組織を漿液−筋肉層か ら取出した。粘膜は前置連続吸収性縫合糸で移植体の管腔内に縫合した。漿液− 筋肉層は非吸収性物質の連続縫合糸で移植体の外側に縫合した。提出された腸の 一端を閉じ、他端を結腸フィステル形成のため外側に出した。移植体を網で包み 、網をチューブ周囲の適所で縫合した。漏出又は感染はなかった。すべてのチュ ーブは術後4週間で結合組織の管腔層を形成した。60日日計、各端部から0. 6mmの距離で縫合線から装置の中央に向けた粘膜移動の証拠が一部のチューブ であった(正常な腸は0.8mmの上皮生長を示すだけである)。摘出された腸 において粘膜及び液体の産生と高細菌数か存在していた。Example ■・ A 5% collagen-coated tube up to a length of 50 mm was used to remove an intestinal segment in a dog. ported to the client. The intestinal segment was removed. Mucosa-submucosal tissue and serous fluid-muscular layer? I took it out. The mucosa was sutured into the lumen of the graft with a pre-continuous absorbable suture. Serum- The muscle layer was sutured to the outside of the implant with a continuous suture of non-absorbable material. of submitted intestines One end was closed and the other end was exposed for colonic fistula formation. Wrap the transplant in netting , the omentum was sutured in place around the tube. There were no leaks or infections. All Chu The tube formed a luminal layer of connective tissue 4 weeks after surgery. 60 day total, 0.0 from each end. Some tubes showed evidence of mucosal migration from the suture line toward the center of the device at a distance of 6 mm. (normal intestine shows only 0.8 mm of epithelial growth). removed intestine Mucosal and fluid production and high bacterial counts were present.

実施例■ 5%コラーゲン、25%コラーゲン、2.5%コラシーン/線維芽細胞とコラー ゲン上で培養された自家尿管上皮又は口腔上皮組織とのコーティングを育する大 きさ2X4anのバッチをイヌの膀胱に移植した。膀胱を露出させた。バッチと 同サイズの欠損を膀胱に作った。粘膜−粘膜下組織を漿液−筋肉層から取出して 、2−フランジを形成した。粘膜層は吸収性物質の連続縫合糸でバッチの培養( 管腔)表面に縫合した。漿液−筋肉層は吸収性連合縫合糸でバッチの外側に縫合 した。バッチを網で被覆し、適所で縫合した。感染又は尿漏出の証拠はなかった 。はとんとのバッチは端部周囲で結合組織内生長を示した。z5%コラーゲン/ 線維芽細胞/培養バッチはバッチ中央における結合組織内生長と組織培養細胞生 存の一部証拠を示した。Example■ 5% Collagen, 25% Collagen, 2.5% Colashene/Fibroblasts and Collar A large tube that grows a coating with autologous ureteral epithelium or oral epithelial tissue cultured on A batch of 2×4an size was implanted into the bladder of a dog. The bladder was exposed. batch and A defect of the same size was created in the bladder. The mucosa-submucosa is removed from the serous-muscular layer. , 2-formed a flange. The mucosal layer is cultured in batches with a continuous suture of absorbable material ( (luminal) surface was sutured. The serous-muscular layer is sutured to the outside of the batch with absorbable interlocking sutures. did. The batch was covered with mesh and sutured in place. There was no evidence of infection or urine leakage . The pigeon batch showed connective tissue ingrowth around the edges. z5% collagen/ Fibroblast/culture batches have connective tissue ingrowth and tissue culture cell growth in the center of the batch. showed some evidence of its existence.

要約 ことかてきる。summary Something comes up.

平成4年6月8日 喝June 8, 1992 Cheers

Claims (11)

【特許請求の範囲】[Claims] 1.体の生存組織における移植用に適した人工器官装置であって、不規則な形状 の孔を有しかつ反対表面を規定する薄い合成基質;及び 上記薄い合成基質の少なくとも一方の上記表面の少なくとも一部と接触するコラ ーゲン物質; からなる人工器官装置。1. A prosthetic device suitable for implantation in living tissue of the body, the device having an irregular shape a thin synthetic substrate having pores and defining an opposing surface; and a colloid in contact with at least a portion of said surface of at least one of said thin synthetic substrates; -gen substance; A prosthetic device consisting of. 2.コラーゲン物質と接触する線維芽細胞を更に含む、請求項1記載の人工器官 装置。2. The prosthesis of claim 1 further comprising fibroblasts in contact with the collagenous material. Device. 3.コラーゲンがアテロコラーゲンである、請求項2記載の人工器官装置。3. 3. The prosthetic device of claim 2, wherein the collagen is atelocollagen. 4.コラーゲン物質が溶液であって、その場合にコラーゲンの濃度が1.5%コ ラーゲンから5.0%コラーゲンの範囲である、請求項1記載の人工器官装置。4. The collagen material is in solution, where the concentration of collagen is 1.5% The prosthetic device of claim 1, wherein the prosthetic device ranges from 5.0% collagen to 5.0% collagen. 5.コラーゲン物質の厚さが0.025から1.0mmの範囲である、請求項1 記載の人工器官装置。5. Claim 1, wherein the thickness of the collagen material is in the range of 0.025 to 1.0 mm. The prosthetic device described. 6.コラーゲン物質が孔を実質上閉塞させるために充分な厚さで薄い合成基質と 接触している、請求項1記載の人工器官装置。6. A thin synthetic matrix of sufficient thickness so that the collagen material substantially occludes the pores. 2. The prosthetic device of claim 1, wherein the prosthetic device is in contact. 7.薄い合成基質が0.25ミリメートルから1.5センチメートルの厚さであ る、請求項1記載の人工器官装置。7. The thin synthetic substrate is 0.25 mm to 1.5 cm thick. 2. The prosthetic device of claim 1. 8.薄い合成基質が第一管腔内表面を有し、自家上皮組織が上記第一管腔内表面 上でコラーゲン物質に付着されている、請求項1記載の人工器官装置。8. A thin synthetic matrix has a first intraluminal surface, and autologous epithelial tissue covers the first intraluminal surface. 2. The prosthetic device of claim 1, wherein the prosthetic device has collagen material attached thereto. 9.体の生存組織への移植用に透した人工器官装置の製造方法であって、 反対表面及び不規則な形状の孔を有する合成基質を用意し;及び 上記孔をコラーゲン物質でシールするためコラーゲン物質を上記合成基質に少な くとも一方の上記表面上で適用する;ことからなる方法。9. A method of manufacturing a transparent prosthetic device for implantation into living tissue of the body, the method comprising: providing a synthetic substrate having opposing surfaces and irregularly shaped pores; and A small amount of collagen material is added to the synthetic matrix to seal the pores with collagen material. applying on at least one of said surfaces. 10.コラーゲン物質においてコラーゲンの架橋を行うように合成基質を更に処 理し、しかる後残留物質を除去するため上記合成基質を浸漬する、請求項9記載 の方法。10. Further processing of the synthetic matrix to effect collagen cross-linking in the collagen material 10. The synthetic substrate according to claim 9, wherein the synthetic substrate is soaked to remove residual substances. the method of. 11.コラーゲン物質の適用に続いて合成基質を培養生存線維芽細胞と更に接触 させる、請求項9記載の方法。11. Further contact of the synthetic matrix with cultured viable fibroblasts following application of collagen material 10. The method according to claim 9, wherein
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