JPH05244953A - Plasmid pnc500 - Google Patents
Plasmid pnc500Info
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- JPH05244953A JPH05244953A JP4084463A JP8446392A JPH05244953A JP H05244953 A JPH05244953 A JP H05244953A JP 4084463 A JP4084463 A JP 4084463A JP 8446392 A JP8446392 A JP 8446392A JP H05244953 A JPH05244953 A JP H05244953A
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Abstract
Description
【0001】[0001]
【産業上の利用分野】本発明はノカルディオフオルム細
菌のベクターとしてきわめて有用なプラスミドpNC500に
関する。TECHNICAL FIELD The present invention relates to a plasmid pNC500 which is extremely useful as a vector for Nocardiophorum bacteria.
【0002】[0002]
【従来の技術】ノカルディア属、ロドコッカス属といっ
たノカルディオフオルム細菌は、直鎖状炭化水素、脂環
式化合物、芳香族化合物、ハロゲン化合物、リグニンな
どの分解能や生理活性物質の生産能を持ち、有用物質の
生産や難分解性物質の分解等に利用することが検討され
ている。たとえば、ノカルディア・コラリーナ (Nocard
ia corallina) は各種のオレフィンをエポキシ化する
能力を有し、強誘電性液晶などに利用される光学活性エ
ポキシドや合成樹脂、医薬、農薬などの有機化学製品の
製造原料中間体として広範囲に利用できるトリフルオロ
プロペンオキシド(TFPO)の生産に利用されている。2. Description of the Related Art Nocardiophorum bacteria such as Nocardia and Rhodococcus have the ability to decompose linear hydrocarbons, alicyclic compounds, aromatic compounds, halogen compounds, lignin and the like and to produce physiologically active substances. Utilization for the production of useful substances, decomposition of persistent substances, etc. is under consideration. For example, Nocardia Coralina ( Nocard
ia corallina) has the ability to epoxidize various olefins, and can be widely used as an intermediate for the production of organic chemical products such as optically active epoxides used in ferroelectric liquid crystals, synthetic resins, pharmaceuticals, agricultural chemicals, etc. It is used for the production of trifluoropropene oxide (TFPO).
【0003】また、ノカルディオフオルム細菌用につい
て、組換えDNA 技術による育種改良は、エシェリヒアコ
リ等にくらべて遅れており、宿主・ベクター系の開発が
強く望まれている。従来、ジャーナル オブ バクテリ
オロジー(J. Bacteriol.)170,638 (1988) 、アプライド
アンド エンバイロメンタル マイクロバイオロジー
(Appl. Environ, Microbiol.) 56, 2818 (1990) 、プラ
スミド(Plasmid) 23,242 (1990)、日本農芸化学会誌65,
617 (1991)等に宿主・ベクター系の記載がある。しか
し、これらの宿主はロドコッカス (Rhodococcus)属の中
の一部に限られており、より広い範囲のノカルディオフ
オルム細菌に使用される、有用物質の生産や難分解性物
質の分解菌の育種に利用可能なベクターの開発が望まれ
ている。Further, for Nocardiophyllum bacteria, the improvement of breeding by recombinant DNA technology is behind that of Escherichia coli and the like, and development of a host-vector system is strongly desired. Previously, Journal of Bacteriology (J. Bacteriol. ) 170 , 638 (1988), Applied and Environmental Microbiology
(Appl. Environ, Microbiol.) 56 , 2818 (1990), plasmid (Plasmid) 23 , 242 (1990), Journal of Japan Society for Agricultural Chemistry 65 ,
617 (1991), etc., describes the host-vector system. However, these hosts are limited to a part of the genus Rhodococcus, and the production of useful substances and breeding of degrading bacteria of persistent substances used in a wider range of Nocardiophorum bacteria are carried out. It is desired to develop a vector that can be used for
【0004】[0004]
【発明が解決しようとする問題】そこで本発明者は、ノ
カルディオフオルム細菌、とくにエポキシド生産菌であ
るノカルディア コラリーナのDNA 組換え技術を開発す
べく研究を行ったところ、当該細菌から新規プラスミド
が得られることを知り、これに基づいてさらに研究した
結果、本発明を完成した。Therefore, the present inventor conducted research to develop a DNA recombination technique for Nocardiophorum bacteria, particularly Nocardia coralina, which is an epoxide-producing bacterium. The present invention has been completed as a result of further research based on this.
【0005】[0005]
【問題点を解決するための手段】本発明は、分子量が約
7.2kbであり、制限酵素SphI,Hind III,Kpn I 及びXbaI
によって切断されず、下記の制限酵素開製地図で示さ
れるプラスミドpNC500に関する。本発明のプラスミドを
有する微生物としてたとえばノカルディア・コラリーナ
が挙げられ、具体的にはプロピレン資化性菌として分離
されたノカルディア コラリーナB-276 が挙げられる。
この微生物は工業技術院微生物工業技術研究所に微工研
菌寄4094(FERM-P-4094) として寄託されている。The present invention has a molecular weight of about
7.2 kb, with restriction enzymes SphI, Hind III, Kpn I and XbaI
The present invention relates to a plasmid pNC500 which is not cleaved by and is shown in the restriction enzyme development map below. Examples of the microorganism having the plasmid of the present invention include Nocardia coralina, and specifically, Nocardia coralina B-276 isolated as a propylene-assimilating bacterium.
This microorganism has been deposited at the Institute of Microbial Science and Technology of the Agency of Industrial Science and Technology as Microorganism Research Institute 4094 (FERM-P-4094).
【0006】次にノカルディア コラリーナからプラス
ミドpNC500を得る方法について述べる。ノカルディア
コラリーナB-276 からプラスミドpNC500を分離するには
まず、菌を粉砕する。ノカルディオフオルム細菌は通常
の培地で培養したときリゾチームなどで溶菌されにく
い。そのためグリシン入り培地で培養し、ペニシリンG
で処理することにより、溶菌酵素で溶菌されやすくなっ
た菌を得ることができる。本発明に使用される培地とし
ては、通常用いられている下記組成の NBG培地にグリシ
ンを1 %程度入れたものが用いられる。 (NBG培地) Nutrient Broth No.2 (Oxoid) 2.5% グルコース 1 % ノカルディア コラリーナ B-276は30℃で対数増殖後期
まで培養され、さらにペニシリンGを 7.5units/mlにな
るように添加し数時間培養した後、溶菌酵素(例、リゾ
チーム、アクロモバクターペプチダーゼ等)で溶菌され
る。溶菌液から環状プラスミドDNA は公知の方法で分離
することができる〔バイオキミカ エバイオフィジカ
アクタ(Biochimca. et Biophysica. Acta.),383, 457-4
63 (1975) 〕。Next, a method for obtaining the plasmid pNC500 from Nocardia coralina will be described. Nocardia
To isolate the plasmid pNC500 from Coralina B-276, first crush the fungus. Nocardiophyllum bacteria are less likely to be lysed by lysozyme when cultured in a normal medium. Therefore, cultivate it in a medium containing glycine and use penicillin G
By treating with, it is possible to obtain a bacterium that is easily lysed by a lytic enzyme. As the medium used in the present invention, a commonly used NBG medium having the following composition and containing about 1% of glycine is used. (NBG medium) Nutrient Broth No.2 (Oxoid) 2.5% Glucose 1% Nocardia coralina B-276 was cultured at 30 ° C until the late logarithmic growth phase, and penicillin G was added to 7.5 units / ml for several hours. After culturing, it is lysed with a lytic enzyme (eg, lysozyme, achromobacter peptidase, etc.). Circular plasmid DNA can be isolated from the lysate by a known method [Biokimica e Biophysica].
Actor (Biochimca. Et Biophysica. Acta.), 383, 457-4
63 (1975)].
【0007】ここで得られるプラスミドDNA の中には、
プラスミドpNC500よりも分子量の大きな環状プラスミド
が3ないし4個含まれている。プラスミドpNC500はこの
プラスミド混液をアガロースゲル電気泳動で大きさによ
って分離したものからプラスミドpNC500のみを含むゲル
を切り出しこのゲルから回収することによって得ること
ができる。プラスミドpNC500の分子量は約7.2 キロ塩基
対で、制限酵素開裂地図は化2に示される。Among the plasmid DNAs obtained here,
It contains 3 to 4 circular plasmids with a higher molecular weight than the plasmid pNC500. The plasmid pNC500 can be obtained by excising a gel containing only the plasmid pNC500 from the plasmid mixture separated by size by agarose gel electrophoresis and recovering from the gel. The plasmid pNC500 has a molecular weight of about 7.2 kilobase pairs and the restriction enzyme cleavage map is shown in Chemical formula 2.
【0008】[0008]
【化2】 [Chemical 2]
【0009】プラスミドpNC500は表1に表すような制限
酵素に対して感受性を有している。The plasmid pNC500 is sensitive to the restriction enzymes shown in Table 1.
【0010】[0010]
【表1】制限酵素によるpNC500の切断部位数 制限酵素 切断個所数 Sph I 0 Hind III 0 Kpn I 0 Xba I 0 BamH I 1 Bgl II 1 Spe I 1 EcoR I 3 Pst I 2 Sac I 2 なお、上記制限酵素の名称は次の菌種から得られる制限
酵素の略称である。 Sph I Streptomyces phaeochromogenes Hind III Haemophilus influenzae Rd Kpn I Klebsiella pneumoniae OK8 Xba I Xanthomonas badrii (ATCC 11672) BamH I Bacillus subtilis MT-2 (pBamHI RM22) Bgl II Bacillus globigii Spe I Sphaerotilus natans (ATCC 13923) EcoR I Escherichia coli RY13 Pst I Providencia stuartii 1641 pPst101 Sac I Streptonyces achromogenes(ATCC 12767)[Table 1] Number of pNC500 cleavage sites by restriction enzymes Number of restriction enzyme cleavage sites Sph I 0 Hind III 0 Kpn I 0 Xba I 0 BamH I 1 Bgl II 1 Spe I 1 EcoR I 3 Pst I 2 Sac I 2 Above The name of the restriction enzyme is the abbreviation of the restriction enzyme obtained from the following bacterial species. Sph I Streptomyces phaeochromogenes Hind III Haemophilus influenzae Rd Kpn I Klebsiella pneumoniae OK8 Xba I Xanthomonas badrii (ATCC 11672) BamH I Bacillus subtilis MT-2 (pBamHI RM22) Bgl II Bacillus globigii Spe I SphaeroATCCtan Pst I Providencia stuartii 1641 pPst101 Sac I Streptonyces achromogenes (ATCC 12767)
【0011】制限酵素による切断部位数は過剰の制限酵
素存在下でプラスミドpNC500を完全消化し、それらの消
化物を0.7 %のアガロースゲル電気泳動にかけ、分離可
能な断片の数から決定される。分子量は大腸菌のラムダ
ファージのDNA を制限酵素Hind IIIで消化して得られる
既知分子量の断片〔ジャーナル オブ モレキュラーバ
イオロジー(J. Mol. Biol.),98, 551-564(1975) 〕の同
一アガロースゲル上での泳動距離で描かれる標準曲線に
基づき、消化プラスミドpNC500の各断片の分子量を算出
し、複数の断片を生じる場合は、加算して求められた。
プラスミドpNC500の制限酵素開裂地図は各種制限酵素を
単独で用いて得られた各断片及び各制限酵素の2種以上
を組合わせて用いた処理によって得られた各断片をアガ
ロースゲル電気泳動で分析することによって作成した。The number of restriction enzyme cleavage sites is determined by the number of separable fragments obtained by completely digesting the plasmid pNC500 in the presence of an excess of restriction enzyme and subjecting the digested product to 0.7% agarose gel electrophoresis. The molecular weight was the same agarose fragment of known molecular weight obtained by digesting Escherichia coli lambda phage DNA with the restriction enzyme Hind III [J. Mol. Biol., 98 , 551-564 (1975)]. The molecular weight of each fragment of the digested plasmid pNC500 was calculated based on the standard curve drawn by the migration distance on gel, and when multiple fragments were generated, they were calculated by addition.
The restriction enzyme cleavage map of plasmid pNC500 is analyzed by agarose gel electrophoresis for each fragment obtained by using each restriction enzyme alone and each fragment obtained by the treatment using two or more kinds of each restriction enzyme in combination. Created by
【0012】本発明のプラスミドは種々の制限酵素によ
るこの切断部位を有しており、この事実はこのプラスミ
ドを修飾して多くの有用なベクターを開発できることを
示している。またこのプラスミドあるいはその誘導体に
目的とする遺伝子、例えば、モノオキシゲナーゼ等の酵
素をコードする遺伝子等を組み込み、これを適当な宿主
微生物に導入して、宿主を形質転換させることも可能で
ある。プラスミドpNC500は光学活性エポキシドやTFPOと
いった有用物質の生産や難分解物質の分解能をもったノ
カルディア コラリーナやその他のノカルディオフオル
ム細菌に対しベクターとして有利に利用できる。すなわ
ち、ノカルディア コラリーナやその他ノカルディオフ
オルム細菌からの遺伝情報を本発明のプラスミドを用い
てクローン化し、これを目的とする微生物に導入するこ
とにより、有用物質の生産能の増大や難分解物質の分解
能の増強をもたらすことができる。The plasmid of the present invention has this cleavage site with various restriction enzymes, which indicates that this plasmid can be modified to develop many useful vectors. It is also possible to transform a host by incorporating a target gene, for example, a gene encoding an enzyme such as monooxygenase, into this plasmid or its derivative, and introducing this into a suitable host microorganism. The plasmid pNC500 can be advantageously used as a vector for Nocardia coralina and other Nocardiophorum bacteria which are capable of producing useful substances such as optically active epoxide and TFPO and capable of decomposing hardly decomposable substances. That is, by cloning the genetic information from Nocardia coralina and other Nocardiophorum bacteria using the plasmid of the present invention, and introducing it into the microorganism of interest, it is possible to increase the productivity of useful substances and persistent substances. Can provide enhanced resolution of
【0013】上記使用において、目的とする遺伝子を含
む組み換えプラスミドの作製方法それ自体は公知であ
る。たとえば、サイエンティフィック・アメリカン(Sci
entific American) 233 (1) 24〜33(1975)に記載されて
いる方法によってプラスミドを作製することができる。In the above-mentioned use, a method for producing a recombinant plasmid containing a target gene is known per se. For example, Scientific American (Sci
entific American) 233 (1) 24-33 (1975).
【0014】また本発明のプラスミドを宿主微生物細胞
内に導入するには、細胞をプロトプラスト又はスフェロ
プラストにしてプラスミドを移入する方法〔ジャーナル
オブ バクテリオロジー(J.Bocteriol),170 ,638(198
8)〕、電気パルスによりプラスミドを移入する方法〔ア
プライド アンド エンバイロメンタル マイクロバイ
オロジー(Appl. Environ.Microbio.),56, 2818(1990)〕
等が知られている。また、本発明のプラスミドをベクタ
ーとして用い、目的とする物質の生成や分解に必要な遺
伝子を組み込んだプラスミドを導入された宿主微生物を
自体公知の方法で培養して目的とする物質を蓄積または
分解をさせることができる。In order to introduce the plasmid of the present invention into host microbial cells, a method of transfecting the cells by converting the cells into protoplasts or spheroplasts [J. Bocteriol, 170 , 638 (198
8)], Method of transferring plasmid by electric pulse [Appl. Environ. Microbio., 56 , 2818 (1990)]
Etc. are known. Further, by using the plasmid of the present invention as a vector, a host microorganism introduced with a plasmid incorporating a gene required for production or decomposition of a target substance is cultured by a method known per se to accumulate or decompose the target substance. Can be
【0015】[0015]
【実施例1】 ノカルディア・コラリーナ(Nocardia corallina)B-276
からのプラスミドpNC500の単離 ノカルディア・コラリーナB-276 (工業技術院微生物工
業技術研究所受託番号FERM-P-4094)を5本の500ml 坂口
フラスコに入れた下記の液体培地各100ml に接種し、30
℃で21時間振とう培養した。この時点で培養液中 7.5un
its/mlの濃度となるようペニシリンG を添加し、さらに
30℃で3時間培養を継続した。培養液から菌体を集菌し
TE緩衝液〔0.025Mトリス (ヒドロキシメチル) アミノメ
タン (トリス) 、0.025M EDTA : pH 8.0〕で洗浄後、溶
菌液〔0.3Mショ糖、0.025Mトリス、0.025M EDTA 、2mg/
mlリゾチーム、2mg/mlアクロモペプチダーゼ、50μg/ml
RNase : pH 8.0 〕で20mlに懸濁し、30℃で2時間反応
させた。反応液に、2%ラウリル硫酸ナトリウムと0.3M
水酸化ナトリウムからなる溶液10mlを添加し、よく混合
してから55℃の湯浴中に1時間置いた。この溶菌液に4
mlのフェノール・クロロホルム(1:1)溶液を加え、
全体が白濁するまでよく混ぜた(1分間)。4℃で30分
間 17000xgの遠心にかけ上層をとった。再度、それと等
量のフェノール・クロロホルム(1:1)溶液を加えよ
く混ぜ、遠心し上層を分離した。Example 1 Nocardia corallina B-276
Isolation of the plasmid pNC500 from Nocardia coralina B-276 (Accession No. FERM-P-4094, Research Institute for Microbial Technology, Institute of Industrial Science and Technology, Japan) , 30
The cells were shake-cultured at ℃ for 21 hours. 7.5un in culture at this point
Add Penicillin G to a concentration of its / ml, and
Culture was continued at 30 ° C for 3 hours. Collect the cells from the culture
After washing with TE buffer (0.025M Tris (hydroxymethyl) aminomethane (Tris), 0.025M EDTA: pH 8.0), lysate (0.3M sucrose, 0.025M Tris, 0.025M EDTA, 2mg /
ml lysozyme, 2 mg / ml achromopeptidase, 50 μg / ml
RNase: pH 8.0] was suspended in 20 ml and reacted at 30 ° C. for 2 hours. Add 2% sodium lauryl sulfate and 0.3M to the reaction mixture.
10 ml of a solution of sodium hydroxide was added, mixed well and placed in a 55 ° C. water bath for 1 hour. 4 in this lysate
Add 1 ml of phenol / chloroform solution,
Mix well until the whole becomes cloudy (1 minute). After centrifugation at 17,000 xg for 30 minutes at 4 ° C, the upper layer was taken. Again, an equal amount of a phenol-chloroform (1: 1) solution was added thereto, mixed well, and centrifuged to separate the upper layer.
【0016】この溶液に等量のジエチルエーテルを加
え、穏かに撹拌した後しばらく放置し、上層のジエチル
エーテルをすて、再度下層にジエチルエーテルを加え抽
出した。エーテル抽出後の下層に0.1 倍容の3M酢酸ナト
リウムと、2倍容のエタノールを加え、析出した沈殿物
を遠心で回収し、−20℃で真空乾燥を行った後0.5ml の
TE緩衝液に溶解した。これを0.7 %アガロースゲル電気
泳動(60V、5h) にかけ、pNC500を含む最も小さなプラス
ミドバンドのところを切り出した。切り出したゲルは少
量のTE緩衝液とともに透析膜に入れ60V で2時間泳動さ
せ、その後逆方向に1分間電流を泳した後、透析膜の溶
液を回収した。この溶液に0.1 倍容の3M酢酸ナトリウム
と2倍容のエタノールを加え、析出した沈殿物を遠心で
回収し、−20℃で真空乾燥を行い、プラスミドpNC500を
得た。An equal amount of diethyl ether was added to this solution, and the mixture was gently stirred and then allowed to stand for a while, the upper layer of diethyl ether was discarded, and the lower layer was added with diethyl ether again for extraction. After extraction with ether, 0.1 volume of 3M sodium acetate and 2 volume of ethanol were added to the lower layer, and the deposited precipitate was collected by centrifugation and vacuum dried at -20 ° C.
It was dissolved in TE buffer. This was subjected to 0.7% agarose gel electrophoresis (60V, 5h), and the smallest plasmid band containing pNC500 was cut out. The excised gel was put in a dialysis membrane together with a small amount of TE buffer and electrophoresed at 60 V for 2 hours, and then a current was passed in the opposite direction for 1 minute, and then the solution of the dialysis membrane was recovered. To this solution, 0.1 volume of 3M sodium acetate and 2 volumes of ethanol were added, and the deposited precipitate was collected by centrifugation and vacuum dried at -20 ° C to obtain plasmid pNC500.
【0017】また各種制限酵素によってpNC500を単一消
化、二重消化、あるいは三重消化して得られたDNA 断片
をアガロースゲル電気泳動にかけ、その移動度から分子
量を求めた〔メソド イン エンザイモロジー(Method
in Enzymology)12巻 Part B第361 〜377 頁、1968年ア
カデミックプレス発行、ニューヨーク (米国) 参照〕と
ころ、数十回の観察で約 7.2kbであった。この場合、酵
素の反応条件は供給者によって定められた条件に従っ
た。また分子量は、λDNA を制限酵素Hind IIIで分解し
て得られた断片の標準移動度のパターンを基にして決定
した。これらの結果から、前記の制限酵素開裂地図を決
定した。Further, a DNA fragment obtained by single-digesting, double-digesting or triple-digesting pNC500 with various restriction enzymes was subjected to agarose gel electrophoresis, and the molecular weight was determined from its mobility [method-in-enzymology ( Method
in Enzymology), Vol. 12, Part B, pages 361 to 377, 1968 Academic Press, New York (USA)], but it was about 7.2 kb after tens of observations. In this case, the reaction conditions of the enzyme followed the conditions defined by the supplier. The molecular weight was determined based on the standard mobility pattern of the fragment obtained by digesting λDNA with the restriction enzyme HindIII. From these results, the above-mentioned restriction enzyme cleavage map was determined.
【0018】[0018]
【発明の効果】本発明のプラスミドは種々の制限酵素に
よる開裂部位を有しており、このプラスミドを修飾して
ノカルディオフオルム細菌に使用される、多くの有用な
ベクターを開発することができる。また、このプラスミ
ドに遺伝子を組込み、これをノカルディオフオルムに導
入してこの宿主を形質転換させ、光学活性エポキシド等
の有用物質を生産したりあるいは難分解物質を分解した
りすることができる。INDUSTRIAL APPLICABILITY The plasmid of the present invention has a cleavage site by various restriction enzymes, and it is possible to modify this plasmid to develop many useful vectors used in Nocardiophorum bacteria. .. In addition, a gene can be incorporated into this plasmid, and this can be introduced into Nocardiophorum to transform this host, thereby producing a useful substance such as an optically active epoxide or decomposing a hardly decomposable substance.
Claims (1)
I,Hind III,Kpn I 及びXba I によって切断されず、下
記の制限酵素開製地図で示されるプラスミドpNC500。 【化1】 1. A restriction enzyme Sph having a molecular weight of about 7.2 kb.
The plasmid pNC500 which is not cleaved by I, Hind III, Kpn I and Xba I and is shown in the restriction enzyme development map below. [Chemical 1]
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP4084463A JPH05244953A (en) | 1992-03-06 | 1992-03-06 | Plasmid pnc500 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP4084463A JPH05244953A (en) | 1992-03-06 | 1992-03-06 | Plasmid pnc500 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH05244953A true JPH05244953A (en) | 1993-09-24 |
Family
ID=13831325
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP4084463A Pending JPH05244953A (en) | 1992-03-06 | 1992-03-06 | Plasmid pnc500 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH05244953A (en) |
-
1992
- 1992-03-06 JP JP4084463A patent/JPH05244953A/en active Pending
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