JPH0456600B2 - - Google Patents

Info

Publication number
JPH0456600B2
JPH0456600B2 JP314985A JP314985A JPH0456600B2 JP H0456600 B2 JPH0456600 B2 JP H0456600B2 JP 314985 A JP314985 A JP 314985A JP 314985 A JP314985 A JP 314985A JP H0456600 B2 JPH0456600 B2 JP H0456600B2
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
group
medium
component
streptococci
reagent
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired
Application number
JP314985A
Other languages
Japanese (ja)
Other versions
JPS60176599A (en
Inventor
Eru Ebansu Jooji
Ii Oniiru Teresa
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Becton Dickinson and Co
Original Assignee
Becton Dickinson and Co
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Becton Dickinson and Co filed Critical Becton Dickinson and Co
Publication of JPS60176599A publication Critical patent/JPS60176599A/en
Publication of JPH0456600B2 publication Critical patent/JPH0456600B2/ja
Granted legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/02Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving viable microorganisms
    • C12Q1/04Determining presence or kind of microorganism; Use of selective media for testing antibiotics or bacteriocides; Compositions containing a chemical indicator therefor
    • C12Q1/14Streptococcus; Staphylococcus
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N2333/00Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature
    • G01N2333/195Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature from bacteria
    • G01N2333/315Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature from bacteria from Streptococcus (G), e.g. Enterococci

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Description

【発明の詳細な説明】[Detailed description of the invention]

本発明はA群連鎖球菌(化膿性連鎖球菌、
Streptococcus pyrogenes)を選択的血液寒天培
地を用いて迅速に検出しかつ推定同定することに
関する。 乳酸菌科(Lactobacillaceae)の一属である連
鎖球菌属は自然界に広く分布している。連鎖球菌
属のある菌株はヒトおよび/または動物に対して
病原性であり、一方他の菌株は一般に無害な寄生
体として存在するであろう。連鎖球菌はC物質と
して知られている炭水化物の一種の存在によつて
分類され(ランスフイールド分類系)、少なくと
も13群(途中2個のアルフアベツトを除くA〜O
で表わされる)が知られている。これらのうちA
群(化膿性連鎖球菌)がほとんど常にヒトの感染
に関与している。ただし他の群も特定の環境では
病原性であるかも知れない。A群連鎖球菌(以下
GASと略記する)は猩紅熱、リウマチ熱、糸球
体腎炎、咽頭炎、および産じよく敗血症などの疾
病に関与しているため、GASの存在を確認する
ことは疾病を診断し、かつ適切な治療経路を選択
する際にきわめて重要であろう。 GASを検出するための本方法によれば、感染
領域(たとえば咽頭)における綿またはポリエス
テルスワブにより検体を得る。次いでこのスワブ
を用いて、GASコロニーの周囲に現われる特徴
的な完全または“β”溶血を検出するために、哺
乳動物血液を含む適切な培地に接種する。しかし
咽喉培養物はいつそう多数存在する可能性のある
他の微生物を通常は含むため、それらの増殖が
GASにより生じた溶血を不明瞭にする。バシト
ラシン耐性菌の存在によつても検体を接種したプ
レートにおけるバシトラシン感受性の判定が妨げ
られる。従つて先行技術では推定的同定の補助と
してバシトラシン感受性を判定するためにβ−溶
血菌を純粋培養として分離する必要があつた。従
つて、適切な治療を開始するための情報が得られ
るまで2日以上を必要とするであろう。 GASが耐性である抗菌薬は多数知られている
が、GASに対して完全に選択的である(すなわ
ち他の大部分の微生物の増殖を抑制する)単独の
抗菌薬も抗菌薬の組合せも知られていない。従つ
て非A群連鎖球菌及びその他の微生物も既存の選
択的培地上では十分に増殖して、GASにより生
じる特徴的なβ−溶血を検出するのを困難にする
可能性がある。さらに他のβ−溶血性細菌種が存
在する場合、偽陽性の結果が得られる可能性もあ
る。 現在のGAS検出法は比較的信頼性が高く、し
ばしば90%以上の精度が達成されるが、推定的同
定のためバシトラシン感受性を判定するためには
β−溶血性連鎖球菌を純培養において分離する必
要がある。これは本発明方法よりも2〜3日長く
かかる。既存の培地の選択性が乏しいため、診断
における誤差を防ぐためにはかなり優れた技術を
要する。より選択的な培地があれば推定誤差が少
なくなり、かつより早く確認され、従つてGAS
による感染の重大な続発症を防ぐために適切な治
療がより早期に開始されるであろう。 GASを選択的に培養する試薬が本発明により
提供された。この試薬は(1)ポリミキシンもしくは
アミノグリコシド、(2)スルホンアミドたとえばス
ルフアメトキサゾール、(3)トリメトプリム、およ
び(4)クリスタルバイオレツトの混合物である。こ
の試薬を哺乳動物血液を含む培地に含有させる
と、GAS以外の細菌は実質的に除かれ、従つて
GASコロニー周囲のβ−溶血を不鮮明化される
ことなく観察できる。本発明の選択試薬により選
択性の実質的改善がもたらされるため、バシトラ
シンに対する感受性(0.04単位のデイスク)およ
びこれらの微生物のコロニーをとり巻くβ−溶血
帯域に基づくGASの推定的同定が検体接種後18
〜24時間以内に得られる。 本発明によれば、GAS(化膿性連鎖球菌)を選
択的に増殖させ、生物学的検体、たとえばヒトか
ら採取された検体中に存在すると思われる他の微
生物の増殖を実質的に抑制する試薬によつて、
GASの検出が改善される。この改善された選択
性により、一次分離平板上においてバシトラシン
(0.04単位)感受性の判定または血清学的試験を
行うことができる。これらの成分はすべてそれら
の抗菌性に関して個々に知られてはいたが、抗菌
成分のこの組合せについてはこれまで記載がな
く、本発明の選択試薬はGASに対してきわめて
著しく改善された選択性を与えることが見出され
た。特に選択試薬がGASを含有するヒトの生物
学的検体を接種した血液含有培養平板中に含有さ
れると、GASの増殖領域にきわめて明瞭なβ−
溶血パターンが観察され、他の微生物の無関係な
増殖は平板上にごくわずかしか認められない。こ
のため、大部分の場合バシトラシン感受性に基づ
く推定的同定および血清学的分類試験に基づく確
認的同定を検体接種後24時間以内に行うことがで
きる。 ポリミキシンはバチルス・ポリミキサ
(Bacillus polymyxa)により産生される複数物
質であり、これらの物質およびそのサルフエート
は抗菌性をもつことが知られている。ポリミキシ
ンはA,B,C,D,E,K,MおよびPを含む
数種の形状をとる。好ましくは硫酸ポリミキシン
E(硫酸コリスチン)が選択試薬の一成分として
用いられる。硫酸ポリミキシンの代替として、ア
ミノグリコシド、たとえばゲンタマイシン、アミ
カシン、カナマイシン、ネオマイシンまたはトブ
ラマイシンを用いることができる。これらの成分
は大腸菌群および他のグラム陰性菌に対して有効
であることが知られている。 選択試薬の他の成分はスルホンアミド、たとえ
ばスルフアメトキサゾール、スルフイソキサゾー
ル、スルフアジアジン、またはトリメトプリムと
の組合せにおいてα−連鎖球菌に対する相乗作用
を示し、かつ水性培地に用いるのに十分な溶解性
をもつ他のものである。好ましいスルホンアミド
はスルフアメトキサゾールである。スルホンアミ
ドはグラム陽性菌およびグラム陰性菌の双方を抑
制することが知られているが、連鎖球菌は大部分
が耐性である。 選択試薬の他の成分はトリメトプリムまたは乳
酸トリメトプリムである。トリメトプリムはグラ
ム陽性菌およびグラム陰性菌の双方の抑制に有効
であるが、スルホンアミドとの組合せにおいて相
乗作用を示すので、いずれか一方では抑制されな
い多くの微生物が両者の存在する場合には抑制さ
れる。スルフアメトキサゾールとトリメトプリム
の組合せはこれまでGASの選択的増殖用培地に
用いられているが、ブドウ球菌の抑制には有効で
なかつた。 最後の成分はクリスタルバイオレツト(ゲンチ
アンバイオレツトとしても知られている)であ
る。これはペンターおよびヘキサメチル−p−ロ
ザナリンクロリドの混合物である。この成分はネ
オマイシン耐性ブドウ球菌を抑制することが知ら
れている。 本発明による選択試薬は一般に約30.0〜50.0
mg/(培地)を含む。スルホンアミドが一般に
最大重量の抗菌成分であり、一般に約15〜30mg/
(培地)の量で用いられる。硫酸ポリミキシン
は約10.0〜20.0、好ましくは15.0mg/(培地)
の量で用いられる。アミノグリコシドをポリミキ
シンの代わりに用いる場合、これは用いるアミノ
グリコシドに応じて約5.0〜30.0mg/の量で存
在する。トリメトプリムはスルホンアミドの約5
重量%、すなわち好ましくは約0.74〜約1.5mg/
(培地)の量で用いられる。クリスタルバイオ
レツトは約0.1〜約0.3mg/(培地)の量で用い
られる。 選択試薬を添加する培地には有機窒素源たとえ
ばペプトン、哺乳動物の血液、塩、ならびにゲル
化剤、好ましくは寒天が含まれる。ペプトンは約
15〜約30g/の量で存在する。好ましいペプト
ンはカゼインの膵液消化物、および大豆かゆのパ
パイン消化物であり、カゼイン消化物は約10〜約
20、好ましくは15g/の量で存在し、大豆かゆ
消化物は約3〜約8、好ましくは5g/の量で
存在する。寒天は約13〜約20、好ましくは15g/
の量で適度の硬さのゲルを与える。 塩化ナトリウムは約2〜約8g/、好ましく
は約5g/の量で供給される。塩濃度はゲルの
適切な浸透圧のために重要であり、血液の早期溶
血を防く。 約4.0〜約10.0容量%の量で存在する哺乳動物
血液はヒツジおよびウサギを含む各種哺乳動物源
から得られる。血液は凝血を防ぐため培地に用い
るに当り脱線維素処理される。血液は前記のよう
にGASなどの溶血性微生物に関する指示薬であ
り、この種の微生物の存在下で特徴的な溶血を生
じる。他の溶血性微生物の増殖を実質的に抑制す
る選択試薬を含む培養平板上で増殖している微生
物コロニーの周囲にβ−溶血が起こることは、
GASの存在を強く示すものである。 上記の選択試薬を含む血液含有培養平板上に
GASが存在することの付加的証拠は、枯草菌
(Bacillus subtilis)群の菌により産生される抗
生物質であるバシトラシンを含む領域にβ−溶血
コロニーが存在しないことである。バシトラシン
含浸デイスク(0.04単位)はプレートの限定され
た領域にこの抗生物質を施すために培養平板上に
乗せるものとして市販されている。さらに市販キ
ツトにより、上記の選択試薬を含む培地において
血清学的な確認同定を行うことができる。 選択試薬を含む培地は普通の微生物、特に大部
分の咽喉培養物中に存在する主要な微生物である
連鎖球菌変異株の優れた抑制作用を与える。連鎖
球菌変異株の抑制はスルフアメトキサゾールとト
リメトプリムのみの混合物を用いても達成される
が、本発明の選択試薬によればブドウ球菌、他の
連鎖球菌、およびグラム陰性菌、ならびにナイセ
リア属(neisseria)の菌種および緑濃菌の抑制
も改善される。さらに、本発明の選択試薬がもつ
高度の選択性によれば、GASの推定的同定(プ
レート上に溶血性コロニーが認められること、お
よびバシトラシンデイスクの領域に溶血性コロニ
ーが存在しないことによる)および血清学的な確
認分類を、先行技術の処方により可能であるより
も実質的に速かに(すなわち42〜72時間に比して
18〜24時間で)行うことができる。 本発明を特定の具体例によつてより詳細に記述
する。 例 1 以下の成分を含むA群連鎖球菌選択培地を調製
した。 成分 精製水1 当たりの含量 カゼインの膵液消化物 15.0g 大豆かゆのパパイン消化物 5.0g 塩化ナトリウム 5.0g 寒 天 15.0g 硫酸コリスチン 15.0mg スルフアメトキサゾール 23.75mg トリメトプリム 1.25mg クリスタル・バイオレツト 0.2mg ヒツジ血液(脱線維素処理) 50.0ml ヒツジ血液以外の成分を適宜混和して均質な粉
末を調製した。この粉末培地を蒸留水または脱イ
オン水1で水和し、すべての成分が溶解して培
地が透明になるまで沸騰させた。次いでこの培地
を水浴中で45〜50℃に冷却し、脱線維素処理した
ヒツジ血液を添加した。培地を撹拌により混合
し、細菌学的標準法により18〜20mlを100mmのペ
トリ皿に分注した。この培地がゲル化したのち、
皿を適当な容器、たとえばプラスチツクフイルム
(セロフアン、ポリエチレン、ナイロンなど)の
筒に入れ、使用時まで2〜8℃に保存した。この
平板はこの方式で12週間保存することができる。 患者(のちにGASを含むことが示された)か
ら得られた咽喉スワブ検体を微生物学的ルーテイ
ン処理に従つて上記の平板状培地および非選択的
血液寒天平板に接種した。次いで接種物を滅菌し
た(火炎で焼いた)生物学的接種ループで広げ、
分散したコロニーを得た。最も高濃度の接種領域
にループで寒天内に数回切り込みを入れ、0.04単
位のバシトラシンデイスクを切り込みから数セン
チメートル離れた位置であるがなお最も濃厚な接
種領域に置いた。次いで平板を35±2℃で炭酸ガ
ス3〜8%の雰囲気で18〜24時間インキユベート
した。 検査に際しては、非選択的血液寒天平板上のβ
−溶血性GASコロニーは培地上に存在する普通
の咽喉菌相の濃厚な増殖と区別することが困難で
あつた。バシトラシンデイスクに対する感受性も
判定が困難であつた。しかし選択試薬を含む平板
状培地によれば普通の咽喉菌相の抑制が優れてお
り、かつGASのβ−溶血がおおい穏されること
なく観察された。バシトラシンデイスクをとり巻
く阻止帯域が明瞭に認められ、GASのβ−溶血
性増殖を、検体接種のわずか18〜24時間後に推定
的に同定することができた。 例 2 上記の例1で製造した培地(A)を、下記の表に+
また−で示したように特定の選択試薬成分を含む
かまたは含まない点を除いて同様な培地(B−
E)と比較した。培地B−Eは市販されている。
The present invention relates to group A Streptococcus (Streptococcus pyogenes,
The present invention relates to the rapid detection and presumptive identification of Streptococcus pyrogenes) using selective blood agar media. The genus Streptococcus, a genus of the Lactobacillus family, is widely distributed in nature. Some strains of the genus Streptococcus are pathogenic to humans and/or animals, while other strains may generally exist as harmless parasites. Streptococci are classified according to the presence of a type of carbohydrate known as Substance C (Lansfield classification system), and there are at least 13 groups (A to O, excluding two alphabets).
) is known. Among these, A
Streptococcus pyogenes (Streptococcus pyogenes) are almost always involved in human infections. However, other groups may also be pathogenic in certain circumstances. Group A Streptococcus (hereinafter referred to as
GAS (abbreviated as GAS) is involved in diseases such as scarlet fever, rheumatic fever, glomerulonephritis, pharyngitis, and sepsis, so confirming the presence of GAS is important in diagnosing the disease and providing appropriate treatment. This will be extremely important when choosing a route. According to the present method for detecting GAS, a specimen is obtained with a cotton or polyester swab in the infected area (eg, pharynx). This swab is then used to inoculate an appropriate medium containing mammalian blood in order to detect the characteristic complete or "β" hemolysis that appears around GAS colonies. However, throat cultures usually contain other microorganisms that may be present in greater numbers, so their growth is
Obscure the hemolysis caused by GAS. The presence of bacitracin-resistant bacteria also impedes determination of bacitracin susceptibility in plates inoculated with specimens. The prior art therefore required the isolation of β-hemolytic bacteria as pure cultures to determine bacitracin susceptibility as an aid to presumptive identification. Therefore, it may take two or more days to obtain information to begin appropriate treatment. Although there are many known antibiotics to which GAS is resistant, there are no single antibiotics or combinations of antibiotics that are completely selective for GAS (i.e. inhibit the growth of most other microorganisms). It has not been done. Therefore, non-group A streptococci and other microorganisms may also grow well on existing selective media, making it difficult to detect the characteristic β-hemolysis caused by GAS. Additionally, false positive results may be obtained if other β-hemolytic bacterial species are present. Although current GAS detection methods are relatively reliable, often achieving an accuracy of >90%, β-hemolytic streptococci are isolated in pure culture to determine bacitracin susceptibility for presumptive identification. There is a need. This takes 2-3 days longer than the method of the invention. Due to the poor selectivity of existing media, considerable skill is required to avoid errors in diagnosis. A more selective medium would result in less estimation error and be confirmed faster, thus increasing GAS
Appropriate treatment would be started earlier to prevent serious sequelae of infection due to A reagent for selectively culturing GAS was provided by the present invention. This reagent is a mixture of (1) a polymyxin or aminoglycoside, (2) a sulfonamide such as sulfamethoxazole, (3) trimethoprim, and (4) crystal violet. When this reagent is included in a culture medium containing mammalian blood, bacteria other than GAS are substantially eliminated;
β-hemolysis around GAS colonies can be observed without blurring. The selective reagents of the present invention provide a substantial improvement in selectivity, so that the presumptive identification of GAS based on susceptibility to bacitracin (0.04 unit disc) and the β-hemolytic zone surrounding the colonies of these microorganisms is possible after specimen inoculation. 18
Obtained within ~24 hours. According to the present invention, a reagent that selectively grows GAS (Streptococcus pyogenes) and substantially inhibits the growth of other microorganisms likely to be present in a biological specimen, such as a specimen collected from a human. According to
GAS detection is improved. This improved selectivity allows determination of bacitracin (0.04 units) sensitivity or serological testing on primary separation plates. Although all of these components were individually known for their antimicrobial properties, this combination of antimicrobial components has not been previously described, and the selection reagent of the present invention exhibits a very significantly improved selectivity for GAS. It was found to give. Especially when the selection reagent is included in a blood-containing culture plate inoculated with a human biological specimen containing GAS, a very distinct β-
A hemolytic pattern is observed and very little extraneous growth of other microorganisms is observed on the plates. Therefore, in most cases, presumptive identification based on bacitracin susceptibility and confirmatory identification based on serological classification tests can be made within 24 hours after specimen inoculation. Polymyxins are multiple substances produced by Bacillus polymyxa, and these substances and their sulfates are known to have antibacterial properties. Polymyxins take several forms including A, B, C, D, E, K, M and P. Preferably polymyxin E sulfate (colistin sulfate) is used as a component of the selection reagent. As an alternative to polymyxin sulfate, aminoglycosides such as gentamicin, amikacin, kanamycin, neomycin or tobramycin can be used. These ingredients are known to be effective against coliform bacteria and other Gram-negative bacteria. Other components of the selection reagent exhibit synergistic activity against alpha-streptococci in combination with sulfonamides, such as sulfamethoxazole, sulfisoxazole, sulfadiazine, or trimethoprim, and are sufficient for use in aqueous media. Others are soluble. A preferred sulfonamide is sulfamethoxazole. Sulfonamides are known to inhibit both Gram-positive and Gram-negative bacteria, but streptococci are largely resistant. The other component of the selection reagent is trimethoprim or trimethoprim lactate. Although trimethoprim is effective in controlling both Gram-positive and Gram-negative bacteria, it is synergistic in combination with sulfonamides, so many microorganisms that are not inhibited by either agent are inhibited when both are present. Ru. A combination of sulfamethoxazole and trimethoprim has previously been used in selective growth media for GAS, but was not effective in inhibiting staphylococci. The final ingredient is crystal violet (also known as gentian violet). This is a mixture of penta and hexamethyl-p-rosanaline chloride. This ingredient is known to inhibit neomycin-resistant staphylococci. Selective reagents according to the present invention generally have about 30.0 to 50.0
Contains mg/(medium). Sulfonamides are generally the largest antimicrobial component by weight, generally around 15-30mg/
(medium) amount used. Polymyxin sulfate is about 10.0 to 20.0, preferably 15.0 mg/(medium)
used in amounts of If an aminoglycoside is used in place of polymyxin, it is present in an amount of about 5.0-30.0 mg/depending on the aminoglycoside used. Trimethoprim is about 5 of the sulfonamides.
% by weight, i.e. preferably about 0.74 to about 1.5 mg/
(medium) amount used. Crystal violet is used in an amount of about 0.1 to about 0.3 mg/(medium). The medium to which the selection reagent is added includes an organic nitrogen source such as peptone, mammalian blood, salt, and a gelling agent, preferably agar. Peptone is approx.
Present in an amount of 15 to about 30g/. Preferred peptones are pancreatic juice digests of casein and papain digests of soybean porridge, with casein digests ranging from about 10 to about
20, preferably 15 g/, and the soybean porridge digest is present in an amount of about 3 to about 8, preferably 5 g/. Agar is about 13 to about 20, preferably 15g/
amount gives a gel of moderate hardness. Sodium chloride is provided in an amount of about 2 to about 8 g/, preferably about 5 g/. Salt concentration is important for proper osmolarity of the gel and prevents premature hemolysis of the blood. Mammalian blood present in an amount of about 4.0 to about 10.0% by volume is obtained from a variety of mammalian sources including sheep and rabbits. Blood is defibrinated before being used in culture media to prevent clotting. As mentioned above, blood is an indicator for hemolytic microorganisms such as GAS, and characteristic hemolysis occurs in the presence of this type of microorganism. β-hemolysis occurs around microbial colonies growing on culture plates containing selective reagents that substantially inhibit the growth of other hemolytic microorganisms.
This strongly indicates the existence of GAS. onto blood-containing culture plates containing the above-mentioned selection reagents.
Additional evidence for the presence of GAS is the absence of β-hemolytic colonies in areas containing bacitracin, an antibiotic produced by bacteria of the Bacillus subtilis group. Bacitracin-impregnated discs (0.04 units) are commercially available to be placed on culture plates to apply this antibiotic to limited areas of the plate. Furthermore, commercially available kits allow serological confirmation identification to be carried out in media containing the above-mentioned selection reagents. Media containing selective reagents provide excellent inhibition of common microorganisms, especially mutant strains of Streptococcus, which are the predominant microorganisms present in most throat cultures. Although suppression of streptococcal mutants is also achieved using a mixture of sulfamethoxazole and trimethoprim alone, the selective reagents of the present invention inhibit staphylococci, other streptococci, and gram-negative bacteria, as well as Neisseria spp. (neisseria) species and S. aeruginosa are also improved. Furthermore, the high degree of selectivity of the selection reagents of the present invention allows for the presumptive identification of GAS (by the presence of hemolytic colonies on the plate and the absence of hemolytic colonies in the area of the bacitracin disk) and serological confirmation classification substantially faster than possible with prior art formulations (i.e., compared to 42-72 hours).
(in 18-24 hours). The invention will now be described in more detail by means of specific embodiments. Example 1 A group A streptococcus selection medium containing the following components was prepared. Ingredients Content per 1 unit of purified water Pancreatic juice digest of casein 15.0g Papain digest of soybean porridge 5.0g Sodium chloride 5.0g Agar 15.0g Colistin sulfate 15.0mg Sulfamethoxazole 23.75mg Trimethoprim 1.25mg Crystal violet 0.2mg Sheep Blood (defibrinization treatment) 50.0ml Components other than sheep blood were appropriately mixed to prepare a homogeneous powder. The powdered medium was hydrated with distilled or deionized water and boiled until all ingredients were dissolved and the medium became clear. The medium was then cooled to 45-50°C in a water bath and defibrinated sheep blood was added. The medium was mixed by agitation and 18-20 ml was dispensed into 100 mm Petri dishes using standard bacteriological methods. After this medium gels,
The dishes were placed in a suitable container, such as a plastic film (cellophane, polyethylene, nylon, etc.) cylinder, and stored at 2-8°C until use. The plates can be stored in this way for 12 weeks. Throat swab specimens obtained from patients (later shown to contain GAS) were inoculated onto the plates and non-selective blood agar plates described above following microbiological routine processing. The inoculum is then spread with a sterile (flamed) biological inoculation loop;
Dispersed colonies were obtained. Several incisions were made in the agar with a loop over the most heavily inoculated area, and a 0.04 unit bacitracin disc was placed several centimeters from the incision, but still in the most heavily inoculated area. The plates were then incubated for 18-24 hours at 35±2° C. in an atmosphere of 3-8% carbon dioxide. For testing, β on non-selective blood agar plates is
- Hemolytic GAS colonies were difficult to distinguish from the dense growth of normal throat bacteria present on the medium. Susceptibility to bacitracin disc was also difficult to determine. However, the plate culture medium containing the selective reagent was excellent in suppressing common throat bacteria, and β-hemolysis of GAS was observed without being significantly inhibited. An inhibition zone surrounding the bacitracin disk was clearly visible and β-hemolytic proliferation of GAS could be presumptively identified only 18-24 hours after specimen inoculation. Example 2 The medium (A) produced in Example 1 above is shown in the table below.
Also, similar media (B-
Compared with E). Medium BE is commercially available.

【表】【table】

【表】 存在する場合の各成分の濃度は上記の例1に明
記した量と等しい。倍地BおよびC中の硫酸ネオ
マイシンの濃度は30mg/である。ナリジキシン
酸の濃度は培地Cにおいては15mg/、培地Dに
おいては10mg/である。 これらの培地をGASの回収および普通の咽喉
検体中に存在する非GASの抑制に関して相対性
能を判定するために、特定の培養について評価し
た。 結果を表1に示す。
Table: The concentrations of each component, if present, are equal to the amounts specified in Example 1 above. The concentration of neomycin sulfate in medium B and C is 30 mg/. The concentration of nalidixic acid is 15 mg/in medium C and 10 mg/in medium D. These media were evaluated for specific cultures to determine their relative performance in GAS recovery and inhibition of non-GAS present in common throat specimens. The results are shown in Table 1.

【表】 ××××優 ×××良 ××可 ×痕跡
量 −なし
上記の表に示した結果は、先行技術において知
られている選択試薬に比して本発明の選択試薬が
もつ驚くべき改善を示す。 例 3 ヒト咽喉検体を用いた研究において、本発明の
選択培地(例1の培地A)およびSXTヒツジ血
液寒天培地(例2の培地E)を非選択的なヒツジ
血液寒天培地(対照)と比較した。咽喉スワブ検
体を3種の培地それぞれに例1に記載した方法で
接種した。接種された培地を次いで35±2℃で炭
酸ガス3〜8%の雰囲気中において18〜24時間イ
ンキユベートした。次表に示すように460種の無
作為咽喉培養物のうち117種は本発明の選択試薬
を含む培地(A)により、100種はSET血液寒天(E)に
より、そしてわずか84種が非選択的対照によつ
て、GASに対し+であつた。
[Table] ×××× Excellent ××× Good ×× Fair × Trace amount - None The results shown in the above table demonstrate the surprising properties of the selective reagent of the present invention compared to the selective reagents known in the prior art. Show the improvements that need to be made. Example 3 Comparison of selective media of the invention (Medium A from Example 1) and SXT sheep blood agar (Medium E from Example 2) with non-selective sheep blood agar (control) in a study using human throat specimens. did. Throat swab specimens were inoculated into each of the three media as described in Example 1. The inoculated medium was then incubated at 35±2° C. in an atmosphere of 3-8% carbon dioxide for 18-24 hours. As shown in the following table, 117 of the 460 random throat cultures were obtained by medium containing the selection reagent of the invention (A), 100 by SET blood agar (E), and only 84 by non-selection. It was positive for GAS by standard control.

【表】 であつた培養
[Table] Hot culture

Claims (1)

【特許請求の範囲】 1 (a)スルホンアミド;(b)トリメトプリム;(c)ポ
リミキシンおよびアミノグリコシドよりなる群か
ら選ばれる成分;ならびに(d)クリスタルバイオレ
ツトの混合物からなるA群連鎖球菌選択試薬。 2 スルホンアミドがスルフアメトキサゾール、
スルフイソキサゾールおよびスルフアジアジンよ
りなる群から選ばれる、特許請求の範囲第1項に
記載の試薬。 3 成分(c)が硫酸コリスチンである、特許請求の
範囲第1項に記載の試薬。 4 成分(c)がゲンタマイシン、アミカシン、カナ
マイシン、トブラマイシンおよびネオマイシンよ
りなる群から選ばれるアミノグリコシドである、
特許請求の範囲第1項に記載の試薬。 5 A群連鎖球菌の増殖を支持する栄養源を含
み、さらに(a)スルホンアミド;(b)トリメトプリ
ム;(c)ポリミキシンおよびアミノグリコシドより
なる群から選ばれる成分;ならびに(d)クリスタル
バイオレツトの混合物からなるA群連鎖球菌以外
の微生物に対して活性を有する選択試薬を含む、
A群連鎖球菌を選択的に培養するための培地。 6 スルホンアミドがスルフアメトキサゾール、
スルフイソキサゾールおよびスルフアジアジンよ
りなる群から選ばれる、特許請求の範囲第5項に
記載の培地。 7 成分(c)が硫酸コリスチンである、特許請求の
範囲第5項に記載の培地。 8 成分(c)がゲンタマイシン、アミカシン、カナ
マイシン、トブラマイシンおよびネオマイシンよ
りなる群から選ばれる、特許請求の範囲第5項に
記載の培地。 9 A群連鎖球菌のための栄養源ならびに(a)スル
ホンアミド;(b)トリメトプリム;(c)ポリミキシン
およびアミノグリコシドよりなる群から選ばれる
成分;ならびに(d)クリスタルバイオレツトの混合
物からなる選択試薬を含む培地を供給し; 該培地にA群連鎖球菌を含むと思われる生物学
的検体を塗抹することにより接種し; 該培地を肉眼で見えるA群連鎖球菌の増殖が得
られ、該検体中に存在する実質的に他のすべての
微生物の増殖を選択的に抑制するのに十分な期間
インキユベートし; そして該培地をβ−溶血コロニーの存在につき
検査する; ことよりなる、低濃度のバシトラシンに対して感
受性のβ−溶血性コロニーを検出することによる
A群連鎖球菌の選択的同定法。 10 スルホンアミドがスルフアメトキサゾー
ル、スルフイソキサゾールおよびスルフアジアジ
ンよりなる群から選ばれる、特許請求の範囲第9
項に記載の方法。 11 成分(c)が硫酸コリスチンである、特許請求
の範囲第9項に記載の方法。 12 成分(c)がゲンタマイシン、アミカシン、カ
ナマイシン、トブラマイシンおよびネオマイシン
よりなる群から選ばれるアミノグリコシドであ
る、特許請求の範囲第9項に記載の方法。 13 バシトラシン含浸デイスクを培地の塗抹領
域の一部に乗せ、そして該領域における溶血の有
無を検出することを含み、デイスク付近に溶血の
無いことは微生物がA群連鎖球菌であることを示
す、特許請求の範囲第12項記載の方法。
Claims: 1. A group A Streptococcus selection reagent comprising a mixture of: 1 (a) a sulfonamide; (b) trimethoprim; (c) a component selected from the group consisting of polymyxins and aminoglycosides; and (d) crystal violet. 2 Sulfonamide is sulfamethoxazole,
The reagent according to claim 1, selected from the group consisting of sulfisoxazole and sulfadiazine. 3. The reagent according to claim 1, wherein component (c) is colistin sulfate. 4 component (c) is an aminoglycoside selected from the group consisting of gentamicin, amikacin, kanamycin, tobramycin and neomycin;
A reagent according to claim 1. 5. A mixture comprising a nutrient source that supports the growth of group A streptococci, and further comprising: (a) a sulfonamide; (b) trimethoprim; (c) a component selected from the group consisting of polymyxins and aminoglycosides; and (d) crystal violet. comprising a selective reagent having activity against microorganisms other than group A streptococci consisting of
A medium for selectively culturing group A streptococci. 6 Sulfonamide is sulfamethoxazole,
The medium according to claim 5, which is selected from the group consisting of sulfisoxazole and sulfadiazine. 7. The medium according to claim 5, wherein component (c) is colistin sulfate. 8. The medium according to claim 5, wherein component (c) is selected from the group consisting of gentamicin, amikacin, kanamycin, tobramycin and neomycin. 9 a nutrient source for group A streptococci and a selective reagent consisting of a mixture of (a) sulfonamides; (b) trimethoprim; (c) a component selected from the group consisting of polymyxins and aminoglycosides; and (d) crystal violet. inoculating the medium by smearing a biological specimen suspected of containing group A streptococci; incubating for a period sufficient to selectively inhibit the growth of substantially all other microorganisms present; and testing the medium for the presence of β-hemolytic colonies; A method for selective identification of group A streptococci by detecting susceptible β-hemolytic colonies. 10. Claim 9, wherein the sulfonamide is selected from the group consisting of sulfamethoxazole, sulfisoxazole and sulfadiazine.
The method described in section. 11. The method according to claim 9, wherein component (c) is colistin sulfate. 12. The method according to claim 9, wherein component (c) is an aminoglycoside selected from the group consisting of gentamicin, amikacin, kanamycin, tobramycin and neomycin. 13 A patent comprising placing a bacitracin-impregnated disk over a portion of a smeared area of culture medium and detecting the presence or absence of hemolysis in the area, the absence of hemolysis in the vicinity of the disk indicating that the microorganism is group A streptococcus. The method according to claim 12.
JP314985A 1984-02-21 1985-01-11 Selective reagent to a-group streptococcus Granted JPS60176599A (en)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US58194384A 1984-02-21 1984-02-21
US581943 1990-09-13

Publications (2)

Publication Number Publication Date
JPS60176599A JPS60176599A (en) 1985-09-10
JPH0456600B2 true JPH0456600B2 (en) 1992-09-08

Family

ID=24327209

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP314985A Granted JPS60176599A (en) 1984-02-21 1985-01-11 Selective reagent to a-group streptococcus

Country Status (4)

Country Link
JP (1) JPS60176599A (en)
CA (1) CA1205029A (en)
DE (1) DE3505311A1 (en)
GB (1) GB2154606B (en)

Families Citing this family (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
AU2003290377A1 (en) * 2003-01-03 2004-07-29 Marton Milankovits Pharmaceutical compositions comprising an antibacterial agent nd antifungal agent and a nitroimidazole for the treatment and prevention of genitourinary infections and their extragenital complications
SK287315B6 (en) 2006-06-02 2010-06-07 Biotika, A. S. A method for polymyxin B isolation from fermented soil
SK287293B6 (en) 2006-06-15 2010-05-07 Biotika, A. S. A method for fermentation of polymyxin B by means of productive microorganism Bacillus polymyxa
JP5118336B2 (en) * 2006-11-28 2013-01-16 日水製薬株式会社 Enterococci detection medium

Also Published As

Publication number Publication date
CA1205029A (en) 1986-05-27
GB2154606B (en) 1987-03-25
JPS60176599A (en) 1985-09-10
DE3505311A1 (en) 1985-12-19
GB2154606A (en) 1985-09-11
DE3505311C2 (en) 1987-05-07
GB8429863D0 (en) 1985-01-03

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Guttier et al. Effect of rifampin and minocycline on meningococcal carrier rates
Heimdahl et al. Isolation of β-lactamase-producing Bacteroides strains associated with clinical failures with penicillin treatment of human orofacial infections
Bantar et al. Species belonging to the" Streptococcus milleri" group: antimicrobial susceptibility and comparative prevalence in significant clinical specimens
Baker Comparison of various methods for differentiation of staphylococci and micrococci
van Horn et al. Selective isolation of vancomycin-resistant enterococci
Weese et al. Survival of Clostridium difficile and its toxins in equine feces: implications for diagnostic test selection and interpretation
Yajko et al. Broth microdilution testing of susceptibilities to 30 antimicrobial agents of Mycobacterium avium strains from patients with acquired immune deficiency syndrome
US20100047852A1 (en) Selective culture medium
US7632657B2 (en) Method of detecting meticillin-resistant microorganisms
Males et al. Virulence factors of biotypes of Staphylococcus epidermidis from clinical sources
AU5006096A (en) Method and culture medium for identification of salmonellae
Bartoov et al. Virulence characteristics of male genital tract Escherichia coll isolated from semen of suspected infertile men
Boyce et al. Nosocomial pneumonia caused by a glucose-metabolizing strain of Neisseria cinerea
Wilkins et al. Medium-dependent inhibition of Peptostreptococcus anaerobius by sodium polyanetholsulfonate in blood culture media
US20040235012A1 (en) Method of detecting antibiotic resistance in microorganisms
JPH0456600B2 (en)
Cassell et al. Comparative susceptibility of Mycoplasma pneumoniae to erythromycin, ciprofloxacin, and lomefloxacin
JP2000116399A (en) Fractionation medium for discrimination between drug sensitive bacillus and drug resistant one, and discrimination used therein
Almwafy Preliminary Characterization and Identification of Gram Positive Hemolysis Bacteria
Blackwell et al. Frequency and some properties of clinical isolates of methicillin-resistant Staphylococcus aureus
Dierksen et al. A new alkaline pH-adjusted medium enhances detection of β-hemolytic streptococci by minimizing bacterial interference due to Streptococcus salivarius
La Zonby et al. Screening method for recovery of methicillin-resistant Staphylococcus aureus from primary plates
Olsson-Liljequist et al. Introducing fosfomycin for surgical prophylaxis-emergence of resistance in aerobic faecal gram-negative bacteria of in-patients, but not among strains causing infection after elective colorectal procedures
JP3380956B2 (en) Staphylococcus aureus detection medium
US6165776A (en) Selective and differential medium for isolation of Listeria Monocytogenes