JPH04295497A - Peptide derivative and its use - Google Patents

Peptide derivative and its use

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JPH04295497A
JPH04295497A JP3062146A JP6214691A JPH04295497A JP H04295497 A JPH04295497 A JP H04295497A JP 3062146 A JP3062146 A JP 3062146A JP 6214691 A JP6214691 A JP 6214691A JP H04295497 A JPH04295497 A JP H04295497A
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JP
Japan
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bzl
obzl
thr
peptide
asp
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JP3062146A
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Japanese (ja)
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Yoshihisa Tsukada
芳久 塚田
Atsushi Ogasa
織笠 敦
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Fujifilm Holdings Corp
Original Assignee
Fuji Photo Film Co Ltd
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Publication date
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  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
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Abstract

PURPOSE:To provide the subject derivative containing the octapeptide unit of formula Glu-I le-Leu-Asp-Val-Pro-Ser-Thr, having activity to inhibit the adhesion of animal cell and the coagulation and cohesion of platelet and useful for suppressing cancer metastasis. CONSTITUTION:The objective peptide derivative of formula II ((n) is 1-3) or its salt can be produced by reacting a dialkyl (diacyl) glycerol (e.g. 1,2- dihexadecylglycerol) with a cyclic acid anhydride (e.g. succinic anhydride) in an organic solvent capable of dissolving the above components (e.g. methylene chloride) in the presence of a base at room temperature to obtain a dialkyl (diacyl) glycerol derivative of formula I (R<1> and R<2> are H, 8-24C acyl or alkyl;(m)is 1-5), separately preparing a protected peptide by successively bonding protected amino acids according to the amino acid sequence of the objective peptide in the presence of a condensation agent and condensing the above compound with the protected peptide in the presence of a carbodiimide in an organic solvent (e.g. chloroform) at room temperature.

Description

【発明の詳細な説明】 【0001】 【産業上の利用分野】本発明は、グルタミン酸−イソロ
イシン−ロイシン−アスパラギン酸−バリン−プロリン
−セリン−トレオニンのオクタペプチド単位を有する、
リポソームあるいはミセル等の分子集合体を形成するの
に最適なペプチド誘導体またはその塩、およびこれを有
効成分とする動物細胞の接着阻害剤並びに血小板凝集・
粘着抑制剤に関する。 【0002】 【従来の技術】フィブロネクチンは細胞−細胞外基質の
接着に関与するタンパク質であり、血小板凝集やガン転
移にも関与していると考えられている。これらの相互作
用は一連の細胞表面のレセプターにより仲介され、フィ
ブロネクチンは分子量約25万の巨大分子であるにもか
かわらず、これらのレセプターがそのアルギニン−グリ
シン−アスパラギン酸(以下、Arg−Gly−Asp
 と略す) 配列を特異的に認識することが明らかにさ
れ、レセプターとの相互作用に重要なものであることが
報告されている(Nature, 309 、30(1
984)) 。以来、Arg−Gly−Asp 配列を
有するオリゴあるいはポリペプチドを用いる研究が成さ
れている例えば、Arg−Gly−Asp 配列を有す
る種々の鎖状および環状のオリゴペプチドを用いて血小
板凝集を阻害する方法(高分子学会予稿集(Polym
er Preprints, Japan) 、38、
3149(1989)、特開平2−174797号) 
、Arg−Gly−Asp 配列を有するペプチドを細
胞移動抑制剤として用いる方法( 特開平2−4716
号) 、Arg−Gly−Asp を固定化した PM
MA 膜を細胞接着膜として用いる方法(高分子学会予
稿集(Polymer Preprints, Jap
an) 、37、705(1988年))が報告されて
いる。さらに、ポリマーにArg−Gly−Asp を
必須構成単位とするペプチドを共有結合させ動物細胞培
養基体、生体複合人工臓器用基体として用いる方法(特
開平1−309682号、特開平1−305960号)
 、Arg−Gly−Asp−Ser 配列を有するポ
リペプチドを体外血液用血小板保護剤として用いる方法
が開示されている(特開昭64−6217 号) 。ま
た、Arg−Gly−Asp配列を有するオリゴペプチ
ドあるいはその繰り返し構造を有するポリペプチドを用
いて、ガン転移を抑制する方法が知られている(Int
. J. Biol. Macromol., 11 
、23、(1989)、同誌、11、226(1086
) 、Jpn. J. Cancer Res., 6
0 、722(1989))。 【0003】一方、最近フィブロネクチン分子内にはA
rg−Gly−Asp配列以外の細胞接着配列が存在す
ることも明らかにされ、そのひとつとしてIII CS
(typeIII homologyconnecti
ng segment)領域内に存在するCS1ペプチ
ド(グルタミン酸−イソロイシン−ロイシン−アスパラ
ギン酸−バリン−プロリン−セリン−トレオニン配列を
含む)が注目されている(J. Biol. Chem
., 262 、6886(1987)) 。このペプ
チドは、Arg−Gly−Asp ペプチドと同様にフ
ィブロネクチンレセプターに認識され、フィブロネクチ
ンの接着特異性に寄与していると考えられている。現在
では、その接着活性の最小単位がグルタミン酸−イソロ
イシン−ロイシン−アスパラギン酸−バリン−プロリン
−セリン−トレオニン(以下、EILDVPSTと略す
)配列を有するオクタペプチドであることが明らかにさ
れている(J. Cell Biol., 107、2
189(1988)) 。 【0004】一方、EILDVPST配列を有するオリ
ゴペプチドあるいはその繰り返し構造を有する、リポソ
ームあるいはミセル等の分子集合体を形成するのに最適
なペプチド誘導体は知られておらず、これらの化合物は
レセプターとの結合能の増強および血液中での安定化が
期待できる。 【0005】 【発明が解決しようとする課題】本発明の目的は、EI
LDVPSTのオクタペプチド単位を有する、ペプチド
誘導体およびその合成法を提供することにある。本発明
の他の目的は、これを有効成分とする動物細胞の接着阻
害剤および血小板凝集・粘着抑制剤を提供することであ
る。 【0006】 【課題を解決するための手段】本発明の化合物は、下記
一般式〔I〕で規定されるペプチド誘導体であり、分子
内に存在するイオン性基は適当なイオンと塩を形成して
もよい。 一般式〔I〕 R1OCH2−CH(OR2)−CH2−OOC−(C
H2)m −CO−([Gly ]−Glu−Ile−
Leu−Asp−Val−Pro−Ser−Thr) 
n 式中、Glu 、Ile 、Leu 、Asp 、
Val 、Pro 、Ser 、Thr は、それぞれ
グルタミン酸、イソロイシン、ロイシン、アスパラギン
酸、バリン、プロリン、セリン、トレオニン残基を表す
。[Gly ]は存在するかあるいは存在しないグリシ
ン残基を表す。mは1から5までの整数を表し、1から
3までの整数が特に好ましい。nは1から3までの整数
を表し、1または2が特に好ましい。R1 およびR2
 は、水素あるいは炭素数8〜24の直鎖または分岐の
アシル基またはアルキル基であり、置換基、不飽和基を
有していてもよい。好ましい炭素数は、12から18ま
でである。アシル基としては、ミリストイル基、パルミ
トイル基、ステアロイル基が好ましい例として示される
。アルキル基としては、ミリスチル基、パルミチル基、
ステアリル基、3,7,11,15−テトラメチルヘキ
サデシル基が好ましい例として示される。R1 、R2
 は同じであっても異なっていてもよい。本発明におい
て、アミノ酸残基はL−、D−、ラセミ体のいずれでも
よいが、L−体が好ましい。また、分子内に存在する不
斉炭素に関しては、ラセミ体でも光学活性体のいずれで
もよい。 【0007】本発明の化合物の好ましい塩の例としては
、ナトリウム塩、カリウム塩、アンモニウム塩、マグネ
シウム塩、塩酸塩、硫酸塩、硝酸塩、酢酸塩が挙げられ
る。以下に、本発明の好ましい化合物例を挙げるが、本
発明はこれらに限られるものではない。 【0008】 【化1】 【0009】 【化2】 【0010】本発明の化合物は、レセプターとの結合能
の増強および血液中での安定化が期待され、EILDV
PST部位がガン細胞、血小板、リンパ球等の表面に存
在するフィブロネクチンレセプターと結合できることを
利用して、ガン転移抑制、血小板凝集抑制、リンパ球活
性化の目的に使用することができる。 【0011】次に本発明の化合物の合成法について説明
する。本発明の化合物は基本的に以下の方法により合成
することができる。 ■  一般式〔II〕で表されるジアルキル(ジアシル
)グリセロールの合成 一般式〔II〕 R1OCH2−CH(OR2)−CH2OH式中、R1
 及びR2 は前記定義のとおりである。 ■  一般式〔III 〕で表されるジアルキル(ジア
シル)グリセロール誘導体の合成。 一般式〔III 〕 R1OCH2−CH(OR2)−CH2−OOC−(C
H2)m −COOH式中、R1 、R2 及びmは前
記定義のとおりである。 ■  保護アミノ酸の逐次延長による保護ペプチドの合
成■  保護ペプチドとジアルキル(ジアシル)グリセ
ロール誘導体の縮合 ■  保護基の除去および精製 以下、各段階について具体的に説明する。 ■  一般式〔II〕で表されるジアルキル(ジアシル
)グリセロールは、公知の方法(例えばBiochem
istry, 2 、394(1963))により合成
することができ、また市販品を購入することもできる。 ■  一般式〔III 〕で表されるジアルキル(ジア
シル)グリセロール誘導体の合成は、ジアルキル(ジア
シル)グリセロールおよび環状酸無水物または酸二塩化
物をこれらが溶解する有機溶媒中で塩基存在下室温で攪
拌することにより合成できる。 ■  保護アミノ酸を逐次伸長する方法は、既知の方法
、すなわち、泉屋ら著「ペプチド合成の基礎と実験」(
丸善)やBodanszky 著“PRINCIPLE
S OF PEPTIDE SYNTHESIS”、”
THE PRACTICE OF PEPTIDE S
YNTHESIS” (Springer Verla
g, New York)に記載されている方法がいず
れも有効である。縮合反応の段階では、DCC−add
itive法、アジド法、混合酸無水物法、活性エステ
ル法のいずれを採用してもよいが、1−ヒドロキシベン
ゾトリアゾールとジシクロヘキシルカルボジイミドを併
用するDCC−additive法が最も良好な結果を
与える。 ■  保護ペプチドとジアルキル(ジアシル)グリセロ
ール誘導体の縮合は、ジアルキル(ジアシル)グリセロ
ール誘導体、保護ペプチド、およびジシクロヘキシルカ
ルボジイミド等の縮合剤をこれらが溶解する有機溶媒中
で室温で攪拌することにより合成できる。 ■  保護基を脱保護するのに用いられる条件は、用い
た保護基の種類に大きく依存する。通常使用される脱保
護条件は、加水素分解、トリフルオロ酢酸、無水フッ化
水素、トリフルオロメタンスルホン酸−チオアニソール
混合系、トリフルオロ酢酸−チオアニソール混合系等で
あるが、保護基の種類によってはさらに多様な手段が可
能である。また、目的物の精製は、シリカゲルクロマト
グラフィーおよびゲルろ過法等を用いることにより行う
ことができる。 【0012】本発明の化合物を分散して製剤を製造する
には、単独の水媒体中への分散あるいは分散助剤の併用
のどちらで行ってもよい。分散助剤としては、卵黄レシ
チン、ジパルミトイルホスファチジルコリン、ジミリス
トイルホスファチジルコリン、ホスファチジルエタノー
ルアミン、ホスファチジン酸、ホスファチジルイノシト
ール、ホスファチジルグリセロール、スフィンゴミエリ
ン、カルジオリピン等に代表される天然または合成の脂
質、あるいはトリトンX−100、ポリエチレングリコ
ール、ベンジルアルコール、ゼラチンなどの分散助剤と
して認可されている医薬品添加物の中から化合物に応じ
て選択される。なお、これらの医薬品添加物に関しては
、日本薬学会1987年発行のファルマシアレビューN
o. 22「医薬品添加物」に詳細に記述されており、
これらの中から選択するのが好ましい。 【0013】本発明に係る分子集合体の製剤中の一般式
〔I〕で表される化合物の配合量は特に限定されないが
、好ましくは分散助剤1に対して0.1〜9.0(重量
比)の配合比である。また、ステロール等の添加物(例
えば、コレステロール、β−シトステロール、スチグマ
ステロール、カルベンステロールなど)を混合してもよ
い。 【0014】一般式〔I〕で表される化合物とリン脂質
を混合して分子集合体を形成させる方法としては、通常
のリポソーム形成法すなわちボルテクシング法(J. 
Mol. Biol., 13 、238(1965)
)、ソニケーション法 (Biochem., 8 、
344(1969))、プレベシクル法(Neuros
ci. Res. Prog. Bull., 9 、
273(1971))、エタノール注入法(Bioch
em. Biophys. Acta, 298、10
15(1973)) 、フレンチプレス法(FEBS.
 Lett.,99、210(1973))、コール酸
除去法(J. Biol. Chem., 246 、
5477(1971)) 、トリトンX−100バッチ
法(Eur. J. Biochem., 85、25
5(1978))、Ca2+融合法(Biochem.
 Biophys. Acta, 394 、483(
1975))、エーテル注入法(Biochem. B
iophys. Acta, 443 、629(19
76))、アニーリング法(Biochem. Bio
phys. Acta, 443、313(1976)
)、凍結融解融合法(J. Biol. Chem.,
 252 、7384(1977)) 、W/O/Wエ
マルジョン法(J. Colloid Interfa
ce Sci., 62 、149(1977))、逆
相蒸発法(Pro. Natl. Acad. Sci
. USA, 75 、4194(1978)) など
の方法が知られているが、本発明では上記のいずれの調
製法を用いてもよく、またこれらに限定されるものでは
ない。 【0015】本発明で用いられるペプチド誘導体の投与
方法は、ペプチド系医薬に一般に使用されている投与方
法、すなわち非経口投与方法、例えば静脈内投与、筋肉
内投与、皮下投与等によって投与するのが好ましい。そ
のような注射用製剤を製造する場合、本発明のペプチド
誘導体を例えば、後記実施例で示すようにPBS(Na
H2PO4 5mM, NaCl 70mM) または
生理食塩水に分散して、注射用製剤としてもよく、ある
いは0.1N程度の酢酸水等に分散した後、凍結乾燥製
剤としてもよい。この際上記の分散助剤を用いてもよい
。このような製剤には、グリシンやアルブミン等の慣用
の安定化剤を添加してもよく、血中半減期を延長させる
等の目的のためコラーゲンやリポソーム等を担体として
もよい。 【0016】さらに、本発明のペプチド誘導体は、例え
ばリポソーム中に包含したマイクロカプセル剤とすれば
、経口投与することも可能であり、座薬、舌下剤、点鼻
スプレー剤等の形態にすれば、消化管以外からの粘膜か
ら吸収させることも可能である。本発明のペプチド誘導
体は、細胞接着性タンパク質のコア配列(EILDVP
ST)を有し、該コア配列を介して細胞接着性タンパク
質と同様の機序で細胞に接着する。そのため、細胞接着
性タンパク質のアゴニストまたはアンダゴニストとして
様々の生物活性を示す。その他にも、免疫調整作用、創
傷治癒作用、毛細血管中で起る癌細胞による血小板凝集
の抑制作用、神経疾患治癒作用等の広範な生物活性が認
められる。 【0017】したがって、本発明のペプチド誘導体は、
その少なくとも1種類を、場合により慣用の担体または
医薬用製剤とともに癌転移抑制剤、創傷治癒剤、免疫抑
制剤、血小板凝集抑制剤または神経疾患治療剤として患
者に投与することが可能である。特に動物細胞接着阻害
剤または血小板凝集・粘着抑制剤としての使用が好まし
い。その投与量は、0.2μg/kg〜400mg/k
gの範囲で症状、年齢、体重等に基づいて決定される。 【0018】以下に本発明の化合物の合成例を示すが、
本発明はこれらに限定されるものではない。なお、アミ
ノ酸、各種保護基および脱保護試薬は通常用いられてい
る略号を使って表した。また、他の化合物例もここに例
示した方法で合成できる。 【0019】 【実施例】実施例1 以下に本発明の化合物1の合成例を示す。また、化合物
2〜7もここに例示した方法で合成できる。 ジアルキルグリセロールの合成 C16H33OCH2CH(OC16H33)CH2O
Hの合成文献(Synthesis, 503,(19
85))記載の方法により調製した1−ベンジルグリセ
ロール12.0gをトルエン300mlに溶かし、この
溶液に粉末水酸化カリウム16.0gと1−ブロモヘキ
サデカン82gを加え、反応混合物を8時間加熱還流し
た。反応液を室温になるまで放冷したのちヘキサン40
0mlで希釈した。水200mlで2回洗浄後無水硫酸
ナトリウムにて乾燥した。硫酸ナトリウムをろ過して除
き、ろ液を減圧濃縮して無色油状物を得た。 これをシリカゲルクロマトグラフィー(溶出液  ヘキ
サン/酢酸エチル=40:1)で精製し、1,2−ジヘ
キサデシル−3−ベンジルグリセロールを41.2g(
収率95.5%)得た。物性値は文献(Biochem
isrry, 2 、394(1963))記載のそれ
と一致した。 【0020】得られた1,2−ジヘキサデシル−3−ベ
ンジルグリセロールを酢酸エチル250mlに溶解し、
10%パラジウム−炭素1.5gを加えて、反応混合物
を水素雰囲気下8時間反応させた。不溶性物質をセライ
トろ過して除き、セライト層を酢酸エチルで洗浄した。 ろ液、洗液をあわせて減圧濃縮した。残渣を酢酸エチル
から再結晶してジアルキルグリセロールC16H33O
CH2CH(OC16H33)CH2OHを無色結晶(
34.4g)として得た。物性値は文献(Bioche
misrry, 2 、394(1963))記載のそ
れと一致した。 【0021】ジアルキルグリセロール誘導体の合成C1
6H33OCH2CH(OC16H33)CH2OOC
(CH2)2COOH の合成1,2−ジヘキサデシル
グリセロール(27g、50mmol)、コハク酸無水
物(7.5g、75mmol)、ジイソプロピルエチル
アミン(9.7g、75mmol)、ジメチルアミノピ
リジン(1g)、塩化メチレン(300ml)の混合物
を室温で12時間攪拌した。反応液を1N炭酸水素ナト
リウム水溶液で数回洗浄し、有機層を無水硫酸ナトリウ
ムで乾燥した。硫酸ナトリウムをろ過して除き、ろ液を
減圧濃縮してジアルキルグリセロール誘導体C16H3
3OCH2CH(OC16H33)CH2OOC(CH
2)2COOH を無色結晶(32g)として得た。 【0022】保護ペプチドの合成 BocSer(Bzl)Thr(Bzl)OBzl(N
O2)の合成BocThr(Bzl)(国産化学(株)
から購入)(15.5g、50mmol)、ジイソプロ
ピルエチルアミン(6.46g)、p−ニトロベンジル
ブロミド(10.8g)、酢酸エチル(200ml)の
混合物を3時間加熱還流した。反応液を室温になるまで
放冷した後に、1N炭酸水素ナトリウム水溶液、飽和食
塩水各200mlで洗浄し、無水硫酸ナトリウムで乾燥
した。硫酸ナトリウムをろ過して除き、ろ液を減圧濃縮
して無色油状物BocThr(Bzl)OBzl(NO
2)を定量的に得た。これにクロロホルム(100ml
)、トリフルオロ酢酸(50ml)を加え、室温で30
分間反応させた。溶媒を減圧留去した後に酢酸エチル(
250ml)を加え、1N炭酸水素ナトリウム水溶液、
飽和食塩水2各200mlで洗浄し、無水硫酸ナトリウ
ムで乾燥した。硫酸ナトリウムをろ過して除き、ろ液を
減圧濃縮して無色油状物Thr(Bzl)OBzl(N
O2) を定量的に得た。これにBocSer(Bzl
)(国産化学(株)から購入)(14.8g、50mm
ol)、DCC(11.4g、55mmol)、HOB
t(6.9g、45mmol)、DMF(150ml)
を加え、0℃で30分間、室温で24時間反応させた。 DCUrea を除去した後に溶媒を減圧留去し、クロ
ロホルム100mlを加え、1N炭酸水素ナトリウム水
溶液、飽和食塩水各200mlで洗浄し、無水硫酸ナト
リウムで乾燥した。硫酸ナトリウムをろ過して除き、ろ
液を減圧濃縮してシリカゲルクロマトグラフィー(溶出
液  ヘキサン/酢酸エチル  40:1)により精製
し、BocSer(Bzl)Thr(Bzl)OBzl
(NO2)を無色油状物(28.3g)として得た。 BocProSer(Bzl)Thr(Bzl)OBz
l(NO2) の合成BocSer(Bzl)Thr(
Bzl)OBzl(NO2)(28.0g、45mmo
l)、BocPro(国産化学(株)から購入)(9.
69g、45mmol)、DCC(10.3g、50m
mol)、HOBt(6.1g、40mmol)、DM
F(150ml)を加え、0℃で30分間、室温で24
時間反応させた。DCUrea を除去した後に溶媒を
減圧留去し、クロロホルム100mlを加え、1N炭酸
水素ナトリウム水溶液、飽和食塩水各200mlで洗浄
し、無水硫酸ナトリウムで乾燥した。 硫酸ナトリウムをろ過して除き、ろ液を減圧濃縮してシ
リカゲルクロマトグラフィー(溶出液  クロロホルム
/メタノール  99:1)により精製し、BocPr
oSer(Bzl)Thr(Bzl)OBzl(NO2
) を無色油状物(29.8g)として得た。 BocValProSer(Bzl)Thr(Bzl)
OBzl(NO2)の合成BocProSer(Bzl
)Thr(Bzl)OBzl(NO2)(28.8g、
40mmol)、BocVal(国産化学(株)から購
入)(8.7g、40mmol)、DCC(9.3g、
45mmol)、HOBt(5.4g、35mmol)
、DMF(150ml)を加え、BocProSer(
Bzl)Thr(Bzl)OBzl(NO2) の合成
と同様に行った。BocValProSer(Bzl)
Thr(Bzl)OBzl(NO2)を無色油状物(2
9.4g)として得た。 BocAsp(OBzl)ValProSer(Bzl
)Thr(Bzl)OBzl(NO2) の合成Boc
ValProSer(Bzl)Thr(Bzl)OBz
l(NO2)(28.6g、35mmol)、BocA
sp(OBzl)(国産化学(株)から購入)(11.
3g、35mmol)、DCC(8.3g、40mmo
l)、HOBt(4.6g、30mmol)、DMF(
150ml)を加え、BocProSer(Bzl)T
hr(Bzl)OBzl(NO2) の合成と同様に行
った。BocAsp(OBzl)ValProSer(
Bzl)Thr(Bzl)OBzl(NO2) を無色
油状物(33.7g)として得た。 BocLeuAsp(OBzl)ValProSer(
Bzl)Thr(Bzl)OBzl(NO2)の合成 BocAsp(OBzl)ValProSer(Bzl
)Thr(Bzl)OBzl(NO2)(32.7g、
32mmol)、BocLeu(国産化学(株)から購
入)(7.4g、32mmol)、DCC(7.2g、
35mmol)、HOBt(4.6g、30mmol)
、DMF(150ml)を加え、BocProSer(
Bzl)Thr(Bzl)OBzl(NO2) の合成
と同様に行った。BocLeuAsp(OBzl)Va
lProSer(Bzl)Thr(Bzl)OBzl(
NO2)を無色油状物(33.5g)として得た。 BocIleLeuAsp(OBzl)ValProS
er(Bzl)Thr(Bzl)OBzl(NO2) 
の合成 BocLeuAsp(OBzl)ValProSer(
Bzl)Thr(Bzl)OBzl(NO2)(33.
0g、29mmol)、BocIle(国産化学(株)
から購入)(6.7g、29mmol)、DCC(6.
8g、33mmol)、HOBt(3.8g、25mm
ol)、DMF(150ml)を加え、BocProS
er(Bzl)Thr(Bzl)OBzl(NO2) 
の合成と同様に行った。BocIleLeuAsp(O
Bzl)ValProSer(Bzl)Thr(Bzl
)OBzl(NO2) を無色油状物(34.1g)と
して得た。 BocGlu(OBzl)IleLeuAsp(OBz
l)ValProSer(Bzl)Thr(Bzl)O
Bzl(NO2)の合成 BocIleLeuAsp(OBzl)ValProS
er(Bzl)Thr(Bzl)OBzl(NO2)(
33.7g、27mmol)、BocGlu(OBzl
)(国産化学(株)から購入)(9.1g、27mmo
l)、DCC(6.2g、30mmol)、HOBt(
3.8g、25mmol)、DMF(150ml)を加
え、BocProSer(Bzl)Thr(Bzl)O
Bzl(NO2) の合成と同様に行った。BocGl
u(OBzl)IleLeuAsp(OBzl)Val
ProSer(Bzl)Thr(Bzl)OBzl(N
O2)を無色油状物(34.1g)として得た。 Glu(OBzl)IleLeuAsp(OBzl)V
alProSer(Bzl)Thr(Bzl)OBzl
(NO2) の合成 BocGlu(OBzl)IleLeuAsp(OBz
l)ValProSer(Bzl)Thr(Bzl)O
Bzl(NO2)(1.47g、1mmol)を塩化メ
チレン10mlに溶解し、トリフルオロ酢酸10mlを
加えて室温で30分間攪拌した。溶媒を減圧留去した後
にクロロホルム100mlに加え、1N炭酸水素ナトリ
ウム水溶液、飽和食塩水各100mlで数回洗浄し、無
水硫酸ナトリウムで乾燥した。硫酸ナトリウムをろ過し
て除き、ろ液を減圧濃縮してGlu(OBzl)Ile
LeuAsp(OBzl)ValProSer(Bzl
)Thr(Bzl)OBzl(NO2) を無色油状物
(1.37g)として得た。 【0023】保護ペプチドとジアルキルグリセロール誘
導体の縮合 C16H33OCH2CH(OC16H33)CH2O
OC(CH2)2CO−Glu(OBzl)IleLe
uAsp(OBzl)ValProSer(Bzl)T
hr(Bzl)OBzl(NO2) の合成Glu(O
Bzl)IleLeuAsp(OBzl)ValPro
Ser(Bzl)Thr(Bzl)OBzl(NO2)
(1.37g、1mmol)とC16H33OCH2C
H(OC16H33)CH2OOC(CH2)2COO
H(0.64g、1mmol)、ジシクロヘキシルカル
ボジイミド(0.23g、1.1mmol)、クロロホ
ルム20mlの混合物を室温で24時間攪拌した。シリ
カゲルクロマトグラフィー(溶出液  クロロホルム・
酢酸エチル  90:10)により精製し、C16H3
3OCH2CH(OC16H33)CH2OOC(CH
2)2CO−Glu(OBzl)IleLeuAsp(
OBzl)ValProSer(Bzl)Thr(Bz
l)OBzl(NO2) を白色粉末(1.83g)と
して得た。 【0024】脱保護および精製 化合物(1)の合成 C16H33OCH2CH(OC16H33)CH2O
OC(CH2)2CO−Glu(OBzl)IleLe
uAsp(OBzl)ValProSer(Bzl)T
hr(Bzl)OBzl(NO2) (1.83g)を
酢酸50mlに溶解し、10%パラジウム炭素1gを加
え、室温で常圧加水素分解を24時間行った。触媒をセ
ライトを用いてろ別し、溶媒を減圧留去した。シリカゲ
ルクロマトグラフィー(溶出液クロロホルム・メタノー
ル・水  65:25:4)により精製し、化合物(1
)を1.31g得た。 【0025】FAB−MS    1495  (M−
H)アミノ酸分析:Glu(0.91), Ile(1
.20), Leu(1.13), Asp(0.98
), Val(0.89), Pro(0.94), 
Ser(0.92), Thr(0.89)実施例2 以下に化合物(2)の合成例を示す。 【0026】実施例1記載の方法にしたがい、化合物(
2)を合成した。1−ブロモヘキサデカンを1−ブロモ
オクタデカンに、コハク酸無水物をグルタル酸無水物に
、それぞれ変更してグリセロール誘導体を合成した。 FAB−MS    1565  (M−H)アミノ酸
分析:Glu(1.09), Ile(1.05), 
Leu(1.06), Asp(0.92), Val
(0.97), Pro(0.91), Ser(0.
83), Thr(0.82)実施例3 以下に化合物(3)の合成例を示す。 【0027】実施例1記載の方法にしたがい、化合物(
3)を合成した。1−ブロモヘキサデカンを1−ヨード
−3,7,11,15−テトラメチルヘキサデカンに変
更してグリセロール誘導体を合成した。 FAB−MS    1607  (M−H)アミノ酸
分析:Glu(0.97), Ile(1.05), 
Leu(0.99), Asp(1.04), Val
(1.11), Pro(0.90), Ser(0.
82), Thr(0.81)実施例4 以下に化合物(4)の合成例を示す。 【0028】実施例1記載の方法にしたがい、化合物(
4)を合成した。1−ブロモヘキサデカンを1−ブロモ
ドデカンに、コハク酸無水物をマロニルジクロリドに、
それぞれ変更してグリセロール誘導体を合成した。 FAB−MS    1369  (M−H)アミノ酸
分析:Glu(1.10), Ile(1.09), 
Leu(1.00), Asp(1.02), Val
(1.09), Pro(0.94), Ser(0.
79), Thr(0.81)実施例5 以下に化合物(5)の合成例を示す。また、化合物(6
)、(7)もここに例示した方法で合成できる。 【0029】文献(Synthesis, 503(1
985)) 記載の方法により調製した1−ベンジルグ
リセロール18gを塩化メチレン100mlに溶解し、
パルミトイルクロリド55g、トリエチルアミン20.
2gを加え、室温で12時間攪拌した。これを1N炭酸
水素ナトリウム水溶液、飽和食塩水各100mlで数回
洗浄し、無水硫酸ナトリウムで乾燥した。硫酸ナトリウ
ムをろ過して除き、ろ液を減圧濃縮してシリカゲルクロ
マトグラフィー(溶出液  ヘキサン:酢酸エチル  
40:1)により精製した。1,2−ジパルミトイル−
3−ベンジル−グリセロールを無色結晶として60g得
た。以下、実施例1記載の方法で合成した。 【0030】FAB−MS    1523  (M−
H)アミノ酸分析:Glu(1.09), Ile(1
.03), Leu(1.05), Asp(0.94
), Val(1.11), Pro(0.99), 
Ser(0.78), Thr(0.83)実施例6 以下に化合物(6)の合成例を示す。 【0031】実施例5記載の方法にしたがい、化合物(
6)を合成した。保護ペプチドの合成は、BocGlu
(OBzl)IleLeuAsp(OBzl)ValP
roSer(Bzl)Thr(Bzl)OBzl(NO
2)をトリフルオロ酢酸で処理してBoc 基を除去し
たGlu(OBzl)IleLeuAsp(OBzl)
ValProSer(Bzl)Thr(Bzl)OBz
l(NO2) とBocGlu(OBzl)IleLe
uAsp(OBzl)ValProSer(Bzl)T
hr(Bzl)OBzl(NO2)を亜鉛/酢酸で処理
してp−ニトロベンジル基を除去したBocGlu(O
Bzl)IleLeuAsp(OBzl)ValPro
Ser(Bzl)Thr(Bzl) をDCC−HOB
t 法によりフラグメント縮合した。 【0032】FAB−MS    2378  (M−
H)アミノ酸分析:Glu(0.97), Ile(1
.08), Leu(1.02), Asp(0.99
), Val(1.07), Pro(0.94), 
Ser(0.85), Thr(0.79)実施例7 以下に化合物(7)の合成例を示す。 【0033】実施例5記載の方法にしたがい、化合物(
7)を合成した。パルミトイルクロリドをステアロイル
クロリドに変更してグリセロール誘導体を合成した。 保護ペプチドの合成は、Glu(OBzl)IleLe
uAsp(OBzl)ValProSer(Bzl)T
hr(Bzl)OBzl(NO2)からさらにBocG
lyをDCC−HOBt 法により逐次延長した。 FAB−MS    1650  (M−H)アミノ酸
分析:Gly(1.08), Glu(0.97), 
Ile(1.01), Leu(1.09), Asp
(1.06), Val(1.08), Pro(0.
98), Ser(0.88), Thr(0.89) 実施例8 以下に本発明の化合物(1)の製剤例を示す。また、化
合物(2)〜(7)もここに例示した方法で製剤化でき
る。 【0034】本発明の化合物(1)(10mg)をクロ
ロホルムに溶解し、溶媒を減圧留去して薄膜を形成させ
た。室温で1時間乾燥させた後に、PBS(10ml)
を加えてブランソン社製超音波ホモジナイザーモデル2
50型で20W、15分間分散した。分散液をミリポア
社製マイレクスGVによりろ過滅菌して注射用製剤を調
製した。この製剤は、動物細胞用の接着阻害剤および血
小板凝集・粘着抑制剤として使用可能である。 実施例9 以下に本発明の化合物5の製剤例を示す。また、化合物
(1)〜(4)、(6)、(7)もここに例示した方法
で製剤化できる。 【0035】本発明の化合物(5)(5mg)、ジパル
ミトイルホスファチジルコリン(5mg)をクロロホル
ムに溶解し、溶媒を減圧留去して薄膜を形成させた。室
温で1時間乾燥させた後に、生理食塩水(10ml)を
加えてブランソン社製超音波ホモジナイザーモデル25
0型で20W、15分間分散した。分散液をミリポア社
製マイレクスGVによりろ過滅菌して注射用製剤を調製
した。 この製剤は、動物細胞用の接着阻害剤および血小板凝集
・粘着抑制剤として使用可能である。 実施例10 以下に本発明の化合物(3)の製剤例を示す。また、化
合物(1)、(2)、(4)〜(7)もここに例示した
方法で製剤化できる。 【0036】本発明の化合物(3)(5mg)、卵黄レ
シチン(5mg)、コレステロール(5mg)をクロロ
ホルムに溶解し、溶媒を減圧留去して薄膜を形成させた
。室温で1時間乾燥させた後に、生理食塩水(10ml
)を加えてブランソン社製超音波ホモジナイザーモデル
250型で20W、15分間分散した。分散液をミリポ
ア社製マイレクスGVによりろ過滅菌して注射用製剤を
調製した。この製剤は、動物細胞用の接着阻害剤および
血小板凝集・粘着抑制剤として使用可能である。 実施例11 以下に本発明の化合物の試験例(細胞接着阻害活性の測
定)を示す。 【0037】本発明のペプチド誘導体は、細胞のフィブ
ロネクチンに対する接着を阻害する。その活性測定方法
は、基本的に生化学の分野で広く用いられている競争法
であり、例えば特開平1−309682号、特開平2−
174797号、Methods in Enzymo
logy 第82巻、803(1981) に開示され
ている。 1)  吸着プレートの作製 市販のヒト由来のフィブロネクチン(コスモバイオ(株
)から購入)をPBS(リン酸緩衝液)で10μg/m
lに溶解し、その溶液50μlを96wellのポリス
チレンプレートに入れ、4℃で一晩保温してコーティン
グした。次に非特異吸着を防ぐ目的で牛血清アルブミン
(BSA1%)を加え、37℃、1時間保温し、その後
洗浄操作(PBS)を行い充分に水切りして吸着プレー
トを作製した。 2)  接着阻害実験 Dulbecco’s Modified Eagle
s Medium に分散したペプチド誘導体分散液5
0μlを上記の方法で作製したプレートに入れ、そこへ
NRK49F(1×106cells/ml)懸濁液を
50μl加え、37℃で1時間保温し、細胞を接着させ
た。PBSで3回洗浄し、未接着の細胞を除去した後、
0.025%EDTAトリプシン溶液で接着した細胞を
剥離し、0.2%トリパンプルーで染色して細胞数を計
測した。結果を表1に示す。表中、EILDVPSTは
グルタミン酸−イソロイシン−ロイシン−アスパラギン
酸−バリン−プロリン−セリン−トレオニンのオクタペ
プチドを表す。 【0038】                          
   表  1  ────────────────
─────────────────        
      フィブロネクチンに対する細胞の接着率(
%)     ペプチド誘導体     0     
 0.25     0.5      1.0   
  2.0(mg/ml)    ─────────
──────────────────────── 
     EILDVPST        100 
     70       25      22 
        19         化合物1  
      100      63       3
1      22         13     
    化合物2        100      
65       25      20      
   14         化合物3       
 100      63       29    
  23         17         化
合物4        100      62   
    25      18         10
         化合物5        100 
     68       29      21 
        13         化合物6  
      100      66       2
1      16         10     
    化合物7        100      
64       24      15      
   11     ───────────────
──────────────────実施例12 以下に本発明の化合物の試験例(血小板凝集阻害活性の
測定)を示す。 【0039】本発明のペプチド誘導体のIN  VIT
RO系での血小板凝集抑制作用をヒト多血小板血漿を用
いて検定した。 実験方法 新鮮なヒト血液に1/9量の3.8%クエン酸ナトリウ
ムを加え、遠心分離(1000rpm 、10分間)を
して、上層を多血小板血漿として分取した。この血漿2
00μlにペプチド誘導体25μl(max 1.5m
g/ml)を加え、3分間37℃でインキュベートした
後、20〜50μM ADP(アデノシン2リン酸)溶
液あるいは200μl/mlのコラーゲン溶液を25μ
l加えて、凝集の程度をアグリゴメーターを用いて透過
度を測定することにより検定した。結果を表2に示す。 【0040】凝集阻害率(%)  (1−T/T0)×
100T0 :ペプチド誘導体非添加時の透過度T  
:ペプチド誘導体添加時の透過度【0041】 【配列表】 【0042】配列番号:1 配列の長さ:8 配列の型:アミノ酸 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ペプチド フラグメント型:C末端フラグメント 【0043】配列番号:2 配列の長さ:16 配列の型:アミノ酸 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ペプチド フラグメント型:C末端フラグメント 配列 Glu Ile Leu Asp Val Pro S
er Thr Glu Ile Leu Asp Va
l Pro Ser Thr   1        
       5                 
 10                  15 【
0044】配列番号:3 配列の長さ:9 配列の型:アミノ酸 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ペプチド フラグメント型:C末端フラグメント
Detailed Description of the Invention [0001] [Industrial Application Field] The present invention provides a glutamic acid-isoleucine-leucine-aspartic acid-valine-proline-serine-threonine octapeptide unit.
Peptide derivatives or their salts that are optimal for forming molecular aggregates such as liposomes or micelles, and animal cell adhesion inhibitors and platelet aggregation inhibitors containing these as active ingredients.
Relating to adhesion inhibitors. [0002] Fibronectin is a protein involved in cell-extracellular matrix adhesion, and is also thought to be involved in platelet aggregation and cancer metastasis. These interactions are mediated by a series of cell surface receptors, and although fibronectin is a large molecule with a molecular weight of approximately 250,000, these receptors
(abbreviated as )) has been shown to specifically recognize sequences, and has been reported to be important for interaction with receptors (Nature, 309, 30 (1)
984)). Since then, research has been conducted using oligos or polypeptides having the Arg-Gly-Asp sequence.For example, methods for inhibiting platelet aggregation using various linear and cyclic oligopeptides having the Arg-Gly-Asp sequence. (Proceedings of the Society of Polymer Science and Technology)
er Preprints, Japan), 38,
3149 (1989), Japanese Patent Application Publication No. 2-174797)
, a method using a peptide having an Arg-Gly-Asp sequence as a cell migration inhibitor (Japanese Patent Application Laid-Open No. 2-4716
PM with immobilized Arg-Gly-Asp
Method of using MA membrane as a cell adhesion membrane (Proceedings of the Society of Polymer Science and Technology (Polymer Preprints, Jap
an), 37, 705 (1988)). Furthermore, a method in which a peptide having Arg-Gly-Asp as an essential constituent unit is covalently bonded to a polymer and used as a substrate for animal cell culture and a substrate for biocomposite artificial organs (JP-A-1-309682, JP-A-1-305960)
, a method of using a polypeptide having the Arg-Gly-Asp-Ser sequence as a platelet protecting agent for extracorporeal blood has been disclosed (Japanese Patent Laid-Open No. 64-6217). Furthermore, a method of suppressing cancer metastasis using an oligopeptide having an Arg-Gly-Asp sequence or a polypeptide having a repeating structure thereof is known (Int
.. J. Biol. Macromol. , 11
, 23, (1989), same magazine, 11, 226 (1086
), Jpn. J. Cancer Res. , 6
0, 722 (1989)). On the other hand, recently, A
It has also been revealed that there are cell adhesion sequences other than the rg-Gly-Asp sequence, one of which is III CS.
(type III homology connection
The CS1 peptide (containing the glutamic acid-isoleucine-leucine-aspartic acid-valine-proline-serine-threonine sequence) present in the ng segment) region has been attracting attention (J. Biol. Chem
.. , 262, 6886 (1987)). This peptide, like the Arg-Gly-Asp peptide, is recognized by the fibronectin receptor and is thought to contribute to the adhesion specificity of fibronectin. It has now been revealed that the smallest unit of adhesive activity is an octapeptide having a glutamic acid-isoleucine-leucine-aspartic acid-valine-proline-serine-threonine (hereinafter abbreviated as EILDVPST) sequence (J. Cell Biol., 107, 2
189 (1988)). [0004] On the other hand, peptide derivatives that are optimal for forming molecular aggregates such as liposomes or micelles that have oligopeptides having the EILDVPST sequence or repeating structures thereof are not known, and these compounds are difficult to bind to receptors. It is expected that this drug will enhance the drug's ability and stabilize it in the blood. [0005] An object of the present invention is to solve the problem of EI
An object of the present invention is to provide a peptide derivative having an octapeptide unit of LDVPST and a method for synthesizing the same. Another object of the present invention is to provide an animal cell adhesion inhibitor and a platelet aggregation/adhesion inhibitor containing this as an active ingredient. [Means for Solving the Problems] The compound of the present invention is a peptide derivative defined by the following general formula [I], and the ionic group present in the molecule forms a salt with an appropriate ion. You can. General formula [I] R1OCH2-CH(OR2)-CH2-OOC-(C
H2) m -CO-([Gly]-Glu-Ile-
Leu-Asp-Val-Pro-Ser-Thr)
n in the formula, Glu, He, Leu, Asp,
Val, Pro, Ser, and Thr represent glutamic acid, isoleucine, leucine, aspartic acid, valine, proline, serine, and threonine residues, respectively. [Gly] represents a glycine residue, present or absent. m represents an integer from 1 to 5, and integers from 1 to 3 are particularly preferred. n represents an integer from 1 to 3, with 1 or 2 being particularly preferred. R1 and R2
is hydrogen or a linear or branched acyl group or alkyl group having 8 to 24 carbon atoms, and may have a substituent or an unsaturated group. The preferred carbon number is from 12 to 18. Preferred examples of the acyl group include myristoyl group, palmitoyl group, and stearoyl group. Alkyl groups include myristyl group, palmityl group,
Preferred examples include a stearyl group and a 3,7,11,15-tetramethylhexadecyl group. R1, R2
may be the same or different. In the present invention, the amino acid residue may be L-, D-, or racemic, but L-form is preferred. Furthermore, the asymmetric carbon present in the molecule may be either a racemic form or an optically active form. Examples of preferred salts of the compounds of the present invention include sodium salts, potassium salts, ammonium salts, magnesium salts, hydrochlorides, sulfates, nitrates, and acetates. Preferred examples of compounds of the present invention are listed below, but the present invention is not limited thereto. [0008] The compound of the present invention is expected to enhance binding ability with receptors and stabilize in blood, and is effective in EILDV.
Utilizing the fact that the PST site can bind to fibronectin receptors present on the surfaces of cancer cells, platelets, lymphocytes, etc., it can be used for the purposes of suppressing cancer metastasis, platelet aggregation, and lymphocyte activation. Next, a method for synthesizing the compound of the present invention will be explained. The compound of the present invention can basically be synthesized by the following method. ■ Synthesis of dialkyl (diacyl)glycerol represented by general formula [II] General formula [II] R1OCH2-CH(OR2)-CH2OH In the formula, R1
and R2 are as defined above. ■ Synthesis of a dialkyl (diacyl)glycerol derivative represented by the general formula [III]. General formula [III] R1OCH2-CH(OR2)-CH2-OOC-(C
H2) m -COOH In the formula, R1, R2 and m are as defined above. ■ Synthesis of protected peptide by sequential elongation of protected amino acids ■ Condensation of protected peptide and dialkyl (diacyl)glycerol derivative ■ Removal and purification of protecting groups Each step will be explained in detail below. ■ The dialkyl (diacyl)glycerol represented by the general formula [II] can be prepared by a known method (for example, Biochem
istry, 2, 394 (1963)), or commercially available products. ■ The synthesis of the dialkyl (diacyl) glycerol derivative represented by the general formula [III] is carried out by stirring dialkyl (diacyl) glycerol and a cyclic acid anhydride or acid dichloride in an organic solvent in which they are dissolved at room temperature in the presence of a base. It can be synthesized by ■ The method of sequentially elongating protected amino acids is a known method, i.e., "Basics and Experiments of Peptide Synthesis" by Izumiya et al.
Maruzen) and “PRINCIPLE” by Bodanszky
S OF PEPTIDE SYNTHESIS”,”
THE PRACTICE OF PEPTIDES
YNTHESIS” (Springer Verla
All methods described in J. G., New York) are effective. In the condensation reaction stage, DCC-add
Although any of the itive method, azide method, mixed acid anhydride method, and active ester method may be employed, the DCC-additive method using a combination of 1-hydroxybenzotriazole and dicyclohexylcarbodiimide gives the best results. (2) Condensation of a protected peptide and a dialkyl (diacyl) glycerol derivative can be synthesized by stirring the dialkyl (diacyl) glycerol derivative, the protected peptide, and a condensing agent such as dicyclohexylcarbodiimide in an organic solvent in which they are dissolved at room temperature. ■ The conditions used to deprotect a protecting group are highly dependent on the type of protecting group used. Commonly used deprotection conditions include hydrolysis, trifluoroacetic acid, anhydrous hydrogen fluoride, trifluoromethanesulfonic acid-thioanisole mixed system, trifluoroacetic acid-thioanisole mixed system, etc., but depending on the type of protecting group. Even more diverse methods are possible. Further, the target product can be purified by using silica gel chromatography, gel filtration, or the like. [0012] To prepare a preparation by dispersing the compound of the present invention, it may be carried out either by dispersing it alone in an aqueous medium or by using a dispersion aid in combination. Dispersion aids include natural or synthetic lipids such as egg yolk lecithin, dipalmitoylphosphatidylcholine, dimyristoylphosphatidylcholine, phosphatidylethanolamine, phosphatidic acid, phosphatidylinositol, phosphatidylglycerol, sphingomyelin, cardiolipin, or Triton X-100. , polyethylene glycol, benzyl alcohol, gelatin, and other pharmaceutical additives approved as dispersion aids, depending on the compound. Regarding these pharmaceutical excipients, please refer to the Pharmacia Review N published by the Pharmaceutical Society of Japan in 1987.
o. It is described in detail in 22 “Pharmaceutical Excipients”.
It is preferable to select from among these. The amount of the compound represented by the general formula [I] in the preparation of the molecular assembly according to the present invention is not particularly limited, but is preferably 0.1 to 9.0 (1) to 1 (1) of the dispersion aid. weight ratio). Further, additives such as sterols (for example, cholesterol, β-sitosterol, stigmasterol, carbenseterol, etc.) may be mixed. [0014] As a method for forming a molecular assembly by mixing the compound represented by the general formula [I] and a phospholipid, a conventional liposome formation method, that is, a vortexing method (J.
Mol. Biol. , 13, 238 (1965)
), sonication method (Biochem., 8,
344 (1969)), prevesicle method (Neuros
ci. Res. Prog. Bull. , 9 ,
273 (1971)), ethanol injection method (Bioch
em. Biophys. Acta, 298, 10
15 (1973)), French press method (FEBS.
Lett. , 99, 210 (1973)), cholic acid removal method (J. Biol. Chem., 246,
5477 (1971)), Triton X-100 batch method (Eur. J. Biochem., 85, 25
5 (1978)), Ca2+ fusion method (Biochem.
Biophys. Acta, 394, 483 (
1975)), ether injection method (Biochem. B)
iophys. Acta, 443, 629 (19
76)), annealing method (Biochem. Bio
phys. Acta, 443, 313 (1976)
), freeze-thaw fusion method (J. Biol. Chem.,
252, 7384 (1977)), W/O/W emulsion method (J. Colloid Interfa
ce Sci. , 62, 149 (1977)), reversed-phase evaporation method (Pro. Natl. Acad. Sci.
.. USA, 75, 4194 (1978)), but the present invention may use any of the above preparation methods, and is not limited thereto. [0015] The peptide derivative used in the present invention can be administered by the administration method generally used for peptide drugs, that is, by parenteral administration, such as intravenous administration, intramuscular administration, subcutaneous administration, etc. preferable. When producing such an injectable preparation, the peptide derivative of the present invention may be mixed with PBS (Na
H2PO4 5mM, NaCl 70mM) or physiological saline to form an injection preparation, or after dispersing in approximately 0.1N acetic acid water or the like, a lyophilized preparation may be prepared. At this time, the above-mentioned dispersion aids may be used. Conventional stabilizers such as glycine and albumin may be added to such preparations, and collagen, liposomes, and the like may be used as carriers for purposes such as prolonging the blood half-life. Furthermore, the peptide derivative of the present invention can be administered orally, for example, if it is incorporated into a microcapsule in a liposome, or if it is in the form of a suppository, sublingual agent, nasal spray, etc. It is also possible to absorb it through mucous membranes from areas other than the gastrointestinal tract. The peptide derivative of the present invention comprises the core sequence of cell adhesion protein (EILDVP).
ST) and adheres to cells via the core sequence in a similar mechanism to that of cell adhesion proteins. Therefore, they exhibit various biological activities as agonists or antagonists of cell adhesion proteins. In addition, a wide range of biological activities are recognized, including immunomodulatory effects, wound healing effects, suppressive effects on platelet aggregation by cancer cells that occur in capillaries, and neurological disease healing effects. [0017] Therefore, the peptide derivative of the present invention is
At least one of them can be administered to a patient as a cancer metastasis inhibitor, wound healing agent, immunosuppressant, platelet aggregation inhibitor, or neurological disease therapeutic agent, optionally together with a conventional carrier or pharmaceutical preparation. In particular, use as an animal cell adhesion inhibitor or platelet aggregation/adhesion inhibitor is preferred. The dosage is 0.2 μg/kg to 400 mg/k
The weight range is determined based on symptoms, age, weight, etc. Synthesis examples of the compounds of the present invention are shown below.
The present invention is not limited to these. Note that amino acids, various protecting groups, and deprotecting reagents are expressed using commonly used abbreviations. Other examples of compounds can also be synthesized by the methods exemplified here. EXAMPLES Example 1 A synthesis example of Compound 1 of the present invention is shown below. Compounds 2 to 7 can also be synthesized by the methods exemplified here. Synthesis of dialkylglycerol C16H33OCH2CH(OC16H33)CH2O
Synthesis, 503, (19
12.0 g of 1-benzylglycerol prepared by the method described in 85)) was dissolved in 300 ml of toluene, 16.0 g of powdered potassium hydroxide and 82 g of 1-bromohexadecane were added to this solution, and the reaction mixture was heated under reflux for 8 hours. After cooling the reaction solution to room temperature, hexane 40
Diluted with 0ml. After washing twice with 200 ml of water, it was dried over anhydrous sodium sulfate. The sodium sulfate was removed by filtration, and the filtrate was concentrated under reduced pressure to obtain a colorless oil. This was purified by silica gel chromatography (eluent: hexane/ethyl acetate = 40:1) to obtain 41.2 g of 1,2-dihexadecyl-3-benzylglycerol (
Yield: 95.5%). The physical property values are from the literature (Biochem
isrry, 2, 394 (1963)). The obtained 1,2-dihexadecyl-3-benzylglycerol was dissolved in 250 ml of ethyl acetate.
1.5 g of 10% palladium-carbon was added and the reaction mixture was allowed to react under hydrogen atmosphere for 8 hours. Insoluble materials were removed by filtration through Celite, and the Celite layer was washed with ethyl acetate. The filtrate and washing solution were combined and concentrated under reduced pressure. The residue was recrystallized from ethyl acetate to give dialkylglycerol C16H33O.
CH2CH(OC16H33) CH2OH as colorless crystals (
34.4g). The physical property values are from the literature (Bioche
Misrry, 2, 394 (1963)). Synthesis of dialkylglycerol derivative C1
6H33OCH2CH(OC16H33)CH2OOC
Synthesis of (CH2)2COOH 1,2-dihexadecylglycerol (27g, 50mmol), succinic anhydride (7.5g, 75mmol), diisopropylethylamine (9.7g, 75mmol), dimethylaminopyridine (1g), chloride A mixture of methylene (300ml) was stirred at room temperature for 12 hours. The reaction solution was washed several times with 1N aqueous sodium bicarbonate solution, and the organic layer was dried over anhydrous sodium sulfate. The sodium sulfate was removed by filtration, and the filtrate was concentrated under reduced pressure to obtain dialkylglycerol derivative C16H3.
3OCH2CH(OC16H33)CH2OOC(CH
2) 2COOH was obtained as colorless crystals (32 g). Synthesis of protected peptide BocSer(Bzl)Thr(Bzl)OBzl(N
Synthesis of BocThr (Bzl) (Kokusan Kagaku Co., Ltd.)
A mixture of (15.5 g, 50 mmol) diisopropylethylamine (6.46 g), p-nitrobenzyl bromide (10.8 g), and ethyl acetate (200 ml) was heated under reflux for 3 hours. After the reaction solution was allowed to cool to room temperature, it was washed with 200 ml each of 1N aqueous sodium bicarbonate solution and saturated brine, and dried over anhydrous sodium sulfate. The sodium sulfate was removed by filtration, and the filtrate was concentrated under reduced pressure to give a colorless oil, BocThr(Bzl)OBzl(NO
2) was obtained quantitatively. To this, chloroform (100ml
), add trifluoroacetic acid (50 ml) and stir at room temperature for 30 min.
Allowed to react for minutes. After removing the solvent under reduced pressure, ethyl acetate (
250 ml), 1N aqueous sodium hydrogen carbonate solution,
It was washed with two 200 ml portions of saturated brine and dried over anhydrous sodium sulfate. The sodium sulfate was removed by filtration, and the filtrate was concentrated under reduced pressure to give a colorless oil, Thr(Bzl)OBzl(N
O2) was obtained quantitatively. BocSer (Bzl
) (purchased from Kokusan Kagaku Co., Ltd.) (14.8g, 50mm
ol), DCC (11.4 g, 55 mmol), HOB
t (6.9g, 45mmol), DMF (150ml)
was added and reacted at 0°C for 30 minutes and at room temperature for 24 hours. After removing DCUrea, the solvent was distilled off under reduced pressure, 100 ml of chloroform was added, and the mixture was washed with 200 ml each of a 1N aqueous sodium bicarbonate solution and saturated brine, and dried over anhydrous sodium sulfate. Sodium sulfate was removed by filtration, the filtrate was concentrated under reduced pressure, and purified by silica gel chromatography (eluent: hexane/ethyl acetate 40:1) to obtain BocSer(Bzl)Thr(Bzl)OBzl.
(NO2) was obtained as a colorless oil (28.3g). BocProSer(Bzl)Thr(Bzl)OBz
Synthesis of l(NO2)BocSer(Bzl)Thr(
Bzl) OBzl(NO2) (28.0g, 45mmo
l), BocPro (purchased from Kokusan Kagaku Co., Ltd.) (9.
69g, 45mmol), DCC (10.3g, 50m
mol), HOBt (6.1 g, 40 mmol), DM
Add F (150 ml) and incubate at 0°C for 30 min, then at room temperature for 24 min.
Allowed time to react. After removing DCUrea, the solvent was distilled off under reduced pressure, 100 ml of chloroform was added, and the mixture was washed with 200 ml each of a 1N aqueous sodium bicarbonate solution and saturated brine, and dried over anhydrous sodium sulfate. Sodium sulfate was removed by filtration, and the filtrate was concentrated under reduced pressure and purified by silica gel chromatography (eluent: chloroform/methanol 99:1).
oSer(Bzl)Thr(Bzl)OBzl(NO2
) was obtained as a colorless oil (29.8 g). BocValProSer(Bzl)Thr(Bzl)
Synthesis of OBzl(NO2) BocProSer(Bzl
)Thr(Bzl)OBzl(NO2)(28.8g,
40 mmol), BocVal (purchased from Kokusan Kagaku Co., Ltd.) (8.7 g, 40 mmol), DCC (9.3 g,
45 mmol), HOBt (5.4 g, 35 mmol)
, DMF (150 ml) was added, and BocProSer (
Synthesis of Bzl)Thr(Bzl)OBzl(NO2) was performed in the same manner. BocValProSer(Bzl)
Thr(Bzl)OBzl(NO2) is converted into colorless oil (2
9.4 g). BocAsp(OBzl) ValProSer(Bzl
)Thr(Bzl)OBzl(NO2) synthesis Boc
ValProSer(Bzl)Thr(Bzl)OBz
l(NO2) (28.6 g, 35 mmol), BocA
sp(OBzl) (purchased from Kokusan Kagaku Co., Ltd.) (11.
3g, 35mmol), DCC (8.3g, 40mmol)
l), HOBt (4.6 g, 30 mmol), DMF (
150ml) and BocProSer(Bzl)T
Synthesis of hr(Bzl)OBzl(NO2) was carried out in the same manner. BocAsp(OBzl) ValProSer(
Bzl)Thr(Bzl)OBzl(NO2) was obtained as a colorless oil (33.7g). BocLeuAsp(OBzl)ValProSer(
Bzl) Thr (Bzl) OBzl (NO2) Synthesis BocAsp (OBzl) ValProSer (Bzl
)Thr(Bzl)OBzl(NO2)(32.7g,
32 mmol), BocLeu (purchased from Kokusan Kagaku Co., Ltd.) (7.4 g, 32 mmol), DCC (7.2 g,
35 mmol), HOBt (4.6 g, 30 mmol)
, DMF (150 ml) was added, and BocProSer (
Synthesis of Bzl)Thr(Bzl)OBzl(NO2) was performed in the same manner. BocLeuAsp(OBzl)Va
lProSer(Bzl)Thr(Bzl)OBzl(
NO2) was obtained as a colorless oil (33.5 g). BocIleLeuAsp(OBzl)ValProS
er(Bzl)Thr(Bzl)OBzl(NO2)
Synthesis of BocLeuAsp(OBzl)ValProSer(
Bzl)Thr(Bzl)OBzl(NO2)(33.
0g, 29mmol), BocIle (Kokusan Kagaku Co., Ltd.)
) (6.7 g, 29 mmol), DCC (6.7 g, 29 mmol),
8g, 33mmol), HOBt (3.8g, 25mm
ol), add DMF (150 ml), and add BocProS
er(Bzl)Thr(Bzl)OBzl(NO2)
Synthesis was carried out in the same manner as for . BocIleLeuAsp(O
Bzl) ValProSer(Bzl) Thr(Bzl
) OBzl(NO2) was obtained as a colorless oil (34.1 g). BocGlu(OBzl)IleLeuAsp(OBz
l) ValProSer(Bzl)Thr(Bzl)O
Synthesis of Bzl(NO2) BocIleLeuAsp(OBzl) ValProS
er (Bzl) Thr (Bzl) OBzl (NO2) (
33.7g, 27mmol), BocGlu (OBzl
) (purchased from Kokusan Kagaku Co., Ltd.) (9.1g, 27mmo
l), DCC (6.2 g, 30 mmol), HOBt (
Add BocProSer(Bzl)Thr(Bzl)O
Synthesis of Bzl(NO2) was carried out in the same manner. BocGl
u(OBzl)IleLeuAsp(OBzl)Val
ProSer(Bzl)Thr(Bzl)OBzl(N
O2) was obtained as a colorless oil (34.1 g). Glu(OBzl)IleLeuAsp(OBzl)V
alProSer(Bzl)Thr(Bzl)OBzl
(NO2) Synthesis of BocGlu(OBzl)IleLeuAsp(OBz
l) ValProSer(Bzl)Thr(Bzl)O
Bzl(NO2) (1.47 g, 1 mmol) was dissolved in 10 ml of methylene chloride, 10 ml of trifluoroacetic acid was added, and the mixture was stirred at room temperature for 30 minutes. After the solvent was distilled off under reduced pressure, it was added to 100 ml of chloroform, washed several times with 100 ml each of 1N aqueous sodium bicarbonate solution and saturated brine, and dried over anhydrous sodium sulfate. The sodium sulfate was removed by filtration, and the filtrate was concentrated under reduced pressure to obtain Glu(OBzl)Ile.
LeuAsp(OBzl) ValProSer(Bzl
) Thr(Bzl)OBzl(NO2) was obtained as a colorless oil (1.37 g). Condensation of protected peptide and dialkylglycerol derivative C16H33OCH2CH(OC16H33)CH2O
OC(CH2)2CO-Glu(OBzl)IleLe
uAsp(OBzl)ValProSer(Bzl)T
Synthesis of hr(Bzl)OBzl(NO2) Glu(O
Bzl) IleLeuAsp(OBzl) ValPro
Ser(Bzl)Thr(Bzl)OBzl(NO2)
(1.37g, 1mmol) and C16H33OCH2C
H(OC16H33)CH2OOC(CH2)2COO
A mixture of H (0.64 g, 1 mmol), dicyclohexylcarbodiimide (0.23 g, 1.1 mmol), and 20 ml of chloroform was stirred at room temperature for 24 hours. Silica gel chromatography (eluent chloroform/
Purified with ethyl acetate 90:10) and purified with C16H3
3OCH2CH(OC16H33)CH2OOC(CH
2) 2CO-Glu(OBzl)IleLeuAsp(
OBzl) ValProSer(Bzl) Thr(Bz
l) OBzl(NO2) was obtained as a white powder (1.83 g). Deprotection and Purification Synthesis of Compound (1) C16H33OCH2CH(OC16H33)CH2O
OC(CH2)2CO-Glu(OBzl)IleLe
uAsp(OBzl)ValProSer(Bzl)T
hr(Bzl)OBzl(NO2) (1.83 g) was dissolved in 50 ml of acetic acid, 1 g of 10% palladium on carbon was added, and atmospheric pressure hydrogenolysis was performed at room temperature for 24 hours. The catalyst was filtered off using Celite, and the solvent was distilled off under reduced pressure. The compound (1) was purified by silica gel chromatography (eluent chloroform/methanol/water 65:25:4).
) was obtained. [0025] FAB-MS 1495 (M-
H) Amino acid analysis: Glu (0.91), Ile (1
.. 20), Leu (1.13), Asp (0.98
), Val (0.89), Pro (0.94),
Ser (0.92), Thr (0.89) Example 2 A synthesis example of compound (2) is shown below. According to the method described in Example 1, the compound (
2) was synthesized. Glycerol derivatives were synthesized by changing 1-bromohexadecane to 1-bromooctadecane and changing succinic anhydride to glutaric anhydride. FAB-MS 1565 (MH) Amino acid analysis: Glu (1.09), Ile (1.05),
Leu (1.06), Asp (0.92), Val
(0.97), Pro (0.91), Ser (0.
83), Thr (0.82) Example 3 A synthesis example of compound (3) is shown below. According to the method described in Example 1, the compound (
3) was synthesized. A glycerol derivative was synthesized by changing 1-bromohexadecane to 1-iodo-3,7,11,15-tetramethylhexadecane. FAB-MS 1607 (MH) Amino acid analysis: Glu (0.97), Ile (1.05),
Leu (0.99), Asp (1.04), Val
(1.11), Pro (0.90), Ser (0.
82), Thr (0.81) Example 4 A synthesis example of compound (4) is shown below. According to the method described in Example 1, the compound (
4) was synthesized. 1-bromohexadecane to 1-bromododecane, succinic anhydride to malonyl dichloride,
Glycerol derivatives were synthesized by changing each. FAB-MS 1369 (MH) Amino acid analysis: Glu (1.10), Ile (1.09),
Leu (1.00), Asp (1.02), Val
(1.09), Pro (0.94), Ser (0.
79), Thr (0.81) Example 5 A synthesis example of compound (5) is shown below. In addition, the compound (6
) and (7) can also be synthesized by the method exemplified here. Literature (Synthesis, 503(1)
985)) Dissolve 18 g of 1-benzylglycerol prepared by the method described in 100 ml of methylene chloride,
55 g of palmitoyl chloride, 20 g of triethylamine.
2 g was added and stirred at room temperature for 12 hours. This was washed several times with 100 ml each of 1N aqueous sodium bicarbonate solution and saturated brine, and dried over anhydrous sodium sulfate. Sodium sulfate was removed by filtration, and the filtrate was concentrated under reduced pressure and subjected to silica gel chromatography (eluent: hexane: ethyl acetate).
40:1). 1,2-dipalmitoyl-
60 g of 3-benzyl-glycerol was obtained as colorless crystals. The following was synthesized by the method described in Example 1. [0030] FAB-MS 1523 (M-
H) Amino acid analysis: Glu (1.09), Ile (1
.. 03), Leu (1.05), Asp (0.94
), Val (1.11), Pro (0.99),
Ser (0.78), Thr (0.83) Example 6 A synthesis example of compound (6) is shown below. According to the method described in Example 5, the compound (
6) was synthesized. Synthesis of the protected peptide was performed using BocGlu
(OBzl)IleLeuAsp(OBzl)ValP
roSer(Bzl)Thr(Bzl)OBzl(NO
Glu(OBzl)IleLeuAsp(OBzl) obtained by treating 2) with trifluoroacetic acid to remove the Boc group
ValProSer(Bzl)Thr(Bzl)OBz
l(NO2) and BocGlu(OBzl)IleLe
uAsp(OBzl)ValProSer(Bzl)T
BocGlu(O
Bzl) IleLeuAsp(OBzl) ValPro
Ser(Bzl)Thr(Bzl) to DCC-HOB
Fragment condensation was performed by the t method. [0032] FAB-MS 2378 (M-
H) Amino acid analysis: Glu (0.97), Ile (1
.. 08), Leu (1.02), Asp (0.99
), Val (1.07), Pro (0.94),
Ser (0.85), Thr (0.79) Example 7 A synthesis example of compound (7) is shown below. According to the method described in Example 5, the compound (
7) was synthesized. Glycerol derivatives were synthesized by changing palmitoyl chloride to stearoyl chloride. Synthesis of protected peptide Glu(OBzl)IleLe
uAsp(OBzl)ValProSer(Bzl)T
BocG from hr(Bzl)OBzl(NO2)
ly was sequentially extended by the DCC-HOBt method. FAB-MS 1650 (MH) Amino acid analysis: Gly (1.08), Glu (0.97),
Ile (1.01), Leu (1.09), Asp
(1.06), Val (1.08), Pro (0.
98), Ser (0.88), Thr (0.89) Example 8 A formulation example of the compound (1) of the present invention is shown below. Compounds (2) to (7) can also be formulated by the methods exemplified here. Compound (1) of the present invention (10 mg) was dissolved in chloroform, and the solvent was distilled off under reduced pressure to form a thin film. After drying for 1 hour at room temperature, PBS (10 ml)
In addition, Branson ultrasonic homogenizer model 2
Dispersion was carried out using a model 50 at 20W for 15 minutes. The dispersion was sterilized by filtration using Millex GV manufactured by Millipore to prepare an injectable preparation. This preparation can be used as an adhesion inhibitor for animal cells and a platelet aggregation/adhesion inhibitor. Example 9 A formulation example of Compound 5 of the present invention is shown below. Compounds (1) to (4), (6), and (7) can also be formulated by the methods exemplified here. Compound (5) of the present invention (5 mg) and dipalmitoylphosphatidylcholine (5 mg) were dissolved in chloroform, and the solvent was distilled off under reduced pressure to form a thin film. After drying for 1 hour at room temperature, add physiological saline (10 ml) and use Branson Ultrasonic Homogenizer Model 25.
Dispersion was performed for 15 minutes at 20 W using type 0. The dispersion was sterilized by filtration using Millex GV manufactured by Millipore to prepare an injectable preparation. This preparation can be used as an adhesion inhibitor for animal cells and a platelet aggregation/adhesion inhibitor. Example 10 A formulation example of the compound (3) of the present invention is shown below. Compounds (1), (2), (4) to (7) can also be formulated by the methods exemplified here. Compound (3) of the present invention (5 mg), egg yolk lecithin (5 mg), and cholesterol (5 mg) were dissolved in chloroform, and the solvent was distilled off under reduced pressure to form a thin film. After drying at room temperature for 1 hour, physiological saline (10 ml
) was added and dispersed for 15 minutes at 20 W using an ultrasonic homogenizer model 250 manufactured by Branson. The dispersion was sterilized by filtration using Millex GV manufactured by Millipore to prepare an injectable preparation. This preparation can be used as an adhesion inhibitor for animal cells and a platelet aggregation/adhesion inhibitor. Example 11 Test examples (measurement of cell adhesion inhibitory activity) of the compounds of the present invention are shown below. The peptide derivatives of the present invention inhibit cell adhesion to fibronectin. The activity measurement method is basically a competition method widely used in the field of biochemistry, such as JP-A-1-309682 and JP-A-2-
No. 174797, Methods in Enzymo
82, 803 (1981). 1) Preparation of adsorption plate Commercially available human-derived fibronectin (purchased from Cosmo Bio Co., Ltd.) was added at 10 μg/m in PBS (phosphate buffer).
1 of the solution, and 50 μl of the solution was placed in a 96-well polystyrene plate and coated by incubating at 4° C. overnight. Next, bovine serum albumin (BSA 1%) was added for the purpose of preventing non-specific adsorption, and the mixture was kept at 37° C. for 1 hour, followed by a washing operation (PBS) and sufficient water was drained to prepare an adsorption plate. 2) Adhesion inhibition experiment Dulbecco's Modified Eagle
Peptide derivative dispersion liquid 5 dispersed in s Medium
0 μl was placed in the plate prepared by the above method, 50 μl of NRK49F (1×10 6 cells/ml) suspension was added thereto, and the mixture was incubated at 37° C. for 1 hour to allow the cells to adhere. After washing three times with PBS to remove non-adherent cells,
Adhered cells were detached with a 0.025% EDTA trypsin solution, and the number of cells was counted by staining with 0.2% trypan blue. The results are shown in Table 1. In the table, EILDVPST represents an octapeptide of glutamic acid-isoleucine-leucine-aspartic acid-valine-proline-serine-threonine. [0038]
Table 1 ────────────────
──────────────────
Adhesion rate of cells to fibronectin (
%) Peptide derivative 0
0.25 0.5 1.0
2.0 (mg/ml) ──────────
────────────────────────
EILDVPST 100
70 25 22
19 Compound 1
100 63 3
1 22 13
Compound 2 100
65 25 20
14 Compound 3
100 63 29
23 17 Compound 4 100 62
25 18 10
Compound 5 100
68 29 21
13 Compound 6
100 66 2
1 16 10
Compound 7 100
64 24 15
11 ────────────────
────────────────── Example 12 Test examples (measurement of platelet aggregation inhibitory activity) of the compounds of the present invention are shown below. [0039] IN VIT of the peptide derivative of the present invention
The platelet aggregation inhibitory effect in the RO system was assayed using human platelet-rich plasma. Experimental method 1/9 volume of 3.8% sodium citrate was added to fresh human blood, centrifuged (1000 rpm, 10 minutes), and the upper layer was collected as platelet-rich plasma. This plasma 2
00μl to 25μl of peptide derivative (max 1.5m
g/ml) and incubated at 37°C for 3 minutes, then add 25 μM of 20-50 μM ADP (adenosine diphosphate) solution or 200 μl/ml collagen solution.
In addition, the degree of aggregation was assayed by measuring permeability using an aggregometer. The results are shown in Table 2. Aggregation inhibition rate (%) (1-T/T0)×
100T0: Transmittance T when no peptide derivative is added
: Permeability upon addition of peptide derivative 0041 [Sequence Listing] 0042 Sequence number: 1 Sequence length: 8 Sequence type: Amino acid topology: Linear sequence type: Peptide fragment type: C-terminal fragment [ SEQ ID NO: 2 Sequence length: 16 Sequence type: Amino acid Topology: Linear Sequence type: Peptide fragment type: C-terminal fragment sequence Glu Ile Leu Asp Val Pro S
er Thr Glu Ile Leu Asp Va
l Pro Ser Thr 1
5
10 15 [
SEQ ID NO: 3 Sequence length: 9 Sequence type: Amino acid Topology: Linear Sequence type: Peptide fragment Type: C-terminal fragment

Claims (3)

【特許請求の範囲】[Claims] 【請求項1】  下記一般式〔I〕で表されるペプチド
誘導体またはその塩。 一般式〔I〕 R1OCH2−CH(OR2)−CH2−OOC−(C
H2)m −CO−([Gly ]−Glu−Ile−
Leu−Asp−Val−Pro−Ser−Thr) 
n 式中、Glu 、Ile 、Leu 、Asp 、
Val 、Pro 、Ser 、Thr は、それぞれ
グルタミン酸、イソロイシン、ロイシン、アスパラギン
酸、バリン、プロリン、セリン、トレオニン残基を表す
。[Gly ]は存在するかあるいは存在しないグリシ
ン残基を表す。mは1から5までの整数を表す。nは1
から3までの整数を表す。R1およびR2は、水素ある
いは炭素数8から24までの直鎖または分岐のアシル基
またはアルキル基を表し、置換基、不飽和基を有してい
てもよい。また、分子内に存在する不斉炭素に関しては
、ラセミ体でも光学活性体のいずれでもよい。
Claim 1: A peptide derivative represented by the following general formula [I] or a salt thereof. General formula [I] R1OCH2-CH(OR2)-CH2-OOC-(C
H2) m -CO-([Gly]-Glu-Ile-
Leu-Asp-Val-Pro-Ser-Thr)
n in the formula, Glu, He, Leu, Asp,
Val, Pro, Ser, and Thr represent glutamic acid, isoleucine, leucine, aspartic acid, valine, proline, serine, and threonine residues, respectively. [Gly] represents a glycine residue, present or absent. m represents an integer from 1 to 5. n is 1
Represents an integer from to 3. R1 and R2 represent hydrogen or a linear or branched acyl group or alkyl group having 8 to 24 carbon atoms, and may have a substituent or an unsaturated group. Furthermore, the asymmetric carbon present in the molecule may be either a racemic form or an optically active form.
【請求項2】  請求項1記載のペプチド誘導体または
その塩を有効成分とする動物細胞の接着阻害剤。
2. An animal cell adhesion inhibitor comprising the peptide derivative or its salt according to claim 1 as an active ingredient.
【請求項3】  請求項1記載のペプチド誘導体または
その塩を有効成分とする血小板凝集・粘着抑制剤。
3. A platelet aggregation/adhesion inhibitor comprising the peptide derivative or its salt according to claim 1 as an active ingredient.
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Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
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EP4021414A4 (en) * 2019-09-01 2023-10-11 Nextar Chempharma Solutions Ltd. Drug containing targeting liposomes
EP4021415A4 (en) * 2019-09-01 2023-10-25 Nextage Therapeutics Ltd. Cannabinoid containing targeting liposomes

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EP4021414A4 (en) * 2019-09-01 2023-10-11 Nextar Chempharma Solutions Ltd. Drug containing targeting liposomes
EP4021415A4 (en) * 2019-09-01 2023-10-25 Nextage Therapeutics Ltd. Cannabinoid containing targeting liposomes

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