JPH04215054A - Glucose biosensor - Google Patents

Glucose biosensor

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Publication number
JPH04215054A
JPH04215054A JP3067827A JP6782791A JPH04215054A JP H04215054 A JPH04215054 A JP H04215054A JP 3067827 A JP3067827 A JP 3067827A JP 6782791 A JP6782791 A JP 6782791A JP H04215054 A JPH04215054 A JP H04215054A
Authority
JP
Japan
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electrode
glucose
silver
oxygen
working electrode
Prior art date
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Pending
Application number
JP3067827A
Other languages
Japanese (ja)
Inventor
Masao Goto
正男 後藤
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Nok Corp
Original Assignee
Nok Corp
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Filing date
Publication date
Application filed by Nok Corp filed Critical Nok Corp
Publication of JPH04215054A publication Critical patent/JPH04215054A/en
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Abstract

PURPOSE:To provide a sensor having non-dependency on oxygen by a method wherein a photocrosslinked film of glucose hydrogenase water soluble photocrosslinked resin mixture and a ferrocene compound are adhered on an electrode to produce an working electrode, and a pair electrode forms a silver or silver/silver chloride electrode CONSTITUTION:A glucose biosensor is formed in such a way that a photocrosslinked film of a glucose dehydrogenase water soluble photocrosslinked resin mixture and a ferrocene compound are adhered on an electrode to produce a working electrode, and silver or silver/silver chloride electrode is used as a pair electrode. Since the glocose biosensor has non-dependency on dissolved oxygen while does need oxygen during oxidation of glucose, even when it is used in a area, such as a blood vessel, where the feed of oxygen is unstable, there is no need to correct a dissolved oxygen amount to a response value. The working electrode has excellent durability.

Description

【発明の詳細な説明】[Detailed description of the invention]

【0001】0001

【産業上の利用分野】本発明は、グルコースバイオセン
サに関する。更に詳しくは、耐久性を向上せしめた溶存
酸素非依存性のグルコースバイオセンサに関する。
BACKGROUND OF THE INVENTION 1. Field of the Invention The present invention relates to a glucose biosensor. More specifically, the present invention relates to a dissolved oxygen-independent glucose biosensor with improved durability.

【0002】0002

【従来の技術】従来のグルコースバイオセンサにおいて
は、電極上に固定化される酵素として、グルコースオキ
シダーゼが用いられている。この酵素を用いた場合は2
基質反応であり、グルコース量の測定に際し酸素を必要
としている。
2. Description of the Related Art In conventional glucose biosensors, glucose oxidase is used as an enzyme immobilized on an electrode. When using this enzyme, 2
This is a substrate reaction and requires oxygen when measuring the amount of glucose.

【0003】また、このグルコースセンサを、酸素の供
給が不安定な個所、例えば血管内などで使用する場合に
は、応答値に対して溶存酸素量の補正を必要としている
[0003] Furthermore, when this glucose sensor is used in a location where oxygen supply is unstable, such as in a blood vessel, it is necessary to correct the amount of dissolved oxygen with respect to the response value.

【0004】0004

【発明が解決しようとする課題】本発明の目的は、グル
コース量の定量に際して酸素を必要としない溶存酸素非
依存性のグルコースバイオセンサを提供することにある
SUMMARY OF THE INVENTION An object of the present invention is to provide a dissolved oxygen-independent glucose biosensor that does not require oxygen when determining the amount of glucose.

【0005】本発明の他の目的は、かかるグルコースバ
イオセンサにあって、耐久性を向上せしめたものを提供
することにある。
Another object of the present invention is to provide such a glucose biosensor with improved durability.

【0006】[0006]

【課題を解決するための手段】かかる本発明の目的は、
電極上にグルコースデヒドロゲナーゼ−水溶性光架橋性
樹脂混合物の光架橋膜およびフェロセン化合物をそれぞ
れ付着させて作用極とし、対極には銀もしくは銀/塩化
銀電極を用いたグルコースバイオセンサによって達成さ
れる。
[Means for Solving the Problems] The purpose of the present invention is to
This is achieved by a glucose biosensor in which a photocrosslinked film of a glucose dehydrogenase-water-soluble photocrosslinkable resin mixture and a ferrocene compound are respectively attached on an electrode to serve as a working electrode, and a silver or silver/silver chloride electrode is used as a counter electrode.

【0007】電極としては、白金電極、金電極、カーボ
ンファイバ電極などが用いられる。白金電極、金電極は
感度の点ですぐれており、一方直径約0.1〜1μmの
カーボンファイバが1本または複数本束ねられて用いら
れるカーボンファイバ電極は、センサ本体の微小化(直
径約1μm以下)や低コスト化を達成させる上で有効で
ある。
[0007] As the electrode, a platinum electrode, a gold electrode, a carbon fiber electrode, etc. are used. Platinum electrodes and gold electrodes are excellent in sensitivity, while carbon fiber electrodes, which are made by bundling one or more carbon fibers with a diameter of about 0.1 to 1 μm, can be used to miniaturize the sensor body (about 1 μm in diameter). (below) and is effective in achieving cost reduction.

【0008】これらの電極を用いての作用極の形成は、
次のようにして行われる。
Formation of a working electrode using these electrodes is as follows:
This is done as follows.

【0009】グルコースデヒドロゲナーゼ約5〜90m
g、好ましくは30mg(活性6.3Unit/mgの
場合)とスチルバゾリウム基、スチリルピリジニウム基
などを光架橋性基として含有するポリビニルアルコール
、ポリエチレングリコールなどの水溶性光架橋性樹脂の
濃度約5〜50%水溶液0.5mlとを混合し、白金電
極(表面積0.02cm2)の場合にはその上に水溶液
0.5μlを塗布した後、またカーボンファイバ電極の
場合にはその水溶液中に浸漬し、引き上げた後、室温下
に約30〜120分間放置して乾燥させる。次いで、グ
ルコースデヒドロゲナーゼの活性を損なわない波長の光
、好ましくは波長360nmの紫外線を所定時間、例え
ば10秒間程度照射し、水洗後更に所定時間、例えば3
0秒間程度照射して光架橋膜を形成させる。
[0009] Glucose dehydrogenase approximately 5-90m
g, preferably 30 mg (in the case of activity 6.3 Unit/mg) and a concentration of about 5 to 50 mg of a water-soluble photocrosslinkable resin such as polyvinyl alcohol or polyethylene glycol containing a stilbazolium group, styrylpyridinium group, etc. as a photocrosslinkable group. % aqueous solution, and in the case of a platinum electrode (surface area 0.02 cm2), apply 0.5 μl of the aqueous solution on it, or in the case of a carbon fiber electrode, immerse it in the aqueous solution and pull it up. After that, it is left to dry at room temperature for about 30 to 120 minutes. Next, it is irradiated with light of a wavelength that does not impair the activity of glucose dehydrogenase, preferably ultraviolet light with a wavelength of 360 nm, for a predetermined time, for example, about 10 seconds, and after washing with water, it is further irradiated for a predetermined time, for example, 3
A photocrosslinked film is formed by irradiating for about 0 seconds.

【0010】その後、光架橋膜は、濃度約1〜50%、
好ましくは10%程度のフェロセン化合物溶液中に約1
〜60秒間、一般には約5秒間程度浸漬して引き上げ、
室温下で乾燥し、4℃で保存する。フェロセン化合物溶
液としては、フェロセン[ビス(シクロペンタジエニル
)鉄(II)]、1,1´−ジメチルフェロセン、ビニ
ルフェロセン、フェロセンカルボン酸、ジメチルアミノ
メチルフェロセンなどの有機溶媒溶液、一般には1,1
´−ジメチルフェロセンのアセトン溶液などが用いられ
る。
[0010] Thereafter, the photocrosslinked film has a concentration of about 1 to 50%,
Preferably about 1% in a 10% ferrocene compound solution.
Immerse for ~60 seconds, generally about 5 seconds, and then pull it out.
Dry at room temperature and store at 4°C. Examples of ferrocene compound solutions include organic solvent solutions such as ferrocene [bis(cyclopentadienyl)iron(II)], 1,1'-dimethylferrocene, vinylferrocene, ferrocenecarboxylic acid, and dimethylaminomethylferrocene, generally 1, 1
An acetone solution of '-dimethylferrocene or the like is used.

【0011】このようにして電極上にグルコースデヒド
ロゲナーゼ−水溶性光架橋性樹脂混合物の光架橋膜およ
びフェロセン化合物を付着させたものを作用極とし、対
極を銀もしくは銀/塩化銀電極で形成させたグルコース
バイオセンサは、作用極に+100〜600mVの電圧
をかけ、対極は電流計の参照極とショートして用いられ
る。
[0011] In this way, a photocrosslinked film of glucose dehydrogenase-water-soluble photocrosslinkable resin mixture and a ferrocene compound were attached on the electrode, and this was used as a working electrode, and a counter electrode was formed of a silver or silver/silver chloride electrode. In the glucose biosensor, a voltage of +100 to 600 mV is applied to the working electrode, and the counter electrode is used by shorting it to the reference electrode of the ammeter.

【0012】この際、作用極面上に更にセルロースエス
テル膜を形成させると、その検量範囲を著しく拡大する
ことができる。セルロースエステル膜の形成は、フェロ
セン化合物を付着させた後、酢酸セルロース、酢酸酪酸
セルロースなどのセルロースエステルをそれらの可溶性
溶媒、例えばジメチルホルムアミド、ジメチルアセトア
ミド、アセトンなどに約5〜30重量%の濃度で溶解さ
せ、その溶液を塗布し、室温下で乾燥させてから水中に
浸漬し、ゲル化させることにより行われる。
At this time, if a cellulose ester film is further formed on the working electrode surface, the calibration range can be significantly expanded. Formation of a cellulose ester film involves depositing a ferrocene compound and then adding cellulose esters such as cellulose acetate and cellulose acetate butyrate to their soluble solvents such as dimethylformamide, dimethylacetamide, acetone, etc. at a concentration of about 5 to 30% by weight. This is done by dissolving the solution, applying the solution, drying it at room temperature, and then immersing it in water to gel it.

【0013】[0013]

【作用】本発明に係るグルコースバイオセンサは、グル
コースと次のように反応する。グルコース+グルコース
デヒドロゲナーゼ(酸化型) →グルコノラクトン+グルコースデヒドロゲナーゼ(還
元型) グルコースデヒドロゲナーゼ(還元型)+1,1´−ジ
メチルフェロセン(酸化型) →グルコースデヒドロゲナーゼ(酸化型)+1,1´−
ジメチルフェロセン(還元型)
[Operation] The glucose biosensor according to the present invention reacts with glucose as follows. Glucose + glucose dehydrogenase (oxidized type) → gluconolactone + glucose dehydrogenase (reduced type) Glucose dehydrogenase (reduced type) + 1,1'-dimethylferrocene (oxidized type) → glucose dehydrogenase (oxidized type) + 1,1'-
Dimethylferrocene (reduced form)

【0014】従って、この反応では酸素を必要とはせず
、グルコースの酸化に伴う電子の作用極への移動を電流
値変化として検出し、グルコース量を定量することがで
きる。この際、フェロセン化合物は、グルコースデヒド
ロゲナーゼの電子受容体として作用し、電子の移動、即
ち反応を生ぜしめる。
[0014] Therefore, this reaction does not require oxygen, and the amount of glucose can be determined by detecting the movement of electrons to the working electrode accompanying the oxidation of glucose as a change in current value. At this time, the ferrocene compound acts as an electron acceptor for glucose dehydrogenase, causing electron transfer, that is, a reaction.

【0015】[0015]

【発明の効果】本発明に係るグルコースバイオセンサは
、グルコースの酸化に際して酸素を必要としない溶存酸
素非依存性であるため、酸素の供給が不安定な個所、例
えば血管内などで使用する場合にも、応答値に対して溶
存酸素量の補正を必要とはしていない。
[Effects of the Invention] The glucose biosensor according to the present invention is independent of dissolved oxygen and does not require oxygen when oxidizing glucose, so it can be used in locations where oxygen supply is unstable, such as in blood vessels. However, the response value does not require correction of the amount of dissolved oxygen.

【0016】また、作用極にかかる電極を、また対極に
銀もしくは銀/塩化銀電極を組合せて用いることにより
、電流値のドリフト(ベースラインドリフト)がほぼ0
nA/hと安定化されたものが得られ、これは酵素活性
の低いグルコースデヒドロゲナーゼを用いる場合に不可
欠の条件である。
[0016] Furthermore, by using a combination of an electrode for the working electrode and a silver or silver/silver chloride electrode for the counter electrode, the drift of the current value (baseline drift) can be almost zero.
A stabilized nA/h was obtained, which is an essential condition when using glucose dehydrogenase with low enzymatic activity.

【0017】更に、酵素の固定化技術として、従来から
アルブミンとグルタルアルデヒドとを使用する方法が知
られているが、この方法で作製された酵素固定化電極で
は、長期間の使用により電極からの剥がれを生ずること
があるが、本発明に係る作用極は耐久性の点でもすぐれ
ている。
[0017] Furthermore, as an enzyme immobilization technique, a method using albumin and glutaraldehyde is conventionally known, but the enzyme-immobilized electrode prepared by this method loses its properties after long-term use. Although peeling may occur, the working electrode according to the present invention is also excellent in durability.

【0018】その上、作用極面上に更にセルロースエス
テル膜を形成せしめたものは、グルコースの拡散が制限
されるため、その検量範囲が1桁拡がるという実用上大
きな利点がもたらされる。
Furthermore, a cellulose ester membrane further formed on the working electrode surface has the great practical advantage of expanding the calibration range by an order of magnitude because the diffusion of glucose is restricted.

【0019】また、カーボンファイバ電極を用いた場合
には、カーボンファイバ自体が一般にドリフト率が低い
という特徴がそのまま発揮されるばかりではなく、セン
サの微小化、低コスト化なども達成される。
Furthermore, when carbon fiber electrodes are used, not only does the carbon fiber itself generally have a low drift rate, but also miniaturization and cost reduction of the sensor can be achieved.

【0020】[0020]

【実施例】次に、実施例について本発明を説明する。[Example] Next, the present invention will be explained with reference to an example.

【0021】実施例1 グルコースデヒドロゲナーゼ(シグマ社製、6.3Un
it/mg)30mgを水溶性光架橋性樹脂(東洋合成
工業製品、スチリルピリジニウム基含有ポリビニルアル
コール)の11.1重量%水溶液0.5mlに溶解させ
た混合液0.5μlを、白金電極(表面積0.02cm
2)上に塗布し、25℃で1時間乾燥させた後、波長3
60nmの紫外線を10秒間照射してから水洗し、その
後更に30秒間紫外線照射した。次いで、10重量%1
,1´−ジメチルフェロセンアセトン溶液中に5秒間浸
漬した後、引き上げて25℃で乾燥させた。
Example 1 Glucose dehydrogenase (manufactured by Sigma, 6.3Un
0.5 μl of a mixture of 30 mg of water-soluble photocrosslinkable resin (Toyo Gosei product, styrylpyridinium group-containing polyvinyl alcohol) dissolved in 0.5 ml of an 11.1% by weight aqueous solution of a platinum electrode (surface area 0.02cm
2) After coating on top and drying at 25℃ for 1 hour, wavelength 3
It was irradiated with 60 nm ultraviolet light for 10 seconds, washed with water, and then further irradiated with ultraviolet light for 30 seconds. Then 10% by weight 1
, 1'-dimethylferrocene acetone solution for 5 seconds, then pulled up and dried at 25°C.

【0022】このようにして製造された作用極を有する
センサを、電流計(BAS社製LC−4B)に接続し、
この際対極(銀電極)と電流計の参照極(銀電極)とを
ショートさせ、作用極の電位は+500mVとした。
[0022] The sensor having the working electrode thus manufactured was connected to an ammeter (LC-4B manufactured by BAS),
At this time, the counter electrode (silver electrode) and the reference electrode (silver electrode) of the ammeter were short-circuited, and the potential of the working electrode was set to +500 mV.

【0023】測定溶液は溶存酸素量6.4ppm(0.
2ミリモル濃度)のリン酸緩衝液であり、pHは7.4
、イオン強度は0.15、温度は37℃で、スターラで
撹拌しながら、グルコースに対する応答を測定した。
The measurement solution had a dissolved oxygen content of 6.4 ppm (0.
2 mmolar) phosphate buffer, pH 7.4.
The response to glucose was measured at an ionic strength of 0.15 and a temperature of 37° C. while stirring with a stirrer.

【0024】10mg/dl濃度のグルコース水溶液に
対する90%応答時間は30秒であり、ベースラインド
リフトは0nA/hrであり、検量範囲1〜50mg/
dlのグルコース水溶液に対する定常電流は、濃度に比
例して0.2〜17nA迄直線的に増加し、50〜10
0mg/dlでは20nAになる迄緩やかな上昇を示し
た。
The 90% response time to a glucose aqueous solution with a concentration of 10 mg/dl is 30 seconds, the baseline drift is 0 nA/hr, and the calibration range is 1 to 50 mg/dl.
The steady-state current for an aqueous glucose solution of dl increases linearly in proportion to the concentration from 0.2 to 17 nA, and from 50 to 10 nA.
At 0 mg/dl, a gradual increase was shown until it reached 20 nA.

【0025】このセンサを10日間、グルコース濃度1
00mg/dl、pH7.4、イオン強度0.15、温
度37℃の水溶液中に浸漬しておいた後、濃度10mg
/dlのグルコース水溶液に対する応答を測定したとこ
ろ、第1日目の値と同等の値を示した。
[0025] This sensor was used for 10 days at a glucose concentration of 1
00 mg/dl, pH 7.4, ionic strength 0.15, and a temperature of 37°C, after which the concentration was 10 mg.
/dl of the glucose aqueous solution was measured and showed a value equivalent to the value on the first day.

【0026】実施例2 実施例1において、測定が窒素ガスバブリングによる撹
拌下で行われた。センサ特性は、実施例1と同じであっ
た。
Example 2 In Example 1, measurements were carried out under stirring with nitrogen gas bubbling. The sensor characteristics were the same as in Example 1.

【0027】実施例3 実施例1において、1,1´−ジメチルフェロセンを付
着させた後、その付着面上に20重量%酢酸セルロース
ジメチルホルムアルデヒド溶液0.5μlを塗布し、2
5℃で1分間乾燥させ、その後水中に1分間浸漬してゲ
ル化させた。
Example 3 In Example 1, after attaching 1,1'-dimethylferrocene, 0.5 μl of a 20% by weight cellulose acetate dimethyl formaldehyde solution was applied to the attached surface, and 2
It was dried at 5° C. for 1 minute, and then immersed in water for 1 minute to form a gel.

【0028】このようにして製造された作用極を有する
センサを用い、実施例1と同様にグルコースに対する応
答を測定した。
Using the sensor having the working electrode thus manufactured, the response to glucose was measured in the same manner as in Example 1.

【0029】10mg/dl濃度のグルコース水溶液に
対する90%応答時間は60秒であり、ベースラインド
リフトは0nA/hrであり、検量範囲1〜500mg
/dlのグルコース水溶液に対する定常電流は、濃度に
比例して0.2〜17nA迄直線的に増加し、550〜
600mg/dlでは19nAと一定値を示した。
The 90% response time to a glucose aqueous solution with a concentration of 10 mg/dl was 60 seconds, the baseline drift was 0 nA/hr, and the calibration range was 1 to 500 mg.
/dl of glucose aqueous solution increases linearly in proportion to the concentration from 0.2 to 17 nA, and from 550 to 17 nA.
At 600 mg/dl, it showed a constant value of 19 nA.

【0030】実施例4 実施例1で用いられたグルコースデヒドロゲナーゼを水
溶性光架橋性樹脂水溶液に溶解させた混合液中に、カー
ボンファイバ電極(直径0.7μm)を1分間浸漬し、
引き上げてから25℃で1時間放置して乾燥させた。
Example 4 A carbon fiber electrode (0.7 μm in diameter) was immersed for 1 minute in a mixed solution of the glucose dehydrogenase used in Example 1 dissolved in an aqueous solution of a water-soluble photocrosslinkable resin.
After pulling it up, it was left to dry at 25° C. for 1 hour.

【0031】以下、実施例1と同様に処理し、グルコー
スに対する応答を測定した。
Thereafter, the cells were treated in the same manner as in Example 1, and the response to glucose was measured.

【0032】10mg/dl濃度のグルコース水溶液に
対する90%応答時間は25秒であり、ベースラインド
リフトは0nA/hrであり、検量範囲1〜50mg/
dlのグルコース水溶液に対する定常電流は、濃度に比
例して0.002〜0.1nA迄直線的に増加し、50
〜100mg/dlではnAになる迄緩やかな上昇を示
した。
The 90% response time to a glucose aqueous solution with a concentration of 10 mg/dl is 25 seconds, the baseline drift is 0 nA/hr, and the calibration range is 1 to 50 mg/dl.
The steady-state current for a glucose aqueous solution of dl increases linearly from 0.002 to 0.1 nA in proportion to the concentration, and
At ~100 mg/dl, it showed a gradual increase until it reached nA.

【0033】このセンサを10日間、グルコース濃度1
00mg/dl、pH7.4、イオン強度0.15、温
度37℃の水溶液中に浸漬しておいた後、濃度10mg
/dlのグルコース水溶液に対する応答を測定したとこ
ろ、第1日目の値と同等の値を示した。
[0033] This sensor was used for 10 days at a glucose concentration of 1
00 mg/dl, pH 7.4, ionic strength 0.15, and a temperature of 37°C, after which the concentration was 10 mg.
/dl of the glucose aqueous solution was measured and showed a value equivalent to the value on the first day.

【0034】実施例5 実施例4において、測定が窒素ガスバブリングによる撹
拌下で行われた。センサ特性は、実施例4と同じであっ
た。
Example 5 In Example 4, measurements were carried out under stirring with nitrogen gas bubbling. The sensor characteristics were the same as in Example 4.

Claims (2)

【特許請求の範囲】[Claims] 【請求項1】  電極上にグルコースデヒドロゲナーゼ
−水溶性光架橋性樹脂混合物の光架橋膜およびフェロセ
ン化合物をそれぞれ付着させて作用極とし、対極には銀
もしくは銀/塩化銀電極を用いてなるグルコースバイオ
センサ。
[Claim 1] A glucose biomolecule comprising a working electrode on which a photocrosslinked film of glucose dehydrogenase-water-soluble photocrosslinkable resin mixture and a ferrocene compound are respectively attached, and a silver or silver/silver chloride electrode as a counter electrode. sensor.
【請求項2】  作用極上に更にセルロースエステル膜
が形成されている請求項1記載のグルコースバイオセン
サ。
2. The glucose biosensor according to claim 1, further comprising a cellulose ester film formed on the working electrode.
JP3067827A 1990-10-12 1991-03-07 Glucose biosensor Pending JPH04215054A (en)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2-274560 1990-10-12
JP27456090 1990-10-12

Publications (1)

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JPH04215054A true JPH04215054A (en) 1992-08-05

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JP3067827A Pending JPH04215054A (en) 1990-10-12 1991-03-07 Glucose biosensor

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Country Link
JP (1) JPH04215054A (en)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US7629172B2 (en) 2002-01-04 2009-12-08 Becton, Dickinson And Company Entrapped binding protein as biosensors
US7951605B2 (en) 2004-06-09 2011-05-31 Becton, Dickinson And Company Multianalyte sensor

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US7629172B2 (en) 2002-01-04 2009-12-08 Becton, Dickinson And Company Entrapped binding protein as biosensors
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