JPH04157366A - Measuring method for saccharified specific protein and reagent therefor - Google Patents

Measuring method for saccharified specific protein and reagent therefor

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JPH04157366A
JPH04157366A JP28296390A JP28296390A JPH04157366A JP H04157366 A JPH04157366 A JP H04157366A JP 28296390 A JP28296390 A JP 28296390A JP 28296390 A JP28296390 A JP 28296390A JP H04157366 A JPH04157366 A JP H04157366A
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JP
Japan
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glycated
reagent
solid phase
protein
antibody
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JP28296390A
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Masaru Hamaoki
勝 濱沖
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Yamasa Shoyu KK
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Yamasa Shoyu KK
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Abstract

PURPOSE:To enable measurement excellent in accuracy and repeatability without problems such as dissociation between a solid phase antibody and saccharified specific protein with good reduction by using reduction reagent of pH 10 or higher. CONSTITUTION:After a solid phase with antibody to specific protein coupled and sample containing saccharified specific protein are reacted with each other, saccharide ingredients dissociated from the solid phase are removed at the time of or after separation between the solid phase and a liquid phase. Then a solid phase in which saccharified parts of saccharified specific protein coupled to the solid phase is reduced by using reducing agent and indicated anti-reduction saccharide protein are reacted with each other. Then after the separation between the solid phase and the liquid phase, either phase is used to measure an indicator amount, from which content of the saccharified specific protein or saccharification ratio is calculated. At this time reducing reagent of pH 10 or higher which does not lose reducing ability but is stabilized even if it is left for a long time is used as the reducing reagent. In this case coupling between the antibody coupled to the solid phase and saccharified protein is not dissociated but a saccharified part can be securely reduced.

Description

【発明の詳細な説明】 し産業上の利用分野コ 本発明は、糖化特定タンパク質の測定法およびそれに使
用する試薬並びにキットに関するものである。
DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION Field of the Invention The present invention relates to a method for measuring specific glycated proteins, and reagents and kits used therefor.

[従来の技術] 近年、非酵素的糖化タンパク質と糖尿病などの疾病との
関係が詳細に研究され、糖化されたアルブミン、ヘモグ
ロビンなどの血中のタンパク質の糖化割合は過去の血糖
状態を反映するものであることが判明し、アルブミン、
ヘモグロビンなどの血中タンパク質の糖化割合を測定す
ることが糖尿病の診断をする上で重要なこととなりつつ
ある。
[Prior art] In recent years, the relationship between non-enzymatically glycated proteins and diseases such as diabetes has been studied in detail, and it has been found that the glycation rate of glycated proteins in the blood, such as albumin and hemoglobin, reflects past blood sugar conditions. It turns out that albumin,
Measuring the glycation rate of blood proteins such as hemoglobin is becoming important in diagnosing diabetes.

従来、血中の糖化タンパク質を測定する方法は種々研究
されているものの、いまだに実用に供しうるような簡便
で優れた方法は見い出されていない。
Conventionally, various methods for measuring glycated proteins in blood have been studied, but a simple and excellent method that can be put to practical use has not yet been found.

天性らはグルントールーリジン残基に特異的親和性を有
する抗体を用いることにより糖化タンパク質を測定でき
ることを報告している(特開昭62−254055号公
報)、また、本発明者も糖化タンパク質の測定法を報告
している(特開昭e4−ie9et号公報)。
reported that glycated proteins can be measured by using antibodies that have specific affinity for glutinol-lysine residues (Japanese Unexamined Patent Publication No. 62-254055). (Japanese Patent Application Laid-open No. Sho E4-IE9ET).

[発明が解決しようとする課題] 本発明者が以前に報告した方法(以下、従来法と称する
)は、簡便で、大量の検体を短時間に処理できる方法と
して実用化を期待された方法であったが、糖化タンパク
質の還元反応に使用する還元試薬の安定性が悪(、還元
試薬!411後直ちに還元反応を実施しなければならな
いという欠点を有していた。
[Problems to be Solved by the Invention] The method previously reported by the present inventor (hereinafter referred to as the conventional method) is a method that is expected to be put into practical use as a simple method that can process a large number of samples in a short time. However, the stability of the reducing reagent used in the reduction reaction of glycated proteins was poor (and the reduction reaction had to be carried out immediately after the reduction reaction was performed).

すなわち、従来法で使用している還元試薬は、水素化ホ
ウ素ナトリウムなどの水素化ホウ素塩をpH8,2〜8
.3の緩衝液に溶解させたもので。
That is, the reducing reagent used in the conventional method is a borohydride salt such as sodium borohydride at pH 8.2 to 8.
.. Dissolved in the buffer solution of 3.

調製後2分も経過しないうち1こ還元力を消失する。It loses its reducing power in less than 2 minutes after preparation.

従って、このような不安定な試薬を使用する従来法は測
定に多大な注意を払う必要があるとともに、場合によっ
ては所定の還元反応を完了することができず、測定値に
ばらつきが生じてしまうこともあった。
Therefore, conventional methods that use such unstable reagents require great care in measurement, and in some cases, the desired reduction reaction cannot be completed, resulting in variations in measured values. Sometimes it happened.

したがって1本発明の目的は、従来法の還元工程を改良
した新しい方法を提供するとともに、該方法に使用する
試薬を提供するものである。
Accordingly, one object of the present invention is to provide a new method that improves the reduction step of the conventional method, and to provide reagents for use in the method.

[課題を解決するための手段] 本発明者は上記従来法の欠点を解決するための方法な見
い出すべく、種々研究を重ねた結果、■水素化ホウ素ナ
トリウムなどの水素化ホウ素塩の溶液のpHを10以上
にすることにより長時間放置しても還元力が消失せず、
著しく安定化されること、■従来、免疫学的測定は中性
付近のpH条件下で行わなければ良好に抗原抗体反応が
進行しないと考えられていたにもかかわらず、固相化抗
体に結合した糖化タンパク質の還元反応をpH10以上
の還元試薬を用いて行っても固相に結合させた抗体と糖
化タンパク質との結合は解離せず、確実に糖化タンパク
質の糖化部分を還元でき、かつ以後の抗原抗体反応もス
ムーズに進行することなどを見い出し、本発明を完成さ
せた。
[Means for Solving the Problems] The present inventor has conducted various studies in order to find a method to solve the drawbacks of the above-mentioned conventional methods. By setting the value to 10 or more, the reducing power will not disappear even if left for a long time.
∎ Although it was previously believed that antigen-antibody reactions would not proceed well unless immunoassays were performed under neutral pH conditions, Even if the reduction reaction of the glycated protein is carried out using a reducing reagent with a pH of 10 or more, the bond between the antibody bound to the solid phase and the glycated protein does not dissociate, and the glycated portion of the glycated protein can be reliably reduced, and the subsequent They discovered that the antigen-antibody reaction also proceeds smoothly, and completed the present invention.

すなわち、本発明は、 (a)特定タンパク質に対する抗体を結合させた固相と
糖化特定タンパク質を含有する試料とを反応させる工程 (b)固相と液相の分離時または分離後に固相から遊離
の糖成分を除去する工程 (c)固相に結合した糖化特定タンパク質の糖化部分を
還元試薬を用いて還元する工程 (d)[識化抗還元型糖化タンパク質抗体と上記(c)
工程で得られた固相とを反応させる工程(e)固相と液
相な分離後、いずれかの相の標識量を測定し、その値か
ら糖化特定タンパク質の含量または糖化割合を算出する
工程 からなる糖化特定タンパク質の測定法において、上記(
c)工程の還元反応を10以上のpHを示す還元試薬を
用いて行うことを特徴とする糖化特定タンパク質の測定
法に関するものである。
That is, the present invention includes (a) a step of reacting a solid phase bound with an antibody against a specific protein with a sample containing a glycated specific protein; (b) a step of reacting a sample containing a glycated specific protein during or after separation of the solid phase and the liquid phase; Step (c) of reducing the glycated moiety of the specific glycated protein bound to the solid phase using a reducing reagent (d) [Recognizing anti-reduced glycated protein antibody and step (c) above]
(e) A step of reacting the solid phase obtained in the step (e) After separating the solid phase and the liquid phase, measuring the amount of label in either phase and calculating the content of the specific glycated protein or the glycation rate from that value. In the method for measuring glycated specific proteins consisting of the above (
The present invention relates to a method for measuring a specific glycated protein, characterized in that the reduction reaction in step c) is carried out using a reducing reagent having a pH of 10 or more.

また、本発明は上記本発明方法の(c)で使用する、水
素化ホウ素塩を溶解させ、かつpHを10以上に調整し
た還元試薬に関するものである。
The present invention also relates to a reducing reagent used in (c) of the method of the present invention, in which a boron hydride salt is dissolved and the pH thereof is adjusted to 10 or more.

さらにまた、本発明は上記本発明方法を実施するための
測定用キットに関するものである。
Furthermore, the present invention relates to a measurement kit for carrying out the above-described method of the present invention.

以下、本発明方法等について詳述する。The method of the present invention will be described in detail below.

本発明において、1丈下の用語は次のような意味で用い
られる。
In the present invention, the term "1 length" is used in the following meanings.

「特定タンパク質」とは、試料中に存在する種々のタン
パク質類のうち、糖化されたタンパク質の含量または糖
化割合を測定しようとする単一種のタンパク質な意味す
る。具体的に、そのような特定タンパク質としてはアル
ブミン、ヘモグロビン、低密度リボタンパク質(LDL
)などが例示される。
The term "specific protein" refers to a single type of protein whose glycated protein content or glycation rate is to be measured among various proteins present in a sample. Specifically, such specific proteins include albumin, hemoglobin, and low density riboprotein (LDL).
) etc. are exemplified.

[糖化特定タンパク質」とは、特定タンパク質のうちの
糖化型のものを意味する。
[Glycated specific protein] means a glycosylated specific protein.

「糖化割合」とは、特定タンパク質に占める糖化特定タ
ンパク質の存在比率を意味する。
"Glycation ratio" means the abundance ratio of the specific glycated protein to the specific protein.

「抗還元型糖化タンパク質抗体」とは、還元型糖化タン
パク質に特異的親和性を有する抗体またはその活性フラ
グメントな意味する。具体的には糖化タンパク質を還元
することにより生じるグルシト−ルーリジン、グルシト
−ルーバリン、マンニトール−リジンなどの還元型糖化
タンパク質の特徴部分構造の一つ以上を特異的に認識す
る抗体である。
"Anti-reduced glycated protein antibody" means an antibody or an active fragment thereof that has specific affinity for reduced glycated protein. Specifically, it is an antibody that specifically recognizes one or more of the characteristic partial structures of reduced glycated proteins, such as glucitolouridine, glucitolouvaline, and mannitol-lysine, which are produced by reducing glycated proteins.

本発明方法で用いる固相は、′a1定目的の特定タンパ
ク質に対する抗体またはその活性フラグメンl・を担体
に結合させたものであり、このものは常法により調製す
ることができる。すなわち、担体の材質としては、通常
用いられているものを使用することができ、たとえば、
多糖類(たとえ・ば、セルロース、デキストラン、デン
プン、デキストリン、 ヒドロキシエチルセルロース、
 p−アミノフェノキシヒドロキシプロピルデキストラ
ン、アガロース、セファデックスなど)のハロゲン化シ
アン活性化物(特公昭45−38543号公報参照)、
上記多糖類のメタ過ヨウ素酸ナトリウム活性化物(特開
昭58−758号公報参照)、セルロースまたはその誘
導体のアミノエチルもしくはアミノプロピル化物(特開
昭59−42452号公報参照)、セルロースまたはそ
の誘導体のメルカプト化物(特開昭58−80558号
公報参照)、上記多糖類のシアネート化物(特公昭49
−2303 1号公報参照)、上記多糖類のエビクロル
ヒドリン−p−アミノフェノール処理物(特開昭54−
158994号公報参照)、芳香族アミノ基を含む多糖
類誘導体のジアゾ化物(希塩酸、亜硝酸ナトリウム処理
による)、セルロースカルボナート誘導体、酢酸セルロ
ース、天然繊維(綿、麻、ウールなど)などの天然高分
子誘導体担体、エチレン、プロピレン、塩化ビニル、酢
酸ビニル、プロピオン酸ビニル、アクリル酸、アクリル
酸エステル、メタクリル酸、メタクリル酸エステル、ス
チレン、メチルスチレン、ブタジェン、イソプレン、ア
クリルアミド、アクリロニトリル,メタクリロニトリル
などの重合体もしくは共重合体担体、またはこられに公
知の手段によりアミノ基、ヒドロキシル基、カルボキシ
ル基、スルホン基。
The solid phase used in the method of the present invention is one in which an antibody against a specific protein of interest or an active fragment thereof is bound to a carrier, and can be prepared by a conventional method. That is, as the material of the carrier, commonly used materials can be used, for example,
Polysaccharides (e.g. cellulose, dextran, starch, dextrin, hydroxyethylcellulose,
activated cyanogen halides of p-aminophenoxyhydroxypropyldextran, agarose, Sephadex, etc. (see Japanese Patent Publication No. 45-38543),
Sodium metaperiodate activated products of the above polysaccharides (see JP-A-58-758), aminoethyl or aminopropylated products of cellulose or derivatives thereof (see JP-A-59-42452), cellulose or derivatives thereof mercapto compound of
-2303 No. 1), shrimp chlorohydrin-p-aminophenol treated product of the above polysaccharide (Japanese Patent Application Laid-open No. 1983-
158994), diazotized products of polysaccharide derivatives containing aromatic amino groups (by treatment with dilute hydrochloric acid and sodium nitrite), cellulose carbonate derivatives, cellulose acetate, natural fibers such as natural fibers (cotton, hemp, wool, etc.) Molecular derivative carriers, such as ethylene, propylene, vinyl chloride, vinyl acetate, vinyl propionate, acrylic acid, acrylic esters, methacrylic acid, methacrylic esters, styrene, methylstyrene, butadiene, isoprene, acrylamide, acrylonitrile, methacrylonitrile, etc. amino groups, hydroxyl groups, carboxyl groups, sulfone groups by polymeric or copolymer carriers or by means known thereto.

チオール基、アジド基、イソシアノ基などの反応性官能
基を導入したものなどが挙げられる。
Examples include those into which reactive functional groups such as thiol groups, azide groups, and isocyano groups are introduced.

担体の形状としては、ヂューブ状,テストプレート状、
 ビーズ状、ディスク状、球状、 スティック状、ラテ
ックス状などが例示できる。
The shape of the carrier is tube-shaped, test plate-shaped,
Examples include beads, disks, spheres, sticks, and latex.

上記担体に結合させる抗体は、測定目的の特定タンパク
質に対して特異的に反応する抗体であり、該抗体の反応
性は特定タンパク質が糖化されているか、否かにより変
動しない。この抗体は、モノクローナル抗体、ポリクロ
ーナル抗体のいずれのものであってもよく、また抗体分
子自体として、またはその活性フラグメント(たとえば
、F(ab’)a、Fab’、Fabなと)として使用
してもよい。
The antibody bound to the carrier is an antibody that specifically reacts with the specific protein to be measured, and the reactivity of the antibody does not vary depending on whether the specific protein is glycosylated or not. The antibody may be either a monoclonal antibody or a polyclonal antibody, and may be used as an antibody molecule itself or as an active fragment thereof (e.g., F(ab')a, Fab', Fab, etc.). Good too.

該抗体は通常の方法で調製することができる4。The antibody can be prepared by conventional methods4.

たとえば、糖化特定タンパク質の含量または糖化割合を
測定しようとする特定タンパク質の精製物を生理食塩水
および完全フロイドアジュバントを用いて乳化し、これ
を温血動物(たとえば、ウサギ、ヒツジ、ヤギ、ラット
、マウス、モルモット、ウシ、ニワトリ、ハト、アヒル
など)に1〜4週問おきに数回接種し、I&終接種後7
〜14日の間に採血し、遠心分離する方法により目的の
ポリクローナル抗体を含有する抗血清を取得することが
できる。ポリクローナル抗体の精製が必要とされるとき
は、塩析法、アフィニティークロマトグラフィー法など
の抗体の通常の精製手段を用いて精製することができる
For example, a purified product of a specific protein whose content or percentage of glycated protein is to be measured is emulsified using physiological saline and complete Freud's adjuvant, and this is emulsified in warm-blooded animals (e.g., rabbits, sheep, goats, rats, etc.). mice, guinea pigs, cows, chickens, pigeons, ducks, etc.) are inoculated several times every 1 to 4 weeks.
Antiserum containing the polyclonal antibody of interest can be obtained by collecting blood for up to 14 days and centrifuging it. When purification of a polyclonal antibody is required, it can be purified using conventional antibody purification methods such as salting out method and affinity chromatography method.

また、モノクローナル抗体は細胞融合法などの公知の方
法による調部することができる。たとえば、糖化特定タ
ンパク賞の含量または糖化割合を測定しようとする特定
タンパク質を抗原として温血動物(たとえば、ラット、
モルモット、マウスなど)しこ免疫して得られる抗体産
生細胞(たとえば、牌細胞、リンパ節細胞、末梢血リン
パ球など)と入手可能なミエローマ細胞(たとえ番f、
P3X83Ag8 (ATCCTIB−9)、P3×6
3Ag 8tJ、  I (P3Ul)(ATCCCR
L−1597)、P3/NSI/1−Ag4−1 (A
TCC’MB−18)、210.RCY、Ag1.2.
3 (ATCCCRL−1831)など)を細胞融合促
進剤(たとえばポリエチレングリコール、センダイウィ
ルスなど)の存在下また1よ電気パルス印加条件下融合
させ、ノ)イブリドーマを件部する。得られたハイブリ
ドーマと未融合の細胞とを選択培地(たとえばヒボキサ
ンチン−アミノプリテン−チミジン(HAT)培地など
)を用いて選別し、さらに公知のスクリーニング法(た
とえば、酵素免疫測定法)により目的の抗体を産生ずる
ハイブリドーマを選択する。選択したノ)イブリドーマ
は、通常のモノクローン化法(たとえば限界希釈法、軟
寒天法、セルソーター法など)によりクローニングし、
通常の液体培地または瀉血動物の腹腔内で増殖させるこ
とによりモノクローナル抗体を取得することができる。
Furthermore, monoclonal antibodies can be prepared by known methods such as cell fusion methods. For example, a warm-blooded animal (e.g., rat,
Antibody-producing cells (e.g., tile cells, lymph node cells, peripheral blood lymphocytes, etc.) obtained by intramuscular immunization (guinea pigs, mice, etc.) and available myeloma cells (eg.
P3X83Ag8 (ATCCTIB-9), P3x6
3Ag 8tJ, I (P3Ul) (ATCCCR
L-1597), P3/NSI/1-Ag4-1 (A
TCC'MB-18), 210. RCY, Ag1.2.
3 (ATCC CRL-1831), etc.) in the presence of a cell fusion promoter (eg, polyethylene glycol, Sendai virus, etc.) and under conditions of applying an electric pulse to 1. The obtained hybridomas and unfused cells are selected using a selective medium (for example, hypoxanthine-aminopriten-thymidine (HAT) medium, etc.), and then the target antibody is detected by a known screening method (for example, enzyme immunoassay). Select hybridomas that produce The selected hybridomas are cloned by conventional monocloning methods (for example, limiting dilution method, soft agar method, cell sorter method, etc.),
Monoclonal antibodies can be obtained by growth in conventional liquid culture or intraperitoneally in phlebotomy animals.

抗体の精製が必要とされるときは塩析法、各種クロマト
グラフィー法などの公知の方法で精製することができる
When it is necessary to purify the antibody, it can be purified by known methods such as salting-out methods and various chromatography methods.

上述した抗体の調製はいずれも確立された通常の方法で
あり、調頓法の詳細については蔵書、総説、報文などを
参照することができる(たとえば、岩崎辰夫ら著、 「
単クローン抗体−ハイブリドーマとBLISA−J  
(株式会社講談社発行、昭和58年2月20日)、Eu
r、J、 Immunol、 、fi、pp511〜5
19(1976)、Methods in ENZYM
OLOGY Vol、121(ls+munoches
ical Techniques Part  I(H
ybridomaTechnology and Mo
noclonal^ntibodies) (アカデミ
ツクプレス発行)、Nature4ム、 pp269〜
270(+978)、臨床病理、第34巻第2号、第1
21〜124頁(1988年)、J、^pp1.Bio
ches、、4.41(+982)など参照)。
All of the above-mentioned antibody preparations are established and conventional methods, and for details of the preparation methods, you can refer to books, reviews, reports, etc. (for example, Tatsuo Iwasaki et al., "
Monoclonal antibodies - hybridomas and BLISA-J
(Published by Kodansha Co., Ltd., February 20, 1982), Eu
r, J, Immunol, , fi, pp511-5
19 (1976), Methods in ENZYM
OLOGY Vol, 121 (ls+munoches
ical Techniques Part I(H
hybridomaTechnology and Mo
noclonal^ntibodies) (published by Academic Press), Nature4m, pp269~
270 (+978), Clinical Pathology, Vol. 34, No. 2, No. 1
21-124 (1988), J, ^pp1. Bio
chess, 4.41 (+982), etc.).

担体への抗体の結合は、吸着法、共有結合法、架橋法、
包括法のいずれも適用することができる。
The antibody can be bound to the carrier by adsorption method, covalent bonding method, crosslinking method,
Any of the comprehensive laws may be applied.

このような固定化法の詳細については、固定化酵素にお
ける方法を応用すればよく、たとえば、千畑一部編「固
定化酵素」 (昭和50年3月20日、(株)講談社発
行)第9〜75頁などの蔵書または総説を参照すればよ
い。
For details of such immobilization methods, methods for immobilized enzymes can be applied, for example, "Immobilized Enzymes" edited by Chibata, Vol. 9 (March 20, 1975, published by Kodansha Co., Ltd.) You may refer to the collection or reviews on pages 75 to 75.

本発明方法に供する試料の種類として(よ、糖(ヒ、特
定タンパク質を含有する可能性のある生体由来のもので
あればよく、たとえば、尿、血液、血清、髄液、各種臓
器抽出物などが挙げられる。
The types of samples used in the method of the present invention may be those of biological origin that may contain specific proteins, such as urine, blood, serum, cerebrospinal fluid, various organ extracts, etc. can be mentioned.

該試料は、糖化特定タンパク賞の含量を測定する場合に
は担体上に結合させて得られた一定量の固相化抗体のす
べてに特定タンパク賞(糖化されている特定タンパク質
および糖化されていない特定タンパク質)が結合しうる
濃度未満の濃度の特定タンパク賞を含有しうるちのを使
用し、特定タンパク質の糖化割合を測定する場合には担
体上に固定化させて得られた一定量の固相化抗体の全て
に特定タンパク賃(糖化されている特定タンパク賞およ
び糖化されていない特定タンパク質)が結合しうる濃度
以上の濃度の特定タンパク質を含有しうるものを用いる
ことが肝要である。このような試料を用いることにより
特定タンパク質の糖化割合を測定する場合には固相化抗
体に結合する特定タンパク質量が常に一定となり、特定
タンパク質の総量を測定する操作を省略することができ
る。
When measuring the content of glycated specific protein in the sample, all of the fixed amount of immobilized antibody obtained by binding to the carrier should be combined with specific protein content (glycated specific protein and non-glycated specific protein). When measuring the saccharification rate of a specific protein, a fixed amount of solid phase obtained by immobilizing it on a carrier is used. It is important to use antibodies that can contain specific proteins at a concentration higher than that at which the specific proteins (glycosylated specific proteins and non-glycosylated specific proteins) can bind. When measuring the glycation rate of a specific protein by using such a sample, the amount of the specific protein bound to the immobilized antibody is always constant, and the operation of measuring the total amount of the specific protein can be omitted.

試料と固相化抗体との反応は、通常の抗原抗体反応に準
じて行えばよく、反応温度としては、0〜50℃、反応
時間としては1分〜5時間の範囲より適宜選定すること
ができる。
The reaction between the sample and the immobilized antibody can be carried out in accordance with a normal antigen-antibody reaction, and the reaction temperature can be selected as appropriate from the range of 0 to 50°C and the reaction time from 1 minute to 5 hours. can.

反応終了後、固相と液相の分離は免疫学的測定法に繁用
されている洗浄、遠心分離、傾しゃ、吸引、ろ過などの
通常の分離方法を適宜選択して実施することができる。
After completion of the reaction, separation of the solid phase and liquid phase can be carried out by appropriately selecting conventional separation methods such as washing, centrifugation, decanting, suction, and filtration, which are frequently used in immunoassays. .

面相と液相の分離時もしくは分離後に面相上に存在する
遊離の糖成分を除去する。除去方法としては固相上から
糖成分を除去できる方法であれば特に制限されず、たと
えば、洗浄処理などを例示することができる。該洗浄処
理は液相の分離処理と兼用して行ってもよく、また別個
に行ってもよい。洗浄に使用する洗浄液としては、水ま
たは緩衝液を用いることができ、かかる緩衝液としては
たとえば、クエン酸緩衝液、 トリス塩酸緩衝液、リン
酸緩衝液、リン酸緩衡生理食塩水などを例示することが
でとる。洗浄の程度は、遊離の糖成分などの還元反応に
影響をおよぼす共存物質が固相上に実質上存在しなくな
る程度でよく、通常、1〜3回の洗浄操作により該目的
を達成することができる。
Free sugar components present on the surface phase are removed during or after separation of the surface phase and liquid phase. The removal method is not particularly limited as long as the sugar component can be removed from the solid phase, and examples thereof include washing treatment. The washing treatment may be performed concurrently with the liquid phase separation treatment, or may be performed separately. As the washing solution used for washing, water or a buffer solution can be used, and examples of such buffer solutions include citrate buffer solution, Tris-HCl buffer solution, phosphate buffer solution, phosphate buffered saline solution, etc. Take it by doing it. The degree of washing may be such that coexisting substances that affect the reduction reaction, such as free sugar components, are substantially not present on the solid phase, and this objective can usually be achieved by washing 1 to 3 times. can.

固相上の遊離の糖成分を除去した後、固相化抗体に結合
している糖化特定タンパク質の糖化部分を還元試薬を用
いて還元型に変換する。
After removing free sugar components on the solid phase, the glycated portion of the specific glycated protein bound to the immobilized antibody is converted into a reduced form using a reducing reagent.

還元反応に使用する還元試薬としては、水素化ホウ素ナ
トリウム、水素化ホウ素リチウム、水素化ホウ素カルシ
ウム、水素化ホウ素カリウム、水素化ホウ素亜鉛などの
水素化ホウ素塩を溶解させたものであり、かつその液性
をpHlO以上に調整したものが例示される。このよう
な還元試薬は水素化ホウ素塩をpHlO以上、好ましく
はpH10〜14の水性媒体(たとえば、炭酸ナトリウ
ム緩衝液などの各種緩衝液、水酸化ナトリウムなどを溶
解させたアルカリfa液など)に溶解させることにより
調製することができる。pHlo未満の水性媒体に上記
水素化ホウ素塩を溶解させても、該溶液は不安定であり
、これを還元反応に使用しても前述のような問題を生じ
る。このことを試験例をもって説明する。
The reducing reagent used in the reduction reaction is a solution of a borohydride salt such as sodium borohydride, lithium borohydride, calcium borohydride, potassium borohydride, zinc borohydride, etc. Examples include those whose liquid properties are adjusted to pHlO or higher. Such a reducing reagent dissolves the borohydride salt in an aqueous medium (e.g., various buffers such as sodium carbonate buffer, alkaline fa solution containing sodium hydroxide, etc.) with a pH of 10 or higher, preferably pH 10 to 14. It can be prepared by Even if the above-mentioned borohydride salt is dissolved in an aqueous medium having a pH below the pH lo, the solution is unstable, and even if this solution is used in a reduction reaction, the above-mentioned problems occur. This will be explained using a test example.

試験例 1 方法: ■ボロン酸アフィニティーカラム(アイソラブ社製)を
使用して脱糖化した抗ヒト血清アルブミン(HS A)
抗体溶液(100℃g/罷1リン酸緩衝生理食塩水(P
BS))をビーズ(イムノケミカル社製)と接触させて
、ビーズ上に抗H3A抗体を固定化した。次に、ボロン
酸アフィニティーカラムを使用して脱糖化した牛血清ア
ルブミン(BSA)の1%溶液を用いてビーズ上の抗体
が結合していない部分をブロッキングした。
Test Example 1 Method: ■Anti-human serum albumin (HS A) deglycosylated using a boronic acid affinity column (manufactured by Isolab)
Antibody solution (100℃g/1 phosphate buffered saline (P
BS)) were brought into contact with beads (manufactured by Immunochemical) to immobilize the anti-H3A antibody on the beads. Next, a 1% solution of bovine serum albumin (BSA) that had been deglycosylated using a boronic acid affinity column was used to block the portions on the beads to which the antibodies were not bound.

■抗H3A抗体結合ビーズに1ooμg/ml糖化ヒト
血清アルブミンおよび1%BSA含有50mMクエ’、
r [9緩衝液(pH5,0)250μlを加えて25
℃で1時間反応させた。
■ Anti-H3A antibody-coupled beads with 1ooμg/ml glycated human serum albumin and 50mM Que' containing 1% BSA;
r [Add 250 μl of 9 buffer (pH 5,0) and
The reaction was carried out at ℃ for 1 hour.

■反応後、PBSでビーズを3回洗浄し、 1%ブタノ
ール含有0.1Mリン酸カリウム緩衝液(pH8,0)
225μlおよび下記表1に示す10mM水素化ホウ素
カリウム溶液25μlを加え、25℃で10分間反応さ
せた。
■After the reaction, wash the beads three times with PBS and add 0.1M potassium phosphate buffer containing 1% butanol (pH 8.0).
225 μl and 25 μl of a 10 mM potassium borohydride solution shown in Table 1 below were added and reacted at 25° C. for 10 minutes.

■ビーズをPBSで3回洗St身、8μg/■Iホース
ラディシュバーオキシダーゼ標識抗還元型糖化タンパク
質抗体および1%BSA含有0.1Mリン酸ナトリウム
緩衝液(pHe、0)250μmを加えて25℃で1時
間反応させた。
■ Wash the beads three times with PBS, add 8 μg/■ I horseradish bar oxidase-labeled anti-reduced glycated protein antibody and 250 μm of 0.1 M sodium phosphate buffer (pHe, 0) containing 1% BSA at 25°C. The mixture was reacted for 1 hour.

■ビーズをPBSで4回洗浄後、0−フェニレンジアミ
ン(8■/■I)および過酸化水素(0.02%)含有
0.1Mクエン酸緩衝液(pH5,0)500μlを加
え25℃で20分間反応させたI&、2N−1i!酸1
 all加えて反応を停止させ、4θ2nmの吸光度を
測定した。
■After washing the beads four times with PBS, add 500 μl of 0.1M citric acid buffer (pH 5,0) containing 0-phenylenediamine (8■/■I) and hydrogen peroxide (0.02%) and incubate at 25°C. I&, 2N-1i reacted for 20 minutes! acid 1
All was added to stop the reaction, and the absorbance at 4θ2 nm was measured.

結果: その結果を第1図に示す。第1図から明らかにように、
pH8および9の媒体に溶解させた還元試薬を使用した
場合、急速に吸光度が低下してい(のがわかる。これは
、還元試薬が不安定で還元能力が失われ、所定の糖化タ
ンパク質の還元が行われなかったことに起因するもので
ある。このため、pH1o未渦の媒体に水素化ホウ素塩
を溶解させた還元試薬は糖化タンパク賞の還元に不適で
あることが明確に示された。
Results: The results are shown in Figure 1. As is clear from Figure 1,
When reducing reagents dissolved in pH 8 and 9 media were used, the absorbance rapidly decreased. Therefore, it was clearly shown that a reducing reagent in which a boron hydride salt was dissolved in an unvortexed medium at pH 1o was unsuitable for the reduction of the Glycated Protein Award.

試験例 2 方法: 10mM水素化ホウ素カリウム溶液として下記表2に示
されるものを使用して試験例1と同様に試験した。
Test Example 2 Method: A test was conducted in the same manner as in Test Example 1 using the 10 mM potassium borohydride solution shown in Table 2 below.

表2 結果: 結果を第2図に示す。第2図から明らかなように、pH
lo以上、特にpH10,5以上の媒体に溶解させた還
元試薬は安定で、還元反応も確実に行えるものであるこ
とを確証した。
Table 2 Results: The results are shown in Figure 2. As is clear from Figure 2, the pH
It was confirmed that a reducing reagent dissolved in a medium with a pH of 10.0 or higher, particularly a pH of 10.5 or higher, is stable and can perform the reduction reaction reliably.

還元反応は、反応系に水素化ホウ素塩の最終1度が0.
1mM以上、好ましくは1〜100 m Mになるよう
に前述の還元試薬を添加後、反応温度0〜50℃、好ま
しくは20〜30’Cで1分〜lO時間反応させること
により実施することができ る。
In the reduction reaction, the final degree of borohydride salt in the reaction system is 0.
It can be carried out by adding the above-mentioned reducing reagent to a concentration of 1mM or more, preferably 1 to 100mM, and then reacting at a reaction temperature of 0 to 50°C, preferably 20 to 30'C, for 1 minute to 10 hours. can.

なお、還元反応時の反応系のpH条件は、前述の特定p
l(を示す還元試薬を用いている限り特に限定されない
が、pH10を超過する条件下に維持するのがより好ま
しい。反応系全体をpH10を超過するpH条件に維持
する方法は特に制限されず、上記還元反応開始時に反応
系にアルカリを添加したり、反応溶媒としてpH1Oを
超過する緩衝液を使用したりする方法などが例示される
In addition, the pH conditions of the reaction system during the reduction reaction are based on the above-mentioned specific pH conditions.
There is no particular limitation as long as a reducing reagent exhibiting 1 is used, but it is more preferable to maintain the reaction system under conditions exceeding pH 10. There are no particular limitations on the method for maintaining the entire reaction system under pH conditions exceeding pH 10. Examples include methods in which an alkali is added to the reaction system at the start of the reduction reaction, and a buffer solution with a pH exceeding 10 is used as a reaction solvent.

上記還元反応後、標識化抗還元型糖化タンパク賞抗体を
反応液に添加して反応させる。
After the above reduction reaction, a labeled anti-reduced glycated protein antibody is added to the reaction solution and reacted.

抗還元型糖化タンパク質抗体は、すでに報告されている
公知の方法(たとえば、前出の大工らの方法参照)を適
宜応用して調製することができる。
Anti-reduced glycated protein antibodies can be prepared by appropriately applying known methods that have already been reported (for example, see the method of Daiku et al. mentioned above).

たとえば、タンパク賞とグルコースを反応させた後もし
くは反応時にシアン化水素化ホウ素ナトリウムを用いて
還元して調製した還元型糖化タンパク質を抗原として、
以後前述のポリクローナル抗体またはモノクローナル抗
体の公知の調製法に従って還元型糖化タンパク質に特異
的に反応する抗体を調製することができる。
For example, using a reduced glycated protein prepared by reacting protein with glucose or by reducing it with sodium cyanoborohydride during the reaction, as an antigen,
Thereafter, an antibody that specifically reacts with the reduced glycated protein can be prepared according to the known preparation method for polyclonal antibodies or monoclonal antibodies described above.

抗還元型糖化タンパク質抗体を標識するための標識物質
としては、免疫学的測定法に繁用されているものを用い
ることができる。具体的には、1251、  +311
.3H1” Crt ト0) 放射性同位元素、β−ガ
ラクトシダーゼ、ペルオキシダーゼ、アルカリフォスフ
ァターゼ、 グルコースオキシダーゼ、グルコース−6
−リン酸デヒドロゲナーゼなどの酵素、フルオレセイン
誘導体(たとえば、フルオレセインイソチオンアナート
、フルオレセインチオフルバミルなど)、ローダミン誘
導体(たとえば、テトラメチルローダミンBイソチオシ
アナートなど)、ウムベリフェロレおよび1−アニリノ
−8−ナフタレンスルホン酸などの蛍光色素、ルミノー
ル誘導体(たとえばルミノール、イソルミノール、 N
−(6−アミノへキシル)−N−エチルイソルミノール
など)などの化学発光物質、ビチオン、ヘム、フラビン
アデニンジヌクレオチドなどの補酵素、補欠分子族など
を例示することができる。
As a labeling substance for labeling the anti-reduced glycated protein antibody, those frequently used in immunoassay methods can be used. Specifically, 1251, +311
.. 3H1” Crt 0) Radioactive isotope, β-galactosidase, peroxidase, alkaline phosphatase, glucose oxidase, glucose-6
- Enzymes such as phosphate dehydrogenase, fluorescein derivatives (e.g. fluorescein isothionate, fluorescein thiofulbamyl, etc.), rhodamine derivatives (e.g. tetramethylrhodamine B isothiocyanate, etc.), umbelliferole and 1-anilino-8-naphthalene sulfone Fluorescent dyes such as acids, luminol derivatives (e.g. luminol, isoluminol, N
-(6-aminohexyl)-N-ethylisoluminol, etc.), coenzymes such as bition, heme, flavin adenine dinucleotide, and prosthetic groups.

標識物質と抗体の結合は常法に従って行えばよい。たと
えば、放射性同位元素を標識化する場合は、クロラミン
T法、ラクトペルオキシダーゼ法、グルコースオキンダ
ーゼ法、結合法(Bolton−Hunter法)など
を用いることができる。酵素を標識化する場合は、グル
タルアルデヒド法、過ヨウ素酸法、マレイミド法、 ピ
リジル・ジスルフィド法などを用いることができる。
Binding of a labeling substance and an antibody may be performed according to a conventional method. For example, when labeling with a radioactive isotope, the chloramine T method, lactoperoxidase method, glucose okindase method, binding method (Bolton-Hunter method), etc. can be used. When labeling enzymes, glutaraldehyde method, periodic acid method, maleimide method, pyridyl disulfide method, etc. can be used.

このようにして調製した標識化抗還元型糖化タンパク質
抗体と固相化抗体に結合している還元型糖化特定タンパ
ク質との反応条件は、たとえば、反応温度としては0〜
50℃、反応時間としては1分〜5時間の範囲内より適
宜選定することかでき る。
The reaction conditions for the labeled anti-reduced glycated protein antibody prepared in this way and the reduced glycated specific protein bound to the immobilized antibody include, for example, a reaction temperature of 0 to 0.
The reaction time at 50°C can be appropriately selected from the range of 1 minute to 5 hours.

上記反応後、固相と液相を通常の方法により分離し、い
ずれかの相の標識量を使用した標識物において繁用され
ている方法に従って測定する。
After the above reaction, the solid phase and liquid phase are separated by a conventional method, and the amount of label in either phase is measured according to a method commonly used for labeled substances.

既知の糖化特定タンパク質含量または糖化割合になるよ
うに調製した標準溶液を上述した本発明方法により測定
して得られた測定値と糖化タンパク質含量または糖化割
合との関係をプロットして標準曲線を作成する。該標準
曲線をもとに測定値に対する糖化特定タンパク質含量ま
たは特定タンパク賞の糖化割合を算出する。
A standard curve is created by plotting the relationship between the measured value obtained by measuring a standard solution prepared to have a known glycated specific protein content or glycation ratio by the method of the present invention and the glycated protein content or glycation ratio. do. Based on the standard curve, the glycated specific protein content or the glycated percentage of the specific protein award is calculated with respect to the measured value.

本発明は上記詳述した本発明方法を実施するためのキッ
トも包含するものである。かかるキットは少なくとも下
記の試薬を構成試薬とするものである。
The present invention also includes a kit for carrying out the method of the present invention detailed above. Such a kit includes at least the following reagents.

試薬1: 特定タンパク質に特異的に反応する抗体を結
合させた固相試薬。
Reagent 1: A solid phase reagent bound to an antibody that specifically reacts with a specific protein.

試薬2:pHl0以上の還元試薬。Reagent 2: Reducing reagent with a pH of 0 or higher.

試薬3゛ 標識化抗還元型糖化タンパク質抗体試薬。Reagent 3゛ Labeled anti-reduced glycated protein antibody reagent.

なお、上記試薬2は、水素化ホウ素塩とpHl0以上の
溶解液とからなり、測定時に調製するような用時溶解型
の形態でキットに添付してもよい。さらにまた、必要に
応じて他の試薬を上記キットに追加してもよい。
Note that the reagent 2 consists of a borohydride salt and a solution having a pH of 10 or more, and may be attached to the kit in the form of a ready-to-dissolve type that is prepared at the time of measurement. Furthermore, other reagents may be added to the kit as necessary.

実施例 l 試験例1と同様にして抗H8A抗体結合ビーズを作製し
た。
Example 1 Anti-H8A antibody-bound beads were produced in the same manner as in Test Example 1.

糖化割合を0〜40%に調部したlOOμg/mlHS
 Aおよび1%BSA含有50mMクエン酸緩衝液(p
H5,0)250μmを上記抗H3A抗体結合ビーズに
加え、25℃で1時間反応させた。
lOOμg/mlHS with saccharification rate adjusted to 0-40%
A and 50 mM citrate buffer containing 1% BSA (p
H5,0) 250 μm was added to the above anti-H3A antibody-bound beads and reacted at 25° C. for 1 hour.

反応後、PBSで3回ビーズを洗浄し、1%ブタノール
含有0.1Mトリス塩酸緩衝液(pH8゜5)225μ
lを加え、さらに下記表3に示す100mM水素化ホウ
素カリウム溶液25μlを加え、25℃で20分間還元
反応させた。
After the reaction, wash the beads three times with PBS and add 225μ of 0.1M Tris-HCl buffer (pH 8°5) containing 1% butanol.
1 was added thereto, and 25 μl of a 100 mM potassium borohydride solution shown in Table 3 below was added, followed by a reduction reaction at 25° C. for 20 minutes.

表3 還元反応後、PBSで3回ビーズを洗浄し、8μg/m
lホースラディシュバーオキシダーゼIJ識抗還元型糖
化タンパク質抗体および1%BSA含有0.1Mリン酸
ナトリウム緩衝液(pH8,0)250μmを加え、2
5℃で1時間反応させた。
Table 3 After the reduction reaction, wash the beads 3 times with PBS and
Add 1 horseradish bar oxidase IJ-recognizing reduced glycated protein antibody and 250 μm of 0.1 M sodium phosphate buffer (pH 8.0) containing 1% BSA, and
The reaction was carried out at 5°C for 1 hour.

次に、ビーズをPBSで4回洗浄後、0−フェニレンジ
アミン(8■/1)および過酸化水素(0゜02%)含
有0.1Mクエン酸緩衝液(pH5,0)500μlを
加えて25℃で12分間反応させ、2N−硫酸溶n l
 mlを加えて反応を停止させた。
Next, after washing the beads 4 times with PBS, 500 μl of 0.1 M citric acid buffer (pH 5,0) containing 0-phenylenediamine (8 μ/1) and hydrogen peroxide (0°02%) was added for 25 minutes. ℃ for 12 minutes, 2N-sulfuric acid solution nl
ml was added to stop the reaction.

この溶液の429nmの吸光度を測定した。The absorbance of this solution at 429 nm was measured.

その結果を第3図に示す。第3図に示されているように
、 pH10,74の媒体に溶解させた還元試薬は6時
間数Il後であってもa+W直後と同様に良好な検量線
を作成できるのに対し、pH8゜5の媒体に溶解させた
ものは6時間放置することにより還元力が消失して検量
線を作成することができなかった。また、上記6時間放
置した還元試薬を用いて上記と同様の方法で糖尿病患者
の・血清と健常人の血清を測定したところ、pH10,
74の媒体に溶解させた還元試薬を用いる本発明方法の
み糖化割合す測定することが可能であった。
The results are shown in FIG. As shown in Figure 3, a reducing reagent dissolved in a medium with a pH of 10.74 can produce a good calibration curve even after several hours of 6 hours, as well as immediately after a+W, whereas with a reducing reagent dissolved in a medium with a pH of 8° The reducing power of the solution dissolved in medium No. 5 disappeared after being left for 6 hours, making it impossible to create a calibration curve. In addition, when serum from diabetic patients and serum from healthy individuals were measured in the same manner as above using the reducing reagent left for 6 hours, the pH was 10,
It was possible to measure the saccharification rate only by the method of the present invention using a reducing reagent dissolved in a medium of 74%.

実施例 2 試験例1と同様にして抗HS A抗体結合ビーズを作製
した。
Example 2 Anti-HSA antibody-bound beads were produced in the same manner as in Test Example 1.

糖化割合を0〜40%に調製した100μg/mlHS
 Aおよび1%BSA含有50mMクエン酸緩衝液(p
H5,0)250μlを上記抗H3A抗体結合ビーズに
加え、25℃で1時間反応させた。
100 μg/ml HS adjusted to a saccharification rate of 0 to 40%
A and 50 mM citrate buffer containing 1% BSA (p
250 μl of H5,0) was added to the anti-H3A antibody-conjugated beads and reacted at 25° C. for 1 hour.

反応後、PBSで3回ビーズを洗浄し、0.2Mトリス
塩酸緩衝液(p 88. 5 B )または0゜2M炭
酸ナトリウム緩衝液(pH10,33〜11.04)に
水素化ホウ素カリウムを溶解させて調製した直後の25
mMA票化ホウ票カリウム溶m(還元試薬)250μl
を加え、25℃で1時間還元反応させた。
After the reaction, wash the beads three times with PBS and dissolve potassium borohydride in 0.2M Tris-HCl buffer (p88.5 B) or 0.2M sodium carbonate buffer (pH 10,33-11.04). 25 immediately after preparation
250 μl of mM potassium solution (reducing reagent)
was added, and a reduction reaction was carried out at 25°C for 1 hour.

還元反応後、PBSで3回ビーズを洗浄し、8μg/−
1ホースラディシュバーオキンダーゼ漂識抗還元型糖化
タンパク質抗体および1%BSA含有0.1Mリン酸ナ
トリウム&l衝液(pH8,0)250μlを加え、2
5℃で1時間反応させた。
After the reduction reaction, wash the beads 3 times with PBS and add 8μg/-
1 Add horseradish bar okindase drift anti-reduced glycated protein antibody and 250 μl of 0.1 M sodium phosphate solution (pH 8,0) containing 1% BSA,
The reaction was carried out at 5°C for 1 hour.

イ欠に、 ビーズをPBSで4回洗浄(麦、0−フェニ
レンジアミン(8■/1)および過酸化水素(0゜02
%)含有0.1Mクエン酸緩衝液(pH5,0)500
μlを加えて25℃で12分間反応させ、2N−硫酸溶
液1膳1を加えて反応を停止させた。
Once again, the beads were washed four times with PBS (wheat, 0-phenylenediamine (8/1) and hydrogen peroxide (0°02).
%) containing 0.1M citrate buffer (pH 5,0) 500
μl was added and reacted at 25° C. for 12 minutes, and 1 portion of 2N sulfuric acid solution was added to stop the reaction.

この溶液の429nmの吸光度を測定した。The absorbance of this solution at 429 nm was measured.

その結果を第4図に示す。第4図に示されているように
、還元時のpH条件がlOを越える条件下でも良好な標
準曲線が得られ、実用に供しうる方法であることを確記
した。
The results are shown in FIG. As shown in FIG. 4, a good standard curve was obtained even under conditions where the pH conditions during the reduction exceeded 1O, confirming that the method was practically applicable.

[効果] 本発明方法は固相化抗体に結合した糖化特定タンパク賞
の糖化部分を還元試薬を用いて還元するに際し、還元試
薬としてpH10以上ものを使用することを特徴とする
ものであり、このようなアルカリ性の還元試薬を用いて
も固相化抗体と糖化特定タンパク質との解離等の弊害を
生じることなく、良好に還元反応を行うことができ、糖
化特定タンパク質の含量または特定タンパク賞の糖化割
合を精度および再現性よく測定することができる。
[Effect] The method of the present invention is characterized by using a reducing reagent with a pH of 10 or higher when reducing the glycated portion of the glycated specific protein award bound to the immobilized antibody using a reducing reagent. Even if an alkaline reducing reagent such as The ratio can be measured with high precision and reproducibility.

さらに、上記特定pHの還元試薬を使用し、かつ還元反
応時のpH条件を10を超過する条件下で固相化抗体に
結合した糖化特定タンパク賞を還元することにより、さ
らに確実に糖化特定タンパク賞の糖化部分を還元するこ
とができ、もって、測定の精度および再現性をさらに高
めることかでき る。
Furthermore, by reducing the glycated specific protein bound to the immobilized antibody using the above-mentioned reducing reagent with the specific pH and under conditions exceeding the pH condition during the reduction reaction of 10, it is possible to further reliably reduce the glycated specific protein. It is possible to reduce the glycated portion of the prize, thereby further increasing the accuracy and reproducibility of measurements.

また、本発明の還元試薬およびキットは本発明方法を実
施するのに有用である。
The reducing reagents and kits of the invention are also useful in practicing the methods of the invention.

【図面の簡単な説明】[Brief explanation of the drawing]

第1図及び第2図は各pHの還元試薬を所定時間放置し
た後、本発明法に供したときの結果を表わしたものであ
る。 第3図はpH8,5とpH1o、74の還元試薬な0ま
たは6時間放置後、この還元試薬な用いて用いて作成し
た検量線である。 第4図は各pHの還元試薬を用いて作成した検量線であ
る。 特許出願人(877)ヤマサ醤油株式会社第(1¥J 口 −・・ rH>II △−・II″It。 ◇−yHゾ O−・−fHg 12図 ○−・ fH//、2g △・・・ pHlo、デg ◇ −・・ rl−11F、プ乙 乎−3図 〇 −・ ・ tyH&、タ、方ダIt’41j7 o
 rA)・−11−1’if、t; 、放11f&76
 を約△ −−−PH(0,7’l  、Rfn&7 
0  (k〕A  −−−pH/ρJ9.7jlftf
f/g71  chノ*言作出肪人(鍔7ノヤマ噌訪辣
ガ゛公仏舘4霧
FIGS. 1 and 2 show the results obtained when reducing reagents at various pH values were allowed to stand for a predetermined period of time and then subjected to the method of the present invention. FIG. 3 is a calibration curve prepared using reducing reagents at pH 8.5 and pH 1o, 74 after being left for 0 or 6 hours. FIG. 4 is a calibration curve prepared using reducing reagents at various pH values. Patent Applicant (877) Yamasa Soy Sauce Co., Ltd. No. (1¥J Mouth -... rH>II △-・II″It. ◇-yHzoO-・-fHg 12 Figure ○-・ fH//, 2g △・・・ pHlo, deg ◇ −・・ rl-11F, Pu Otsu-3 Figure 〇 −・ ・ tyH&, ta, direction It'41j7 o
rA)・-11-1'if, t; , radial 11f&76
about △---PH(0,7'l, Rfn&7
0 (k) A --- pH/ρJ9.7jlftf
f/g71 chno*words produced by a fat person

Claims (1)

【特許請求の範囲】 1)(a)特定タンパク質に対する抗体を結合させた固
相と糖化特定タンパク質を含有する試料とを反応させる
工程 (b)固相と液相の分離時または分離後に固相から遊離
の糖成分を除去する工程 (c)固相に結合した糖化特定タンパク質の糖化部分を
還元試薬を用いて還元する工程 (d)標識化抗還元型糖化タンパク質抗体と上記(c)
工程で得られた固相とを反応させる工程 (e)固相と液相を分離後、いずれかの相の標識量を測
定し、その値から糖化特定タンパク質の含量または糖化
割合を算出する工程 からなる糖化特定タンパク質の測定法において、上記(
c)工程の還元反応を10以上のpHを示す還元試薬を
用いて行うことを特徴とする糖化特定タンパク質の測定
法。 2)還元試薬が水素化ホウ素塩を溶解させたものである
請求項1記載の糖化特定タンパク質の測定法。 3)還元試薬が10〜14の範囲内のpHを示すもので
ある請求項1記載の糖化特定タンパク質の測定法。 4)(c)工程の還元反応をpH10以上の還元試薬を
用い、かつpH10を超過する条件下で行う請求項1記
載の糖化特定タンパク質の測定法。 5)請求項1記載の糖化特定タンパク質の測定法の(c
)工程で使用する、水素化ホウ素塩を溶解させ、かつp
Hを10以上に調整した還元試薬。 6)pHが10〜14である請求項5記載の還元試薬。 7)下記試薬を構成試薬として含有してなる、請求項1
記載の測定法を実施するためのキット。 試薬1:特定タンパク質に特異的に反応する抗体を結合
させた固相試薬。 試薬2:pH10以上の還元試薬。 試薬3:標識化抗還元型糖化タンパク質抗体試薬。 8)還元試薬(試薬2)が、水素化ホウ素塩とpH10
以上の溶解液とからなり、測定時に調製するような用時
溶解型の形態である請求項7記載のキット。
[Claims] 1) (a) A step of reacting a solid phase bound with an antibody against a specific protein with a sample containing a glycated specific protein (b) A step of reacting the solid phase during or after separation of the solid phase and the liquid phase (c) a step of reducing the glycated moiety of the specific glycated protein bound to the solid phase using a reducing reagent (d) a labeled anti-reduced glycated protein antibody and the above (c)
Step (e) of reacting with the solid phase obtained in the step (e) After separating the solid phase and liquid phase, measuring the amount of label in either phase, and calculating the content of the glycated specific protein or the glycation rate from that value In the method for measuring glycated specific proteins consisting of the above (
c) A method for measuring a specific glycated protein, characterized in that the reduction reaction in the step is carried out using a reducing reagent having a pH of 10 or more. 2) The method for measuring a specific glycated protein according to claim 1, wherein the reducing reagent is one in which a boron hydride salt is dissolved. 3) The method for measuring a specific glycated protein according to claim 1, wherein the reducing reagent exhibits a pH within the range of 10 to 14. 4) The method for measuring a glycated specific protein according to claim 1, wherein the reduction reaction in step (c) is carried out using a reducing reagent with a pH of 10 or higher and under conditions in which the pH exceeds 10. 5) The method for measuring glycated specific protein according to claim 1 (c)
) to dissolve the borohydride salt and p
A reducing reagent with H adjusted to 10 or more. 6) The reducing reagent according to claim 5, which has a pH of 10 to 14. 7) Claim 1 comprising the following reagents as constituent reagents:
Kit for carrying out the described measurement method. Reagent 1: A solid phase reagent bound to an antibody that specifically reacts with a specific protein. Reagent 2: Reducing reagent with a pH of 10 or more. Reagent 3: Labeled anti-reduced glycated protein antibody reagent. 8) The reducing reagent (reagent 2) is a borohydride salt and pH 10.
The kit according to claim 7, which comprises the above-mentioned dissolution solution and is in the form of a ready-to-dissolve type prepared at the time of measurement.
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