JPH03503364A - Recombinant vaccinia virus for preventing diseases caused by flaviviruses - Google Patents

Recombinant vaccinia virus for preventing diseases caused by flaviviruses

Info

Publication number
JPH03503364A
JPH03503364A JP1509348A JP50934889A JPH03503364A JP H03503364 A JPH03503364 A JP H03503364A JP 1509348 A JP1509348 A JP 1509348A JP 50934889 A JP50934889 A JP 50934889A JP H03503364 A JPH03503364 A JP H03503364A
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
virus
recombinant
proteins
nsi
flavivirus
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
JP1509348A
Other languages
Japanese (ja)
Inventor
ライ,チン‐ユー
ブレイ,ミッチェル ピー.
ツァオ,バンティ
チャノック,ロバート エム.
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
US Department of Health and Human Services
Original Assignee
US Department of Health and Human Services
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by US Department of Health and Human Services filed Critical US Department of Health and Human Services
Publication of JPH03503364A publication Critical patent/JPH03503364A/en
Pending legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/79Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts
    • C12N15/85Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for animal cells
    • C12N15/86Viral vectors
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/005Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from viruses
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2710/00MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA dsDNA viruses
    • C12N2710/00011Details
    • C12N2710/24011Poxviridae
    • C12N2710/24111Orthopoxvirus, e.g. vaccinia virus, variola
    • C12N2710/24141Use of virus, viral particle or viral elements as a vector
    • C12N2710/24143Use of virus, viral particle or viral elements as a vector viral genome or elements thereof as genetic vector
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2770/00MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA ssRNA viruses positive-sense
    • C12N2770/00011Details
    • C12N2770/24011Flaviviridae
    • C12N2770/24211Hepacivirus, e.g. hepatitis C virus, hepatitis G virus
    • C12N2770/24222New viral proteins or individual genes, new structural or functional aspects of known viral proteins or genes
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02ATECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
    • Y02A50/00TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE in human health protection, e.g. against extreme weather
    • Y02A50/30Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change

Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるため要約のデータは記録されません。 (57) [Summary] This bulletin contains application data before electronic filing, so abstract data is not recorded.

Description

【発明の詳細な説明】 ワラビウイルスに起因する病気を予防するための組換え体ワクシニアウィルス。[Detailed description of the invention] Recombinant vaccinia virus to prevent diseases caused by bracken virus.

技術分野 本発明は、組換え体ワクシニアウィルスの構造に関する。より詳しくは、本発明 は、ワラビウイルス(flaviv−irus)例えばデングウィルス(den gue virus)、日本B型脳炎つ・イルス(Japanese B en ceptxaHtis virus)及びダニ媒介脳炎ウィルス(tick−b orne eneephalitis virus)に起因する病気を予防する ためのワクチンの製造に有用な組換え体ワクシニアウィルス(recombin ant vaccfnia−virus)の作成(construction) に関するO発明の背景 公衆衛生事業のある種の病気、例えばデング熱病(de−ngue disea se)及びある型の脳炎は、ワラビウイルス科に属するウィルスに起因すること が知られている。世界の熱帯地方で毎年1億にのぼる病気がデングウィルス単独 により起きていると推定されている。しかしながら、そのようなフラビウイルス 病(flavivirus disease)を防除するための効果的な及び免 疫予防的な手段は無い。Technical field The present invention relates to the structure of a recombinant vaccinia virus. More specifically, the present invention is a bracken virus (flaviv-irus) such as dengue virus (dengue virus). virus), Japanese encephalitis virus (Japanese B en) ceptxaHtis virus) and tick-borne encephalitis virus (tick-b orne eneephalitis virus) Recombinant vaccinia virus useful in the production of vaccines for ant vaccfnia-virus) construction BACKGROUND OF THE INVENTION Certain diseases in public health services, such as dengue fever, SE) and certain types of encephalitis are caused by viruses belonging to the Brackenviridae family. It has been known. Dengue virus alone causes 100 million illnesses each year in tropical regions of the world It is estimated that this is caused by. However, such flaviviruses effective and immune system for controlling flavivirus disease. There are no preventive measures.

発明の概要 それ故、本発明の目的は、下記組換え体ワクシニアウィルスで感染させた宿主中 に特定のワラビウイルス病に対する免疫応答(immune response )を誘発する組換え体ワクシニアウィルスを提供することである。Summary of the invention Therefore, the purpose of the present invention is to infect a host infected with the following recombinant vaccinia virus. Immune response to specific bracken virus diseases ) To provide a recombinant vaccinia virus that induces

本発明の他の目的及び長所は、以下の発明の詳細な説明から明らかになるであろ う。Other objects and advantages of the present invention will become apparent from the following detailed description of the invention. cormorant.

図面の簡単な説明 これらの及び他の目的、特徴及び本発明に付随する多くの長所は、ここに添付の 図面と関連づけて考えるならば、以下の詳細な説明を読んでもっと良く理解でき るであろう。Brief description of the drawing These and other objects, features, and many advantages associated with the present invention are summarized in the attached document. If you consider it in relation to the drawing, you can understand it better by reading the detailed explanation below. There will be.

図1は、デングウィルス−ワクシニアウィルス組換え体プラスミドの模式構造を 示す。中間クローニングベクター(intermediate clonfng  vector) pscllは、pHワクシニアウィルスプロモーターの転写 調1a (transcri−ption control)のもとで中断され たチミジンキナーゼ遺伝子配列(thymidine kinase gene  5equenses)  (TK”及びTKL)及びバクテリアβ−がタクト シダーゼ遺伝子(LacZ)を含む。ウィルスゲノムの5′−末端に位置するデ ングウィルスDNAの4.1キロベース(Kb)の断片(fragment)を 挿入するために、そのベクターDNAは、P7.5プロモーターのBamH1部 位下流(BamHIsite downstream)を開くべく、BamHI で部分的に消化されている。このデングcDNAの断片は、8種の構造蛋白質〔 カブジッド(capsid) (C) 、ブレーメンプラン(pre−men+ brane) (プレーM)及びエンベロープ(en−velope)糖蛋白質 (E)〕のためのコード領域(codingregion)に加えて最初の二つ の下流非構造蛋白質(down−strea@non−structual p roteins)を含有する・転写指針(transcription ori entation)という意味で、デングウィルスDNAインサー) (ins ert)を含有する組換え体プラスミドは、組換え体ワクシニアウィルスの作成 のために選択され使用される。Figure 1 shows the schematic structure of the dengue virus-vaccinia virus recombinant plasmid. show. intermediate cloning vector vector) pscll is a transcription vector of the pH vaccinia virus promoter. Interrupted under key 1a (transcription control) thymidine kinase gene sequence 5 sequences) (TK” and TKL) and bacteria β- Contains the sidase gene (LacZ). The data located at the 5′-end of the viral genome A 4.1 kilobase (Kb) fragment of viral DNA For insertion, the vector DNA was inserted into the BamH1 region of the P7.5 promoter. In order to open the downstream (BamHI site downstream), BamHI is partially digested. This dengue cDNA fragment contains eight structural proteins [ capsid (C), Bremen Plan (pre-men+ brain) (play M) and envelope (en-velope) glycoprotein (E)] plus the first two downstream non-structural protein (down-stream@non-structural p transcription guidelines (roteins) dengue virus DNA insert) A recombinant plasmid containing ert) can be used to create a recombinant vaccinia virus. selected and used for.

図2A及び2Bは組換え体ワクシニアウィルスにより合成されたデングウィルス の同定を示している。Figures 2A and 2B are dengue viruses synthesized by recombinant vaccinia virus. shows the identification of

(図2A:)組換え体ワクシニアウィルス感染細胞からの(”S)−メチオニン 標識分解物の免疫沈降(i++ueuno−precfpftation) ( 感染多重度10 PFU/細胞)は次の特異抗体の一つで行なわれた:エンベロ ーブ糖蛋白質(E)に特異的なモノクローナル抗体IHIO,膜糖蛋白質先駆体 (membrane glycoprotein precursorXプレー M)に特異的なモノクローナル抗体5C9;及び多価抗体(P)。標識沈降物は 、ドデシル硫酸ナトリウム−12%ポリアクリルアミドゲルで分析された。デン グウィルス感染CV−1細胞からの(”S)−メチオニン標識分解物の多価抗体 での免疫沈殿により得られた標識デングウィルス蛋白質マーカーもまた示されて いる。(Figure 2A:) (''S)-Methionine from recombinant vaccinia virus infected cells Immunoprecipitation of labeled decomposition products (i++ueno-precfpftation) ( Multiplicity of infection (10 PFU/cell) was performed with one of the following specific antibodies: Envero Monoclonal antibody IHIO specific for membrane glycoprotein (E), membrane glycoprotein precursor (membrane glycoprotein precursor M) monoclonal antibody specific for 5C9; and multivalent antibody (P). The labeled sediment is , analyzed on sodium dodecyl sulfate-12% polyacrylamide gels. den Multivalent antibody of (”S)-methionine-labeled decomposition product from virus-infected CV-1 cells Labeled dengue virus protein markers obtained by immunoprecipitation with There is.

(図28:)上記のようにjlI11!された標識免疫沈降物(labeled  jmaunoprecipitates)は、エンドグリコシダーゼH(en doglycosidaseHX!ンドH)での消化(digest−ion) により及びドデシル硫酸ナトリウム−ポリアクリルアミドゲル電気永動により分 析された。ゲルの左側の数は蛋白質サイズをキロダルトン(kDa)で示す。(Figure 28:) jlI11! as above! labeled immunoprecipitate jmaunoprecipitates) is endoglycosidase H (en doglycosidase HX! Digest-ion and by sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis. was analyzed. The numbers on the left side of the gel indicate protein size in kilodaltons (kDa).

発明の詳細な説明 本発明の上記の及び様々な他の目的並びに利点は、上記組換え体ワクシニアウィ ルスで感染された細胞中に主要な特定の防御的ワラビウイルス抗原を発現させる ための完全コード化配列を含む組換え体ワクシニアウィルスによって達成され、 上記抗体は受容宿主(5usceptiblehost)中での上記フラビウイ ルスによる感染に対する防御免疫を含む。Detailed description of the invention The above and various other objects and advantages of the present invention include the above-mentioned recombinant vaccinia virion. Expressing key specific protective brackenvirus antigens in cells infected with Rus achieved by a recombinant vaccinia virus containing the complete coding sequence for The above-mentioned antibody is used in the flavivirus in a recipient host (5usceptible host). Contains protective immunity against infection by Rus.

別に定義しない限り、本明細書で使用される全ての技術及び科学用語は、当該発 明分野に属する普通の専門化によって一般的に理解されるのと同じ意味を表わす 。ここに記載されているのと類似の又は同等ないかなる方法及び物質も本発明の 実施又は試験に使用できるけれども、好ましい方法及び物質が今、記載される。Unless otherwise defined, all technical and scientific terms used herein refer to the expresses the same meaning as commonly understood by ordinary specializations belonging to the field of light . Any methods and materials similar or equivalent to those described herein are also included in the invention. Preferred methods and materials that can be used in the practice or testing are now described.

以下に述べる全ての刊行物はここに参考文献として組み込まれる。特記しない限 り、ここで用いられる技術は当該技術分野の通常の専門家によ(知られている標 準方法である。All publications mentioned below are hereby incorporated by reference. Unless otherwise specified The techniques used herein are recognized by those of ordinary skill in the art (known standards). This is a quasi-method.

フラビウイルス科の他のメンバーと同様に、細胞外デングウィルスは、比較的簡 単な構造を有する。ピリオン(ウィルス粒子)はたった8種のウィルスコード化 蛋白質(virus−coded preteins) :指定カブジッドCC )蛋白質、膜(M)蛋白質及びエンベロープ(E)糖蛋白質を含む。伝染力をも 有する細胞内ウィルスはMを欠いているが、別の糖蛋白質、先駆M(ブレM)( Mはその分裂によって導かれる)を有している。C及びMとも内部蛋白質(in ternal protein)である。表面エンベロープ糖蛋白質は、特異抗 体による伝染性の中和にとって主要部位応答性(major 5ite res ponsible)である。エンベロープ糖蛋白質ままた赤血球凝集活性を示し 、細胞表面への吸着の原因となる。いくつかの非構造蛋白質もまたデングウィル ス感染細胞中に確認された。その中の一つは非構造蛋白質NSIで、それは糖蛋 白質で、溶解性の補体固定抗体(complement−fixing ant igen)として記載されている。黄熱病ウィルスの類似NSI糖蛋白質は、マ ウス及び霊長類における防御抗原(protective antigen)で あると判明しているので、NSIは免疫を仲介する役割をはだすと信じられる。Like other members of the Flaviviridae family, extracellular dengue viruses are relatively simple It has a simple structure. Pilions (viral particles) are encoded by only 8 types of viruses. Proteins (virus-coded preteins): Designated Kabzid CC ) proteins, including membrane (M) proteins and envelope (E) glycoproteins. Also contagious Intracellular viruses that possess M lack M but contain another glycoprotein, precursor M (Bure M) ( M has ) which is derived by its division. Both C and M are internal proteins (in internal protein). Surface envelope glycoproteins have specific anti- Major site responsiveness for neutralization of infectivity by the body possible). Envelope glycoproteins also exhibit hemagglutination activity , causing adsorption to the cell surface. Some nonstructural proteins are also denguevirus confirmed in infected cells. One of them is the nonstructural protein NSI, which is a glycoprotein. In white matter, soluble complement-fixing antibodies (complement-fixing antibodies) igen). The similar NSI glycoprotein of yellow fever virus is protective antigen in mice and primates Since it has been found that NSI has a role in mediating immunity, it is believed that NSI plays a role in mediating immunity.

更にデンつ2型ウィルスのNSIは防御抗体であると判明している。Furthermore, NSI of Dentsu type 2 virus has been found to be a protective antibody.

デンジ4型つィルスゲノムは、長さ10644ヌクレオチドの陽性撚回(pos itive−stranded) RN Aの分子からなる。デンつ4型ウィル スの全長cDNAコピーが調製され、その完全なヌク・レオチド配列が決定され た。そのような研究からデングウィルスゲノムの96%が、特定のプロテアーゼ (類)により分裂して個々のウィルス蛋白質を生じさせるポリ蛋白質のためのコ ードとなっていると推定される。8種の構造蛋白質C−M−Eはアミノ末端に位 置するが非構造蛋白質N5I−NS2a−NS2b−NS3−NS4a−NS4 b−NS5はカルポキシ末端に位置する。デングウィルス遺伝子発現(gene  exp−ression)にはポリ蛋白質の蛋白分解分裂(proteoly ttccleavage)が含まれるので、それらのクロー化DNAからのE及 びNSIのような防御抗体の発現は免疫的予防(immunoprophyla xis)に役立たないと直感的に推測することはできないということが強調され るべきである。The Denji type 4 virus genome has a positive twist (pos) with a length of 10,644 nucleotides. tive-stranded) RN A molecules. Dentsu type 4 will A full-length cDNA copy of the gene was prepared and its complete nucleotide sequence determined. Ta. Such studies show that 96% of the dengue virus genome contains specific proteases. A code for polyproteins that are split by (class) to produce individual viral proteins. It is estimated that the code is Eight structural proteins C-M-E are located at the amino terminus. However, the nonstructural protein N5I-NS2a-NS2b-NS3-NS4a-NS4 b-NS5 is located at the carpoxy terminus. Dengue virus gene expression exp-ression) includes proteolytic fission of polyprotein (proteolytic fission). ttccleavage), so the E and The development of protective antibodies such as NSI and NSI is important for immunoprophylaxis. It is emphasized that one cannot intuitively infer that it is not useful for Should.

そのような決定は現実の試験を通し7てのみ行なうことができる。今5例として デングウィルス遺伝子を用いることによるワクシニアフラビウイルス組換え体の 作成を説明する。Such decisions can only be made through real-world testing. As 5 examples now Development of recombinant vaccinia flavivirus by using dengue virus genes Explain the creation.

ワタシニアウイルスは、デングウィルス遺伝子を発現する生きた組換え体ウィル スを作成するためのベクターとして使用された。デンつ4型ウィルスcDNAの 5′末端からのBglll  DNA断片(4,041塩基対、ヌクレオチド8 8〜4123)は、3種の構造蛋白質並びに非構造蛋白質NSI及びN32aを 含む。この断片は全長デングウィルスDNAコピーから散り取られ、PSCII ワクシニア中間ベクター(intermediate vector)中に挿入 された。デングウィルスDNA配列は直ちにワクシニアP7.5早−後期プロモ ーター(early−1ate promotor)の下流(downstre am) B a m H1部位に挿入された(図1)。Cotton senior virus is a live recombinant virus that expresses dengue virus genes. was used as a vector to create a vector. Dentsu type 4 virus cDNA Bgllll DNA fragment from 5' end (4,041 base pairs, 8 nucleotides) 8-4123) contains three structural proteins and the nonstructural proteins NSI and N32a. include. This fragment was dissected from the full-length dengue virus DNA copy and Insert into vaccinia intermediate vector It was done. Dengue virus DNA sequence is now available in vaccinia P7.5 early-late promoter early-1ate promoter am) B a m It was inserted into the H1 site (Figure 1).

この作成中、デングウィルスコード配列はワクシニアウィルスP7.5早−後期 プロモーターの転写制御のもとで置換された。ベクターは、バクテリアの −ガ ラクトシダーゼ遺伝子を、目に見える選択可能なマーカーを供給するワクシニア ウィルスpH後期プロモーター(latepromotor)の制御のもとで含 んだ。キメラ遺伝子はワクシニアウィルスチミジンキナーゼ遺伝子配列の側面に 接し、それは、ワイルド型ワクシニアウィルス(WR株)で予め感染されたサル のCV−1細胞の下記のトランスフェクション(transfection)が 続いて起こるワクシニアウィルスゲノム中に、デングウィルス配列に相同性の組 換え(homologous reeombinatfan)を導いた・デング ウィルスDNAインサートを持つ組換え体ワクシニアウィルスが単離され、プラ ークは選択的媒質中のチミジンキナーゼマイナス(TK)細胞上で2度精製され た。他のデングeDNA断片(下記参照)は、まさに記載されている方法によっ てワクシニア組換え体ウィルス中に挿入された。同様に他のフラビウイルスワク シニアの作成は、デングウィルスについてここに記載されている操作に従うワラ ビウイルスcDNAを挿入することにより行なわれる。During this construction, the dengue virus coding sequence was modified to vaccinia virus P7.5 early-late Substituted under the transcriptional control of the promoter. The vector is a bacterial Vaccinia lactosidase gene provides a visible selectable marker Contained under the control of the viral pH late promoter I did. The chimeric gene flanks the vaccinia virus thymidine kinase gene sequence. It was a monkey pre-infected with wild type vaccinia virus (WR strain). The following transfection of CV-1 cells of Subsequently, a set of homologous dengue virus sequences is found in the vaccinia virus genome. Dengue, which led to the homologous reeombinatfan A recombinant vaccinia virus with a viral DNA insert has been isolated and The protein was purified twice on thymidine kinase minus (TK) cells in selective media. Ta. Other dengue eDNA fragments (see below) were generated by the method just described. and inserted into the vaccinia recombinant virus. Similarly, other flavivirus vaccines Create a senior walla by following the steps described here for Dengue Virus This is done by inserting the viviral cDNA.

組換え体ウィルスで感染中に合成されたデングウィルス特異蛋白質は、最初に間 接蛍光抗体法(indirect fnm−unof 1uorescence )により検知された。組換え体ウィルスで感染されたCV−1細胞は、多価デン ジ4型ウィルス高免つマウス抗血清(hyperimmune mouse a ntiserom)が使用された時に、細胞質中に蛍光染色性抗原を示すけれど も、染色濃さはデングウィルス感染細胞で観察されるよりも少ない。同様の蛍光 抗体は、E糖蛋白質に特異なモノクローナル抗体が使用された時に、組換え体ウ ィルスで感染されたCV−1細胞中に観察された。The dengue virus-specific protein synthesized during infection with the recombinant virus is initially Indirect fnm-unof 1uorescence ) was detected. CV-1 cells infected with the recombinant virus were infected with polyvalent viruses. Mouse antiserum highly immune to type 4 virus (hyperimmune mouse a) ntiserom), which shows fluorescent staining antigen in the cytoplasm. However, the staining intensity is less than that observed in dengue virus-infected cells. similar fluorescence When a monoclonal antibody specific to the E glycoprotein was used, the antibody was observed in CV-1 cells infected with the virus.

更に、これと他のデングウィルス蛋白質を同定するために、組換え体ウィルス感 染細胞が〔3し〕メチオニンで放射標識され、免疫沈降として細胞分解物が特異 抗体により製造された。ドデシル硫酸ナトリウム−ポリアクリルアミドゲル上の 標識沈降の分析(図2A)は、多価高免疫マウス高血清が、分子サイズ20.4 0〜46及び55〜60キロダルトン(kDa)とそれぞれ見積もられる三つの 主要バンドに沈降したことを示した。非特異性と思われる、より大きな分子サイ ズの小さなバンドもまた観察された。E糖蛋白質特異性モノクローナル抗体(I H20)が使用された時、E糖蛋白質の分子サイズに一致した50〜60 k、  D aバンドが沈降した。同様に、デンジ2型ウィルスN1つ1特異抗血清( Dr。J、 5chlesi−Berから入手)は40〜46kDaに沈降し、 それはNS1非構造糖蛋白質としてのサイズを想定させた。デンジ4型ウィルつ 高免疫抗血清により沈降した第三の主要バンドは約20kDaであり、それは細 胞外ブレM糖蛋白質のサイズに一致する。類似のバンドがブレM特異抗体(叶、 M、に、Gentry of WRA[Rから得たモノクローナル抗体2H2又 は5C9)で沈降した。Furthermore, to identify this and other dengue virus proteins, we developed recombinant virus proteins. The stained cells are radiolabeled with methionine, and the cell lysate is uniquely immunoprecipitated. produced by antibodies. on sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel Analysis of label precipitation (Fig. 2A) shows that polyvalent hyperimmune mouse serum has a molecular size of 20.4 Three molecules estimated to be 0-46 and 55-60 kilodaltons (kDa) respectively It was shown that the main band was precipitated. Larger molecular size that appears to be non-specific A small band of was also observed. E glycoprotein-specific monoclonal antibody (I H20) was used, 50-60k, which matched the molecular size of E glycoprotein. D: The a band precipitated. Similarly, Denji type 2 virus N11-specific antiserum ( Dr. J, obtained from 5chlesi-Ber) precipitated to 40-46 kDa, It assumed the size of NS1 as a nonstructural glycoprotein. Denji type 4 virus The third major band precipitated by the hyperimmune antiserum is approximately 20 kDa, which is The size corresponds to that of extravesicular BreM glycoprotein. A similar band is a BreM-specific antibody (Kano, M., monoclonal antibody 2H2 or obtained from Gentry of WRA[R] was precipitated with 5C9).

このように、組換え体ウィルス感染細胞においてクローン化D N Aにコード された3種の糖蛋白質は分裂し、デングウィルス感染中に観察されたそれと類似 の仕方でグリコジル化(glycosylatfon)により変性されることが 明らかとなった。これは、デングウィルス構造蛋白質並びにNSI非構造蛋白質 でもたらされるデングウィルス機能が存在しないときは、ポリ蛋白質の蛋白分解 分裂により加工(processing)されることを示唆している。しかしな がら、免疫沈降により推定されるように、組換え体ウィルス感染細胞中に産生さ れたデングブレM、E及びNSI糖蛋白質の量は、デンジ4型ウィつス感染細胞 中のそれよりも有意に少ない。In this way, the cloned DN A encodes in cells infected with the recombinant virus. The three glycoproteins identified were disrupted, similar to that observed during dengue virus infection. Can be modified by glycosylation in the manner of It became clear. This includes dengue virus structural proteins as well as NSI nonstructural proteins. In the absence of dengue virus function provided by polyprotein proteolysis, This suggests that processing is performed by fission. However However, as estimated by immunoprecipitation, the amount produced in recombinant virus-infected cells The amounts of Dengubule M, E and NSI glycoproteins detected in Dengubule type 4 infected cells were significantly less than that in the middle.

組換え体ウィルス感染細胞中に産生される糖蛋白質のグリコジル化パターンは、 そのエンドグリコシダーゼHへの応答により示されるように変化1.、それはマ ンノースに富む炭水化物コアに分裂する。ブレ〜1蛋白質バンドはグリコシダー ゼH処理に完全に感受性であり、17 kDaのバンドを生じ、分子サイズが3  kDa減少する。他方、E及び831両糖蛋白質の炭水化物の重要な部分は、 エンドクリコシダー・ゼI]消化に対して抵抗性であることが明らかとなった。The glycosylation pattern of glycoproteins produced in recombinant virus-infected cells is Changes 1. as shown by its response to endoglycosidase H. , that's Ma splits into a North-rich carbohydrate core. Bre~1 protein band is glycosider It is completely sensitive to ZeH treatment, yielding a band of 17 kDa and a molecular size of 3 kDa decreases. On the other hand, an important portion of the carbohydrates of both E and 831 glycoproteins are Endoclicosidase I] was found to be resistant to digestion.

デングウィルス糖蛋白質の各々、即ち、プレM1E及びNSIは、シグナルとし て役立つことのできる疎水性アミノ酸の広がりを先行させる。これは細胞シグナ ラーゼ(cellular stgnalase)がおそらく蛋白分解分裂に応 答性であることを示している。おそらく3種の糖蛋白質を生じる分裂メカニズム はまたカブジッド蛋白質を生じ、それはブレM糖蛋白質のアミノ末端に位置する 。Each of the dengue virus glycoproteins, pre-M1E and NSI, serve as a signal. It precedes the spread of hydrophobic amino acids, which can serve as a catalyst. This is a cell signal Cellular stgnalase probably responds to proteolytic cleavage. This shows that it is responsive. Division mechanism that probably produces three types of glycoproteins also gives rise to the cabzid protein, which is located at the amino terminus of the BreM glycoprotein. .

本明細書に上記したように、初めに3種の構造蛋白質〔カブジッド(C)、膜( M)及びエンベロープ(B)〕及び非槽構造蛋白質SI及びN32aについてコ ードしているcDNAの5′−末端から4.OKb配列を含む組換え体ワクシニ アが作成された。その後、3種の構造蛋白質のみを発現する別の組換え体ワクシ ニアウィルスが、非構造蛋白質のためのコード配列を削除することにより作成さ れた。蛋白質分析は、最初の組換え体ウィルスV (C−トB−NS1−NS2 m>で感染された細胞が、特異抗体を用いるラジオイムノ沈降により検知された 如く、真正の先駆jI(ブレM)、エンベロープ(E)及びNSI糖蛋白質を産 生ずることを示した。これらのデング蛋白質はデングウィルス感染中に産生され るこれらの蛋白質について見出されたのと同様のグリコジル化パターンを示した 。第二の組換え体ウィルス(C−FB)はデングウィルスブレM及びE糖蛋白質 を産生じた。予期されたように、NSIは第二組換え体により合成されなかった (表2)。As described hereinabove, initially three structural proteins [cabuzid (C), membrane (C), M) and envelope (B)] and non-cisternal structural proteins SI and N32a. 4. from the 5'-end of the coded cDNA. Recombinant vaccinia containing OKb sequence A was created. After that, we created another recombinant vaccine expressing only the three structural proteins. Nearviruses are created by deleting coding sequences for nonstructural proteins. It was. Protein analysis was performed on the first recombinant virus V (C-toB-NS1-NS2). Cells infected with m> were detected by radioimmunoprecipitation using specific antibodies. as well as producing authentic precursor jI (BreM), envelope (E) and NSI glycoproteins. We showed that this occurs. These dengue proteins are produced during dengue virus infection. showed a glycosylation pattern similar to that found for these proteins. . The second recombinant virus (C-FB) contains dengue virus BreM and E glycoproteins. was produced. As expected, NSI was not synthesized by the second recombinant. (Table 2).

デング脳炎のマウスモデルが、これらの組換え体により誘発される防御免疫を評 価するために用いられた。マウスには腹腔内径路で組換え体ワクシニアウィルス の10’プラ一ク形成単位(pfu)を接種した。マウスには2週間後に同量の 組換え体を再接種した。その第二接種の1週後に、脳内への100LDi*デン グウイルスにマウスを挑戦させた。次いで該動物を脳炎の症候及び死亡について 観察した。挑戦後に、HIVのエンベロープ糖蛋白質を発現する対照ワクシニア 組換え体ウィルスで免疫化したマウスの91%は死んだ(表1及び2)。それに 対し、3種の構造蛋白質とNSIを発現するワクシニア(C−M−B−NSI− NS2)組換え体で免疫化したマウスの96%は生き残った。また、3種の構造 蛋白質のみを発現するワクシニア(C−トB)組換え体ウィルスで免疫化した全 15匹の動物は完全に保護された。これらの結果は構造蛋白質のみが防御免疫を 誘発することが可能であることを示している。C及びMは内部蛋白質であるので 、EがV(C−トB)組換え体より授与される防御に関与する主要質のみを発現 するワクシニア組換え体での免疫により誘導された脳内挑戦への完全な抵抗によ り支持される。表1のデータはそれを証明している。N末端疎水性シグナル配列 或は呼吸胎盤ウィルス(respiratory 5yncytialviru s:RS V) G糖蛋白質(アミノ酸1〜7G)−E融合蛋白質又はインフル エンザ人ウィルス赤血球凝集N−末端シグナルペプチド−E融合蛋白質を含むE を発現する組換え体は、デングウィルスの挑戦に対して完全な防御をもたらした 。A mouse model of dengue encephalitis was used to evaluate the protective immunity induced by these recombinants. It was used to value Recombinant vaccinia virus was administered to mice by intraperitoneal route. of 10' plaque forming units (pfu) were inoculated. Mice received the same amount after 2 weeks. The recombinant was reinoculated. One week after the second inoculation, 100LDi* was administered into the brain. A mouse was challenged by a virus. The animals were then examined for symptoms of encephalitis and death. Observed. Control vaccinia expressing HIV envelope glycoprotein after challenge. 91% of mice immunized with recombinant virus died (Tables 1 and 2). in addition On the other hand, vaccinia (C-M-B-NSI- NS2) 96% of mice immunized with recombinant survived. In addition, three types of structures Whole cells immunized with vaccinia (C-toB) recombinant virus that expresses only the protein. Fifteen animals were fully rescued. These results suggest that only structural proteins exert protective immunity. This shows that it is possible to induce Since C and M are internal proteins, , E expresses only the key elements involved in the protection conferred by the V(C-toB) recombinant. Complete resistance to intracerebral challenge induced by immunization with vaccinia recombinant will be supported. The data in Table 1 proves this. N-terminal hydrophobic signal sequence Or respiratory placental virus s:RS V) G glycoprotein (amino acids 1-7G)-E fusion protein or influenza Enzyme virus hemagglutination E containing N-terminal signal peptide-E fusion protein Recombinants expressing .

これらの組換え体で免疫化した動物の血清応答(seroresponse)は 、標識抗原のラジオイムノ沈降により試験された。3種の構造蛋白を発現するV  (C−M−B−NSI−NS2)組換え体で免疫化された各動物はNSI抗体 を生じさせたが、Eに対する抗体の量は低いか検知できなかった。E抗体応答の 低レベルは、更にウィルス中和(vfrus neut−ralization )及びELISAのような他の血清学的試験で確認された。また、3種の構造蛋 白質のみを発現する量の又は検知できないE抗体を生じさせた。The seroresponse of animals immunized with these recombinants was , tested by radioimmunoprecipitation of labeled antigen. V expressing three types of structural proteins (C-M-B-NSI-NS2) Each animal immunized with recombinant NSI antibody , but the amount of antibodies to E was low or undetectable. E antibody response Low levels further reduce virus neutralization (vfrus neut-ralization). ) and other serological tests such as ELISA. In addition, three types of structural proteins Only white matter expressed or undetectable amounts of E antibodies were generated.

種々のワクシニア組換え体ウィルスで発現された非構造蛋白質NSIもその抗原 的性質について評価され、そして最も将来有望な精製物をマウスにおけるその防 御効果について評価した。全部で6種のNS1ワクシニア組換え体を研究した。The nonstructural protein NSI expressed by various vaccinia recombinant viruses also has its antigen. The most promising purified products have been evaluated for their protective properties in mice. We evaluated its effectiveness. A total of six NS1 vaccinia recombinants were studied.

これらの組換え体は:(i)NSIが構造蛋白質配列(C−M−8)を先行させ る(ff)NSIがその中間上流疎水性配列のみを先行させる又は(iii)  NS 1が構造遺伝子又はその中間上流疎水性配列を先行させないインサートを 含んでいた。これらのインサートの各々は、完全N52a配列又はN52a配列 のN末端15%で終止した。V (C−M−E−NSI−NS2a)及びV ( NSI−NS2a)組換え体は真正NS1を産生じ、一方、NSIのN末端疎水 性シグナルを欠いた又は完全下流N52a配列を欠いた他の組換え体は、異なる 分子サイズのNSI生成物を生じ及び/又はゲル分析で示されたようにグリコジ ル化されなかった。これらの研究から、NSIのN末端シグナル配列がNSIの 適当な加工及び蛋白分解分裂を必要としていると決定された。These recombinants: (i) NSI precedes the structural protein sequence (C-M-8); (ff) the NSI is preceded only by its intermediate upstream hydrophobic sequence, or (iii) NS1 contains an insert that is not preceded by a structural gene or its intermediate upstream hydrophobic sequences. It contained. Each of these inserts contains the complete N52a sequence or the N52a sequence. It terminated at 15% of the N-terminus. V (C-M-E-NSI-NS2a) and V ( NSI-NS2a) recombinant produces authentic NS1, while N-terminal hydrophobic Other recombinants lacking sex signals or lacking the complete downstream N52a sequence are different to produce NSI products of molecular size and/or glycodilation as shown by gel analysis. It was not standardized. These studies have shown that the N-terminal signal sequence of NSI It was determined that appropriate processing and proteolytic cleavage were required.

上記N31組換え体は、次いで上記のようなマウス保護研究におけるその予防潜 在力について評価された。結果は、構造蛋白質とNS1を発現するワクシニア( C−M−B−NSI−NS2a)組換え体を接種した28匹の1匹を除く全ての マウスはデング攻撃に生き残った(表1)。有意なことに、構造蛋白質の無いと きに真正NSIを発現する組換え体、即ちV (NSI−NS2)はデングウィ ルスでの致命的な攻撃に対する完全な抵抗を誘導した(表2)。異常な護だけを 誘導した。このように、(i)NSIに融合した上流N−末端R8V  G配列 (アミノ酸1〜70)又は(if)NS 1 +NS 2 a 15%を発現す るワクシニア組換え体でのワクチン接種(vaccination)は、部分的 な保護だけを誘導した。The N31 recombinant was then tested for its preventive potential in mouse protection studies as described above. It was evaluated for its power. The results showed that vaccinia expressing structural proteins and NS1 ( C-M-B-NSI-NS2a) All but one of the 28 animals inoculated with the recombinant Mice survived dengue challenge (Table 1). Significantly, the absence of structural proteins A recombinant expressing authentic NSI, namely V (NSI-NS2), is a Dengwi induced complete resistance to lethal attack in Rus (Table 2). Only abnormal protection guided. Thus, (i) the upstream N-terminal R8V G sequence fused to NSI (amino acids 1-70) or (if) expressing NS1 + NS2a 15% Vaccination with recombinant vaccinia is a partial only induced protection.

これらの試験は、デングエンベローブ(E)糖蛋白質及び非構造蛋白質NSIが 複数の防御抗原に分離され、その各々がデング熱病のマウスモデルにおいて脳炎 への完全な抵抗を導く。これらの結果は、今ではデンつ4型ウィルスに対して人 間を保護するためのワクチンとしてE及び/又はNS1糖蛋白質を発現するワク シニア組換え体の開発を許している。従って、ワクチンは免疫原的量の組換え体 ワクシニアウィルスからなり、それは上記組換え体ワクシニアウィルスで感染し た宿主中で特定フラビウイルスに対する防御免疫を誘導する。慣用の製薬的に許 容し得る担体又は非毒性緩衝液、生理食塩水等のような賦形薬が、必要により助 剤及び補強接種と共に使用され得る。もちろん、該ワクチンは指示どうりに一回 又は多回投与で投与され得る。These tests demonstrate that dengue envelope (E) glycoprotein and nonstructural protein NSI Separated into multiple protective antigens, each of which induces encephalitis in mouse models of dengue disease. Leading to complete resistance to. These results have now shown that humans are safe against Dentsu type 4 virus. Vaccines expressing E and/or NS1 glycoproteins as a vaccine to protect between Allows development of senior recombinants. Therefore, vaccines contain immunogenic amounts of recombinant It consists of vaccinia virus, which is infected with the recombinant vaccinia virus mentioned above. induces protective immunity against specific flaviviruses in the host. Conventional pharmaceutically acceptable Compatible carriers or excipients such as non-toxic buffers, saline, etc. may optionally assist. can be used with agents and reinforcing inoculations. Of course, the vaccine should be administered once as directed. or may be administered in multiple doses.

pHワクシニアウィルスプロモーターにより制御されたC、M及びEについての デンゾ配列を含むワクシニア−デつジ2型ウィルス組換え体は最近デューベ等( Deubeet al、)により1988年に報告され(J、Gen Viro l、69:1921〜1929) 、そしてデング熱に対してサルを保護するの に失敗していることをここで指摘しておくことは重要である。それに対し、本発 明の組換え体はウィルス感染に対して試験動物を保護する効能がある。for C, M and E controlled by the pH vaccinia virus promoter. A vaccinia-Detsuji type 2 virus recombinant containing the Denzo sequence was recently developed by Dube et al. Deubee et al.) in 1988 (J. Gen. Viro L, 69:1921-1929) and protect monkeys against dengue fever. It is important to point out here that this has failed. On the other hand, the original Ming's recombinant is effective in protecting test animals against viral infection.

全フラビウィルスのゲノム機構、模写方法(replfcat−ion str ategy)及び遺伝子発現は類似するので、他のフラビウィルスに対する予防 的特性を持つ組換え体ワクシニアウィルスは、本明細書に示したワクシニアーデ ンゾ作成に類似する方法で作成される。Genome organization and replication method of all flaviviruses (replfcat-ion str ategy) and gene expression are similar, prophylaxis against other flaviviruses The recombinant vaccinia virus with the characteristic characteristics is the vaccinia virus shown in this specification. It is created in a manner similar to the creation of a

組換え体ウィルスの寄託は1988年8月19日、米国、メリーランド2085 2 、  ロックヴイル、バークローン ドライブ12301のアメリカン タ イプ カルチャー コレクション(ATCC)に、受託番号VR2228のもと で行なわれた。The recombinant virus was deposited on August 19, 1988, at 2085 Maryland, USA. 2. American Tata, 12301 Burklawn Drive, Rockville. IP Culture Collection (ATCC) under accession number VR2228. It was held in

寄託は、寄託の日から30年間又は寄託サンプルのを求められてた最後の日から 5年間のどちらが長い方の期間、生存可能に保持され、また死滅した場合には取 り換えられ、そして法律の規定により何ら制限無しに公に利用できるようになる 。特許商標庁長官は要求により寄託物を入手できる。The deposit shall be made for a period of 30 years from the date of deposit or from the last date on which a deposited sample was requested. It will remain viable for the longer of five years and will be removed if it dies. and be made publicly available without any restrictions as provided by law. . The Commissioner of Patent and Trademark Offices may obtain deposits upon request.

本明細書中の実施例及び具体的記述が例示のみを目的とするものであること、及 びその容易な様々な改良若しくは変更が当該技術分野の専門家に示唆されており 、本発明の精神と権限内に及び添付の請求のm囲に含まれることは理解される。The examples and specific descriptions herein are for illustrative purposes only, and and various easy improvements or modifications thereto have been suggested by those skilled in the art. is understood to be within the spirit and power of the invention and within the scope of the appended claims.

表1 非構造NSI糖蛋白質と共に又は無しにデンゾ(E)糖蛋白質を発現するワクシ ニア組換え体で感染されたマウスは、デングウィルスによる致死攻撃に対し抵抗 が発達する デンゾ蛋白質(S)      発現   感染  升グ4型ウイを発現するワ クシ  □ マウス  ルス10”LD、。Table 1 Waxes expressing Denzo (E) glycoprotein with or without non-structural NSI glycoprotein Mice infected with Nia recombinants resist lethal challenge with dengue virus develops Denzo protein (S) expression infection infection Comb □ Mouse Luz 10”LD.

ニア組換え体    グIJ)シ  真正 の数  脳内攻撃ル化B  NSI   (IOPFU)  での生存数V(C−M−E−NSI−NS2.)     YBS  YES  28   27(96%)V(C−M−B−NSI−N S2.A)”  YBS  NO1515(100%)V(C−M−E)          YES   −1919(100%)V(Eり            YES   −1515(100%)99V(R8V G−8)”        YBS   −1515(100%)90V(FLtl HA−E)”       YBS   −1515(100%)V(HIV GP160)””      −−464(8,7%)”  N52Aの末端配列の85%削除。Near recombinant IJ) Number of authentic brain attacks B NSI (IOPFU) Survival number V (C-M-E-NSI-NS2.) YBS YES 28 27 (96%) V(C-M-B-NSI-N S2. A)” YBS NO1515 (100%) V (C-M-E)           -1919(100%)V(Eri)      YES -1515 (100%) 99V (R8V G-8)” YBS -1515 (100%) 90V (FLtl HA-E)” YBS -1515 (100%) V (HIV GP160)"" --464 (8.7%)" 85% deletion of the terminal sequence of N52A.

′  脳炎に軽快となった生存マウス。′  Surviving mice with remission of encephalitis.

”  RSVG(アミノ酸1−70) +EのN末端の融合蛋白質を発現。” Expression of RSVG (amino acids 1-70) +E N-terminal fusion protein.

OインフルエンザAウィルスN末端ジグtルベブチF十Eの融合蛋白質を発現。Expression of a fusion protein of O influenza A virus N-terminal jig T Rubebti F1E.

◆◆φH[Vのエンベロープ糖蛋白質を発現する対照ワクシニア組換え体。◆◆Control vaccinia recombinant expressing the envelope glycoprotein of φH[V.

表2 デング非構造蛋白質NSIのみを発現するワクシニア組換え体で感染されたマウ スは、デングウィルスによる致死攻撃に対し抵抗が発達する組換え体            (IOPFU)  での生存数V(NSI−NS2.)      YE!S    i5   27(100%)V(NSI−NS2.’)”     No     30   15(67%)V(R8V G−NSI)”     NO1515(54%)V(HIV GP160)”         4 6    4(8,7%)*N52Aの末端配列の85%削除。Table 2 Mice infected with a vaccinia recombinant expressing only the dengue nonstructural protein NSI The virus is a recombinant strain that develops resistance to lethal attack by the dengue virus. (IOPFU) Survival number V (NSI-NS2.) YE! S i5 27 (100%) V (NSI-NS2.’)” No 30 15 (67%) V (R8V G-NSI)” NO1515 (54%) V (HIV GP160)” 4 6   4(8.7%) *85% deletion of the terminal sequence of N52A.

”  R3V G(7ミノ酸1−70) +NS 1 (7)融合蛋白質1@L ″′″ HIVのエンベロープ糖蛋白質を発現する対照ワクシニア組換え体、 FIG、1 FIG、2A FIG、2B p”    ε    NSl エンドH−÷ −+ −÷ 補正書の翻訳文提出書(特許法第184の8)平成8年2月20日 ”l″Fj?:itm            囚1、特許出願の表示 PCT/US 89108589 2、発明の名称 フラビウイルスに起因する病気を予防するための組換え体ワクシニアウィルス 3、特許出願人 名称 アメリカ合衆国 4、代理人(〒101) 住所  東京都千代田区神田駿河台1の61990年7月13日 請求の範囲 !、ウィルスの蛋白質がワラビウイルスから得られる、V(C−M−E−NSI )、 V(C−M−Eり、 V(B)、 V(RSV G−8)、 V(FLU HA−8) 、及びV(NSI−NS2A)からなる群より選択された組換え体 ワクシニアウィルス。” R3V G (7 amino acids 1-70) + NS 1 (7) Fusion protein 1@L ″′″ Control vaccinia recombinant expressing HIV envelope glycoprotein, FIG.1 FIG, 2A FIG, 2B p”   ε  NSl End H-÷-+-÷ Submission of translation of written amendment (Patent Law No. 184-8) February 20, 1996 "l"Fj? :itm            Prison 1, Display of patent application PCT/US 89108589 2. Name of the invention Recombinant vaccinia virus for preventing diseases caused by flaviviruses 3. Patent applicant Name United States of America 4. Agent (〒101) Address: 6, Kanda Surugadai 1, Chiyoda-ku, Tokyo July 13, 1990 The scope of the claims ! , the viral protein is obtained from bracken virus, V(C-M-E-NSI ), V (C-M-E, V (B), V (RSV G-8), V (FLU A recombinant selected from the group consisting of HA-8) and V (NSI-NS2A) Vaccinia virus.

2、ウィルスの蛋白質がフラビウイルスから得られ、N52Aのカルボキシ末端 配列の85%が削除されている、実質的にC,M、E、NSI、及びN S 2  a蛋白質のためのコード配列からなる組換え体ワクシニアウィルス。2. The viral protein is obtained from flavivirus, and the carboxy terminus of N52A Substantially C, M, E, NSI, and N S 2 with 85% of the sequence deleted A recombinant vaccinia virus consisting of the coding sequence for the a protein.

3、上記フラビウイルスがデンつ4型ウィルスである請求項1記載のウィルス。3. The virus according to claim 1, wherein the flavivirus is Dentsu type 4 virus.

4、上記フラビウイルスがデンつ4型ウィルスである請求項2記載のウィルス。4. The virus according to claim 2, wherein the flavivirus is Dentsu type 4 virus.

5、上記フラビウイルスが日本B型脳炎ウィルス又はダニ媒介脳炎ウィルスであ る請求項1記載のウィルス。5. The flavivirus mentioned above is Japanese encephalitis B virus or tick-borne encephalitis virus. The virus according to claim 1.

6、上記フラビウイルスが日本B型脳炎ウィルス又はダニ媒介脳炎ウィルスであ る請求項2記載のウィルス。6. The flavivirus mentioned above is Japanese encephalitis B virus or tick-borne encephalitis virus. The virus according to claim 2.

7、免疫原的量の請求項1記載のウィルスを製薬学的に許容される担体中に含ん でなる薬剤組成物。7. containing an immunogenic amount of the virus according to claim 1 in a pharmaceutically acceptable carrier; A pharmaceutical composition comprising:

8、免疫原的量の請求項2記載のウィルスを製薬学的に許容される担体中に含ん でなる薬剤組成物。8. containing an immunogenic amount of the virus according to claim 2 in a pharmaceutically acceptable carrier; A pharmaceutical composition comprising:

9、フラビウイルス受容宿主に、免疫原的量の請求項1記載のウィルスを、少な (とも単投与で接種することからなる、ワラビウイルス病に対する防御免疫を誘 発させる方法。9. Injecting a small amount of an immunogenic amount of the virus according to claim 1 into a flavivirus recipient host. (Includes single-dose vaccination to induce protective immunity against bracken virus disease.) How to make it emit.

10、フラビウイルス受容宿主に、免疫原的量の請求項2記載のウィルスを、少 なくとも単投与で接種することからなる、フラビウイルス病に対する防御免疫を 誘発させる方法。10. Injecting an immunogenic amount of the virus according to claim 2 into a flavivirus recipient host in a small amount. To provide protective immunity against flavivirus diseases, consisting of at least a single dose of vaccination. How to induce it.

国際調査報告 or〒7T+c+JQ/Q1!IB9international search report or〒7T+c+JQ/Q1! IB9

Claims (6)

【特許請求の範囲】[Claims] 1.フラビウイルス抗原蛋白質の発現のための完全コード配列を含む組換え体ワ クシニアウイルス。1. A recombinant virus containing the complete coding sequence for the expression of flavivirus antigenic proteins. Cushina virus. 2.上記フラビウイルスがデング4型ウイルスである請求項1記載のウイルス。2. The virus according to claim 1, wherein the flavivirus is dengue type 4 virus. 3.上記フラビウイルスが日本B型脳炎ウイルス又はダニ媒介脳炎ウイルスであ る請求項1記載のウイルス。3. The above flavivirus is Japanese encephalitis B virus or tick-borne encephalitis virus. The virus according to claim 1. 4.上記抗原蛋白質がエンベロープ糖蛋白質、カプシッド蛋白質、プレマトリッ クス蛋白質、NS1、NS2非構造蛋白質及びそれらの組合せの一部又は全体か らなる群より選択される請求項1記載のウイルス。4. The above antigenic proteins are envelope glycoproteins, capsid proteins, and prematric proteins. NS1, NS2 nonstructural proteins, or a part or whole of a combination thereof The virus according to claim 1, which is selected from the group consisting of: 5.製薬学的に許容し得る担体中に免疫原的量の請求項1記載のウイルスを含む 製薬組成物。5. comprising an immunogenic amount of the virus of claim 1 in a pharmaceutically acceptable carrier. Pharmaceutical composition. 6.単独又は複合投与中に、フラビウイルスに感染し易い宿主と免疫的量の請求 項1記載のウイルスを接種することからなるフラビウイルス病に対する防御免疫 の誘導方法。6. Claims of susceptible hosts and immunological doses of flaviviruses during single or combined administration Protective immunity against flavivirus disease comprising inoculating with the virus described in item 1 induction method.
JP1509348A 1988-08-20 1989-08-21 Recombinant vaccinia virus for preventing diseases caused by flaviviruses Pending JPH03503364A (en)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US23920588A 1988-08-20 1988-08-20
US239,205 1988-08-20

Publications (1)

Publication Number Publication Date
JPH03503364A true JPH03503364A (en) 1991-08-01

Family

ID=22901085

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP1509348A Pending JPH03503364A (en) 1988-08-20 1989-08-21 Recombinant vaccinia virus for preventing diseases caused by flaviviruses

Country Status (5)

Country Link
EP (1) EP0431064A4 (en)
JP (1) JPH03503364A (en)
AU (1) AU624863B2 (en)
IL (1) IL91304A0 (en)
WO (1) WO1990001946A1 (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2020184730A1 (en) * 2019-03-14 2020-09-17 公益財団法人東京都医学総合研究所 Dengue virus vaccine

Families Citing this family (19)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US7767449B1 (en) 1981-12-24 2010-08-03 Health Research Incorporated Methods using modified vaccinia virus
US6184024B1 (en) 1988-07-14 2001-02-06 The United States Of America As Represented By The Department Of Health And Human Services Chimeric and/or growth-restricted flaviviruses
US6676936B1 (en) 1988-07-14 2004-01-13 The United States Of America As Represented By The Department Of Health And Human Services. Chimeric and/or growth-restricted flaviviruses
HUT54306A (en) * 1989-06-06 1991-02-28 Immuno Ag Process for producing proteins, vaccines and nucleic acids
MY109299A (en) * 1990-08-15 1996-12-31 Virogenetics Corp Recombinant pox virus encoding flaviviral structural proteins
ES2140418T3 (en) * 1991-09-19 2000-03-01 Us Health CHEMICAL FLAVIVIRUS AND / OR RESTRICTED GROWTH FLAVIVIRUS.
US6117640A (en) * 1995-05-02 2000-09-12 The United States Of America As Represented By The Secretary Of The Army Recombinant vaccine made in E. coli against dengue virus
WO1996037221A1 (en) * 1995-05-24 1996-11-28 Hawaii Biotechnology Group, Inc. Subunit vaccine against flavivirus infection
MY150893A (en) 1996-09-24 2014-03-14 Bavarian Nordic As Recombinant mva virus expressing dengue virus antigens, and the use thereof in vaccines
AU740961B2 (en) * 1997-02-28 2001-11-15 Sanofi Pasteur Biologics Co. Chimeric flavivirus vaccines
US7417136B1 (en) 1998-06-04 2008-08-26 The United States Of America As Represented By The Secretary, Department Of Health And Human Services, Centers For Disease Control And Prevention Nucleic acid vaccines for prevention of flavivirus infection
US7227011B2 (en) 1998-06-04 2007-06-05 United States Of America As Represented By The Secretary Of The Department Of Health And Human Services, Centers For Disease Control And Prevention Nucleic acid vaccines for prevention of flavivirus infection
EP3000477A1 (en) 2000-02-16 2016-03-30 The Government of The United States of America, as represented by the Secretary, Department of Health and Human Services, Avirulent, immunogenic flavivirus chimeras
EP2345665A3 (en) * 2001-12-04 2012-02-15 Bavarian Nordic A/S Flavivirus NS1 subunit vaccine
CA2432738A1 (en) 2003-02-26 2004-08-26 Philippe Despres New dengue and west nile viruses proteins and genes coding the foregoing, and their use in vaccinal, therapeutic and diagnostic applications
PE20211814A1 (en) 2013-03-15 2021-09-14 Takeda Vaccines Inc COMPOSITIONS AND METHODS OF CHEMERICAL CONSTRUCTION OF DENGUE VIRUS IN VACCINES
US11464815B2 (en) 2018-09-05 2022-10-11 Takeda Vaccines, Inc. Dengue vaccine unit dose and administration thereof
US11590221B2 (en) 2018-09-05 2023-02-28 Takeda Vaccines, Inc. Dengue vaccine unit dose and administration thereof
US11426461B2 (en) 2018-09-05 2022-08-30 Takeda Vaccines, Inc. Methods for preventing dengue and hepatitis A

Family Cites Families (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH084508B2 (en) * 1987-09-16 1996-01-24 国立予防衛生研究所長 Recombinant vaccinia virus

Non-Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
BIOORGANICHESKAYA KHIMIYA=1986 *
JOURNAL OF VIROLOGY=1987 *
VIROLOGY=1987 *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2020184730A1 (en) * 2019-03-14 2020-09-17 公益財団法人東京都医学総合研究所 Dengue virus vaccine

Also Published As

Publication number Publication date
EP0431064A4 (en) 1991-11-13
IL91304A0 (en) 1990-03-19
EP0431064A1 (en) 1991-06-12
AU4206489A (en) 1990-03-23
WO1990001946A1 (en) 1990-03-08
AU624863B2 (en) 1992-06-25

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JPH03503364A (en) Recombinant vaccinia virus for preventing diseases caused by flaviviruses
JP4500049B2 (en) Flavivirus NS1 subunit vaccine
JP4504464B2 (en) Chimeric flavivirus vaccine
Simmons et al. Evaluation of the protective efficacy of a recombinant dengue envelope B domain fusion protein against dengue 2 virus infection in mice.
Bray et al. Genetic determinants responsible for acquisition of dengue type 2 virus mouse neurovirulence
Falgout et al. Immunization of mice with recombinant vaccinia virus expressing authentic dengue virus nonstructural protein NS1 protects against lethal dengue virus encephalitis
JP3531934B2 (en) Chimeric and / or growth-restricted flavivirus
Srivastava et al. Mice immunized with a dengue type 2 virus E and NS1 fusion protein made in Escherichia coli are protected against lethal dengue virus infection
Simmons et al. Characterization of antibody responses to combinations of a dengue virus type 2 DNA vaccine and two dengue virus type 2 protein vaccines in rhesus macaques
Costa et al. Protection against dengue type 2 virus induced in mice immunized with a DNA plasmid encoding the non-structural 1 (NS1) gene fused to the tissue plasminogen activator signal sequence
Zhao et al. Expression of dengue virus structural proteins and nonstructural protein NS1 by a recombinant vaccinia virus
US10124053B2 (en) Vaccines and methods for creating a vaccine for inducing immunity to all dengue virus serotypes
JP2005511042A5 (en)
Putnak et al. Dengue-1 virus envelope glycoprotein gene expressed in recombinant baculovirus elicits virus-neutralizing antibody in mice and protects them from virus challenge
KR20010022452A (en) Recombinant dimeric envelope vaccine against flaviviral infection
Delenda et al. Analysis of C-terminally truncated dengue 2 and dengue 3 virus envelope glycoproteins: processing in insect cells and immunogenic properties in mice
Pekosz et al. Protection from La Crosse virus encephalitis with recombinant glycoproteins: role of neutralizing anti-G1 antibodies
US8440202B2 (en) Induction of an immune response against dengue virus using the prime-boost approach
US8241638B2 (en) Induction of an immune response against dengue virus using the prime-boost approach
Hahn et al. Expression of the structural proteins of dengue 2 virus and yellow fever virus by recombinant vaccinia viruses
WO2021207848A1 (en) Mers-cov vaccine
Venugopal et al. Immunity to St. Louis encephalitis virus by sequential immunization with recombinant vaccinia and baculovirus derived PrM/E proteins
US20140271714A1 (en) Induction of an immune response against dengue virus using the prime-boost approach
US5895651A (en) Recombinant dengue virus envelope protein/maltose-binding protein antigens and subunit vaccine compositions containing said antigens
JP7221995B2 (en) Mature virus-like particles of flaviviruses