JPH0328195B2 - - Google Patents

Info

Publication number
JPH0328195B2
JPH0328195B2 JP16148482A JP16148482A JPH0328195B2 JP H0328195 B2 JPH0328195 B2 JP H0328195B2 JP 16148482 A JP16148482 A JP 16148482A JP 16148482 A JP16148482 A JP 16148482A JP H0328195 B2 JPH0328195 B2 JP H0328195B2
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
atp
acid
added
culture
adenine
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired
Application number
JP16148482A
Other languages
Japanese (ja)
Other versions
JPS5951799A (en
Inventor
Tatsuro Fujio
Akira Furuya
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
KH Neochem Co Ltd
Original Assignee
Kyowa Hakko Kogyo Co Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Kyowa Hakko Kogyo Co Ltd filed Critical Kyowa Hakko Kogyo Co Ltd
Priority to JP16148482A priority Critical patent/JPS5951799A/en
Publication of JPS5951799A publication Critical patent/JPS5951799A/en
Publication of JPH0328195B2 publication Critical patent/JPH0328195B2/ja
Granted legal-status Critical Current

Links

Landscapes

  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Description

【発明の詳細な説明】[Detailed description of the invention]

本発明はアデノシン−5′−三燐酸(以下
「ATP」と称す。)の製造方法に関する。ATPは
生体内において直接エネルギー代謝に関与するの
みでなく、蛋白質、炭水化物、脂質の代謝に補酵
素を介して重要な作用を及ぼし、医薬品として、
また、生化学研究試薬として重要である。 ATPの製法としては、酵母を用いて5′−アデ
ニル酸を生化学的に燐酸化する方法(特公昭40−
19119号公報)、界面活性剤で処理した酵母菌体を
用いてアデノシンを燐酸化する方法(特公昭46−
20759号公報)、予め凍結融解処理を施した酵母菌
体を用いて5′−アデニル酸を燐酸化する方法(特
公昭55−45197号公報)、炭化水素資化能を有する
酵母の菌体またはその処理物を用いてアデノシン
または5′−アデニル酸を燐酸化する方法(特公昭
50−9873号公報)、アデノシン、5′−アデニル酸
またはアデノシン−5′−二燐酸を燐酸化する能力
を有し、かつその菌体の細胞膜に実質的に損傷を
与える処理を施していない酵母菌体を用いる方法
(特開昭55−34036号公報)などが知られている
が、これらの方法はいずれも原料に用いるアデノ
シン、5′−アデニル酸、アデノシン−5′−二燐酸
が高価であるという難点がある。 工業的により安価なアデニンを原料とする方法
としては、プレビバクテリウム・アンモニアゲネ
スに属する微生物を極めて低濃度のマンガンイオ
ンを含有する培地で培養する方法(特公昭44−
26912号公報)、マンガンイオンを過剰に含有する
培地に脂肪族アミン類、芳香族アミン類、縮合燐
酸、ニトロカルボン酸、サリチルアルデヒドおよ
びその誘導体、βジケトン等の金属錯体形成剤を
添加することによつて、培地中と利用性マンガン
イオンを減少させてヌクレオチド生産能を有する
細菌を培養する方法(特公昭47−13114号公報)、
界面活性剤存在培地にATP生産能を有する微生
物を培養する方法(特公昭49−28996号公報)、界
面活性剤の存在下で、アデニンからATPを生成
する能力を有する酵母の培養液、もしくは菌体ま
たはその処理物を用いる方法(特開昭53−136591
号)などが知られている。しかし、これらの方法
はいずれもATPの生成量が十分ではなく工業的
により安価なATP製造法の開発が期待されてい
る。 本発明者らは、従来のATPの製法を改良すべ
く検討した結果、アデニン、燐酸供与体およびエ
ネルギー供与体とからATPを生成する能力を有
する細菌の作用によりATPを生成せしめるにあ
たり、界面活性剤および/または有機溶媒の存在
下水性媒体中にフイチン酸を添加することによ
り、ATPの生成量が著しく高くなることを見出
した。 さらに上記方法においてマグネシウムイオンの
存在下で行う場合には、ATPの生成量がさらに
向上することも見い出された。 以下、本発明について詳細に説明する。 本発明でいうエネルギー供与体とは、微生物に
より代謝される過程で、ATP前駆物質(AMP、
ADP)からATPを生合成するために必要なエネ
ルギーを供給する化合物をさす。 本発明において用いられる微生物としては、ア
デニン、燐酸供与体およびエネルギー供与体から
ATPを生成する能力を有する微生物であればい
ずれでも用いうる。さらにまた、これらの微生物
を変異処理して得られる変異株も上記ATP生成
能力を有する限り用いられる。 好ましい菌株はコリネバクテリウム属又はブレ
ビバクテリウム属に属し、具体的な菌株の例はブ
レビバクテリウム・アンモニアゲネス
ATCC21170およびコリネバクテリウム・グルタ
ミクムATCC21171である。 該微生物の培養に用いられる培地としては、炭
素源、窒素源、有機、無機の栄養源を程よく含有
する培地であれば、天然培地、人工培地のいずれ
でもよい。 培養に用いる炭素源としては、グルコース、フ
ラクトース、シユークロース、糖蜜、澱粉加水分
解物等の炭水化物、ノルマルパラフイン、ケロセ
ン等の炭化水素、メタノール、エタノール、グリ
セリン、ソルビトール等のアルコール類、ピルビ
ン酸、乳酸、酢酸等の有機酸、グリシン、アラニ
ン、グルタミン酸、アスパラギン酸等のアミノ酸
等が用いられ、これらの使用濃度としては5〜30
%が好ましい。ここでいう炭素源とは、微生物が
生育に必要とするものであり、ATPを生成させ
る反応に必要なエネルギー供与体とは区別され
る。ただし、培地中に過剰な炭素源が存在し、該
炭素源がATP生成反応に持ち込まれる場合は、
該炭素源がエネルギー供与体として用いられる。 培養に用いる窒素源としては、アンモニア、塩
化アンモニウム、硝酸アンモニウム、燐酸アンモ
ニウム、硫酸アンモニウム、および尿素等の各種
無機および有機アンモニウム塩、ペプトン、肉エ
キス、蛋白加水分解物、フイツシユミール等の窒
素含有物が用いられ、通常0.1〜10%の濃度で用
いられる。 培地に用いる無機物としては、燐酸一カリ、燐
酸二カリ、燐酸一ナトリウム、燐酸二ナトリウム
および燐酸アンモニウム等の燐酸塩、マグネシウ
ム、マンガン、カルシウム、鉄、亜鉛等の硫酸
塩、塩酸塩、および硝酸塩等が適当量用いられ
る。また、微生物が栄養要求株の場合は生育に要
求される化合物を培養液中に当然添加しなくては
ならない。 微生物の培養条件としては、20〜40℃の温度
で、振盪、通気撹拌等の好気的条件下で、アンモ
ニア、アンモニア水、尿素、苛性ソーダ、苛性カ
リ等を用いてPHを中性付近に調節しながら、1〜
8日間培養を行なう。 かくして得られる微生物の培養物は、そのまま
でも反応に使用できるし、さらに、該培養物を
種々処理して得られる処理物を用いて、これとア
デニンおよび燐酸供与体とを接触反応させてもよ
い。処理物としては、培養物の濃縮物もしくは乾
燥物、培養物を遠心分離機で処理して得られる
液もしくは菌体、菌体の乾燥物、アセトン処理
物、界面活性剤処理物、音波処理物、溶菌酵素処
理物、固定化菌体あるいは菌体からの抽出酵素標
品等があげられる。 接触反応は水性媒体中であればいずれでも行な
うことができ、もつとも経済的には微生物の培養
中にアデニン燐酸供与体、エネルギー供与体、界
面活性剤又は有機溶媒、フイチン酸、マグネシウ
ムイオンを培地中に存在せしめて培養液中に目的
物を蓄積せしめるか、培養終了後に接触反応を行
なわせる方法があげられる。前者の場合、植菌時
もしくは培養中のいずれかの時期に培地にアデニ
ン等の必要な成分を存在せしめればよいが、界面
活性剤および/または有機溶剤はその後に添加し
てよい。 また、後者の場合、培養後の培養物、菌体もし
くはそれらの処理物にアデニン、燐酸供与体、エ
ネルギー供与体、および界面活性剤および/また
は有機溶剤を加え、さらにその他の物質を必要な
場合加え、好気的条件下において20〜50℃で3〜
48時間反応させることにより目的物を蓄積させる
ことができる。この際PHを6〜8に調節すること
が望ましい。いずれの場合にも、アデニンの濃度
は1〜100g/、好ましくは1〜40g/がよ
い。 エネルギー供与体としてはグルコース、フラク
トース、シユークロース、糖蜜、澱粉加水分解物
などの炭水化物、ピルビン酸、乳酸、酢酸、α−
ケトグルタル酸などの有機酸、グリシンアラニ
ン、アスパラギン酸、グルタミン酸などのアミノ
酸が用いられる。これらは凡そ5〜150g/の
濃度で用いられる。 燐酸供与体としては前述の菌の培用培地に用い
られる燐酸塩がいずれも用いうる。これらは1〜
100g/の濃度で用いられる。 用いられる界面活性剤としては、カチオン性界
面活性剤、例えばポリオキシエチレンステアリル
アミン(例えばナイミーンS−215、日本油脂K.
K.製)、セチルトリメチアンモニウムブロマイ
ド、セチルピリジウムクロライド等、アニオン性
界面活性剤、例えばナトリウムラウリル硫酸、ナ
トリウムオレイルアミド硫酸、非イオン性界面活
性剤、例えばポリオキシエチレンソルビタンモノ
ステアレート(例えばノニオンST221、日本油脂
K.K.製)等、両性界面活性剤、例えばラウリル
ベタイン(例えばアノンBF、日本油脂K.K.製)
等があげられ、これらは通常0.1〜50g/、好
ましくは1〜20g/の濃度が用いられる。 有機溶剤としては、トルエン、キシレン、脂肪
族アルコール、ベンゼン、酢酸エチルなどが用い
られ、その濃度は0.1〜50ml/、好ましくは1
〜20ml/がよい。 用いるフイチン酸としては遊離の酸でも、ある
いはそのナトリウム塩、カリウム塩、マグネシウ
ム塩等の塩のかたちでも良いし、またフイチン酸
を含んでいる天然物(例えばコーン・スチープ・
リカー等)でもよい。水性媒体にフイチン酸を添
加する時期は、微生物の培養中にアデニンを添加
する方法の場合には植菌時から界面活性剤およ
び/または有機溶剤添加後12時間目までのいずれ
の時期でもよく、また培養終了後に接触反応を行
なわせる方法の場合は界面活性剤および/または
有機溶剤添加時から12時間目までのいずれの時期
でもよい。またフイチン酸を添加する量は、1〜
50g/、好ましくは3〜20g/が良い。 マグネシウムイオンは、硫酸塩、硝酸塩、塩酸
塩等の無機酸の塩でも、クエン酸マグネシウム等
の有機酸の塩でも、その他マグネシウムイオン含
量の高い天然物(フイチン等)でも、いずれも使
用できる。マグネシウムイオンを水性媒体に添加
する時期はフイチン酸添加と同時かまたはそれ以
降ならいずれでも良く、時期をずらせて数度にわ
けて添加することもできる。添加量は通常0.01〜
0.20モルである。 水性媒体に蓄積したATPを採取する方法は実
施例において例示する如く、活性炭やイオン交換
樹脂等を用いることによつて行うことができる。 以下に本発明の実施例を示す。 実施例 1 グルコース15%、尿素0.5%(別殺菌)
KH2PO41.0%、K2HPO41.0%、MgSO4
7H2O1.0%、CaCl2・2H2O0.01%、ビオチン30μ
g/、酵母エキス0.5%、肉エキス0.5%、(苛
性ソーダでPH7.2に調整)の組成から成る発酵培
地を250ml溶三角フラスコに20mlずつ入れ加熱殺
菌し、これにビレビバクテリウム・アンモニアゲ
ネスATCC21170を接種し、32℃で48時間振盪培
養した。培養後遠心分離により菌体を分取した。
得られた菌体(湿潤菌体重量30%)、グルコース
50g/、アデニン7g/、NaHPO415g/
、フイチン酸3.5g/、キシレン10ml/、
ナイミーンS−2156g/を含む溶液20mlを250
ml容三角フラスコに加え、アンモニア水でPHを
7.4付近に調整しつつ、かつ、反応液上清中のリ
ン酸濃度が無水燐酸二ソーダとして10g/前後
を保つように適宜途中添加を行ないつつ、32℃で
24時間振盪条件下で反応を行なつた。フイチン酸
およびマグネシウムイオンをそれぞれ単独で添加
した場合、両者同時に添加した場合、無添加の場
合のATP生成量を比較した結果は第1表に示す
通りであつた。
The present invention relates to a method for producing adenosine-5'-triphosphate (hereinafter referred to as "ATP"). ATP is not only directly involved in energy metabolism in the body, but also has an important effect on the metabolism of proteins, carbohydrates, and lipids through coenzymes, and is used as a pharmaceutical.
It is also important as a biochemical research reagent. The method for producing ATP is to biochemically phosphorylate 5'-adenylic acid using yeast (Japanese Patent Publication No.
19119), a method for phosphorylating adenosine using yeast cells treated with a surfactant (Japanese Patent Publication No. 1973-
20759), a method of phosphorylating 5'-adenylic acid using yeast cells that have been subjected to a freeze-thaw treatment (Japanese Patent Publication No. 1983-45197), yeast cells capable of assimilating hydrocarbons, or A method of phosphorylating adenosine or 5'-adenylic acid using the treated product (Tokuko Sho
50-9873), yeast that has the ability to phosphorylate adenosine, 5'-adenylic acid, or adenosine-5'-diphosphate, and that has not been subjected to any treatment that would substantially damage the cell membrane of its bacterial cells. Methods using bacterial cells (Japanese Unexamined Patent Publication No. 55-34036) are known, but all of these methods require expensive raw materials such as adenosine, 5'-adenylic acid, and adenosine-5'-diphosphoric acid. There is a drawback. An industrially cheaper method using adenine as a raw material is a method of culturing microorganisms belonging to Previbacterium ammoniagenes in a medium containing an extremely low concentration of manganese ions (Japanese Patent Publication No. 1973-
26912), by adding metal complex-forming agents such as aliphatic amines, aromatic amines, condensed phosphoric acid, nitrocarboxylic acid, salicylaldehyde and its derivatives, and β-diketones to a medium containing excessive manganese ions. Therefore, a method for cultivating bacteria capable of producing nucleotides by reducing available manganese ions in the medium (Japanese Patent Publication No. 13114/1983),
A method for culturing microorganisms capable of producing ATP in a medium containing a surfactant (Japanese Patent Publication No. 49-28996), a culture solution of yeast or bacteria capable of producing ATP from adenine in the presence of a surfactant Method using body or its processed material
No.) etc. are known. However, none of these methods produce a sufficient amount of ATP, and it is hoped that an industrially cheaper ATP production method will be developed. As a result of studies aimed at improving the conventional ATP production method, the present inventors found that a surfactant was used to generate ATP through the action of bacteria that have the ability to generate ATP from adenine, a phosphate donor, and an energy donor. It has been found that the amount of ATP produced is significantly increased by adding phytic acid to an aqueous medium in the presence of an organic solvent. Furthermore, it has been found that when the above method is carried out in the presence of magnesium ions, the amount of ATP produced is further improved. The present invention will be explained in detail below. In the present invention, energy donors refer to ATP precursors (AMP,
A compound that provides the energy necessary to biosynthesize ATP from ADP). The microorganisms used in the present invention include adenine, phosphate donors, and energy donors.
Any microorganism that has the ability to produce ATP can be used. Furthermore, mutant strains obtained by mutating these microorganisms can also be used as long as they have the above-mentioned ATP-producing ability. Preferred strains belong to the genus Corynebacterium or Brevibacterium, and a specific example of a strain is Brevibacterium ammoniagenes.
ATCC21170 and Corynebacterium glutamicum ATCC21171. The medium used for culturing the microorganism may be either a natural medium or an artificial medium as long as it contains a suitable amount of carbon source, nitrogen source, and organic and inorganic nutrient sources. Carbon sources used for culture include carbohydrates such as glucose, fructose, sucrose, molasses, and starch hydrolysates, hydrocarbons such as normal paraffin and kerosene, alcohols such as methanol, ethanol, glycerin, and sorbitol, pyruvic acid, lactic acid, Organic acids such as acetic acid, amino acids such as glycine, alanine, glutamic acid, aspartic acid, etc. are used, and the concentration used is 5 to 30%.
% is preferred. The carbon source referred to here is something that microorganisms require for growth, and is distinguished from the energy donor required for the reaction that produces ATP. However, if there is an excess carbon source in the medium and the carbon source is brought into the ATP production reaction,
The carbon source is used as an energy donor. Nitrogen sources used for culture include various inorganic and organic ammonium salts such as ammonia, ammonium chloride, ammonium nitrate, ammonium phosphate, ammonium sulfate, and urea, nitrogen-containing substances such as peptone, meat extract, protein hydrolyzate, and fish meal. , usually used at a concentration of 0.1-10%. Inorganic substances used in the culture medium include phosphates such as monopotassium phosphate, dipotassium phosphate, monosodium phosphate, disodium phosphate, and ammonium phosphate, sulfates, hydrochlorides, and nitrates of magnesium, manganese, calcium, iron, zinc, etc. is used in appropriate amounts. Furthermore, if the microorganism is an auxotrophic strain, compounds required for growth must be added to the culture solution. The culture conditions for microorganisms include a temperature of 20 to 40°C, under aerobic conditions such as shaking and aeration, and adjusting the pH to around neutrality using ammonia, aqueous ammonia, urea, caustic soda, caustic potash, etc. While, 1~
Cultivate for 8 days. The microorganism culture thus obtained can be used for the reaction as it is, or the culture may be subjected to various treatments and the treated product obtained may be used for contact reaction with adenine and a phosphate donor. . Processed products include concentrated or dried culture products, liquid or bacterial cells obtained by processing cultures with a centrifuge, dried bacterial cells, acetone-treated products, surfactant-treated products, and sonicated products. Examples include lytic enzyme-treated products, immobilized bacterial cells, and enzyme preparations extracted from bacterial cells. The contact reaction can be carried out in any aqueous medium, but it is economically advantageous to add an adenine phosphate donor, an energy donor, a surfactant, or an organic solvent, phytic acid, or magnesium ion to the medium during microbial culture. Examples of methods include accumulating the target substance in the culture solution by allowing the target substance to exist in the culture medium, or carrying out a contact reaction after the completion of culture. In the former case, necessary components such as adenine may be present in the medium at the time of inoculation or during culture, but the surfactant and/or organic solvent may be added afterwards. In the latter case, adenine, a phosphate donor, an energy donor, a surfactant and/or an organic solvent are added to the culture, bacterial cells, or their processed material after cultivation, and other substances are added if necessary. In addition, under aerobic conditions at 20-50℃
The target product can be accumulated by reacting for 48 hours. At this time, it is desirable to adjust the pH to 6-8. In either case, the concentration of adenine is 1 to 100 g/, preferably 1 to 40 g/. Energy donors include carbohydrates such as glucose, fructose, sucrose, molasses, and starch hydrolysates, pyruvic acid, lactic acid, acetic acid, and α-
Organic acids such as ketoglutaric acid, amino acids such as glycine-alanine, aspartic acid, and glutamic acid are used. These are used in concentrations of approximately 5 to 150 g/. As the phosphate donor, any of the phosphates used in the culture medium for the aforementioned bacteria can be used. These are 1~
Used at a concentration of 100g/. The surfactants used include cationic surfactants such as polyoxyethylene stearylamine (e.g. Nymeen S-215, NOF K.
anionic surfactants such as sodium lauryl sulfate, sodium oleylamide sulfate, nonionic surfactants such as polyoxyethylene sorbitan monostearate (e.g. Nonion ST221, NOF
amphoteric surfactants such as lauryl betaine (e.g. Anon BF, manufactured by NOF KK);
These are usually used at a concentration of 0.1 to 50 g/, preferably 1 to 20 g/. As the organic solvent, toluene, xylene, aliphatic alcohol, benzene, ethyl acetate, etc. are used, and the concentration thereof is 0.1 to 50 ml, preferably 1
~20ml/ is good. The phytic acid used may be the free acid or its salts such as sodium, potassium, and magnesium salts, and natural products containing phytic acid (for example, corn, steep, etc.) may be used.
Liquor, etc.) may be used. In the case of a method in which adenine is added during the cultivation of microorganisms, phytic acid may be added to the aqueous medium at any time from the time of inoculation to 12 hours after addition of the surfactant and/or organic solvent. In addition, in the case of a method in which the contact reaction is carried out after completion of the culture, it may be carried out at any time from the time of addition of the surfactant and/or organic solvent to 12 hours. In addition, the amount of phytic acid added is 1 to 1.
50g/, preferably 3-20g/. As the magnesium ion, any of salts of inorganic acids such as sulfates, nitrates, and hydrochlorides, salts of organic acids such as magnesium citrate, and other natural products with a high content of magnesium ions (such as phytin) can be used. Magnesium ions may be added to the aqueous medium at any time, as long as they are added at the same time as phytic acid, or after that, or they may be added several times at different times. The amount added is usually 0.01~
It is 0.20 mole. ATP accumulated in the aqueous medium can be collected by using activated carbon, ion exchange resin, etc., as exemplified in the Examples. Examples of the present invention are shown below. Example 1 Glucose 15%, urea 0.5% (separate sterilization)
KH 2 PO 4 1.0%, K 2 HPO 4 1.0%, MgSO 4
7H2O1.0 %, CaCl22H2O0.01 %, biotin 30μ
A fermentation medium consisting of 0.5% yeast extract, 0.5% meat extract (adjusted to pH 7.2 with caustic soda), 20ml each in a 250ml Erlenmeyer flask, was heated and sterilized, and Billevibacterium ammoniagenes was added to it. ATCC21170 was inoculated and cultured with shaking at 32°C for 48 hours. After culturing, the bacterial cells were separated by centrifugation.
Obtained bacterial cells (wet bacterial weight 30%), glucose
50g/, adenine 7g/, NaHPO 4 15g/
, phytic acid 3.5g/, xylene 10ml/,
20ml of solution containing 2156g of Naimeen S-250
ml Erlenmeyer flask and adjust the pH with ammonia water.
At 32°C, adjust the temperature to around 7.4 and add as needed to keep the concentration of phosphoric acid in the reaction supernatant around 10 g/anhydrous disodium phosphate.
The reaction was carried out under shaking conditions for 24 hours. Table 1 shows the results of comparing the amount of ATP produced when phytic acid and magnesium ions were added alone, when both were added at the same time, and when no addition was made.

【表】 第1表の反応液1を85℃、20分間加熱処理
し、固型分を遠心分離により除去し、上清液を得
る。この上清液を硫酸にてPH3.5とし、これに活
性炭45gを加えてATPを吸着せしめ、水洗後50
%エタノール−アンモニアの混合液〔28%アンモ
ニア水溶液とエタノール(99%)を1:1(v/
v)で混合〕で溶出し、容出液をPH8付近まで濃
縮する。 次に予めCl型に調製した強塩基性陰イオン交換
樹脂ダウエツクス−1×4に濃縮液を通し、水洗
後塩酸と食塩の混合液〔0.02NHCl溶液(PH1.7)
にNaClを溶解して0.2M NaCl溶液としたもの〕
で溶出してATP画分を分取する。この溶出液を
苛性ソーダで中和後これを活性炭の充てんされて
いるカラムに通し、15%アンモニア水で溶出し、
溶出液を濃縮してアンモニアを飛散せしめる。該
濃縮液にメタノールを添加することによつて
ATPのナトリウム塩の結晶16.4gを得る。 実施例 2 実施例1と同じ菌株を用い、反応時に添加する
マグネシウムイオンの量を硫酸マグネシウム7水
塩のかたちで10g/とし、またフイチン酸の量
を第2表に示す量を用いる他は、実施例1と同様
の方法を実施して第2表に示す結果を得る。
[Table] Heat-treat reaction solution 1 in Table 1 at 85°C for 20 minutes, remove solids by centrifugation, and obtain a supernatant. This supernatant liquid was adjusted to pH 3.5 with sulfuric acid, 45 g of activated carbon was added to this to adsorb ATP, and after washing with water, the pH was adjusted to 3.5.
% ethanol-ammonia mixture [28% ammonia aqueous solution and ethanol (99%) 1:1 (v/
v)] and concentrate the eluate to around PH8. Next, the concentrated solution was passed through a strongly basic anion exchange resin Dowex-1 x 4 prepared in advance as a Cl type, and after washing with water, a mixture of hydrochloric acid and common salt [0.02NHCl solution (PH1.7)] was added.
0.2M NaCl solution by dissolving NaCl in
Elute with and collect the ATP fraction. After neutralizing this eluate with caustic soda, it was passed through a column packed with activated carbon and eluted with 15% aqueous ammonia.
Concentrate the eluate to remove ammonia. By adding methanol to the concentrate
16.4 g of crystals of the sodium salt of ATP are obtained. Example 2 The same strain as in Example 1 was used, except that the amount of magnesium ions added during the reaction was 10 g/in the form of magnesium sulfate heptahydrate, and the amount of phytic acid was as shown in Table 2. A method similar to Example 1 was carried out to obtain the results shown in Table 2.

【表】 実施例 3 実施例1と同じ菌体を用い、同じ条件で培養し
た培養液にグルコース50g/、アデニン7g/
、NaHPO415g/、MgSO4・7H2O10g/
、フイチン酸8g/、キシレン10ml/、ナ
イミーンS−2154g/を添加し、32℃にてさら
に10時間振盪撹拌を続けた結果、24.7g/の
ATPが生成する。フイチン酸および硫酸マグネ
シウムを添加しない場合のATP生成量は7.1g/
である。 実施例 4 実施例3と同じ菌株を用い、アデニン量を10
g/とし、MgSO4・7H2Oをナイミーンおよび
キシレン添加時に10g/添加するほかに、以後
2、5、7、9、11時間目に各6g/合計40
g/添加し、またフイチン酸の添加量を1.5
g/と8g/の2段階にとるほかは、実施例
3と同様の方法を実施し第3表に結果が示され
る。
[Table] Example 3 Using the same bacterial cells as in Example 1, 50 g of glucose/7 g/adenine was added to the culture solution cultured under the same conditions.
, NaHPO 4 15g/, MgSO 4・7H 2 O 10g/
, 8 g of phytic acid, 10 ml of xylene, and 154 g of Naimeen S-2 were added, and the shaking and stirring at 32°C was continued for another 10 hours. As a result, 24.7 g of
Generated by ATP. ATP production without adding phytic acid and magnesium sulfate is 7.1g/
It is. Example 4 Using the same strain as in Example 3, the amount of adenine was reduced to 10
In addition to adding 10 g of MgSO 4 7H 2 O at the time of addition of Nymeen and xylene, 6 g each at 2, 5, 7, 9, and 11 hours thereafter/total 40
g/added, and the amount of phytic acid added was 1.5
The same method as in Example 3 was carried out except that the two stages of g/ and 8 g/ were used, and the results are shown in Table 3.

【表】 実施例 5 コリネバクテリウム・グルタミクム
ATCC21171を用い、発酵培地として澱粉加水分
解液(グルコース換算15%)、尿素2g/、
NH4Cl3g/、KH2PO410g/、K2HPO410
g/、MgSO4・7H2O10g/、MnCl2
4H2O5mg/、コーン・スチーブ・リカー10
g/、ペプトン2g/(PH7.6)を用い、実
施例1と同じ条件で培養する。32℃で72時間振盪
培養後、菌体を遠心分離により分取し、得られた
菌体(乾燥菌体重量10%)、グルコース50g/、
アデニン7g/、Na2HPO415g/、フイチ
ン酸10g/、ナイミーンS−215 6g/を含
む溶液を用いて実施例1−と同じ条件で反応を
行なつた結果、17g/のATPが生成する。フ
イチン酸および硫酸マグネシウムを添加しない場
合のATP生成量は4.7g/である。
[Table] Example 5 Corynebacterium glutamicum
Using ATCC21171, starch hydrolysis solution (15% glucose equivalent), urea 2g/,
NH 4 Cl3g/, KH 2 PO 4 10g/, K 2 HPO 4 10
g/, MgSO 4・7H 2 O10g/, MnCl 2
4H 2 O 5mg/, corn stave liquor 10
The cells are cultured under the same conditions as in Example 1 using peptone 2 g/(PH7.6). After shaking culture at 32°C for 72 hours, the bacterial cells were separated by centrifugation, and the obtained bacterial cells (dry bacterial weight 10%), glucose 50 g/,
A reaction was carried out under the same conditions as in Example 1 using a solution containing 7 g of adenine, 15 g of Na 2 HPO 4 /, 10 g of phytic acid, and 6 g of Naimeen S-215, and as a result, 17 g of ATP was produced. . The amount of ATP produced when phytic acid and magnesium sulfate are not added is 4.7 g/.

Claims (1)

【特許請求の範囲】 1 コリネバクテリウム属又はブレビバクテリウ
ム属に属し、アデニン、燐酸供与体およびエネル
ギー供与体からアデノシン−5′−三燐酸(以下
ATPという)を生成する能力を有する微生物の
培養物、菌体もしくはそれらの処理物と、アデニ
ン、燐酸供与体およびエネルギー供与体とを界面
活性剤および/または有機溶剤を含有する水性培
地中でフイチン酸の存在下に接触せしめることを
特徴とするATPの製造法。 2 該接触が微生物の培養中に行われる特許請求
の範囲第1項記載の製造法。
[Scope of Claims] 1 Belonging to the genus Corynebacterium or Brevibacterium, adenosine-5'-triphosphate (hereinafter referred to as
Cultures, cells, or processed products of microorganisms that have the ability to produce ATP) and adenine, phosphate donors, and energy donors are mixed in an aqueous medium containing a surfactant and/or an organic solvent. A method for producing ATP characterized by contacting it in the presence of an acid. 2. The manufacturing method according to claim 1, wherein the contact is performed during culturing of the microorganism.
JP16148482A 1982-09-16 1982-09-16 Preparation of adenosine-5'-triphosphate Granted JPS5951799A (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP16148482A JPS5951799A (en) 1982-09-16 1982-09-16 Preparation of adenosine-5'-triphosphate

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP16148482A JPS5951799A (en) 1982-09-16 1982-09-16 Preparation of adenosine-5'-triphosphate

Publications (2)

Publication Number Publication Date
JPS5951799A JPS5951799A (en) 1984-03-26
JPH0328195B2 true JPH0328195B2 (en) 1991-04-18

Family

ID=15735954

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP16148482A Granted JPS5951799A (en) 1982-09-16 1982-09-16 Preparation of adenosine-5'-triphosphate

Country Status (1)

Country Link
JP (1) JPS5951799A (en)

Families Citing this family (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2002045185A (en) 2000-08-02 2002-02-12 Kyowa Hakko Kogyo Co Ltd F0f1-atpase and dna encoding the enzyme
JP5850741B2 (en) * 2011-12-27 2016-02-03 株式会社明治 Yeast and mold detector

Also Published As

Publication number Publication date
JPS5951799A (en) 1984-03-26

Similar Documents

Publication Publication Date Title
EP0282989B1 (en) Process for producing 5'-inosinic acid
US4594321A (en) Process for producing 3-deoxyguanosine
JPS6174595A (en) Production of substance
JPH0328195B2 (en)
CA1334393C (en) Process for the preparation of ascorbic acid-2-phosphate
EP0146265B1 (en) Process for producing a compound from its precursor using an enzymatic activity of bacterium
EP0319130B1 (en) Process for the preparation of ascorbic acid-2-phosphate
JPH043959B2 (en)
US5212079A (en) Process for the preparation of ascorbic acid-2-phosphate
US3150058A (en) Process for preparing inosinic acid
US3308036A (en) Process for the production of ribonucleotides by fermentation
JPH0669387B2 (en) Process for producing S-adenosylmethionine
US3313710A (en) Process for producing tri-and diphosphates of adenosine and guanosine by fermentation
EP0090417B1 (en) Process for producing 3'-deoxyguanosine
Shimizu et al. A new process for the production of coenzyme A and its intermediates with a microorganism
JP2602927B2 (en) Method for producing adenosine-5'-triphosphate
JPS5818075B2 (en) Method for producing adeno-5'-triphosphoric acid
KR940009047B1 (en) Method of manufacturing glutamine and iso-ascorbic acid-2-phosphate of ascorbic acid-2-phosphate
US3762999A (en) Method for producing adenosine diphosphate and adenosine triphosphate
JPS6174596A (en) Production of gamma-glutamylcysteine
US3926725A (en) Process for producing cyclic-3,5-cytidylic acid by fermentation
JPS60105499A (en) Production of glutathione
JPS59132898A (en) Preparation of flavin adenine dinucleotide
Shirota et al. Effects of Pyrophosphate on Formation of Nucleotide Derivatives
JPS58116698A (en) Preparation of purine nucleoside-5'-monophosphate