JPH0320236B2 - - Google Patents

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JPH0320236B2
JPH0320236B2 JP3432184A JP3432184A JPH0320236B2 JP H0320236 B2 JPH0320236 B2 JP H0320236B2 JP 3432184 A JP3432184 A JP 3432184A JP 3432184 A JP3432184 A JP 3432184A JP H0320236 B2 JPH0320236 B2 JP H0320236B2
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JP
Japan
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strain
adriamycin
streptomyces
culture
caesius
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JP3432184A
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Akihiro Yoshimoto
Shizuka Fujii
Katsuro Kubo
Tomoyuki Ishikura
Tsutomu Sawa
Tomio Takeuchi
Hamao Umezawa
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MERUSHAN KK
Original Assignee
MERUSHAN KK
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Description

【発明の詳細な説明】[Detailed description of the invention]

本発明はアドリアマイシンの製造法に関し、更
に詳しくは、ストレプトミセスD788 3T−23菌
株を栄養培地に培養し、その培養物から下記式 で示されるアドリアマイシンを分離、精製するこ
とを特徴とするアドリアマイシンの製造法であ
る。 アドリアマイシンは、強い抗腫瘍活性を有する
アントラサイクリン抗生物質で、抗癌スペクトル
が広く癌治療上重要な科学療法剤である。従来そ
の製造法としては、ダウノマイシン生産菌株とし
て公知ストレプトミセス・ピユーセテイウスから
変異処理により得られた変異株、即ちストレプト
ミセス・ピユーセテイウス・サブスプーシーズ・
カエシウス(Streptomyces peuceticus subsp.
caesius)ATCC27952等の培養による方法(特公
昭45−26713号公報参照)、或はダウノマイシンを
化学的に処理して製造する方法(特公昭47−
46597号公報参照)等が知られている。 これらの方法または改良された方法が現実にア
ドリアマイシンの製造に用いられているが、より
有効な微生物発酵による製造法の開発が望まれて
いる。 本発明者らは一貫したアントラサイクリン類の
生合成研究により、アドリアマイシンがダウノマ
イシンから、その14位炭素の酵素的酸化により生
合成されることを明らかにし、微生物変換法によ
るダウノマイシンからアドリアマイシンへの変
換、生成法を開発して来た(J.Autibiotics34
1229−1231、(981))。本研究成果は、加えて、ダ
ウノマイシン生産菌株として公知の菌株から、
種々の菌株改良法により、14位炭素の酸化能に対
し強い活性を有する菌株を育成することにより、
有利なアドリアマイシン発酵生産が可能であるこ
とを示唆するもので、本発明者らはこの考えに沿
つて鋭意検討を重ねた結果、土壌から分離したダ
ウノマイシン(バウマイシン)を生産し得る放線
菌株を変異処理し、アドリアマイシン生産性の菌
株の検索を行ない、アドリアマイシンを多量に生
産する菌株の誘導に成功し本発明を完成した。 因みに、特許公昭45−26713号記載のストレプ
トミセス・ピユーセテイウス・サブスピーシス・
カエシウスATCC2759菌株では10μg/ml程度の
蓄積生成であるが、本発明の菌株では10〜15倍の
蓄積生成量を示している。 本発明に使用される微生物は今回新しく土壌よ
り分離した放線菌ストレプトミセス
(Streptomyces)D788株から変異処理により誘
導されるアドリアマイシン蓄積性変異株で、その
具体的なものとしては、ストレプトミセス
(Streptomyces)D788 3T−23株を挙げることが
出来る。 該変異株は、公知の各種の変異手段、例えば、
ニトロソグアニジン、ジエポキシエタン、亜硝酸
塩等の変異誘起剤処理または紫外線、α−線、γ
−線、X−線等の放射線照射の手段によつて得ら
れる。 本発明で用いられる変異株の検索方法を具体例
によりさらに説明すれば次の通りである。 ストレプトミセス(Streptomyces)D788株を
YS寒天斜面培地(0.3%酵母エキス、1%可溶性
デンプン、1.5%寒天、PH7.2)に接種、28℃で10
日間培養し、胞子を着生せしめる。1斜面培養よ
り胞子をかき集め、5mlの減菌生理食塩水に懸
濁、これを超音波(Tomy Seiko社製、UR−
200P型)で20秒間処理したのち、脱脂綿を詰め
た殺菌小ガラス管(φ1.5mm×20mm)を通過させ、
液を遠心して胞子を集める。これに1mg/ml濃
度のN−メチル−N′−ニトロ−N−ニトロソグ
アニジンを含む0.1Mトリス−塩酸緩衝液(PH
8.5)の5mlを加え懸濁し、28℃で1時間振盪す
る。再び遠心し、上清を棄て5mlの生理食塩水に
懸濁、同食塩水で適当に希釈し、YS寒天平板
(前述、寒天1.5%)に塗布し、28℃で5日間培養
してコロニーを形成せしめる(殺菌率97.5%)。
該コロニーYS寒天斜面に移植培養したのち、3
mlの下記種母培地を含み試験管に接種し、28℃で
2日間振盪培養する。この全量を以下に示す組成
から成る発酵生産培地20mlを容れた250mlフラス
コに接種し、28℃で6日間回転振盪培養する。 種母培地 可溶性デンプン 0.5% グルコース 0.5 エスサンミート(味の素社製、大豆粉) 1.0 酵母エキス 0.1 第2リン酸カリ 0.1 食 塩 0.1 硫酸マグネシウム、7H2O 0.1 PH 7.4 発酵生産培地
The present invention relates to a method for producing Adriamycin, and more specifically, Streptomyces D788 3T-23 strain is cultured in a nutrient medium, and the following formula is obtained from the culture. This is a method for producing adriamycin, which is characterized by separating and purifying adriamycin shown in the following. Adriamycin is an anthracycline antibiotic with strong antitumor activity, and has a broad anticancer spectrum and is an important chemical therapy agent for cancer treatment. Conventionally, its production method involves using a mutant strain obtained by mutagenesis from Streptomyces peuceteius, which is known as a daunomycin-producing strain, that is, Streptomyces peuceteius subsp.
Streptomyces peuceticus subsp.
caesius) ATCC27952, etc. (see Japanese Patent Publication No. 45-26713), or a method of manufacturing by chemically treating daunomycin (Japanese Patent Publication No. 47-1989).
46597) etc. are known. Although these methods or improved methods are actually used for producing adriamycin, it is desired to develop a more effective production method using microbial fermentation. Through consistent research on the biosynthesis of anthracyclines, the present inventors revealed that adriamycin is biosynthesized from daunomycin by enzymatic oxidation of its 14th carbon, and the conversion of daunomycin to adriamycin by a microbial conversion method. We have developed a production method (J.Autibiotics 34 ,
1229−1231, (981)). In addition, the results of this research show that from a strain known as a daunomycin-producing strain,
By cultivating a strain that has strong activity against carbon 14 oxidation using various strain improvement methods,
This suggests that advantageous fermentative production of adriamycin is possible, and as a result of extensive research in line with this idea, the present inventors mutated an actinomycete strain isolated from soil that can produce daunomycin (baumycin). However, they conducted a search for a strain capable of producing adriamycin, and succeeded in inducing a strain that produces a large amount of adriamycin, thereby completing the present invention. By the way, Streptomyces piuseteius subspicis described in Patent Publication No. 45-26713
Caesius ATCC2759 strain has an accumulated production of about 10 μg/ml, but the strain of the present invention shows an accumulated production amount of 10 to 15 times. The microorganism used in the present invention is an adriamycin-accumulating mutant strain derived from Streptomyces strain D788, which was newly isolated from soil, by mutation treatment. D788 3T-23 strain can be mentioned. The mutant strain can be produced by various known mutation methods, such as
Treatment with mutagenic agents such as nitrosoguanidine, diepoxyethane, and nitrite, or ultraviolet rays, α-rays, and γ
It can be obtained by means of radiation irradiation such as - rays and X-rays. The method for searching for mutant strains used in the present invention will be further explained using specific examples as follows. Streptomyces D788 strain
Inoculated on YS agar slant (0.3% yeast extract, 1% soluble starch, 1.5% agar, PH7.2) at 28°C for 10
Culture for 1 day and allow spores to settle. 1. Spores were collected from the slant culture, suspended in 5 ml of sterile physiological saline, and subjected to ultrasonication (Tomy Seiko, UR-
200P type) for 20 seconds, then passed through a small sterilized glass tube (φ1.5 mm x 20 mm) filled with absorbent cotton.
Centrifuge the liquid and collect the spores. This was added to a 0.1M Tris-HCl buffer (PH
Add 5 ml of 8.5), suspend, and shake at 28°C for 1 hour. Centrifuge again, discard the supernatant, suspend in 5 ml of physiological saline, dilute appropriately with the same saline, spread on YS agar plate (agar 1.5% as described above), and culture at 28°C for 5 days to obtain colonies. (97.5% sterilization rate).
After transplanting and culturing the colony on a YS agar slope,
Inoculate a test tube containing ml of the following seed medium and culture with shaking at 28°C for 2 days. This entire amount was inoculated into a 250 ml flask containing 20 ml of a fermentation production medium having the composition shown below, and cultured with rotary shaking at 28°C for 6 days. Seed medium Soluble starch 0.5% Glucose 0.5 Esunmeat (manufactured by Ajinomoto Co., Ltd., soybean flour) 1.0 Yeast extract 0.1 Potassium diphosphate 0.1 Salt 0.1 Magnesium sulfate, 7H 2 O 0.1 PH 7.4 Fermentation production medium

【表】【table】

【表】 培養液1mlを採り、これにアセトン3mlを加
え、ミキサーにて激しく振盪撹拌する。遠心した
赤色の抽出上清を得る。これを下記の高速液体ク
ラマトグラフイー用移動相で10倍に希釈し、10μ
をインジエクトしてアドリアマイシンの検出を
行なう。 高速液体クロマトグラフイー条件: 本体:日立製作所社製Model655 カラム:YMC−Pack A−312 移動相:36%CH3CN−0.01M D−10−カンフア
ースルホン酸(PH4.2) 流速:1.0ml/min 検出:254nm 保持時間:5.45min 如くして、アドリアマイシンの生産が認めら
れ、且つ蓄積量の多い菌株を選択する。蓄積量の
高い菌株の一例としては本発明者らが3T−23菌
株の番号を付した菌株が挙げられる。 この菌株3T−23は親株であるストレプトミセ
ス(Streptomyces)D788株とアントラサイクリ
ン抗生物生産に関してはバウマイシン類を生産し
ない点、及びアドリアマイシンを蓄積生産する点
において異なるが、菌学的諸性質に関してはほと
んど変らない。 以下にストレプトミセス(Streptomyces)
D788、3T−23菌株の菌学的性状を記載する。 ストレプトミセス(Streptomyces)D788 3T−
23株の菌学的性状 () 形態 分枝した基中菌糸より、直線状の気中菌糸を
伸長し、輪生枝はみとめられない。成熟した胞
子鎖は10ケ以上の胞子の連鎖が認められ胞子の
大きさは0.6〜0.8×0.9〜2.5ミクロン位で、胞
子の表面は平滑である。子のう胞子、鞭毛胞子
などはみとめらない。 () 各種培地における生育状態 色の記載について( )内に示す標準なH.
D.Tresner&E.J.Backus著System of color
wheels for Streptomycete taxonomy(J.
Appl.Microbiol.11巻335〜338頁、1963年)を
用い、補足的に日本色彩研究所出版の「色の標
準」も用いた。
[Table] Take 1 ml of culture solution, add 3 ml of acetone to it, and shake vigorously with a mixer. Obtain the red extracted supernatant after centrifugation. Dilute this 10 times with the following mobile phase for high performance liquid chromatography, and use 10μ
Inject adriamycin to detect adriamycin. High performance liquid chromatography conditions: Main unit: Model 655 manufactured by Hitachi, Ltd. Column: YMC-Pack A-312 Mobile phase: 36% CH 3 CN-0.01M D-10-camphorsulfonic acid (PH4.2) Flow rate: 1.0ml /min Detection: 254nm Retention time: 5.45min In this way, strains that are recognized to produce adriamycin and accumulate a large amount are selected. An example of a strain with a high accumulation amount is a strain designated by the present inventors as strain 3T-23. This strain 3T-23 differs from the parent strain Streptomyces D788 in terms of anthracycline antibiotic production in that it does not produce baumycins and that it accumulates and produces adriamycin, but it has almost no mycological properties. It doesn't change. Streptomyces below
The mycological properties of D788 and 3T-23 strains are described. Streptomyces D788 3T−
Mycological properties of 23 strains () Morphology Straight aerial hyphae extend from branched basal hyphae, and whorled branches are not observed. A mature spore chain consists of 10 or more spores, and the size of the spores is approximately 0.6 to 0.8 x 0.9 to 2.5 microns, and the surface of the spores is smooth. Ascospores and flagellated spores are not observed. () Growth status in various media Regarding color descriptions Standard H.
System of color by D.Tresner & E.J.Backus
wheels for Streptomycete taxonomy (J.
Appl. Microbiol. Vol. 11, pp. 335-338, 1963), and supplementary "Color Standard" published by Japan Color Research Institute was also used.

【表】【table】

【表】 () 生理的性質 (1) 生育温度範囲:(イースト・麦芽・寒天培
地)を使用、PH6.0で、20℃、28℃、30℃、
37℃、42℃の各温度で実験) 20℃から37℃までの各温度では生育がみと
められた。42℃では生育しない。 (2) ゼラチンの液化:陽性(グルコース・ペプ
トン・ゲラチン培地を使用し、20℃で培養) (3) スターチの加水分解:陽性(スターチ・無
機塩寒天培地) (4) スキム・ミルクの凝固・ペプトン化:始め
はすべて陰性、培養15日間過ぎる頃ペプトン
化をはじめる。 (5) メラニン様色素の生成:(トリプトン・イ
ースト・ブロス、ペプトン・イースト・鉄・
寒天、及びチロシン寒天培地使用) いずれの培地でも陽性 () 各種炭素源の利用性:(フリドハム・ゴド
リーブ寒天培地上) 1 L−アラビノース 陽性 2 D−キシロース 〃 3 D−グルコース 〃 4 D−フラクトース 〃 5 シユクロース 〃 6 イノシトール 〃 7 L−ラムノース 陰性 8 ラフイノース 〃 9 D−マンニツト 陽性 本発明の菌株ストレプトミセス
(Streptomyces)D788、3T−23菌株はアドリア
マイシン生産菌株として公知のストレプトミセ
ス・ピユーセテイウス・サブスピーシス・カエシ
ウス(Streptomyces peusetius sub.sp.caesius)
(Streptomyces peucetiusから誘導した変異株)
とは、特公昭45−26713記載の菌学的性状を比較
することにより、以下の点で大きな菌学的相違が
認められる。即ち、 (1) 形態 ストレプトミセス・ピユーセテイウス・サブ
スピーシス・カエシウス(Streptomyces
peucetius sub.sp.caesius)(及びその親株
Streptomyces peucetius)の気中菌糸の先端
は鉤形又は環状であり、分生子は球形で、大き
さ1.1〜3.3μである。一方、本発明の菌株スト
レプトミセス(Streptomyces)D788 3T−23
菌株(及びその親株Streptomyces D788)は
気中菌糸の先端は直線形であり、分生市は桿形
である。 (2) 生理的性質 ストレプトミセス・ピユーセテイウス・サブ
スピーシス・カエシウス(Streptomyces
peucetius sub.sp.caesius)はメラニン色素の
生成はないと思われ、またミルクのペプトン化
も陰性である。一方、3T−23菌株はメラニン
の生成は被検した3種類の培地でいずれも陽性
であり、またミルクのペプトン化も陽性であ
る。 (3) 炭水化物の利用性 ストレプトミセス・ピユーセテイウス・サブ
スピーシス・カエシウス(Streptomyces
peucetius sub.sp.caesius)はラフイノーズを
利用し、L−アラビノーズ、イノシトールを利
用しないが、3T−23株はL−アラビノーズ、
イノシトールを利用し、ラフイノースを利用出
来ない。 以上の如く、多くの菌学的性質で相違し、従つ
て、本発明の菌株、ストレプトミセス
(Streptomyces)D788 3T−23菌株はアドリアマ
イシン生産性公知菌ストレプトミセス・ピユーセ
テイウス・サブスピーシス・カエシウス
(Streptomyces peucetius sub.sp.caesius)及び
その親株であるストレプトミセス・ピユーセテイ
ウス(Streptomyces peucetius)と全く別種の
菌株と考えられる。 なお、3T−23菌株は、昭和59年2月20日付で
工業技術院微生物工業技術研究所に微工研菌寄第
7457号(FERMP7457)として寄託されている。 本発明によるアドリアマイシン生産菌株の培養
は、放線菌の栄養源として通常使用さるそれ自体
公知の培地組成物中で行うことができる。例え
ば、炭素源としては、グルコース、グリセリン、
蔗糖、澱粉、マルトーズ、動植物油などが使用で
き、窒素源としては、例えば大豆粉、肉エキス、
酵母エキス、ペプトン、コーンステープリカー、
綿実粕、魚粉などの有機物並びに硫酸アンモニウ
ム、塩化アンモニウム、硝酸ナトリウム、リン酸
アンモニウムなどの無機体窒素が使用できる。又
必要に応じて食塩、塩化カリウム、リン酸塩その
他Mg++、Ca++、Zn++、Fe++、Cu++、Mn++ある
いはNi++などの2価金属塩類及びアミノ酸やビ
タミン類を添加する他発酵中の発泡を抑制するた
め、例えばシリコーン(信越化学KK製、−
KM75;商標)などの消泡剤を適宜添加すること
もできる。 温度、PH、通気撹拌および発酵時間等の発酵条
件は、用いられる菌株が最大量の該化合物を蓄積
する様に選択する。例えば温度20〜40℃、好まし
くは28℃、PH5〜9、好ましくは6〜7におい
て、発酵時間は4〜10日間、好ましくは6日間で
発酵を行うのが有利である。 該培養物からアドリアマイシンを単離、採取す
るには、発酵終了後の培養物を遠心分離による
か、ケイ藻土の如き適当な濾過助剤の存在下で濾
過することにより、菌体と上澄または濾液に分離
する。 菌体からは必要により、アセトン、メタノー
ル、エタノールもしくはブタノール等の水と混和
する有機溶媒を用いて抽出し、この濃縮液を濾液
と混合する。この混合液を、吸着担体、例えば、
合成吸着樹脂、シリカゲルを用いたクロマトグラ
フイーにより処理するか、陰イオン交換樹脂、陽
イオン交換樹脂を用いる処理等を単独にあるいは
適宜組合せて使用することにより、アドリアマイ
シンは純粋な形で採取できる。 以上の本発明方法によつて得られる標品のアド
リアマイシンとして同定は、0.1N塩酸水、80℃
30分間の加水分解により得られるアグリコンの数
種類の溶媒系を用いてのシリカゲル薄層(F254
ルク社製)上でのRf値、紫外部、可視部吸収ス
ペクトル、赤外線吸収スペクトル等が標準アドリ
アマイシンと一致すること、酸加水分解物中の糖
成分をJ.Antibiotics32、801−819記載の方法で定
性分析した結果ダウノサミンが検出されたことか
ら証明された。 下記に示した本標品の物理化学的性状及び機器
分析値を文献値と比較した結果、アドリアマイシ
ンと一致した。 (1) 外観 赤色粉末 (2) 融点 199−201℃(dec)(塩酸塩として) (3) 紫外線部、視部吸収スペクトル
[Table] () Physiological properties (1) Growth temperature range: (yeast/malt/agar medium) used, PH6.0, 20℃, 28℃, 30℃,
Experiments were conducted at temperatures of 37°C and 42°C) Growth was observed at temperatures ranging from 20°C to 37°C. It does not grow at 42℃. (2) Liquefaction of gelatin: Positive (cultured at 20℃ using glucose/peptone/gelatin medium) (3) Hydrolysis of starch: Positive (starch/inorganic salt agar medium) (4) Coagulation/coagulation of skim milk Peptonization: Initially, all results were negative, but peptonization started after 15 days of culture. (5) Production of melanin-like pigments: (tryptone, yeast, broth, peptone, yeast, iron,
agar and tyrosine agar) Positive on all media () Availability of various carbon sources: (on Fridham-Godelive agar) 1 L-arabinose Positive 2 D-xylose 〃 3 D-glucose 〃 4 D-fructose 〃 5 Sucrose 〃 6 Inositol 〃 7 L-Rhamnose Negative 8 Raffinose 〃 9 D-Mannite Positive The strain Streptomyces D788 and 3T-23 of the present invention are Streptomyces piuseteius subspicis caesius (known as an adriamycin-producing strain). Streptomyces peusetius sub.sp.caesius)
(Mutant strain derived from Streptomyces peucetius)
By comparing the mycological properties described in Japanese Patent Publication No. 45-26713, there are major mycological differences in the following points. That is, (1) Morphology Streptomyces piuseteius subspiceius (Streptomyces caesius)
peucetius sub.sp.caesius) (and its parent strain
The tip of the aerial hyphae of Streptomyces peucetius is hook-shaped or ring-shaped, and the conidia are spherical and 1.1 to 3.3 microns in size. On the other hand, the strain Streptomyces D788 3T-23 of the present invention
In the strain (and its parent strain Streptomyces D788), the tip of the aerial hyphae is linear, and the conidia are rod-shaped. (2) Physiological properties Streptomyces piuseteius subspicis caesius
peucetius sub.sp.caesius) does not seem to produce melanin pigment, and peptonization of milk is also negative. On the other hand, the 3T-23 strain was positive for melanin production in all three types of media tested, and also positive for milk peptonization. (3) Carbohydrate utilization Streptomyces piuseteius subspicis caesius
peucetius sub.sp.caesius) uses roughinose and does not use L-arabinose or inositol, but strain 3T-23 uses L-arabinose,
Inositol is used and ruffinose cannot be used. As described above, the strain of the present invention, Streptomyces D788 3T-23, differs in many mycological properties, and therefore, the strain of the present invention, Streptomyces D788 3T-23 strain, is a strain of Streptomyces peucetius subsp. sp.caesius) and its parent strain, Streptomyces peucetius. The 3T-23 strain was submitted to the Institute of Microbiology, Agency of Industrial Science and Technology on February 20, 1981.
It has been deposited as No. 7457 (FERMP7457). The cultivation of the adriamycin-producing strain according to the invention can be carried out in a culture medium composition known per se, which is commonly used as a nutrient source for actinomycetes. For example, carbon sources include glucose, glycerin,
Sucrose, starch, maltose, animal and vegetable oils, etc. can be used, and as nitrogen sources, for example, soybean flour, meat extract,
Yeast extract, peptone, cornstap liquor,
Organic substances such as cottonseed meal and fishmeal as well as inorganic nitrogen substances such as ammonium sulfate, ammonium chloride, sodium nitrate, and ammonium phosphate can be used. If necessary, salts of common salts, potassium chloride, phosphates and other divalent metals such as Mg ++ , Ca ++ , Zn ++ , Fe ++ , Cu ++ , Mn ++ or Ni ++, and amino acids and In addition to adding vitamins, silicone (manufactured by Shin-Etsu Chemical KK, -
An antifoaming agent such as KM75 (trademark) can also be added as appropriate. Fermentation conditions such as temperature, PH, aeration agitation and fermentation time are selected such that the strain used accumulates the maximum amount of the compound. For example, it is advantageous to carry out the fermentation at a temperature of 20 to 40°C, preferably 28°C, a pH of 5 to 9, preferably 6 to 7, and a fermentation time of 4 to 10 days, preferably 6 days. To isolate and collect adriamycin from the culture, the culture after fermentation is centrifuged or filtered in the presence of a suitable filter aid such as diatomaceous earth to separate the bacterial cells and supernatant. Or separate into filtrate. If necessary, the bacterial cells are extracted using a water-miscible organic solvent such as acetone, methanol, ethanol, or butanol, and the concentrated solution is mixed with the filtrate. This mixture is applied to an adsorption carrier, for example,
Adriamycin can be collected in a pure form by treatment with chromatography using a synthetic adsorption resin or silica gel, treatment with an anion exchange resin or cation exchange resin, or the like, either alone or in an appropriate combination. The standard product obtained by the above method of the present invention was identified as Adriamycin in 0.1N hydrochloric acid water at 80°C.
The Rf value, ultraviolet absorption spectrum, visible absorption spectrum, infrared absorption spectrum, etc. of the aglycone obtained by hydrolysis for 30 minutes on a thin layer of silica gel (F 254 manufactured by Merck & Co., Ltd.) using several types of solvent systems were compared with standard adriamycin. This was proved by the fact that daunosamine was detected as a result of qualitative analysis of sugar components in the acid hydrolyzate by the method described in J. Antibiotics 32 , 801-819. The physicochemical properties and instrumental analysis values of this specimen shown below were compared with literature values, and the results were consistent with adriamycin. (1) Appearance Red powder (2) Melting point 199-201℃ (dec) (as hydrochloride) (3) Ultraviolet and visual absorption spectra

【表】 (4) 赤外線吸収スペクトル(KBr錠) νmax cn-1:3350、2950、1720、1620、1580、
1530、1420、1280、1230、1210、1110、1080、
980、910、870 (5) PMRスペクトル(100メガヘルツ、クロロホ
ルム中) H−1(8.00) H−2(7.75) H−3(7.35) H−1′(5.50) H−7(5.25) H−3′、H−
5′(4.15) 4−OCH3 (4.05) H−4′(3.45) COCH2
OH(4.70) H−10(3.05) H−8(2.20) H−2′(1.70) H−6′(1.35) アドリアマイシンの物理化学的性状及び機器分
析データーに関しては、以下の文献を参考にし
た。 文 献 (1) Tetrahedron Letters、13、1007(1969) (2) Biotechnol.Bioeng、11、1101(1969) (3) Recent Results in Cancer Res.p.9 Berlior−Heidelberg−New York、
Springer Verlag、1972 実施例 1 (1) ストレプトミセスD788(Streptomyces
D788)3T−23菌株(微工研条寄第7457号)の
YS(0.3%酵母エキス、1%可溶性デンプン、
1.5%寒天、PH7.2)斜面培養より一白金耳を採
り、下記する種母培地100mlを分注殺菌した500
ml容三角フラスコに接種し、28℃、ロータリー
シエカー(220rpm)にて2日間振盪培養して
種母を作成した。 種母培地 可溶性デンプン 0.5% グルコース 0.5% エスサンミート(大豆粉、味の素社製) 1.0% 酵母エキス 0.1% NaCl 0.1% K2HPO4 0.1% MgSO4・7H2O 0.1% 水道水 PH7.4(殺菌前) 次いで、下記組成の生産培地15を入れ、殺
菌した30容ジヤーフアーメンター2基に上記
の種母培養液を、1基当り750ml(5%に相当)
ずつ添加接種した。 生産培地 台湾酵母 5% 可溶性デンプン 7.5% 酵母エキス 0.3% NaCl 0.2% CaCO3 0.3% ミネラル混液※ 0.06% 水道水 PH8.2(加熱殺菌前) ※CuSo4・5H2O2.8g、FeSo4・7H2O0.4g MnCl2・4H2O3.2g、ZnSO4・7H2O0.8g を蒸留水500mlに溶解したもの。 通気量5/分、撹拌450回転/分で、28℃、
140時間培養すると培養液は濃赤褐色を呈し、
培養液1ml中およそ120μgのアドリアマイシ
ンを蓄積した。 なお、培養液中のアドリアマイシンの定量
は、培養液1mlに1Mクエン酸緩衝液(PH3.5)
1mlを加え、これにアセトン2mlを加えて撹
拌、室温で1時間放置、遠心操作により上清を
分取し、36%CH3CN3−0.01M D−10−カン
フアースルホン酸(PH4.2)で5〜10倍に希釈
し、その10μを高速液体クロマトグラフイー
(前出)にかけて、標準アドリアマイシン量
(0.1〜0.3γ)より算定し、測定した。 実施例 2 発酵終了後、培養液14を約2倍に水で希釈
し、濃硫酸でPHを1.7に調整した後、過助剤
(パーライト)を添加し、過した。液12
を4N水酸化ナトリウムでPH2.3に調整して、合
成吸着樹脂HP−20 400mlのカラムに通し、水
洗後、50%アセトン水で吸着物を溶出した。溶
出液850mlから減圧下でアセトンを留去し、得
られた濃縮液のPHを4N水酸化ナトリウムで8.5
に調整して、クロロホルム300mlで2回、赤色
物質を抽出した。抽出液を集め300mlまで濃縮
し同容量の0.1M酢酸緩衝液PH3.0で酸転し、ア
グリコンをのぞいた。次いで酸転水のPHを4N
水酸化ナトリウムで6.0とし、クロロホルム100
mlで2回洗浄抽出を行つた後、水層のPHを8.5
とし、クロロホルム150mlで2回抽出した。得
られた抽出液を水洗し無水硫酸ナトリウムで乾
燥後、減圧下濃縮乾固して2.66gの赤色粗粉末
を得た。 実施例 3 実施例2で得た粗粉末全量を、クロロホルム
で懸濁充填作成したシリカゲルカラム(ワコー
ゲルC−200、80g)にかけ、クロロホルム−
メタノール−水(50:10:1)溶媒混液で展開
した。溶出分画は高速液体クロマトグラフイー
(前出)で追跡し、アドリアマイシンを含む溶
出分画を集め、濃縮乾固して、純度57%のアド
リアマイシン粗標品を得た。 この粗標品全量を、再度上記と同様に作成し
たシリカゲルカラム(ワコーゲルC−200、10
g)にかけ、クロロホルム−メタノール−水
(60:10:0.5)で展開し、溶出分画を高速液体
クロマトグラフイーで分析し、アドリアマイシ
ンのみを含む分画を集めた。次いで溶出区分を
水洗し、0.1M酢酸緩衝液(PH3.0)50mlで酸転
抽出したのち、抽出水層を4N水酸化ナトリウ
ムでPHを8.5となし、クロロホルム30mlで2回
抽出した。抽出液を水洗し、さらに飽和食塩水
で洗浄、芒硝で乾燥したのち、少量まで濃縮
し、過剰のn−ヘキサンを加ええて沈殿させ、
過、集積せしめ、真空デシケーターで乾燥し
て精製アドリアマイシン124mgを取得した。
[Table] (4) Infrared absorption spectrum (KBr tablet) ν max cn-1 : 3350, 2950, 1720, 1620, 1580,
1530, 1420, 1280, 1230, 1210, 1110, 1080,
980, 910, 870 (5) PMR spectrum (100 MHz, in chloroform) H-1 (8.00) H-2 (7.75) H-3 (7.35) H-1' (5.50) H-7 (5.25) H- 3', H-
5' (4.15) 4-O CH 3 (4.05) H-4' (3.45) CO CH 2
OH (4.70) H-10 (3.05) H-8 (2.20) H-2' (1.70) H-6' (1.35) Regarding the physicochemical properties and instrumental analysis data of Adriamycin, the following documents were referred to. . Literature (1) Tetrahedron Letters, 13 , 1007 (1969) (2) Biotechnol.Bioeng, 11 , 1101 (1969) (3) Recent Results in Cancer Res.p.9 Berlior-Heidelberg-New York,
Springer Verlag, 1972 Example 1 (1) Streptomyces D788
D788) 3T-23 strain (Feikoken Joyori No. 7457)
YS (0.3% yeast extract, 1% soluble starch,
1.5% agar, PH7.2) Take a loopful from the slant culture, dispense 100ml of the following seed culture medium, and sterilize it.
The seeds were inoculated into a ml Erlenmeyer flask and cultured at 28°C with shaking in a rotary shaker (220 rpm) for 2 days to prepare a seed mother. Seed medium Soluble starch 0.5% Glucose 0.5% Esunmeat (soybean flour, manufactured by Ajinomoto Co.) 1.0% Yeast extract 0.1% NaCl 0.1% K 2 HPO 4 0.1% MgSO 4・7H 2 O 0.1% Tap water PH7.4 (sterilized) Next, add the production medium 15 with the following composition and add the above seed culture solution to two sterilized 30-volume jar fermenters at a volume of 750 ml per one (equivalent to 5%).
Additional inoculation was carried out. Production medium Taiwan yeast 5% Soluble starch 7.5% Yeast extract 0.3% NaCl 0.2% CaCO 3 0.3% Mineral mixture * 0.06% Tap water PH8.2 (before heat sterilization) *CuSo 4・5H 2 O2.8g, FeSo 4・7H 2 O0.4g MnCl 2・4H 2 O3.2g, ZnSO 4・7H 2 O0.8g dissolved in 500ml of distilled water. Aeration rate 5/min, stirring 450 rpm, 28℃,
After culturing for 140 hours, the culture solution becomes dark reddish brown.
Approximately 120 μg of adriamycin was accumulated in 1 ml of culture. To quantify adriamycin in the culture solution, add 1M citrate buffer (PH3.5) to 1ml of the culture solution.
Add 1 ml of acetone to this, stir, leave at room temperature for 1 hour, collect the supernatant by centrifugation, and add 36% CH 3 CN 3 -0.01M D-10-camphorsulfonic acid (PH4.2 ), 10μ of the solution was subjected to high performance liquid chromatography (described above), and the amount was calculated from the standard amount of adriamycin (0.1 to 0.3γ) and measured. Example 2 After completion of fermentation, culture solution 14 was diluted approximately twice with water, and after adjusting the pH to 1.7 with concentrated sulfuric acid, a supernatant (perlite) was added and filtered. liquid 12
was adjusted to pH 2.3 with 4N sodium hydroxide, passed through a 400ml column of synthetic adsorption resin HP-20, washed with water, and the adsorbed matter was eluted with 50% acetone water. Acetone was distilled off from 850 ml of the eluate under reduced pressure, and the pH of the obtained concentrate was adjusted to 8.5 with 4N sodium hydroxide.
The red substance was extracted twice with 300 ml of chloroform. The extracts were collected, concentrated to 300 ml, and acid-transformed with the same volume of 0.1 M acetate buffer, pH 3.0, to remove the aglycone. Then the pH of acid-converted water is 4N
6.0 with sodium hydroxide, chloroform 100
After washing and extracting twice with ml, the pH of the aqueous layer was adjusted to 8.5.
The mixture was extracted twice with 150 ml of chloroform. The obtained extract was washed with water, dried over anhydrous sodium sulfate, and concentrated to dryness under reduced pressure to obtain 2.66 g of red coarse powder. Example 3 The entire amount of the crude powder obtained in Example 2 was applied to a silica gel column (Wakogel C-200, 80 g) prepared by suspension-packing with chloroform, and
It was developed with a methanol-water (50:10:1) solvent mixture. The eluted fractions were tracked by high performance liquid chromatography (described above), and the eluted fractions containing adriamycin were collected and concentrated to dryness to obtain a crude sample of adriamycin with a purity of 57%. The entire amount of this crude sample was added to a silica gel column (Wakogel C-200, 10
g), developed with chloroform-methanol-water (60:10:0.5), and the eluted fractions were analyzed by high performance liquid chromatography, and fractions containing only adriamycin were collected. The eluate fraction was then washed with water and subjected to acid transfer extraction with 50 ml of 0.1M acetate buffer (PH 3.0), and the extracted aqueous layer was adjusted to pH 8.5 with 4N sodium hydroxide and extracted twice with 30 ml of chloroform. The extract was washed with water, further washed with saturated saline, dried with Glauber's salt, concentrated to a small amount, and precipitated by adding excess n-hexane.
The mixture was filtered, concentrated, and dried in a vacuum desiccator to obtain 124 mg of purified adriamycin.

Claims (1)

【特許請求の範囲】 1 ストレプトミセスD788 3T−23(微工研菌寄
第7457号)菌株を栄養培地に培養し、その培養物
から下記式 で示されるアドリアマイシンを分離、精製するこ
とを特徴とするアドリアマイシンの製造法。
[Scope of Claims] 1. Streptomyces D788 3T-23 (Feikoken Bibori No. 7457) strain was cultured in a nutrient medium, and the following formula was obtained from the culture. A method for producing adriamycin, which comprises separating and purifying adriamycin.
JP3432184A 1984-02-27 1984-02-27 Production of adriamycin Granted JPS60186298A (en)

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