JPH03130076A - Novel fibrinolytic agent having mutation in cringle-1 region and its production - Google Patents
Novel fibrinolytic agent having mutation in cringle-1 region and its productionInfo
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Landscapes
- Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
Description
【発明の詳細な説明】
〔産業上の利用分野〕
本発明は、新規プラスミノーゲン活性化因子、該因子を
産する細胞、該因子をコードするDNA配列及び該因子
の製造法にかかわる。本発明による新規プラスミノーゲ
ン活性化因子は、プラスミノーゲンをフィブリン溶解活
性を有するプラスミンに変換する作用を有し、種々の血
栓症の治療薬として用いることができる。DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION [Industrial Application Field] The present invention relates to a novel plasminogen activator, a cell that produces the factor, a DNA sequence encoding the factor, and a method for producing the factor. The novel plasminogen activator of the present invention has the effect of converting plasminogen into plasmin having fibrinolytic activity, and can be used as a therapeutic agent for various thromboses.
ヒト組織プラスミノーゲン活性化因子(以下、TPAと
略記する)は、ヒト・メラノーマ細胞(Bowes M
elanoma) の分泌するTPAについてよく研
究され、527のアミノ酸残基からなる糖蛋白質である
(Pennlca、D、ら(1983年)ネイチ+ −
(Nature) 301巻、214頁〕。Human tissue plasminogen activator (hereinafter abbreviated as TPA) is used in human melanoma cells (Bowes M
TPA secreted by S. elanoma has been well studied and is a glycoprotein consisting of 527 amino acid residues (Pennlca, D., et al. (1983)).
(Nature) Volume 301, Page 214].
TPAは、フィブリン溶解能を有しないプラスミノーゲ
ンを該活性を有するプラスミンに変換する酵素で血栓溶
解作用を有している。TPAは現在、血栓症の治療に用
いられている[Grossbard 。TPA is an enzyme that converts plasminogen, which does not have fibrinolytic ability, into plasmin, which has fibrinolytic activity, and has thrombolytic activity. TPA is currently used to treat thrombosis [Grossbard.
E、B、 (1987年)ファーマシューティカル・リ
サーチ(Pharmaceullcal Re5ear
ch) 、 4巻、375頁〕。しかし、TPAの最大
の欠点はその血中からの急速なりリアランスにある。血
流中に投与されたTPAは、主に肝臓で代謝されると推
定され(Fuchs、t(、E、ら(1985年)ブラ
ッド(Bfood) 、 65巻、539頁〕 その
血中半減期は僅かに2分である(Collen、D、ら
(1985年)サーキュレーション(C1rculat
ion) 72巻、384頁〕。従って、血栓症の治療
には大量のTPAの投与が必要である。TPAのような
蛋白の大量投与による血栓症治療は、極めて高価な治療
になるばかりでなく、抗原抗体反応による副作用という
懸念されるべき問題を含んでいる。従って、TPA分子
の化学的修飾(WO8410178B) (特開昭63
−06983 ) (Berger、H,ら(198
3年)ブラッド(Blood) 71巻、1641頁〕
、酵素的修飾(特開昭62−282582)(EP
0253582 AL) 、あるいは遺伝子工学的改変
(特開昭61−243024、特開昭62−13069
0、特開昭62−272976、特開昭62−2696
88、特開昭62−282582、特開昭64−633
79)等により血中持続性の改良された、すなわち血中
半減期の長いTPA誘導体の作成の試みが行なわれてい
る。しかし、現在までに開発された新規TPAでは、血
中半減期の延長は得られているものの、フィブリンに対
する親和性が低下してしまっており、その結果として、
血栓に対する溶解特性に関して、従来のTPAを凌ぐも
のにはなっていない。E, B. (1987) Pharmaceutical Research
ch), vol. 4, p. 375]. However, the biggest drawback of TPA is its rapid release from the bloodstream. It is estimated that TPA administered into the bloodstream is mainly metabolized in the liver (Fuchs, E., et al. (1985) Bfood, Vol. 65, p. 539). Its half-life in the blood is (Collen, D., et al. (1985)).
ion) Volume 72, Page 384]. Therefore, treatment of thrombosis requires administration of large amounts of TPA. Thrombosis treatment by administering large amounts of proteins such as TPA is not only an extremely expensive treatment, but also involves the worrying problem of side effects due to antigen-antibody reactions. Therefore, chemical modification of TPA molecules (WO8410178B) (JP-A-63
-06983 ) (Berger, H, et al. (198
3rd year) Blood Volume 71, page 1641]
, Enzymatic modification (JP 62-282582) (EP
0253582 AL) or genetic engineering modification (JP-A-61-243024, JP-A-62-13069)
0, JP-A-62-272976, JP-A-62-2696
88, JP-A-62-282582, JP-A-64-633
79) et al., attempts have been made to create TPA derivatives with improved persistence in blood, ie, long half-life in blood. However, although the new TPAs developed to date have extended blood half-lives, their affinity for fibrin has decreased, and as a result,
It does not surpass conventional TPA in terms of its dissolving properties against blood clots.
TPAはフィブリンに対する強い親和性とその活性のフ
ィブリン依存性のために血栓特異的に作用すると考えら
れている。しかしながらその血中半減期が著しく短いた
め血栓治療には大量投与が必要でありその結果出血傾向
等の副作用が問題になってきた。化学修飾、酵素修飾、
遺伝子工学的手法等によって、多くの血中持続性の向上
したTPA誘導体が発明されている。しかし血中持続性
が大幅に向上した反面、TPAの特徴的な性質であるフ
ィブリン親和性の極端な低下が認められ、優れた治療効
果を示すには至っていない。また改変によりTPAとし
ての酵素活性が著しく低下している例もある。TPAの
特徴的な性質であるフィブリン親和性や、フィブリンに
よる活性化能が向上し、かつTPA本来の特性をできる
だけ保持したTPA誘導体は、より少量の投与での血栓
治療が期待でき、その開発の意義は極めて大きい。TPA is thought to act specifically on blood clots due to its strong affinity for fibrin and the dependence of its activity on fibrin. However, since its half-life in the blood is extremely short, large doses are required for thrombosis treatment, and as a result, side effects such as bleeding tendency have become a problem. chemical modification, enzymatic modification,
Many TPA derivatives with improved blood persistence have been invented using genetic engineering techniques and the like. However, although the persistence in the blood has been greatly improved, an extreme decrease in fibrin affinity, which is a characteristic property of TPA, has been observed, and it has not yet shown an excellent therapeutic effect. There are also cases where the enzymatic activity as TPA is significantly reduced due to modification. TPA derivatives that have improved fibrin affinity, which is a characteristic property of TPA, and activation ability by fibrin, and retain as much of the original properties of TPA as possible, can be expected to treat blood clots with smaller doses, and are expected to be developed. The significance is extremely large.
本発明は、TPAの特徴的な性質であるフィブリン親和
性やフィブリンによる活性化能を強化することにより、
フィブリン溶解能の強力な、グリコジル化された新規T
PA誘導体の発見に基ずく。The present invention improves the fibrin affinity and activation ability by fibrin, which are the characteristic properties of TPA.
Novel glycosylated T with strong fibrinolytic ability
Based on the discovery of PA derivatives.
本発明は、該TPA誘導体、該TPA誘導体を産生ずる
動物培養細胞の作製性及び該動物培養細胞を利用した該
TPA誘導体の製造方法を提供するものである。The present invention provides the TPA derivative, the ability to produce cultured animal cells that produce the TPA derivative, and a method for producing the TPA derivative using the cultured animal cell.
TPAはN末端からフィンガー領域、成長因子領域、ク
リングル1.クリングル2及びセリンプロテアーゼ活性
を有する領域の5つの領域からなる( Penn le
a 、 Dら(1983年)ネイチャー(Nature
) 301巻、214頁)。TPAのクリングル2領域
は、TPAのフィブリン親和性やフィブリンによる活性
化に関与していると言われているが、クリングル1領域
は、その欠失誘導体の研究からもその機能が不明であり
、その解析が待たれていた。本発明者らは、クリングル
1領域にクリングル2領域の持つフィブリン親和性やフ
ィブリンによる活性化などの機能を付与することにより
、TPAの特徴的な性質であるフィブリン親和性やフィ
ブリンによる活性化能を更に強化し、フィブリン溶解能
の優れた新規TPA誘導体を作製した。TPA extends from the N-terminus to the finger region, growth factor region, kringle 1. Consists of five regions: kringle 2 and a region with serine protease activity (Penn le
a, D et al. (1983) Nature
) Volume 301, page 214). The kringle 2 region of TPA is said to be involved in TPA's fibrin affinity and activation by fibrin, but the function of the kringle 1 region is unclear, even from studies of deletion derivatives, and its Analysis was awaited. The present inventors have demonstrated that by imparting the fibrin affinity and activation by fibrin, which are the characteristic properties of TPA, to the kringle 1 region, the functions of the kringle 2 region, such as fibrin affinity and activation by fibrin, can be improved. A new TPA derivative with excellent fibrinolytic ability was further strengthened.
以下、本発明の詳細な説明する。本発明は、TPA誘導
体の作製に関するものであり、遺伝子工学的手法を持つ
て達成されるものである。したがって改良型TPAの作
成にはTPAのアミノ酸配列をコードするDNA配列が
不可欠である。そのようなりNA配列の取得は、TPA
cDNAあるいは染色体DNAのクローニング、あるい
はTPAcDNA、染色体DNAやTPAアミノ酸配列
配列とにDNAを化学合成することによって達成できる
。TPAcDNAは、ベニ力等(Penn tea 、
D 、ら(1983年)ネイチャー(Nature)
301巻、214頁〕が単離している。The present invention will be explained in detail below. The present invention relates to the production of TPA derivatives, and is achieved using genetic engineering techniques. Therefore, a DNA sequence encoding the amino acid sequence of TPA is essential for the production of improved TPA. Obtaining such a NA sequence can be accomplished using TPA
This can be achieved by cloning cDNA or chromosomal DNA, or by chemically synthesizing DNA into TPA cDNA, chromosomal DNA, or TPA amino acid sequence. TPA cDNA was prepared by Penn tea, et al.
D., et al. (1983) Nature.
Vol. 301, p. 214] has been isolated.
TPAのアミノ酸配列およびcDNAに対する番号付け
は、彼等が提案しているものに従った。TPA染色体D
NAはエイ等(Ny、 T、 ら(1984年)プロ
シーディング オブ ザ ナショナル アカデミ−オブ
サイエンス ニーニスエイ(Proceedlng
of’ the Nathlonal Academy
orScience USA) 81巻、5355頁〕
とブラウンら(Brovn、M、J 、ら(1985年
)ジーン(Gene) 33巻、279頁Jとデーゲン
ら(Deg、en、s、J、F、ら(1986年)ザ
ジャーナル オブバイオロジカル ケミストリー(Th
e JournalorBiolodleal Chc
vistry) 261巻、6972頁〕がそれぞれ
単離している。TPA染色体遺伝子のエクソンに対する
番号付けは、エイらに従うことにする。本発明者らは、
染色体DNA利用発現ベクターpsVePA−1,(特
開昭62−14783)によって形質転換されたCll
0−Kl細胞よりmRNAを抽出し、cDNAの合成お
よびクローニングを行なった。実施例1にあるように新
たに取得したTPAcDNAおよびpsVePA−1に
含まれる染色体DNAを利用してTPA誘導体作成の基
本となる発現ベクターpsVecP^−1が作成できた
。発現ベクターpSVeCP^−Lは、TPA遺伝子の
上流にSV40ウィルスの初期プロモーターがTPA遺
伝子が発現可能な形で存在しており、動物細胞に導入さ
れた際、TPAあるいはTPA誘導体が生産しつるよう
に設計されている。もちろんプロモーターとしてはSV
40以外にTPA遺伝子を発現可能なものならなんでも
利用可能であろう。発現ベクターPSVeCPA−1を
利用した上記TPA誘導体発現ベクターの作成方法につ
いては実施例2に詳細に記した。The amino acid sequence of TPA and the numbering for the cDNA followed what they proposed. TPA chromosome D
NA is Ny et al. (1984) Proceedings of the National Academy of Sciences.
of' the Nathlonal Academy
orScience USA) Volume 81, Page 5355]
and Brovn, M. J. et al. (1985) Gene vol. 33, p. 279 J. and Degen et al. (1986) The
Journal of Biological Chemistry (Th
e Journalor Biolod Real Chc
vistry) volume 261, page 6972] have been isolated. Numbering for exons of the TPA chromosomal gene follows Ei et al. The inventors
Cll transformed with the chromosomal DNA-based expression vector psVePA-1 (Japanese Patent Application Laid-Open No. 14783/1983)
mRNA was extracted from 0-Kl cells, and cDNA was synthesized and cloned. As described in Example 1, the expression vector psVecP^-1, which is the basis for producing TPA derivatives, was constructed using the newly obtained TPA cDNA and the chromosomal DNA contained in psVePA-1. The expression vector pSVeCP^-L has the SV40 viral early promoter upstream of the TPA gene in a form that allows the TPA gene to be expressed, and when introduced into animal cells, TPA or TPA derivatives are produced. Designed. Of course, as a promoter, SV
Anything other than 40 that can express the TPA gene may be used. The method for creating the above TPA derivative expression vector using the expression vector PSVeCPA-1 was described in detail in Example 2.
(発現ベクターの動物培養細胞への導入とTPA誘導体
生産細胞の作成)
動物細胞へのDNAの導入法として、トランスフェクシ
ョン効率に差はあるが、リン酸カルシウム法「Wlgl
er、M、ら(1977年) セル(Cell)11巻
、233頁J、マイクロインジェクション法(Ande
rson、 l/、F、ら(1989年)プロシーディ
ング オブ ザ ナショナル アカデミーオブ サイエ
ンス ニーニスニー(1’4上)77巻、5399頁〕
リボゾーム法、DEAE−デキストラン法或いは細胞
融合法(5chorrner、W、ら(1980年)プ
ロシーディング オブ ザ ナショナル アカデミ−オ
ブ サイエンス ニーニスニー(同上)77巻、216
3頁〕、電気導入法〔達家雅明ら、(1987年)細胞
工学、6巻、494頁〕などが利用できる。TPA誘導
体発現ベクターを細胞に導入後、適当な選択マーカー遺
伝子によって獲得した形質により形質転換株を得ること
ができる。動物細胞での選択マーカ遺伝子としては、E
cogpt (Mulllgaan、R,C,ら(19
80年)サイエンス(Science) 、 209巻
、1422頁) 、 neo (Southern、
P、J、ら(1982年)ジャーナル オブ モレキュ
ラーアンド アプライド ジエネティクス(Journ
alor Mo1ecular and AppHed
Genetics) 1巻、327頁] 、 dhf
’r (Wigler、M、ら(1980年)プロシー
ディング オブ ザ ナショナル アカデミ−オブ サ
イエンス ニーニスニー(同上)77巻、327頁〕等
の遺伝子が用いられる。TPA誘導体発現ベクターは、
ごれら選択マーカー遺伝子を同一プラスミド内に含んで
いてもあるいは別のプラスミドであっても形質転換株の
取得は可能である。得られた形質転換株がTPA誘導体
を生産するか否かは、それぞれの形質転換細胞の培養液
に含まれるプラスミノーゲン活性化活性を測定すること
によって決定できる。(Introduction of expression vector into cultured animal cells and creation of TPA derivative-producing cells) As a method for introducing DNA into animal cells, although there are differences in transfection efficiency, the calcium phosphate method “Wlgl
er, M. et al. (1977) Cell vol. 11, p. 233 J. Microinjection method (Ande.
Rson, L/F, et al. (1989) Proceedings of the National Academy of Sciences Nynisny (1'4 top) vol. 77, p. 5399]
Ribosome method, DEAE-dextran method or cell fusion method (5chorrner, W, et al. (1980) Proceedings of the National Academy of Sciences Ninnisny (ibid.) Vol. 77, 216
3 p.], the electric introduction method [Masaaki Tatsuie et al. (1987) Cell Engineering, Vol. 6, p. 494], etc. can be used. After introducing the TPA derivative expression vector into cells, a transformed strain can be obtained based on the traits acquired by an appropriate selection marker gene. As a selectable marker gene in animal cells, E
cogpt (Mullgaan, R.C., et al. (19
1980) Science, vol. 209, p. 1422), neo (Southern,
P, J, et al. (1982) Journal of Molecular and Applied Genetics
alor Molecular and Apphed
Genetics) Volume 1, Page 327], dhf
'r (Wigler, M., et al. (1980) Proceedings of the National Academy of Sciences Ninisny (ibid.) Vol. 77, p. 327) and the like are used. The TPA derivative expression vector is
Transformants can be obtained even if the selection marker genes are contained in the same plasmid or in separate plasmids. Whether or not the obtained transformed strain produces a TPA derivative can be determined by measuring the plasminogen activation activity contained in the culture solution of each transformed cell.
(TPA誘導体の精製)
TPA誘導体生産株の培養は、宿主となる動物細胞株に
応じた培養法にて行なうことができる。(Purification of TPA derivative) The TPA derivative producing strain can be cultured by a culture method depending on the animal cell line used as the host.
培養上清からのTPA誘導体の回収精製は、CPG1キ
レ−ティング セファロース、Con−Aセファロース
、イオン交換体、オクチル セファロース、セファデッ
クスゲルでのクルマドグラフィ、抗体カラムクロマトグ
ラフィーや電気泳動等を用いて行なうことができる。プ
ラスミノーゲン活性化能は、プラスミノーゲン含有フィ
ブリン平板を用いる方法(Hackle、M、ら(19
81年)ブリティッシュ ジャーナル オプ ヘマトロ
ジ−(Brltlsh Journal orHema
torogy) 47巻、77頁)やプラスミンの合成
基質S−2251の分解を測定する方法(Allen、
R,A、とPepper 、 D、S 。Recovery and purification of TPA derivatives from culture supernatants is carried out using CPG1 chelating Sepharose, Con-A Sepharose, ion exchangers, octyl Sepharose, chromatography on Sephadex gels, antibody column chromatography, electrophoresis, etc. can be done. Plasminogen activation ability was determined by a method using a plasminogen-containing fibrin plate (Hackle, M., et al. (1999).
1981) British Journal of Hematology (Brltlsh Journal or Hema)
47, p. 77) and a method for measuring the degradation of plasmin's synthetic substrate S-2251 (Allen,
R.A., and Pepper, D.S.
(1981年)トロンボシス アンド へモスタシス(
Throa+bos1s and l1aeIIlos
tasls)45巻、43頁)CLT法(Gaff’n
ey、P、T、とCurtIs、A、D。(1981) Thrombosis and hemostasis (
Throa+bos1s and l1aeIIlos
tasls) Volume 45, Page 43) CLT method (Gaff'n
ey, P.T., and CurtIs, A.D.
(1985年)トロンボシス アンド へモスタシス(
同上)53巻、134頁)ELISA法(tlolvo
est、T、ら(1985年)トロンボシスアンド へ
モスタシス(同上)54巻、684頁〕によって測定で
きる。(1985) Thrombosis and hemostasis (
Same as above) Volume 53, p. 134) ELISA method (tlolvo
est, T. et al. (1985) Thrombosis and Hemostasis (ibid.) Vol. 54, p. 684].
(血栓溶解能の評価)
本発明が提示するTPA誘導体は、血栓の溶解にかかわ
る性質、すなわちフィブリン親和性、酵素活性のフィブ
リン依存性、血中持続性、プラスミノーゲン活性化能、
インビトロ血栓分解能の性質の幾つかにおいて改善され
た性質を持つ。フィブリン親和性は、フィブリンクロッ
トへの取込みを指標とする方法に従って測定することが
できる。(Evaluation of Thrombolytic Ability) The TPA derivative proposed by the present invention has properties related to thrombus dissolution, namely, fibrin affinity, fibrin dependence of enzyme activity, persistence in blood, plasminogen activation ability,
It has improved properties in some of the properties of in vitro clot resolution. Fibrin affinity can be measured according to a method using incorporation into a fibrin clot as an indicator.
(Collen、D、 ら(1988年)ブラッド(
Bfood)71巻、216頁〕。インビトロ血栓溶解
能は、125I−ブイプリンからの放射“能の遊離を指
標する方法等によって測定することができる。〔Lar
−sen+G、R,ら(1988年)ザ ジャーナル
オブバイオロジカル ケミストリー(同上)263巻、
1023頁〕。酵素活性のフィブリン依存性あるいはプ
ラスミノーゲン活性化活性は、プラスミンの合成基質S
−2251を利用するコレンら(Collen、D、ら
(1982年)ザ ジャーナルオブ バイオロジカル
ケミストリー(同上)257巻、2912頁〕の方法に
て測定することができる。血中持続性に関しては、ベー
ベら[Beebe、D、P、ら(1986年)トロンボ
シス リサーチ(同上)43巻、663頁〕あるいはマ
ットソンら[Mattson、Ch、ら(1983年)
トロンボシス リサーチ(同上)30巻、91頁〕が報
告しており、それらに記載の方法で血中半減期が測定で
きる。(Collen, D. et al. (1988) Blood (
Bfood) volume 71, page 216]. In vitro thrombolytic ability can be measured by a method that uses as an indicator the release of radioactivity from 125I-buipurine. [Lar
-sen+G, R, et al. (1988) The Journal
Obbiological Chemistry (ibid.) vol. 263,
1023 pages]. Fibrin-dependent enzyme activity or plasminogen activation activity is caused by plasmin's synthetic substrate S.
Collen, D., et al. (1982) The Journal of Biological
Chemistry (ibid.) Vol. 257, p. 2912]. Regarding persistence in blood, see Beebe et al. [Beebe, D, P, et al. (1986) Thrombosis Research (ibid.) Vol. 43, p. 663] or Mattson et al. [Mattson, Ch, et al. (1983)].
Thrombosis Research (ibid.) Vol. 30, p. 91], and the blood half-life can be measured by the method described therein.
生体内における血栓溶解能に影響する因子は、ブイプリ
ン親和性、フィブリンによる活性化、プラスミノーゲン
活性化能、プロテアーゼ抵抗性、阻害剤感受性、血中持
続性など様々である。本発明が提供する新規TPA誘導
体は、天然型TPAに比べて改善されたフィブリン親和
性、プラスミノーゲン活性化能を持ち、天然型TPAを
上回るインビトロ血栓溶解能を保持している点で、心筋
梗塞等の血栓症の治療に用いることができ、現在試みら
れている治療方法を改善することができる。There are various factors that affect thrombolytic ability in vivo, such as buiprine affinity, activation by fibrin, plasminogen activation ability, protease resistance, inhibitor sensitivity, and persistence in blood. The novel TPA derivative provided by the present invention has improved fibrin affinity and plasminogen activation ability compared to natural TPA, and retains in vitro thrombolytic ability superior to natural TPA. It can be used to treat thrombosis such as infarction, and can improve currently attempted treatment methods.
以下に実施例を示すが、本発明に係わる諸実験は、内閣
総理大臣の定める1組換えDNA実験指針」に従って行
なった。また実施例中のファージプラスミド、DNA、
種々の酵素、大腸菌等を扱う詳しい諸操作は以下にあげ
る雑誌、底置を参考とした。Examples are shown below, and experiments related to the present invention were conducted in accordance with the "1 Recombinant DNA Experimental Guidelines" established by the Prime Minister. In addition, phage plasmids, DNA,
For detailed operations involving various enzymes, Escherichia coli, etc., I referred to the magazines and books listed below.
1、蛋白質 核酸 酵素、26巻、4号、(1981年
)臨時増刊 遺伝子操作(載支出版2、遺伝子操作実験
法、高木康敬 編著(1980年)講談社
3、遺伝子操作マニュアル、゛高木康敬 編著(198
2年)講談社
4、 Mo1ecular Clonlng a 1
aboratory manual、T、manlat
ls ら編(1982年) Co1d Springl
larbor Laboratory5、 Metho
ds 1n Enzyo+ology、65巻、L、G
rossmaa+ら編(1980年) AcadelI
lic Press6、 Methods In En
zymology、68巻、R,Wu編(1979年)
^cadea+Ic Press実施例1
TPA発現ベクターpsVecPA−Lの作成TPA発
現ベクターpsVecPA−1は以下に記述するステッ
プを経て作成した。1. Proteins, Nucleic Acids, Enzymes, Vol. 26, No. 4, (1981) Extra Edition Genetic Manipulation (Publication Edition 2, Genetic Manipulation Experimental Methods, edited by Yasutaka Takagi (1980) Kodansha 3, Genetic Manipulation Manual, edited by Yasutaka Takagi ( 198
2nd year) Kodansha 4, Mo1ecular Clonlng a 1
laboratory manual, T, manlat
Edited by ls et al. (1982) Cold Springl
labor Laboratory5, Metho
ds 1n Enzyo+ology, Volume 65, L, G
Edited by Rossmaa+ et al. (1980) Acadell I
lic Press6, Methods In En
Zymology, Volume 68, edited by R. Wu (1979)
^cadea+Ic Press Example 1 Creation of TPA expression vector psVecPA-L TPA expression vector psVecPA-1 was created through the steps described below.
(1)TPAのcDNAクローンpCH79の作成
まず、染色体DNA利用TPA発現ベクターpsVec
PA−1(特開昭62−14783)を導入したCll
0−Kl細胞から、既知のグアニジン−ホットフェノー
ル法に準じ、トータルRNAを抽出した。(1) Creation of TPA cDNA clone pCH79 First, TPA expression vector psVec using chromosomal DNA
Cll introducing PA-1 (Japanese Unexamined Patent Publication No. 62-14783)
Total RNA was extracted from 0-Kl cells according to the known guanidine-hot phenol method.
次に、オリゴdTセルロースクロマトグラフィーにより
、ポリA mRNAを調製し、ショ糖濃度勾配遠心法
によって分子量分画してTPAのmRNAを含む画分を
得た。市販のcDNA合或キブト(アマジャム社製)に
この画分を供してcDNAを合成し、市販のλgtlO
利用cDNAクロニングキット(アマシャク社製)を用
いて、CDNAライブラリーを作成した。このライブラ
リーに対して、pSVeCP^−1を制限酵素Xbal
で切断、単離した第10.11及び12エクソンを含む
約2.5kbの断片をプローブとして用い、通常の方法
でプラークハイプリダイゼイションを行なって陽性ファ
ージを選択した。得られた陽性ファージDNAを調製し
、制限酵素HindIII(宝酒造(株)製)で消化後
アガロースゲル電気泳動を行なって、クローニングに用
いたと同じXball、 2 、5 k b断片をプロ
ーブとしてサザンハイプリダイゼイション法により解析
した。その結果、Cl7つと名ずけたクローンには、H
indIIIで約2.2kbに切断されるプローブ陽性
の断片が含まれていることが分かった。このHindl
lI約2.2kb断片をアガロースゲル電気泳動法にて
単離後、同じ<Hindmで消化したpUc19 (宝
酒造(株)製〕とT4DNAリガーゼを用いて連結後、
E、coll DIrLに導入してpCH79を作成し
た。このpCH79のcDNA部分の塩基配列をM13
法を利用した市販のキット〔宝酒造(株)製〕にて決定
した。5′末端に存在する発現ベクター由来のHind
m認識部位より約150bp下流にBgl■の認識部位
が存在し、塩基配列はその下流的1500bpの終止コ
ドンTGAまでbp584のCがT及びbpl 725
のAがCであった以外は、ペニカら(Penn1ca、
Dら(1983年)ネイチャー (Nature)
301巻、214頁〕が報告した塩基配列と一致してお
り、さらに、TGAコドンから約410塩基下流には発
現ベクターに由来するHindm部位が存在していた。Next, polyA mRNA was prepared by oligo-dT cellulose chromatography and subjected to molecular weight fractionation by sucrose gradient centrifugation to obtain a fraction containing TPA mRNA. This fraction was subjected to commercially available cDNA synthesis or KIBUTO (manufactured by Amajam) to synthesize cDNA, and commercially available λgtlO
A cDNA library was created using a cDNA cloning kit (manufactured by Amashaku). For this library, pSVeCP^-1 was digested with the restriction enzyme Xbal.
Using the approximately 2.5 kb fragment containing exons 10, 11 and 12, which had been cut and isolated as a probe, plaque hybridization was performed in a conventional manner to select positive phages. The resulting positive phage DNA was prepared, digested with the restriction enzyme HindIII (manufactured by Takara Shuzo Co., Ltd.), subjected to agarose gel electrophoresis, and subjected to Southern hybridization using the same Xball, 2, and 5 kb fragment used for cloning as a probe. Analysis was performed using the lysis method. As a result, the clones named 7 Cl contained H
It was found that it contained a probe-positive fragment that was cleaved with indIII to approximately 2.2 kb. This Hindl
After isolation of the lI approximately 2.2 kb fragment by agarose gel electrophoresis, ligation with pUc19 (manufactured by Takara Shuzo Co., Ltd.), which had been digested with the same <Hindm, using T4 DNA ligase,
E, coll DIrL was introduced to create pCH79. The base sequence of this cDNA part of pCH79 was converted to M13.
It was determined using a commercially available kit [manufactured by Takara Shuzo Co., Ltd.] using the method. Hind derived from the expression vector present at the 5' end
There is a recognition site for Bgl■ approximately 150 bp downstream from the m recognition site, and the base sequence is as follows: C at bp 584 is T and bpl 725 up to the stop codon TGA 1500 bp downstream.
Pennica et al. (Penn1ca,
D et al. (1983) Nature
301, p. 214], and furthermore, there was a Hindm site derived from the expression vector approximately 410 bases downstream from the TGA codon.
(2)TPA発現ベクターpsVecPA−1の作成p
sVecP^−1は、第1図に示した手順により作成し
た。 psVesall (特開昭62−1.4783
>を制限酵素Ncol(宝酒造(株)製)で切断後、
大腸菌内での複製起点およびアンピシリン耐性を付与す
る約4.7kb断片を単離し、さらにT4DNAリガー
ゼ(宝酒造(株)製)を用いて環状化後、E、colf
D旧に導入してPSVeSall −Hi n d
mを作成した。従って、このベクターはHindm認識
部位をはさんでSV40の複製起点を含む初期プロモー
ター領域とSV40のポリアデニル化シグナルを含む配
列がそれぞれ存在している。次に、pSVeSall
−Hi n d I[IをHindmにて切断後、ps
VecPA−1をHindIII及びBglII(宝酒
造(株)製)で切断、単離して得たTPA染色体DNA
の全第2エクソンと第3エクソンの一部を含む約1.9
kb断片と、pCH79を)iindm及びBglII
で切断したTPAcDNAを含む約2kb断片とをT4
DNAリガーゼにて連結後、 E、coliD旧に導入
してpsVecPA−1を作成した。このTPA発現ベ
クターpsVecP^−tは、第2エクソンから第3エ
クソンのBglI[認識部位までが染色体DNA由来で
あり、それ以降がcDNAより成り、天然型のTPAを
発現する遺伝子をコードしている。(2) Creation of TPA expression vector psVecPA-1
sVecP^-1 was created according to the procedure shown in FIG. psVesall (JP-A-62-1.4783
After cutting > with restriction enzyme Ncol (manufactured by Takara Shuzo Co., Ltd.),
An approximately 4.7 kb fragment that confers an origin of replication in E. coli and ampicillin resistance was isolated, and after circularization using T4 DNA ligase (manufactured by Takara Shuzo Co., Ltd.), E.
DIntroduced to old PSVeSall-Hi nd
m was created. Therefore, this vector contains an early promoter region containing the SV40 replication origin and a sequence containing the SV40 polyadenylation signal, sandwiching the Hindm recognition site. Next, pSVeSall
- Hin d I [After cutting I with Hindm, ps
TPA chromosomal DNA obtained by cutting and isolating VecPA-1 with HindIII and BglII (manufactured by Takara Shuzo Co., Ltd.)
Approximately 1.9 including all the second exon and part of the third exon of
kb fragment and pCH79) iindm and BglII
The approximately 2kb fragment containing TPA cDNA cut with T4
After ligation using DNA ligase, psVecPA-1 was created by introducing into E. coliD. This TPA expression vector psVecP^-t is derived from chromosomal DNA from the second exon to the third exon BglI [up to the recognition site, and the rest consists of cDNA, which encodes a gene that expresses natural TPA. .
実施例2
TPA誘導体発現ベクターpscKM−2及びpSCK
M−4の作製
(1)変異導入ベクターM13−NSの作製クリングル
1領域にアミノ酸置換を導入するための第一ステップと
して、まず変異導入ベクターの作製を行なった。発現ベ
クターpSVeCPA−1を制限酵素Narlにューイ
ングランド バイオラボ社製造)とSmal(宝酒造(
株)製)で切断し、アガロース電気泳動によって、約t
、tkbの断片を分離した。また、M13mpH(宝酒
造(株))を制限酵素NarlとSma 1で切断した
。これらの約1.1kbの断片とM13mpHを、T4
DNAリガーゼにて連結後、E、col 1DH1に導
入してMl3−NSを作製した。この変異導入ベクター
M13−NSは、TPAのクリングル1領域にあるアミ
ノ酸110番目のグリシンから、プロテアーゼ領域にあ
るアミノ酸508番目のプロリンに相当するcDNAを
コードしている。Example 2 TPA derivative expression vector pscKM-2 and pSCK
Preparation of M-4 (1) Preparation of mutation introduction vector M13-NS As the first step for introducing amino acid substitution into the kringle 1 region, a mutation introduction vector was first prepared. Expression vector pSVeCPA-1 was added to the restriction enzyme Narl by New England Biolab Co., Ltd. and Smal (Takara Shuzo Co., Ltd.).
Co., Ltd.), and by agarose electrophoresis, approximately t
, tkb fragments were isolated. Additionally, M13mpH (Takara Shuzo Co., Ltd.) was cleaved with restriction enzymes Narl and Sma1. These approximately 1.1 kb fragments and M13mpH were combined with T4
After ligation with DNA ligase, it was introduced into E. col 1DH1 to produce M13-NS. This mutation introduction vector M13-NS encodes a cDNA corresponding to amino acid 110th glycine in the kringle 1 region of TPA to amino acid 508th proline in the protease region.
(2)部位特異的アミノ酸置換反応
クリングル1領域にアミノ酸置換を導入するため、まず
変異導入ベクターM1B−NSより一本鎖のDNAを調
製した。そして次に、部位特異的アミノ酸置換反応に用
いる合成DNAプローブとして、
(a ) 5’ −TTCTGGGCCAACGCC
ATGCTGTTCCAGGGGGTGCACTCGG
C−3’ 及び
(、b ) 5’ −TGCTGCAGAACTCC
CAGCTGTACCTCCTCGCCTT^AAGA
CG−3’
の配列を持つものを作製した、この合成DNAプローブ
を用いることにより、(a)アミノ酸115番目のアス
パラギンと119番目のセリンを、それぞれプロリンと
メチオニンに、及び(b)アミノ酸161番目のグリシ
ン、162番目のリジン、及び165番目のセリンを、
それぞれアルギニン、アルギニン、及びトリプトファン
に置換することができる。この合成りNAプローブのN
末端を、T4ポリヌクレオチド キナーゼ(宝酒造(株
)製)を用いてリン酸化した。(2) Site-specific amino acid substitution reaction In order to introduce an amino acid substitution into the kringle 1 region, a single-stranded DNA was first prepared from the mutation introduction vector M1B-NS. Next, as a synthetic DNA probe used for site-specific amino acid substitution reaction, (a) 5'-TTCTGGGCCAACGCC
ATGCTGTTCCAGGGGGGTGCACTCGG
C-3' and (,b)5'-TGCTGCAGAACTCC
CAGCTGTACCTCCTCGCCTT^AAGA
By using this synthetic DNA probe prepared with the sequence CG-3', (a) asparagine at amino acid position 115 and serine at position 119 were converted to proline and methionine, respectively, and (b) amino acid position 161 was converted to proline and methionine, respectively. glycine at position, lysine at position 162, and serine at position 165,
Each can be substituted with arginine, arginine, and tryptophan. The N of this synthetic NA probe
The ends were phosphorylated using T4 polynucleotide kinase (manufactured by Takara Shuzo Co., Ltd.).
調製したMl 3−NSの1本鎖DNAと変異用合成り
NAプローブより、市販のインビトロ変異システム キ
ット(アマジャム社製)を用いて部位特異的変異反応を
行ない、E、coli TGIに導入してMl 3−N
5M2、及びMl3−N3M4を作製した。このMl3
−N8M2、及びMl 3−N5M4より1本鎖DNA
を調製し、MlBを利用した市販のキット(同上)を用
いて変異の確認を行なったところ、(a)アミノ酸11
5番目のアスパラギンと119番目のセリンに対応する
DNA配列−AACTGGAACAGCAGC−が、そ
れぞれプロリン及びメチオニンに対応する一CCCTG
GAACAGCATG−に、そして(b)アミノ酸16
1番目のグリシン、162番目のリジン、及び165番
目のセリンに対応するDNA配列−GGG^^GTAC
AGCTCA−が、それぞれアルギニン、アルギニン、
及びトリプトファンに対応するーAGGAGGTACA
GCTGG−に変異していることが確認できた。Using the prepared Ml 3-NS single-stranded DNA and a synthetic NA probe for mutation, a site-specific mutation reaction was performed using a commercially available in vitro mutation system kit (manufactured by Amajam), and the resultant was introduced into E. coli TGI. Ml 3-N
5M2 and Ml3-N3M4 were produced. This Ml3
- Single stranded DNA from N8M2 and Ml 3-N5M4
was prepared and the mutations were confirmed using a commercially available kit using MIB (same as above). (a) Amino acid 11
The DNA sequence corresponding to asparagine at position 5 and serine at position 119 - AACTGGAACAGCAGC - corresponds to proline and methionine, respectively.
to GAACAGCATG-, and (b) amino acid 16
DNA sequence corresponding to glycine at position 1, lysine at position 162, and serine at position 165 - GGG^^GTAC
AGCTCA- is arginine, arginine,
and tryptophan -AGGAGGTACA
It was confirmed that it had mutated to GCTGG-.
(3)TPA誘導体発現ベクターpSCKM−2、及び
pscKM−4の作製
TPA誘導体発現ベクターpscKM−2、及びpSC
KM−4の作製は、以下の手順に従って行なった。まず
、Ml B−N8M2及びMl3−N3M4を制限酵素
NarlとSma 1で切断し、アガロース電気泳動に
よって、約1.lkbの断片を分離した。(3) Preparation of TPA derivative expression vector pSCKM-2 and pscKM-4 TPA derivative expression vector pscKM-2 and pSC
KM-4 was produced according to the following procedure. First, Ml B-N8M2 and Ml3-N3M4 were digested with restriction enzymes Narl and Sma 1, and subjected to agarose electrophoresis. The lkb fragment was isolated.
次に、psVecPA−1を制限酵素NarlとSma
1で切断し、アガロース電気泳動によって、約7kb
の断片を分離した。そして、これらの両断片をT4DN
Aリガーゼによって連結後1、E、collに導人して
pscKM−2、及びpscKM−4を作製した。Next, psVecPA-1 was combined with restriction enzymes Narl and Sma
1, and by agarose electrophoresis, approximately 7kb
fragments were isolated. Then, both of these fragments were transformed into T4DN
After ligation with A ligase, 1, E, and coll were introduced to produce pscKM-2 and pscKM-4.
実施例3
マーカーベクターpsV2neo−dhfrの作成ps
V2neo−dhf’rは以下の手順で作成した。ps
V2dhrr(アメリカン タイプカルチャーコレクシ
ョン rDNAVectors 8714B)を制限酵
素PvuII(宝酒造(株)製)で切断し、そこにBa
mtll リンカ−d (pCGGATCCG) (
宝酒造(株)製)をT4DNAリガーゼで連結後E、c
ollDl(lに導入してpsV2−dhrrを作成し
た。psV2Bdhl’rをBamHlで消化して得ら
れるdhfr遺伝子を含む約2kbの断片をアガロース
電気泳動法により調製し、psV2neo(アメリカン
タイプカルチャー コレクション rDNA Vec
tors 37149)をBamHl (宝酒造(株)
製)で切断したcDNAとをT4DNAリガーゼを用い
て環状化後、E、coliDtllに導入し、neoと
dhfr遺伝子が同発現方向に挿入されたpsV2ne
o−dhf’rを作成した。Example 3 Creation of marker vector psV2neo-dhfr ps
V2neo-dhf'r was created using the following procedure. ps
V2dhrr (American Type Culture Collection rDNA Vectors 8714B) was cut with restriction enzyme PvuII (manufactured by Takara Shuzo Co., Ltd.), and Ba
mtll linker-d (pCGGATCCG) (
Takara Shuzo Co., Ltd.) after ligation with T4 DNA ligase E, c
psV2-dhrr was created by introducing psV2-dhrr into psV2neo (American Type Culture Collection rDNA Vec
tors 37149) to BamHL (Takara Shuzo Co., Ltd.)
After circularizing the cDNA cut using T4 DNA ligase, it was introduced into E.coliDtll to generate psV2ne in which the neo and dhfr genes were inserted in the same expression direction.
o-dhf'r was created.
実施例4
TPA発現ベクターの動物培養細胞への導入とTPAの
生産
TPA発現ベクターpscKM−2及びpSCKM−4
をCHO−Kl (ATCC,CCL−61>を宿主と
して、チェノら(Chen、C,and Okayam
a、H,ら(1987年)モレキュラー アンド セル
ラー バイオロジー(Hotecular and C
e1lular Biology)7巻、2745頁〕
の方法に準じて形質転換を行なった。即ち、プラスミド
〔TPA発現ベクター pscKM−2又ハpSCKM
−4:pSV2neo−dhfr−10:1 (重量
比)〕−リン酸カルシウム共沈澱物を予め5%牛脂児血
清(F CS’)含むMD培地(MCDB3(12:ダ
ルベツコ変法MEM−1:1、シグマ)で生育させた細
胞(2X105細胞/10m1培地/直径10(2)培
養皿)に加え、15時間後に培地を洗浄して更新した。Example 4 Introduction of TPA expression vector into cultured animal cells and production of TPA TPA expression vectors pscKM-2 and pSCKM-4
using CHO-Kl (ATCC, CCL-61) as a host, Cheno et al.
a, H, et al. (1987) Molecular and Cellular Biology.
e1lular Biology) Volume 7, Page 2745]
Transformation was performed according to the method of . That is, plasmid [TPA expression vector pscKM-2 or pSCKM
-4: pSV2neo-dhfr-10:1 (weight ratio)] - MD medium (MCDB3 (12: Dulbecco's modified MEM-1:1, Sigma ) (2×10 cells/10 ml medium/10(2) diameter culture dishes) and the medium was washed and refreshed after 15 hours.
さらに48時間、培地を800μg/m10418硫酸
塩(ギブコ)、7ff1M ε−アミノカプロン酸、5
0μMフォイバン(小野薬品工業)を含むMD培地に変
え、さらに約2週間培養を続けG418耐性株を分離し
た。6418耐性株を24穴マルチデイツシユ(コーニ
ング社製)の底面全体に生育させ、上記培地で24時間
培養し、これらの発現ベクターによって生産される変異
型TPA、それぞれKM−2,KM−4の活性をプラス
ミノーゲン含有フィブリン平板を用いて測定した( H
ackle、Mら(1981年)ブリティッシュ ジャ
ーナルオブ ヘマトロジ−(Brftlsh Jour
nal of l1ettrato+ogy) 47巻
、77頁〕。For an additional 48 hours, the medium was supplemented with 800 μg/m 10418 sulfate (Gibco), 7ff1M ε-aminocaproic acid, 5
The medium was changed to MD medium containing 0 μM Foiban (Ono Pharmaceutical Co., Ltd.), and culture was continued for about 2 weeks to isolate a G418-resistant strain. The 6418-resistant strain was grown on the entire bottom of a 24-well multi-dish (Corning Inc.) and cultured in the above medium for 24 hours. Activity was measured using fibrin plates containing plasminogen (H
Ackle, M. et al. (1981) British Journal of Hematology.
volume 47, page 77].
実施例5
形質転換株のメソトレキセート(Mtx)による選択及
び培養
実施例4で得たpscKM−2又はpscKM−4の形
質転換株を直径10clI+の培養皿に1×103から
1×105m(7)細胞を植え1100nから1ooo
nMのM t xを含むMD培地で約2週間培養を続け
、Mtxに対して耐性を示す株を分離した。これらの耐
性株が24時間あたり生産するKM−2の量を実施例4
に示した様にブイプリン平板法にて測定した。表−1に
は実施例4および5で得られたKM−2又はKM−4の
生産株芯及びその力価を示した。M t xで選択した
細胞からは親株よりも高いTPA生産性を示す株が得ら
れた。また、これらの細胞はMD無血清培地(MD培地
、7mM ε−アミノカプロン酸、50μMフォイバ
ン 1mg/if牛血清アルブミン 5μg/mlイン
シュリン)においてもTPAを生産した。Example 5 Selection and cultivation of the transformed strain with methotrexate (Mtx) The transformed strain of pscKM-2 or pscKM-4 obtained in Example 4 was placed in a culture dish with a diameter of 10 clI+ at 1×10 3 to 1×10 5 m (7) cells. Planted from 1100n to 1ooo
Culture was continued for about 2 weeks in MD medium containing nM Mtx, and a strain showing resistance to Mtx was isolated. Example 4 shows the amount of KM-2 produced by these resistant strains per 24 hours.
Measurements were made using the V-Prinn plate method as shown in . Table 1 shows the production strain cores of KM-2 or KM-4 obtained in Examples 4 and 5 and their titers. A strain exhibiting higher TPA productivity than the parent strain was obtained from the cells selected with M t x. These cells also produced TPA in MD serum-free medium (MD medium, 7mM ε-aminocaproic acid, 50μM Foiban 1mg/if bovine serum albumin 5μg/ml insulin).
表1
KM
2及びKM
4生産株
株
名
TPA力価
〔μg/ml〕
M t x濃度
(nM)
(KM−2生産株)
KM−2004
KM−2005
KM−2006
KM−2009
KM−2010
KM−2012
KM−2013
KM−2014
KM−2015
KM−2100
KM−2101
KM−2102
KM−2800
KM−2601
KM −2ff03
0.22
0.18
0.16
0.16
0.24
0.18
0.10
0、(6
0、(9
1,00
0,40
0,44
(,60
0,95
0,38
00
00
00
00
00
00
(KM−4生産株)
KM−4003
KM−4004
KM−4005
KM−4006
KM−4007
KM−4012
KM−4013
KM−4014
KM−4015
KM−4101
KM−4102
KM−4to 3
KM−4104
KM−4105
KM−4106
KM−4109
KM−4801
KM−4805
KM−4808
0,55
0,30
0,80
0,22
0,17
0、I4
0.18
0.25
0.18
0.32
0.25
0.29
0.85
1.20
1.30
0.53
0.80
0゜90
0.90
00
to 0
00
00
00
00
00
00
00
00
実施例6
KM−2およびKM−4の回収、精製
以下にTPA誘導体KM−2及びKM−4の回収、精製
の工程を示す。工程途中のTPA抗原の検出には、市販
のELISAキット(IMUBINDTPA ELIS
A KIT、アメリカンダイグツステイカ社製)を用い
た。KM−2601株またはKM−4801を実施例5
で示したMD無血清培地にて培養し、KM−2またはK
M−4を含む培養液を、INNact、50μMフォイ
パンを含む20+Mリン酸緩衝液(pH7,5)にて平
衡化したCPG−10(エレクトロヌクレオニクス社製
)カラムにチャージし、平衡化に用いたと同じ緩衝液に
て洗浄した。Table 1 KM 2 and KM 4 producing strains Strain name TPA titer [μg/ml] M t x concentration (nM) (KM-2 producing strain) KM-2004 KM-2005 KM-2006 KM-2009 KM-2010 KM- 2012 KM-2013 KM-2014 KM-2015 KM-2100 KM-2101 KM-2102 KM-2800 KM-2601 KM -2ff03 0.22 0.18 0.16 0.16 0.24 0.18 0.10 0 , (6 0, (9 1,00 0,40 0,44 (,60 0,95 0,38 00 00 00 00 00 00 (KM-4 production strain) KM-4003 KM-4004 KM-4005 KM-4006 KM-4007 KM-4012 KM-4013 KM-4014 KM-4015 KM-4101 KM-4102 KM-4to 3 KM-4104 KM-4105 KM-4106 KM-4109 KM-4801 KM-4805 KM-4808 0,55 0 ,30 0,80 0,22 0,17 0,I4 0.18 0.25 0.18 0.32 0.25 0.29 0.85 1.20 1.30 0.53 0.80 0゜90 0.90 00 to 0 00 00 00 00 00 00 00 00 Example 6 Recovery and purification of KM-2 and KM-4 The steps for recovery and purification of TPA derivatives KM-2 and KM-4 are shown below. During the process For the detection of TPA antigen, a commercially available ELISA kit (IMUBINDTPA ELIS
A KIT (manufactured by American Daigutsu Stayka) was used. KM-2601 strain or KM-4801 in Example 5
KM-2 or K
A culture solution containing M-4 was charged onto a CPG-10 (manufactured by Electronucleonics) column equilibrated with a 20+M phosphate buffer (pH 7,5) containing INNact and 50 μM Foipane, and used for equilibration. Washed with the same buffer.
CPG−10カラムを通過した培養液および洗浄液中に
KM−2又はKM−4はほとんど検出されなかった。C
PG−10カラムよりKM−2及びKM−4をLM N
aCI、 0.5M KSCN、 I Mε−アミ
ノカプロン酸および50μMフォイパンを含む20mM
リン酸緩衝液(pH7,5)にて溶出した。Almost no KM-2 or KM-4 was detected in the culture solution and washing solution that passed through the CPG-10 column. C
KM-2 and KM-4 were LM N from a PG-10 column.
aCI, 0.5M KSCN, 20mM containing IMε-aminocaproic acid and 50μM Foipan
Elution was performed with phosphate buffer (pH 7.5).
溶出液をそのままIMNaCl、 0.01%Tve
en80および50uMフォイバンを含む201Mリン
酸緩衝液(pH7,5)にて平衡化したConA−8e
pharose(ファルマシア社製)カラムにチャージ
した。平衡化に用いたと同じ緩衝液にて洗浄後、2MK
SCN 、 0.4Mα−メチルマンノシド、 0
.01%Tveen80および50μMフォイパンを含
む20mMリン酸緩衝液(pH7,5)にて溶出した。The eluate was directly mixed with IM NaCl, 0.01% Tve.
ConA-8e equilibrated with 201M phosphate buffer (pH 7,5) containing en80 and 50uM Foiban
A pharose (manufactured by Pharmacia) column was charged. After washing with the same buffer used for equilibration, 2MK
SCN, 0.4M α-methylmannoside, 0
.. Elution was performed with 20 mM phosphate buffer (pH 7.5) containing 01% Tveen 80 and 50 μM Foipan.
ELISAを利用してConA 5epharoseの
通過培養液、洗浄液および溶出液中に含まれるTPA抗
原を検出したところ、KM−2及びKM−4はほとんど
ConA 56plHroseに吸着し、溶出回収され
ていることが分かった。When the TPA antigen contained in the passage culture solution, washing solution, and eluate of ConA 5epharose was detected using ELISA, it was found that most of KM-2 and KM-4 were adsorbed to ConA 56plHrose and were eluted and recovered. Ta.
同溶出液に含まれるTPA蛋白質をEL I SA法に
て測定したところ、KM−2及びKM−4はKM−26
01株、KM−4801株の培養成約5、OL 、約6
.OLより、それぞれ12.3B及び4.lff1gが
回収、精製されていることが分かった。When the TPA protein contained in the same eluate was measured by ELISA method, KM-2 and KM-4 were compared to KM-26.
Culture of 01 strain and KM-4801 strain: approx. 5, OL, approx. 6
.. From OL, 12.3B and 4. It was found that lff1g was recovered and purified.
実施例フ
インビトロでのフィブリン親和性
KM−2及びKM−4のインビトロでのフィブリン親和
性を、コレンら(同上)の方法によって測定した。50
o+M Trls HCI(pH7,4)、0.03
8M N aCl、0.1%Tween 80. 1o
+g/ml BSA、 0.1μg/mlT P A
とし、ヒト フィブリノーゲンを0、OLmg/at
〜4 lag/ifとなる様に変化させ、ヒト−トロン
ビンを20 NIHunlts/ifとなる様に添加し
て室温で10分間装いた。そして、15.ooOrpa
+3分間遠心分離して、上清を分離した。その活性をS
−2251を用いた方法で測定し、結果を第2図にまと
めた。KM−4は天然型TPAと同程度のフィブリン親
和性を示したが、KM−2は天然型TPAよりも遥かに
強力゛なインビトロでのフィブリン親和性をもっている
ことが分かった。EXAMPLES In vitro Fibrin Affinity The in vitro fibrin affinities of KM-2 and KM-4 were determined by the method of Koren et al. (ibid.). 50
o+M Trls HCI (pH 7,4), 0.03
8M NaCl, 0.1% Tween 80. 1o
+g/ml BSA, 0.1 μg/ml TPA
and human fibrinogen is 0, OLmg/at
-4 lag/if, human thrombin was added to give 20 NIHunlts/if, and the mixture was incubated at room temperature for 10 minutes. And 15. ooOrpa
The supernatant was separated by centrifugation for +3 minutes. Its activity is S
-2251, and the results are summarized in FIG. Although KM-4 showed a fibrin affinity comparable to that of natural TPA, KM-2 was found to have a much stronger in vitro fibrin affinity than natural TPA.
実施例8
インビトロでのプラスミノーゲン活性化能測定KM−2
及びKM−4のインビトロでのプラスミノーゲン活性化
能は、プラスミンの合成基質S−2251を利用するコ
レンら(同上)の方法にて測定した。 0.1M Tr
ls HCI(pH7,5) 、 0.1%Tvee
n80. 0.3iM S−2251,O,1mgヒ
トフィブリノゲン(ブロモシアンで分解したもの)。Example 8 In vitro plasminogen activation ability measurement KM-2
The in vitro plasminogen activation ability of KM-4 was measured by the method of Koren et al. (ibid.) using a synthetic substrate of plasmin, S-2251. 0.1M Tr
ls HCI (pH 7,5), 0.1% Tvee
n80. 0.3 iM S-2251, O, 1 mg human fibrinogen (digested with bromo cyanide).
1 ng/IIII T P Aとし、グルタミン酸タ
イプのプラスミノーゲンを0.04 u g/II+I
〜25 u g/rAIとなるようにして、25℃、
3時装置いた後、405nmでの吸光度を測定した。そ
の結果を第3図にまとめた。KM−2及びKM−4は天
然型TPAよりも強力なインビトロでのプラスミノーゲ
ン活性化能をもっていることが分かった。1 ng/III TPA and 0.04 u g/II+I of glutamic acid type plasminogen.
~25 ug/rAI at 25°C,
After 3 o'clock incubation, the absorbance at 405 nm was measured. The results are summarized in Figure 3. It was found that KM-2 and KM-4 have a stronger ability to activate plasminogen in vitro than natural TPA.
実施例9
インビトロでの血栓溶解能測定
KM−2及びKM−4のインビトロでの血栓溶解能をラ
ーセンら(同上)の方法を一部改変して測定した。50
μg/mlヒト グルタミン酸タイププラスミノーゲン
、0.IMNaCl、 0.01%Tween 80を
含む10IIIMリン酸緩衝液(pH17,2)に5
B/ml となるようにヒトフィブリノーゲンを溶解後
、ヒト トロンビンをり、0NLHunit/mlとな
るように添加し、96穴マルチデイツシユに100μl
ずつ分注して37℃、1h「放置して凝固させた。作成
したフィブリンクロットに100μmの酵素液を重層し
、37℃で3hr反応させた。Example 9 In vitro thrombolytic ability measurement The in vitro thrombolytic ability of KM-2 and KM-4 was measured by partially modifying the method of Larsen et al. (ibid.). 50
μg/ml human glutamate type plasminogen, 0. IMNaCl, 5% in 10IIIM phosphate buffer (pH 17,2) containing 0.01% Tween 80
After dissolving human fibrinogen to a concentration of B/ml, remove human thrombin and add it to a concentration of 0NLHunit/ml, and add 100 μl to a 96-well multi-dish.
The fibrin clot thus prepared was overlaid with a 100 μm enzyme solution and allowed to react at 37°C for 3 hours.
反応後、各ウェルの405na+での吸光度を測定し、
その結果を第4図にまとめた。KM−2及びKM−4は
天然型TPAよりも強力なインビトロ血栓溶解能をもっ
ていることが分った。After the reaction, the absorbance at 405na+ of each well was measured,
The results are summarized in Figure 4. KM-2 and KM-4 were found to have stronger in vitro thrombolytic ability than native TPA.
実施例10
KM−2およびKM−4の血中での半減期測定血中持続
性に関してはベーベら(同上)あるいはマットソンら(
同上)の方法で血中での半減期を測定した。精製したK
M−2又はKM−4300μgをウサギに耳介静脈より
単独回投与し、経時的に採血してその血中TPA濃度を
ELISA法にて測定した。その結果、ウサギでの血中
半減期は、KM−2が約4分、KM−4が約2.5分と
測定された。(第5図)Example 10 Measurement of half-life in blood of KM-2 and KM-4 Concerning persistence in blood, Behbe et al. (ibid.) or Mattsson et al.
The half-life in blood was measured by the method described above). purified K
300 μg of M-2 or KM-4 was administered to rabbits once through the auricular vein, blood was collected over time, and the TPA concentration in the blood was measured by ELISA. As a result, the blood half-life in rabbits was determined to be approximately 4 minutes for KM-2 and approximately 2.5 minutes for KM-4. (Figure 5)
第1図はTPA発現ベクターpSVeCPA−1の構築
を示す図、
第2図は、天然型TPA及びKM−2およびKM−4の
フィブリン親和性を示すグラフ、第3図は、天然型TP
A及びKM−2およびKM−4のプラスミノーゲン活性
化能の比較を示すグラフ、
第4図は、天然型TPA及びKM−2およびKM−4の
In vltroでのフィブリンクロット溶解能を示す
グラフ、
第5図は、天然型TPA及びKM−2およびKM−4の
ウサギでの血中持続性を示すグラフである。Figure 1 is a diagram showing the construction of TPA expression vector pSVeCPA-1, Figure 2 is a graph showing the fibrin affinity of native TPA and KM-2 and KM-4, and Figure 3 is a graph showing the fibrin affinity of native TPA and KM-2 and KM-4.
A and a graph showing a comparison of the plasminogen activation ability of KM-2 and KM-4. FIG. 4 is a graph showing the in vitro fibrin clot dissolving ability of natural TPA and KM-2 and KM-4. FIG. 5 is a graph showing the persistence of natural TPA and KM-2 and KM-4 in the blood in rabbits.
Claims (11)
のセリンが、それぞれプロリンとメチオニンに置換され
た組織プラスミノーゲン活性化因子誘導体。(1) A tissue plasminogen activator derivative in which asparagine at amino acid position 115 and serine at position 119 are replaced with proline and methionine, respectively.
ジン、および165番目のセリンが、それぞれアルギニ
ン、アルギニン、及びトリプトファンに置換された組織
プラスミノーゲン活性化因子誘導体。(2) A tissue plasminogen activator derivative in which glycine at amino acid position 161, lysine at position 162, and serine at position 165 are replaced with arginine, arginine, and tryptophan, respectively.
1または2に記載のプラスミノーゲン活性化因子誘導体
。(3) The plasminogen activator derivative according to claim 1 or 2, which is produced in a transformed cultured animal cell.
のプラスミノーゲン活性化因子誘導体。(4) The plasminogen activator derivative according to claim 3, wherein the cultured animal cells are CHO-K1.
性化因子誘導体をコードするDNA配列。(5) A DNA sequence encoding the plasminogen activator derivative according to claim 1 or 2.
の一部分からなる請求項5記載のDNA配列。(6) The DNA sequence is a part of cDNA and chromosomal DNA
6. The DNA sequence according to claim 5, consisting of a portion of.
位までが染色体DNA、該BglII認識部位から下流が
cDNAからなる請求項6記載のDNA配列。(7) The DNA sequence according to claim 6, wherein the region from the second exon to the BglII recognition site of the third exon is chromosomal DNA, and the region downstream from the BglII recognition site is cDNA.
誘導体をコードする請求項5〜7のいずれかに記載のD
NA配列を含む発現ベクターによって形質転換された動
物培養細胞。(8) D according to any one of claims 5 to 7, which encodes the plasminogen activator derivative of claim 1 or 2.
Cultured animal cells transformed with an expression vector containing an NA sequence.
の動物培養細胞。(9) The cultured animal cell according to claim 8, wherein the cultured animal cell is CHO-K1.
含む発現ベクターによって形質転換された動物培養細胞
を培養してプラスミノーゲン活性化因子誘導体を生成せ
しめ、これを採取するプラスミノーゲン活性化因子誘導
体の製造方法。(10) Cultivating cultured animal cells transformed with the expression vector containing the DNA sequence according to any one of claims 5 to 7 to produce a plasminogen activator derivative, and collecting the plasminogen. Method for producing activator derivative.
記載のプラスミノーゲン活性化因子誘導体の製造方法。(11) Claim 10 wherein the cultured animal cell is CHO-K1.
A method for producing the described plasminogen activator derivative.
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DE1990609135 DE69009135T2 (en) | 1989-09-20 | 1990-09-20 | Plasminogen activator derivative and method for its production. |
EP19900310305 EP0420502B1 (en) | 1989-09-20 | 1990-09-20 | A new plasminogen activator derivative and a method for its manufacture |
US07/869,380 US5407819A (en) | 1989-09-20 | 1992-04-16 | Human plasminogen activator variants having amino acids 37-42 substituted and a method for their manufacture |
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