JPH0292286A - Production of calmodulin - Google Patents
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Abstract
Description
【発明の詳細な説明】
発明の背景
技術分野
本発明は、カルモジュリンの遺伝子組換えによる製造技
術に関する。具体的には、改良したラットカルモジュリ
ンcDNAい1DNAで形質転換された大腸菌及びこれ
らを用いるカルモジュリンの製造法に関する。BACKGROUND OF THE INVENTION Technical Field The present invention relates to a technology for producing calmodulin by genetic recombination. Specifically, the present invention relates to Escherichia coli transformed with improved rat calmodulin cDNA and a method for producing calmodulin using the same.
従来技術
カルモジュリンは、真核細胞に広く分布しているカルシ
ウム結合蛋白質である。カルシウムと結合したカルモジ
ュリンは、様々の不活性状態の酵素と結合して、その酵
素を活性化する。活性化される酵素としてアデニル酸シ
クラーゼ、ボスポリラーゼbキナーゼ、グリコーゲンシ
ンターゼ、トリプトファンやチロシンの水酸化酵素、細
胞膜の2+
Ca 、Mg”−ATPアーゼ、NADキナーゼ、ホ
スホリパーゼ、平滑筋ミオシン軽鎖キナーゼなどが知ら
れている。Prior Art Calmodulin is a calcium-binding protein that is widely distributed in eukaryotic cells. Calcium-bound calmodulin binds to and activates various inactive enzymes. Enzymes that are known to be activated include adenylate cyclase, bospolylase b kinase, glycogen synthase, tryptophan and tyrosine hydroxylase, cell membrane 2+ Ca, Mg''-ATPase, NAD kinase, phospholipase, and smooth muscle myosin light chain kinase. It is being
カルモジュリンのアミノ酸配列は公知である。The amino acid sequence of calmodulin is known.
すなわち、ヒト、ブタ、ラットおよびウシ由来のカルモ
ジュリンは同一のアミノ酸配列を持つことが知られてい
て、これらはいずれも148個のアミノ酸からなる分子
全豹16,000の蛋白質である。ラットカルモジュリ
ンcDNAは既に取得されている(11.NojlII
la および11.5okabe: J 。That is, calmodulins derived from humans, pigs, rats, and cows are known to have the same amino acid sequence, and they are all proteins with a total molecular weight of 16,000 and consisting of 148 amino acids. Rat calmodulin cDNA has already been obtained (11.NojlII
la and 11.5okabe: J.
Hot、 Blol、 193. p、439−445
.1987 ) 、ニワトリカルモジュリンcDNAを
用いたカルモジュリンの生産(A、R,Meansら:
J、Biol、CheIW、260 。Hot, Blol, 193. p, 439-445
.. 1987), production of calmodulin using chicken calmodulin cDNA (A, R, Means et al.:
J, Biol, CheIW, 260.
9.4704−4712,1985)及び化学合成され
たカルモジュリン遺伝子の大腸菌における発現(D、M
artinWattersonら: BlocheII
istry 24.p、5090−5098゜198
5)については既に報告がある。9.4704-4712, 1985) and expression of the chemically synthesized calmodulin gene in E. coli (D, M
Artin Watterson et al.: Bloche II
istry 24. p, 5090-5098°198
5) has already been reported.
発明の概要
発明が解決しようとする問題点
カルモジュリンを製造する方法として、は乳類のカルモ
ジュリンの場合、通常臓器からの抽出、精製法が用いら
れている。−例としてウシ脳の場合、2Kg当たり35
0mgのカルモジュリンが得られた(M、Yazava
、 M、!3akuma およびに、Yagl:J。Summary of the Invention Problems to be Solved by the Invention As a method for producing calmodulin, in the case of mammalian calmodulin, extraction and purification methods from organs are usually used. - For example, in the case of bovine brain, 35 per 2 kg
0 mg of calmodulin was obtained (M, Yazava
, M,! 3akuma and Yagl:J.
Biochem、、 87.p、l313,1980)
(S、Kakjuchl、K。Biochem, 87. p, l313, 1980)
(S, Kakjuchl, K.
5obue: 純生化学実験講座6 、p、415−
419.1986 。5obue: Pure Biochemistry Experiment Course 6, p, 415-
419.1986.
東京化学同人)。しかし精製の際に、脳血管および血液
成分の除去ならびに新鮮な脳の使用を怠ると、カルモジ
ュリン様の夾雑蛋白質の除去が困難になるなど操作が繁
雑である。故に精製度が高く、効率的なカルモジュリン
の製造には遺伝子組み換えによる方法がより優れている
と言える。ニワトリカルモジュリンcDNAを用いた大
腸菌による生産に関して培地10Ω当たり30B−40
mg製造する方法が報告されているが(A、R,Mea
nsら;J、Biol、Chcm、200 、p、47
04−4712.1985)、効率的な生産ではない。Tokyo Kagaku Doujin). However, if the removal of cerebral blood vessels and blood components and the use of fresh brain are neglected during purification, the procedure becomes complicated, as it becomes difficult to remove contaminant proteins such as calmodulin. Therefore, it can be said that the genetic recombination method is better for highly purified and efficient production of calmodulin. 30B-40 per 10Ω of medium for production in E. coli using chicken calmodulin cDNA.
Although a method for producing mg has been reported (A, R, Mea
ns et al; J, Biol, Chcm, 200, p, 47
04-4712.1985), not efficient production.
化学合成されたカルモジュリン遺伝子の大腸菌による発
現が試みられたことは前記したところであるが、これに
関しても効率的な生産ではないと言える(D、Mart
in Vattersonら=B1oehem、24.
p、5090−5098.1985)。As mentioned above, attempts have been made to express the chemically synthesized calmodulin gene in Escherichia coli, but it can be said that this is not an efficient production (D, Mart).
in Vatterson et al. = B1oehem, 24.
p, 5090-5098.1985).
このため、遺伝子組換え技術によるカルモジュリン活性
を有するポリペプチドないし蛋白質のより効率的な製造
技術を確立することが望まれていた。Therefore, it has been desired to establish a more efficient production technique for polypeptides or proteins having calmodulin activity using genetic recombination techniques.
発明の要旨
本発明は、上記の問題点を解決することを目的とし、こ
の目的を、カルモジュリン活性を有するポリペプチドな
いし蛋白質を大腸菌で効率よく製造するための手段を提
供することにより達成したものである。すなわち本発明
は、
(1) 第1図に示す塩基配列を含むDNA鎖を提供
するものである。SUMMARY OF THE INVENTION The present invention aims to solve the above-mentioned problems, and has achieved this purpose by providing a means for efficiently producing polypeptides or proteins having calmodulin activity in Escherichia coli. be. That is, the present invention provides (1) a DNA strand containing the base sequence shown in FIG.
また、本発明は、
(2) 第1図に示す塩基配列を含むDNA鎖をその
遺伝情報が発現可能な状態で含むプラスミドによって形
質転換された大腸菌(E、 c、o 1 i)を提供
するものである。The present invention also provides (2) Escherichia coli (E, c, o 1 i) transformed with a plasmid containing a DNA strand containing the base sequence shown in Figure 1 in a state in which its genetic information can be expressed. It is something.
更にまた、本発明は、
(3) 第1図に示す塩基配列を含むDNA鎖を用意
し、このDNA鎖を、その遺伝情報が発現可能な状態で
含むプラスミドの作成、このプラスミドによる大腸菌(
E、coli)の形質転換および得られる形質転換体の
培養から成る工程に付して培養物中にカルモジュリンを
産生させることを特徴とするカルモジュリンの製造法を
提供するものである。Furthermore, the present invention provides the following steps: (3) preparing a DNA strand containing the base sequence shown in FIG.
The present invention provides a method for producing calmodulin, which is characterized by producing calmodulin in a culture through a step consisting of transforming E. coli and culturing the resulting transformant.
発明の詳細な説明
本発明のDNA鎖
本発明のDNA鎖は第1図に示す塩基配列を含むもので
ある。本発明のDNA鎖が「第1図に示す塩基配列を含
む」ということは、その上流側および(または)下流側
(あるいは場合によっては鎖「1りに、合目的的な任意
の塩基配列が鎖員として存在していてもよいことを意味
するものである(詳細下記)。また、従って、このよう
に定義される本発明のDNA鎖は、第1図の塩基配列か
らなる鎖長の鎖状体の外に、環状体(ないしプラスミド
)の形態であってもよい。特に環状体ないしプラスミド
の形態は、本発明DNAを大腸菌内で発現させてカルモ
ジュリンを産生させるときの形態である。DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION DNA Strand of the Invention The DNA strand of the invention contains the base sequence shown in FIG. The fact that the DNA strand of the present invention ``contains the base sequence shown in Figure 1'' means that the upstream and/or downstream side (or in some cases, the strand ``includes any desired base sequence shown in Figure 1'') This means that the DNA strand of the present invention defined in this way may exist as a chain member (details below). In addition to a circular body, it may be in the form of a circular body (or plasmid). In particular, the circular body or plasmid form is the form in which the DNA of the present invention is expressed in Escherichia coli to produce calmodulin.
第1図に示す塩基配列は公知のカルモジュリンのアミノ
酸配列のN末にMetを付加したポリペブチドをコード
するものであるが、大腸菌で高発現させるために、5′
末端の塩基配列を大腸菌の各種遺伝子の翻訳開始部位に
共通な塩基配列に近づけ、更に、大腸菌において優先的
に用いられているコドンをMetを含むN末14個のア
ミノ酸に関してなるべく使用して(第3図中AからB)
、本発明者らが設計したものである。The base sequence shown in Figure 1 encodes a polypeptide in which Met is added to the N-terminus of the known amino acid sequence of calmodulin, but in order to achieve high expression in E. coli, the 5'
The terminal nucleotide sequence is brought closer to the nucleotide sequence common to the translation initiation site of various E. coli genes, and codons that are preferentially used in E. coli are used as much as possible for the N-terminal 14 amino acids including Met ( A to B in Figure 3)
, which was designed by the present inventors.
尚、大腸菌各種遺伝子の翻訳開始部位に共通な塩基配列
は5chererらによって報告されており(Sche
rcr ら、Nucl、Ac1ds、 Res、 8.
p、3895−3905゜1980) 、また、大腸菌
において優先的に用いられているコドンは池村によって
報告されている(池村、Jpn、J、Genet、56
.1)、533−555.1981)。Furthermore, the base sequences common to the translation initiation sites of various E. coli genes have been reported by Scherer et al.
rcr et al., Nucl, Aclds, Res, 8.
p, 3895-3905゜1980), and codons preferentially used in E. coli have been reported by Ikemura (Ikemura, Jpn, J. Genet, 56
.. 1), 533-555.1981).
本発明のDNA鎖は、これを適当なベクターに結合させ
て大腸菌に導入して高発現させるためのものであるが、
このDNA鎖の高発現を実現させるためには、前記の塩
基配列の5′末端上流側にSD配列を含む下記の塩基配
列
TAAGGAGGTATATT
ATTCCTCCATATAA
(Scherer ら、Nucl、Ac1ds Res
、 8 、p、3895−3905゜1980)を有す
ることが好ましい。尚、この塩基配列は大腸菌の各種遺
伝子の翻訳開始部位において使用頻度の高いものである
。また、本発明のDNA鎖は、第1図に示す塩基配列の
3′末端に接して停止コドンを少なくとも1個(例えば
TGA)をもつものが好ましい。更にこのような遺伝子
組換操作を容易にするために適当な制限酵素部位を付加
しておくことが好ましい。The DNA strand of the present invention is for high expression by ligating it to an appropriate vector and introducing it into E. coli.
In order to achieve high expression of this DNA strand, the following nucleotide sequence TAAGGAGGTATATATT ATTCCTCCCATATAA (Scherer et al., Nucl, Ac1ds Res
, 8, p., 3895-3905°1980). Incidentally, this base sequence is frequently used in the translation initiation site of various genes of E. coli. Furthermore, the DNA strand of the present invention preferably has at least one stop codon (for example, TGA) adjacent to the 3' end of the base sequence shown in FIG. Furthermore, it is preferable to add appropriate restriction enzyme sites to facilitate such genetic recombination operations.
従って、本発明の好ましいDNA鎖は、第5図中Aから
Bに示した塩基配列のものである。Therefore, the preferred DNA strand of the present invention has the base sequence shown from A to B in FIG.
本発明のDNA鎖の製造
本発明のDNA鎖の製造方法の一例は、下記に示す通り
である。Production of the DNA strand of the present invention An example of the method for producing the DNA strand of the present invention is as shown below.
(1) 大腸菌SD配列とMetを含んだカルモジュ
リンN末14個のアミノ酸をコードするDNA塩基配列
、及び発現ベクターへの挿入が出来るように数種類の制
限酵素部位を含んだ81塩基対のオリゴヌクレオチドを
、クローニングプラスミドp U C19(Messi
ngら:Gene 33.p、110−1151985
)に挿入連結する。第2図の(ハ)は、この81塩基対
のオリゴヌクレオチドの塩基配列と制限酵素部位を示す
ものである。尚、このオリゴヌクレオチドは第2図中(
イ)および(ロ)で示されるオリゴヌクレオチドをそれ
ぞれ合成し、次いでこれらを会合させることにより得ら
れる。(1) A DNA base sequence encoding the N-terminal 14 amino acids of calmodulin containing the Escherichia coli SD sequence and Met, and an 81 base pair oligonucleotide containing several types of restriction enzyme sites so that it can be inserted into an expression vector. , cloning plasmid pU C19 (Messi
ng et al.: Gene 33. p, 110-1151985
) to insert and concatenate. FIG. 2 (c) shows the base sequence and restriction enzyme site of this 81 base pair oligonucleotide. This oligonucleotide is shown in Figure 2 (
It can be obtained by synthesizing the oligonucleotides shown in (a) and (b), respectively, and then associating them.
具体的には、上記のオリゴヌクレオチドはいずれも既知
の合成法によって合成することができる(例えば、ホス
ホアミダイト法による固相合成法(Bcaucageら
: Tctrahcdron Lcttcrs 22.
p、1859−18[i2.1981))。また、この
合成法に基づく自動合成機を使用することも可能である
。各オリゴヌクレオチドを会合した後5′末端を必要に
応じてポリヌクレオチドキナーゼでリン酸化した後、D
NAリガーゼによってpUC19のHindIII及び
BamHIによる切断片に連結して、第2図(ハ)に示
すDNA塩基配列を含むプラスミドpCALN1を得る
。このプラスミドpCALN1で大腸菌JM109を形
質転換する。次いで、pCALNlを単離し、ダイデオ
キシ法によって塩基配列を確認する。Specifically, any of the above oligonucleotides can be synthesized by known synthetic methods (for example, solid phase synthesis by phosphoramidite method (Bcaucage et al.: Tctrahcdron Lcttcrs 22.
p, 1859-18 [i2.1981)). It is also possible to use an automatic synthesizer based on this synthesis method. After assembling each oligonucleotide, the 5' end is phosphorylated with polynucleotide kinase as necessary, and then D
It is ligated to the HindIII and BamHI cut fragment of pUC19 using NA ligase to obtain plasmid pCALN1 containing the DNA base sequence shown in FIG. 2 (c). E. coli JM109 is transformed with this plasmid pCALN1. Next, pCALNl is isolated and the base sequence is confirmed by the dideoxy method.
(2) ラットカルモジュリンcDNAを含むプラス
ミドp RCM 1 (11,NojimaおよびI
l、5okabe:J、Mo1. Biol、 193
、 p、439−445.1987)をHindnI
及びXbalにて切断することによって、翻訳領域の5
′末端の一部を欠損したラットカルモジュリンcDNA
を得る。得られたcDNAをプラスミドpcALN1の
HindII[及びXbalによる大切断片に挿入して
連結し、pOcAL7を得、これで大腸菌JM109を
形質転換する。次いで、pOcAL7を単離し、ダイデ
オキシ法によって塩基配列を確認する。このようにして
得られるpOcAL7をAflII及びBamHIにて
消化することにより、第1図に示す塩基配列、SD配列
及び停止コドンを含む本発明のDNA鎖(第5図中Aか
らB)を得ることができる。(2) Plasmid pRCM1 (11, Nojima and I
l, 5okabe: J, Mo1. Biol, 193
, p. 439-445.1987) as HindnI
By cutting with
Rat calmodulin cDNA with part of its end deleted
get. The obtained cDNA is inserted into the HindII and Xbal important fragment of plasmid pcALN1 and ligated to obtain pOcAL7, which is used to transform Escherichia coli JM109. Next, pOcAL7 is isolated and the base sequence is confirmed by the dideoxy method. By digesting pOcAL7 thus obtained with AflII and BamHI, the DNA strand of the present invention (A to B in FIG. 5) containing the base sequence, SD sequence, and stop codon shown in FIG. 1 can be obtained. Can be done.
形質転換体の作成
上記のようにして調製される本発明DNA鎖は、カルモ
ジュリン蛋白をつくるための遺伝情報を含んでいるので
、これを含むプラスミドを生物工学的手法によって大腸
菌(E、colt)に導入して形質転換し、得られる形
質転換体を培養することにより、カルモジュリン蛋白を
つくらせることができる。Preparation of transformants The DNA strand of the present invention prepared as described above contains genetic information for producing calmodulin protein, so a plasmid containing this was introduced into Escherichia coli (E, colt) using biotechnological techniques. Calmodulin protein can be produced by introducing the vector, transforming it, and culturing the resulting transformant.
形質転換体の作成(およびそれによるカルモジュリンの
生産)のための手順ないし方法そのものは、分子生物学
、生物工学ないし遺伝子工学の分野において慣用されて
いるものでありうるので、本発明においては、下記した
こと以外についてはこれら慣用技術に準じて実施すれば
よい。大腸菌中て本発明DNA鎖の遺伝子を発現させる
ためには、まず大腸菌中で安定に存在するプラスミドベ
クター中にこの遺伝子をつなぎかえる必要がある。The procedure or method itself for creating a transformant (and thereby producing calmodulin) can be one that is commonly used in the fields of molecular biology, bioengineering, or genetic engineering. Other than what was done previously, it is sufficient to follow these commonly used techniques. In order to express the gene of the DNA strand of the present invention in E. coli, it is first necessary to connect this gene to a plasmid vector that stably exists in E. coli.
このプラスミドベクターとしては、pB1322等合目
的的な任意のものを用いることができる。As this plasmid vector, any suitable vector such as pB1322 can be used.
一方、本発明DNA鎖の遺伝子を大腸菌で発現させるた
めには、そのDNAをmRNAへ転写させる必要がある
。そのためには、転写のためのシグナルであるプロモー
ターを本発明DNA鎖の5′側上流に組込めばよい。こ
のプロモーターについてはすでにt rp、1acSP
L、OmpF等種々知られており、本発明においてこれ
らのいずれも利用することができる。On the other hand, in order to express the gene of the DNA strand of the present invention in E. coli, it is necessary to transcribe the DNA into mRNA. For this purpose, a promoter, which is a signal for transcription, may be incorporated into the 5' upstream side of the DNA strand of the present invention. Regarding this promoter, trp, 1acSP
Various types such as L and OmpF are known, and any of these can be used in the present invention.
また、転写を終結させるためのターミネータ−を本発明
DNA鎖の3′側下流に組込むことが好ましい。ターミ
ネータ−を挿入することにより、プラスミドの安定性を
高めることができる。ターミネータ−としては、trp
a、rrnc。Furthermore, it is preferable to incorporate a terminator for terminating transcription on the 3' downstream side of the DNA strand of the present invention. Plasmid stability can be increased by inserting a terminator. As a terminator, trp
a,rrnc.
toop等を用いることができる。toop etc. can be used.
また、mRNAを蛋白に翻訳させる段階では、蛋白合成
の場であるリポソームが翻訳開始部位の先端に結合する
ために必要な配列(SD配列と呼ばれる)を、蛋白合成
の開始信号であるATGの前につける必要がある。更に
効率的に発現させる為には、このSD配列並びにこのS
D配列と蛋白合成の開始信号であるATGとの間の塩基
配列を、大腸菌における翻訳開始部位に共通な塩基配列
に近づけることが好ましい。例えば、この配列を下記の
塩基配列とすることが好ましい。In addition, at the stage of translating mRNA into protein, a sequence (called an SD sequence) necessary for the liposome, which is the site of protein synthesis, to bind to the tip of the translation initiation site, is inserted before ATG, which is the initiation signal for protein synthesis. It is necessary to put it on. In order to express it more efficiently, this SD sequence and this S
It is preferable that the base sequence between the D sequence and ATG, which is the initiation signal for protein synthesis, be made close to the base sequence common to translation initiation sites in E. coli. For example, it is preferable that this sequence be the following base sequence.
TAAGGAGGTATATT
ATTCCTCCATATAA
尚、前記「本発明のDNA鎖の製造」において示した方
法によって調製される本発明のDNA鎖(第5図中Aか
らB)は、この塩基配列及び停止コドンTGAを含む好
ましいものである。TAAGGAGGTATATT ATTCCTCCATATAA The DNA strand of the present invention (A to B in Figure 5) prepared by the method shown in the above "Production of the DNA strand of the present invention" preferably contains this base sequence and the stop codon TGA. be.
このようにしてつくったプラスミドによる大腸菌の形質
転換は、遺伝子工学ないし生物工学の分野で慣用されて
いる合目的的な任意の方法によって行なうことができる
。その一般的な事項については適当な底置または総説、
例えばManiatisら、rMolecular C
loning−A Laboratory Manua
l JCold Spring Harbor Lab
oratory (1982)を参照すればよい。Transformation of E. coli with the plasmid thus prepared can be carried out by any suitable method commonly used in the fields of genetic engineering and biotechnology. Appropriate basics or general notes on the general matters,
For example, Maniatis et al., rMolecular C
loning-A Laboratory Manua
l JCold Spring Harbor Lab
oratory (1982).
形質転換体は、本発明DNA鎖によって導入された遺伝
情報による新しい形質(すなわちカルモジュリンの生産
能)および使用ベクター由来の形質、ならびに場合によ
っては生じているかも知れない遺伝子組換時の使用ベク
ターからの一部の遺伝情報の欠落を除けば、そのゼノタ
イブないしフェノタイプあるいは菌学的性質に関しては
使用大腸菌と同じである。The transformant has a new trait (i.e. calmodulin production ability) due to the genetic information introduced by the DNA strand of the present invention, a trait derived from the vector used, and a trait derived from the vector used during genetic recombination that may have occurred in some cases. Except for the lack of some genetic information, its xenotype, phenotype, and mycological properties are the same as the E. coli used.
カルモジュリンの生産
上記のようにして得られる形質転換体のクローンは、こ
れを培養すれば培養物の菌体中にカルモジュリン蛋白を
生産する。Production of calmodulin When the transformant clone obtained as described above is cultured, calmodulin protein is produced in the cells of the culture.
形質転換体の培養ないし増殖条件は、使用大腸菌に対す
るそれと本質的には変らない。また、培養物すなわち菌
体および(または)培養液からの生産蛋白の回収も合目
的的な任意の方法(例えば、後記実施例5記載の方法)
に従って行なうことができる。カルモジュリンは大腸菌
中に生産されるので、菌体破砕後、T r i s −
HCl (pH8,0)緩衝液などを用いてカルモジュ
リン活性を有する蛋白質を抽出し、常法に従って精製す
ることが好ましい。The culture or growth conditions for the transformant are essentially the same as those for the E. coli used. In addition, any method suitable for recovering the produced protein from the culture, that is, the bacterial cells and/or the culture solution (for example, the method described in Example 5 below)
It can be done according to the following. Since calmodulin is produced in E. coli, after disrupting the bacterial cells, Tris-
It is preferable to extract the protein having calmodulin activity using HCl (pH 8,0) buffer or the like and purify it according to a conventional method.
実施例 以下、本発明を実施例でもって更に詳しく説明する。Example Hereinafter, the present invention will be explained in more detail with reference to Examples.
実施例1:オリゴヌクレオチドの合成及びクローニング
ベクターへの挿入
第2図(イ)及び(ロ)に示す2本のオリゴヌクレオチ
ドは、ホスホアミダイト法(Beaucagcら:Te
trahedron Letters 22.p、18
59−1882.1981)を用いたDNA自動合成機
(アプライドバイオシステムズ社製380A型、M、H
unkapi I lerら:Nature 310.
p、105−111.1984)を使用して合成した。Example 1: Synthesis of oligonucleotides and insertion into cloning vectors The two oligonucleotides shown in FIG.
trahedron Letters 22. p, 18
59-1882.1981) using an automatic DNA synthesizer (Model 380A, M, H manufactured by Applied Biosystems)
Unkapi Iler et al.: Nature 310.
p, 105-111.1984).
合成終了後、濃アンモニア水で60℃で5時間処理して
、塩基の保護基を除くとともに担体からの切り出しを行
なった。得られたオリゴヌクレオチドを8M尿素を含む
12%ポリアクリルアミドを用いた電気泳動にかけた。After completion of the synthesis, it was treated with concentrated aqueous ammonia at 60° C. for 5 hours to remove the base protecting group and to cut it out from the carrier. The obtained oligonucleotide was subjected to electrophoresis using 12% polyacrylamide containing 8M urea.
電気泳動後ゲルの下に蛍光色素を含む薄層クロマトのプ
レートを置き、UVランプを用いて目的のバンドの存在
を確認した。目的とするオリゴヌクレオチドを含むゲル
片を、透析チューブ内に封入し、DNAをゲルから電気
的に溶出した。この透析チューブ内液をセファデックス
G−25(ファルマシア社製)のゲルう過カラム(φ1
.5X43cm)にかけ、0.05M)リエチルアミン
重炭酸緩衝液(pH7,5)にて溶出して、脱塩した。After electrophoresis, a thin layer chromatography plate containing a fluorescent dye was placed under the gel, and the presence of the target band was confirmed using a UV lamp. A gel piece containing the desired oligonucleotide was sealed in a dialysis tube, and the DNA was electrically eluted from the gel. The solution in this dialysis tube was filtered through a gel filtration column (φ1) of Sephadex G-25 (manufactured by Pharmacia).
.. 5×43 cm) and eluted with 0.05 M) ethylamine bicarbonate buffer (pH 7.5) to desalt.
目的とするオリゴヌクレオチドを含む溶出液を減圧濃縮
して、純粋なオリゴヌクレオチドを得た。The eluate containing the desired oligonucleotide was concentrated under reduced pressure to obtain a pure oligonucleotide.
このようにして得られたオリゴヌクレオチド2本(各1
nmol)の各5′末端を、各々20μIのリン酸化
反応液(50mMT r i s −HC1(pH7、
4) 、10mMMg CI 2.10+nMDTT、
5mMATP、15ユニツトのT4ポリヌクレオチド
キナーゼ(ベーリンガー・マンハイム社))中で、37
℃30分間反応させることにより完全にリン酸化した。Two oligonucleotides obtained in this way (one each
nmol) of each 5' end of phosphorylation reaction solution (50mM Tris-HC1 (pH 7,
4) , 10mM Mg CI 2.10+nMDTT,
5mM ATP, 15 units of T4 polynucleotide kinase (Boehringer Mannheim).
Complete phosphorylation was achieved by reacting at ℃ for 30 minutes.
次いで、反応溶液を混合し、95℃5分間加熱し2時間
かけて常温まで戻して、二重鎖DNAを調製した。Next, the reaction solution was mixed, heated at 95° C. for 5 minutes, and returned to room temperature over 2 hours to prepare double-stranded DNA.
クローニングベクターには大腸菌のプラスミドpUc1
9 (ファルマシア社)を用いた。1μgのpUC19
DNAを30μlの反応液(10IIMT r i 5
−HCl (pH7,5)、1011MM g CI
2.1mMDTT、50MMNaC1゜10ユニツト
のBindm(宝酒造)、10ユニツトのBamHI(
宝酒造))中で、37℃2時間反応させた後、0.8%
アガロース電気泳動により大フラグメントを分離した。The cloning vector is E. coli plasmid pUc1.
9 (Pharmacia) was used. 1 μg pUC19
Add 30 μl of DNA to the reaction solution (10IIMT r i 5
-HCl (pH 7,5), 1011 MM g CI
2.1mM DTT, 50MMNaCl, 10 units of Bindm (Takara Shuzo), 10 units of BamHI (
After reacting for 2 hours at 37°C in Takara Shuzo), 0.8%
Large fragments were separated by agarose electrophoresis.
ゲル片をチューブに入れ、泳動緩衝液中で電気泳動する
ことにより溶出した。溶出液にエタノールを加えて沈澱
させ、20μlのTE温溶液10mMT r i s。The gel piece was placed in a tube and eluted by electrophoresis in running buffer. The eluate was precipitated by adding ethanol, and 20 μl of a warm TE solution was mixed with 10 mM Tris.
1+nMEDTASpH8,0)にてこの沈澱を溶解し
た。前記のようにして調製した81塩基対の二重鎖DN
Aの0.1μgを、上記のpUc19DNA断片TE溶
液に加え、反応液30μm(66mMT r i s
−HC1(pH7,4) 、6.6mMM g CI
2.10mMDTT、0.1mMATP。This precipitate was dissolved in 1+nMEDTAS pH 8.0). 81 base pair double-stranded DNA prepared as described above
Add 0.1 μg of A to the above pUc19 DNA fragment TE solution, add 30 μg of the reaction solution (66mM Tris
-HC1 (pH 7,4), 6.6mM g CI
2.10mM DTT, 0.1mM ATP.
3ユニツトのT4DNAリガーゼ(ベーリンガー・マン
ハイム社))中で、14℃で6時間反応させた。The reaction was carried out in 3 units of T4 DNA ligase (Boehringer Mannheim) at 14°C for 6 hours.
この反応液を用い、大腸菌JM109株(宝酒造11!
l) (C,Yanisch−Perronら: G
ene 33 、p、103−119.1985)を既
知の方法(D、IIanahan:J、Mol 。Using this reaction solution, Escherichia coli strain JM109 (Takara Shuzo 11!
l) (C, Yanisch-Perron et al.: G
ene 33, p, 103-119.1985) using known methods (D, IIanahan: J, Mol.
Blol、p、557−580.1980)により形質
転換させた。BloI, p. 557-580.1980).
その際、プレートには50Mg/mlのアンピシリンを
含むLBプレートを用いた。At that time, an LB plate containing 50 Mg/ml ampicillin was used as the plate.
前記のようにして調製した二重鎖DNAがpUc19の
HindIII及びBamHIの間に挿入された場合、
挿入されたDNAによるユニークなAf Im制限酵素
部位が存在する。そこで、プラスミドDNAをアルカリ
法(T、Maniatisら:Mo1ecular C
Ioning、p!6g−389,1982,Co1d
Spri−ng Harbor)にて大腸菌株より分
離し、Af Im(宝酒造)によって消化されることを
確認した。When the double-stranded DNA prepared as described above is inserted between HindIII and BamHI of pUc19,
There is a unique Af Im restriction enzyme site due to the inserted DNA. Therefore, plasmid DNA was extracted using the alkaline method (T, Maniatis et al.: Molecular C
Ioning, p! 6g-389, 1982, Cold
It was isolated from an Escherichia coli strain at Spring Harbor) and confirmed to be digested by Af Im (Takara Shuzo).
このようにして得られたプラスミドpcALN1に挿入
されたDNAについてダイデオキシ法(Hattori
ら: Anal、Blocheffi、 152 、p
、232−238゜1986)を用いてその塩基配列を
確認した。菌株をpcALN1/JM109と命名した
(第6図参照)。The DNA inserted into the thus obtained plasmid pcALN1 was tested using the dideoxy method (Hattori).
et al.: Anal, Blocheffi, 152, p.
, 232-238° 1986) to confirm its nucleotide sequence. The strain was named pcALN1/JM109 (see Figure 6).
実施例2:ラットカルモジュリンcDNAのサブクロー
ニング
ラットカルモジュリンcDNAは、ラット脳mRNAか
らOkayama−Berg法によッテ作成したcDN
Aライブラリーをラットカルモジュリン偽遺伝子(H,
NojiIlaおよびH,5okabe : J、 M
ol。Example 2: Subcloning of rat calmodulin cDNA Rat calmodulin cDNA is a cDNA constructed from rat brain mRNA by the Okayama-Berg method.
The A library was transformed into a rat calmodulin pseudogene (H,
NojiIla and H, 5okabe: J, M
ol.
Blot、 190. pJ91−400.1986)
をプローブとしてスクリーニングを行うことによってク
ローニングすることができる( H,Nojimaおよ
びH,5okabe:J。Blot, 190. pJ91-400.1986)
can be cloned by screening using as a probe (H, Nojima and H, 5okabe: J.
Hot、 Blot、 193. p、439−445
.1987)。Hot, Blot, 193. p, 439-445
.. 1987).
ラットカルモジュリンcDNAがクローニングされてい
るプラスミドpRcM1で形質転換されている大腸菌D
HI株より、アルカリ法(T、Man−iatisら:
Mo1ecular Cloning pJ88−3
89.1982゜Co1d Spring Harbo
r)を用いてpRcMlを単離した(第4図中A−Bは
pRcMl中のラットカルモジュリンcDNAを示す)
。1FgのpRcMIDNAを30μlの反応液
(10mMT r i s −HC1(pH7,5)、
10 lIMM g CI 2、IIfiMDTT、
50mMN a Cl、10ユニツトのHindm(宝
酒造)、10ユニツトのXbal(宝酒造))中で、3
7℃2時間反応させた後、0.8%アガロース電気泳動
により小フラグメントを分離した。ゲル片をチューブに
入れ、泳動緩衝液中で電気泳動することにより溶出した
。溶出液にエタノールを加えて沈澱させ、20u 1の
TE温溶液10ffiMTris。E. coli D transformed with plasmid pRcM1 in which rat calmodulin cDNA has been cloned
From HI strain, alkaline method (T, Man-iatis et al.:
Molecular Cloning pJ88-3
89.1982゜Co1d Spring Harbo
pRcMl was isolated using pRcMl (A-B in Figure 4 shows rat calmodulin cDNA in pRcMl).
. 1Fg of pRcMI DNA was added to 30 μl of the reaction solution (10 mM Tris-HC1 (pH 7,5),
10 lIMM g CI 2, IIfiMDTT,
3 in 50mN aCl, 10 units of Hindm (Takara Shuzo), 10 units of Xbal (Takara Shuzo)
After reacting at 7°C for 2 hours, small fragments were separated by 0.8% agarose electrophoresis. The gel piece was placed in a tube and eluted by electrophoresis in running buffer. Add ethanol to the eluate to precipitate it, and add 20u1 of TE warm solution to 10ffiMTris.
1mMEDTASpH8,0)にてこの沈澱を溶解した
。This precipitate was dissolved in 1mM EDTA (pH 8.0).
実施例1で得られたプラスミドpcALN1を30μl
の反応液(101uMT r i 5−HC1(pH7
,5) 、10mMM g CI 2.1nMDTT。30 μl of plasmid pcALN1 obtained in Example 1
reaction solution (101uMT r i 5-HC1 (pH 7
,5), 10mM g CI 2.1nMDTT.
50ffiMN a Cl 、 10:L−ットのHi
ndm(宝酒造)、10ユニツトのXbaI(宝酒造)
)中で、37℃2時間反応させた後、0.8%アガロー
ス電気泳動により大フラグメントを分離した。50ffiMNaCl, 10:L-tHi
ndm (Takara Shuzo), 10 units of XbaI (Takara Shuzo)
) for 2 hours at 37°C, the large fragment was separated by 0.8% agarose electrophoresis.
ゲル片をチューブに入れ、泳動緩衝液中で電気泳動する
ことにより溶出した。溶出液にエタノールを加えて沈澱
させ、20μlのTE温溶液10mMTr i s、I
IIMEDTASpH8,0)にてこの沈澱を溶解した
。このTE温溶液、前記のようにして調製した433塩
基対のN末の一部を欠損したカルモジュリンcDNAO
,2μgを反応液30u l (66mMT r i
s −HC1(pH7、4)、6.6 IIIMM
g CI 2.10n+MDTT、 0.1mMATP
、3ユニツトのT4DNAリガーゼ(べ−リンガ−・マ
ンハイム社))中で、14℃で6時間反応させた。この
反応液を用い、大腸菌JM109株(C,Yanisc
h−Perronら: Gene 33 、p、103
−119.1985)を既知の方法(D、Hanaha
n:J、Mol 。The gel piece was placed in a tube and eluted by electrophoresis in running buffer. The eluate was precipitated by adding ethanol, and 20 μl of TE warm solution 10 mM Tris, I
This precipitate was dissolved in IIMEDTAS pH 8.0). This TE warm solution was prepared using calmodulin cDNA containing a portion of the 433 base pair N-terminus prepared as described above.
, 2μg was added to 30ul of the reaction solution (66mMT r i
s-HC1 (pH 7, 4), 6.6 IIIMM
g CI 2.10n+MDTT, 0.1mMATP
, 3 units of T4 DNA ligase (Boehringer Mannheim) at 14°C for 6 hours. Using this reaction solution, Escherichia coli JM109 strain (C, Yanisc)
h-Perron et al.: Gene 33, p, 103
-119.1985) by a known method (D, Hanaha
n: J, Mol.
Biol、l)、557−580.1980)により形
質転換させた。Biol, I), 557-580.1980).
その際、プレートには50ug / to lのアンピ
シリンを含むLBプレートを用いた。アンピシリン耐性
のコロニーよりプラスミドDNAをアルカリ法(T、M
anjatisら : Mo1ecular Cl
onjng、p、368−369.1982、Co1d
Spring Harbor )にて大腸菌株より分
離し、AflII及びBamHIにて消化し、約500
塩基対のSD配列を含む成熟体のカルモジュリンをコー
ドするDNAが挿入された事を確認した。ついでダイデ
オキシ法(Ilattori ら:^na1.Bioc
hem、、152 、p、 232−238,1986
)を用いて塩基配列を確認した(第5図)。得られた菌
株をpOcAL7/JMI 09と命名した(第6図参
照)。At that time, an LB plate containing 50 ug/tol of ampicillin was used. Plasmid DNA was extracted from ampicillin-resistant colonies using the alkaline method (T, M
anjatis et al.: Molecular Cl
onjng, p, 368-369.1982, Cold
Spring Harbor) was isolated from an E. coli strain, digested with AflII and BamHI, and reduced to about 500
It was confirmed that DNA encoding mature calmodulin containing a base pair SD sequence was inserted. Then, the dideoxy method (Ilattori et al.: ^na1.Bioc
hem, 152, p. 232-238, 1986
) was used to confirm the base sequence (Figure 5). The obtained strain was named pOcAL7/JMI 09 (see Figure 6).
実施例3:カルモジュリンの発現用プラスミドの構築
既に提案されであるヒト顆粒球マクロファージコロニー
刺激因子の発現用プラスミド(h GMC3F)psT
6311 (第6図)(特願昭62−106148号明
細書参照)を用いて、カルモジュリンの発現用プラスミ
ドpTCAL7を構築した。Example 3: Construction of a plasmid for expressing calmodulin A plasmid for expressing human granulocyte-macrophage colony-stimulating factor (hGMC3F) psT, which has already been proposed
A plasmid pTCAL7 for expression of calmodulin was constructed using 6311 (Fig. 6) (see Japanese Patent Application No. 106148/1982).
psT6311は、pBR322由来のpAT153(
アマジャム・ジャパン)を基にして構築されたものであ
って、EcORIとAf IIIの間に化学合成した大
腸菌のトリプトファンオペロンのプロモーター、オペレ
ーター及び転写開始点よりSD配列直前までの塩基配列
を、Af lI[とBamHIの間に化学合成したSD
配列及びhGM−C3Fの構造遺伝子を、更に、Bam
HIとsph Iの間に化学合成したt rpaのター
ミネータ−を、それぞれ含んでいる、hGM−C3F発
現用ベクターである。psT6311 is derived from pBR322-derived pAT153 (
It was constructed based on the E. coli tryptophan operon chemically synthesized between EcORI and Af III, and contains the promoter, operator, and base sequence from the transcription start point to just before the SD sequence. SD chemically synthesized between [ and BamHI
The sequence and structural gene of hGM-C3F were further modified by Bam
This is an hGM-C3F expression vector containing a chemically synthesized t rpa terminator between HI and sph I.
実施例2で得られたpOcAL7をAf III及びB
amHIにて消化後、0.8%アガロース電気泳動によ
り、498塩基対のDNA断片を精製した。上記発現用
ベクターpsT6311をAf Im及びBamHIに
より消化後、上記498塩基対のSD配列を含むカルモ
ジュリンをT4リガーゼによりライゲーションして挿入
し、次いで大腸菌W3110株(ATCC27325)
を形質転換した。アンピシリン耐性のコロニーよりプラ
スミドを単離し、Af Im及びBamHIにて消化し
て、約500塩基対のDNA断片を得、本発明のSD配
列を含む遺伝子(第5図中AからB)が挿入された事を
確認した。得られた菌株をpTCAL7/W3110と
命名した(第6図参照)。The pOcAL7 obtained in Example 2 was transformed into Af III and B
After digestion with amHI, a 498 base pair DNA fragment was purified by 0.8% agarose electrophoresis. After the above expression vector psT6311 was digested with Af Im and BamHI, calmodulin containing the above 498 base pair SD sequence was ligated and inserted using T4 ligase, and then E. coli strain W3110 (ATCC27325) was inserted.
was transformed. A plasmid was isolated from an ampicillin-resistant colony and digested with Af Im and BamHI to obtain a DNA fragment of about 500 base pairs, into which the gene containing the SD sequence of the present invention (A to B in Figure 5) was inserted. I confirmed that. The obtained strain was named pTCAL7/W3110 (see Figure 6).
実施例4・カルモジュリンの製造法(第1図のDNA鎖
の発現)
プラスミドpTCAL7/W3110の発現実施例3て
得られたpTCAL7/W3110をアンピシリンを含
むし培地にて37℃で一晩振とう培養した。この培養液
501を10100OのM9培地(0,8%グルコース
、0.4%カザミノ酸、10μg / m Iチアミン
、50μg/mlアンピシリンを含む)に加え、37℃
にて3時間振とうした。インドールアクリル酸を最終濃
度20μg/n+Iになるように添加した。このまま更
に4時間振とう培養した。得られた大腸菌の一部をサン
プル緩衝液中で煮沸(5分)し、煮沸液について5DS
−ポリアクリルアミド電気泳動(SDS−PAGE)を
行なって、カルモジュリンの含有量を調べた。この条件
においては、カルモジュリン含有量は大腸菌細胞蛋白質
の約25%以上であった。Example 4 Calmodulin production method (expression of DNA strand shown in Figure 1) Expression of plasmid pTCAL7/W3110 pTCAL7/W3110 obtained in Example 3 was cultured with shaking in a medium containing ampicillin at 37°C overnight. did. This culture solution 501 was added to 10100O M9 medium (containing 0.8% glucose, 0.4% casamino acids, 10 μg/m Ithiamine, 50 μg/ml ampicillin) and incubated at 37°C.
The mixture was shaken for 3 hours. Indole acrylic acid was added to a final concentration of 20 μg/n+I. The culture was further continued with shaking for 4 hours. A portion of the obtained E. coli was boiled (5 minutes) in sample buffer, and the boiling solution was 5DS
- Polyacrylamide electrophoresis (SDS-PAGE) was performed to examine the calmodulin content. Under these conditions, the calmodulin content was about 25% or more of E. coli cell protein.
この培養液を遠心分離して菌体を得た。得られた菌体を
2011IMT r i s −HC1(pH8,0)
250ilに懸濁し、この懸濁液にリゾチームを最終濃
度10mg/mlになるように添加し、水中で1時間放
置した後、IIIMジチオスレイトール、1mMEDT
Aに調整して超音波処理を水中で行なった。This culture solution was centrifuged to obtain bacterial cells. The obtained bacterial cells were 2011IMT r i s -HC1 (pH 8,0)
Lysozyme was added to this suspension to a final concentration of 10 mg/ml, and after standing in water for 1 hour, IIIM dithiothreitol, 1mMEDT
Ultrasonic treatment was carried out in water with adjustment to A.
この懸濁液を90℃で5分間加熱後、水中にて冷却し、
10000xで超遠心を30分間4℃にて行ない、上清
を回収した。This suspension was heated at 90°C for 5 minutes, then cooled in water,
Ultracentrifugation was performed at 10,000x for 30 minutes at 4°C, and the supernatant was collected.
予め50+nMTr i 5−HCl (pH7,5
,1mMEDTA)150mlにて平衡化しておいたフ
ェニルセファロースCL−4Bカラム(ファルマシア社
:φ1x19cm)に上記で得られた上清を添加し、5
0+nMT r i 5−IC1(pH7,5、III
IMEDTA)150mlにて溶出した。50+nM Tri 5-HCl (pH 7,5
The supernatant obtained above was added to a phenyl Sepharose CL-4B column (Pharmacia: φ1 x 19 cm) that had been equilibrated with 150 ml of
0+nMT r i 5-IC1 (pH 7,5, III
It was eluted with 150 ml of IMEDTA).
素通り画分を集め、5IIIMCaC12に調整し、予
め50mMT r i 5−HC1(pH7,5,1f
f1MCaC12)300mlにて平衡化しておいたフ
ェニルセファ0−スCL−4Bカラム(ファルマシア社
:φ1x38cm)に添加した。初め50mMTr i
5−HCI (pH7,5,1mM Ca Cl 2
)300mlにて溶出した。次に50mMTrisH
Cl (pH7、5,1liM Ca C12,0,5
MNaCl)300mlにて溶出した。最後に50mM
T r i 5−HCl (pH7、5,1aMED
TA)300mlにて溶出し、目的のカルモジュリン蛋
白質画分を回収した。回収した溶液を水に対して3回透
析を繰り返し、凍結乾燥を行なって、粉末のカルモジュ
リン蛋白質(約400mg)を得た。The flow-through fractions were collected, adjusted to 5IIIMCaC12, and pretreated with 50mM Tri 5-HC1 (pH 7, 5, 1f
It was added to a Phenyl Sephas CL-4B column (Pharmacia: φ1 x 38 cm) that had been equilibrated with 300 ml of f1MCaC12). Initially 50mMTri
5-HCI (pH 7, 5, 1mM CaCl2
) It was eluted at 300 ml. Then 50mM TrisH
Cl (pH 7, 5, 1liM Ca Cl 2, 0, 5
Elution was performed with 300 ml of MNaCl). Finally 50mM
T r i 5-HCl (pH 7, 5, 1a MED
The target calmodulin protein fraction was recovered by elution with 300 ml of TA). The collected solution was repeatedly dialyzed against water three times and freeze-dried to obtain a powdered calmodulin protein (approximately 400 mg).
実施例5:力ルモジュリンの活性
各種カルモジュリンによる、ラットの脳から調製したC
yclic AMP(cAMP)ホスホジェステラー
ゼの活性化を61定した。Example 5: Activity of Calmodulin C prepared from rat brain with various calmodulins
The activation of yclic AMP (cAMP) phosphogesterase was determined.
反応液0. 5ml (80mMイミダゾール塩酸緩衝
液(pt(6、9) 、3 mMM g CI 2.0
. 3mMジチオスレイトール、O−2mM Ca C
12,1mg/m1ウシ血ン青アルブミン、ホスホジェ
ステラーゼ200μg/mLカルモジュリン(大腸菌に
おいて発現されたカルモジュリン(実施例4で得られた
凍結乾燥粉末)あるいはラット脳から調製されたカルモ
ジュリン) 、2mMcAMP)30℃で30分間反応
後、100℃、3分間加熱して反応を停止した。これに
0.21の5′ −ヌクレオチダーゼ溶液(0,5mg
/m15’ −ヌクレオチダーゼ、30 mMM n
Cl 2 )を加え30℃で20分間インキュベート
して、Pi影形成行なった(S、Kakiuchjら(
19g2):J、Blochcm、、 92.p、10
41)。Reaction liquid 0. 5ml (80mM imidazole hydrochloride buffer (pt(6,9), 3mM g CI 2.0
.. 3mM dithiothreitol, O-2mM CaC
12.1 mg/ml bovine blood blue albumin, phosphogesterase 200 μg/mL calmodulin (calmodulin expressed in E. coli (lyophilized powder obtained in Example 4) or calmodulin prepared from rat brain), 2mMcAMP) 30 After reacting at 100° C. for 30 minutes, the reaction was stopped by heating at 100° C. for 3 minutes. To this was added 0.21 5'-nucleotidase solution (0.5 mg
/m15'-nucleotidase, 30 mM n
Cl 2 ) was added and incubated at 30°C for 20 minutes to perform Pi shadow formation (S, Kakiuchj et al.
19g2): J, Blochcm, 92. p, 10
41).
16.7%過塩素酸を0.31添加して反応を停止後、
3000 rpmで5分間遠心して、蛋白質の除去を行
ない、上澄み画分のPiを無機リン定量法(B、N、A
mes: ”Methods in Enzymolo
gyE、P、Ncufeld編、V、Ginsburg
、Acadcmic Press。After stopping the reaction by adding 0.31% of 16.7% perchloric acid,
Proteins were removed by centrifugation at 3000 rpm for 5 minutes, and Pi in the supernatant fraction was determined using the inorganic phosphorus quantitative method (B, N, A
mes: ”Methods in Enzymolo
gyE, P. Ncufeld, V. Ginsburg.
, Acadmic Press.
New York、 Vol、8.p、115,198
8)を用いて定量した。New York, Vol. 8. p, 115,198
8).
すなわち、反応液2.1m1(0,71(上記上澄み画
分+H20) 、1.4a+1 (0,211111O
%アスコルビン酸+1.2m10.42%アンモニウム
モリブデン酸、IN硫酸中))を、45℃で20分間イ
ンキュベートし、その後室温に戻して770nmでの吸
光度を測定して、Piの定量を行なった。その結果、大
腸菌で発現されたカルモジュリン蛋白質は脳から調製さ
れたカルモジュリンとほぼ同等の活性を示した。測定結
果は以下の通りである。That is, 2.1 ml of reaction solution (0,71 (above supernatant fraction + H20), 1.4 a + 1 (0,211111 O
% ascorbic acid + 1.2 ml 10.42% ammonium molybdate in IN sulfuric acid)) was incubated at 45° C. for 20 minutes, then returned to room temperature and the absorbance at 770 nm was measured to quantify Pi. As a result, the calmodulin protein expressed in E. coli showed almost the same activity as calmodulin prepared from brain. The measurement results are as follows.
第1図は、カルモジュリンのアミノ酸配列とこれをコー
ドする本発明によるDNA塩基配列を示す説明図である
。
第2図は、化学合成したオリゴヌクレオチドの塩基配列
と制限酵素部位を示す説明図である。
第3図は、第2図のDNA塩基配列にコードされるアミ
ノ酸配列を示す説明図である。
第4図は、pRcMl中のラットカルモジュリンcDN
Aの塩基配列と制限酵素部位を示す説明図である。
第5図は、カルモジュリンをコードする塩基配列、SD
配列及び停止コドンを含む本発明の好ましいDNA鎖を
示す説明図である。
第6図は、カルモジュリンのpUc19へのクローニン
グ、及び発現ベクターの構築を示す説明図である。
出願人代理人 佐 藤 −雄FIG. 1 is an explanatory diagram showing the amino acid sequence of calmodulin and the DNA base sequence according to the present invention encoding the same. FIG. 2 is an explanatory diagram showing the base sequence and restriction enzyme site of a chemically synthesized oligonucleotide. FIG. 3 is an explanatory diagram showing the amino acid sequence encoded by the DNA base sequence of FIG. 2. Figure 4 shows the rat calmodulin cDNA in pRcMl.
FIG. 2 is an explanatory diagram showing the base sequence and restriction enzyme sites of A. Figure 5 shows the base sequence encoding calmodulin, SD
FIG. 2 is an illustration showing a preferred DNA strand of the invention including sequence and stop codon. FIG. 6 is an explanatory diagram showing the cloning of calmodulin into pUc19 and the construction of an expression vector. Applicant's agent Mr. Sato
Claims (1)
報が発現可能な状態で含むプラスミドによって形質転換
されたものであることを特徴とする大腸菌(E.col
i)。 3、第1図に示す塩基配列を含むDNA鎖を用意し、こ
のDNA鎖を、これをその遺伝情報が発現可能な状態で
含むプラスミドの作成、このプラスミドによる大腸菌(
E.coli)の形質転換および得られる形質転換体の
培養から成る工程に付して培養物中にカルモジュリンを
産生させることを特徴とするカルモジュリンの製造法。[Claims] 1. A DNA strand containing the base sequence shown in FIG. 2. Escherichia coli (E. coli) transformed with a plasmid containing a DNA strand containing the base sequence shown in FIG.
i). 3. Prepare a DNA strand containing the base sequence shown in Figure 1, create a plasmid containing this DNA strand in a state where its genetic information can be expressed, and use this plasmid to infect E. coli (
E. 1. A method for producing calmodulin, which comprises producing calmodulin in a culture through a step consisting of transforming E. coli and culturing the resulting transformant.
Priority Applications (1)
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JP63246239A JPH0642832B2 (en) | 1988-09-30 | 1988-09-30 | Calmodulin production |
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JPH0642832B2 JPH0642832B2 (en) | 1994-06-08 |
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ID=17145579
Family Applications (1)
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JP63246239A Expired - Lifetime JPH0642832B2 (en) | 1988-09-30 | 1988-09-30 | Calmodulin production |
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JP (1) | JPH0642832B2 (en) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO1999051186A2 (en) * | 1998-04-06 | 1999-10-14 | Millennium Pharmaceuticals, Inc. | Methods and compositions for the diagnosis and treatment of neuropsychiatric disorders |
CN111394359A (en) * | 2020-03-23 | 2020-07-10 | 西南大学 | Cloning, prokaryotic expression and protein purification method of carminespider mite calmodulin gene |
-
1988
- 1988-09-30 JP JP63246239A patent/JPH0642832B2/en not_active Expired - Lifetime
Non-Patent Citations (1)
Title |
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J.MOL.BIOL * |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO1999051186A2 (en) * | 1998-04-06 | 1999-10-14 | Millennium Pharmaceuticals, Inc. | Methods and compositions for the diagnosis and treatment of neuropsychiatric disorders |
WO1999051186A3 (en) * | 1998-04-06 | 2000-11-16 | Millennium Pharm Inc | Methods and compositions for the diagnosis and treatment of neuropsychiatric disorders |
CN111394359A (en) * | 2020-03-23 | 2020-07-10 | 西南大学 | Cloning, prokaryotic expression and protein purification method of carminespider mite calmodulin gene |
Also Published As
Publication number | Publication date |
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JPH0642832B2 (en) | 1994-06-08 |
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