JPH0276577A - Monoclonal antibody-producting cell line and monoclonal antibody - Google Patents

Monoclonal antibody-producting cell line and monoclonal antibody

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JPH0276577A
JPH0276577A JP63229119A JP22911988A JPH0276577A JP H0276577 A JPH0276577 A JP H0276577A JP 63229119 A JP63229119 A JP 63229119A JP 22911988 A JP22911988 A JP 22911988A JP H0276577 A JPH0276577 A JP H0276577A
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JP
Japan
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trinitrobenzene
monoclonal antibody
cell line
derivative
antibody
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Application number
JP63229119A
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Japanese (ja)
Inventor
Hirokazu Sugihara
宏和 杉原
Kimimasa Miyazaki
仁誠 宮崎
Makoto Takeya
誠 竹谷
Tadayasu Mitsumata
光亦 忠泰
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Panasonic Holdings Corp
Original Assignee
Matsushita Electric Industrial Co Ltd
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Publication date
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  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)

Abstract

PURPOSE:To produce a specific monoclonal antibody comprising an immunoglobulin by fusing mouse spleen cells sensitized with a specified antigen with a cell line originated from myeloma and subsequently cloning the fused cells. CONSTITUTION:A cell line originated from myeloma is fused with mouse spleen cells sensitized with an antigen consisting of a combined substance between trinitrobenzene or a derivative thereof and a protein and the fused cells are subsequently cloned to give an immunoglobulin in the supernatant of the cultured solution. The immuniglobuolin-producing cells are monoclonal antibody-producing cells line specifically combined with the trinitrobenzene or the derivative thereof. The monoclonal antibody produced from the cell line and purified permits the measurement of the trinitrobenzene or the derivative thereof utilizing a fluorescence-quenching phenomenon.

Description

【発明の詳細な説明】 産業上の利用分野 本発明は新規なモノクローナル抗体産生細胞ラインおよ
び当該細胞ラインより産生されるモノクローナル抗体に
関する。
DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION Field of the Invention The present invention relates to a novel monoclonal antibody-producing cell line and a monoclonal antibody produced by the cell line.

本発明により得られるモノクローナル抗体は、極微量の
トリニトロベンゼンまたはトリニトロベンゼンの誘導体
を、免疫測定法によって特異的、高感度、かつ迅速に測
定するのに有用である。ここで、トリニトロベンゼンの
誘導体とは、以ドのような構造を持つ物質を指す。
The monoclonal antibodies obtained by the present invention are useful for specifically, highly sensitive, and rapid measurement of minute amounts of trinitrobenzene or trinitrobenzene derivatives by immunoassay. Here, the term "trinitrobenzene derivative" refers to a substance having the following structure.

ただしXは、−CH3、S 03H1COOH。However, X is -CH3, S03H1COOH.

S HlN H2、−0Hを含む官能基を示す。S HlN H2, represents a functional group containing -0H.

従来の技術 トリニトロベンゼンまたはトリニトロベンゼンの誘導体
に対する抗体は、ジョン・ヴアンランドらによって報告
されている。 (例えば、ジョンφヴアンランド アン
ド マーシン・デル力、アナリティ力ル バイオケミス
トリー(Jon Wannlundand Marle
ne Deluca、Analytical Bioc
hemistry)、122.385〜393(+98
2))。しかしながら、報告されている抗体は免疫した
ヤギの血液を精製して得られるポリクローナル抗体であ
る。
Prior Art Antibodies against trinitrobenzene or derivatives of trinitrobenzene have been reported by John Vanland et al. (For example, John Wannlund and Marle, Analytical Biochemistry
ne Deluca, Analytical Bioc
hemistry), 122.385-393 (+98
2)). However, the reported antibodies are polyclonal antibodies obtained by purifying the blood of immunized goats.

我々は、すでにl・リニトロベンゼンまたハトリニトロ
ベンゼンの誘導体に対し特異的に結合するモノクローナ
ル抗体を作製し、このモノクローナル抗体を用いた同相
法ELISAによってトリニトロベンゼンまたはトリニ
トロベンゼンの誘導体を特異的、かつ高感度に検出する
ことに成功した。固相法E1、IsAは、現在最も広く
用いられている免疫測定法のひとつで、抗原、抗体のう
ちいずれか一者をポリスチレン製ビーズ、塩化ビニル製
96ウエルプレー1・等の固相上に固定して用いること
を特徴とする。以下、同相に抗原を固定したEl、IS
Aでトリニトロベンゼンの誘導体の−・っであるトリニ
トロトルエン 例を示す。以下の文中で、リン酸緩衝液ザリン(Pho
sphate−Buffered Saline) を
PBSと略す。
We have already created a monoclonal antibody that specifically binds to l-linitrobenzene or a derivative of trinitrobenzene, and using this monoclonal antibody to specifically bind to trinitrobenzene or a derivative of trinitrobenzene with high sensitivity, we performed an in-phase ELISA. was successfully detected. Solid phase method E1, IsA is one of the most widely used immunoassay methods at present, and either antigen or antibody is placed on a solid phase such as polystyrene beads or vinyl chloride 96-well plate 1. It is characterized by being used in a fixed manner. Below, El and IS with antigen immobilized in the same phase
A shows an example of trinitrotoluene, which is a derivative of trinitrobenzene. In the following text, phosphate buffer Zarin (Pho
Spate-Buffered Saline) is abbreviated as PBS.

(A)抗原のコーティング ウシ血清アルブミン(BSA) 1分子あたりトリニト
ロベンゼンが0.5分子結合したコンジュゲート(TN
pH6−BSA)を0.04%のアジ化ナトリウムを含
む、PBS (PBS−Az) テ希釈してBsAcl
i!度として0 、 1mg/mLの抗原溶液を調製し
た。
(A) Antigen coating Bovine serum albumin (BSA) Conjugate (TN) with 0.5 molecules of trinitrobenzene bound per molecule
pH 6-BSA) was diluted with PBS containing 0.04% sodium azide (PBS-Az) and BsACl
i! Antigen solutions of 0 and 1 mg/mL were prepared at different concentrations.

マイクロプレート(塩化ビニル製96ウエルプレート、
ダイナチック ラボラトリーズ社製、DYNATECH
 LABORATORIES社製)に抗原溶液を100
μI、/ウェル注入し、20℃で1夜保存した。アスピ
レータで抗原溶液を除去した後、0.05″Aの界面活
性剤(ポリオキシエチレングリコールソルビタンアルギ
ルエステル類)および0.04%のアジ化すトリウムを
含むPBS (PBS−AZ−T2O) テ3回洗浄し
、7スピレータで残存するPBS.AZ−720を除去
した。
Microplate (96-well plate made of vinyl chloride,
Manufactured by Dynatic Laboratories, DYNATECH
100% antigen solution in LABORATORIES)
μI/well was injected and stored at 20° C. overnight. After removing the antigen solution with an aspirator, PBS containing 0.05″A surfactant (polyoxyethylene glycol sorbitan argyl esters) and 0.04% thorium azide (PBS-AZ-T2O) Te3 It was washed twice and the remaining PBS.AZ-720 was removed with a 7-spirator.

(B)ブロッキング I%BSAを含むPBS−Az (BSA−PBS−A
z)を250μL/ウエル注入し、1時間家電で放置し
た。その後、アスピレータでBSA−PBS−Azを除
去した。即日に以降の実験を行わないときは、この状態
で、水で湿したろ紙と共に4℃で保存した。
(B) PBS-Az containing blocking I% BSA (BSA-PBS-A
z) was injected at 250 μL/well and left for 1 hour on a home appliance. Thereafter, BSA-PBS-Az was removed using an aspirator. If subsequent experiments were not to be performed on the same day, the sample was stored in this state at 4°C along with a filter paper moistened with water.

(C)抗体の反応 TNT溶液50μL/ウェルを注入し、振とうしながら
BSA−PBS−Azで適時希釈した精製抗体50μL
/ウエルをさらに加えた。常温で3時間保存した後、ア
スピレータで抗体溶液を除去し、PBA.AZ−T2O
で3回洗浄し、アスピレータで残存するPBS.AZ−
T2Oを除去した。
(C) Antibody reaction Inject 50 μL/well of TNT solution, and add 50 μL of purified antibody appropriately diluted with BSA-PBS-Az while shaking.
/added more wells. After storing at room temperature for 3 hours, remove the antibody solution with an aspirator and add PBA. AZ-T2O
Wash three times with PBS. AZ-
T2O was removed.

(D)第2抗体の反応 0、2μg/mLのヤギ由来ペルオキシダーゼ標jl抗
マウスIgG抗体(KPL Cat.14180G l
ot. HLIO−5)を!%BSAのPBS溶液に溶
解したもの(第2抗体溶液)50μL/ウエル注入し、
常温で30分放置した。アスピレータで第2抗体溶液を
除去し、0.05%の界面活性剤(ポリオキシエチレン
グリコールソルビタンアルキルエステル類)を含む、P
BS ( PBs−T2O)で3回洗浄し、さらにアス
ピレータで残存するPBS−720を除去した。
(D) Reaction of second antibody 0, 2 μg/mL goat-derived peroxidase labeled jl anti-mouse IgG antibody (KPL Cat.14180G l
ot. HLIO-5)! % BSA dissolved in PBS solution (second antibody solution), inject 50 μL/well,
It was left at room temperature for 30 minutes. Remove the second antibody solution with an aspirator and use
The plate was washed three times with BS (PBs-T2O), and the remaining PBS-720 was removed using an aspirator.

(E)基質の反応と停止 0−フェニレンジアミン(セレン検出用) 20mgを
1On+Lのクエン酸−リン酸バッファー(pH5)に
溶解し、使用直前に30%過酸化水素水4μLを加えた
溶液(基質溶液)を100μI、/ウェル注入し、室温
放置した。10分後、4N硫酸を25μL/ウエル注入
して反応を停止した。
(E) Substrate reaction and termination 20 mg of 0-phenylenediamine (for selenium detection) was dissolved in 1 On+L citric acid-phosphate buffer (pH 5), and 4 μL of 30% hydrogen peroxide was added immediately before use. Solution) was injected at 100 μl/well and left at room temperature. After 10 minutes, 25 μL/well of 4N sulfuric acid was injected to stop the reaction.

(F)測定 Tltertek Multfskan MCを用いて
イ92nm以上の吸光度を測定した。通常第1列は純水
を注入して参照値とし、適時(C)項のみを省いたブラ
ンク値を使用した。
(F) Measurement Absorbance above 92 nm was measured using Tltertek Multfskan MC. Normally, pure water was injected into the first column to serve as a reference value, and a blank value in which only the term (C) was omitted was used at appropriate times.

しかしながら、上述したような固相法ELISAては抗
原もしくは抗体が固相に固定されているため、抗原と抗
体の結合反応が平衡状態に達するまでに少なくとも2〜
3時間を要し、数分以内に終了する迅速な測定が不可能
であった。
However, in the solid-phase ELISA described above, since the antigen or antibody is immobilized on a solid phase, it takes at least 2 to 2 hours for the antigen-antibody binding reaction to reach an equilibrium state.
It took 3 hours and a quick measurement completed within a few minutes was not possible.

一方、一般に抗体を励起波長280nmで励起すると蛍
光波長340nmの蛍光を発するが、ある種の抗原では
、抗原と抗体が結合すると抗体の発する蛍光強度が減少
することが知られている。この現象は蛍光消光現象と呼
ばれ、例えばジニトシアニグンとこれに対する抗体が結
合したときに観察される(H,N、  アイゼン、G、
  W、  シスキンド、バイオケミストリー、3.9
B(1964)、  H,N、Eisen、G、W。
On the other hand, when an antibody is excited with an excitation wavelength of 280 nm, it generally emits fluorescence with a fluorescence wavelength of 340 nm, but it is known that for some types of antigens, when the antigen and antibody bind, the intensity of the fluorescence emitted by the antibody decreases. This phenomenon is called fluorescence quenching, and is observed, for example, when dinitocyanin and antibodies against it bind (H, N, Eisen, G,
W. Siskind, Biochemistry, 3.9
B. (1964), H.N., Eisen, G.W.

5lsklnd 、Blochemistry、3,9
96(19G4 ))。抗体の蛍光が、抗原を加えたこ
とによってどの程度減少したかを測定するこきによって
、加えた抗原量を定量することが可能である。この場合
抗体としてはモノクローナル抗体が用いられるが、抗原
及びモノクローナル抗体は、いずれも溶液中に溶解され
ており固定されていないため、両者の結合反応は数秒か
ら数十秒で平衡状態に達する。また、抗原と結合したモ
ノクローナル抗体と遊離のモノクローナル抗体の分離、
いわゆるB/F分離も不用であるため、非常に迅速な測
定が可能となる。蛍光消光現象をトリニトロトルエンま
たはトリニトロトルエンの誘導体の検出に応用すれば、
特異的に高感度にかつ迅速に測定が可能と思われる。
5lsklnd, Blochemistry, 3,9
96 (19G4)). The amount of antigen added can be quantified by measuring the extent to which the fluorescence of the antibody is reduced by adding the antigen. In this case, a monoclonal antibody is used as the antibody, but since both the antigen and the monoclonal antibody are dissolved in a solution and are not fixed, the binding reaction between the two reaches an equilibrium state in a few seconds to several tens of seconds. In addition, separation of antigen-bound monoclonal antibodies and free monoclonal antibodies,
Since so-called B/F separation is also unnecessary, very rapid measurement is possible. If the fluorescence quenching phenomenon is applied to the detection of trinitrotoluene or trinitrotoluene derivatives,
It seems possible to measure specifically, highly sensitively and quickly.

発明が解決しようとする課題 しかしながら、蛍光消光現象をトリニトロベンゼンまた
はトリニトロベンゼンの誘導体の測定に応用するために
は、まずトリニトロベンゼンまたはトリニトロベンゼン
の誘導体と特異的に結合し、かつ結合した結果蛍光消光
現象を示すようなモノクローナル抗体を作製する必要が
あった。
Problems to be Solved by the Invention However, in order to apply the fluorescence quenching phenomenon to the measurement of trinitrobenzene or trinitrobenzene derivatives, it is necessary to first bind specifically to trinitrobenzene or trinitrobenzene derivatives, and as a result of the binding, fluorescence quenching occurs. It was necessary to create a monoclonal antibody that would exhibit this phenomenon.

課題を解決するための手段 トリニトロベンゼンまたはトリニトロベンゼンの誘導体
と蛋白質の結合物質からなる免疫原で感作されたマウス
の脾臓細胞と、骨髄腫由来の細胞ラインとを融合後クロ
ーニングして得られ、培養上清中に産生されるイムノグ
ロブリンが、トリニトロベンゼンまたはトリニトロベン
ゼンの誘導体ニ特異的に結合し、かつトリニトロベンゼ
ンまたはトリニトロベンゼンの誘導体との結合にともな
って当該モノクローナル抗体固有の蛍光の強度が減少す
ることを特徴とするモノクローナル抗体産生細胞ライン
を構成する。
Means for solving the problem is obtained by fusion and cloning of mouse spleen cells sensitized with an immunogen consisting of trinitrobenzene or a derivative of trinitrobenzene and a protein binding substance and a myeloma-derived cell line, Immunoglobulin produced in the culture supernatant specifically binds to trinitrobenzene or trinitrobenzene derivatives, and the intensity of fluorescence specific to the monoclonal antibody decreases as it binds to trinitrobenzene or trinitrobenzene derivatives. This constitutes a monoclonal antibody-producing cell line characterized by:

作用 上記のような細胞ラインを確立し、そこから産生される
モノクローナル抗体を精製して、このモノクローナル抗
体を用いれば、蛍光消光現象を利用したトリニトロベン
ゼンまたはトリニトロベンゼンの誘導体の測定が可能と
なる。またハイブリドーマ細胞ラインを培養する限り一
定の特性のモノクローナル抗体を提供することができる
Function: By establishing the above cell line, purifying the monoclonal antibody produced therefrom, and using this monoclonal antibody, it becomes possible to measure trinitrobenzene or trinitrobenzene derivatives using the fluorescence quenching phenomenon. Furthermore, monoclonal antibodies with certain characteristics can be provided as long as hybridoma cell lines are cultured.

実施例 免疫グロブリンを産生ずる細胞は牌臓内に蓄積される。Example Cells that produce immunoglobulins accumulate within the spleen.

牌臓細胞はそれ自体増殖能力を持たないが骨髄腫細胞ラ
インと融合することによって、増殖しながら抗体を産生
ずるハイブリドーマ細胞ラインを作製することができる
。目的とする性質(例えば、産生される抗体が抗原との
結合にともない蛍光消光現象を示す等)を持ち、かつ高
い増殖能力を示すハイブリドーマ細胞1個を選択(クロ
ーニング)シ、これを培養すると目的とする性質を持つ
モノクローナル抗体が産生される。
Spleen cells themselves do not have the ability to proliferate, but by fusing with myeloma cell lines, it is possible to create hybridoma cell lines that proliferate and produce antibodies. Select (clon) one hybridoma cell that has the desired properties (for example, the produced antibody exhibits a fluorescence quenching phenomenon upon binding with an antigen) and exhibits high proliferation ability, and culture it to achieve the desired purpose. A monoclonal antibody with the properties is produced.

本発明において、抗原はトリニトロベンゼンまたはトリ
ニトロベンゼンの誘導体である。
In the present invention, the antigen is trinitrobenzene or a derivative of trinitrobenzene.

ここで、トリニトロベンゼンの誘導体とは、例えば以下
のような構造を持つ物質を指す。
Here, the trinitrobenzene derivative refers to a substance having the following structure, for example.

ただしXは、−CH3、5OsH1−COOH1SHl
  NH2、OHを含む官能基を示す。
However, X is -CH3, 5OsH1-COOH1SHl
Indicates a functional group including NH2 and OH.

これらの物質は何れも低分子であるため、蛋白質等の高
分子に結合させることにより、初めて免疫原として作用
する。ニワトリ由来のガンマグロブリンは免疫反応を良
好に惹起するため、上記目的に用いるのに好適な蛋白質
である。
Since these substances are all low molecules, they act as immunogens only by binding to macromolecules such as proteins. Chicken-derived gamma globulin is a protein suitable for use for the above purpose because it induces an immune response well.

また、Balb/C系統またはA/J系統のマウスは良
好な免疫反応を示すため、本発明に使用するのに適して
いる。
Furthermore, Balb/C strain or A/J strain mice exhibit good immune responses and are therefore suitable for use in the present invention.

これらを踏まえて、発明者らは、免疫したマウスの脾臓
細胞とマウス骨髄腫由来細胞ラインを融合し、トリニト
ロベンゼンまたはトリニトロベンゼンの誘導体に対して
高いアフィニティーを有し、かつトリニトロベンゼンま
たはトリニトロベンゼンの誘導体との結合にともない、
励起波長280nmで励起した際の340nmの蛍光の
強度が減少するモノクローナル抗体を産生ずる細胞ライ
ンを作製することができた。
Based on these findings, the inventors fused spleen cells from immunized mice with a mouse myeloma-derived cell line, which had high affinity for trinitrobenzene or trinitrobenzene derivatives, and With the combination with the derivative,
We were able to create a cell line that produces a monoclonal antibody whose fluorescence intensity at 340 nm decreases when excited at an excitation wavelength of 280 nm.

実施例1 以下、実施例に沿って本発明の詳細な説明する。Example 1 Hereinafter, the present invention will be described in detail with reference to Examples.

本発明を実施するに当たり、融合細胞の評価、モノクロ
ーナル抗体の評価を抗原を固定したELISAを用いて
行った。
In carrying out the present invention, fusion cells and monoclonal antibodies were evaluated using ELISA in which antigens were immobilized.

まず、ELISAの実験手順を説明する。また、以下の
文中で、リン酸緩衝液すリン(Phosphate−B
uffered 5aline)をPBSと略す。
First, the experimental procedure of ELISA will be explained. In addition, in the following text, phosphate buffer solution (Phosphate-B)
5aline) is abbreviated as PBS.

(A)抗原のコーティング ウシ血清アルブミン(BSA) 1分子あたりトリニト
ロベンゼンが0.5分子結合したフンシュゲート(TN
pH,6−BSA)を0.04%のアジ化ナトリウムを
含む、PBS (PBS−AZ)で希釈してBSAの濃
度として0 、1mg/mLの抗原溶液を調製した。
(A) Antigen coating Bovine serum albumin (BSA) Funshugate (TN) with 0.5 molecules of trinitrobenzene bound per molecule of bovine serum albumin (BSA)
Antigen solutions with BSA concentrations of 0 and 1 mg/mL were prepared by diluting the antigen solution (pH, 6-BSA) with PBS (PBS-AZ) containing 0.04% sodium azide.

マイクロプレート(塩化ビニル製96ウエルプレート、
ダイナチック ラボラトリーズ社製、DYNATECH
LABORATORIES社製)に抗原溶液を100μ
L/ウエル注入し、20°Cで1夜保存した。アスピレ
ータで抗原溶液を除去した後、0.05%の界面活性剤
(ポリオキシエチレングリコールソルビタンアルキルエ
ステル類)および0.04%のアジ化ナトリウムを含む
PBS (PBS−AZ−T2O)で3回洗浄し、アス
ピレータで残存するPBS、AZ−T2Oを除去した。
Microplate (96-well plate made of vinyl chloride,
Manufactured by Dynatic Laboratories, DYNATECH
Add 100μ of antigen solution to LABORATORIES).
L/well was injected and stored overnight at 20°C. After removing the antigen solution with an aspirator, wash three times with PBS containing 0.05% surfactant (polyoxyethylene glycol sorbitan alkyl esters) and 0.04% sodium azide (PBS-AZ-T2O). Then, the remaining PBS and AZ-T2O were removed using an aspirator.

(B)ブロッキング I%BSAを含むPBS−Az (BSA−PBS−A
z)を250μL/ウエル注入し、1時間室温で放置し
た。その後、アスピレータでBSA−PBS−Azを除
去した。即日に以降の実験を行わないときは、この状態
で、水で湿したろ紙と共に4°Cで保存した。
(B) PBS-Az containing blocking I% BSA (BSA-PBS-A
z) was injected at 250 μL/well and left at room temperature for 1 hour. Thereafter, BSA-PBS-Az was removed using an aspirator. If subsequent experiments were not to be performed on the same day, the samples were stored in this state at 4°C along with filter paper moistened with water.

(C)抗体の反応 BSA−PBS−Azで適時希釈した抗体(血清、培養
土〆y1  精製抗体等)100μL/ウエルを注入し
た。常温で3時間保存した後、アスピレータで抗体溶液
を除去し、PBA 、AZ−T2Oで3回洗浄し、アス
ピレータで残存するPBS、AZ−T2Oを除去した。
(C) Antibody reaction 100 μL/well of antibodies (serum, culture medium, purified antibody, etc.) appropriately diluted with BSA-PBS-Az was injected. After being stored at room temperature for 3 hours, the antibody solution was removed using an aspirator, and the plate was washed three times with PBA and AZ-T2O, and the remaining PBS and AZ-T2O were removed using an aspirator.

(D)第2抗体の反応 0.2μg/mLのヤギ由来ペルオキシダーゼ標識抗マ
ウスIgG抗体(KPL Cat、1418Hlot、
肚1O−5)をI%BSAのPBS溶液に溶解したもの
(第2抗体溶液)50μL/ウエル注入し、常温で30
分放置した。アスピレータで第2抗体溶液を除去し、o
、05%の界面活性剤(ポリオキシエチレングリコール
ソルビタンアルキルエステル類)を含む、PBS (P
BS−T2O)で3回洗浄し、さらにアスピレータで残
存するPBS−T2Oを除去した。
(D) Reaction of second antibody 0.2 μg/mL goat-derived peroxidase-labeled anti-mouse IgG antibody (KPL Cat, 1418Hlot,
10-5) dissolved in I% BSA PBS solution (second antibody solution) was injected at 50 µL/well and incubated at room temperature for 30 µL/well.
I left it for a minute. Remove the second antibody solution with an aspirator and o
, containing 05% surfactant (polyoxyethylene glycol sorbitan alkyl esters)
BS-T2O) three times, and the remaining PBS-T2O was removed using an aspirator.

(E)基質の反応と停止 0−フェニレンジアミン(セレン検出用)20mgを1
0mLのクエン酸−リン酸バッファー(pH5)に溶解
し、使用直前に30%過酸化水素水4μLを加えた溶液
(基質溶液)を+00μL/ウエル注入し、室温放置し
た。10分後、4N硫酸を25μL/ウエル注入して反
応才停止した。
(E) Substrate reaction and termination 0-phenylenediamine (for selenium detection) 20mg
A solution (substrate solution) dissolved in 0 mL of citric acid-phosphate buffer (pH 5) and added with 4 μL of 30% hydrogen peroxide immediately before use was injected at +00 μL/well and left at room temperature. After 10 minutes, 25 μL/well of 4N sulfuric acid was injected to stop the reaction.

(F)測定 Tltertek Multlskan MCを用いて
492ni以上の吸光度を測定した。通常第1列は純水
を注入して参照値とし、適時(C)項のみを省いたブラ
ンク値を使用した。
(F) Measurement Absorbance of 492 ni or more was measured using Tltertek Multlskan MC. Normally, pure water was injected into the first column to serve as a reference value, and a blank value in which only the term (C) was omitted was used at appropriate times.

以下、本発明のモノクローナル抗体産生細胞ラインを作
製する実験方法を記載する。
Below, an experimental method for producing the monoclonal antibody-producing cell line of the present invention will be described.

1)免疫原の作製 Jon Wannlundらの報告(前出)に従って、
免疫原の合成を行なった。以降の手順をステップ毎に記
す。
1) Preparation of immunogen According to the report of Jon Wannlund et al. (cited above),
The immunogen was synthesized. The subsequent procedure will be described step by step.

(A)CGG溶液の作成 CGG (Calbjochem17GF−936(1
)  10(1mgを、 (1,IM NaHcOs 
(pH8,4) 2On+]中に分散し、30m1n攪
はんを行って、完全に溶解させた。
(A) Preparation of CGG solution CGG (Calbjochem17GF-936 (1
) 10 (1 mg, (1, IM NaHcOs
(pH 8,4) 2On+] and stirred for 30ml to completely dissolve.

(B)TNBS溶液の作成 トリニトロベンゼンスルホン酸ナトリウムニ水和物(以
下TNBS) 14mgを、0.1MNaHCO35m
lに溶解した。
(B) Preparation of TNBS solution 14 mg of sodium trinitrobenzenesulfonate dihydrate (hereinafter referred to as TNBS) was dissolved in 35 m
Dissolved in l.

(C) TNP−CGGの合成 TNBS溶液とCGG溶液を混合し、攪はんしなから3
7°Cでインキュベートを行なった。2時間後ゲルクロ
マトグラフィーで低分子を除去し、32.5mLのTN
P−CGG溶液を得た。
(C) Synthesis of TNP-CGG Mix the TNBS solution and CGG solution and stir.
Incubation was performed at 7°C. After 2 hours, remove low molecules by gel chromatography and add 32.5 mL of TN.
A P-CGG solution was obtained.

以上の操作で、0001分子あたり、TNB32分子が
結合した免疫原を得た。
Through the above operations, an immunogen to which 32 TNB molecules were bound per 0001 molecule was obtained.

(D)アジュバントエマルジョンの調製合成によって得
たTNP−CGGをPBSで希釈して、1mg/mL溶
液3mLを得た。アジュバント (Adjuvant、
 Complete Freundヒト結核死菌含、和
光、H37RV)−15= をよく撹はんしながら3mL取り、ホモジナイザで攪は
んしながら(10,00Orpm> 、TNT−CGG
溶液溶液3壱L回に分けて加えた。十分に乳化し、小量
を水の上に落としても広がらなくなったのを確認した。
(D) Preparation of adjuvant emulsion TNP-CGG obtained by synthesis was diluted with PBS to obtain 3 mL of a 1 mg/mL solution. Adjuvant
Take 3 mL of Complete Freund (containing killed human tuberculosis bacteria, Wako, H37RV)-15= while stirring well, and stir with a homogenizer (10,00 Orpm>, TNT-CGG).
The solution solution was added in 3 L portions. It was confirmed that it was sufficiently emulsified and did not spread even when a small amount was dropped on water.

2)ハイブリドーマ細胞の作製 (A)マウスの免疫 生後約8週のマウス(Balb/c) 20匹の腹腔に
アジュバントエマルジョンを200μLずつ注射した。
2) Preparation of hybridoma cells (A) Immunization of mice 200 μL of the adjuvant emulsion was injected into the abdominal cavity of 20 mice (Balb/c) about 8 weeks old.

(B)抗体産生のチエツク 免疫注射後、28日を経過したマウスについて、眼静脈
より50〜100μLの血液を遠心管に採取した。
(B) Check for antibody production From mice 28 days after the immunization injection, 50 to 100 μL of blood was collected from the eye vein into a centrifuge tube.

血清を遠心分離し、ELISA法にょるスクリーニング
を行ったところ、全てのマウスについて抗トリニトロベ
ンゼン抗体の産生が確認された。
When the serum was centrifuged and screened using ELISA, production of anti-trinitrobenzene antibodies was confirmed in all mice.

(C)マウスのブースト (B)項のスクリーニングで特にタイターの高かった2
匹のマウスについてマウスの脾臓を肥大させるためにブ
ースト(弱い免疫原の注射)を行った。免疫原としてT
NP−CGGをPBsで希釈して得た0 、5mg/m
L溶液を、アジュバントを加えずにそのま=16− ま用いた。免疫後6週を経過した時点でこの免疫原10
0μLをマウスの腹腔に注射した。
(C) Mouse boost (B) 2 with particularly high titer in screening
A boost (injection of a weak immunogen) was given to two mice to enlarge their spleens. T as an immunogen
0.5 mg/m obtained by diluting NP-CGG with PBs
The L solution was used as is without the addition of adjuvant. 6 weeks after immunization, this immunogen 10
0 μL was injected into the peritoneal cavity of the mouse.

(D)細胞融合 ブースト後3日を経過したマウスの脾臓細胞を摘出し、
平均分子量1.500のポリエチレングリコールを用い
た常法により、マウス骨髄腫由来細胞ライン(P3XG
3−Ag8.G53)と融合した。フィーダー(成長因
子を供給する細胞)として同じマウスの脾臓細胞を用い
、96ウ工ルプレート5枚の上で10%のウシ胎児血清
を含む■AT培地で培養した。1週間後、10%のウシ
胎児血清を含むIIT培地と交換した。
(D) Spleen cells of mice 3 days after cell fusion boost were removed,
A mouse myeloma-derived cell line (P3XG
3-Ag8. G53). Spleen cells from the same mouse were used as feeders (cells that supply growth factors) and cultured in AT medium containing 10% fetal bovine serum on five 96-well plates. One week later, the medium was replaced with IIT medium containing 10% fetal bovine serum.

3)モノクローナル抗体の作製 (A)クローニング ELISA法によるスクリーニングを行い、タイターの
高いものから上位5ウエルを選択した。ウェルあたり1
ケの細胞が含まれる濃度に希釈(限界希釈)し、96ウ
エルのマイクロプレート10枚に分注した。
3) Preparation of monoclonal antibodies (A) Cloning Screening was performed by ELISA method, and the top 5 wells with the highest titers were selected. 1 per well
The mixture was diluted (limiting dilution) to a concentration containing 50 cells, and dispensed into 10 96-well microplates.

フィーダーとして生後4週のマウス(Balb/c)の
胸腺細胞を用いて初期増殖を促した。プレートのサイズ
を上げながら培養を進め、適時上清についてELISA
によるスクリーニングを繰り返し、TNTに対して高い
タイターを示し、かつ良好な増殖を示している細胞ライ
ンを選別し、200m1中で5X106ケ/mlの濃度
に至るまで培養を進めた。
Initial proliferation was promoted using 4-week-old mouse (Balb/c) thymocytes as feeders. Proceed with the culture while increasing the plate size, and perform ELISA on the supernatant at appropriate times.
Screening was repeated, and cell lines showing high titer for TNT and good growth were selected and cultured in 200 ml until a concentration of 5×10 6 cells/ml was reached.

(B)ファルマシア製Protein A−Sepha
rose CL−4Bを用いたアフィニティークロマト
グラフィにより細胞培養上清からモノクローナル抗体を
精製した。このモノクローナル抗体はSDSポリアクリ
ルアミドゲル電気泳動により、標準蛋白との比較がら、
精製抗体は分子量約50,000のH鎖と約20.00
0のL鎖からなるIgGであることを確認した。
(B) Protein A-Sepha manufactured by Pharmacia
Monoclonal antibodies were purified from cell culture supernatants by affinity chromatography using rose CL-4B. This monoclonal antibody was compared with standard protein by SDS polyacrylamide gel electrophoresis.
The purified antibody has a heavy chain with a molecular weight of about 50,000 and a molecular weight of about 20.00.
It was confirmed that it was an IgG consisting of 0 L chains.

(C)精製されたモノクローナル抗体をPBSテ希釈し
、10−7M溶液を調整した。この溶液380μ目とT
NTをPBSに溶解した溶液20μmを加え、混合溶液
を280nmで励起し340nmの蛍光強度を測定した
。加えたTNT溶液の濃度ハ10−6M、  10−7
M、  10−8M、  10”Mテあった。TNTを
加えた際に、特に蛍光強度の減少が顕著なモノクローナ
ル抗体を産生ずる細胞ラインを最終的に選別した。
(C) The purified monoclonal antibody was diluted with PBS to prepare a 10-7M solution. This solution 380 μm and T
20 μm of a solution of NT dissolved in PBS was added, the mixed solution was excited at 280 nm, and the fluorescence intensity at 340 nm was measured. Concentration of added TNT solution: 10-6M, 10-7
M, 10-8M, and 10''M were selected.Finally, a cell line was selected that produced a monoclonal antibody with a particularly remarkable decrease in fluorescence intensity when TNT was added.

(D)最終的に選別された細胞ラインは上清を遠6分離
し、5X 10”/mLの濃度でFe2 : DMSO
=9 : Iの溶液ImLに浮遊させ、−80℃で凍結
した後、液体窒素内に移して長期保存状態にした。
(D) The final sorted cell line was separated by centrifugation of the supernatant and treated with Fe2:DMSO at a concentration of 5X 10”/mL.
=9: It was suspended in ImL of a solution of I, frozen at -80°C, and then transferred to liquid nitrogen for long-term storage.

発明の効果 本発明のモノクローナル抗体産生細胞ラインから産生さ
れるモノクローナル抗体を精製して、このモノクローナ
ル抗体を用いれば、蛍光消光現象を利用したトリニトロ
ベンゼンまたはトリニトロベンゼンの誘導体の測定が可
能となる。
Effects of the Invention By purifying the monoclonal antibody produced from the monoclonal antibody producing cell line of the present invention and using this monoclonal antibody, it becomes possible to measure trinitrobenzene or trinitrobenzene derivatives using the fluorescence quenching phenomenon.

Claims (4)

【特許請求の範囲】[Claims] (1)トリニトロベンゼンまたはトリニトロベンゼンの
誘導体と蛋白質の結合物質からなる免疫原で感作された
マウスの脾臓細胞と、骨髄腫由来の細胞ラインとを融合
後クローニングして得られ、培養上清中に産生されるイ
ムノグロブリンが、トリニトロベンゼンまたはトリニト
ロベンゼンの誘導体に特異的に結合し、かつトリニトロ
ベンゼンまたはトリニトロベンゼンの誘導体との結合に
ともなって当該モノクローナル抗体固有の蛍光の強度が
減少することを特徴とするモノクローナル抗体産生細胞
ライン。
(1) Obtained by fusion and cloning of mouse spleen cells sensitized with an immunogen consisting of trinitrobenzene or a trinitrobenzene derivative and a binding substance to a protein, and a myeloma-derived cell line; The immunoglobulin produced by the monoclonal antibody specifically binds to trinitrobenzene or a derivative of trinitrobenzene, and the intensity of fluorescence specific to the monoclonal antibody decreases as it binds to trinitrobenzene or a derivative of trinitrobenzene. Monoclonal antibody-producing cell line.
(2)免疫原で感作されたマウスが、Balb/c系統
またはA/J系統であることを特徴とする請求項1記載
のモノクローナル抗体産生細胞ライン。
(2) The monoclonal antibody-producing cell line according to claim 1, wherein the mouse sensitized with the immunogen is of the Balb/c strain or the A/J strain.
(3)免疫原がトリニトロベンゼンまたはトリニトロベ
ンゼンの誘導体とチキン由来のガンマグロブリンとの結
合物質からなることを特徴とする請求項1記載のモノク
ローナル抗体産生細胞ライン。
(3) The monoclonal antibody-producing cell line according to claim 1, wherein the immunogen consists of a binding substance of trinitrobenzene or a derivative of trinitrobenzene and chicken-derived gamma globulin.
(4)請求項1記載のモノクローナル抗体産生細胞ライ
ンより産生され、トリニトロベンゼンまたはトリニトロ
ベンゼンの誘導体に特異的に結合し、かつトリニトロベ
ンゼンまたはトリニトロベンゼンの誘導体との結合にと
もなって、抗体固有の蛍光の強度が減少することを特徴
とするモノクローナル抗体。
(4) The monoclonal antibody produced by the monoclonal antibody-producing cell line according to claim 1, which specifically binds to trinitrobenzene or a derivative of trinitrobenzene, and upon binding to trinitrobenzene or a derivative of trinitrobenzene, has a unique fluorescence of the antibody. A monoclonal antibody characterized by a decrease in the intensity of.
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