JPH02502878A - Proteins and their production methods, DNA sequences, antibodies and their applications, poxviruses, transformed or infected cells and pharmaceutical formulations useful for the prevention of toxoplasmosis. - Google Patents

Proteins and their production methods, DNA sequences, antibodies and their applications, poxviruses, transformed or infected cells and pharmaceutical formulations useful for the prevention of toxoplasmosis.

Info

Publication number
JPH02502878A
JPH02502878A JP1500776A JP50077689A JPH02502878A JP H02502878 A JPH02502878 A JP H02502878A JP 1500776 A JP1500776 A JP 1500776A JP 50077689 A JP50077689 A JP 50077689A JP H02502878 A JPH02502878 A JP H02502878A
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
protein
poxvirus
virus
gene
sequence
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
JP1500776A
Other languages
Japanese (ja)
Inventor
ブルノ ギイ
セスブロン マリー‐フランス
ルコック ジャン‐ピエール
カプロン アンドレ
Original Assignee
トランスジーン ソシエテ アノニム
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by トランスジーン ソシエテ アノニム filed Critical トランスジーン ソシエテ アノニム
Publication of JPH02502878A publication Critical patent/JPH02502878A/en
Pending legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K16/00Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies
    • C07K16/18Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans
    • C07K16/20Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans from protozoa
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/44Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans from protozoa
    • C07K14/45Toxoplasma
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/52Cytokines; Lymphokines; Interferons
    • C07K14/54Interleukins [IL]
    • C07K14/55IL-2
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K2319/00Fusion polypeptide
    • C07K2319/01Fusion polypeptide containing a localisation/targetting motif
    • C07K2319/02Fusion polypeptide containing a localisation/targetting motif containing a signal sequence

Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるため要約のデータは記録されません。 (57) [Summary] This bulletin contains application data before electronic filing, so abstract data is not recorded.

Description

【発明の詳細な説明】 11、コードする遺伝子が第1図のc、DNAの全部または一部からなる請求項 9または10に記載の細胞。[Detailed description of the invention] 11. A claim in which the encoded gene consists of all or part of the DNA c in Figure 1. 9 or 10.

12、請求項1乃至4のいずれかに記載の蛋白質をコードする遺伝子を有し、ポ ックスウィルスにより該遺伝子を発現させる要素の支配下に置かれたポックスウ ィルス。12, comprising a gene encoding the protein according to any one of claims 1 to 4; The poxvirus puts the poxvirus under the control of the element that expresses the gene. Virus.

13、ポックスウィルスがワクシニアウィルスである請求項12に記載のポック スウィルス。13. The pox virus according to claim 12, wherein the pox virus is vaccinia virus. Swirls.

14、上記遺伝子を発現させる要素がワタシニアの7.5に遺伝子のウィルスプ ロモータを有する請求項13に記載のポックスウィルス。14. The element that causes the expression of the above gene is the viral protein of cotton 7.5. The poxvirus according to claim 13, having a lomotor.

15、上記遺伝子を発現させる要素がヒトIL2シグナル配列をコードする配列 を有する請求項14に記載のポックスウィルス。15. The element for expressing the above gene is a sequence encoding a human IL2 signal sequence. The poxvirus according to claim 14.

16、請求項12乃至15のいずれかに記載のポックスウィルスで感染された哺 乳類細胞。16. A mammal infected with the poxvirus according to any one of claims 12 to 15. Mammalian cells.

17、請求項8乃至11のいずれかまたは請求項16に記載の細胞を適当な培地 で培養し、蛋白質を回収することによる、請求項1乃至7のいずれかに記載の蛋 白質の製造方法。17. The cells according to any one of claims 8 to 11 or claim 16 in an appropriate medium. The protein according to any one of claims 1 to 7, which is obtained by culturing the protein in How white matter is produced.

18、請求項1乃至7のいずれかに記載の24Kd蛋白質をコードするDNA配 列。18. A DNA sequence encoding the 24Kd protein according to any one of claims 1 to 7. Column.

19、第1図に記載のDNA配列。19, DNA sequence shown in FIG.

20、請求項1乃至7のいずれかに記載の蛋白質および請求項12乃至15のい ずれかに記載のポックスウィルスのから選ばれる少な(とも1種を活性薬物とし て含有する、特にトキソプラズマ症の予防に有効な医薬製剤。20, the protein according to any one of claims 1 to 7 and the protein according to claims 12 to 15 A small number of poxviruses selected from any of the listed poxviruses are used as the active drug. A pharmaceutical formulation particularly effective for the prevention of toxoplasmosis.

21、請求項12乃至15のいずれかに記載のポックスウィルスを活性薬物とし て含有し、該ウィルスが生菌である請求項19に記載の医薬製剤。21. The poxvirus according to any one of claims 12 to 15 is used as an active drug. 20. The pharmaceutical preparation according to claim 19, wherein the virus is a live bacteria.

22、請求項12乃至15のいずれかに記載のポックスウィルスを活性薬物とし て含有し、該ウィルスが死菌である請求項20に記載の医薬製剤。22. The poxvirus according to any one of claims 12 to 15 is used as an active drug. 21. The pharmaceutical preparation according to claim 20, wherein the virus is killed.

23、ヒトまたは動物に投与可能な形態である請求項2゜乃至22のいずれかに 記載の医薬製剤。23. Any one of claims 2 to 22, which is in a form that can be administered to humans or animals. Pharmaceutical formulations as described.

24、請求項1乃至7のいずれかに記載の蛋白質に対して生産されるか、請求項 12乃至15のいずれかに記載のポックスウィルスで誘発される抗体。24. Produced for the protein according to any one of claims 1 to 7, or claimed 16. An antibody induced by the poxvirus according to any one of 12 to 15.

25、請求項24に記載の抗体または請求項1乃至7のいずれかに記載の蛋白質 のトキソプラズマ症診断剤への適用。25, the antibody according to claim 24 or the protein according to any one of claims 1 to 7 Application of toxoplasmosis diagnostic agent.

明細書 蛋白質およびその製造方法、DNA配列、抗体およびその適用、ポックスウィル ス、形質転換されたまたは感染された細胞ならびにトキソプラズマ症の予防に有 用な医薬品製剤本発明は、トキソプラズマ症ワクチンの開発に関する。Specification Proteins and their production methods, DNA sequences, antibodies and their applications, poxviruses useful for preventing toxoplasmosis, transformed or infected cells, and toxoplasmosis. The present invention relates to the development of toxoplasmosis vaccines.

トキソプラズマ症は、原生類寄生虫であるトキソブラズ7 ボンブイ(Toxo plasma gondii)に起因する。該寄生虫は、厳密に細胞内寄生虫で ある真核単細胞生物である。Toxoplasmosis is caused by the protozoan parasite Toxobraz 7 plasma gondii). The parasite is strictly an intracellular parasite. A eukaryotic unicellular organism.

該寄生虫は、世界中で観察される。例えば、アメリカ合用国では、人口の50% がトキソプラズマに対する抗体を有する。The parasite is observed all over the world. For example, in the United States, 50% of the population have antibodies against Toxoplasma gondii.

はとんどの感染が、無症状であるが、ちょっとした障害をもたらす程度である。Most infections are asymptomatic, but cause only minor damage.

しかしながら、下記の2種のカテゴリーの人々が、重篤な疾病の発生の危険にさ らされるニ ーシスト状態で維持されている潜在性の感染が賦活化され得る免疫抑制された患 者。However, two categories of people are at risk of developing serious disease: be exposed to Immunosuppressed patients in whom a latent infection maintained in a cyst state may be activated. person.

−その母親がトキソプラズマで一次感染されている胎児:事実、トキソプラズマ は、胎盤を通過して、特に中枢神経系及び網膜組織などの胎児の組織において増 殖し、回復不能の病変をもたらす。- A fetus whose mother is primarily infected with Toxoplasma: In fact, Toxoplasma crosses the placenta and increases in fetal tissues, particularly the central nervous system and retinal tissue. The disease grows and causes irreversible lesions.

該寄生虫の生活環は2相からなるニ ーヒトなどの種々の哺乳類において増殖でき、“不活性な”寄生虫を被のうして 終了する無性増殖および−ネコのみで起こる有性増殖。The life cycle of the parasite consists of two phases. – Can reproduce in various mammals, including humans, and harbors “inactive” parasites. Asexual growth that ends and - sexual growth that occurs only in cats.

ネコがシスト(他の動物の筋肉に存在する)を摂取する場合、ブラディゾイトと して知られる不活性な寄生虫が腸で遊離して、上皮細胞に入り、そこで分裂し、 有性的に分化する。(また、上記寄生虫は、全ての哺乳類におけると同様に、他 の組織内では、無性的に増殖する。)生殖細胞が融合し、接合体が保護壁でとり 囲まれて、ネのスポロゾイトを形成する。これらのスポロゾイトは、保護外皮に 残存し、他のどの様な哺乳類に対しても感染動物がスポロゾイトを摂取する場合 、スポロゾイトは、腸で遊離して、上皮細胞に入り、無性的に増殖して、タキシ イトを生産する。タキシイトは、分散して、急性播種性感染症を惹起する。When a cat ingests cysts (present in the muscles of other animals), they may be called bradyzoites. An inactive parasite known as a worm is released in the intestine and enters epithelial cells, where it divides and Sexually differentiated. (Also, the above parasites are found in other mammals as well as in all mammals.) Proliferates asexually within tissues. ) The germ cells fuse and the zygote is covered with a protective wall. surrounded to form a ne sporozoite. These sporozoites have a protective integument remaining and ingesting sporozoites to any other mammals infected , sporozoites are released in the intestine, enter epithelial cells, proliferate asexually, and undergo taxa. to produce items. Taxiite disperses and causes acute disseminated infection.

タキシイトは、細胞内でのみ増殖できる5μ×2μの大きさの単細胞であり、試 験された全てのタイプの細胞で増殖する。感染された細胞は、2日後に分解して 、約100個の寄生虫を遊離する。Taxiite is a single cell with a size of 5μ x 2μ that can only proliferate within the cell. Proliferates in all cell types tested. Infected cells break down after 2 days. , liberating approximately 100 parasites.

感染された動物において、寄生虫の増殖は免疫応答によって阻止され、寄生虫は 筋肉および脳で被のうされる。In infected animals, parasite multiplication is inhibited by an immune response, and the parasites are Covered by muscles and brain.

被のうされた形態の寄生虫またはブラディゾイトは、“非活性な”状態で維持さ れる。Encapsulated forms of parasites or bradyzoites are maintained in an “inactive” state. It will be done.

したがって、ヒトは2種の経路によって感染され得る;−ネコによって排泄され たスポロゾイトを摂取する。Therefore, humans can be infected by two routes; - excreted by cats; ingest sporozoites.

−被のうされたブラディゾイトを有し、十分に調理されていない肉(ビーフおよ びマトン)を食する。ブラナイゾイトは、腸で遊離して、活性的増殖をして、タ キシイトになる。- undercooked meat (beef and eat mutton). Branaizoites are liberated in the intestine, actively proliferate, and enter the tumor. It's going to be difficult.

該寄生虫のこの複雑な生活環において、タキシイトは、免疫応答を生じる最初の 可能なターゲットと考えられ、数種の研究により、抗体を誘発できる膜抗原の同 定が可能となった。In this complex life cycle of the parasite, taxiites are the first to generate an immune response. This is considered a possible target, and several studies have shown that the same membrane antigens that can elicit antibodies have been identified. It is now possible to

タキシイト膜標本の蛋白質および多糖類は、急性または慢性トキソプラズマ症に 罹患している患者の血清のIgMおよびIgGにより認識される。これらの膜抗 原に対して特異性を有するモノクローナル抗体は、公知である(カスバー(Ka sper)ら、1984およびジョンソン(Johnson) ら、1983) 。Proteins and polysaccharides from taxiite membrane preparations are associated with acute or chronic toxoplasmosis. It is recognized by IgM and IgG in the serum of affected patients. These membrane anti Monoclonal antibodies having specificity for the antigen are known (Kasbar). Sper et al., 1984 and Johnson et al., 1983) .

特に、分子量30,000の膜抗原は、カスパー(Kasper)らによって同 定され(1983)、被のう保護性を有していることが認識されている;該抗原 は、モノクローナル抗体を用いる免疫吸着により、寄生虫から精製された。この 抗原に対して生ずるモノクローナル抗体は、ヒト補体の存在下において該寄生虫 を殺すことができる。In particular, a membrane antigen with a molecular weight of 30,000 was identified by Kasper et al. (1983) and is recognized to have protective properties; was purified from the parasite by immunoadsorption using monoclonal antibodies. this Monoclonal antibodies raised against antigens are produced against the parasite in the presence of human complement. can kill.

それぞれ分子量35,000および14.000である他の2種の膜抗原は、ア ロージョ(Araujo)およびレミントン(Remington)によって発 表されている(1984) ;該抗原は、ポリアクリルアミドゲル電気泳動によ り、寄生虫から精製された:この抗原のマウスへの注射は、該寄生虫の試験的接 種からマウスを保護した。Two other membrane antigens with molecular weights of 35,000 and 14,000, respectively, Originated by Araujo and Remington (1984); the antigen was determined by polyacrylamide gel electrophoresis. The antigen was purified from the parasite; injection of this antigen into mice Protected mice from seeds.

免疫応答が、被のうされたブラディゾイトにより遊離された抗原で繰り返し刺激 された結果に違いないという仮説、およびこれらの分子が、タキシイトにより排 泄/分泌された抗原に共通のエピトープをおそらく有しているため、随伴性の免 疫に関与しているに違いないという事実に基づいて、本発明は、従来と異なる方 針を採用する。The immune response is repeatedly stimulated with antigens liberated by enveloped bradyzoites. The hypothesis is that these molecules must be eliminated by taxite. The excreted/secreted antigen probably has a common epitope, and therefore concomitant immunity. Based on the fact that it must be involved in the epidemic, the present invention Adopt a needle.

従って、この新しいワクチンの製造戦略から、本発明の目的は、膜蛋白質ではも はやなく、タキシイトにより排泄/分泌され、タキシイトおよ、びブラディゾイ トに共通であって、従って、慢性トキソプラズマ症の患者血清により認識できる 蛋白質である。上記慢性トキソプラズマ症患者は、ブラディゾイト、すなわち被 のうされた寄生虫のみが存在する段階にある。Therefore, from this new vaccine production strategy, the aim of the present invention is to Immediately excreted/secreted by taxiites, taxiites and bradyzoi toxoplasmosis and therefore can be recognized by serum from patients with chronic toxoplasmosis. It is a protein. Patients with chronic toxoplasmosis mentioned above have bradyzoites, i.e. It is at a stage where only the infected parasites exist.

タキシイトのメツセンジャーRNAのインビトロの翻訳により、24Kdのメジ ャー抗原に伴って、他の37Kdのマイナー抗原が出現する。これらは、再感染 に対する免疫が獲得される時の慢性疾病段階のマーカーとしてヒト血清により同 定された。さらに、免疫競合的実験によって、ブラディゾイト抗原が、これらの 24Kdおよび37KdのタキシイトのメツセンジャーRNAの翻訳生成物の、 排泄/分泌された抗原に対する抗体による結合を顕著に抑制し得ることがわかっ た。従って、これらの抗原は、恐らくブラディゾイトにも存在すると思われる。In vitro translation of the methsenger RNA of takxite revealed that the 24Kd Along with the major antigen, another 37Kd minor antigen appears. These are reinfections human serum as a marker of the chronic disease stage when immunity is acquired. established. Furthermore, immunocompetitive experiments showed that bradyzoite antigens of the translation products of the 24Kd and 37Kd taxite metsenger RNAs, It has been found that binding by antibodies to excreted/secreted antigens can be significantly inhibited. Ta. Therefore, these antigens are probably also present in bradyzoites.

本発明は、約24Kdの抗原をコードするか、タキシイトの“排泄/分泌された ”抗原に対して生ずる抗体によって認識される24Kd抗原のエピトープを有す るポリペプチドを少なくともコードするcDNA配列の決定に関する。The present invention encodes an antigen of approximately 24 Kd, or the "excreted/secreted" ``Has an epitope of the 24Kd antigen that is recognized by antibodies raised against the antigen.'' The present invention relates to the determination of a cDNA sequence encoding at least a polypeptide.

従って、本発明は、まず、第1図に示される24Kd蛋白質をコードするDNA 配列に関する。Therefore, the present invention first provides a DNA encoding the 24Kd protein shown in FIG. Regarding arrays.

また、本発明は、その合成がこのcDNAにより支配される蛋白質にも関する。The invention also relates to proteins whose synthesis is controlled by this cDNA.

上記合成は、cDNAが挿入されるベクターおよび該cDNAを支配する発現制 御シグナルに応じて、バクテリア、酵母或いはもっと高等な細胞などの種々の宿 主細胞で行われる得る。The above synthesis involves a vector into which the cDNA is inserted and an expression regulator governing the cDNA. Depending on the control signal, various hosts such as bacteria, yeast or higher cells Get carried out in the principal cells.

本発明の蛋白質は、トキソプラズマに存在する天然蛋白質と同じ一次構造を有す ることができるが、該天然蛋白質の誘導体であっても良く、または、不完全では あるが抗体による認識に重要な、従って免疫の誘発に重要なエピトープを持つ蛋 白質であっても良い。また、上記蛋フラグメント)に融合していても良い。この 融合に続いて、対応するDNAセグメントを用いて、宿主細胞での上記蛋白質の より優れた発現を促進するか、場合によっては、宿主から上記蛋白質を排出させ るように計画された遺伝子工学的操作を行なう。The protein of the present invention has the same primary structure as the natural protein present in Toxoplasma gondii. may be a derivative of the natural protein, or may be incompletely Proteins with epitopes that are important for recognition by antibodies and therefore important for inducing immunity It may be white matter. Furthermore, it may be fused to the above protein fragment). this Following fusion, the corresponding DNA segments are used to engineer the protein in the host cell. promote better expression or, in some cases, expel the proteins from the host. Perform genetic engineering operations designed to

種々の宿主細胞で外来遺伝子の発現およびクローニングを行なうための方法は、 当業者にとって自明である。Methods for expressing and cloning foreign genes in various host cells include It is obvious to those skilled in the art.

これらの方法は、下記の実施例に記載されているが、こび宿主細胞を用いること ができる。These methods, described in the Examples below, can be performed using dwarf host cells. Can be done.

バクテリア中、例えば大腸菌中の24Kd蛋白質に対応する遺伝子の発現は、λ プロモータPLおよびリポソーム結合サイトとしてCI[rbsを有するベクタ ーを用いて、得られる。得られたハイブリッド蛋白質は、C■蛋白質の一部と2 4Kd蛋白質またはその一部とを有する。The expression of the gene corresponding to the 24Kd protein in bacteria, for example E. coli, is Vector with CI[rbs as promoter PL and liposome binding site can be obtained using The obtained hybrid protein consists of a part of C■ protein and 2 4Kd protein or a part thereof.

宿主細胞が酵母、例えばニス、 セレヴイシアエ(S。The host cell is a yeast, such as Varnish, S. cerevisiae (S.

cerevisiae )の場合、2μプラスミドの複製起点のような酵母にお ける機能的な複製起点およびU RA 3のような選択遺伝子(selecta ble gene )を持つ酵母プラスミドベクターを用いることができる。本 例の場合、用いすPKG遺伝子の5′部分を持つPGK遺伝子のブロモ宿主が哺 乳類の細胞である場合、発現ベクターとして、ワクシニア ウィルスなどのポッ クスウィルスが好適である。組換えウィルスは、本発明の蛋白質をコードする遺 伝子を有することになる。好ましくは、良遺伝子は、ワクシニア ウィルスのT K遺伝子に挿入され、ワクシニアの7.5に蛋白質をコードする遺伝子のプロモ ータなどの強力なプロモータの支配下にある。また、本発明の蛋白質をコードす る遺伝子は、別の蛋白質のフラグメントをコードする領域、例えばヒトインター ロイキン−2のシグナル配列などの機能的シグナル配列に融合しても良い。cerevisiae), the origin of replication for the 2μ plasmid is a functional origin of replication and a selection gene (selecta) such as URA3. A yeast plasmid vector having a ble gene) can be used. Book In this example, the bromo host of the PGK gene containing the 5' portion of the PKG gene used is mammalian. In the case of mammalian cells, a potion such as vaccinia virus is used as an expression vector. Preferred is the virus. The recombinant virus contains a gene encoding the protein of the present invention. You will have a gene. Preferably, the good gene is T of vaccinia virus. The promoter of the gene that is inserted into the K gene and encodes the protein in vaccinia 7.5 under the control of powerful promoters such as In addition, a protein encoding the protein of the present invention may also be used. A gene containing a region encoding a fragment of another protein, such as a human It may also be fused to a functional signal sequence, such as the leukin-2 signal sequence.

また、本発明は、本発明の蛋白質の発現のためのベクターにより形質転換された 宿主細胞および該宿主細胞を培養し、蛋白質を回収する上記蛋白質の製造方法に 関する。The present invention also provides for the expression of proteins of the present invention. A host cell and a method for producing the above-mentioned protein, which comprises culturing the host cell and recovering the protein. related.

当然のことながら、培養して、回収し、蛋白質を分離する方法は、宿主によって 異なるが、当業者にとって自明である。Of course, methods for culturing, harvesting, and isolating proteins depend on the host. Although different, it is obvious to those skilled in the art.

最後に、本発明は、トキソプラズマ症のワクチンとして有用な医薬製剤に関する 。該ワクチンは、薬学的に許容できる賦形剤中に本発明の蛋白質またはポックス ウィルスの少なくとも1種を含有する。Finally, the present invention relates to pharmaceutical formulations useful as vaccines for toxoplasmosis. . The vaccine comprises a protein or pox of the invention in a pharmaceutically acceptable excipient. Contains at least one type of virus.

特に、本発明は、本発明蛋白質を発現する生組換えワクシニアウィルスを有する 生ワクチンに関する。該ウィルスは、薬学的に許容できる賦形剤中に存在して、 本発明発明の蛋白質を発現する。In particular, the present invention comprises a live recombinant vaccinia virus expressing the protein of the present invention. Concerning live vaccines. the virus is present in a pharmaceutically acceptable excipient; Expressing the protein of the present invention.

好ましくは、これらのワクチンは、例えば、注射などのにより投与可能な形態を とる。薬学的に許容できる賦形剤は、注射用の場合には、水性賦形剤である。Preferably, these vaccines are in a form that can be administered, e.g. by injection. Take. Pharmaceutically acceptable excipients are aqueous excipients for injections.

ワクチン化工程は、用いるワクチンの種類(蛋白質または生ワクチン)に合わせ るべきである。The vaccination process is tailored to the type of vaccine used (protein or live vaccine). Should.

また、本発明によれば、本発明蛋白質に対する抗体を生産することができる。こ れらの抗体および蛋白質は、トキソプラズマ症の診断薬として用いられることが できる。Furthermore, according to the present invention, antibodies against the protein of the present invention can be produced. child These antibodies and proteins can be used as diagnostic agents for toxoplasmosis. can.

本発明において、図面に示される遺伝子のヌクレオチド配列または蛋白質のアミ ノ酸配列は、明細書中で再度述べられていないが、本発明の構成要素である。In the present invention, the nucleotide sequence of the gene or the amino acid of the protein shown in the drawings Although the amino acid sequence is not restated in the specification, it is a component of the invention.

下記の実施例は、本発明の他の特徴および長所を明らかにするように意図された ものである。The following examples are intended to demonstrate other features and advantages of the invention. It is something.

添付の第1図から第4図を説明する。The attached FIGS. 1 to 4 will be explained.

下記図面は、実施例を説明するものである。The drawings below illustrate embodiments.

第1図は、トキソプラズマの24Kd抗原をコードするcDNAのTG、TXl l−3,8EQ配列を示す。Figure 1 shows the cDNAs TG and TXl encoding the 24Kd antigen of Toxoplasma gondii. 1-3,8EQ arrangement is shown.

これは、クローンTX8、TXIOlTXllおよびTX3.3の挿入物につい て測定された。This applies to the inserts of clones TX8, TXIOlTXll and TX3.3. was measured.

第2図は、E、col i/pTG2171およびE、eol i/pTG21 72の発現生産物の“ウェスターンプロット”分析を示す。Figure 2 shows E, col i/pTG2171 and E, eol i/pTG21. Figure 2 shows a "Western plot" analysis of 72 expression products.

第3図は、組換えワクシニアウィルスVV−TG。Figure 3 shows recombinant vaccinia virus VV-TG.

TX2170で発現された蛋白質の免疫沈降を示す。Immunoprecipitation of proteins expressed in TX2170 is shown.

この図面の符号は、下記の通りである:P −ベレット S −上清み WT  =野生型ワクシニアウィルス + 8ツニカマイシン(tunica口ycin )添加−−ツニカマイシン無 添加 第4図は、第3図を補うものであり、組換えワクシニアウィルスVV−TG、T ’X2170により免疫されたマウスの血清の“ウニスターンプロット′分析の 結果を示す。The numbers in this drawing are as follows: P - Beret S - Supernatant WT = wild type vaccinia virus + Addition of 8 tunicamycin (tunicaycin) -- No tunicamycin addition Figure 4 supplements Figure 3 and shows recombinant vaccinia viruses VV-TG, T 'Unisturn plot' analysis of serum from mice immunized with 'X2170' Show the results.

この図面の符号は、下記の通りである:1.2.3.4 :VV、TG、TX2 1701:、、l:、り免疫されたマウス、pTG2171で誘発された蛋白質 について試験した。The numbers in this drawing are as follows: 1.2.3.4: VV, TG, TX2 1701:, l:, immunized mice, protein induced with pTG2171 was tested.

CI :対照:無関係なプラスミドで誘発された蛋白質について試験されたマウ ス1.2.3.4の血清C2:1)TG2171で誘発された蛋白質について試 験された、野生型ワクシニアウィルスで免疫されたマウスの血清。CI: Control: Mice tested for protein induced with an unrelated plasmid. 1.2.3.4 Serum C2:1) Tested for TG2171-induced proteins. serum from mice immunized with wild-type vaccinia virus.

実施例1:タキシイトの24Kd抗原に対応するcDNA配列のクローニングお よび測定上述したように、タキシイトの“排泄/分泌された。Example 1: Cloning and cloning of the cDNA sequence corresponding to the 24Kd antigen of taxiite and measurement of the excreted/secreted amount of taxite as described above.

(E/S)抗原の標本に対して生産されたウサギ抗体は、インビトロの翻訳生成 物中のタキゾイトメッセンジャーRNAの24Kdメジヤーバンドを認識する。(E/S) Rabbit antibodies produced against antigen preparations are produced by in vitro translational production. Recognizes the 24Kd major band of tachyzoite messenger RNA in substances.

この抗原に対応するcDNAがクローン化された。A cDNA corresponding to this antigen was cloned.

タキシイトから抽出されたRNAを出発物質として、λgt I Inにおいて cDNAライブラリーが製造された。このファージλ誘導体は、cDNAと大腸 菌のβ−ガラクトシダーゼ遺伝子との融合の後、lacプロモータの支配下に、 外来遺伝子を発現させる(ヤング(Young)およびディビス(Davis)  、1983)。融合された蛋白質の発現は、イソプロピル β−D−チオガラ クトピラノシドの存在下に42℃で誘発される。合成された蛋白質をニトロセル ロール繊維に吸着させて、次いでE/S抗原に対して生ずるウサギ抗体の存在下 に培養した。Using RNA extracted from taxite as a starting material, in λgt IIn A cDNA library was produced. This phage λ derivative has cDNA and large intestine After fusion with the bacterial β-galactosidase gene, under the control of the lac promoter, Expressing foreign genes (Young and Davis) , 1983). Expression of the fused protein is carried out using isopropyl β-D-thiogala. Induced at 42°C in the presence of topyranoside. Nitrocell synthesized protein adsorbed onto rolled fibers and then in the presence of rabbit antibodies raised against the E/S antigen. was cultured.

抗体による測定により、組み替えファージの同定が可能となる。該ファージ内で は、cDNA挿入物が、蛋白質、またはE/S抗原に対して生ずる抗体により認 識されるエピトープを有する蛋白質フラクションの合成を指示する。Measurement with antibodies allows identification of recombinant phages. within the phage The cDNA insert is recognized by antibodies raised against the protein or E/S antigen. Directs the synthesis of a protein fraction that has the identified epitope.

3種のクローンが選択され、λgtllからベクターpUc13に再クローン化 された。Three clones were selected and recloned from λgtll into vector pUc13. It was done.

これらの3種のクローンをTX8、TXloおよびTXllとした。これらの位 置を第1図に示す。これから、これらのクローンがかなりオーバーラツプしてい ることがわかる。These three clones were designated as TX8, TXlo and TXll. these places The location is shown in Figure 1. From now on, these clones will overlap considerably. I understand that.

これら3種のクローンのcDNA挿入物が、EcoRIフラグメントの形態で取 り出され、両方向にベクターM137G131に挿入されて、配列決定された。The cDNA inserts of these three clones were assembled in the form of EcoRI fragments. was extracted, inserted into vector M137G131 in both directions, and sequenced.

得られたファージを下記のように命名したニー M13TGTX11およびM1 3TGTX11R−M13TGTXlOおよび肘3TGTXIOR−M13TG TX8およびM13TGTX8R配列決定は、“サイクローン(cyclone  ) ”として知られる方法により行った。該サイクローンは、T4ポリメラー ゼを用いて、一本鎖DNAにおける種々の大きさの欠失を生成することにある( ジェノフィツト(Genoflt )から市販されているキットを用いる)。こ うして得られた種々の大きさの挿入物の配列決定は、サンガー(Sanger) の方法により実施される(ヌクレオチドはファルマシア(Pharmacia  )から、32P−dATPはアマ−ジャム(Amersham)から、クレノー ポリメラーゼはアプリジェーンCAppHgene )からそれぞれ購入し−T  G II     5 ’ AAGGCGATTAAGI IG3’(普遍ブ ライマー) −T G 1276 5 ’ CAGCTTAAGGATGACA3 ’−TG  1299 5 ’ CACGAACACCGATGC3’−TG 1290  5 ’ TGCCTGTGGGTCTCT 3 ’−TG 1420 5 ’  GACACTCACTGTACAAC3’得られた配列の分析(IBM  DN A  スター コンパイレーション プログラム(Star compilat ionprogram)を用いる)から、最も完全なりローンはM13TGTX 11であることが示される。しかしながら、このクローンは、開始ATGを持た ない。このATGの検索は、他のcDNAクローンと配列5’ ACGCAAG CTCGCTCGGCAGTTTCA  である5′末端オリゴヌクレオチド( TG1325とする)とのハイブリダイゼーションにより、実施された。The obtained phages were named as follows: M13TGTX11 and M1. 3TGTX11R-M13TGTXlO and elbow 3TGTXIOR-M13TG TX8 and M13TGTX8R sequencing )” The cyclone was made using T4 polymer The aim is to generate deletions of various sizes in single-stranded DNA using enzymes ( (using a kit commercially available from Genoflt). child Sequencing of the various sized inserts thus obtained was performed by Sanger (nucleotides are available from Pharmacia). ), 32P-dATP from Amersham, Klenow Polymerases were purchased from AppHgene (CAppHgene)-T G II 5’ AAGGCGATTAAGI IG3’ (universal block Rymer) -TG 1276 5' CAGCTTAAGGATGACA3'-TG 1299 5’ CACGAACACCGATGC3’-TG 1290 5’ TGCCTGTGGGTCTCT 3’-TG 1420 5’ GACACTCACTGTACAAC3' Analysis of the obtained sequence (IBM DN A Star compilation program ion program), the most complete loan is M13TGTX 11. However, this clone has an initiating ATG. do not have. This search for ATG was performed using other cDNA clones and the sequence 5' ACGCAAG. CTCGCTCGGCAGTTTCA 5' terminal oligonucleotide ( TG1325).

こうして同定されたクローン3.3は、ベクターM13mplO(アマージャム 製)およびオリゴヌクレオチドTG1420により得られた配列にサブクローン 化された。クローン3.3は、クローンM13TGTX11に比べて、塩基を1 2個多く有するが、開始ATGを持たない。Clone 3.3 thus identified was derived from the vector M13mplO (Amarjam ) and the sequence obtained with oligonucleotide TG1420. was made into Clone 3.3 has one base added compared to clone M13TGTX11. It has two more, but it does not have a starting ATG.

得られた最大の配列を第1図に示す。配列の番号付けは、クローンTX11が続 いて発現したクローンであつたので、このクローンの最初の塩基から始めた。上 記配列は、TGTXII−3,SEQと称され、785bpのオーブンリーディ ングフレームを有しており、その理論分子量は約29Kdである。The largest sequence obtained is shown in FIG. Sequence numbering follows clone TX11. Since this was a clone that was expressed in the same way, we started from the first base of this clone. Up The sequence is called TGTXII-3, SEQ and is a 785 bp oven-ready sequence. The theoretical molecular weight is about 29 Kd.

この結果および現在公知の研究からは、在来遺伝子(native gene) の最初の翻訳生成物のN末端配列について、あるいは成熟蛋白質に先立つシグナ ルペプチドおよび前駆体の存在可能性についての情報は得られない。From this result and currently known research, it is clear that native genes about the N-terminal sequence of the first translation product of the protein, or about the signal that precedes the mature protein. No information is available about the possible presence of peptides and precursors.

それにもかかわらず、この遺伝子の単離および発現のために採用された方針は、 宿主の免疫システムにより認識される24Kd蛋白質中に存在するメジャーエピ トープの研究を含むため、第1のアミノ酸の正確な位置決定は、本発明の内容に おいて不可欠なものではない。Nevertheless, the policy adopted for the isolation and expression of this gene was A major epitope present in the 24Kd protein that is recognized by the host's immune system. The precise positioning of the first amino acid is within the scope of the present invention, as it involves the study of It is not essential.

この推論は、下記の実施例で使用され、該実施例では、種々の微生物中でのメジ ャーエピトープの発現を記載する。This reasoning is used in the examples below, in which the The expression of epitopes is described.

実施例2:大腸菌における24Kd抗原の発現クローンM13TGTX11およ びM13TGTX8は、λgtllのEcoR1サイトと同位相にあるオーブン リーディングフレームを持つ。これら2種のクローンのEcoR1フラグメント は、λの熱誘導性プロモータPLのフントロール下に、同じリーディングフレー ム中でクローン化されて、ベクターpTG1924 (フランス国特許出願86 /11986に開示)のλcnと融合された蛋白質を生成した。Example 2: Expression of 24Kd antigen in E. coli clones M13TGTX11 and and M13TGTX8 are ovens in phase with the EcoR1 site of λgtll. Has a reading frame. EcoR1 fragments of these two clones is the same leading frame under the control of the heat-inducible promoter PL of λ. vector pTG1924 (French patent application 86). A protein fused with λcn (disclosed in 1986) was produced.

pTG1924内にクローン化されたM13TGTX11に由来するフラグメン トは、pTG2171を生成する。M13TGTX8に由来するフラグメントは 、pTG2172を生成する。Fragment derived from M13TGTX11 cloned into pTG1924 generates pTG2171. The fragment derived from M13TGTX8 is , generating pTG2172.

大腸菌TGE901は、pTG2171および2172で形質転換される。42 ℃で誘発した後、発現生成物を5DS−ポリアクリルアミドゲルで分析する。E. coli TGE901 is transformed with pTG2171 and 2172. 42 After induction at °C, expression products are analyzed on 5DS-polyacrylamide gels.

“排泄/分泌された″抗原に対する抗体を用いる誘発蛋白質の“ウエスターンプ ロットパ分析の結果は、特異的な蛋白質の存在を明らかにする。``Western ramp'' of inducing proteins using antibodies against ``excreted/secreted'' antigens. The results of Lotpa analysis reveal the presence of specific proteins.

15%SDSゲル上で泳動した後、25mM  )リス192mMグリセリンを 含む20%メタノール緩衝液中で、ニトロセルロース膜に蛋白質を移す。この蛋 白質の移行は、500mM−6Vで、1時間行なわれる。After running on a 15% SDS gel, 25mM) Transfer proteins to nitrocellulose membranes in 20% methanol buffer. This egg White matter migration is performed at 500mM-6V for 1 hour.

次いで、ニトロセルロースに結合した蛋白質を、10mM)リス−150mMN aC1−1/2000)リドンX−100(ジグv (Sigma )製)−緩 衝液で100倍に希釈され、3%の粉末ミルクを加えられたウサギ抗−トキソプ ラズマ抗原血清と4℃で1晩反応させる。ニトロセルロースを10mM)リス− 150mMNaC1−緩衝液で3回に亘り10分間洗浄する。2%ウシ胎児血清 (Fe2)を添加した上記の洗浄緩衝液で500倍に希釈されているビオチン化 した(biotjnylated)抗つサギIg抗体(アマージャム製)を加え る。The protein bound to nitrocellulose was then dissolved in 10mM) Lys-150mN aC1-1/2000) Ridon X-100 (manufactured by Jig v (Sigma)) - Loose Rabbit anti-toxoplast diluted 100 times with buffer solution and supplemented with 3% powdered milk. React with plasmid antigen serum overnight at 4°C. Nitrocellulose (10mM) Wash three times for 10 minutes with 150 mM NaCl-buffer. 2% fetal bovine serum Biotinylation diluted 500 times with the above wash buffer supplemented with (Fe2) Add biotjnylated anti-heron Ig antibody (manufactured by Amerjam). Ru.

室温で1時間放置後、ニトロセルロース膜を3回洗浄し、次いで、2%FC5を 添加した上記と同じ緩衝液で500倍に希釈されたストレプタヴイジンーバーオ キシダーゼ(streptavidin −peroxidase)錯体(アマ ージャム製)を1時間に亘って添加する。3回の洗浄の後、着色剤(HRP C o1or)の存在下に過酸化水素を添加することにより、肉眼観察を可能とする 。結果を第2図に示す。After standing at room temperature for 1 hour, the nitrocellulose membrane was washed three times and then treated with 2% FC5. Streptavidin-bar oil diluted 500 times with the same buffer as above was added. Oxidase (streptavidin-peroxidase) complex (flax (Made by Jam) over a period of 1 hour. After washing three times, colorant (HRP C By adding hydrogen peroxide in the presence of o1or), macroscopic observation is possible. . The results are shown in Figure 2.

24Kd蛋白質との特異的な反応がpTG2172について観察される。これは 、第1図に示されるオーブンリーディングフレーム(クローンTX8)を考慮す ると、予期した大きさの2倍である。pTG21.71については、33Kd蛋 白質との強い反応が見られ、24Kd蛋白質(クローンTX11)とのそれより 弱い反応が観察される。A specific reaction with the 24Kd protein is observed for pTG2172. this is , considering the oven reading frame (clone TX8) shown in Figure 1. It is twice the expected size. For pTG21.71, the 33Kd protein A strong reaction with white matter was observed, and it was stronger than that with 24Kd protein (clone TX11). A weak reaction is observed.

したがって、これらの結果は、トキソプラズマの排泄/分泌された抗原に対する 抗体により特異的に認識される蛋白質の存在を示す。Therefore, these results suggest that Toxoplasma gondii may Indicates the presence of a protein specifically recognized by the antibody.

実施例3:ワクシニアウィルスにおける24Kd抗原の発現 M13TGTX11のリーディングフレーム(λgt11と同位相にあるEco R1フラグメント)を切り出し、ワクシニアウィルスに形質移入し、IL2のシ グナルおよび最初の8個のアミノ酸の上流に融合した(同様の構築が、フランス 国特許第86/11986号に開示されている)。Example 3: Expression of 24Kd antigen in vaccinia virus Reading frame of M13TGTX11 (Eco in phase with λgt11) R1 fragment) was excised, transfected into vaccinia virus, and the IL2 fused upstream of the GNAR and the first eight amino acids (a similar construction was (Disclosed in National Patent No. 86/11986).

この目的のために、シグナルペプチドの開始コドンと同位相にあるIL2シグナ ルから下流で、EcoR1フラグメントをpTG188−1にクローン化する。For this purpose, the IL2 signal in phase with the start codon of the signal peptide is Downstream from the clone, the EcoR1 fragment is cloned into pTG188-1.

得られるプラスミドは、pTG2170である:入TG                     EcoRl                    ゛ス トq7”   EcoR1pTG2170において、IL2)キソプラズマ融合 蛋白質をコードする遺伝子は、ワクシニアウィルスの7.5にプロモータのコン トロール下に、同じウィルスのTK遺伝子の配列の側に位置している。ワクシニ アのTK遺伝子に挿入されたこれらの配列は、公知の二重組換え(キーニー(K ieny )ら、1984)により、ワクシニアウィルスゲノムに移入できる。The resulting plasmid is pTG2170: Input TG                   In EcoR1pTG2170, IL2) Xoplasma fusion The gene encoding the protein has a promoter control in vaccinia virus 7.5. It is located below the TK gene sequence of the same virus. vaccini These sequences inserted into the TK gene of A. ieny et al., 1984) into the vaccinia virus genome.

得られた組換えワクシニアウィルスは、vv、TG。The obtained recombinant vaccinia viruses were vv, TG.

TX2170である。BHK21細胞をvv、 TG。It is TX2170. BHK21 cells vv, TG.

TX2170ウィルス(0,1pfu/細胞)で16時間感染させる。6時間に 亘って[35S ]メチオニンを添加した後、トキソプラズマの°排泄/分泌さ れた抗原”に対するウサギ抗体を用いて、標識蛋白質を免疫沈降させる。Infect with TX2170 virus (0.1 pfu/cell) for 16 hours. in 6 hours After adding [35S] methionine, the excretion/secretion of Toxoplasma gondii The labeled protein is immunoprecipitated using a rabbit antibody directed against the labeled antigen.

第3図は、それぞれ24Kdおよび33Kdの2種の蛋白質を特別に示す。Figure 3 specifically shows two proteins of 24Kd and 33Kd, respectively.

vv、TG、TX2170により誘発された2種の形態(24Kdおよび33K d)が存在するので、その原因を調べた。vv, TG, two forms induced by TX2170 (24Kd and 33K Since d) exists, we investigated the cause.

[35S]メチオニンおよび[35S] システィンで標識したところ、33K d型のみがシスティンおよびメチオニンで標識されていることがわかる。全ての システィンが配列のN末端部分に存在するため、p24蛋白質はcDNAのC末 端部分に対応することがわかる。When labeled with [35S] methionine and [35S] cysteine, 33K It can be seen that only the d type is labeled with cysteine and methionine. All of Because cysteine is present at the N-terminal part of the sequence, p24 protein is located at the C-terminus of the cDNA. It can be seen that this corresponds to the end portion.

トキソプラズマDNAのゲノムのライブラリーの形成の後、最長のcDNA ( TX3.3)のN末端を持っゲノム部分が配列決定される。cDNAのリーディ ングフレームと同位相にあるクローンTX3.3の開始点の上流では、ATGを 観察できなかった。このことは、翻訳開始がメチオニン72で起こったことを示 唆する。メチオニン72は、真核生物における翻訳開始サイトであると一致して 認められるサイトに対応する(フザック(Kozak )の法則)。After the formation of a genomic library of Toxoplasma DNA, the longest cDNA ( The genomic portion containing the N-terminus of TX3.3) is sequenced. cDNA leader Upstream of the starting point of clone TX3.3, which is in phase with the I couldn't observe it. This indicates that translation initiation occurred at methionine 72. suggest Methionine 72 is consistent with being a translation initiation site in eukaryotes. Corresponds to permitted sites (Kozak's law).

島内なものと考えられる。本当の開始は、メチオオニン72で現れて、p24の 合成を惹起する。インビトロの翻訳生成物におけるタキシイトメツセンジャーR NAの中で検出され、抗p24抗体により認識されるp37型の存在は、この仮 説では、交差反応性に対応する。It is thought to be from within the island. The true initiation appears at methionine 72, leading to p24 induces synthesis. Taxiitometsenger R in in vitro translation products The presence of the p37 type detected in NA and recognized by anti-p24 antibodies supports this hypothesis. According to the theory, this corresponds to cross-reactivity.

さらに、ウェスターンブロッティングの後 45 Caとともに培養することに より(マルヤマ(Maruyama)ら、1984)、クローンTX8により発 現された組換え蛋白質がカルシウム−45に結合していたことが証明された。こ れは、クローンTXIIにより発現された組換え蛋白質についても事実である: これらの2種のクローンは、同じC末端配列を有し、該配列は、そこで潜在的カ ルシウム結合サイトを確認できる領域である。Furthermore, after Western blotting, we decided to culture with 45 Ca. (Maruyama et al., 1984), produced by clone TX8. It was demonstrated that the expressed recombinant protein bound calcium-45. child This is also true for the recombinant protein expressed by clone TXII: These two clones have the same C-terminal sequence, where the sequence This is the area where the lucium binding site can be confirmed.

また、アミノ酸配列の少なくとも一部を決定することによって、得られた組換え 蛋白質をさらによく特徴付けするために、実験を行なった。In addition, by determining at least part of the amino acid sequence, the obtained recombinant Experiments were performed to better characterize the protein.

タキシイトにより遊離された外抗原の精製により得られた24Kd抗原の標本を 最終容量50A11にまで濃縮して、5DS−PAGEに供した。次いで、該蛋 白質をゲルからPVDF膜にエレクトロプロットする。ゲルおよびPVDF膜を 固定化して、配列決定のために24に配列決定により、下記配列が読取られる: a )  Gly−Asn−Thr−Tyr−Arg−Vat−Glu−Arg −Pr。A specimen of 24Kd antigen obtained by purification of exoantigen released by taxiite was prepared. It was concentrated to a final volume of 50A11 and subjected to 5DS-PAGE. Then, the protein White matter is electroplotted from the gel onto a PVDF membrane. Gel and PVDF membrane Immobilized and sequenced at 24, the following sequence is read: a) Gly-Asn-Thr-Tyr-Arg-Vat-Glu-Arg -Pr.

b )  Gin−Arg−Asp−Glu−Asp−11e−Phe−Leu −Arg−Ala−Leu−Asn−Lys−Gly−Gluc )  Lys −Vat−11e−Asp−Asp−Vat−Glu全ての配列は、メチオニン 残基部で開裂されて得られるCNBrペプチドに対応する。b) Gin-Arg-Asp-Glu-Asp-11e-Phe-Leu -Arg-Ala-Leu-Asn-Lys-Gly-Gluc) Lys -Vat-11e-Asp-Asp-Vat-Glu All sequences are methionine It corresponds to the CNBr peptide obtained by cleavage at the residue.

したがって、特に、本発明の目的は、これらのアミノ酸配列(a)、(b)およ び(C)を有し、カルシウムに結合する前記で定義した蛋白質にある。Therefore, in particular, the object of the present invention is to obtain these amino acid sequences (a), (b) and (C) and is a protein as defined above that binds to calcium.

実施例4:組換えウィルスvv、TG、TX2170で免疫された動物における 抗体誘発 4匹の6迎合Ba1b  C雌性マウスの尾の付は根を切開して、5X10’p fuの組換えウィルスvv、TG。Example 4: In animals immunized with recombinant virus vv, TG, TX2170 Antibody induction The base of the tail of four 6-bearing Ba1b C female mice was incised, and a 5X10' p. Recombinant virus of fu vv, TG.

TX2170を注射する。1か列後、同様に2度目の処置を行なう。2度目の注 射の15日後、血清を採取し、上述の“ウニスターンブロッティング′法により 、pTG2171 (クローンTXII)によって誘発された蛋白質について、 その反応性を試験する。血清の希釈率は100倍である。第4図は、全てのマウ スの血清が、33Kd蛋白質と特異的に反応することを示す。免疫応答は、特に マウス1および3で強く、また、これらのマウスは僅かながらも24Kd゛型を 認識する。この分析から、vv、TG、TX2170組換え体が、大腸菌で発現 される組換え蛋白質に対する応答を惹起できることがわかる。Inject TX2170. One row later, a second treatment is performed in the same manner. Second note Fifteen days after injection, serum was collected and analyzed using the “unisturn blotting” method described above. , for the protein induced by pTG2171 (clone TXII), Test its reactivity. Serum dilution is 100 times. Figure 4 shows all mouse 33Kd protein specifically reacts with the 33Kd protein. The immune response is particularly It was strong in mice 1 and 3, and these mice also had a slight 24Kd type. recognize. From this analysis, the vv, TG, TX2170 recombinant was expressed in E. coli. It can be seen that a response to the recombinant protein can be elicited.

実施例5:p24抗原を発現する組換えワクシニアウィルスで免疫することによ るトキソプラズマ症に対する予防 組換えワクシニアウィルスVVTG2170を5X10’プラ一ク形成単位(p fu )で経口投与して、5週令のOFIマウスを免疫化する。3週間後、24 匹のマウスからなるこのグループに、同用量をブースター投与する。トキソプラ ズマ抗原を発現しない組換えワクシニアウィルスで別の21匹のマウスを免疫化 して、これを対照群とする。ブースター投与2週後、株76にで感染させたマウ スから得られた脳の懸濁液(ローシア(Laugier)およびキリン(Qu4 ]1ei)、1970)  (すりつぶした脳調製物を12ooシスト/ 0.  3mIP B S lニー希釈する) 0. 3mlをマウスに経口投与する 。OFIマウスに対する株76にの病原性が、両群の全てのマススを死亡さぜる 。それにもかかわらず、対照群と比較する場合、VVTG2170で免疫化した マウスでは、死亡率の有意な遅延が見られる(マンーホイットニーUテストによ る確率p≦0.02)(対照群では8日後に50%死亡率となるのに対して、1 0.2日後に50%死亡率)。Example 5: By immunizing with a recombinant vaccinia virus expressing the p24 antigen. Prevention against toxoplasmosis Recombinant vaccinia virus VVTG2170 was transformed into 5X10' plaque forming units (p 5-week-old OFI mice are immunized by oral administration of 5-week-old OFI (fu). 3 weeks later, 24 This group of mice is boosted with the same dose. toxopra Another 21 mice were immunized with recombinant vaccinia virus that does not express the Zuma antigen. This will be used as a control group. Two weeks after booster administration, mice infected with strain 76 Suspensions of brains obtained from Japanese animals (Laugier) and giraffes (Qu4) ] 1ei), 1970) (ground brain preparation was mixed into 12oo cysts/0. 3mIP B S l knee dilute) 0. Administer 3ml orally to mice . Virulence of strain 76 to OFI mice kills all mice in both groups. . Nevertheless, when compared with the control group, immunized with VVTG2170 In mice, there is a significant delay in mortality (as determined by the Mann-Whitney U test). probability p≦0.02) (the control group had a 50% mortality rate after 8 days; 50% mortality after 0.2 days).

6週令のB A L B / c マウス(n = 105)群に、組換えワク シニアウィルスVVTG2170を5X108pfu単回経口投与する。1.5 力月後、上記と同様に、株に76のシスト1200個を摂取させる。対照群と比 較して、VVTG2170で免疫化されたマウスでは、死亡率の有意な低下(確 率≦0.05)が観察される(対照群の30.5%に対して22.8%)。さら に、0F1マウスと同じ様に、VVTG2170で免疫化された動物では死亡率 の遅延が見られる。感染90日後、生存マウスを殺す。これらの動物の脳の前頭 部分をパンチ(直径0. 5m+a)で取り出し、PB80.3ml中でバイオ プシー検査を行う。各群の全てのサンプルをそれぞれ一つに集めて、均質化する 。次いで、2人の研究者がトーマス細胞中のシストを数える。対照群と比較して 、VVTG2170で免疫化されたマウス群において、寄生虫シスト数の有意な 低下が観察される(頻度比較テストによる、2α=0.05:ポワソン分布)。The recombinant vaccine was administered to a group of 6-week-old BAL B/c mice (n = 105). Senior virus VVTG2170 is administered orally in a single dose of 5X108 pfu. 1.5 After a month, the plants are allowed to ingest 1200 cysts of 76 in the same manner as above. Compared to control group In comparison, mice immunized with VVTG2170 showed a significant reduction in mortality (definitely rate ≦0.05) is observed (22.8% versus 30.5% in the control group). Sara However, similar to 0F1 mice, mortality in animals immunized with VVTG2170 There is a delay. 90 days after infection, surviving mice are killed. Frontal part of the brain of these animals Take out the part with a punch (diameter 0.5 m + a) and incubate it in 80.3 ml of PB. Perform a puss test. Collect all samples from each group and homogenize them. . Two researchers then count the cysts in the Thomas cells. compared to control group , a significant increase in the number of parasite cysts was observed in the group of mice immunized with VVTG2170. A decrease is observed (by frequency comparison test, 2α=0.05: Poisson distribution).

参考資料 * カスバー プラトレイ(Kasper Bradley)およびフェッフエ アコーン(Pf ef f erkorn)−ジャーナル オブイムノロジ−( J、 Immunol、 ) 、132.443−449よびコー(Ncoh) −J、protozoo!、 30 、 M−356(1983)* カスパー  クラブ(Kasper Crabb)およびフニツフニアコーンーJ、1mm uno1.5−2407(1983)*アロージョ(Araujo)およびレミ ントン(Remington) −インフエクション アンド イムニチイ(I nf、and 1mm、)45.122−128(1984) 本ヤング(Young)およびディビス(Davis)−サイエンス(Scie nce) 222.778−782(1983)*キーニー(Kieny) 、 ラセ(Lathe) 、ドリリアン(Drillien)、スペーナー(Spe hner) 、スコリー(Skory)、シュミット(Schmitt) 、ヴ イクタ−(Wiktor)、コブロウスキー(Koprowski)およびルコ ック(Lecoeq)−ネイチャー(Nature) 312.163−166 (1984)く ち ミ 具 ロ 8    日 国際調査報告 国際調査報告Reference materials * Kasper Bradley and Fefe Acorn (Pf ef erkorn) - Journal of Immunology ( J. Immunol, ), 132.443-449 and Ncoh. -J, protozoo! , 30, M-356 (1983) * Kasper Crabb (Kasper Crabb) and Funitufunia Corn-J, 1mm uno1.5-2407 (1983) *Araujo and Remi Remington - Infection and Immunity nf, and 1mm, ) 45.122-128 (1984) Young and Davis-Scie nce) 222.778-782 (1983) *Kieny, Lathe, Drillien, Spe hner), Skory, Schmitt, Wiktor, Kobrowski and Luko Lecoeq-Nature 312.163-166 (1984) Kuchimigu Ro 8th day international search report international search report

Claims (25)

【特許請求の範囲】[Claims] 1.トキソプラズマの“排泄/分泌された”抗原に対して生産される抗体により 認識される24Kd蛋白質のエピトープを有する蛋白質。1. by antibodies produced against “excreted/secreted” antigens of Toxoplasma gondii. A protein that has a recognized epitope of the 24Kd protein. 2.トキソプラズマに由来しない蛋白質の一部を担うハイブリッド蛋白質である 請求項1に記載の蛋白質。2. It is a hybrid protein that plays a part in proteins not derived from Toxoplasma gondii. The protein according to claim 1. 3.24Kd蛋白質の完全配列を有する請求項1または2に記載の蛋白質。3. The protein according to claim 1 or 2, having the complete sequence of a 24Kd protein. 4.その合成を第1図に示されるcDNAより指示される蛋白質または該cDN Aのフラグメントに対応する蛋白質であって、トキソプラズマの“排泄/分泌さ れた”抗原に対して生産される抗体により認識される蛋白質である請求項1に記 載の蛋白質。4. A protein whose synthesis is directed by the cDNA shown in FIG. A protein corresponding to a fragment of Toxoplasma gondii that is excreted/secreted. 2. The protein according to claim 1, which is a protein recognized by an antibody produced against a ``antigen'' protein on the plate. 5.バクテリアから得られる請求項1乃至4のいずれかに記載の蛋白質。5. The protein according to any one of claims 1 to 4 obtained from bacteria. 6.酵母または細胞培養液から得られる請求項1乃至4のいずれかに記載の蛋白 質。6. The protein according to any one of claims 1 to 4 obtained from yeast or cell culture medium. quality. 7.カルシウムに結合し、下記のアミノ酸配列を有する請求項1乃至6のいずれ かに記載の蛋白質:a)【配列があります】 b)【配列があります】 c)【配列があります】7. Any of claims 1 to 6, which binds calcium and has the following amino acid sequence: Protein described in crab: a) [Sequence available] b) [There is an array] c) [There is an array] 8.請求項1乃至7のいずれかに記載の蛋白質を発現するためのブロックまたは ベクターを含む細胞。8. A block for expressing the protein according to any one of claims 1 to 7 or Cells containing vectors. 9.バクテリアのプロモータの制御下に、請求項1乃至5のいずれかに記載の蛋 白質をコードする遺伝子を有するプラスミドで形質転換されたバクテリアである 請求項8に記載の細胞。9. The protein according to any one of claims 1 to 5 under the control of a bacterial promoter. Bacteria transformed with a plasmid containing genes encoding white matter The cell according to claim 8. 10.酵母プロモータの制御下に、請求項1乃至4および6のいずれかに記載の 蛋白質をコードする遺伝子を有するプラスミドで形質転換された酵母である請求 項8に記載の細胞。10. under the control of a yeast promoter, according to any one of claims 1 to 4 and 6. Claims that the yeast is transformed with a plasmid containing a gene encoding a protein The cell according to item 8. 11.コードする遺伝子が第1図のcDNAの全部または一部からなる請求項9 または10に記載の細胞。11. Claim 9: The encoded gene consists of all or part of the cDNA shown in FIG. or the cell described in 10. 12.請求項1乃至4のいずれかに記載の蛋白質をコードする遺伝子を有し、ポ ックスウィルスにより該遺伝子を発現させる要素の支配下に置かれたポックスウ ィルス。12. A protein comprising a gene encoding the protein according to any one of claims 1 to 4, The poxvirus puts the poxvirus under the control of the element that expresses the gene. Virus. 13.ポックスウィルスがワクシニアウイルスである請求項12に記載のポック スウィルス。13. Pox virus according to claim 12, wherein the pox virus is vaccinia virus. Swirls. 14.上記遺伝子を発現させる要素がワクシニアの7.5K遺伝子のウィルスプ ロモータを有する請求項13に記載のポックスウィルス。14. The element that expresses the above gene is the virus protein of vaccinia's 7.5K gene. The poxvirus according to claim 13, having a lomotor. 15.上記遺伝子を発現させる要素がヒトIL2シグナル配列をコードする配列 を有する請求項14に記載のポックスウィルス。15. A sequence in which the element for expressing the above gene encodes a human IL2 signal sequence The poxvirus according to claim 14. 16.請求項12乃至15のいずれかに記載のポックスウィルスで感染された哺 乳類細胞。16. A mammal infected with the poxvirus according to any one of claims 12 to 15. Mammalian cells. 17.請求項8乃至11のいずれかまたは請求項16に記載の細胞を適当な培地 で培養し、蛋白質を回収することによる、請求項1乃至7のいずれかに記載の蛋 白質の製造方法。17. The cells according to any one of claims 8 to 11 or claim 16 are cultured in an appropriate medium. The protein according to any one of claims 1 to 7, which is obtained by culturing the protein in How white matter is produced. 18.請求項1乃至7のいずれかに記載の24Kd蛋白質をコードするDNA配 列。18. A DNA sequence encoding the 24Kd protein according to any one of claims 1 to 7. Column. 19.第1図に記載のDNA配列。19. The DNA sequence shown in FIG. 20.請求項1乃至7のいずれかに記載の蛋白質および請求項12乃至15のい ずれかに記載のポックスウィルスのから選ばれる少なくとも1種を活性薬物とし て含有する、特にトキソプラズマ症の予防に有効な医薬製剤。20. The protein according to any one of claims 1 to 7 and the protein according to claims 12 to 15 at least one selected from the poxviruses listed in any of the above as an active drug; A pharmaceutical formulation particularly effective for the prevention of toxoplasmosis. 21.請求項12乃至15のいずれかに記載のポックスウィルスを活性薬物とし て含有し、該ウィルスが生菌である請求項19に記載の医薬製剤。21. The poxvirus according to any one of claims 12 to 15 is used as an active drug. 20. The pharmaceutical preparation according to claim 19, wherein the virus is a live bacteria. 22.請求項12乃至15のいずれかに記載のポックスウィルスを活性薬物とし て含有し、該ウィルスが死菌である請求項20に記載の医薬製剤。22. The poxvirus according to any one of claims 12 to 15 is used as an active drug. 21. The pharmaceutical preparation according to claim 20, wherein the virus is killed. 23.ヒトまたは動物に投与可能な形態である請求項20乃至22のいずれかに 記載の医薬製剤。23. Any one of claims 20 to 22, which is in a form that can be administered to humans or animals. Pharmaceutical formulations as described. 24.請求項1乃至7のいずれかに記載の蛋白質に対して生産されるか、請求項 12乃至15のいずれかに記載のポックスウィルスで誘発される抗体。24. produced for the protein according to any one of claims 1 to 7; 16. An antibody induced by the poxvirus according to any one of 12 to 15. 25.請求項24に記載の抗体または請求項1乃至7のいずれかに記載の蛋白質 のトキソプラズマ症診断剤への適用。25. The antibody according to claim 24 or the protein according to any one of claims 1 to 7 Application of toxoplasmosis diagnostic agent.
JP1500776A 1987-12-24 1988-12-23 Proteins and their production methods, DNA sequences, antibodies and their applications, poxviruses, transformed or infected cells and pharmaceutical formulations useful for the prevention of toxoplasmosis. Pending JPH02502878A (en)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
FR8718180A FR2625099B1 (en) 1987-12-24 1987-12-24 PROTEINS AND THEIR PREPARATION METHOD, DNA SEQUENCES, ANTIBODIES AND THEIR APPLICATION, POXVIRUSES, TRANSFORMED OR INFECTED CELLS AND PHARMACEUTICAL COMPOSITIONS USEFUL IN THE PREVENTION OF TOXOPLASMOSIS
FR87/18180 1987-12-24

Publications (1)

Publication Number Publication Date
JPH02502878A true JPH02502878A (en) 1990-09-13

Family

ID=9358323

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP1500776A Pending JPH02502878A (en) 1987-12-24 1988-12-23 Proteins and their production methods, DNA sequences, antibodies and their applications, poxviruses, transformed or infected cells and pharmaceutical formulations useful for the prevention of toxoplasmosis.

Country Status (4)

Country Link
EP (1) EP0346430A1 (en)
JP (1) JPH02502878A (en)
FR (1) FR2625099B1 (en)
WO (1) WO1989005658A1 (en)

Families Citing this family (10)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE3940598A1 (en) * 1989-12-08 1991-06-13 Behringwerke Ag TOXOPLASMA GONDII-ANTIGENE, THEIR PRODUCTION AND USE
JPH02261382A (en) * 1989-04-03 1990-10-24 Mochida Pharmaceut Co Ltd Novel dna sequence originated from toxoplasma and protein coded therewith
EP0542843A4 (en) * 1990-08-10 1994-07-06 Univ Southern Australia Cloning and expression of toxoplasma antigens and use of recombinant antigens
FR2714074B1 (en) * 1993-12-20 1996-03-01 Pasteur Institut Promoters of the GRA1, GRA2, GRA5 and GRA6 genes of toxoplasma gondii and expression vectors comprising said promoters.
ZA958366B (en) * 1994-10-06 1996-04-24 Akzo Nobel Nv New toxoplasma gondii antigens
EP0953641A3 (en) * 1998-03-26 2002-03-13 Pfizer Products Inc. Polynucleotide molecules encoding neospora proteins
AU2006222315A1 (en) 2005-03-08 2006-09-14 Sigma Tau Industrie Farmaceutiche Riunite S.P.A. Chimeric recombinant antigens of Toxoplasma gondii
WO2012088125A2 (en) * 2010-12-23 2012-06-28 Immport Therapeutics, Inc. Methods and compositions of protein antigens for the diagnosis and treatment of toxoplasma gondii infections and toxoplasmosis
EP2877852B1 (en) * 2012-07-23 2022-05-25 Hermouet, Sylvie A protein microarray for characterizing the specificity of the monoclonal immunoglobulins of mgus or myeloma patients
FR2994482B1 (en) * 2012-08-13 2014-08-22 Repropharm COMPOSITION, METHOD AND KIT FOR DETECTION OF PREVULATORY PIC OF LH

Family Cites Families (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
FR2518407A1 (en) * 1981-12-17 1983-06-24 Merieux Inst NOVEL ANTIGEN FOR THE RESEARCH OF TOXOPLASMIC IMMUNITY AND ITS PREPARATION METHOD
US4564592A (en) * 1983-01-21 1986-01-14 Research Corporation Toxoplasmosis factor and production of same
FR2564731B1 (en) * 1984-05-28 1986-10-10 Ambroise Thomas Pierre NOVEL TOXOPLASMIC EXO-ANTIGENIC FRACTIONS, THEIR PREPARATION PROCESS AND THEIR APPLICATION TO THE RESEARCH OF TOXOPLASMIC IMMUNITY IN MAN BY SKIN TESTS
AU613583B2 (en) * 1986-08-22 1991-08-08 Transgene S.A. Proteins and the method for preparing them, DNA sequences, antibodies and their application, poxviruses, transformed or infected cells, pharmaceutical compositions which are useful in the prevention of schistosomiasis and application by way of an agent possessing glutathione s-transferase activity

Also Published As

Publication number Publication date
WO1989005658A1 (en) 1989-06-29
FR2625099B1 (en) 1991-06-14
FR2625099A1 (en) 1989-06-30
EP0346430A1 (en) 1989-12-20

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP2907813B2 (en) Antigenic protein for preventing coccidiosis and vaccine containing the same
Cesbron-Delauw et al. Molecular characterization of a 23-kilodalton major antigen secreted by Toxoplasma gondii.
AU653387B2 (en) Antigen-presenting chimaeric protein
AU722138B2 (en) Recombinant vector containing a sequence of a lipoprotein gene for the expression of nucleotide sequences
JP3051130B2 (en) Recombinant coccidiosis vaccines
JPH09501933A (en) Attenuation of immunodominant epitopes on antibodies useful as vaccines for plants, animals, and humans and for immunotherapy
JP2000516083A (en) Recombinant protein containing the C-terminal fragment of malaria parasite MSP-1
JPH0699475B2 (en) Coccidial monoclonal antibody
JP2009077713A (en) NUCLEIC ACIDS ENCODING RECOMBINANT 56 AND 82 kDa ANTIGENS FROM GAMETOCYTES OF EIMERIA MAXIMA AND THEIR USE
EP0553117A1 (en) Genetically engineered coccidiosis vaccine
JP3037359B2 (en) Coccidiosis vaccine
JPH02502878A (en) Proteins and their production methods, DNA sequences, antibodies and their applications, poxviruses, transformed or infected cells and pharmaceutical formulations useful for the prevention of toxoplasmosis.
JP3127261B2 (en) Protein and its production method, DNA sequence, antibody and its use, poxvirus, transformed or infected cell, schistosomiasis preventive agent and use as glutathione S-transferase active agent
JPH09502353A (en) Binding domains from Plasmodium vivax and Plasmodium falciparum erythrocyte binding protein
KR19990082086A (en) Malaria vaccine based on the addition of MS1 peptide
JPH05500654A (en) Contraceptive vaccine based on cloned zona pellucida gene
JP2812759B2 (en) Gene encoding human malaria vaccine antigen
JPH10504724A (en) Borna disease virus sequences, diagnostics and therapeutics for nervous system disorders
JP3135060B2 (en) Conjugate using partial fragment of outer membrane protein P2 of Haemophilus influenzae type b
US5393523A (en) Plasmodium falciparum vaccine comprising a recombinant histidine-rich protein-HRP-II
Gamble et al. Biotechnology in the development of vaccines for animal parasites
JPH03503237A (en) A cloned gene encoding a tricoccidiosis antigen that induces a cellular response, and a method for producing the same
KR0152245B1 (en) Eimeria tenella vaccine
EP1578791B1 (en) Inclusion bodies for the oral vaccination of animals
JP2002533474A (en) El. Chimeric genes encoding antigenic determinants of four proteins of L. infantum