JPH02259467A - Unstable type saccharified hemoglobin dissociation agent - Google Patents
Unstable type saccharified hemoglobin dissociation agentInfo
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Abstract
Description
【発明の詳細な説明】
(産業上の利用分野)
本発明は、血液中の糖化ヘモグロビン(ヘモグロビンA
1)、特にヘモグロビン八lcの測定において用いられ
る不安定型糖化ヘモグロビンAteの解離剤に関する。DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION (Industrial Application Field) The present invention relates to glycated hemoglobin (hemoglobin A) in blood.
1), particularly relates to a dissociating agent for unstable glycated hemoglobin Ate used in the measurement of hemoglobin 8lc.
(従来の技術)
糖尿病の指標のひとつとして血液中の糖化ヘモグロビン
(ヘモグロビンA、) 、特にヘモグロビンAicが知
られ、その測定が行われている。ヘモグロビンAteは
、下記式に示されるように、ヘモグロビン(以下、ヘモ
グロビンをllbで示す)のβ鎖N末端に存在するバリ
ンのアミノ基にグルコース1分子が非酵素的に結合した
複合体である。1]bの上記アミノ基にグルコースが結
合すると、まず。(Prior Art) Glycated hemoglobin (hemoglobin A) in the blood, particularly hemoglobin Aic, is known as one of the indicators of diabetes, and its measurement is being carried out. Hemoglobin Ate, as shown in the following formula, is a complex in which one molecule of glucose is bound non-enzymatically to the amino group of valine present at the N-terminus of the β chain of hemoglobin (hereinafter hemoglobin is referred to as llb). 1] When glucose binds to the above amino group of b, first.
下記式に示すようなシッフ塩基である不安定型ヘモグロ
ビン^1c(I)が形成される:)1c=D
HCDH
HC=N−βA
C0H
CH2−NH,”−βA
C=0
HCOHHCOHHCOH
CII20HC112011CH20Hグルコース
(I) (n)上記式(
1)において、β−A−N)+2はHbを示し。Unstable hemoglobin^1c(I), a Schiff base, is formed as shown in the following formula:)1c=D HCDH HC=N-βA C0H CH2-NH,"-βA C=0 HCOHHCOHHCOH CII20HC112011CH20H Glucose
(I) (n) The above formula (
In 1), β-A-N)+2 represents Hb.
そのなかのNH,は、該)1bのβ鎖N末端のバリンの
アミノ基を示す。NH, therein represents the amino group of valine at the N-terminus of the β chain of 1b.
この不安定型Hb^1c(I)の生成反応は可逆反応で
あり、グルコース濃度に応じて平衡が不安定型11bA
、c(■)の生成方向もしくは解離方向に傾く。This reaction of producing unstable Hb^1c (I) is a reversible reaction, and the equilibrium changes depending on the glucose concentration.
, c(■) tends toward the production direction or dissociation direction.
(I)は、さらにアマトリ転位を経て、不可逆的に安定
型HbA、c(n)に変化する。(I) further undergoes Amatoli rearrangement and irreversibly changes to stable HbA, c(n).
)1bA+cは1例えば、高速液体クロマトグラフィー
によりHbを各)1b成分に分離し、そのODを測定す
ることにより定量され得るが、上記安定型HbA 、c
(S−HbA、c)および不安定型HbA+c(L−H
bAIC)を分離して測定することができない”。その
ためHbAlcを安定した値で得られない。なぜなら、
L−HbA、cは、グルコース(つまり血糖)量によ
り、その量が変化し、該血糖値は1食事や運動により急
激かつ大幅に変化するためである。)1bA+c can be quantified by, for example, separating Hb into each )1b component by high-performance liquid chromatography and measuring the OD of the stable HbA, c.
(S-HbA, c) and unstable HbA+c (L-H
bAIC) cannot be separated and measured. Therefore, HbAlc cannot be obtained at a stable value.
This is because the amount of L-HbA,c changes depending on the amount of glucose (that is, blood sugar), and the blood sugar level changes rapidly and significantly with one meal or exercise.
上記欠点を解消するため、血液検体からL−HbA 、
Cを除去し、 S−11bAlcのみを測定する試みが
なされている。例えば、 David M、Natha
nら、 C11nicalChen+1stry、28
512〜515(1982)には、セミカルバジドおよ
びアニリンをL−HbA 、cの除去剤として用い、
p)I 5.0.38℃にて30分間血液検体を処理す
ることが開示されている。セミカルバジドは、グルコー
スを捕捉し、かつ求核試薬として作用し、 Hbのアミ
ノ基と競合する。アニリンは触媒として作用する。その
結果、 L−HbA、cは実質的に除去される。しかし
、 L−HbA、cの除去反応が酸性側(p85.0)
にて、かつ比較的高温(38℃)でなされるため。In order to eliminate the above drawbacks, L-HbA,
Attempts have been made to remove C and measure only S-11bAlc. For example, David M., Natha
n et al., C11nicalChen+1stry, 28
512-515 (1982) using semicarbazide and aniline as removal agents for L-HbA, c;
p)I 5. Processing blood specimens for 30 minutes at 0.38°C is disclosed. Semicarbazide scavenges glucose and acts as a nucleophile, competing with the amino groups of Hb. Aniline acts as a catalyst. As a result, L-HbA,c is substantially removed. However, the removal reaction of L-HbA,c is on the acidic side (p85.0).
and at a relatively high temperature (38°C).
Hbの変性(例えば脱ヘム)が生じる。例えば、イオン
交換クロマトグラフィーによる溶出パターンを観察する
と、脱ヘムによる退色に起因するピーク強度の低下やH
bA 、、とHbA+bとに起因するピークの増大が観
察される。Denaturation of Hb (eg dehemization) occurs. For example, when observing the elution pattern by ion-exchange chromatography, we find that the peak intensity decreases due to fading due to heme removal, and the H
An increase in the peaks due to bA , , and HbA+b is observed.
特開昭58−210024号公報には、ジヒドロキシボ
リル化合物(ホウ酸化合物)がL−HbA lcの除去
剤として開示されている。このジヒドロキシボリル化合
物はグルコースのDH基をエステル化するためグルコー
スが系内から除去され、その結果、 L−HbA、cの
解離が進行する。しかし、 L−HbAICを除去する
ためには、高濃度のジヒドロキシボリル化合物を必要と
する。例えば、溶血させた血液を含む試料液中で約0.
1〜l、 OL 該ジヒドロキシボリル化合物を含む溶
離液を用いて、溶血物を溶出させる場合には、該溶離液
中に0.01〜0.15Mの割合で含有されることが必
要である。このように高濃度のジヒドロキシボリル化合
物が含有されると、イオン交換クロマトグラフィーにか
ける場合にそのイオン強度が通常の場合とは異なり、そ
の結果9分離条件が変わり、測定が困難となったり測定
条件の補正が必要となる。さらに、最適pHが約4.5
〜6.5゜好ましくは5.0〜6.0であるため、 H
bの変性が生じるおそれがある。JP-A-58-210024 discloses a dihydroxyboryl compound (boric acid compound) as a remover for L-HbA lc. Since this dihydroxyboryl compound esterifies the DH group of glucose, glucose is removed from the system, and as a result, dissociation of L-HbA, c progresses. However, high concentrations of dihydroxyboryl compounds are required to remove L-HbAIC. For example, in a sample solution containing hemolyzed blood, approximately 0.
1 to 1, OL When a hemolysate is eluted using an eluent containing the dihydroxyboryl compound, it is necessary that the dihydroxyboryl compound be contained in the eluent at a ratio of 0.01 to 0.15M. If such a high concentration of dihydroxyboryl compound is contained, the ionic strength when subjected to ion exchange chromatography will be different from normal, resulting in changes in the separation conditions, making measurements difficult or changing the measurement conditions. correction is required. Furthermore, the optimum pH is approximately 4.5.
~6.5°, preferably 5.0 ~ 6.0, so H
There is a risk that degeneration of b.
L−HbAlcのその他の除去方法としては、血液検体
を希釈してグルコース濃度を下げ、 L−HbA、cの
解離を促進させる方法が知られている。これを実施する
には1例えば、赤血球を大過剰の生理食塩水でインキュ
ベートしたり、溶血物を透析する方法が採用される。し
かし、これらの方法はいずれも長時間を必要とするため
、臨床検査のための方法としては適切ではない。Another known method for removing L-HbAlc is to dilute the blood sample to lower the glucose concentration and promote the dissociation of L-HbA,c. This can be accomplished, for example, by incubating red blood cells in a large excess of physiological saline or by dialyzing hemolysates. However, all of these methods require a long time and are therefore not suitable as methods for clinical testing.
(発明が解決しようとする問題点) 本発明は上記従来の欠点を解決するものであり。(Problem that the invention attempts to solve) The present invention solves the above-mentioned conventional drawbacks.
その目的とするところは、血液検体中の安定型ヘモグロ
ビン^1cのみを、精度良(簡便に、かつヘモグロビン
を変性させることなく測定しつる。不安定型ヘモグロビ
ンA1cの除去剤もしくは解離剤。Its purpose is to measure only stable hemoglobin^1c in a blood sample with high accuracy (simply and without denaturing hemoglobin).A remover or dissociator for unstable hemoglobin A1c.
およびヘモグロビンA1cの測定方法を提供することに
ある。and to provide a method for measuring hemoglobin A1c.
(問題点を解決するための手段および作用)本発明の不
安定型糖化ヘモグロビン解離剤は。(Means and effects for solving the problems) The unstable glycated hemoglobin dissociating agent of the present invention.
血液中のヘモグロビンA1の測定に用いられ、該解離削
が、フィチン酸および/またはフィチン酸の塩を主成分
とし、不安定型ヘモグロビンAlcをヘモグロビンとグ
ルコースとに解離する機能を有し。It is used to measure hemoglobin A1 in blood, and the dissociative abrasion mainly contains phytic acid and/or a salt of phytic acid, and has the function of dissociating unstable hemoglobin Alc into hemoglobin and glucose.
そのことにより上記目的が達成される。This achieves the above objective.
本発明の糖化ヘモグロビンの測定法は、血液中の少なく
とも赤血球および/またはヘモグロビンを含む試料を、
フィチン酸および/またはフィチン酸の塩を含む解離用
媒質と接触させて、該赤血球および/またはヘモグロビ
ンに含まれる不安定型ヘモグロビンAICをヘモグロビ
ンとグルコースとに解離させる工程、および、該解離後
の試料中のヘモグロビンをイオン交換クロマトグラフィ
ーで各ヘモグロビン成分に分離し、該試料中に存在する
安定型ヘモグロビンAICを測定する工程を包含し、そ
のことにより上記目的が達成される。The method for measuring glycated hemoglobin of the present invention involves using a sample containing at least red blood cells and/or hemoglobin in blood.
a step of dissociating unstable hemoglobin AIC contained in the red blood cells and/or hemoglobin into hemoglobin and glucose by contacting with a dissociation medium containing phytic acid and/or a salt of phytic acid; The method includes a step of separating hemoglobin into each hemoglobin component by ion exchange chromatography and measuring stable hemoglobin AIC present in the sample, thereby achieving the above object.
本発明におけるフィチン酸とは1次のような構造式で表
わされる。Phytic acid in the present invention is represented by the following structural formula.
(以下余白)
フィチン酸は、その塩であっても同等の効果が得られる
。塩の種類は特に限定されないが、例えばアルカリ金属
やアルカリ土類金属の塩が挙げられ、 Na塩、 K塩
などが好適である。(Left below) Phytic acid can have the same effect even in its salt form. The type of salt is not particularly limited, but examples include salts of alkali metals and alkaline earth metals, with Na salts, K salts, etc. being preferred.
本発明のL−HbA、、解離剤の使用量は、用いられる
化合物の種類や測定時の条件(血液の溶血などの前処理
の条件、 pHなど)によって異なるが 通常、血液(
全血)1mfあたり1〜1500mgの割合である。例
えば、血液検体3μlを450μmの溶血剤溶液にて溶
血させた試料溶液中にフィチン酸が約0.001〜1.
0W/V%(1’l/V%l;!単位容![アタリ(7
1)重量を示す)、好ましくは0.01〜0.211/
V%の割合で添加される。過少であるとL−HbA、。The amount of L-HbA dissociating agent used in the present invention varies depending on the type of compound used and the conditions at the time of measurement (pretreatment conditions such as blood hemolysis, pH, etc.).
whole blood) at a rate of 1 to 1500 mg per mf. For example, phytic acid is about 0.001 to 1.0 μl in a sample solution obtained by hemolyzing 3 μl of a blood sample with a 450 μm hemolytic agent solution.
0W/V% (1'l/V%l;! Unit volume! [Atari (7
1) weight), preferably 0.01 to 0.211/
It is added in a proportion of V%. L-HbA, if too low.
の解離・除去効果が得られず、過剰であるとクロマトグ
ラフィー分離時における分離が困難となる。The effect of dissociation and removal cannot be obtained, and if it is in excess, separation during chromatographic separation becomes difficult.
血液中のHbを測定するときには、 [Hbは赤血球中
に存在するため9通常、血液をあらかじめ溶血させてお
く場合が多い。溶血剤としては、界面活性剤が好適に用
いられる。溶血剤としては、高級脂肪族アルコール、ア
ルキルアリールポリエーテルアルコール、スルホネート
化合物のポリオキシエチレンエーテル、サルフェート化
合物のポリオキシエチレンエーテル、ソルビット脂肪酸
エステルのポリオキシエチl/ン付加体などがある。溶
血剤の使用量は、その種類などによっても異なるが。When measuring Hb in blood, [because Hb exists in red blood cells9] the blood is usually hemolyzed in advance. A surfactant is preferably used as the hemolytic agent. Examples of the hemolytic agent include higher aliphatic alcohols, alkylaryl polyether alcohols, polyoxyethylene ethers of sulfonate compounds, polyoxyethylene ethers of sulfate compounds, and polyoxyethylene adducts of sorbitol fatty acid esters. The amount of hemolytic agent used varies depending on the type of hemolytic agent.
通常、血液1rnlあたり10〜2000mgである。Usually 10-2000 mg per rnl of blood.
例えば。for example.
溶血剤を0o01〜2容1%の割合で含有する溶血用処
理液を血液1−あたり2〜400rnf!の割合で添加
してインキュベートすることにより溶血させることがで
きる。溶血剤が過剰であるとクロマトグラフィーによる
Hbの分離が困難となる。A hemolysis treatment solution containing a hemolytic agent at a ratio of 1% by volume is 2 to 400 rnf per 1 of blood! Hemolysis can be achieved by adding and incubating at a ratio of . If the hemolytic agent is in excess, separation of Hb by chromatography becomes difficult.
本発明により糖化tlbの測定を行うには、まず。To measure glycated TLB according to the present invention, first.
血液検体を必要に応じて溶血剤で前処理して溶血させ、
少なくとも赤血球および/またはHbを含む試料を調製
する。この試料を9本発明の上記解離剤を含む解離用媒
質と接触させる。この解離剤は。If necessary, pre-treat the blood sample with a hemolytic agent to lyse it,
A sample containing at least red blood cells and/or Hb is prepared. This sample is brought into contact with a dissociation medium containing the above dissociation agent of the present invention. This dissociating agent.
試料が後述のクロマトグラフィーのカラム中でイオン交
換により分離されて溶出される以前に赤血球$よび/ま
たはHbと接触すればよい。従って。The sample may be contacted with red blood cells and/or Hb before being separated by ion exchange and eluted in a chromatography column described below. Therefore.
解離剤は、血液検体を適当な濃度に希釈するための希釈
液、溶血剤を含む溶血剤溶液、クロマトグラフィーに用
いられる溶離液などに含まれていてもよく、このような
溶液や溶離液もまた。上記解離用媒質と考えられる。そ
の他、解離剤は9例えば試料の赤血球分散液、その溶血
物、 Hb溶液に固体のまま添加されてもよい。この解
離剤は速やかに溶解し、試料中のHbは解離用媒質と接
触すると解離される。The dissociating agent may be included in a diluent for diluting a blood sample to an appropriate concentration, a hemolytic agent solution containing a hemolytic agent, an eluent used in chromatography, etc. Such solutions and eluents may also be included. Also. It is considered to be the above-mentioned dissociation medium. In addition, the dissociating agent may be added as a solid to, for example, the sample red blood cell dispersion, its hemolysate, or Hb solution. This dissociating agent dissolves rapidly, and Hb in the sample is dissociated upon contact with the dissociating medium.
本発明の解離剤を用いた糖化11bの測定方法のうち、
試料を該解離剤で解離させた後、クロマトグラフィーに
かけて分離・測定する方法について。Among the methods for measuring glycation 11b using the dissociating agent of the present invention,
About a method of dissociating a sample with the dissociating agent and then subjecting it to chromatography for separation and measurement.
次に説明する。試料と解離剤(解離用媒質)との接触時
のpHは酸性側であるほど、 L−HbA、cの解離速
度は上昇するが、pHが低すぎるとllbの変性が生じ
る。さらに、極端に高いか低いPH条件下ではクロマト
グラフィーによるHbの分離が困難になる。This will be explained next. The more acidic the pH at the time of contact between the sample and the dissociation agent (dissociation medium), the higher the dissociation rate of L-HbA,c, but if the pH is too low, denaturation of llb occurs. Furthermore, separation of Hb by chromatography becomes difficult under extremely high or low pH conditions.
従って9通常、試料および解離剤を含む混合液のpHが
4.6〜7.O1好ましくは5.3〜6.5となるよう
に調整される。試料と解離剤との接触時間は解離剤の種
類や濃度、 pH条件などにより異なるが。Therefore,9 usually the pH of the mixed solution containing the sample and dissociating agent is between 4.6 and 7. O1 is preferably adjusted to 5.3 to 6.5. The contact time between the sample and the dissociating agent varies depending on the type and concentration of the dissociating agent, pH conditions, etc.
通常、室温においては10分以上、好ましくは10〜3
0分である。温度を上げることによる接触時間の短縮も
可能であり1例えば37℃にて約3〜7分。Usually at room temperature for 10 minutes or more, preferably 10 to 3 minutes
It is 0 minutes. It is also possible to shorten the contact time by increasing the temperature; for example, about 3 to 7 minutes at 37°C.
50℃にて約1〜3分間インキコベートすることもでき
る。このように処理された試料は、イオン交換クロマト
グラフィー(例えば高速液体クロマトグラフィー)にか
けられ、 Hbの各成分が分離されて溶出され、測定さ
れる。Inking can also be performed at 50°C for about 1-3 minutes. The sample treated in this manner is subjected to ion exchange chromatography (eg, high performance liquid chromatography), and each component of Hb is separated, eluted, and measured.
試料溶液を直接イオン交換クロマトグラフィーにかけ上
記解離剤が含有される溶m1&を用いて溶出させる場合
には、該溶離液のpHは、 Hbを変性させず、かつク
ロマトグラフィーにより容易にHbAlcが分離されて
測定され得るような範囲であればよい。通常、 pH5
,0〜6.5の範囲が選択される。試料がクロマトグラ
フィー〇カラムを通過する間に含有されるL−HbAI
Cが解離され9次いで各Hb酸成分分離されて溶出され
、測定される。解離剤は。When the sample solution is directly subjected to ion-exchange chromatography and eluted using solution m1& containing the dissociating agent, the pH of the eluent is such that Hb is not denatured and HbAlc is easily separated by chromatography. Any range that can be measured is sufficient. Usually pH5
, 0 to 6.5. L-HbAI contained while the sample passes through the chromatography column
C is dissociated and each Hb acid component is then separated, eluted, and measured. The dissociating agent.
上記試料の希釈液や溶血用前処理液などとクロマトグラ
フィー用溶離液との両者に含有させることも可能で、こ
の場合は特に効果的にL−HbA、cの解離がなされる
。It is also possible to include it in both the sample diluent or hemolysis pretreatment solution and the chromatography eluent, and in this case L-HbA,c is particularly effectively dissociated.
このような本発明解離剤によるL−HbA 、eの解離
・除去作用は、 Hb上の2.3−DPGポケットの性
質に起因すると考えられる。2.3−DPGポケットに
関しては、 Benesch ら、 (Bioch
em、 Biophys、 Res。Such dissociation and removal action of L-HbA,e by the dissociating agent of the present invention is considered to be due to the properties of the 2,3-DPG pocket on Hb. Regarding the 2.3-DPG pocket, Benesch et al. (Bioch
em, Biophys, Res.
Commun、 、 26.162.1967)
; Chanutinら、 (Arch。Commun, , 26.162.1967)
; Chanutin et al. (Arch.
Biochem、 Biophys、、121:96.
1967)などにより詳しく報告されている。この2.
3−[)PGポケットはHbのβ鎖のヒスチジン、リジ
ンなどの塩基性アミノ酸残基、およびHbAIcのHb
B鎮のN末端バリンによって形成されており、カチオン
性を帯びていることが知られている。本発明解離剤の主
成分であるフィチン酸およびその塩はアニオン性を有し
かつその分子形状も適切であるため上記2.3−DPG
ポケットに対して強力な親和性を有する。そのため、グ
ルコースと競合してHbのβ鎖N末端に結合する。その
結果、 L−HbA、cの解離が促進される。Biochem, Biophys, 121:96.
(1967) and others. This 2.
3-[)PG pocket contains basic amino acid residues such as histidine and lysine in the β chain of Hb, and Hb in HbAIc.
It is formed by the N-terminal valine of B-chain, and is known to have cationic properties. Since phytic acid and its salts, which are the main components of the dissociating agent of the present invention, have anionic properties and have appropriate molecular shapes, the above-mentioned 2.3-DPG
Has a strong affinity for pockets. Therefore, it competes with glucose and binds to the N-terminus of the β chain of Hb. As a result, dissociation of L-HbA,c is promoted.
このようにしてフィチン酸および/またはフィチン酸の
塩のL−HbA、cの解離作用によりL−HbAIcが
試料中から除去され、 5−HbA、cのみが試料中に
残留する。この解離剤は、 Hbのイオン交換クロマト
グラフィーによる溶出パターンに影響を与えない。その
ため上記5−HbA、cは、従来と同様の方法でイオン
交換クロマトグラフィーにより分離され。In this way, L-HbAIc is removed from the sample by the dissociation effect of L-HbA,c of phytic acid and/or a salt of phytic acid, and only 5-HbA,c remains in the sample. This dissociating agent does not affect the elution pattern of Hb by ion exchange chromatography. Therefore, the above-mentioned 5-HbA,c was separated by ion exchange chromatography in a conventional manner.
精度よく測定される。Measured accurately.
(実施例) 以下に本発明を実施例につき説明する。(Example) The invention will be explained below with reference to examples.
測定方法
以下の実施例においてHbA、の測定は、■京都第−科
学製の旧−Auto A+cHA−8120を°用い適
切条件を選択して測定した。このHA−8120はHP
LCによるHbA+測定専用装置であり、陽イオン交換
により各Hb酸成分4分間で分離して溶出する。溶出用
緩衝液は専用の溶離液(リン酸緩衝液)が用いられる。Measurement method In the following examples, HbA was measured by selecting appropriate conditions using the old Auto A+cHA-8120 manufactured by Kyoto Dai-Kagaku. This HA-8120 is available on the HP
This is a dedicated device for measuring HbA+ using LC, and each Hb acid component is separated and eluted in 4 minutes by cation exchange. A dedicated eluent (phosphate buffer) is used as the elution buffer.
この装置を用いたHbの溶出パターンは一般に第1図に
示される。第1図において+ PlおよびP2はHbA
la+b成分に起因するピークであり+P3およびP4
はL−HbA、cおよび5−HbA lc成分に起因す
るピークである。P、は他のヘモグロビンに起因するピ
ークである。ここで、 HbA、c(S型とL型との
合計)は次式で算出される。The elution pattern of Hb using this device is generally shown in FIG. In Figure 1, +Pl and P2 are HbA
The peak is due to the la+b component and +P3 and P4
are peaks caused by L-HbA, c and 5-HbA lc components. P is a peak due to other hemoglobins. Here, HbA,c (total of S type and L type) is calculated by the following formula.
本実施例においては同一人(健常人)の血液を使用し、
採血後直ちにヘパリンを添加したものを新鮮血液として
用いた。In this example, blood from the same person (healthy person) was used,
Immediately after blood collection, heparin was added and the blood was used as fresh blood.
pH6,3の0.005Mリン酸緩衝液100−中に溶
血剤としてTriton X−100(和光純薬!I)
O,1mlを加えて溶血用試薬を調製した。この溶血用
試薬450μlに新鮮血液3μβを加えて溶血させた後
に、上記方法によりHbA1c(L型およびS型を含む
)を測定したところ2全Hb中1(bA+cは5.0%
の割合で存在することがわかった。この値をブランク値
とした。Triton
A hemolysis reagent was prepared by adding 1 ml of O. After adding 3 μβ of fresh blood to 450 μl of this hemolytic reagent and hemolyzing it, HbA1c (including L type and S type) was measured by the above method. 2 1 in total Hb (bA + c is 5.0%
It was found that there is a proportion of This value was used as a blank value.
次に、新鮮面10rdを遠心分離して得た血球約5ml
を8/321nchセロフアンチユーブ(和光紬薬製)
に入れ、生理食塩水11を用いて各2回、計5時間37
℃にてインキュベートした。このようにしてL−HbA
、cを解離させた後、これを約1.5μl採取し、上記
溶血試薬450μlを用いて溶血させた。Next, about 5 ml of blood cells were obtained by centrifuging the fresh surface 10rd.
8/321nch cellophantium tube (manufactured by Wako Tsumugi Pharmaceutical Co., Ltd.)
2 times each using 11 saline solutions for a total of 5 hours37
Incubated at ℃. In this way, L-HbA
, c was dissociated, about 1.5 μl of this was collected and hemolyzed using 450 μl of the above-mentioned hemolytic reagent.
このサンプルについて1lbA、cを同様の方法で測定
したところ4.3%であった。この値は、血液中の5−
HbA、cに相当すると考えられる。When 1lbA,c of this sample was measured in the same manner, it was 4.3%. This value is 5-
It is thought to correspond to HbA,c.
実施例1
0、005Mリン酸緩衝液100−中に溶血剤としてT
ritonX−100(和光紬薬製)O,lrn!!お
よび解離剤としてフィチン酸40%水溶液(Aldri
ch製)約0−1gを溶解させ、塩基を加えてpHを6
.3に調整し、溶血剤を含む解離用媒質を得た。この溶
血剤含有解離用媒質450μlに新鮮血液3μlを添加
し、室温で約10分間放置して溶血ならびにL−HbA
、cの解離を行った。このサンプルのHbA1cを測定
したところ4.4%であった。別に、フィチン酸(解離
剤)を加えない溶血剤溶液を調製し、同様の方法でHb
A、。の測定を行った。Example 1 T as a hemolytic agent in 0.005M phosphate buffer 100-
ritonX-100 (Wako Tsumugi Pharmaceutical) O, lrn! ! and a 40% aqueous phytic acid solution (Aldri
Dissolve about 0-1 g of the product (manufactured by Ch.
.. 3 to obtain a dissociation medium containing a hemolytic agent. 3 μl of fresh blood was added to 450 μl of this hemolytic agent-containing dissociation medium and left at room temperature for about 10 minutes to cause hemolysis and L-HbA.
, c was dissociated. When the HbA1c of this sample was measured, it was 4.4%. Separately, prepare a hemolytic agent solution without adding phytic acid (dissociation agent), and use the same method to
A. Measurements were made.
次に、上記溶血剤含有解離用媒質および溶血剤溶液(解
離剤を含まない)のそれぞれについてρ1]を5.8.
5.3.5.0および4.6に設定し、同様にHbA、
cの測定を行った。溶血剤を含む解離用媒質を用いた場
合、および、溶血剤溶液(解離剤を含まない)を用いた
場合の総Hb中の1lbA 、c含有潰、および総りb
量を表1に示す。総りb量は、もとの血液中の総りb量
を100%として換算した。Next, ρ1] for each of the hemolytic agent-containing dissociation medium and the hemolytic agent solution (not containing a dissociating agent) is set to 5.8.
5.3.5.0 and 4.6, as well as HbA,
c was measured. 1 lbA, c-containing, and total Hb in total Hb when using a dissociation medium containing a hemolytic agent and when using a hemolytic agent solution (without a dissociating agent)
The amounts are shown in Table 1. The total b amount was calculated using the original total b amount in the blood as 100%.
(以下余白)
表1から、 pH条件が低くなるにつ九で)lbA、c
値が低くなり、 L−11bA、cが解離・除去され
ていることが明らかである。しかし、 pHが5.3を
下まわると脱ヘムによる退色が認められ、 mHb量が
低下するのがわかる。上記系においては、pH4,6に
おけるmHb量はpH6,3の場合の約75%である。(Left below) From Table 1, as the pH condition decreases) lbA, c
The value becomes lower, and it is clear that L-11bA and c are dissociated and removed. However, when the pH drops below 5.3, discoloration due to heme removal is observed, and the amount of mHb decreases. In the above system, the amount of mHb at pH 4.6 is about 75% of that at pH 6.3.
本発明解離剤を用いて測定する場合・には、I]86.
3〜5.3の領域において、 Hbが変化することなく
L−HbA、cが解離・除去されることが明らかで
ある。When measuring using the dissociating agent of the present invention, I]86.
It is clear that in the region of 3 to 5.3, L-HbA,c is dissociated and removed without any change in Hb.
実施例2
0、005Mリン酸緩衝液100mf中に溶血剤として
Trit、onX−100(和光紬薬製)0.1−およ
び解離剤としてフィチン酸ナトリウム(Aldrich
製)約0.1gを溶解させ、塩基を加えてpHを6.3
に調整し、溶血剤を含む解離用媒質を得た。この溶血剤
含有解離用媒質450μlに新鮮血液3μmを添加し、
室温で約10分間放置して溶血ならびにL−HbA1c
の解離を行った。このサンプルのHbA、cを測定した
ところ4.3%であった。Example 2 Trit, onX-100 (Wako Tsumugi Pharmaceutical Co., Ltd.) 0.1- as a hemolytic agent and sodium phytate (Aldrich
Dissolve approximately 0.1 g of
A dissociation medium containing a hemolytic agent was obtained. Add 3 μm of fresh blood to 450 μl of this hemolytic agent-containing dissociation medium,
Leave it at room temperature for about 10 minutes to eliminate hemolysis and L-HbA1c.
The dissociation was performed. The HbA,c of this sample was measured and found to be 4.3%.
実施例3
実施例2に準じ、フィチン酸ナトリウムの量をそれぞれ
1.0g、 0.2g、 0.05g、 0.005g
および0.001g含有する溶血剤含有解離用媒質くい
ずれもpu約6.0)を調製した。これを用いて実施例
1と同様の方法でHbAlcの含有量を測定した。その
結果を表2に示す。Example 3 According to Example 2, the amounts of sodium phytate were 1.0 g, 0.2 g, 0.05 g, and 0.005 g, respectively.
and 0.001 g of a hemolytic agent-containing dissociation medium (both with a pu of about 6.0) were prepared. Using this, the content of HbAlc was measured in the same manner as in Example 1. The results are shown in Table 2.
表2
実施例2に準じ、 pHを6.0に調整°した溶血剤含
有解離用媒質を調製した。これを用い、温度条件を37
℃、50℃および60℃に設定して、それぞれ所定時間
インキュベートした後にHbA 、cの測定を行った。Table 2 According to Example 2, a hemolytic agent-containing dissociation medium whose pH was adjusted to 6.0 was prepared. Using this, the temperature condition was set to 37
℃, 50°C, and 60°C, and after incubation for a predetermined time, HbA and c were measured.
その結果を表3に示す。The results are shown in Table 3.
表3
表2から、フィチン酸ナトリウムが0.005g (0
,005W/V%程度)の低濃度であってもL−HbA
、cの除去効果が得られることがわかる。フィチン酸ナ
トリウムが1.0/g (1,0W/V%程度) (7
)場合1t、 り07 )ダラムのパターンがブロード
に変化するため、濃度をやや低くすることが望ましい。Table 3 From Table 2, sodium phytate is 0.005g (0
,005W/V%) even at a low concentration of L-HbA.
, c can be obtained. Sodium phytate is 1.0/g (approximately 1.0 W/V%) (7
) case 1t, ri07) Since the Durham pattern changes to a broad one, it is desirable to lower the density a little.
実施例4
表3から反応温度を上げるにつれてより迅速にL−Hb
A 、cが除去されることがわかる。しかし、60℃で
3.5分間インキュベートするとHbの変性が認められ
、総りb量が約90%に低下した。そのため。Example 4 From Table 3, as the reaction temperature is increased, L-Hb
It can be seen that A and c are removed. However, when incubated at 60° C. for 3.5 minutes, denaturation of Hb was observed, and the total amount of B decreased to about 90%. Therefore.
高温で長時間インキュベートすることは好ましくないと
考えられる。Incubation at high temperatures for long periods of time is considered undesirable.
実施例5
リン酸緩衝液からなるHtlA+c測定用専用測定用専
用溶槽水化学工業■製)にフィチン酸ナトリウムを0.
005%になるように添加し、解離剤含有溶離液を得た
(pH6,0)。別に、実施例1と同様の溶血剤溶液(
解離剤を含有しない)を調製し、これを用いて、新鮮血
液を実施例1と同様に溶血させた。この試料をすみやか
に上記溶離液を用いてクロマトグラフィーにかけて5分
離・測定したところ、溶出パターンは、実施例1の解離
用媒質を用いた場合と、はぼ同様であり、 HbA+c
含量は4.4%であった。本発明の解離剤を含有する溶
離液を用いると充分にL−HbA、Cが除去されること
がわかる。Example 5 0.0% sodium phytate was added to a phosphate buffer solution (made by Suikagaku Kogyo ■) exclusively for HtlA+c measurement.
0.005% to obtain a dissociating agent-containing eluent (pH 6.0). Separately, the same hemolytic agent solution as in Example 1 (
(containing no dissociating agent) was prepared and used to hemolyze fresh blood in the same manner as in Example 1. When this sample was immediately subjected to chromatography using the above eluent and separated and measured, the elution pattern was almost the same as that when the dissociation medium of Example 1 was used, and HbA+c
The content was 4.4%. It can be seen that L-HbA and C can be sufficiently removed by using the eluent containing the dissociating agent of the present invention.
比較例1 実施例1と同様の溶血剤(実施例1と同濃度)。Comparative example 1 Hemolytic agent similar to Example 1 (same concentration as Example 1).
セミカルバジド塩酸塩(和光紬薬製)0.01M、アニ
リン(和光紬薬製) 0.004Mを含むpH5,3の
0.005Mリン酸緩衝液からなる溶血剤含有L−11
bAIe除去剤溶液を調製した。これを用いて新鮮血を
実施例1と同様に溶血させ、溶血物を60℃にて2分間
インキュベートした。これを測定したどころHbA、c
含量は4.7%であった。しかし7分画パターンはかな
りブロードになり、Hbピーク総面積は当初の約70%
であった。Hemolytic agent-containing L-11 consisting of a 0.005M phosphate buffer with a pH of 5.3 containing 0.01M of semicarbazide hydrochloride (manufactured by Wako Tsumugi Pharmaceutical Co., Ltd.) and 0.004M of aniline (manufactured by Wako Tsumugi Pharmaceutical Co., Ltd.)
bAIe remover solution was prepared. Using this, fresh blood was hemolyzed in the same manner as in Example 1, and the hemolysate was incubated at 60°C for 2 minutes. When this was measured, HbA, c
The content was 4.7%. However, the 7-fraction pattern became quite broad, and the total area of the Hb peak was about 70% of the original.
Met.
比較例2
実施例1と同様の溶血剤(実施例1と同濃度)およびホ
ウ酸1.0%を含有するpf15.3の0.005M
リン酸緩衝液からなる溶血剤含有L−HbA、c除去剤
溶液を調製した。これを用いて新鮮血を実施例1と同様
に溶血させ溶血物を60℃にて2分インキユベートシた
。これを測定したところ、 HbA、c含量は4.4
%であった。しかし、ホウ酸濃度を0.1%としpHを
6.0に調整して同様の測定を行ったところ。Comparative Example 2 0.005M of pf 15.3 containing the same hemolytic agent as Example 1 (same concentration as Example 1) and 1.0% boric acid
A hemolytic agent-containing L-HbA, c remover solution consisting of a phosphate buffer was prepared. Using this, fresh blood was hemolyzed in the same manner as in Example 1, and the hemolysate was incubated at 60° C. for 2 minutes. When this was measured, the HbA,c content was 4.4
%Met. However, similar measurements were performed with the boric acid concentration adjusted to 0.1% and the pH adjusted to 6.0.
HbA、c含量は4.8%となった。このように、ホウ
酸が低濃度である場合には、充分にL−11bA、Cを
除去することができない。The HbA,c content was 4.8%. As described above, when the concentration of boric acid is low, L-11bA and C cannot be sufficiently removed.
(発明の効果)
本発明によれば、このように、血液中のHbAlcのう
ちL−HbA、cが除去され、 5−HbA、eのみが
精度良く簡便にかつヘモグロビンを変性させることなく
短時間のうちに測定される。(Effects of the Invention) According to the present invention, L-HbA, c is removed from HbAlc in the blood, and only 5-HbA, e is removed with high precision and in a short time without denaturing hemoglobin. It will be measured within
5−HbA、、、は、−時的な血糖の上昇もしくは降下
に左右されずに比較的安定して血液中に存在するため、
この測定値はより信頼度の高い糖尿病の指標とされ得る
。測定系を自動化することにより、さらに効果的な臨床
検査が可能となる。5-HbA exists in the blood relatively stably, unaffected by the temporal rise or fall of blood sugar.
This measured value can be used as a more reliable indicator of diabetes. By automating the measurement system, more effective clinical tests will become possible.
第1図は血液中のHbをイオン交換クロマトグラフィー
により分離して測定したときの溶出パターンを示すチャ
ートである。
以上FIG. 1 is a chart showing the elution pattern when Hb in blood is separated and measured by ion exchange chromatography. that's all
Claims (1)
定型糖化ヘモグロビンの解離剤であって、該解離剤が、
フィチン酸および/またはフィチン酸の塩を主成分とし
、不安定型ヘモグロビンA_1_cをヘモグロビンとグ
ルコースとに解離しうる、不安定型糖化ヘモグロビン解
離剤。 2、血液中の少なくとも赤血球および/またはヘモグロ
ビンを含む試料を、フィチン酸および/またはフィチン
酸の塩を含む解離用媒質と接触させて、該赤血球および
/またはヘモグロビンに含まれる不安定型ヘモグロビン
A_1_cをヘモグロビンとグルコースとに解離させる
工程、および 該解離後の試料中のヘモグロビンをイオン交換クロマト
グラフィーで各ヘモグロビン成分に分離し、該試料中に
存在する安定型ヘモグロビンA_1_cを測定する工程
、 を包含する糖化ヘモグロビンの測定法。[Scope of Claims] 1. A dissociating agent for unstable glycated hemoglobin used for measuring glycated hemoglobin in blood, the dissociating agent comprising:
An unstable glycated hemoglobin dissociating agent which contains phytic acid and/or a salt of phytic acid as a main component and is capable of dissociating unstable hemoglobin A_1_c into hemoglobin and glucose. 2. A sample containing at least red blood cells and/or hemoglobin in blood is brought into contact with a dissociation medium containing phytic acid and/or a salt of phytic acid to convert unstable hemoglobin A_1_c contained in the red blood cells and/or hemoglobin into hemoglobin. and glucose, and separating the hemoglobin in the sample after the dissociation into each hemoglobin component by ion exchange chromatography, and measuring the stable hemoglobin A_1_c present in the sample. measurement method.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP8090289A JPH071277B2 (en) | 1989-03-30 | 1989-03-30 | Unstable glycated hemoglobin dissociator |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP8090289A JPH071277B2 (en) | 1989-03-30 | 1989-03-30 | Unstable glycated hemoglobin dissociator |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH02259467A true JPH02259467A (en) | 1990-10-22 |
JPH071277B2 JPH071277B2 (en) | 1995-01-11 |
Family
ID=13731302
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP8090289A Expired - Fee Related JPH071277B2 (en) | 1989-03-30 | 1989-03-30 | Unstable glycated hemoglobin dissociator |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH071277B2 (en) |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US5348649A (en) * | 1990-07-20 | 1994-09-20 | Hitachi, Ltd. | Apparatus for measuring glycohemoglobin |
JPH0912598A (en) * | 1995-06-29 | 1997-01-14 | Sekisui Chem Co Ltd | Separation and purification of hemoglobin |
WO2018008447A1 (en) * | 2016-07-08 | 2018-01-11 | 東ソー株式会社 | Hemoglobin liquid preparation and liquid chromatography method for measuring hemoglobin component |
-
1989
- 1989-03-30 JP JP8090289A patent/JPH071277B2/en not_active Expired - Fee Related
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US5348649A (en) * | 1990-07-20 | 1994-09-20 | Hitachi, Ltd. | Apparatus for measuring glycohemoglobin |
JPH0912598A (en) * | 1995-06-29 | 1997-01-14 | Sekisui Chem Co Ltd | Separation and purification of hemoglobin |
WO2018008447A1 (en) * | 2016-07-08 | 2018-01-11 | 東ソー株式会社 | Hemoglobin liquid preparation and liquid chromatography method for measuring hemoglobin component |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPH071277B2 (en) | 1995-01-11 |
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