JPH01502080A - Enhancement of gamma carboxylation of recombinant vitamin K-dependent proteins - Google Patents

Enhancement of gamma carboxylation of recombinant vitamin K-dependent proteins

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JPH01502080A
JPH01502080A JP50045588A JP50045588A JPH01502080A JP H01502080 A JPH01502080 A JP H01502080A JP 50045588 A JP50045588 A JP 50045588A JP 50045588 A JP50045588 A JP 50045588A JP H01502080 A JPH01502080 A JP H01502080A
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Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるため要約のデータは記録されません。 (57) [Summary] This bulletin contains application data before electronic filing, so abstract data is not recorded.

Description

【発明の詳細な説明】 組み換えビタミンに依存性蛋白質の ガンマカルボキシル化の増強 λ見立11 本発明はビタミンに依存性蛋白質に関する。[Detailed description of the invention] recombinant vitamin-dependent proteins Enhancement of gamma carboxylation λmitate 11 The present invention relates to vitamin-dependent proteins.

ビタミンに依存性蛋白質は、その完全な合成のためにビタミンKを必要とする。Vitamin-dependent proteins require vitamin K for their complete synthesis.

これらの蛋白質には、プロトロンビン、第X因子、第■因子、プロティンC、プ ロティンS1第X因子およびプロティン・2など(そのある物は血液凝固に関係 する)および骨の中に見出されるオステオカルシンおよび骨マトリックスGla 蛋白質が含まれる。一つのグループとして、血液凝固蛋白質は、アミノ酸配列に 顕著な相同性を有し、チモーゲンから活性酵素型への函定蛋白分解により活性化 される(プロティンSのみは異なる)、全てのビタミンに依存性蛋白質は、新規 メタル結合アミノ酸T−カルボキシグルタミン酸を有する。These proteins include prothrombin, factor Lotin S1 factor X and protein 2 (some of which are involved in blood clotting) ) and osteocalcin and bone matrix Gla found in bone. Contains protein. As a group, blood clotting proteins have amino acid sequences Has significant homology and is activated by enzymatic proteolysis of the zymogen to the active enzyme form (only protein S differs), all vitamin-dependent proteins are new It has a metal binding amino acid T-carboxyglutamic acid.

ビタミンに依存性蛋白質中のグルタミン酸残基は、最初に細胞中に存在する時は カルボキシル化されていない。Glutamic acid residues in vitamin-dependent proteins are Not carboxylated.

カルボキシル化は細胞から蛋白質が分泌される前のある時期に生じる。Carboxylation occurs sometime before the protein is secreted from the cell.

ビタミンに依存性蛋白質は、肝臓病、ビタミンに欠乏症、およびワルファリンナ トリウム(クマリノ)のようなビタミンに拮抗性薬剤の存在下等で、後天的に欠 乏する。血友病Bは、mlX因子の遺伝的欠損を特徴とする病気である。血友病 に悩む25000人の米国人のうち、約lO〜12%は、血友病Bである。Vitamin-dependent proteins are associated with liver disease, vitamin deficiencies, and warfarin Acquired deficiencies may occur, such as in the presence of antagonistic drugs to vitamins such as thorium (coumarino). be scarce Hemophilia B is a disease characterized by a genetic deficiency of the mlX factor. hemophilia Of the 25,000 Americans who suffer from hemophilia B, approximately 10 to 12% have hemophilia B.

先天的または後天的に血液凝固蛋白質の欠損を含む病気の患者の治療は、危険が 多くまた高価である。例えば血友病Bは現在2種の方法で行われる:即ち、新鮮 凍結血永、または正常ヒト直置の部分分画で得られる市販の第X因子による。後 者の方法で得られる第X因子は、中間的純度のものでしかない。Treatment of patients with diseases involving congenital or acquired deficiencies in blood clotting proteins is risky. Many are also expensive. For example, hemophilia B is currently treated in two ways: By using commercially available factor rear Factor X obtained by this method is of intermediate purity.

ヒト第■遺伝子はプラスミド中に多ローン化されており、哺乳類細胞に形質転換 されている。しかしながら、発現された第X因子は血液中で循環しているものに 比して、はんの部分的にカルボキシル化されているにすぎない、この部分的カル ボキシル化第■因子は、天然の充分にカルボキシル化された第X因子のもつ充分 な活性は持っていない。The human No. 1 gene is cloned into a plasmid and can be transformed into mammalian cells. has been done. However, the expressed factor In contrast, this partially carboxylated metal is only partially carboxylated. Boxylated factor It does not have any activity.

ビタミンに依存性蛋白質は、最初に合成される時、成熟蛋白質(例えばプロトロ ンビン)、該成熟蛋白質の上流で隣接するアミノ酸配列(プロペプチド)から構 成されている。蛋白質が粗面小胞体中で合成される時、プレペプチドはプロプロ チイン(成熟蛋白質に結合したプロペプチド、例えばプロプロトロンビン)が細 胞の小胞体中に分泌される間に開裂される。この分泌に続いて、ガンマカルボキ シル化が生じ、そして最終的に、プロペプチドが開裂され、成熟蛋白質が細胞か ら放出される(本明ai*において、プレペプチドおよびプロペプチドを一緒に して、プレプロペプチドという)。When vitamin-dependent proteins are first synthesized, they are converted into mature proteins (e.g. (propeptide), which is composed of adjacent amino acid sequences (propeptide) upstream of the mature protein. has been completed. When proteins are synthesized in the rough endoplasmic reticulum, prepeptides are Thiins (propeptides bound to mature proteins, e.g. proprothrombin) are It is cleaved during secretion into the endoplasmic reticulum of the vesicle. Following this secretion, gamma carbo Sylation occurs and, ultimately, the propeptide is cleaved and the mature protein is released from the cell. (In the present invention ai*, the prepeptide and propeptide are released together. (called prepropeptide).

発明の概要 一般に、本発明は、ヒトビタミンに依存性蛋白質をコードしている第1DNA配 列と、その5′末端に融合している、前記蛋白質をフードする前記DNA配列と 天然に結合しているプロペプチドコード配列と同一ではない@2DNA2DNA 配DNA配列を特徴としており、該第2DNA配列は蛋白質が組み換え真核細胞 内で発現され!二とき、該蛋白質のガンマ−カルボキシル化を促進する能力のあ るプロペプチド配列をコードすることのできる天然には存在しないプロペブチト コ−ρ配列である。Summary of the invention In general, the present invention relates to a first DNA sequence encoding a human vitamin-dependent protein. a sequence of DNA encoding the protein, fused to its 5' end; @2DNA2DNA not identical to the naturally associated propeptide coding sequence The second DNA sequence is characterized by a second DNA sequence in which the protein is derived from recombinant eukaryotic cells. Expressed within! Second, it has the ability to promote gamma-carboxylation of the protein. A non-naturally occurring propeptide sequence that can encode a propeptide sequence It is a co-ρ array.

(組み換え細胞は、その蛋白質の遺伝子が発現性ベクターを用いて導入されたも のである。) 好ましい実施態様においては、第2DNA配列は、アミノ酸配列においてタンパ ク質に天然に結合しているプロペプチドよりもプロトロンビンのプロペプチドに 類似しているプロペプチドをコードしている。最も好適には、プロトロンビンの プロペプチド自身をコードしている配列が用いられる。(Recombinant cells are cells into which the gene for the protein has been introduced using an expression vector. It is. ) In a preferred embodiment, the second DNA sequence has a protein sequence in its amino acid sequence. propeptide of prothrombin rather than the propeptide that is naturally bound to protein. It encodes a similar propeptide. Most preferably, prothrombin A sequence encoding the propeptide itself is used.

本発明は、十分なガンマ−カルボキシル化がされておらずそのために低い生物学 的活性しか発現しない他の組み換えビタミンに依存性蛋白質とは対照的に、組み 換えプロトロンビンは完全にガンマ−カルボキシル化されているという我々の発 見に一部基づいている。この違いは、組み換え細胞内において他のビタミンに依 存性蛋白質のプロペプチドよりもある作用によって優れたガンマ−カルボキシル 化認識部位として働くプロトロンビンのプロペプチドの機能であると我々は考え ている。The present invention is characterized by the fact that it is not sufficiently gamma-carboxylated and therefore has a low biological In contrast to other recombinant vitamin-dependent proteins that only express Our finding is that recombinant prothrombin is fully gamma-carboxylated. Based in part on observations. This difference is due to the dependence of other vitamins in recombinant cells. gamma-carboxylic acid that is superior to the propeptide of naturally occurring proteins due to certain effects. We believe that this is a function of the propeptide of prothrombin, which acts as a recognition site for ing.

プレペプチドはガンマ−カルボキシル化されない、それゆえに、本発明に従えば 、プレペプチドはその蛋白質又はプロペプチドのいずれかに天然に結合している もの、又は他の適当なプレペプチドでも良い。The prepeptide is not gamma-carboxylated, therefore according to the invention , the prepeptide is naturally bound to either the protein or the propeptide or any other suitable prepeptide.

他の好適な実施態様においては、ビタミンに依存性蛋白質は、第■因子:第■因 子;プロテインCニブロチインS:第X因子ニブロチイン2:オステオカルシン :又は骨マトリックスGla蛋白質である。In another preferred embodiment, the vitamin dependent protein is factor Protein C Nibrotiin S: Factor X Nibrotiin 2: Osteocalcin : or bone matrix Gla protein.

ここで用いられる「ベクター」という用語は、異種のDNA (天然にはベクタ ー内に存在しないDNA)を挿入できるプラスミド、ウィルス、コスミド、又は 7アージを含んでいる。ベクターは自己複製能力があっても良く、また異種DN AをクロモソームDNAに組み込むことができても良い。ベクターは通常複製開 始点及び少なくとも一つの選択性遺伝子、即ち、容易に検出できるか又はその存 在が細胞の増殖に必須である生成物をコードしている遺伝子を有している。ベク ターの他の性質は分子生物学の分野の当業者にとっては良く知られている。The term "vector" as used here refers to a heterologous DNA (naturally known as a vector). a plasmid, virus, cosmid, or Contains 7 arge. The vector may be capable of self-replication and may contain heterologous DNA. A may be able to be incorporated into chromosome DNA. Vectors are normally starting point and at least one selectable gene, i.e., easily detectable or present. It contains genes that encode products that are essential for cell growth. Baek Other properties of tars are well known to those skilled in the art of molecular biology.

また、本発明は、前記のDNA配列を提供すること;そのDNAを真核細胞、例 えばホ乳類、の発現性ベクターに挿入すること:そのベクターを真核、例えばホ 乳類、細胞にトランスフェクトすること;及びガンマ−カルボキシル化が改善さ れたビタミンに依存、性蛋白質を生産するjこめにその細胞を培養することによ ってガンマ−カルボキシル化が改善されたヒトのビタミンに依存性蛋白質を生産 する方法を特徴とする。The present invention also provides the above DNA sequence; insertion into an expression vector of a eukaryote, e.g. a mammal; transfecting mammals, cells; and improving gamma-carboxylation. By culturing the cells to produce a protein that depends on the vitamin produces human vitamin-dependent proteins with improved gamma-carboxylation. It features a method of

他の態様において本発明は、ヒトのプロトロンビンをコードする精製されt−D  N A配列(特にcDNA配列):発現に必要なプレペプチドをコードする領 域を含むDNA配列を特徴とする。ここで「精製された」という用語は、ヒト細 胞内でその遺伝子と天然に結合しているDNAから分離されていることを意味し ている。プロトロンビンをコードしているDNA配列は、成熟構造蛋白質をコー ドしているDNA配列と共にプロトロンビンのプレプロペプチドをコードしてい るDNAを含んでいる。In another aspect, the invention provides purified t-D encoding human prothrombin. N A sequence (especially cDNA sequence): A region encoding a prepeptide necessary for expression. It is characterized by a DNA sequence containing a region. The term "purified" here refers to This means that the DNA is separated from the DNA that is naturally associated with the gene within the cell. ing. The DNA sequence encoding prothrombin encodes the mature structural protein. It encodes the prepropeptide of prothrombin along with the DNA sequence that contains it. Contains DNA.

プロトロンビンをコードしている配列は、培養真核細胞に挿入されたときそれら の細胞によって完全にガンマ−カルボキシル化されたヒトプロトロンビンの生産 に影響を与える発現性ベクターに組み込むことができる。When the sequence encoding prothrombin is inserted into cultured eukaryotic cells, they Production of fully gamma-carboxylated human prothrombin by cells of can be incorporated into expression vectors that affect

第1図は、ヒトプロトロンビンのプレプロペプチドのアミノ酸配列である。FIG. 1 is the amino acid sequence of the prepropeptide of human prothrombin.

第2図は、第1図のアミノ酸配列の一部分をコードしているDNA配列である。FIG. 2 is a DNA sequence encoding a portion of the amino acid sequence of FIG.

第3図は、ヒトプロI・ロンビンのプレプロペプチドの非翻訳5′末端のDNA 配列である。Figure 3 shows the DNA of the untranslated 5' end of the prepropeptide of human proI thrombin. It is an array.

第4図は、4種類の異なった抗プロトロンビン抗体と組み換え′プロトロンビン の反応を示したグラフである。Figure 4 shows four different anti-prothrombin antibodies and recombinant prothrombin. This is a graph showing the reaction.

構造 第1図はヒトプロトロンビンのプレプロペプチドのアミノ酸配列を示している。structure FIG. 1 shows the amino acid sequence of the prepropeptide of human prothrombin.

位置−1(Arg)のアミノ酸は成熟ヒトプロトロンビンのアミノ末端(N−末 端)に隣接している。位置−36から位置−1までのプレプロペプチドのアミノ 酸配列は以前にデゲン(Degcn)ら(Biochem、 20B?(19R 3))によって明らかにされていた。ヒトプロトロンビンをコードするcDNA の全部ではないが5′末端の21個の核酸もデゲンらによって示されている。プ レペプチドをコードしている領域を含む完全なcDNAが発現のために必要であ る。The amino acid at position -1 (Arg) is the amino terminal (N-terminal) of mature human prothrombin. edge). The amino acids of the prepropeptide from position -36 to position -1 The acid sequence was previously published by Degcn et al. (Biochem, 20B?(19R 3)). cDNA encoding human prothrombin The 21 nucleic acids at the 5' end of, but not all, were also shown by Degen et al. P A complete cDNA containing the region encoding the repeptide is required for expression. Ru.

第1図に示されるプレプロペプチドはプロペプチド及びプレペプチド、又は“シ グナル”ペプチドからなっている。プレペプチドは位置−1から位置−18の部 分であり;プロペプチドは残りの部分(位置−19から位置−43)。プロトロ ンビン構造遺伝子は位置−1から開始される成熟ヒトプロトロンビン蛋白質をコ ードしている。′プロプロトロンビン”とはそのN末端にプロペプチドが結合さ れているプロトロンビンを意味しており、ぞして“プレプロプロトロンビン”と はそのN末端にプレプロペプチドが結合されているプロトロンビンを意味してい る。The prepropeptide shown in FIG. The pre-peptide consists of the ``gnar'' peptide. minute; the propeptide is the remaining portion (position -19 to position -43). protro The human prothrombin structural gene encodes the mature human prothrombin protein starting at position -1. is being coded. ``Proprothrombin'' has a propeptide attached to its N-terminus. It refers to prothrombin that is means prothrombin with a prepropeptide attached to its N-terminus. Ru.

ヒトプロトロンビンのシグナルペプチドの残基−35から−43をコードするD NA配列は第2図に示されている。前記のように、プロトロンビン構造遺伝子及 びプレプロペプチドの残基−1から−36をコードするDNAのDNA配列は前 記のデゲンらにより示されている。D encoding residues -35 to -43 of the signal peptide of human prothrombin The NA sequence is shown in FIG. As mentioned above, the prothrombin structural gene and The DNA sequence of the DNA encoding residues -1 to -36 of the prepropeptide and As shown by Degen et al.

プレプロプロトロンビンをコードしているcDNAをホ乳類の発現性ベクターに クローニングし、チャイニーズハムスター卵巣(CHO)!胞にトランスフェク トした。組み換えプロトロンビンは、完全に活性で完全に(天然に存在するヒト プロトロンビンに比較して)ガンマ−カルボキシル化された形で発現された。そ の観察された完全なガンマ−カルボキシル化は、ヒト第■因子遺伝子(プレプロ 部分を含んでいる)がラットの肝癌細胞(アンソン(A++som)ら、 31 5 Nature 683(19ε5)):ヒト肝癌細胞(デ・う・すL)(d e Is 5alle)ら、 316 Na1rc 26g(1985)):マ ウス繊維芽細胞(アンソン、上記:デ・う・サレ、上記);ベビーハムスターの 腎臓(ブスバイ(B++5by)ら、ηyNature 271(1985))  ;及びチャイニーズハムスター卵巣細胞(カウフマン(Kaifmsn)ら、 す±J、 Biol、 Cbeya、 9622(9116))に導入されたと きヒト第■因子の発現において(天然に存在するヒト第■因子と比較すると)観 察されるものと非常に対照的である。cDNA encoding preproprothrombin into a mammalian expression vector Cloning Chinese hamster ovary (CHO)! Transfection into cells I did it. Recombinant prothrombin is fully active and fully (naturally occurring human (compared to prothrombin) was expressed in a gamma-carboxylated form. So The observed complete gamma-carboxylation of the human factor (containing portions) were isolated from rat hepatoma cells (A++som et al., 31 5 Nature 683 (19ε5)): Human liver cancer cells (DeUsuL) (d et al., 316 Na1rc 26g (1985)): baby hamster fibroblasts (Anson, supra; de U Sale, supra); Kidney (B++5by et al., ηyNature 271 (1985)) ; and Chinese hamster ovary cells (Kaifmsn et al., S±J, Biol, Cbeya, 9622 (9116)) In the expression of human factor (compared to naturally occurring human factor), This is in sharp contrast to what is expected.

ビタミンに依存性蛋白質のプロペプチドは該タンパク質をそのグルタミン酸残基 のガンマ−カルボキシル化に向かわせる原因となっている。発現された組み換え プロトロンビンは完全にカルボキシル化されていると考えられる。何故ならばプ ロトロンビンのプロペプチドは効率的に蛋白質をカルボキシル化に向かわせるか らである。The propeptide of vitamin-dependent proteins binds the protein to its glutamic acid residues. This is the cause of the tendency toward gamma-carboxylation. recombinant expressed Prothrombin is believed to be fully carboxylated. The reason is that Does the propeptide of rotombin efficiently direct proteins toward carboxylation? It is et al.

これに対して、発現された組み換え第■因子は、プローMu因子のプロペプチド はカルボキシル化に向かわせるのに効率的ではないので、完全にはカルボキシル 化されない。In contrast, the expressed recombinant factor is not efficient in directing carboxylation, so it is not completely carboxylized. not be converted into

そのN末端に改良されたターゲティング(標的に向かわせる)プロペプチド、例 えば、プロトロンビンのプロペプチド(第■因子のプロペプチドの代わりに)が 結合した第■因子をコードするDNAをホ乳類の発現性ベクターにクローニング し、そして適当な真核細胞にトランスフェクトすると、蛋白質をガンマ−カルボ キシル化に向かわせることにおいて置換あるいは改良されI;プロペプチドの優 れた効率ゆえに、改善されたガンマ−カルボキシル化を実現している第■因子を 発現させることができる。An improved targeting propeptide at its N-terminus, e.g. For example, the propeptide of prothrombin (instead of the propeptide of factor ■) Cloning the DNA encoding bound factor Ⅰ into a mammalian expression vector and when transfected into appropriate eukaryotic cells, the protein is converted into a gamma-carboxylic Substituted or modified in favor of xylation; factor II, which achieves improved gamma-carboxylation due to its reduced efficiency. can be expressed.

組み換え細胞内における完全にガンマ−カルボキシル化された組み換えヒトプロ トロンビンの発現は以下に述べられており、さらに、プロトロンビンのプロペプ チド−第■因子eDNAの調製についても述べられている。Fully gamma-carboxylated recombinant human proteins in recombinant cells. Expression of thrombin is described below, and in addition, prothrombin The preparation of Tido-Factor II eDNA is also described.

ヒト肝癌cDNA発現ライブラリーをアフィニティーで精製された抗プロトロン ビン抗体を用いてスクリーニングしI;。ある選択されたクローンは制限酵素マ ツピング及び核酸配列分析により、プロトロンビンcDNAの3′末端からなる 650個の塩基対の挿入部分を含んでいることが示された。プロトロンビンの完 全なコード配列を得るために、この断片は胎児肝臓cDNAライブラリーをスク リーニングするために使用された。分離された多数の陽性クローンの制限酵素分 析は、これらの挿入部分もその5′末端で不完全であることを示した。制限酵素 で切断された断片を最も完全な5′配列を含む挿入部分の5′末端から調製し、 そしてその断片はライブラリーを再スクリーニングするのに使用しt;。数個の クローンが回収され、それらはイニシエターコドンを含む完全な5′末端をコー ドしていた。完全な長さのプロトロンビンをコードする配列(プロペプチド及び プレペプチドを含んでいる)は2つの重なり合うcDNA挿入部分から再構築さ れた。Affinity-purified anti-protron human liver cancer cDNA expression library Screened using Bin antibody I; Some selected clones are Tubing and nucleic acid sequence analysis revealed that the 3' end of the prothrombin cDNA It was shown to contain a 650 base pair insert. Complete prothrombin This fragment was screened from a fetal liver cDNA library to obtain the complete coding sequence. used for leaning. Restriction enzyme content of many isolated positive clones Analysis showed that these inserts were also incomplete at their 5' ends. restriction enzyme a fragment cut from the 5' end of the insert containing the most complete 5' sequence; The fragments are then used to rescreen the library. several Clones were recovered and they encoded the complete 5' end, including the initiator codon. I was doing it. Full length prothrombin encoding sequence (propeptide and (containing the prepeptide) is reassembled from two overlapping cDNA inserts. It was.

得られたcDNAは2.0キロベースの長さで、3′非翻訳領域に約100−1 50の核酸及び5′非翻訳領域に12の核酸を含んでいる。5′末端の核酸配列 及び対応する予想アミノ酸配列が第3図に示されている。ヒトプロトロンビンの リーダー配列は残基−43から開始される。The resulting cDNA was 2.0 kilobases long, with approximately 100 −1 in the 3′ untranslated region. It contains 50 nucleic acids and 12 nucleic acids in the 5' untranslated region. 5' end nucleic acid sequence and the corresponding predicted amino acid sequence are shown in FIG. human prothrombin The leader sequence starts at residue -43.

プロトロンビン発現性ベクターpMT2−FTは、SV40の複製開始点、アデ ノウィルスの主後期プロモーター、プロトロンビンをコードしている領域、ジヒ ドロ7オレート・レダクターゼをコードしている領域、5v40の初期ポリアデ ニル化部位、アデノウィルスのウィルス結合遺伝子、及び大腸菌(Eseber iehii coli)内での増殖に必要なpBR322配列を含んでいる。こ のべct BIG(1985))によて発表されている。プラスミドpMT2− PTをジヒドロ7オレート・レダクターゼ欠損チャイニーズハムスター卵巣細胞 に導入し、選択培地中での継代培養によってジヒドロ7オレート・レダクターゼ 陽性の表現型を示す細胞を選択した。細胞が一面に広がったとき収穫した培養液 を抗−全プロトロンビン抗体を用いて競合ラジオイムノアッセイによって測定し た。全プロトロンビン抗原は、0.55μg / m 1までの種々の濃度でこ れらの一次形質移入体によって発現されることが分かっl;。同じサンプルをフ ンフォメーション−特異性の抗体、即ち、金属イオンの存在下でプロトロンビン 上に出現する特定の決定基と結合する抗プロトロンビン:Ca(I[)を用いて 測定した。これらの決定基は、金属に誘導されるフンフォメーション変化を受け るためにプロトロンビンが十分にガンマ−カルボキシル化されているとき出現し 、それらの存在は凝固活性と密接に関連している。このアッセイを用いて測定さ れたプロトロンビンの濃度は、全プロトロンビン抗体に対して測定された濃度と 等しく、このことは発現されたプロトロンビンの全てがカルボキシル化されてお り生物学的に活性であることを示している。実際、抗異常グロトロンビン抗体を 用いても、 des−γ−カルボキシ(異常)プロトロンビンは0.03 Hy mnの測定限度以上は検出されなかった。The prothrombin expression vector pMT2-FT is an origin of replication of SV40, The major late promoter of noviruses, the prothrombin-encoding region, The region encoding dolo7oleate reductase, the early polyadenylation of 5v40. nylation sites, adenovirus virus binding genes, and E. coli (Eseber Contains the pBR322 sequence necessary for growth in iehii coli). child Nobe ct BIG (1985)). Plasmid pMT2- PT dihydro-7-oleate reductase-deficient Chinese hamster ovary cells dihydro7-oleate reductase by subculturing in selective medium. Cells showing a positive phenotype were selected. Culture solution harvested when cells have spread all over was measured by competitive radioimmunoassay using anti-total prothrombin antibody. Ta. Total prothrombin antigen is available at various concentrations up to 0.55 μg/ml. were found to be expressed by these primary transfectants. Fuse the same sample. conformational-specific antibodies, i.e. prothrombin in the presence of metal ions. Using antiprothrombin:Ca(I[) that binds to specific determinants appearing on It was measured. These determinants undergo metal-induced conformational changes. Appears when prothrombin is sufficiently gamma-carboxylated to , their presence is closely related to coagulation activity. measured using this assay The concentration of prothrombin obtained is similar to that measured for total prothrombin antibody. Equivalently, this means that all of the expressed prothrombin is carboxylated. It has been shown to be biologically active. In fact, anti-abnormal glothrombin antibodies Even if used, des-γ-carboxy (abnormal) prothrombin is 0.03 Hy No amount exceeding the measurement limit of mn was detected.

リエブ? ン(Liebmaa)ら($21ist、 Ac1d、 Sci、  USA 317!(+985))及びボロウスキーCBarevski)ら(世 J−Biol。Lieb? Liebmaa et al. ($21ist, Ac1d, Sci, USA 317! (+985)) and Borowski CBarevski) et al. J-Biol.

Chew、 92N(19B5))によて発表されている方法に従って、組み換 えプロトロンビンが馴化培地からコンフォメーション特異性抗体を用いてイムノ アフィニティークロマトグラフィーによって単離された。組織培養上澄液をCa (II)の存在下で抗プロトロンビン:Ca(II)−セファロースのカラムに 付した。全てのプロトロンビン抗原がこの方法により培養液から取り除かれ;カ ラムに結合しなかつl;物質中にはプロトロンビン抗原は、抗全グロトロンビン 抗原を用いても検出されなかった。結合したプロトロンビンはEDTAによって 溶出され、プロトロンビンは溶田液から定量的に回収された。Chew, 92N (19B5)) Prothrombin is isolated from conditioned medium using conformation-specific antibodies. Isolated by affinity chromatography. Tissue culture supernatant with Ca Antiprothrombin in the presence of (II): Ca(II)-Sepharose column Attached. All prothrombin antigens are removed from the culture medium by this method; The prothrombin antigen in the substance is anti-total glothrombin; It was not detected using antigen. Bound prothrombin is removed by EDTA. Prothrombin was eluted and quantitatively recovered from the solution.

精製された組み換えプロトロンビンは2−メルカプトエタノールの存在下でのド デシル硫酸塩ゲルにおいて単一のバンドとして移動した。その電気泳動の移動は ヒト血漿から得られたプロトロンビンと同一であった。Purified recombinant prothrombin was dehydrated in the presence of 2-mercaptoethanol. It migrated as a single band in the decyl sulfate gel. Its electrophoretic movement is It was identical to prothrombin obtained from human plasma.

組み換えプロトロンビンの凝固活性はプロトロンビン欠乏血漿を直接用いて測定 された。既知の濃度の精製された血漿プロトロンビンが検量線を作るのに用いら れI;。Coagulation activity of recombinant prothrombin is measured directly using prothrombin-deficient plasma It was done. Purified plasma prothrombin of known concentration was used to generate the standard curve. I;.

組み換えプロトロンビンは、表1に示されるように血漿プロトロンビンの凝固活 性の99±4%を有しているこが分かった。Recombinant prothrombin increases the clotting activity of plasma prothrombin as shown in Table 1. It was found that 99±4% of the sexes were present.

表1 組み換えプロトロンビンの凝固活性およびガンマ−カルボキシル化グルタ ミン酸 凝固活性 T−カルボキシル化 (%) グルタミンa(モル) 血漿由来プロトロンビン 100 10.0組み換えプロトロンビン 99±4 9.9±0.4組み換えプロトロンビンと四種の異なる抗プロトロンビン抗体と の相互作用は、競合ラジオイムノアッセイで検討した。抗−全プロトロンビン抗 体は、プロトロンビンのカルボキシル化の程度およびコンホーメーションと関係 な(プロトロンビンと結合した。予期されたとおり、組み換えプロトロンビン、 血漿由来プロトロンビンおよび異常(デスーT−カルボキシル化)プロトロンビ ンは、第4A図に示すとおり、+tsl g識プロトロンビンをこれらの抗体か ら等しく置換した。抗−異常プロトロンビン抗体は、デスーT−カルボキシル化 型のプロトロンビン上のみに存在する抗原決定基に結合した。第4B図に示すと おり、組み換えプロトロンビンおよび血漿プロトロンビンは、これらの抗体から IISl−標識異常プロトロンビンを置換せず、このことは、組み換え生成物中 に痕跡量のデスーT−カルボキシル化プロトロンビンも存在しないことを示した 。プロトロンビンの異なる金属依存性構造(metal dependent  conf。Table 1 Coagulation activity and gamma-carboxylated gluta of recombinant prothrombin Minic acid Coagulation activity T-carboxylation (%) Glutamine a (mol) Plasma-derived prothrombin 100 10.0 Recombinant prothrombin 99±4 9.9±0.4 recombinant prothrombin and four different anti-prothrombin antibodies The interaction was investigated by competitive radioimmunoassay. Anti-total prothrombin anti The body is related to the degree of carboxylation and conformation of prothrombin. (combined with prothrombin. As expected, recombinant prothrombin, Plasma-derived prothrombin and abnormal (desu-T-carboxylated) prothrombin As shown in FIG. were replaced equally. Anti-aberrant prothrombin antibodies are desu-T-carboxylated It bound to antigenic determinants present only on types of prothrombin. As shown in Figure 4B Recombinant prothrombin and plasma prothrombin are derived from these antibodies. IISl-labeled aberrant prothrombin is not replaced, which means that in the recombinant product showed that there were also no traces of des-T-carboxylated prothrombin in . Different metal dependent structures of prothrombin conf.

r m e r )に特異的な、二種の抗体群がBorowskiら、261. J、Biol、Chem、(1986)に記載されている。抗−プロトロンビン :Mg (I I)抗体は、プロトロンビンが充分にカルボキシル化されていて 、多くの二価および三価の金属イオンにより誘発される最初の構造変化を受けら れる詐り時のみ、プロトロンビン上に発現された抗原決定基に結合する。抗プロ トo7ビン: Ca (11)4>X的抗体は、プロトロンビンが脂質結合部位 の発現に伴う第二の構造変化を受けた時露出される抗原決定基に対応する。この 変化はCa (II)によってのみ行われ、他の殆どの金属イオンによっては行 われない、第4C図および′¥BAD図に示したように、組み換えプロトロンビ ンおよび血漿プロトロンビンは、これらの抗体から1!J−標識プロトロンビン を等しく置換し、この判定基準からは、組み換えプロトロンビンおよび血漿プロ トロンビンが実質的に均等であることを示した。Two groups of antibodies specific for r m e r ) have been described by Borowski et al., 261. J. Biol, Chem, (1986). anti-prothrombin :Mg(II) antibody has prothrombin that is sufficiently carboxylated. , which undergoes initial structural changes induced by many divalent and trivalent metal ions. It binds to antigenic determinants expressed on prothrombin only when it is decoding. anti pro Too7bin: Ca (11) 4>X antibody has prothrombin at the lipid binding site. It corresponds to the antigenic determinant that is exposed when it undergoes a second structural change accompanying the expression of . this The change is carried out only by Ca(II) and not by most other metal ions. As shown in Figure 4C and '\BAD, the recombinant prothrombi and plasma prothrombin from these antibodies. J-labeled prothrombin and from this criterion, recombinant prothrombin and plasma prothrombin Thrombin was shown to be substantially equivalent.

組み換えプロトロンビンのアミノ末端配列は、自動化エドマン分解で決定した0 表■かられかるとおり、組み換えプロトロンビンおよび血漿由来プロトロンビン の最初の16アミノ酸残基のアミノ酸配列は、等しかった。The amino-terminal sequence of recombinant prothrombin was determined by automated Edman degradation. As shown in Table ■, recombinant prothrombin and plasma-derived prothrombin The amino acid sequences of the first 16 amino acid residues of were identical.

特に興味深いのは、不完全なプロセスを受けたプレーもしくはプロベブヂドを示 ず第二配列は全く検出されなかった。さらに、標準的配列決定サイクルの間に、 ガンマカルボキシル化グルタミン酸誘導体は、フィルターから遊離されず、残基 6.7.14および16に見出されたグルタミン酸の、この検出不能の程度は、 これらの残基の完全ガンマカルボキシル化に一致する。Of particular interest are plays that have undergone incomplete processing, or No second sequence was detected at all. Additionally, during a standard sequencing cycle, Gamma-carboxylated glutamic acid derivatives are not released from the filter, leaving residues This undetectable degree of glutamic acid found in 6.7.14 and 16 Consistent with complete gamma carboxylation of these residues.

表■ 組み換えプロトロンビンのアミノ末端配列残基 組み換え 血漿 プロトロンビン プロトロンビン I A l a 64 A 1 a 2 A s n 32 A s n 3 T h r 24 T h r 4 Phe 36 Phe 5 Leu 31 Leu 8 Vat 23 Va1 9 Arg 9 Arg lo Lys 19 Lys ll Gly 16 Gly 12 Asn 15 Asn 13 Leu 18 Leu 14 − − (C;Ia) 15 Arg ? Arg 組み換えプロトロンビンのT−カルボキシル化グルタミン酸の9赤をアルカリ加 水分解物のアミノ酸分析で決定した。特製組み換えプロトロンビンは、表Iに示 したとおり、標準値として血漿由来プロトロンビンの1モル当たりの値を10モ ルとしたとき、蛋白質1モルあたり99±0.4モルのγ−カルボキシル化グル タミン酸を含んでいた。Table ■ Amino-terminal sequence residues of recombinant prothrombin Recombinant plasma Prothrombin Prothrombin I A l a 64 A 1 a 2 A s n 32 A s n 3 T h r 24 T h r 4 Phe 36 Phe 5 Leu 31 Leu 8 Vat 23 Va1 9 Arg 9 Arg lo Lys 19 Lys ll Gly 16 Gly 12 Asn 15 Asn 13 Leu 18 Leu 14 - - (C; Ia) 15 Arg? Arg Recombinant prothrombin T-carboxylated glutamic acid 9 red was treated with alkali. Determined by amino acid analysis of the hydrolyzate. Special recombinant prothrombin is shown in Table I. As mentioned above, the value per 1 mole of plasma-derived prothrombin was set as a standard value of 10 moles. 99 ± 0.4 mol of γ-carboxylated glucose per mol of protein. Contains tamic acid.

l良度】溝 c DNAライブラリーのスクリーニング: YoungおよびDavis、a o、Proc、Nat、Acad、5ci−USA、1194 (1983)の λgtllベクター中にヒトへバトーマのc D N A発現ライブラリーを′ H製し、これをWetら、3.DNA、437(1984)に記載されたクロモ ジェニック・イムノimmunodetection system)を用いて 、プロトロンビン抗原を発現するクローンのスクリーニングを行った。約100 .000個のプラークをニトロセルロースフィルターに転写し、3%牛血清アル ブミン、0.02%ナトリウムアジド、および0.5μg/mlの免疫アフィニ ティー法で精製した家兎抗−全プロトロンビン抗体を含有するトリス緩衝塩類液 中で、−夜インキュベートした。トリス緩衝塩類液で数回洗浄した後、このフィ ルターを、3%牛血清アルブミンおよび西洋ワサビペルオキシダーゼを結合した 山羊抗−家兎イムノグロブリン(バイオ−ラッド社製、1:1000希釈)を含 むトリス緩衝塩類液中で4時間インキュベートした。さらに洗浄したのち、基質 の1−クロロ−2−ナフトール(バイオ−ランド社Wりを加えて陽性プラークを 検出した。3回の再スクリーニングにより、7個の陽性クローンを単離し、この ファージDNAをプレート溶解物から、He l m sら、4.DNA、39  (1985)に記載された方法でII製した。cDNA挿入物をEcoRlで 切断し、制限酵素マフピングによる分析のためサブクローニングした。一つの6 50塩基対の挿入片を、その制限パターンに基づいてプロトロンビンcDNAの 3゛末端と取り敢えず推定した。この推定は、MaxamおよびGi 1ber t、65+ MethodsEnzymol、499 (1980)の方法によ る化学的開裂を用いたヌクレオチド配列分析で確認した。l Goodness] Groove c DNA library screening: Young and Davis, a o, Proc, Nat, Acad, 5ci-USA, 1194 (1983) The human hebatoma cDNA expression library was inserted into the λgtll vector. H was manufactured by Wet et al., 3. Chromosomes described in DNA, 437 (1984) using a genetic immunodetection system) , screened for clones expressing prothrombin antigen. Approximately 100 .. 000 plaques were transferred to a nitrocellulose filter and soaked in 3% bovine serum alcohol. Bumin, 0.02% sodium azide, and 0.5 μg/ml immunoaffinity Tris-buffered saline containing rabbit anti-total prothrombin antibody purified by Tea method Incubated overnight. After several washes with Tris-buffered saline, this filament Luther was combined with 3% bovine serum albumin and horseradish peroxidase. Contains goat anti-rabbit immunoglobulin (manufactured by Bio-Rad, diluted 1:1000). The cells were incubated for 4 hours in Tris-buffered saline. After further washing, the substrate Add 1-chloro-2-naphthol (Bio-Land Co., Ltd.) to remove positive plaques. Detected. Seven positive clones were isolated by three rescreenings, and these Phage DNA was extracted from plate lysates as described by Helms et al., 4. DNA, 39 (1985). cDNA insert with EcoRl It was cut and subcloned for analysis by restriction enzyme mufting. one 6 The 50 base pair insert was inserted into the prothrombin cDNA based on its restriction pattern. I tentatively assumed that it was at the 3゛ end. This estimation is based on Maxam and Gi1ber t, 65+ Methods Enzymol, 499 (1980). Confirmed by nucleotide sequence analysis using chemical cleavage.

プロトロンビンの完全長コード配列を得るため、シャロン(Charon)21  (Tooleら、313.Nature、342 (1984)に記載されて いる)中のヒト胎児肝臓のcDNAライブラリーを、Bent。To obtain the full-length coding sequence of prothrombin, Charon 21 (Described in Toole et al., 313. Nature, 342 (1984) A cDNA library of human fetal liver in Bent.

nおよびDavis、196.Science180(1977)の方法でスク リーニングした。ヒトへバトーマ発現ライブラリーから得られたc D N A 挿入片に由来するプロトロンビンcDN−Aのiii!lli!フラグメントを 、”P−dCTPおよびFeinbergら、132.Anal、BLoche m−,6(1983)に記載されたDNAポリメラーゼのフレノウフラグメント を用いてランダム・ヘキサヌクレオチド・プライミングで、約IO”cpm/p gの比活性に放射標識した一90mMクエン酸ナトリウム、pH7,0,900 5M塩化ナトリウム、5×デンハーツ溶液(Denhardt、23.Bi。n and Davis, 196. Screen using the method of Science 180 (1977). Leaned. cDNA obtained from human hebatoma expression library iii of prothrombin cDNA-A derived from the insert! lli! fragment ,” P-dCTP and Feinberg et al., 132. Anal, BLoche m-, 6 (1983). Random hexanucleotide priming using approximately IO”cpm/p radiolabeled to a specific activity of -90 mM sodium citrate, pH 7.0,900 5M Sodium Chloride, 5x Denhardt's Solution (Denhardt, 23.Bi.

chem、Biophys−Re5− Comm+ 541(1966)に記載 されている)、10mMのEDTAおよび0.5%のドデシル硫酸ナトリウムで 68℃16時間のハイブリダイゼーションに引き続き、3011Mクエン酸ナト リウム、pH7,0,300mM塩化ナトリウムおよび0.5%ドデシル硫酸ナ トリウムて充分に洗浄した。chem, Biophys-Re5-Comm+ 541 (1966) ), with 10 mM EDTA and 0.5% sodium dodecyl sulfate. Hybridization for 16 hours at 68°C was followed by 3011M sodium citrate. 300mM sodium chloride and 0.5% sodium dodecyl sulfate Thoroughly washed with thorium.

二つの陽性物をプラーク法で純化し、前記)1e1msの方法で71−ジDNA をプレート溶解物から単離した。The two positive substances were purified by the plaque method, and 71-di DNA was purified by the method of 1e1ms described above. was isolated from plate lysates.

cDNA挿入片の所望vi限フラグメントを適当なM13ベクター中へサブクロ ーンしくNorrandes、26、Gene、101 (1983)に記載さ れた一般的方法による)、制限酵素マフピングおよびSangerら、74.P roc、Na t−Acad、Sc t、USA、5463 (1977)のジ デオキシヌクレオチド・チェーンターミネーシWン法で配列決定を行った。Subclon the desired vi-restricted fragment of the cDNA insert into the appropriate M13 vector. As described in detail in Norrandes, 26, Gene, 101 (1983). 74.), restriction enzyme muffing and Sanger et al., 74. P roc, Nat-Acad, Sct, USA, 5463 (1977). Sequencing was performed using the deoxynucleotide chain termination method.

プロトロンビン プラスミドの γ 1」生コニ又二−ヱニ[」−完全長のプロトロンビンコード配列は、各挿入片を 一つのHindl[[部位で消化し、適当なフラグメントをmp 18にクロー ニングすることにより、重複した二つのc D N A挿入片から再構成した。Prothrombin plasmid γ 1” raw Koni Mata 2-eni [”-full-length prothrombin coding sequence for each insert. Digest at one Hindl site and clone the appropriate fragment into mp18. It was reconstructed from two duplicate cDNA inserts by scanning.

そして、完全プロトロンビン配列をコードするl OkbのEcoR1フラグメ ント(プレプロペプチドをコードするDNAも含む)を単離し、Tooleら、 (1986)P、N、A−i 、 U、S、A、、83.5939に記載されて いる哺乳類発現ベクター、pMT2のEcoR1部位に挿入した。得られたプロ トロンビン発現プラスミド、pMT2−PTは、制限酵素マフピングによりプロ トロンビンコード領域をアデノウィルス主後期プロモーターに対して正しい向き に含むことが判明した。Then, the EcoR1 fragment of lOkb, which encodes the complete prothrombin sequence, was (including DNA encoding the prepropeptide), Toole et al. (1986) P, N, A-i, U, S, A, , 83.5939. The vector was inserted into the EcoR1 site of pMT2, a mammalian expression vector. obtained pro The thrombin expression plasmid, pMT2-PT, was purified by restriction enzyme mufting. Correct orientation of the thrombin coding region relative to the adenovirus main late promoter It was found that it was included in

このプロトロンビンcDNAは第2図に示すプレペプチドコード配列を、前記p egenらの第2図に与えられているプロトロンビンc D N Aの残り部分 に融合して含んでいた。This prothrombin cDNA has the prepeptide coding sequence shown in FIG. The remainder of prothrombin c DN A given in Figure 2 of Egen et al. It was fused and included.

細己t 、nNAp”転 、および細胞ラインの選択ジヒドロ葉酸還元酵素欠損 のチャ′イニーズハムスターの卵巣細胞ライン、CHODUKX−Bllを、c haisら、77、Proc、Nat、Acad、Sci。cell line T, nNAp” translocation, and selected cell lines with dihydrofolate reductase deficiency The Chinese hamster ovary cell line, CHODUKX-Bll, was hais et al., 77, Proc. Nat. Acad, Sci.

USA、4216 (1980)およびKaufrnanら。USA, 4216 (1980) and Kaufrnan et al.

159、Mo1.Bio、601 (1982)に記載されているようにして増 殖させ、維持した。細胞を20μ冨のプロトロンビン発現プラスミド、pMT2 −PTで、Kaufmanら* 195.Mo1.Bio、601(1982) に記載されているようにして、リン酸カルシウム共沈澱法で形質転換した0、形 質転換の後に細胞を、10%熱不活性化ウシつ児血清、5μg/履lのビタミン に* (Aquamephyton、Merck 5harp and Doh me社)、およびチミジン、アデノシン、デオキシアデノシン、ペニシリンおよ びストレプトマイシン(各10 tzg /−1)を含みヌクレオシドを含まな いα−変性イーグル培地(Gibco社)で増殖させた。細胞を2日後にヌクレ オシドを除去し、そして透析*清を用いた点以外は同じ培地(選択培地)で継代 した。形質転換細胞は、継代後10〜12日後にコロニーが見えるようになるま で、3〜4日毎に選択培地を交換した。これらの初期形質転換体をプールし、コ ンフルエント状態になるまで選択培地で増殖させた。コンフルエント状態におい て、10c■の培養皿は約1−7X10フ細胞を培地1(+++1中に含んてい た。フラスコ内のコンフルエントのJIrlに3〜4日毎に数週間にわたり培地 交換をすることにより、大量のコンディシッンド培地を回収した。このコンディ ジ鳶ンド培地を必要時まで一20℃で保存した。159, Mo1. Bio, 601 (1982). cultivated and maintained. Transfer cells to 20 μl of prothrombin expression plasmid, pMT2. - In PT, Kaufman et al.* 195. Mo1. Bio, 601 (1982) 0, form transformed by calcium phosphate co-precipitation method as described in After transformation, cells were treated with 10% heat-inactivated baby bovine serum, 5 μg/l vitamin to * (Aquamephyton, Merck 5harp and Doh me), and thymidine, adenosine, deoxyadenosine, penicillin and and streptomycin (10 tzg/-1 each) without nucleosides. The cells were grown in α-modified Eagle's medium (Gibco). Nucleate cells after 2 days. Passaging in the same medium (selective medium) except that osside was removed and dialyzed* supernatant was used. did. Transformed cells should be grown until colonies become visible 10 to 12 days after passage. The selection medium was replaced every 3 to 4 days. These initial transformants were pooled and The cells were grown in selective medium until confluent. Confluent state Therefore, a 10c culture dish contains approximately 1-7X10 cells in medium 1 (+++1). Ta. Add medium to confluent JIrl in flasks every 3-4 days for several weeks. A large amount of conditioned medium was recovered by replacing the medium. This condition The digital medium was stored at -20°C until needed.

白 ”および の ヒトプロトロンビンは、血漿からクエン酸バリウム吸着、DEAEセルロースク ロマトグラフィー、およびRosenbergら、J、Biol、Chem−1 607(1975)およびMiletichら、253.J。white” and Human prothrombin is extracted from plasma by adsorption of barium citrate and DEAE cellulose. chromatography, and Rosenberg et al., J. Biol, Chem-1 607 (1975) and Miletich et al., 253. J.

Biol、Chem、6908 (197B)により記載された方法による、デ キストランセファロースを用いたアフィニティークロマトグラフィーで精製した 。異常(デスーT−カルボキシル化)ヒトプロトロンビンは、血漿からDEAE セファセルクロマトグラフィーおよびBlanchardら、101.J−La b、CI in。Biol, Chem, 6908 (197B). Purified by affinity chromatography using chistran sepharose . Abnormal (desu-T-carboxylated) human prothrombin is extracted from plasma by DEAE. Sephacel chromatography and Blanchard et al., 101. J-La b, CI in.

Med−242(1983)に記載された抗プロトロンビンセファロースでのア フィニティークロマトグラフィーで精製した。精製プロトロンビンの蛋白含量は 、280nmのAI%を14.4として測定した。プロトロンビンおよび異常プ ロトロンビンは、Morrison。Anti-prothrombin Sepharose described in Med-242 (1983) Purified by affinity chromatography. The protein content of purified prothrombin is , the AI% at 280 nm was measured as 14.4. Prothrombin and abnormal proteins Rothrombin is from Morrison.

To Meth、Enzymol−214(1980)の方法により、Na”’ Iで沃素標識した。To Meth, by the method of Enzymol-214 (1980), Na"' Iodine-labeled with I.

家兎抗−プロトロンビン:Ca(II)抗体は、上記Blanchardに記載 されたようにして、Ca (II)の存在下にプロトロンビン−セファロース上 の免疫アフィニティークロマトグラフィーおよびEDTAでの溶出で精製した。Rabbit anti-prothrombin:Ca(II) antibodies are described in Blanchard, supra. on prothrombin-Sepharose in the presence of Ca(II) as described above. Purified by immunoaffinity chromatography and elution with EDTA.

EDTAの存在下でプロトロンビン−セファロースに結合した抗−プロトロンビ ン抗体は、4Mグアニジン塩酸塩で溶出し、抗−全プロトロンビン抗体と命名し た。抗−異常プロトロンとン抗体は、Blanchardら、101.J、La b−CI in、Med−242(1983)に記載されたようにして、デス− γ−カルボキシル化プロトロンビン−セファロースによる連続免疫アフィニティ ークロマトグラフィーで調製した。抗−ブロトロンビン:Mg(II)および抗 −ブロトロンビン:Ca (I I)−特異的抗体は、前記Bcr ows k  iの記載した方法に従って、Mg(II)またはCa (I I)の何れか存 在下でのプロトロンビン−セファロースによる連続免疫アフィニティークロマト クラフィーおよびEDTAでの溶出により調製した。Anti-prothrombin conjugated to prothrombin-Sepharose in the presence of EDTA. The antibody was eluted with 4M guanidine hydrochloride and named anti-total prothrombin antibody. Ta. Anti-aberrant protron antibodies are described by Blanchard et al., 101. J.La. b-CI in Med-242 (1983). Sequential immunoaffinity with γ-carboxylated prothrombin-Sepharose -Prepared by chromatography. Anti-brothrombin: Mg(II) and anti-brothrombin - Brothrombin: Ca(II)-specific antibody is According to the method described in i, either Mg(II) or Ca(II) is present. Continuous immunoaffinity chromatography with prothrombin-Sepharose in the presence of Prepared by elution with Claffy and EDTA.

i!オイムノアフセ随 抗プロトロンビン抗体からのIzS■amプロトロンビンの置換は、競合ラジオ イムノアッセイを用いて調べた。i! Oymno Afuse Zui Displacement of IzS am prothrombin from anti-prothrombin antibody It was investigated using immunoassay.

抗−全プロトロンビン抗体(1,、IXI/10’M)をItSl−標識プロト ロンビン(1,7X1/X O”M)および種々の濃度の競合剤を含む反応混合 物に添加した。Anti-total prothrombin antibody (1, IXI/10'M) was added to ItSl-labeled prothrombin antibody. Reaction mixture containing rhombin (1,7X1/X O”M) and various concentrations of competitor added to things.

全ての成分は1 mMベンズアミジン、0.1%牛血清アルブミン、3纏MED T、Aおよび担体としての家兎ガンマグロブリンを含むトリス緩衝塩類液で希釈 した。抗−ブロトロンビン:Ca(II)抗体(3,4X1/10”M)、抗− プロトロンビン:Mg (I I)抗体(1,OXI/IO’M>または抗−ブ ロトロンビン:Ca(II)特異的抗体(1,3X1/10”M)は、EDTA の代わりに3mMの塩化カルシウムを用いた以外は同じ反応混合物に加えた。抗 −X ?プロトロンビン抗体(4゜Oxl/10’M)は、′!SI−標識異常 プロトロンビン(2,8x 1 /10 ”M)および3IIIMのEDTAを 含む同様の混合物に添加した。4℃て一夜インキュベートした後、結合した+! 51−標識プロトロンビンもしくは異常プロトロンビンは、山羊抗−家兎免疫グ ロブリンの添加により沈澱させた。形成された沈澱を遠心分離で除去し、ベック マンガンマ5oooスペクトロメーターで11!5Hの既知濃度を用いて8準曲 線を作成した。All ingredients are 1mM benzamidine, 0.1% bovine serum albumin, and 3x MED. Diluted in Tris-buffered saline containing T, A and rabbit gamma globulin as carrier. did. Anti-brothrombin: Ca(II) antibody (3,4X1/10”M), anti- Prothrombin: Mg (II) antibody (1, OXI/IO'M> or anti- Rothrombin: Ca(II) specific antibody (1,3X1/10”M) was prepared using EDTA was added to the same reaction mixture except that 3mM calcium chloride was used instead. anti -X? Prothrombin antibody (4°Oxl/10'M) is '! SI-label abnormality Prothrombin (2,8x 1/10”M) and 3IIIM EDTA Added to a similar mixture containing After overnight incubation at 4°C, the bound +! 51-labeled prothrombin or abnormal prothrombin is a goat anti-rabbit immunoglobulin. Precipitated by addition of Robulin. Remove the formed precipitate by centrifugation and 8 quasi-curves using a known concentration of 11!5H on a mangamma 5ooo spectrometer. Created a line.

組み換えプロトロンビンの 1 組み換えプロトロンビンは、調製培地から、前記B。Recombinant prothrombin 1 Recombinant prothrombin was obtained from prepared media as described in B above.

rowskiにより、およびL i e b m a nら、82゜Proc− Na t、Acad、Sc i、USA、3879(1985)に記載されたよ うに、コンホメーシ9ンー特異的抗体を用いた免疫アフィニティークロマトグラ フィーで精製した。使用した抗体、抗−プロトロンビン:Ca (I I)は、 全屈イオンの存在下でT−カルボキシル化プロトロンビン上に発現される抗原決 定基に結合する。10mM塩化カルシウムおよび0.02%ナトリウムアジドを 含有する調製培地を、抗−プロトロンビン:Ca (I I)セファロースのカ ラムに4℃で導入した。10mM塩化カルシウムおよび0.5M塩化ナトリウム を含むトリス緩衝塩類液で、充分に洗浄した後、このカラムをトリス緩衝塩類液 中の10+mM EDTAで溶出した。精M 81み換えプロトロンビンの蛋白 濃度は、280nmのA+%を14.4として測定した。電気泳動は、 ゛ミド ゲル上で行った。サンプルはゲル上に負荷する前に、2−メルカプトエタノール を含むサンプルバフファーで5分間100℃でインキュベートした。泳動後ゲル をコマシーブルー R−250で染色した。by Rowski and Lieb m a n et al., 82° Proc- As described in Nat., Acad, Sci., USA, 3879 (1985). Immune affinity chromatography using sea urchin conformation-specific antibodies Refined with fee. The antibody used, anti-prothrombin: Ca (II), was Antigen determination expressed on T-carboxylated prothrombin in the presence of allotropic ions Binds to a fixed group. 10mM calcium chloride and 0.02% sodium azide The prepared medium containing anti-prothrombin:Ca(II) sepharose The sample was introduced into the ram at 4°C. 10mM calcium chloride and 0.5M sodium chloride After washing thoroughly with Tris-buffered saline containing It was eluted with 10+mM EDTA in the solution. Semen M81 recombinant prothrombin protein Concentration was measured with A+% at 280 nm as 14.4. Electrophoresis is Performed on gel. Samples were soaked in 2-mercaptoethanol before loading onto the gel. The samples were incubated at 100° C. for 5 minutes in a sample buffer containing Gel after electrophoresis was stained with Comassie Blue R-250.

プロトロンビン凝固アッセイ プロトロンビンの活性は、前記BIanehardの記載した、プロトロンビン 欠損血漿を用いた二段・階アフセイて測定した。標準曲線を作成するためには、 既知濃度のヒトプロトロンビンを用いた。Prothrombin clotting assay The activity of prothrombin is determined by the prothrombin activity described by BIanehard. A two-step assay using deficient plasma was performed. To create a standard curve, A known concentration of human prothrombin was used.

アミノ末端配 自動化エドマン分解は、アプライド・バイオシステムス・モデル470A・ガス フェーズ蛋白配列決定装置に、モデル120 PTHアナライザーを取り付けて 行った。Amino terminal chain Automated Edman Digestion Applied Biosystems Model 470A Gas Attaching the model 120 PTH analyzer to the phase protein sequencing device went.

組み換えプロトロンビンは、分析前にRP−300ブラウンリー・ガード・カー トリッジ(Brownleeguard cartridge)を用いて、高圧 液体クロマトグラフィーで脱塩した。Recombinant prothrombin was purified using an RP-300 Brownlee Guard Car prior to analysis. High pressure using a Brownleeguard cartridge It was desalted by liquid chromatography.

一カルボキシル化グルタミン r アミノ酸分析は、べ7クマン・モデル119CLアミノ酸分析装置に、ベックマ ン・モデル126データシステムを取り付けて実施した。蛋白質は、Hausc hka、80.Ana 1.Bi ochem、、212 (1977)に記載 されたようにして、2M水酸化カリウム中で110℃で22時間加水分解した。Monocarboxylated glutamine Amino acid analysis was performed using a Beckman model 119CL amino acid analyzer. The test was carried out using a Model 126 data system. The protein is Hausc hka, 80. Ana 1. Described in Biochem, 212 (1977) Hydrolyzed in 2M potassium hydroxide at 110° C. for 22 hours as described above.

T−カルボキシル化グルタミン酸組成は、アルカリ加水分解の後、ニンヒドリン 検出システムを用いて自動化アミノ酸分析法て定成熟ヒト第■因子に結合したプ ロトロンビンのプレプロペプチドからなるハイブリッド分子のコード配列は、フ ァージベクター中でミエータジェネシスを行い、次のようにして造成した。T-carboxylated glutamic acid composition is converted to ninhydrin after alkaline hydrolysis. A detection system was used to detect proteins bound to mature human factor II using an automated amino acid analysis method. The coding sequence of a hybrid molecule consisting of the prepropeptide of rotthrombin is Mietagenesis was performed in an age vector and constructed as follows.

列は前記K a u r m a nらに記載されている。このプラスミドpM T2−IXを制限酵素Pstlで切断し、得られた2、5kbのフラグメントを 標準的方法でゲル精製した。このフラグメントを広く入手可能なファージベクタ ーmp8のPst1部位に挿入した。第■因子コード配列をベクター中に所望の 向きで含むクローンを、酵素EcoRVおよびB a m HIで消化したとき の2.Okbフラグメントの存在で同定した。このベクターをmp8−■と命名 した。The sequence is described in K.a.u.r.ma.n et al., supra. This plasmid pM T2-IX was cut with the restriction enzyme Pstl, and the resulting 2.5 kb fragment was Gel purified using standard methods. This fragment is a widely available phage vector. -Inserted into the Pst1 site of mp8. Place the factor ■ coding sequence in the desired vector. When clones containing the same orientation were digested with the enzymes EcoRV and Bam HI 2. It was identified by the presence of the Okb fragment. This vector was named mp8-■ did.

プロトロンビンのプレプロ領域のコード配列を含むCDNA配列は、mp18− PTを制限酵、1Hindllで切断し、標準的方法で350bpフラグメント を単離することにより得られた。Mp 1 B−PTは、本明細書に騒に記載し たが、Jorgcnsenら+ J、B i o 1゜Chem、、1987に も記載されている。この3501)Pフラグメントをmp81XのH3ndl[ [部位に挿入した。この挿入片を第■因子に対して正しい向きに含むクローンは 、酵素XholおよびBg1文での消化を行ったときに1.0kbフラグメント が存在することにより同定した。この第■因子のコード配列のHindnlフラ グメントを含む構成物は、mp8−PT/IXと命名した。The CDNA sequence containing the coding sequence of the prepro region of prothrombin is mp18- PT was cut with restriction enzyme 1 Hindll and a 350 bp fragment was obtained using standard methods. Obtained by isolating . Mp1B-PT is described in this specification. However, in Jorgcnsen et al. is also listed. This 3501)P fragment was converted into H3ndl[ [Inserted into the site. A clone containing this insert in the correct orientation relative to factor , a 1.0 kb fragment when digested with the enzymes Xhol and Bg1 It was identified by the presence of The Hindnl flag of the coding sequence of this factor The construct containing the component was named mp8-PT/IX.

プロトロンビンのリーダー配列をコードする配列から成熟第■因子をコードする 配列ヘスプライスするため、0ostraら(1983)Nature、304 .456に記載された方法で、中間のヌクレオチド配列を合成オリゴヌクレオチ ドを用いた「ループアウト」ミエータジェネシスで除去した。即ち、EcoR] で切断した一本鎖mp8−PT/IXおよび一本鎖mp18の間にヘテロ二本鎖 を形成した。このヘテロ二本鎖は、突然変異のためのプライマーをアニールさせ るための一本鎖部分を含んでいる。一本tftrnp8 PT/IXを形成する ため、大腸菌(TG 1株)をこのベクターで形質転換し、一つのプラークを拾 いあげ、標準的方法で一本鎖テンプレートを調製した。このヘテロ二本鎖の第二 鎖のためには、mp18を制限酵素EcoR1で直線化した。このヘテロ二本鎖 を形成するため、2pgの直線化m p 18およびi−sμgのm p 8−  P T / IXを最終容量1.5μmに混合し、INのNaOHを4μl加 えて変性させた。The sequence encoding the leader sequence of prothrombin encodes mature factor (1983) Nature, 304. .. The intermediate nucleotide sequence was converted into a synthetic oligonucleotide using the method described in 456. removed with a "loop-out" mieta genesis using a That is, EcoR] A heteroduplex is formed between single-stranded mp8-PT/IX and single-stranded mp18. was formed. This heteroduplex anneals the primer for mutation. Contains a single-stranded portion for binding. Form one tftrnp8 PT/IX Therefore, we transformed E. coli (TG 1 strain) with this vector and picked up one plaque. Single-stranded templates were then prepared using standard methods. The second of this heteroduplex For chains, mp18 was linearized with the restriction enzyme EcoR1. This heteroduplex To form 2 pg linearized m p 18 and i-s μg m p 8- Mix PT/IX to a final volume of 1.5 μm and add 4 μl of IN NaOH. and denatured it.

して中和した。変性DNA(40μl)を再アニールさせるため、混合物を一夜 68℃でインキュベートし、数時間かけて徐々に室温に冷却した。得られたアニ ール化DNAの一部には、所望へテロ二本鎖分子が含まれていた。and neutralized it. The mixture was incubated overnight to reanneal the denatured DNA (40 μl). It was incubated at 68°C and slowly cooled to room temperature over several hours. Obtained Ani A portion of the converted DNA contained the desired heteroduplex molecule.

適当な突然変異オリゴヌクレオチドのへテロ二本鎖へのアニーリングは、削除す べき一本鎖を含むループを形成した。残っている一本鎖のギャップは、プライマ ーの延長および末端結合(ライゲージロン)で埋めた。使用した突然変異プライ マーは、31−marの、5゛−GCGGGTCCGGCGATATAATTC AGGTAAATTGであり、所望のハイブリッドコード配列を与えるために、 −緒にすべき領域に相補する13塩基のブロックおよび18塩基のブロックから なるものであった。Annealing of the appropriate mutant oligonucleotide to the heteroduplex A loop containing a single strand was formed. The remaining single-stranded gap is filled with primer - extension and end-joining (ligageron). Mutant ply used The mar is 31-mar, 5゛-GCGGGTCCGGCGATATAATTC AGGTAAATTG, to give the desired hybrid coding sequence: - From 13 base blocks and 18 base blocks complementary to the region to be combined It was something like that.

このオリゴヌクレオチドは、アブライドーバイオシステムス380B合成装置で 合成し、使用前にゲル精製した。This oligonucleotide was synthesized on an Abrido Biosystems 380B synthesizer. synthesized and gel purified before use.

このプライマーをマニアチスらの標準的反応混合物中でT4ポリヌクレオチドキ ナーゼを用いて5′ ホスホリル化し、その2.!11 (10pmol)を4 0μl (0,1p m o l )のへテロ二本鎖混合物と混合した。このア ニーリング反応は、68℃で2.5時間加熱し、徐々に15℃に冷却することに より行った。このプライマーに、20sM Mg C1z : 40mMジチオ スレイトール;211MATP、各1mM(F)dATP、dTTP、dCTP 、およびdGTP : DNAポリメラーゼI(Pharmacia)のクレノ ーフラグメント5単位および0.5単位T4リガーゼ(Bethesda、Re 5earchLabs)を含む8μIを添加した後、15℃で4時間インキュベ ートする間に、このプライマーを延長し、部pF マイナス)を形質転換した。This primer was applied to the T4 polynucleotide kit in the standard reaction mixture of Maniatis et al. 5' phosphorylation using Nase, and 2. ! 11 (10 pmol) to 4 It was mixed with 0 μl (0.1 pml) of the heteroduplex mixture. This a The kneeling reaction was performed by heating at 68°C for 2.5 hours and gradually cooling to 15°C. I went further. To this primer, 20sM MgC1z: 40mM dithio Thretol; 211MATP, 1mM each (F)dATP, dTTP, dCTP , and dGTP: DNA polymerase I (Pharmacia) - fragment 5 units and 0.5 units T4 ligase (Bethesda, Re After adding 8 μl of 5earchLabs), incubate at 15°C for 4 hours. During the initialization, this primer was extended and transfected with pF (minus).

プラークは突然変異させたmp1g鎖を含むDNAで形質転換した大腸菌からの み得られたが、これはm p 8はアンバー突然変異を有するためである。FA 性プラークからのDNAを大腸菌の形質転換に用いた。一つの陽性プラークを拾 い上げ、一本鎖テンプレートをg製してDNAの配列を決定した。Plaques were generated from E. coli transformed with DNA containing the mutated mp1g chain. This is because mp8 has an amber mutation. F.A. DNA from the sexual plaques was used to transform E. coli. Picked up one positive plaque Then, a single-stranded template was prepared and the DNA sequence was determined.

さらに、この単離クローンが所望突然変異のみを含み他の突然変異を含まないこ とを確認するため、制限酵素マフピングを充分に行った。Furthermore, this isolated clone contains only the desired mutation and no other mutations. In order to confirm this, sufficient restriction enzyme muffing was performed.

以上の技術により、成熟第■因子コード配列のアミノ末端に直接隣接するプロト ロンビンプレプロ領域をコードする配列(p r e p r o PR/IX 、)を、所望構成物としてrI!I5Iシた。この配列を哺乳類発現ベクターp  M T 2に挿入するためには、preproPR/IXは、制限酵素Eco RIを用いてmp18ベクターから切り出さ汰pMT2のEcoR1部位に挿入 することができる。クローンは、酵素BglnおよびEcoRVで制限消化した とき、600bpフラグメントが存在することにより同定される。このプラスミ ドpMT2−PT/IXは、前記のとおり、哺乳類細胞、例えばCHO細胞を形 質転換して、成熟プロセス化第■因子を生産するために使用できる0発現された 第■因子はT−カルボキシル化されており、生物学的に活性である。By using the above technique, the protonucleotide immediately adjacent to the amino terminus of the mature factor II coding sequence is Sequence encoding the rhombin prepro region (PR/IX , ) as the desired construct rI! I5I. Transpose this sequence into a mammalian expression vector p In order to insert into MT2, preproPR/IX is used with the restriction enzyme Eco Excise from mp18 vector using RI and insert into EcoR1 site of pMT2 can do. Clones were restriction digested with the enzymes Bgln and EcoRV. is identified by the presence of a 600 bp fragment. This plasmid pMT2-PT/IX is injected into mammalian cells, such as CHO cells, as described above. 0-expressed protein that can be transformed and used to produce mature processed factor Factor II is T-carboxylated and is biologically active.

血立旦1 他の態様は、請求の範囲内である0例えば、第■因子、プロティンC,プロティ ンS5第X因子、プロティンz1オステオカルシン、および骨Glaマトリック ス蛋白質を含めて他のビタミンに依存性蛋白質もそれらのN−末端をプロプロト ロンビンのプロペプチド配列に結合することができる。結合DNAを含むベクタ ーはり乳類細胞た形で発現推せることができる。blood rising 1 Other embodiments are within the scope of the claims, such as factor Ⅰ, protein C, protein protein S5 factor X, protein z1 osteocalcin, and bone Gla matrix Other vitamin-dependent proteins, including protein proteins, also proprotease their N-termini. It can bind to the propeptide sequence of thrombin. vector containing bound DNA - Expression in mammalian cells can be predicted.

第■因子はプロトロンビンの完全リーダー配列に結合しているが、本発明の効果 である発現される蛋白質の完全カルボキシル化を得るためには、プロプロトロン ビンペプチドの/ロペプチド部分をコードしている領域のみが必須であることを 理解すべきである。従って、第■因子の完全リーダー配列をコードするDNAで プロトロンビンのリーダー配列をコードするD N A I’ia投する代わり に、必要なことは、プロ第■因子ペプチドをコードするDNAをプロプロトロン ビンのプロペプチドをコードするDNAで置換することのみである。Factor Ⅰ binds to the complete leader sequence of prothrombin, but the effect of the present invention To obtain complete carboxylation of the expressed protein, the proprotron We show that only the region encoding the /ropeptide portion of the bin peptide is essential. You should understand. Therefore, the DNA encoding the complete leader sequence of factor Instead of using DNA I’ia, which encodes the leader sequence of prothrombin. What is required is to convert the DNA encoding the profactor peptide into the proprotron. Simply replace the bottle with DNA encoding the propeptide.

MefAla H7s Val Arg Gly Leu Gin Leu P r。MefAla H7s Val Arg Gly Leu Gin Leu P r.

Gly Cys Leu Ala Leu Ala Ala Leuのts S erPm Gin Gin Ala Arq !;er Leu Leu Gl n ArgMefAla H7s Vat Arg Gly Leu Gln  Leu Pro、−。Gly Cys Leu Ala Leu Ala Ala Leu's ts S erPm Gin Gin Ala Arq! ;er Leu Leu Gl n ArgMefAla H7s Vat Arg Gly Leu Gln  Leu Pro, -.

5′ AGCTGA CACACT 浄キ(内容に変更なし) 0001 OOI OJ ID 0OOI OOl aI LOooot oo t at to aoo’t aot cu t、。5′ AGCTGA CACACT Purification (no change in content) 0001 OOI OJ ID 0OOI OOl aI LOooot oo t at to aoo’t aot cu t,.

[琵奈” E、uq/ml [拍材J]ア呻IFIG、 4 手続補正書 1、事件の表示 PCT/US87103015 2、発明の名称 組み換えビタミンに依存性蛋白質の ガンマカルボキシル化の増強 3、補正をする者 事件との関係 特許出願人 住所 名 称 二ニー・イングランド・メディカル会センター4、代理人 住 所 東京都千代田区大手町二丁目2番1号新大手町ビル 206区 5、補正の対象 国際調査報告 INl、N、l1llA・l A帥b11b??〜・:’CT、’jS8710 30:5my+a++a*s°aeewa+、ae Ne、、、、、、、二Sε 、 、 O,O二5[Bina” E, uq/ml [Slap J] Aoi IFIG, 4 Procedural amendment 1.Display of the incident PCT/US87103015 2. Name of the invention recombinant vitamin-dependent proteins Enhancement of gamma carboxylation 3. Person who makes corrections Relationship to the incident: Patent applicant address Name: Niney England Medical Society Center 4, Agent Address: Shin-Otemachi Building, 206-ku, 2-2-1 Otemachi, Chiyoda-ku, Tokyo 5. Subject of correction international search report INl, N, l1llA・l A Marshal b11b? ? ~・:'CT,'jS8710 30:5my+a++a*s°aeewa+,ae Ne,,,,,,,2Sε , , O, O25

Claims (16)

【特許請求の範囲】[Claims] 1.ヒトビタミンK−依存性蛋白質をコードする第一DNA配列と、その5′末 端に融合し、前記蛋白質たコードする前記第一DNA配列に天然に付随するプロ ペプチドのコード配列とは同一でない第二DNA配列とを含むDNA配列であっ て; 前記の天然不存在プロペプチドコード配列は、組み換え真核細胞中で前記蛋白質 が発現されるとき、該蛋白質のr−カルボキシル化を促進することが出来るプロ ペプチドをコードすることができるものである:DNA配列。1. The first DNA sequence encoding human vitamin K-dependent protein and its 5' end a protein naturally associated with said first DNA sequence which encodes said protein; A DNA sequence that includes a second DNA sequence that is not identical to the coding sequence of the peptide. hand; Said non-naturally occurring propeptide coding sequence can be used to encode said protein in recombinant eukaryotic cells. is expressed, a protein capable of promoting r-carboxylation of the protein. A DNA sequence that is capable of encoding a peptide. 2.第二DNA配列が、ビタミンK−依存性蛋白質に天然に伴うプロペプチドよ りもプロトロンビンのプロペプチドに近いアミノ酸配列を持つプロペプチドをコ ードする、請求項1記載のDNA配列。2. The second DNA sequence is similar to the propeptide naturally associated with vitamin K-dependent proteins. Coating a propeptide with an amino acid sequence similar to that of prothrombin The DNA sequence according to claim 1, which encodes the following. 3.第二DNA配列がヒトプロトロンビンのプロペプチドをコードする、請求2 項記載のDNA配列。3. Claim 2, wherein the second DNA sequence encodes a propeptide of human prothrombin. DNA sequence described in section. 4.ビタミンK−依存性蛋白質が第IX因子である請求項1記載のDNA配列。4. A DNA sequence according to claim 1, wherein the vitamin K-dependent protein is Factor IX. 5.ビタミンK−依存性蛋白質が第VII因子である請求項1記載のDNA配列 。5. DNA sequence according to claim 1, wherein the vitamin K-dependent protein is Factor VII. . 6.ビタミンK−依存性蛋白質がプロテインCである請求項1記載のDNA配列 。6. DNA sequence according to claim 1, wherein the vitamin K-dependent protein is protein C. . 7.ビタミンK−依存性蛋白質がプロテインSである請求項1記載のDNA配列 。7. DNA sequence according to claim 1, wherein the vitamin K-dependent protein is protein S. . 8.ビタミンK−依存性蛋白質が第X因子である請求項1記載のDNA配列。8. A DNA sequence according to claim 1, wherein the vitamin K-dependent protein is factor X. 9.ビタミンK−依存性蛋白質がプロテインZである請求項1記載のDNA配列 。9. A DNA sequence according to claim 1, wherein the vitamin K-dependent protein is protein Z. . 10.ビタミンK−依存性蛋白質がオステオカルシンである請求項1記載のDN A配列。10. DN according to claim 1, wherein the vitamin K-dependent protein is osteocalcin. A array. 11.ビタミンK−依存性蛋白質が骨Glaマトリックス蛋白質である請求項1 記載のDNA配列。11. Claim 1 wherein the vitamin K-dependent protein is bone Gla matrix protein. DNA sequence as described. 12.第一DNA配列がプロトロンビンのプレプロペプチドをコードする請求項 1記載のDNA配列。12. A claim in which the first DNA sequence encodes a prepropeptide of prothrombin. The DNA sequence described in 1. 13.請求項1記載のDNA配列を有するベクター。13. A vector comprising the DNA sequence according to claim 1. 14.プロトロンビンのプレペプチドをコードする配列を含む、ヒトプロトロン ビンをコードする純化DNA配列。14. Human prothromone, containing the sequence encoding the prothrombin prepeptide Purified DNA sequence encoding Bin. 15.請求項14記載のDNA配列を有するベクター。15. A vector comprising the DNA sequence according to claim 14. 16.請求項1記載のDNA配列を用意し、該DNA配列を哺乳類用の発現ベク ターに挿入し、該ベクターを哺乳類細胞中に形質転換し、そして該細胞を培養し て、r−カルボキシル化の改善されたビタミンK−依存性蛋白質を生産させる、 ことよりなるr−カルボキシル化の改善されたヒトのビタミンK−依存性蛋白質 の製造方法。16. The DNA sequence according to claim 1 is prepared, and the DNA sequence is transformed into a mammalian expression vector. transform the vector into mammalian cells, and culture the cells. to produce a vitamin K-dependent protein with improved r-carboxylation, A human vitamin K-dependent protein with improved r-carboxylation. manufacturing method.
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