JPH01252282A - Enzyme from filamentous fungi - Google Patents
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Abstract
Description
【発明の詳細な説明】
本発明は、糸状菌酵素に関し、より詳細Cごは、昆虫病
原性糸状菌の産生ずる特異性の高いプロテアーゼに間す
る。DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION The present invention relates to a filamentous fungal enzyme, and more specifically to a highly specific protease produced by entomopathogenic filamentous fungi.
昆虫病原性糸状菌メタリジウム、・アニソブリア(首d
側11…」■釦狙」い (MEI株)は、細胞外プロテ
アーゼ混合物を産生ずることが示された(R,J、 S
t、 leger、A、 K、 Charnleyおよ
びRoM、 Cooper、 Characteriz
ation of cut+cle−degradin
g proteases produced by t
he entomo−p a t h o g e n
fieJa−□□zo+1Lax M E l
−Arcllives of Biochemistr
y and Biophysics(1987)記、2
2+−232)。これらプロテアーゼは、二つの主要構
成分に分画された。すなわち、ギモエラスターセ(Pr
lと称する)およびトリプシン様プロテアーゼ(Pr2
と称する)であり、Pr2のイソ酵素が存在する。Entomopathogenic filamentous fungus Metarhizium, Anisobria (neck d
Side 11...''■ Buttonai'' (MEI strain) was shown to produce a mixture of extracellular proteases (R, J, S
T, leger, A, K, Charnley and RoM, Cooper, Characteriz.
ation of cut+cle-degradin
g proteases produced by t
he entomo-p a t h o gene
fieJa-□□zo+1Lax M E l
-Arclives of Biochemistry
y and Biophysics (1987), 2
2+-232). These proteases were fractionated into two major components. That is, Gimo elastase (Pr
) and trypsin-like protease (referred to as Pr2
), and there is an isoenzyme of Pr2.
Prlは、広い基質特異性を示すか、Pr2は、ずっと
狭い基質範囲を示す。Pr2は、カゼインおよび、アル
キニンまたはりシンを含む合成基質を速やかに加水分解
するが、宿主昆虫の角皮(クチクラ)、エラスチンまた
は、キモトリプシンおよびエラスターセのための合成基
質に対しては、はとんどあるいは全く活性を示さない。Prl exhibits broad substrate specificity, whereas Pr2 exhibits a much narrower substrate range. Pr2 rapidly hydrolyzes casein and synthetic substrates including alkinine or lysine, but not the host insect cuticle, elastin, or synthetic substrates for chymotrypsin and elastase. It shows little or no activity.
特異的活性部位阻害剤によって、Pr2とトリプシンと
の相似性が確認された。Specific active site inhibitors confirmed the similarity between Pr2 and trypsin.
細胞外プロテアーゼを産生ずる昆虫病原性株の8分離株
、すなわち、メタリジウム・アニソブリア(4株)、ボ
ウバリア・バシアナ(−右側ま[紅旺鎖澗)、J\ルチ
シリウム・レカニ(・ −)(2株)お
よびアシェルソニア・アレイロブイス(bd邸]囲」1
針賀nLLS)がさらにスクリーニングされた。全分離
株は、PrlおよびPr2プロテアーセを産生ずるか、
驚いたことに、これら分離株中の6株のプロテアーゼは
、前述のメタリジウム・アニソプリア(MEI)のPr
2プロテアーセに比へて、極めて狭い基質特異性を示す
。Eight isolates of entomopathogenic strains producing extracellular proteases were identified, namely Metarhizium anisobria (4 strains), Bowvaria bassiana (-right side), and J\Rucillium lecani (-) (2). Ltd.) and Ashelsonia arelobuis (bd residence) 1
Hariga nLLS) was further screened. All isolates produced Prl and Pr2 proteases or
Surprisingly, the proteases of six of these isolates were similar to the aforementioned Pr of Metarhizium anisoplia (MEI).
It shows extremely narrow substrate specificity compared to 2 proteases.
メタリジウム・アニソプリア分離株MEI、R5549
およびR523のPi・2プロテアーゼは、皮膜タンパ
ク質アズール(a2ure)に対して活性を示すが、ト
ノサマバッタ角皮およびエラスチンに対しては活性を示
さない(表1)。これに対して、他の6分離株からのP
r2プロテアーゼは、3種のいずれのタンパク質に対し
ても不活性である。さらに、これらPr2プロテアーゼ
の限定された基質特異性の証明は、合成基質(ペプチド
のニトロアニリド誘導体)を用いた実験によって得られ
た。MEI、R3549およびR523からのPr2酵
素は、一連の基質Bz−AA−AA−Arg−NAを加
水分解し、これらの二次的サブ部位特異性にほとんと区
別がみられないことを示した(表2を参照されたい)。Metarhizium anisoplia isolate MEI, R5549
The Pi·2 protease of R523 exhibits activity against the membrane protein a2ure, but not against the cuticle and elastin of the locust (Table 1). In contrast, P from six other isolates
r2 protease is inactive against all three proteins. Furthermore, proof of the limited substrate specificity of these Pr2 proteases was obtained by experiments with synthetic substrates (nitroanilide derivatives of peptides). The Pr2 enzymes from MEI, R3549 and R523 hydrolyzed a series of substrates Bz-AA-AA-Arg-NA, showing little distinction in their secondary subsite specificities ( (See Table 2).
これに対して、他の6分離株からのPr2プロテアーゼ
は、Bz−P 11 e −V a l −A r g
−N−Aに対する特異性を示した。このように、これ
ら酵素は、極めて特異的な基質配列を要求し、このこと
は、以前には報告されていないクラスの糸状菌プロテア
ーゼであることを示す。同様の限定的特異性を有する唯
一の他の酵素は、トロンポジチン(Thrombocy
tin)(ボトロブス・アトツクス(flch L■L
訂)毒由来)などのある種のトロンビンである。トロン
ポジチンは、B z−P J> e −V a l −
A r g −N Aを速やかに切断し、Bz−P r
o−Ph e−Ar g −NAに対してはより低い
活性を示す。In contrast, the Pr2 protease from the other six isolates was Bz-P 11 e -V a l -A r g
- Showed specificity for NA. These enzymes thus require highly specific substrate sequences, representing a previously undescribed class of fungal proteases. The only other enzyme with similar limited specificity is thrombocytin
tin) (botlobus atocus (flch L■L
It is a type of thrombin, such as (revised) poison origin). Trompositin is B z-P J> e -V a l -
A r g -N A is immediately cut off, and Bz-P r
It shows lower activity towards o-Ph e-Ar g -NA.
MEI、R3549およびRS 23からのP r 2
プロテアーゼと他の6分離株からのPr2ブ0デアーゼ
との相違は、さらに、阻害剤実験によって明らかにされ
た(表3を参照されたい)。P r 2 from MEI, R3549 and RS 23
Differences between the protease and Pr2bu0 dease from the other six isolates were further revealed by inhibitor experiments (see Table 3).
MEI、RS 549およびR523からのP r 2
は、トロンポジチンと同様、大豆トリプシンインヒビタ
ーで阻害されるが、他の6分離株からのPr2プロテア
ーゼは、阻害されない(ただし、試験しなかったアシエ
ルソニア・アレイロブイスを除く)。P r 2 from MEI, RS 549 and R523
Like trompositin, Pr2 proteases from soybean trypsin inhibitors are inhibited by soybean trypsin inhibitor, but Pr2 proteases from six other isolates are not inhibited (with the exception of Asiersonia allelobuis, which was not tested).
これら特異性の高いプロテアーゼは、薬剤製造、農業ま
たは産業上において有効に刊用されよう。These highly specific proteases will be effectively used in pharmaceutical manufacturing, agriculture, or industry.
本発明は、このように、次の菌属のいずれか一つの昆虫
病原性糸状菌から由来する少なくとも一つのプロテアー
ゼからなる酵素調製物を提供する。The present invention thus provides an enzyme preparation consisting of at least one protease derived from an entomopathogenic filamentous fungus of any one of the following fungal genera:
すなわち、菌属は、メタリジウム、ボウバリア、ベルチ
シリウムおよびアシエルソニアであり、かつ、この酵素
調製物は、次の性質で特徴つけられろ。That is, the fungal genera are Metarhizium, Bouvaria, Verticillium, and Acielsonia, and this enzyme preparation is characterized by the following properties.
(a)実質的に、皮膜タンパク質アズール、トノサマハ
ッタ角皮およびエラスチンに対して非活性であり、
(b) B z−Pb e−Va I −Ar g−N
Aに対して特異性を示し、
(C)大豆トリプシンインヒヒターで阻害されない。(a) is substantially inactive against the membrane proteins azul, Tonosamahata cuticle and elastin; (b) Bz-Pb e-Va I-Ar g-N
(C) Not inhibited by soybean trypsin inhibitor.
好ましい態様においては、プロテアーゼは、次の菌種の
一つに由来する。すなわち、メタリジウム・アニソブリ
ア、ボウバリア・ハシアナ、ペルチシリウム・レカニお
よび、アシエルソニア・アレイロブイスである。In a preferred embodiment, the protease is derived from one of the following bacterial species: Namely, Metarhizium anisobria, Bouvaria hasiana, Perticillium lecani, and Asiersonia arelobuis.
とくに好ましい態様においては、プロテアーゼは、下記
の菌株、または該プロテアーセ産生能を有するこれらの
誘導株または突然変異株の一つに由来する。これらの菌
株は、Commonwea I thMycologi
cal 1nstit、ute (CMI)、Ferr
y Lane。In a particularly preferred embodiment, the protease is derived from one of the strains listed below, or one of their derivatives or mutants capable of producing the protease. These strains are Commonwea I thMycologie.
cal 1nstit, ute (CMI), Ferr
y Lane.
Kew、 Richmond、、5urrey、 TW
93AF、 Ll、に、に1987年10月12日に寄
託済みであり、次のような菌株寄託番号を有している。Kew, Richmond, 5urrey, TW
93AF, Ll, on October 12, 1987, and has the following strain deposit number:
1生1名 仁社上輩■盗亙1号メタリジウ
ム・アニソブリア
var major R5324319793var
major R5298’319794ヘルチシリ
ウム・レカニ l 3+97952 、 31
9796
ボウバリア・ハシアナ 319797アシエ
ルソニア・アレイロブイス 31979B上記の寄託菌
株の特徴は、公示されている基準株の記述と基本的に一
致している。1 student, 1 person, Jinsha senior ■ Theft No. 1 Metarhizium Anisobria var major R5324319793 var
major R5298'319794 Herticillium lecani l 3+97952, 31
9796 Bouvaria hasiana 319797 Asiersonia arelobuis 31979B The characteristics of the deposited strain described above are basically consistent with the published description of the type strain.
本発明は、次の語例に示される通りである。The present invention is illustrated in the following examples.
賂1
B z −A A −A A −A r g−N A
:N−ベンゾイル−■5−アミノ酸−L−アミノ酸−L
−アルギニン−p−ニトロアニリドBz−Phe −V
a l−Arg−NA:N−ペンソイル−■、−フェニ
ルアラニンーL−バリン−L−アルギニン−p−ニトロ
アニリド
B z−Val −G I y−A r g−NA:N
−ヘンシイルーし一バリンーグリシンーし一アルキニン
ーp−ニトロアニリド
Bz−Pro−Phe−Arg−NA:N−ベンソイル
−し−プロリン−L−フェニルアラニン−L−アルギニ
ン−p−ニトロアニリド
CBZ−01y−P r o−Ar g−NA:N−カ
ルボベンゾキシ−グリシン−し−プロリン−L−アルギ
ニン−1)−ニトロアニリドB z −A r g−N
A:
N−ベンゾイル−L−アルギニン−p−ニトロアニリド
D−Vat−Leu−Lys−NA:
D−バリン−■、−ロイシン=L−リジンーp−二トロ
アニリド
5uc−(Ala)2−Pro−Phe−NA:N−サ
クシニル−L−アラニン−し−アラニン−L−プロリン
−L−フェニルアラニン−p−ニトロアニリド
5uc−Phe−Leu−Phe−NA:N−サクシニ
ル−し−フェニルアラニン−L−ロイシン−[、−フェ
ニルアラニン−p−ニトロアニリド
5uc−(Ala)2−Pro−Leu−NA:N−サ
クシニル−し−アラニン−し−アラニン−L−プロリン
−L−ロイシン−p−ニトロアニリド
5uC−(Ala)2−Pro−Abu−NA:N−サ
クシニル−し−7ラニンー■、−アラニン−L−プロリ
ン−L−アミノ−n−酪酸−p−二トロアニリド
5uc−(Ala)2−Val−Ala−NA:N−サ
クシニル−L−アラニン−L−アラニン−L−バリン−
L−アラニン−p−ニトロアニリド
A c −(A I a) 3−N A:N−アセチル
−L−アラニン−L−アラニン−L−アラニン−p−ニ
トロアニリド
PMSF:
フェニルメチルスルフォニル・フルオリトTos−Ly
s−CH2Cl:
N−1)−)シル−し一すシンークロロメチα
ルケトン
Tos−Pbe−CH2Cl
N−)シルーL−フェニルアラニンークロロメチルケト
ン
BOC−Gly−Leu−Phe−CH2C1:N −
t、ert−フトキシカルボニルーグリシンーL−ロイ
シン−1−−フェニルアラニン−クロロメチルケトン
例
】)を産1
メタリジウム・アニソブリアvar、 mLlo工RS
324メタリジウム・アニソプリアVat・−1fl
tLQf R5298ベルチシリウム・レカニ 1
ベルナシリウム・しカニ 2
ホウバリア・ハシアナ
アシエルソニア・アレイロブイス
2)歴殖莢許
メタリジウムおよびベルチシリウム分離株は、サブロー
・デキストロース寒天上で23℃(ヘルチシリウム・レ
カニ)または27℃(メタリジウム・アニソプリア〉に
保存した。ボウバリア・ハシアナ分離株は、Cz a
p e 、k −D o x培地で27℃で保存した。Bribe 1 B z -A A -A A -A r g-N A
:N-benzoyl-■5-amino acid-L-amino acid-L
-Arginine-p-nitroanilide Bz-Phe -V
a l-Arg-NA: N-pensoyl-■, -phenylalanine-L-valine-L-arginine-p-nitroanilide B z-Val -G I y-A r g-NA: N
-Hensyl-1-valine-glycine-1-arkynine-p-nitroanilide Bz-Pro-Phe-Arg-NA: N-bensoyl-proline-L-phenylalanine-L-arginine-p-nitroanilide CBZ-01y-P r o-Ar g-NA: N-carbobenzoxy-glycine-proline-L-arginine-1)-nitroanilide B z -A r g-N
A: N-benzoyl-L-arginine-p-nitroanilide D-Vat-Leu-Lys-NA: D-valine-■,-leucine=L-lysine-p-nitroanilide 5uc-(Ala)2-Pro-Phe -NA: N-succinyl-L-alanine-l-alanine-L-proline-L-phenylalanine-p-nitroanilide 5uc-Phe-Leu-Phe-NA: N-succinyl-l-phenylalanine-L-leucine-[ , -phenylalanine-p-nitroanilide 5uc-(Ala) 2-Pro-Leu-NA: N-succinyl-shi-alanine-shi-alanine-L-proline-L-leucine-p-nitroanilide 5uc-(Ala) 2-Pro-Abu-NA: N-succinyl-7-lanine-■,-alanine-L-proline-L-amino-n-butyric acid-p-nitroanilide 5uc-(Ala)2-Val-Ala-NA: N-succinyl-L-alanine-L-alanine-L-valine-
L-alanine-p-nitroanilide A c -(AI a) 3-N A: N-acetyl-L-alanine-L-alanine-L-alanine-p-nitroanilide PMSF: Phenylmethylsulfonyl fluoride Tos- Ly
s-CH2Cl: N-1)-)Syl-Syl-Syn-Chloromethyalpha KetoneTos-Pbe-CH2Cl N-)Syl-L-Phenylalanine-Chloromethyl Ketone BOC-Gly-Leu-Phe-CH2C1:N-
t, ert-phthoxycarbonyl-glycine-L-leucine-1-phenylalanine-chloromethylketone Example] 1 Metarhizium anisobria var, mLlo engineering RS
324 Metarhizium anisoplia Vat・-1fl
tLQf R5298 Verticillium lecani 1 Vernacilium lecani 2 Houbaria hacianaacielsonia arelobuis 2) Historically cultivated Metarhizium and Verticillium isolates were grown on Sabouraud dextrose agar at 23°C (Herticillium lecani) or at 27°C (Metarzium・Anisoplia> The Bouvaria hasiana isolate was stored in Cz a
It was stored at 27°C in p e , k -D ox medium.
アシエルソニア・アレイロブイス分離株は、マルトース
寒天上で23℃で保存した。Asiersonia allelobuis isolates were stored at 23°C on maltose agar.
糸状菌を250m1容三角フラスコに入れた100n+
lの増殖培地で増殖させた。増殖培地の絹或は、次の通
りであった。100n+ containing filamentous fungi in a 250ml Erlenmeyer flask
1 of growth medium. The growth medium was as follows.
1%冒/V炭素源 0.1%w/vKH2PO4 0,05%w/vM g S 0 。1% F/V carbon source 0.1%w/vKH2PO4 0.05% w/vM g S 0.
0.05M4−モルホリン・エタンスルホン酸1l−
pH6,0
0、271g/n+l FeSO4・7H201、0
μg/ml ZnSO4−7H200、271g/m
l NaMoO4・ 2H200、02μg/ml
CuSO4・ 5H200、0271g/ml M
n Cl 264 H20重合体の非抑制性の炭素源で
ある、トノサマバッタ角皮、ウシ血清アルフミン、ラミ
ナリン、セルロース、エラスチンおよびコラーゲンが用
いられる。セルロースを用いる場合には、増殖培地には
、窒素源として0.2%w/vNaNo3を補充せねは
ならない。0.05M4-morpholine ethanesulfonic acid 1l- pH6,0 0, 271g/n+l FeSO4・7H201,0
μg/ml ZnSO4-7H200, 271g/m
l NaMoO4・2H200, 02μg/ml
CuSO4・5H200, 0271g/ml M
Non-inhibitory carbon sources for the nCl 264 H20 polymer are used: locust cuticle, bovine serum albumin, laminarin, cellulose, elastin and collagen. If cellulose is used, the growth medium must be supplemented with 0.2% w/v NaNo3 as a nitrogen source.
不溶性の炭素源は、予め滅菌した(121℃で15分間
)基礎培地に加え、115℃で5分間高圧滅菌した。可
溶性の炭素源は、基礎培地中で115℃で20分間高圧
滅菌した。Insoluble carbon sources were added to previously sterilized (121°C for 15 minutes) basal medium and autoclaved at 115°C for 5 minutes. Soluble carbon sources were autoclaved in basal medium at 115°C for 20 minutes.
7〜12日間培養の寒天プレートから採った3×106
個の胞子を接種した後に、フラスコを、回転インキュベ
ーター(150回転/分)で23°C(ヘルチシリウム
・レカニ、アシエルソニア・アレイロブイス)または2
7.5℃(メタリジウム・アニソプリアおよびボウバリ
ア・ハシアナ)で振とうした。3 x 106 samples taken from agar plates cultured for 7-12 days.
After inoculation with 150 spores, the flasks were placed in a rotating incubator (150 revolutions/min) at 23°C (Herticillium lecani, Asiersonia arelobuis) or 2 spores.
Shake at 7.5°C (Metallidium anisoplia and Bouvaria hasiana).
3)11α症製
1%トノサマバッタ角皮基礎塩培地(200mlを50
0m1容コニカルフラスコで150 r l) mで回
転)で5日間(アシエルソニア・アレイロブイスは14
日間)増殖させた培養液を、濾過(ワットマン濾紙1を
通す)および遠心分離
(8,000g、3℃で15分間)によって清澄にした
。固形物(角皮および糸状菌菌体)を0.1M燐酸カリ
ウム緩衝液(約3%w/v、湿重量)で洗浄して、静電
気的に結合している酵素を取り出し、濾過して、遠心分
離した。この11!液およびオリジナルの培養濾液を別
々に透析(4°Cで12時間、300容量の蒸留水に対
して2回、pH6,0)L/て、濃縮(分子量20,0
00ポリエチレングリコールにて)し、後述する調製の
ための等電点フォーカシング(IEF)に供する前に合
わせた(最終容量50m1)。分画物のpHを決定して
(勾配は、pI410.0以上においては不連続であっ
たので、10.0以上のpl値は、近似値)分画物の酵
素活性を0. 2M KC,1(4℃で12時間)、次
いて蒸留水(4℃で12時間)で透析した後にアッセイ
した。3) 1% Tonosama grasshopper cuticle basal salt medium (200ml
0 ml conical flask (rotating at 150 ml) for 5 days (for Asiersonia arelobuis, 14 ml)
Cultures grown for 1 day) were clarified by filtration (through Whatman filter paper 1) and centrifugation (8,000 g, 15 min at 3° C.). The solid matter (cuticle and filamentous fungal cells) is washed with 0.1 M potassium phosphate buffer (approximately 3% w/v, wet weight) to remove electrostatically bound enzymes, and filtered. Centrifuged. This 11! The culture filtrate and the original culture filtrate were separately dialyzed (2×300 volumes of distilled water for 12 hours at 4°C, pH 6.0) and concentrated (molecular weight 20.0
00 polyethylene glycol) and combined (final volume 50 ml) before being subjected to isoelectric focusing (IEF) for the preparation described below. The pH of the fraction was determined (the gradient was discontinuous at pIs of 410.0 and above, so pl values of 10.0 and above were approximate values) and the enzyme activity of the fraction was adjusted to 0.0. It was assayed after dialysis against 2M KC,1 (12 hours at 4°C) and then distilled water (12 hours at 4°C).
調製のためのIEF(pH3,5〜10.0)を、44
0m1のカラム(LKB8100>で行った。狭範囲の
IEFは、110+nlカラム(LKB8101)て行
った。方法は、製造者のマニュアルの記述に従った。溶
出物中の酵素活性およびタンパク質しヘルを、0.2M
KCl (4℃で14時間、300容量)および蒸留
水(4℃で12時間、300容量)でpH6,0での完
全透析によって両性電解質を除去した後に測定した。IEF (pH 3,5-10.0) for preparation, 44
Narrow range IEF was performed on a 110+nl column (LKB8101). The method was as described in the manufacturer's manual. The enzyme activity and protein profile in the eluate were determined. 0.2M
Measurements were made after removal of the ampholytes by complete dialysis at pH 6.0 with KCl (14 hours at 4°C, 300 volumes) and distilled water (12 hours at 4°C, 300 volumes).
4)1本
a)14甜tα濫淀
非特異性プロテアーセ活性を皮膜タンパク質アズールて
測定した。5ml容量の瓶に、20m3基質、4mlの
所定pHのブリトンーロビンソン緩衝液および1ml酵
素液を入れ、栓をして、回転盤にしつかり定着させた。4) 1 bottle a) Non-specific protease activity of 14-tα stagnation was measured using the membrane protein Azul. A 20 m3 substrate, 4 ml of a Britton-Robinson buffer solution at a predetermined pH, and 1 ml of an enzyme solution were placed in a 5 ml bottle, the bottle was stoppered, and the bottle was fixed on a rotary disk.
30℃でインキュベートした後、トリクロル酢#(0,
25m1.500g/リッ1ル)を添加して反応を終結
させた。遠心分離
(5,000gで10分間)の後、吸光度を595nm
で測定した。活性を、皮膜タンパク質アズールに対する
トリプシン活性の標準曲線から算出したμgトリプシン
相当1jt、/ml/時間で表す。結果を表1に示す。After incubation at 30°C, trichloroacetic acid #(0,
The reaction was terminated by adding 25ml (1.500g/liter). After centrifugation (10 min at 5,000 g), absorbance was measured at 595 nm.
It was measured with Activity is expressed as μg trypsin equivalent 1 jt/ml/hr calculated from a standard curve of trypsin activity against the membrane protein Azur. The results are shown in Table 1.
エラスターゼ活性を、4m1トリス緩衝液(0,05M
、pH8,0)、1ml酵素溶液およびエラスチン−コ
ンゴーレッド(タンパク質濃度1mg/ml)を含む反
応混合物中で測定した。Elastase activity was determined using 4 ml Tris buffer (0.05 M
, pH 8.0), in a reaction mixture containing 1 ml enzyme solution and Elastin-Congo Red (protein concentration 1 mg/ml).
30°Cて適当な時間間隔をおいた後に、混合物を遠心
分離(5000gで10分間)して、450 nmで吸
光度を測定した。1工ラスチン溶解単位を、1mgのエ
ラスチンを30分間で可溶化する酵素量と定義した。After an appropriate time interval at 30°C, the mixture was centrifuged (5000g for 10 min) and the absorbance was measured at 450 nm. One elastin solubility unit was defined as the amount of enzyme that solubilizes 1 mg of elastin in 30 minutes.
精製タンパク質に対する活性は、次のようにしてアッセ
イした。0.5ml酵素溶液を、タンパク質を2. 5
mg/mlの濃度で含む1. 0mlの0.05M)リ
ス緩衝液(pH8,0)とともにインキュノ\−!・し
た。30℃で適当な時間インキュベートした後ここ、2
mlの10%トリクロル酢酸の添加によって反応を終結
させて、1時間放置した。未消化タンパク質の残滓をワ
ットマンNo。Activity against purified protein was assayed as follows. Add 0.5 ml of enzyme solution and 2.0 ml of protein. 5
Containing at a concentration of mg/ml1. Inkyuno\-! with 0ml of 0.05M) Lys buffer (pH 8,0)! ·did. After incubation at 30°C for an appropriate time,
The reaction was terminated by the addition of ml of 10% trichloroacetic acid and left for 1 hour. Whatman no.
50m紙で濾過して除去して、濾液の吸光度を280
nmて測定した。酵素活性を、1分間1ml当りのμ8
トリプシン相当量として表す。タンパク質からの遊離ア
ミノ基の酵素的遊離を、ニンヒドリン分析によって測定
した。The absorbance of the filtrate was reduced to 280 by filtration through 50m paper.
Measured in nm. Enzyme activity was measured at μ8 per ml for 1 minute.
Expressed as trypsin equivalent. Enzymatic release of free amino groups from proteins was determined by ninhydrin analysis.
トノザマハッタ角皮ここ対する活性は、次のように測定
した。The activity against Tonozamahata cuticle was measured as follows.
30mgの粉砕したトノサマバッタ角皮(1%四ホウ酸
カリウムの水溶液を用いて調製)を、2ml酵素、4m
lフリトノーロヒンソン緩衝液(、p H5,0)およ
び0. 05m1l−ルエンとともに30℃で激しく振
とうした。試料(0,05m1)を一定間隔て採取しな
がら24時間インキュベートした。タンパク質分解活性
によるアミノ酸の遊離をニンヒドリンで測定した。30 mg of ground locust cuticle (prepared using 1% potassium tetraborate aqueous solution), 2 ml enzyme, 4 ml
1 Fritonorohinson buffer (pH 5,0) and Shake vigorously at 30° C. with 0.5 ml of toluene. Samples (0.05 ml) were incubated for 24 hours, taking them at regular intervals. Amino acid release due to proteolytic activity was measured with ninhydrin.
その結果を表1に示す。The results are shown in Table 1.
ニトロアニリド基質に対する活性を0. 1ml酵素溶
液および1. 8mlフリトンーロピンソン緩衝液(p
H8,Q)を含む反応混合液中で測定した。The activity towards nitroanilide substrate is 0. 1 ml enzyme solution and 1. 8ml Friton-Robinson buffer (p
The measurement was carried out in a reaction mixture containing H8,Q).
23°Cで3分間の後、0.1mlの基質(ジメチルス
ルフォ・キシドに溶解)を添加して、反応を410nm
で追跡した。結果を、1分間で1ml当りに遊離してく
る71molニトロニトリロとして表す。After 3 min at 23°C, 0.1 ml of substrate (dissolved in dimethyl sulfooxide) was added and the reaction was incubated at 410 nm.
I tracked it. Results are expressed as 71 mol nitronitrile liberated per ml in 1 minute.
410nmの消衰係数8800を用いた。結果を表2に
示す。An extinction coefficient of 8800 at 410 nm was used. The results are shown in Table 2.
全ての対照では、非加熱処理酵素溶液の代わりにオート
クレー7(121cて30分間)した酵素を含むものを
用いた。All controls contained autoclaved enzyme at 121c for 30 minutes in place of the non-heat treated enzyme solution.
b)兄王粟辺訣淀
分子量は、中性またはアルカリ−ゲルシステムのSDS
ポリアクリルアミドゲル電気泳動および、0.15M燐
酸緩衝液を用いたセファデックスG−100フアインで
のケル濾過によって決定した。結果を表4に示す。b) Molecular weight is SDS of neutral or alkali-gel system.
Determined by polyacrylamide gel electrophoresis and Kell filtration on Sephadex G-100 fines using 0.15M phosphate buffer. The results are shown in Table 4.
Claims (1)
uvaria¥)、ベルチシリウム(¥Vertici
llium¥)およびアシェルソニア(¥Ascher
sonia¥)のいずれか一つに由来する少なくとも一
つのプロテアーゼからなり、下記の性質を有することを
特徴とする酵素調製物。 (a)実質的に皮膜タンパク質アズール、トノサマバッ
タ角皮およびエラスチンに対して活性を有せず、 (b)Bz−Phe−Val−Arg−NAに対して特
異性を有し、 (c)大豆トリプシンインヒビターで阻害されない。 2、プロテアーゼが、メタリジウム・アニソプリア(¥
Metarhizium anisopliae¥)、
ボウバリア・バシアナ(¥Beauvaria bas
siana¥)、ベルチシリウム・レカニ(¥Vert
icillium lecanii¥)およびアシエル
ソニア・アレイロディス(¥Aschersonia
aleyrodis¥)のいずれか一つの菌種に由来す
る、請求項1に記載の酵素調製物。 3、プロテアーゼが、CMI319793、CMI31
9794、CMI319795、CMI319796、
CMI319797およびCMI319798のいずれ
か一つの菌株、または該プロテアーゼを産生することが
できるその誘導株または突然変異株に由来する、請求項
1または2に記載の酵素調製物。 4、プロテアーゼが、分子量25000〜30000を
有し、活性の最適pHが約8.0であり、安定性の最適
pHが6.0〜9.0であって、50℃までの温度で安
定である、請求項1〜3項のいずれか1項に記載の酵素
調製物。[Scope of Claims] 1. Entomopathogenic fungi of the genus Metarhizim and Bea
uvaria¥), Verticillium (¥Vertici
llium¥) and Aschersonia (¥Ascher
1. An enzyme preparation comprising at least one protease derived from any one of the following: (a) has substantially no activity against the membrane proteins azul, locust cuticle and elastin; (b) has specificity for Bz-Phe-Val-Arg-NA; and (c) soybean trypsin. Not inhibited by inhibitors. 2. Protease is produced by Metarhizium anisoplia (¥
Metarhizium anisopliae¥),
Beauvaria bassiana (¥Beauvaria bas
siana¥), Verticillium lecani (¥Vert
icillium lecanii) and Aschersonia areirodis (Aschersonia
The enzyme preparation according to claim 1, which is derived from any one species of B. aleyrodis¥. 3. Protease is CMI319793, CMI31
9794, CMI319795, CMI319796,
Enzyme preparation according to claim 1 or 2, derived from any one of the strains CMI319797 and CMI319798, or a derivative or mutant strain thereof capable of producing the protease. 4. The protease has a molecular weight of 25,000-30,000, an optimum pH for activity is about 8.0, an optimum pH for stability is about 6.0-9.0, and is stable at temperatures up to 50°C. 4. An enzyme preparation according to any one of claims 1-3.
Priority Applications (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP7796688A JPH01252282A (en) | 1988-03-30 | 1988-03-30 | Enzyme from filamentous fungi |
US07/197,970 US4987077A (en) | 1988-03-30 | 1988-05-24 | Preparations of protease enzymes derived from entomopathogenic fungi |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP7796688A JPH01252282A (en) | 1988-03-30 | 1988-03-30 | Enzyme from filamentous fungi |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH01252282A true JPH01252282A (en) | 1989-10-06 |
Family
ID=13648686
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP7796688A Pending JPH01252282A (en) | 1988-03-30 | 1988-03-30 | Enzyme from filamentous fungi |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH01252282A (en) |
-
1988
- 1988-03-30 JP JP7796688A patent/JPH01252282A/en active Pending
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