JP7493176B2 - Prediction of dermatitis due to radiation exposure - Google Patents

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Description

本発明は、放射線被ばくによる皮膚炎発生の予測に関する。 The present invention relates to predicting the occurrence of dermatitis due to radiation exposure.

近年、放射線治療や画像下治療(IVR)が広く行われるようになり、放射線被ばくによる副作用が問題となっている。同じような放射線治療やIVRが行われても、副作用である皮膚炎が発生するかどうかはケースごとに異なり、皮膚炎が発生するかどうかを予測することは困難であった。また、皮膚における反応は、即時的なものもあれば、生じるまでに何日間も何週間もかかるものもあるだけでなく、皮膚炎が発生しても一過性の皮膚炎の場合もあれば、強い紅斑が3、4週間持続する場合もあり、皮膚炎の程度を予測することも困難であった。 In recent years, radiation therapy and imaging-guided therapy (IVR) have become widely used, and side effects from radiation exposure have become a problem. Even when similar radiation therapy or IVR is performed, whether or not dermatitis, a side effect, occurs varies from case to case, making it difficult to predict whether dermatitis will occur. Furthermore, some skin reactions are immediate while others take days or weeks to develop. Even if dermatitis does occur, it may be a transient condition or a strong erythema may persist for 3 to 4 weeks, making it difficult to predict the severity of the dermatitis.

これまでに、Tリンパ球アポトーシスに関する生化学マーカー及び臨床パラメータを用いた放射線治療後の乳房晩発効果を発症するリスクを診断するための方法(特許文献1)、被ばく部位の画像から血流量を特定することによる皮膚炎発生を予測する方法(特許文献2)、皮膚組織から採取された細胞を用いて放射線感受性を予測する方法(特許文献3)等が提案されている。 To date, methods have been proposed for diagnosing the risk of developing late breast effects after radiation therapy using biochemical markers related to T lymphocyte apoptosis and clinical parameters (Patent Document 1), a method for predicting the occurrence of dermatitis by identifying blood flow from images of the exposed area (Patent Document 2), and a method for predicting radiation sensitivity using cells collected from skin tissue (Patent Document 3).

特表2019-532304号公報JP 2019-532304 A 国際公開第2015/146164号International Publication No. 2015/146164 特表2017-505630号公報JP 2017-505630 A

しかしながら、これまでの方法では、診断までの工程が煩雑であったり、特殊な装置を必要としたり、侵襲性が大きく、結果が出るまでに時間を要する等の問題があった。
本発明が解決しようとする課題は、放射線被ばく後の皮膚炎の発生の有無と皮膚炎の程度をより簡便に予測するためにデータを収集する方法及びそれに関連するキットを提供することである。
However, the conventional methods have problems such as complicated steps leading to diagnosis, the need for special equipment, being highly invasive, and taking a long time to obtain results.
The problem to be solved by the present invention is to provide a method for collecting data to more simply predict the occurrence and severity of dermatitis after radiation exposure, and a kit related thereto.

すなわち、本発明者は、様々な手段を検討した結果、放射線治療又は画像下治療による放射線被ばく後に赤血球中のグルタチオン濃度を測定することによって、皮膚炎の発生の有無を予測できることを見出し、本発明を完成するに至った。 In other words, after examining various methods, the inventors discovered that it is possible to predict the occurrence of dermatitis by measuring the glutathione concentration in red blood cells after exposure to radiation from radiation therapy or imaging-guided therapy, and thus completed the present invention.

上記課題を解決する本発明は、下記より構成される。
(1)放射線治療又は画像下治療による放射線被ばく後の皮膚炎の発生の有無を予測するためのバイオマーカーであって、グルタチオン又はその濃度である、バイオマーカー。
(2)バイオマーカーが、赤血球中の還元型グルタチオン濃度/酸化型グルタチオン濃度である、(1)に記載のバイオマーカー。
(3)放射線被ばくが、X線又は電子線、ガンマ線、陽子線、重粒子線、中性子線の照射によるものである、(1)又は(2)に記載のバイオマーカー。
(4)放射線被ばくが、乳がん、皮膚がん又は頭頸部がん、直腸がん、食道がん、脳腫瘍、転移性脳腫瘍、肝臓がん、肺癌、悪性リンパ腫の放射線治療によるものである、(1)から(3)のいずれかに記載のバイオマーカー。
(5)バイオマーカーを測定する方法であって、
放射線治療又は画像下治療による放射線被ばく後に被験体から取得された試料中の(1)から(4)に記載のいずれかのバイオマーカーを測定する、測定方法。
(6)(1)から(4)に記載のバイオマーカーを測定するための手段を含む、キット。
(7)放射線治療又は画像下治療による放射線被ばく後の皮膚炎の発生の有無を予測するためのデータを収集する方法であって、放射線被ばく後に被験体から取得された試料のグルタチオン濃度を測定することを含み、試料の還元型グルタチオン濃度/酸化型グルタチオン濃度が第1の基準値以下である場合に皮膚炎が発生する可能性が高いと予測される、方法。
(8)還元型グルタチオン濃度/酸化型グルタチオン濃度が、第1の基準値以下であって第2の基準値より高い場合に一過性皮膚炎が発生する可能性が高く、第2の基準値以下である場合に持続性皮膚炎が発生する可能性が高いと予測される、(1)に記載の方法。
(9)放射線被ばくが、X線又は電子線の照射によるものである、(7)又は(8)に記載の方法。
(10)放射線被ばくが、乳がん、皮膚がん又は頭頸部がんの放射線治療によるものである、(7)から(9)のいずれかに記載の方法。
(11)被験体から取得された試料中の還元型グルタチオン及び酸化型グルタチオンの濃度を測定するための手段を含む、放射線治療又は画像下治療による放射線被ばく後の皮膚炎の発生の有無を予測するためのキット。
The present invention, which solves the above problems, comprises the following:
(1) A biomarker for predicting the occurrence or non-occurrence of dermatitis after radiation exposure due to radiation therapy or radiotherapy, the biomarker being glutathione or its concentration.
(2) The biomarker according to (1), wherein the biomarker is reduced glutathione concentration/oxidized glutathione concentration in red blood cells.
(3) The biomarker according to (1) or (2), wherein the radiation exposure is due to exposure to X-rays, electron beams, gamma rays, proton beams, heavy particle beams, or neutron beams.
(4) The biomarker according to any one of (1) to (3), wherein the radiation exposure is due to radiation therapy for breast cancer, skin cancer, head and neck cancer, rectal cancer, esophageal cancer, brain tumor, metastatic brain tumor, liver cancer, lung cancer, or malignant lymphoma.
(5) A method for measuring a biomarker, comprising:
A method for measuring any one of the biomarkers according to (1) to (4) in a sample obtained from a subject after exposure to radiation through radiotherapy or radiotherapy.
(6) A kit comprising a means for measuring the biomarker described in (1) to (4).
(7) A method for collecting data for predicting whether or not dermatitis will occur after radiation exposure due to radiation therapy or imaging-guided therapy, the method comprising measuring a glutathione concentration in a sample obtained from a subject after radiation exposure, and predicting a high possibility of dermatitis occurring if the reduced glutathione concentration/oxidized glutathione concentration of the sample is below a first standard value.
(8) The method according to (1), in which it is predicted that when the reduced glutathione concentration/oxidized glutathione concentration is equal to or lower than a first standard value and higher than a second standard value, there is a high possibility that transient dermatitis will occur, and when the reduced glutathione concentration/oxidized glutathione concentration is equal to or lower than the second standard value, there is a high possibility that persistent dermatitis will occur.
(9) The method according to (7) or (8), wherein the radiation exposure is due to exposure to X-rays or electron beams.
(10) The method according to any one of (7) to (9), wherein the radiation exposure is due to radiation therapy for breast cancer, skin cancer, or head and neck cancer.
(11) A kit for predicting the occurrence or non-occurrence of dermatitis after radiation exposure due to radiation therapy or radiotherapy, comprising a means for measuring the concentrations of reduced glutathione and oxidized glutathione in a sample obtained from a subject.

また、本発明は、下記より構成される発明にも関する。
[1]放射線治療又は画像下治療による放射線被ばく後に発生する皮膚炎の治療方法であって、
放射線被ばく後に被験体から取得された試料のグルタチオン濃度を測定すること、及び
皮膚炎が発生する可能性が高いと予測される場合に皮膚炎の予防的治療を開始することを含む、治療方法。
[2]試料の還元型グルタチオン濃度/酸化型グルタチオン濃度が第1の基準値以下である場合に皮膚炎が発生する可能性が高いと予測される、[1]に記載の治療方法。
[3]放射線治療が、X線又は電子線の照射を含む治療である、[1]又は[2]に記載の治療方法。
[4]放射線被ばくが、乳がん、皮膚がん又は頭頸部がん、直腸がん、食道がん、脳腫瘍、転移性脳腫瘍、肝臓がん、肺癌、悪性リンパ腫の放射線治療によるものである、[1]から[3]のいずれかに記載の治療方法。
The present invention also relates to the following inventions:
[1] A method for treating dermatitis occurring after radiation exposure due to radiation therapy or radiotherapy, comprising:
A method of treatment comprising: measuring a glutathione concentration in a sample obtained from a subject after radiation exposure; and initiating preventive treatment for dermatitis if it is predicted that the dermatitis is likely to occur.
[2] The treatment method described in [1], in which a high possibility of dermatitis occurring is predicted when the reduced glutathione concentration/oxidized glutathione concentration of the sample is below a first reference value.
[3] The method of treatment according to [1] or [2], wherein the radiation therapy is a treatment including irradiation with X-rays or electron beams.
[4] The therapeutic method according to any one of [1] to [3], wherein the radiation exposure is due to radiation therapy for breast cancer, skin cancer, head and neck cancer, rectal cancer, esophageal cancer, brain tumor, metastatic brain tumor, liver cancer, lung cancer, or malignant lymphoma.

本発明によれば、放射線被ばく後の皮膚炎の発生の有無と皮膚炎の程度をより簡便に予測するためのデータを収集する方法、それに関連するキット、マーカー、測定方法、及び治療方法が提供される。 The present invention provides a method for collecting data to more easily predict the occurrence and severity of dermatitis after radiation exposure, as well as related kits, markers, measurement methods, and treatment methods.

放射線被ばく後の皮膚障害の程度を示す図である。FIG. 1 is a diagram showing the degree of skin damage after radiation exposure. 放射線被ばく後の赤血球中のグルタチオン濃度を示す図である。*は各群の間に有意差があることを示す(P<0.05)。FIG. 1 shows glutathione concentrations in red blood cells after radiation exposure. * indicates significant differences between groups (P<0.05).

以下、本発明の実施の形態につき詳細に説明するが、以下に記載する構成要件の説明は本発明の実施形態の代表例であって、本発明の趣旨を逸脱しない範囲において適宜変形して実施することができる。 The following describes in detail the embodiments of the present invention. However, the following description of the components is a representative example of the embodiments of the present invention, and can be modified as appropriate without departing from the spirit of the present invention.

[第一実施形態]
本発明の第一実施形態にかかるバイオマーカーは、グルタチオン又はその濃度である。本実施形態のバイオマーカーは、放射線治療又は画像下治療による放射線被ばく後の皮膚炎の発生の有無を予測するために用いることができる。
[First embodiment]
The biomarker according to the first embodiment of the present invention is glutathione or its concentration. The biomarker according to the present embodiment can be used to predict the occurrence of dermatitis after radiation exposure due to radiation therapy or radiotherapy.

グルタチオンとは、グルタミン酸、システイン及びグリシンからなるトリペプチドであり、抗酸化物質の1つである。グルタチオンには還元型(GSH)と酸化型(GSSG)があり、酸化型グルタチオンは2分子の還元型グルタチオンがジスルフィド結合によってつながったものである。通常、98%以上が還元型グルタチオンとして存在している。また、グルタチオンは、細胞内に0.5~10mMという比較的高濃度で存在する。
グルタチオンは、総グルタチオン、還元型グルタチオン、酸化型グルタチオン、及びこれらの組み合わせを含み、いずれも放射線治療又は画像下治療による放射線被ばく後の皮膚炎の発生の有無を予測するためのバイオマーカーとすることができるが、予測の精度を考慮すれば、還元型グルタチオン濃度/酸化型グルタチオン濃度(酸化型グルタチオン濃度に対する還元型グルタチオン濃度の比)をバイオマーカーとすることが好ましい。
Glutathione is a tripeptide consisting of glutamic acid, cysteine, and glycine, and is an antioxidant. There are reduced (GSH) and oxidized (GSSG) glutathione, and oxidized glutathione is formed by two molecules of reduced glutathione linked by a disulfide bond. Usually, 98% or more exists as reduced glutathione. Glutathione exists in cells at a relatively high concentration of 0.5 to 10 mM.
Glutathione includes total glutathione, reduced glutathione, oxidized glutathione, and combinations thereof, any of which can be used as a biomarker for predicting the occurrence or nonoccurrence of dermatitis after radiation exposure due to radiation therapy or imaging-guided therapy. However, taking into consideration the accuracy of prediction, it is preferable to use reduced glutathione concentration/oxidized glutathione concentration (the ratio of reduced glutathione concentration to oxidized glutathione concentration) as the biomarker.

本実施形態において、バイオマーカーは、皮膚炎発生の予測が必要な被験体におけるものであればよく、被験体はヒトだけでなく、ウシ、ブタ、サル、モルモット、ウサギ、ラット、マウス、イヌ等の哺乳動物を被験体としてもよい。 In this embodiment, the biomarker may be any biomarker in a subject for which the onset of dermatitis needs to be predicted, and the subject may be not only a human, but also a mammal such as a cow, pig, monkey, guinea pig, rabbit, rat, mouse, or dog.

本実施形態において、被験体から取得された試料中のグルタチオン又はその濃度をバイオマーカーとするが、試料としては血液、尿、唾液、血清等を用いることができ、好適には血液である。 In this embodiment, glutathione or its concentration in a sample obtained from a subject is used as a biomarker, and the sample may be blood, urine, saliva, serum, etc., with blood being preferred.

本実施形態において、皮膚炎とは、放射線被ばくによって起こる皮膚の障害をいう。皮膚炎の症状としては、発赤、紅斑、腫脹、落屑、水疱、びらん、潰瘍、壊死、毛細血管拡張症等が挙げられる。また、皮膚炎には、皮膚炎の症状が現れた後に収束に向かう一過性皮膚炎と、症状が1か月以上持続する持続性皮膚炎とがある。 In this embodiment, dermatitis refers to skin damage caused by radiation exposure. Symptoms of dermatitis include redness, erythema, swelling, desquamation, blisters, erosion, ulcers, necrosis, telangiectasia, and the like. Dermatitis can be classified into transient dermatitis, which tends to resolve after the onset of dermatitis symptoms, and persistent dermatitis, in which symptoms persist for one month or more.

放射線とは一般的に電離放射線を意味し、X線、ガンマ線等の電磁放射線とアルファ線、ベータ線、電子線、陽子線、重粒子線、中性子線等の粒子放射線に分類される。
本発明の一実施形態においては、放射線治療や画像下治療に用いられる放射線が、特にX線、電子線、ガンマ線、陽子線、重粒子線、中性子線から選択される放射線であることが好ましい。
Radiation generally means ionizing radiation, and is classified into electromagnetic radiation such as X-rays and gamma rays, and particle radiation such as alpha rays, beta rays, electron beams, proton beams, heavy particle beams, and neutron beams.
In one embodiment of the present invention, the radiation used in radiotherapy or imaging-guided therapy is preferably radiation selected from X-rays, electron beams, gamma rays, proton beams, heavy particle beams, and neutron beams.

放射線治療とは、放射線又は放射性物質を用いた疾患の治療を意味する。放射線治療は、病巣への放射線照射を目的とするが、身体の外部から放射線を照射する外部照射が多く行われており、放射線が皮膚を通過することとなる。典型的な放射線治療では、1日あたり0.5~10単位(Grays)の範囲で行われる。 Radiation therapy refers to the treatment of disease using radiation or radioactive substances. Radiation therapy aims to irradiate the lesion with radiation, but external irradiation is often used, in which radiation is irradiated from outside the body, and the radiation passes through the skin. A typical radiation therapy is administered at a range of 0.5 to 10 units (Grays) per day.

放射線治療が行われる疾患としては、がんが挙げられる。放射線治療の対象となるがんであれば、その発生臓器、組織、進行度、原発性又は転移性、被験体の治療履歴等の特徴により特に限定されないが、例えば、乳がん(乳腺がん、乳扁平上皮がん等)、皮膚がん(基底細胞がん、有棘細胞がん(扁平上皮がん)、黒色腫カポジ肉腫、乳房パジェット病、乳房外パジェット病、付属器腫瘍、皮膚T細胞リンパ腫等)、頭頸部がん(口腔がん、咽頭がん、口頭がん、鼻・副鼻腔がん、唾液腺がん、甲状腺がん等)、肺がん(小細胞肺がん、非小細胞肺がん、肺腺がん、肺扁平上皮がん等)、食道がん、胃がん、肝がん、腎臓がん、結腸がん、大腸がん、膵臓がん、卵巣がん、子宮頸がん、子宮がん、前立腺がん、外陰部がん、が挙げられる。 Diseases for which radiation therapy is performed include cancer. Cancers that are the subject of radiation therapy are not particularly limited by their characteristics, such as the organ of origin, tissue, stage, primary or metastatic status, and the subject's treatment history, but examples include breast cancer (mammary adenocarcinoma, breast squamous cell carcinoma, etc.), skin cancer (basal cell carcinoma, squamous cell carcinoma (squamous cell carcinoma), melanoma Kaposi's sarcoma, breast Paget's disease, extramammary Paget's disease, adnexal tumor, cutaneous T-cell lymphoma, etc.), head and neck cancer (oral cancer, pharyngeal cancer, oral cancer, nasal and paranasal sinus cancer, salivary gland cancer, thyroid cancer, etc.), lung cancer (small cell lung cancer, non-small cell lung cancer, lung adenocarcinoma, lung squamous cell carcinoma, etc.), esophageal cancer, stomach cancer, liver cancer, kidney cancer, colon cancer, large intestine cancer, pancreatic cancer, ovarian cancer, cervical cancer, uterine cancer, prostate cancer, and vulvar cancer.

ここで、皮膚下の浅い位置に治療対象となる病変が存在するがんの場合、X線や電子線等の皮膚下の浅い位置で放射線量が最大となる比較的エネルギーの弱い放射線が使用される。これらの放射線の特徴として、病変に近い皮膚に対して強い放射線の影響が及ぶため、放射線治療後に放射線被ばくによる皮膚炎の発生が問題となりやすい。 When the cancer to be treated has a lesion located shallow under the skin, radiation with relatively low energy, such as X-rays or electron beams, is used, which produces the maximum radiation dose at a shallow location under the skin. A characteristic of these types of radiation is that they have a strong effect on the skin close to the lesion, which can easily lead to the problem of dermatitis caused by radiation exposure after radiation therapy.

したがって、本実施形態において、放射線が、X線又は電子線等の皮膚下の浅い位置で放射線量が最大となる放射線であり、放射線治療が、皮膚下の浅い位置に病原を有する乳がん、皮膚がん、頭頸部がん等のがんに対する放射線治療であることが好ましい。 Therefore, in this embodiment, it is preferable that the radiation is radiation such as X-rays or electron beams that produces a maximum radiation dose at a shallow position beneath the skin, and that the radiation therapy is radiation therapy for cancers such as breast cancer, skin cancer, and head and neck cancer that have pathogens at a shallow position beneath the skin.

画像下治療(Interventional Radiology(IVR))とは、放射線診断技術を治療に用いたものであり、例えばX線照射により取得した透視画像を見ながら行う治療を意味する。このIVRは、従来においては開腹手術をせざるを得なかった治療に対しても、非侵襲的に病巣部に対して治療を行うことができるというメリットがあるため、急速に普及している。
一方、IVRは、身体の外部からX線を照射しながら行われるため、X線が患者の皮膚を通過することとなる。
Interventional Radiology (IVR) is a treatment that uses radiological diagnostic technology, for example, treatment performed while viewing fluoroscopic images obtained by X-ray irradiation. IVR has the advantage of being able to treat lesions non-invasively, even in treatments that previously required open surgery, and is therefore rapidly becoming more widespread.
On the other hand, IVR is performed while irradiating the body with X-rays from outside, so the X-rays pass through the patient's skin.

画像下治療は、その対象疾患の発生臓器、組織分類、進行度等の特徴により特に限定されないが、例えば、血管内や管組織にカテーテルやステント等の医療器具を挿入し、塞栓療法、化学療法、ドレナージ療法、ステント留置療法等を伴う治療、あるいは非血管病変組織に治療用針を挿入し、病理組織採取、波焼灼療法、凍結療法動脈塞栓療法等を伴う治療が挙げられる。 Image-guided treatment is not particularly limited by the characteristics of the target disease, such as the organ where it originates, tissue classification, and progression, but examples include treatments involving the insertion of medical devices such as catheters and stents into blood vessels or ductal tissue, followed by embolization therapy, chemotherapy, drainage therapy, and stent placement therapy, as well as treatments involving the insertion of treatment needles into non-vascular lesion tissue, followed by pathological tissue sampling, wave ablation therapy, cryotherapy, and arterial embolization therapy.

画像下治療で用いる60~120kVpのX線は皮膚下の浅い位置で放射線量が最大となるため、治療後の放射線被ばくによる皮膚炎の発生が問題となりやすい。したがって、本実施形態において、画像下治療は、心臓疾患の治療又は検査、頭頸部の疾患の治療又は検査、あるいは肝臓疾患の治療又は検査に伴うものであることが好ましい。 The 60-120 kVp X-rays used in image-guided therapy have a maximum radiation dose at a shallow position under the skin, so the occurrence of dermatitis due to radiation exposure after treatment is likely to be a problem. Therefore, in this embodiment, image-guided therapy is preferably associated with treatment or examination of heart disease, treatment or examination of head and neck disease, or treatment or examination of liver disease.

[第二実施形態]
本発明の第二実施形態にかかる方法は、放射線治療又は画像下治療による放射線被ばく後に被験体から取得された試料中の、第一実施形態にかかるいずれかのバイオマーカーを測定することを含む、方法である。
[Second embodiment]
A method according to a second embodiment of the present invention is a method comprising measuring any of the biomarkers according to the first embodiment in a sample obtained from a subject after exposure to radiation by radiation therapy or imaging-guided therapy.

本実施形態の方法により、バイオマーカーであるグルタチオンの濃度を取得することができる。ここで、グルタチオンとは、総グルタチオン、還元型グルタチオン、酸化型グルタチオン、及びこれらの組み合わせを含む。本実施形態の方法は、これらのいずれかのグルタチオンの濃度の測定を含むが、放射線治療又は画像下治療による放射線被ばく後の皮膚炎の発生の有無の予測の精度を考慮すれば、還元型グルタチオン濃度/酸化型グルタチオン濃度(酸化型グルタチオン濃度に対する還元型グルタチオン濃度の比)の測定を含む方法であることが好ましい。また、本実施形態において、グルタチオン濃度は、絶対濃度であっても、あるいは、絶対濃度と相関して各被験体における絶対濃度の比較ができる値であってもよく、相対濃度、体積あたり重量等であってもよい。 The method of this embodiment can obtain the concentration of glutathione, which is a biomarker. Here, glutathione includes total glutathione, reduced glutathione, oxidized glutathione, and combinations thereof. The method of this embodiment includes measuring the concentration of any of these glutathiones, but considering the accuracy of predicting the occurrence or non-occurrence of dermatitis after radiation exposure due to radiation therapy or imaging-guided therapy, it is preferable that the method includes measuring the reduced glutathione concentration/oxidized glutathione concentration (the ratio of the reduced glutathione concentration to the oxidized glutathione concentration). In this embodiment, the glutathione concentration may be an absolute concentration, or a value that correlates with the absolute concentration and allows comparison of the absolute concentration in each subject, or it may be a relative concentration, weight per volume, etc.

本実施形態にかかる一の方法において、グルタチオン濃度は、被験体から採取した血液を遠心分離し、下層部である赤血球を採取し、溶血させ、GSSG/GSH Quantification kit(同仁化学研究所)等の測定キットを用いて、サンプル中の総グルタチオン濃度と酸化型グルタチオン濃度を定量することで測定され、還元型グルタチオン濃度は総グルタチオン濃度と酸化型グルタチオン濃度との差から求められる。測定キットには、例えば酵素、補酵素、バッファー、基質、内部標準物質等が含まれる。 In one method according to this embodiment, the glutathione concentration is measured by centrifuging blood collected from a subject, collecting the red blood cells, which are the lower layer, and hemolyzing them, and quantifying the total glutathione concentration and oxidized glutathione concentration in the sample using a measurement kit such as a GSSG/GSH Quantification kit (Dojindo Laboratories), and the reduced glutathione concentration is calculated from the difference between the total glutathione concentration and the oxidized glutathione concentration. The measurement kit includes, for example, an enzyme, a coenzyme, a buffer, a substrate, an internal standard, etc.

また、バイオマーカーの測定は、被験体から採取した試料を用い、他の公知の方法により測定してもよい。例えば、バイオマーカーに特異的な抗体を用い、直接競合法、間接競合法、サンドイッチ法等のELISA(enzyme-linked immunosorbent assay)法、RIA(radioimmunoassay)法、フローサイトメトリー法、イムノクロマトグラィー等の周知の方法によって、バイオマーカーを測定してもよい。 Biomarkers may also be measured by other known methods using samples collected from subjects. For example, biomarkers may be measured by known methods such as direct competitive method, indirect competitive method, sandwich method, or other enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) method, RIA (radioimmunoassay) method, flow cytometry method, immunochromatography, etc., using antibodies specific to the biomarkers.

本実施形態において、被験者の血液の採取日は、放射線被ばく後の皮膚炎の発生の有無を予測できるレベルのグルタチオン濃度の測定が可能な範囲で限定されず、その被験体の動物種、状態、放射性治療の強度や時間等の種々の条件を考慮して当業者が決定することができるが、精度と簡便性を考慮すれば、被ばく後1~14日に採取するのが好ましく、2~10日がより好ましく、2~6日がさらに好ましい。 In this embodiment, the date of blood collection from the subject is not limited to a range in which glutathione concentration can be measured at a level that can predict the occurrence of dermatitis after radiation exposure, and can be determined by a person skilled in the art taking into consideration various conditions such as the animal species and condition of the subject, and the intensity and duration of radiotherapy. However, taking into consideration accuracy and simplicity, it is preferable to collect blood 1 to 14 days after exposure, more preferably 2 to 10 days, and even more preferably 2 to 6 days.

本実施形態において、バイオマーカーの測定の対象となる被験体は、皮膚炎発生の予測が必要な被験体であればよく、ヒト以外にもウシ、ブタ、サル、モルモット、ウサギ、ラット、マウス、イヌ等の哺乳動物を被験体としてもよい。 In this embodiment, the subject for which the biomarkers are measured may be any subject for which the onset of dermatitis needs to be predicted, and may be any mammal other than humans, such as cows, pigs, monkeys, guinea pigs, rabbits, rats, mice, and dogs.

[第三実施形態]
第一実施形態にかかるバイオマーカーの濃度を第二実施形態にかかる測定方法により測定し、放射線治療又は画像下治療による放射線被ばく後の皮膚炎の発生の有無を予測するためのデータを収集することができる。
[Third embodiment]
The concentration of the biomarker according to the first embodiment can be measured by the measurement method according to the second embodiment, and data for predicting the occurrence or non-occurrence of dermatitis after radiation exposure due to radiation therapy or radiotherapy can be collected.

すなわち、本発明の第三実施形態にかかる方法は、放射線治療又は画像下治療による放射線被ばく後の皮膚炎の発生の有無を予測するためのデータを収集する方法であって、放射線被ばく後に被験体から取得された試料のグルタチオン濃度を測定することを含み、試料の還元型グルタチオン濃度/酸化型グルタチオン濃度が第1の基準値以下である場合に皮膚炎が発生する可能性が高いと予測される、方法である。 That is, the method according to the third embodiment of the present invention is a method for collecting data for predicting the occurrence or non-occurrence of dermatitis after radiation exposure due to radiation therapy or imaging-guided therapy, which includes measuring the glutathione concentration of a sample obtained from a subject after radiation exposure, and predicts the high possibility of dermatitis occurring when the reduced glutathione concentration/oxidized glutathione concentration of the sample is equal to or lower than a first reference value.

本実施形態かかる一の方法においては、皮膚炎発生の有無を予測するために、被験体の赤血球中のグルタチオン濃度、特に赤血球中の還元型グルタチオン濃度/酸化型グルタチオン濃度(酸化型グルタチオン濃度に対する還元型グルタチオン濃度の割合)を指標として用いるが、かかる指標は、被験体から血液を採取し、例えば第二実施形態にて説明したように測定キットを用いて測定可能である。したがって、本実施形態の方法は、(1)工程が簡便、(2)特殊な装置を必要としない、(3)被験体の侵襲性が低い、(4)結果が出るまでの時間が短い、という特徴を有する。 In one such method of the present embodiment, the glutathione concentration in the red blood cells of a subject, in particular the reduced glutathione concentration/oxidized glutathione concentration in the red blood cells (the ratio of reduced glutathione concentration to oxidized glutathione concentration) is used as an indicator to predict the occurrence of dermatitis. Such an indicator can be measured by taking blood from the subject and using a measurement kit, for example, as described in the second embodiment. Therefore, the method of the present embodiment has the following characteristics: (1) the process is simple, (2) no special equipment is required, (3) it is less invasive to the subject, and (4) it takes a short time to obtain results.

例えば、所定の放射線治療又は画像下治療を受けた被験体集団について、被ばく後にバイオマーカーを測定する。その後、放射線被ばく後の皮膚炎の発生状況及びその程度に基づいて分類し、第1の基準値を決定することができる。例えば、第1の基準値は、放射線被ばく後に軽度の皮膚炎又は一過性皮膚炎が発生した集団における、赤血球中の還元型グルタチオン濃度/酸化型グルタチオン濃度の中央値又は平均値である。あるいは、第1の基準値は、放射線被ばく後に皮膚炎が発生した集団と発生しなかった集団におけるバイオマーカーに基づいて、所望の精度でこれらの集団を判別できる値を当業者が適宜決定してもよい。
別の実施形態において、第1の基準値は、赤血球中の還元型グルタチオン濃度/酸化型グルタチオン濃度の正常値の90%、85%、80%、75%あるいは70%の値であってもよく、所望の精度でこれらの集団を判別できる値を当業者が適宜決定することができる。
For example, a group of subjects who have undergone a certain radiation therapy or imaging-guided therapy is measured for biomarkers after exposure. Then, the subjects can be classified based on the occurrence and severity of dermatitis after radiation exposure, and a first reference value can be determined. For example, the first reference value is the median or average of the reduced glutathione concentration/oxidized glutathione concentration in red blood cells in a group that has developed mild dermatitis or transient dermatitis after radiation exposure. Alternatively, the first reference value may be a value that can distinguish between a group that has developed dermatitis after radiation exposure and a group that has not developed dermatitis with a desired accuracy based on biomarkers in these groups.
In another embodiment, the first reference value may be 90%, 85%, 80%, 75% or 70% of the normal value of reduced glutathione concentration/oxidized glutathione concentration in red blood cells, and a value that allows distinction between these populations with the desired accuracy can be appropriately determined by a person skilled in the art.

また、本実施形態にかかる一の方法では、赤血球中の還元型グルタチオン濃度/酸化型グルタチオン濃度が、第1の基準値以下であって第2の基準値より高い場合に一過性皮膚炎が発生する可能性が高く、第2の基準値以下である場合に持続性皮膚炎が発生する可能性が高いと予測される。 In addition, in one method according to the present embodiment, it is predicted that when the reduced glutathione concentration/oxidized glutathione concentration in red blood cells is equal to or lower than a first reference value and higher than a second reference value, there is a high possibility that transient dermatitis will occur, and when it is equal to or lower than the second reference value, there is a high possibility that persistent dermatitis will occur.

例えば、所定の放射線治療又は画像下治療を受けた被験体集団について、被ばく後に赤血球中のバイオマーカーを測定する。その後、放射線被ばく後の皮膚炎の発生状況及びその程度を調べ、皮膚炎が発生しなかった集団と、一過性皮膚炎が発生した集団と、持続性皮膚炎が発生した集団とに分類し、第1及び第2の基準値を決定することができる。例えば、第2の基準値は、放射線被ばく後に持続性皮膚炎が発生した集団における、赤血球中の還元型グルタチオン濃度/酸化型グルタチオン濃度の中央値又は平均値である。あるいは、第1及び第2の基準値は、放射線被ばく後に一過性皮膚炎が発生した集団と発生しなかった集団におけるバイオマーカー濃度、及び持続性皮膚炎が発生した集団と発生しなかった集団におけるバイオマーカー濃度に基づいて、所望の精度で、皮膚炎が発生しない集団、一過性皮膚炎が発生した集団、持続性皮膚炎が発生した集団を判別できる値を当業者が適宜決定してもよい。 For example, a biomarker in red blood cells is measured after exposure for a group of subjects who have undergone a specific radiation therapy or imaging therapy. The occurrence and severity of dermatitis after radiation exposure can then be examined, and the group can be classified into a group in which dermatitis did not occur, a group in which transient dermatitis occurred, and a group in which persistent dermatitis occurred, and the first and second reference values can be determined. For example, the second reference value is the median or average of the reduced glutathione concentration/oxidized glutathione concentration in red blood cells in a group in which persistent dermatitis occurred after radiation exposure. Alternatively, the first and second reference values may be appropriately determined by a person skilled in the art as values that can distinguish, with a desired accuracy, a group in which dermatitis did not occur, a group in which transient dermatitis occurred, and a group in which persistent dermatitis occurred, based on the biomarker concentrations in the groups in which transient dermatitis occurred and those in which persistent dermatitis did not occur after radiation exposure, and the biomarker concentrations in the groups in which persistent dermatitis occurred and those in which persistent dermatitis did not occur.

別の実施形態において、第2の基準値は、赤血球中の還元型グルタチオン濃度/酸化型グルタチオン濃度の正常値の65%、60%、55%あるいは50%の値であってもよく、所望の精度でこれらの集団を判別できる値を当業者が適宜決定することができる。 In another embodiment, the second reference value may be 65%, 60%, 55% or 50% of the normal value of the reduced glutathione concentration/oxidized glutathione concentration in red blood cells, and a value that allows distinction between these populations with the desired accuracy can be appropriately determined by a person skilled in the art.

ここで、正常値とは、被験体の被ばく前の数値である。あるいは、正常値は、放射線被ばくしていない集団(放射線治療又は画像下治療を受ける前の被験体集団、あるいは健常被験体集団)における数値の中央値又は平均値を意味する。 Here, the normal value refers to the value before the subject is exposed to radiation. Alternatively, the normal value refers to the median or average value of the values in a population that has not been exposed to radiation (a population of subjects before undergoing radiation therapy or imaging therapy, or a population of healthy subjects).

ここで、皮膚炎の発生の有無の基準となる皮膚の状態は、当業者が発生を予測したい皮膚炎のレベルに合わせて適宜設定することができる。 Here, the skin condition that serves as the criterion for the occurrence or nonoccurrence of dermatitis can be appropriately set according to the level of dermatitis that a person skilled in the art wishes to predict.

被ばく後の赤血球中のバイオマーカーの測定のための血液の採取日は、放射線被ばく後の皮膚炎の発生の有無を予測できるレベルのグルタチオン濃度の測定が可能な範囲であれば特に限定されず、その被験体の動物種、状態、放射性治療の強度や時間等の種々の条件を考慮して当業者が決定することができるが、精度と簡便性を考慮すれば、被ばく後1~14日に採取するのが好ましく、2~10日がより好ましく、2~6日がさらに好ましい。 The date of blood collection for measuring biomarkers in red blood cells after exposure is not particularly limited as long as it is within a range that allows measurement of glutathione concentrations at a level that can predict the occurrence of dermatitis after radiation exposure, and can be determined by a person skilled in the art taking into consideration various conditions such as the animal species and condition of the subject, and the intensity and duration of radiotherapy. However, taking into consideration accuracy and simplicity, it is preferable to collect blood 1 to 14 days after exposure, more preferably 2 to 10 days, and even more preferably 2 to 6 days.

本実施形態において、放射線被ばく後の皮膚炎の発生の有無の予測の精度を考慮すると、第1又は第2の基準値を決定する際に用いる被験体集団の所定の放射線治療又は画像下治療は、予測対象の被験体が受ける治療と同じ条件での放射線治療又は画像下治療であることが好ましい。 In this embodiment, taking into consideration the accuracy of predicting the occurrence or nonoccurrence of dermatitis after radiation exposure, it is preferable that the predetermined radiation therapy or imaging-guided treatment for the subject group used when determining the first or second reference value is radiation therapy or imaging-guided treatment under the same conditions as the treatment that the subject to be predicted will receive.

グルタチオンは全ての哺乳動物の細胞に存在しており、マウスとヒトの赤血球中のグルタチオン濃度は同程度であることが知られている(The Journal of Toxicological Sciences, Vol. 28, No. 5, 455-469, 2003及びFree Radic Biol Med. 2013 Dec;65:742-749)。また、グルタチオン合成や代謝にかかわる遺伝子の多くが、マウスとヒトで共通していることも知られている(https://www.genome.jp/dbget-bin/www_bget?hsa00480及びhttps://www.genome.jp/dbget-bin/www_bget?mmu00480)。 Glutathione is present in all mammalian cells, and it is known that the glutathione concentrations in mouse and human red blood cells are similar (The Journal of Toxicological Sciences, Vol. 28, No. 5, 455-469, 2003 and Free Radic Biol Med. 2013 Dec;65:742-749). It is also known that many of the genes involved in glutathione synthesis and metabolism are common between mice and humans (https://www.genome.jp/dbget-bin/www_bget?hsa00480 and https://www.genome.jp/dbget-bin/www_bget?mmu00480).

[第四実施形態]
本発明の第四実施形態にかかるキットは、本発明の一実施形態にかかるバイオマーカーを測定するための手段を含むキットである。
[Fourth embodiment]
The kit according to the fourth embodiment of the present invention is a kit including a means for measuring a biomarker according to one embodiment of the present invention.

本実施形態のキットを用いることで、グルタチオンの濃度を測定することができる。また、本実施形態のキットは、例えば本願第三実施形態にかかる放射線治療又は画像下治療による放射線被ばく後の皮膚炎の発生の有無を予測するためのデータの収集、及びこれに基づく放射線被ばく後の皮膚炎の発生の有無の予測に用いることができる。 By using the kit of this embodiment, the concentration of glutathione can be measured. In addition, the kit of this embodiment can be used to collect data for predicting the occurrence or non-occurrence of dermatitis after radiation exposure, for example, due to radiation therapy or imaging-guided therapy according to the third embodiment of the present application, and to predict the occurrence or non-occurrence of dermatitis after radiation exposure based on the collected data.

本実施形態にかかる別のキットは、赤血球中の還元型グルタチオン及び酸化型グルタチオンの濃度を測定するための手段を含む、放射線治療又は画像下治療による放射線被ばく後の皮膚炎の発生の有無を予測するためのキットである。 Another kit according to this embodiment is a kit for predicting the occurrence of dermatitis after radiation exposure due to radiation therapy or imaging-guided therapy, which includes a means for measuring the concentrations of reduced glutathione and oxidized glutathione in red blood cells.

本実施形態のキットを用いることで、被験体の赤血球中の還元型グルタチオン及び酸化型グルタチオンの濃度を測定し、放射線治療又は画像下治療によって放射線被ばくした被験体に皮膚炎が発生するかどうかを予測することができる。 By using the kit of this embodiment, the concentrations of reduced glutathione and oxidized glutathione in the red blood cells of a subject can be measured, and it is possible to predict whether or not a subject exposed to radiation through radiation therapy or imaging-guided therapy will develop dermatitis.

赤血球中の還元型グルタチオン及び酸化型グルタチオンの濃度を測定するための手段としては、例えば酵素、補酵素、バッファー、基質、内部標準物質等を含む測定キットを挙げることができるが、特に、酵素、補酵素及び内部標準物質が好ましい。 Means for measuring the concentrations of reduced glutathione and oxidized glutathione in red blood cells include, for example, a measurement kit containing an enzyme, a coenzyme, a buffer, a substrate, an internal standard substance, etc., with enzymes, coenzymes, and an internal standard substance being particularly preferred.

あるいは、当該手段は、バイオマーカーに特異的な抗体及びその可視化試薬であってもよく、例えば直接競合法、間接競合法、サンドイッチ法等のELISA(enzyme-linked immunosorbent assay)法、RIA(radioimmunoassay)法、フローサイトメトリー法、イムノクロマトグラィー等の周知の方法を行うための試薬を含んでもよい。 Alternatively, the means may be an antibody specific to the biomarker and a visualization reagent thereof, and may include reagents for performing well-known methods such as direct competitive method, indirect competitive method, sandwich method, ELISA (enzyme-linked immunosorbent assay) method, RIA (radioimmunoassay) method, flow cytometry method, immunochromatography, etc.

また、本実施形態におけるキットは、赤血球中の還元型グルタチオン濃度/酸化型グルタチオン濃度が第1の基準値以下である場合に皮膚炎が発生する可能性が高いと予測されることが記載された指示書、あるいは、赤血球中の還元型グルタチオン濃度/酸化型グルタチオン濃度が、第1の基準値以下であって第2の基準値より高い場合に一過性皮膚炎が発生する可能性が高く、第2の基準値以下である場合に持続性皮膚炎が発生する可能性が高いと予測されることが記載された指示書をさらに含んでもよい。 The kit in this embodiment may further include instructions stating that it is predicted that there is a high possibility of dermatitis occurring when the reduced glutathione concentration/oxidized glutathione concentration in red blood cells is equal to or lower than a first reference value, or instructions stating that it is predicted that there is a high possibility of transient dermatitis occurring when the reduced glutathione concentration/oxidized glutathione concentration in red blood cells is equal to or lower than the first reference value and higher than a second reference value, and that there is a high possibility of persistent dermatitis occurring when the reduced glutathione concentration/oxidized glutathione concentration in red blood cells is equal to or lower than the second reference value.

[第五実施形態]
本発明の第五実施形態にかかる治療方法は、放射線治療又は画像下治療による放射線被ばく後に発生する皮膚炎の治療方法であって、放射線被ばく後に被験体から取得された試料のグルタチオン濃度を測定すること、及び皮膚炎が発生すると予測される場合に皮膚炎の予防的治療を開始することを含む、治療方法である。
[Fifth embodiment]
A treatment method according to a fifth embodiment of the present invention is a treatment method for dermatitis occurring after radiation exposure due to radiation therapy or imaging-guided therapy, comprising measuring a glutathione concentration in a sample obtained from a subject after radiation exposure, and initiating preventive treatment for dermatitis when it is predicted that dermatitis will occur.

本実施形態の治療方法によると、本願にかかる第一~第四実施形態のバイオマーカー、バイオマーカーの濃度を測定する方法、データを収集する方法、及び/又はキットを用いて放射線被ばく後に皮膚炎が発生すると予測される場合に、皮膚炎発生前に予防的治療を開始することができ、皮膚炎を軽減することができる。 According to the treatment method of this embodiment, when dermatitis is predicted to occur after radiation exposure using the biomarkers, methods for measuring biomarker concentrations, methods for collecting data, and/or kits of the first to fourth embodiments of the present application, preventive treatment can be started before dermatitis occurs, thereby reducing dermatitis.

本実施形態において、放射線被ばく後に皮膚炎が発生すると予測され、治療の対象となる動物は、皮膚炎の予防的治療が必要な被験体であればよく、ヒトだけでなく、ウシ、ブタ、サル、モルモット、ウサギ、ラット、マウス、イヌ等の哺乳動物を被験体としてもよい。 In this embodiment, the animal that is predicted to develop dermatitis after radiation exposure and is the subject of treatment may be any subject that requires preventive treatment for dermatitis, and may be not only humans, but also mammals such as cows, pigs, monkeys, guinea pigs, rabbits, rats, mice, and dogs.

予防的治療としては、ヘパリン類似物質クリーム、保湿クリーム、抗酸化薬、抗炎症薬等を用いた治療が挙げられる。 Preventive treatments include heparinoid creams, moisturizing creams, antioxidants, and anti-inflammatory drugs.

以下に実施例を示して本発明を更に具体的に説明するが、これらの実施例により本発明の解釈が限定されるものではない。 The present invention will be explained in more detail below with reference to examples, but the interpretation of the present invention is not limited to these examples.

[実施例1]放射線被ばく後の皮膚炎発生の有無及び程度の確認
1.マウスへのX線照射
6週齢のオスのC57BL/6Jマウスを小動物実験用簡易吸入麻酔装置(NARCOBIT-E;夏目製作所)に入れ、セボフルラン(富士フイルム和光純薬)を用いて麻酔した。ガス濃度は、導入5%、維持3%。眠らせたマウスを照射専用容器に入れ、X線照射装置(MBR-1520R-3;日立パワーソリューションズ)にて、線量率0.69Gy/分、焦点~テーブル面距離550mm、管電圧150kV、電流20mA、フィルター:0.2mmCu及び0.5mmAlの条件下で、それぞれ線量が5、20及び30Gyとなるようにマウスの右脚のみにX線を照射した。
[Example 1] Confirmation of the occurrence and degree of dermatitis after radiation exposure 1. X-ray irradiation of mice Six-week-old male C57BL/6J mice were placed in a simple inhalation anesthesia device for small animal experiments (NARCOBIT-E; Natsume Seisakusho) and anesthetized with sevoflurane (Fujifilm Wako Pure Chemicals). Gas concentration was 5% for induction and 3% for maintenance. The sleeping mice were placed in a container for irradiation, and X-rays were irradiated only to the right leg of the mouse using an X-ray irradiation device (MBR-1520R-3; Hitachi Power Solutions) under the following conditions: dose rate 0.69 Gy/min, focal point-table surface distance 550 mm, tube voltage 150 kV, current 20 mA, filter: 0.2 mm Cu and 0.5 mm Al, so that the doses were 5, 20, and 30 Gy, respectively.

2.皮膚炎発生の観察
マウスの照射部皮膚の状態をX線照射後80日まで肉眼で観察した。皮膚の状態の評価は以下の基準で行い、3回の評点の平均値を皮膚反応スコアとした。
・皮膚反応の評価基準
(評点) (皮膚反応の程度)
0 変化なし
0.5 50/50通常との違い、疑いがある
0.75 明確であるがわずかな異常
1 赤みを伴う明確な異常
1.25 重度の発赤及び/又は白い鱗屑及び/又は腫れ
1.5 1つの非常に小さな領域では、鱗状又は痂皮状の外観
1.75 小さな領域での湿潤落屑(1.5より明確)
2 広い領域の損傷(湿性)
2.5 明確な湿った滲出液を伴う皮膚の広い領域の損傷
3 湿った滲出液を伴った皮膚の大部分の損傷
3.5 四肢の完全な湿潤分解-身体にしばしば付いている
2. Observation of Dermatitis The condition of the irradiated skin of the mice was observed with the naked eye for 80 days after X-ray irradiation. The skin condition was evaluated according to the following criteria, and the average of three scores was taken as the skin reaction score.
・Skin reaction evaluation criteria (score) (degree of skin reaction)
0 No change 0.5 50/50 difference from normal, suspicious 0.75 Definite but slight abnormality 1 Definite abnormality with redness 1.25 Severe redness and/or white scales and/or swelling 1.5 Scaly or crusty appearance in one very small area 1.75 Small area of moist desquamation (more distinct than 1.5)
2. Widespread damage (wet)
2.5 Damage to large areas of skin with clear moist exudate3 Damage to large areas of skin with moist exudate3.5 Complete moist decomposition of limbs - often attached to body

3.結果
結果を図1に示す。
図1から、5GyのX線照射を受けたマウスでは、紅斑が全く認められなかったのに対し、20及び30GyのX線照射を受けたマウスでは、照射後14日で紅斑が認められた。
20GyのX線照射を受けたマウスでは、照射後20日以降で症状が収束に向かったのに対し、30GyのX線照射を受けたマウスでは、照射後24日で強い紅斑あるいはわずかな浮腫、痂皮が認められ、その後、照射後80日の時点で症状が持続していた。
以上より、20GyのX線照射を受けた場合に一過性皮膚炎が発生し、30GyのX線照射を受けた場合に持続性皮膚炎が発生することが明らかとなった。
3. Results The results are shown in Figure 1.
As can be seen from FIG. 1, no erythema was observed in the mice irradiated with 5 Gy of X-rays, whereas erythema was observed 14 days after irradiation in the mice irradiated with 20 and 30 Gy of X-rays.
In mice that received 20 Gy of X-rays, symptoms began to subside after 20 days from irradiation, whereas in mice that received 30 Gy of X-rays, severe erythema or slight edema and crusts were observed 24 days after irradiation, and symptoms persisted up to 80 days after irradiation.
From the above, it was revealed that transient dermatitis occurred when exposed to 20 Gy of X-rays, and persistent dermatitis occurred when exposed to 30 Gy of X-rays.

[実施例2]放射線被ばく後のグルタチオン濃度の測定
1.マウスへのX線照射
実施例1と同様の方法でマウスにX線照射を行った。処理群として20Gy及び30GyのX線照射を行い、対照群としてX線を照射していないマウスを用意した。
[Example 2] Measurement of glutathione concentration after radiation exposure 1. X-ray irradiation of mice Mice were irradiated with X-rays in the same manner as in Example 1. Mice were irradiated with 20 Gy and 30 Gy of X-rays as treatment groups, and mice that were not irradiated with X-rays were prepared as a control group.

2.グルタチオン濃度の測定
各群のマウスを小動物実験用簡易吸入麻酔装置に入れ、セボフルランを用いて麻酔した
。ガス濃度は、導入5%、維持3%。X線照射後2日及び6日に、眠らせたマウスの右頬
にアニマルランセットを穿刺し、1.5mLのマイクロチューブに採血した。必要採血量
は50μL。抗凝固剤として2000Uのヘパリンナトリウム20μLを使用し、採血後
は氷中保存した。採取した全血を、予め4℃に冷却した冷却遠心機にて、4℃、1000
Gで10分間遠心した。遠心終了冷却後、上層部の血漿をマイクロピペットで吸引して廃
棄した。新しい1.5mLのマイクロチューブに5%の5-Sulfosalicyli
c Acid Dihydrate(SSA;東京化成工業)200μLを入れ、下層部
である赤血球を50μL加えて直ちにボルテックスで攪拌した。溶血していることを確認
し、冷却遠心機にて、4℃、3000Gで10分間遠心した。遠心終了冷却後、上清をマ
イクロピペットで100μL吸引し、新しい1.5mLのマイクロチューブに分取した。
そこへmilliQを100μL 加えて攪拌し、-80℃で保存、これをサンプルとし
た。
次に、GSSG/GSH Quantification kit(同仁化学研究所)
を用いて、サンプル中の総グルタチオンとGSSG(酸化型グルタチオン)を定量し、そ
の差からGSH(還元型グルタチオン)量を求めた。具体的手順は次の通り。解凍した保
存サンプルをmilliQで10倍希釈し、96wellプレート(FALCON)に4
0μLずつ、各2well入れ、一方を総グルタチオン用、もう一方をGSSG用とした
。GSSG用のwellにのみMasking solution(キット同椢)1μL
を添加したのち、全てのwell にBuffer solution(キット同椢)
60μLを加え、37℃で1時間インキュベートした。その後、全てのwellにSub
strate working solution(キット同椢)60μLを加え、続け
てEnzyme/coenzyme working solution(キット同椢)
60μLを加えた。室温にて10 分間静置したのち、マイクロプレートリーダー(V
arioskan LUX;Thermo Fisher)で412nmのフィルターを
使い、それぞれの吸光度を測定した。測定後、標準曲線によって吸光度から濃度に変換し
、GSH量を以下の式により求めた。
GSH量=総グルタチオン量-(GSSG量×2)
2. Measurement of glutathione concentration Each group of mice was placed in a simple inhalation anesthesia device for small animal experiments and anesthetized with sevoflurane. The gas concentration was 5% for induction and 3% for maintenance. On the 2nd and 6th days after X-ray irradiation, the right cheek of the sleeping mice was punctured with an animal lancet and blood was collected into a 1.5 mL microtube. The required blood volume was 50 μL. 20 μL of 2000 U of heparin sodium was used as an anticoagulant, and the blood was stored on ice after collection. The collected whole blood was centrifuged at 4°C for 1000 μL in a refrigerated centrifuge that had been cooled to 4°C in advance.
The mixture was centrifuged at 100 G for 10 minutes. After the centrifugation was completed and the mixture was cooled, the upper layer of plasma was aspirated with a micropipette and discarded.
200 μL of c Acid Dihydrate (SSA; Tokyo Chemical Industry Co., Ltd.) was added, and 50 μL of the lower layer of red blood cells was added and immediately stirred with a vortex. After confirming that the red blood cells had been hemolyzed, the cells were centrifuged at 4°C and 3000G for 10 minutes in a refrigerated centrifuge. After cooling after centrifugation, 100 μL of the supernatant was aspirated with a micropipette and dispensed into a new 1.5 mL microtube.
100 μL of MilliQ was added thereto and stirred, and the mixture was stored at −80 ° C. as a sample.
Next, GSSG/GSH Quantification kit (Dojindo Laboratories)
The total glutathione and GSSG (oxidized glutathione) in the sample were quantified using the method described above, and the amount of GSH (reduced glutathione) was calculated from the difference. The specific procedure is as follows: The thawed preserved sample was diluted 10-fold with milliQ and plated on a 96-well plate (FALCON) in 4 wells.
One well was for total glutathione, and the other was for GSSG. 1 μL of Masking solution (included in the kit) was added to the well for GSSG only.
After adding Buffer solution (included in the kit) to all wells,
Then, 60 μL of the solution was added to each well and incubated at 37° C. for 1 hour.
Add 60 μL of standard working solution (included in the kit), followed by enzyme/coenzyme working solution (included in the kit).
After leaving the mixture at room temperature for 10 minutes, the plate was read using a microplate reader (V
The absorbance of each was measured using a 412 nm filter with an Arioskan LUX (Thermo Fisher). After the measurement, the absorbance was converted to a concentration using a standard curve, and the amount of GSH was calculated using the following formula.
GSH amount = total glutathione amount - (GSSG amount x 2)

また、指標としての有用性を比較するために、以下の方法に基づいて血液抗酸化能を測定した。
(ステップ1 i-STrap(反応))
Reaction tube(キット同椢)に、常温に戻したSolution A(tert-butyl hydroperoxide(tBuOOH);キット同椢)を各20μL分注し、生理食塩水を100μL加えてボルテックスで攪拌したのち、サンプル(全血)を100μL加え、さらにボルテックスで攪拌した。そこへ、常温に戻したSolution B(2-diphenylphosphinoyl-2-methyl-3,4-dihydro-2H-pyrrole N-oxide(DPhPMPO);キット同椢)を20μLずつ、各チューブ10 秒間隔で加え、ボルテックスで攪拌した。全てのチューブに添加後、さらにボルテックスで攪拌した。1本目のチューブへのSolution B添加時点から30分間、常温で静置した。
In addition, to compare the usefulness as an index, blood antioxidant capacity was measured according to the following method.
(Step 1 i-STrap (reaction))
20 μL of Solution A (tert-butyl hydroperoxide (tBuOOH); kit included) that had been brought to room temperature was dispensed into each reaction tube (kit included), 100 μL of physiological saline was added, and the mixture was stirred with a vortex. Then, 100 μL of the sample (whole blood) was added and further stirred with a vortex. 20 μL of Solution B (2-diphenylphosphinoyl-2-methyl-3,4-dihydro-2H-pyrrole N-oxide (DPhPMPO); kit included) that had been brought to room temperature was added to each tube at 10 second intervals, and the mixture was stirred with a vortex. After adding to all the tubes, the mixture was further stirred with a vortex. After adding Solution B to the first tube, the tube was left to stand at room temperature for 30 minutes.

(ステップ2 i-STrap(抽出))
30分間の静置後、Reaction tubeにクロロホルム/メタノール(2:1
)溶液を1000μL ずつ、各チューブ10秒間隔で添加(揮発性溶媒のため、マイク
ロピペット内のエアーを十分に置換してから、リバースピペッティング法にて添加)し、
1 本目のチューブへのクロロホルム/メタノール溶液添加時点から10分間、ボルテッ
クスで振とうした。10分間の振とう後、予め4℃に冷却した冷却遠心機(KUBOTA
)にReaction tubeをセットし、チューブ内の温度が4℃となるように5分
間予冷却した。その後、4℃、3000Gで10分間遠心し、遠心終了冷却後、上層(水
層)をマイクロピペットで吸引して廃棄した。続いて、下層(クロロホルム/メタノール
層)をマイクロピペットで分取し、Dehydration tube(キット同椢。乾
燥剤として、硫酸ナトリウム0.3g が入っている)に入れて軽く振とうし、氷中で1
5分間冷却した後、-80℃で保存した。
(Step 2 i-Strap (extraction))
After standing for 30 minutes, chloroform/methanol (2:1) was added to the reaction tube.
) solution was added to each tube at 10 second intervals (since it is a volatile solvent, the air in the micropipette was sufficiently replaced before adding it by reverse pipetting).
After adding the chloroform/methanol solution to the first tube, the tube was shaken with a vortex mixer for 10 minutes. After shaking for 10 minutes, the tube was placed in a refrigerated centrifuge (KUBOTA) that had been cooled to 4°C.
The reaction tube was placed in a dehydration tube (included in the kit, containing 0.3 g of sodium sulfate as a desiccant) and pre-cooled for 5 minutes so that the temperature inside the tube was 4°C. The tube was then centrifuged at 4°C and 3000 G for 10 minutes. After centrifugation and cooling, the upper layer (aqueous layer) was aspirated with a micropipette and discarded. The lower layer (chloroform/methanol layer) was then taken with a micropipette and placed in a dehydration tube (included in the kit, containing 0.3 g of sodium sulfate as a desiccant), gently shaken, and then cooled in ice for 1 hour.
After cooling for 5 minutes, the mixture was stored at -80 °C.

(ステップ3 i-STrap(ESR測定))
解凍して常温に戻した各サンプル160μLを石英フラットセル(RST-LC09F;Flashpoint)に引き入れ、XバンドESR分光法(JES-TE200;日本電子)によって測定した。ESR条件は以下の通り。マイクロ波周波数:9.423719000GHz、マイクロ波出力:2.00000mW、フィールドセンター:332.000mT、スイープ幅:0.3000mT、掃引時間:4.0分、時定数0.3秒。また、DPhPMPOスピン付加物強度のシグナルは、左から2本目のマンガンマーカー(Mn2+)強度によって補正された。
(Step 3 i-STrap (ESR measurement))
160 μL of each sample, which had been thawed and returned to room temperature, was placed in a quartz flat cell (RST-LC09F; Flashpoint) and measured by X-band ESR spectroscopy (JES-TE200; JEOL). The ESR conditions were as follows: microwave frequency: 9.423719000 GHz, microwave power: 2.00000 mW, field center: 332.000 mT, sweep width: 0.3000 mT, sweep time: 4.0 minutes, time constant: 0.3 seconds. The signal of the DPhPMPO spin adduct intensity was corrected by the intensity of the manganese marker (Mn2+) second from the left.

3.結果
各処理群のX線照射後2日と6日の総グルタチオン濃度、GSSG濃度、GSH濃度及びGSSG濃度/GSH濃度について、対照群における数値に対する割合を算出した。結果を図2に示す。
また、各処理群のX線照射後2日と6日の総グルタチオン濃度、GSSG濃度、GSH濃度、GSSG濃度/GSH濃度、及び血液抗酸化能についてROC解析を行った。結果を表1に示す。
3. Results The ratios of the total glutathione concentration, GSSG concentration, GSH concentration, and GSSG concentration/GSH concentration in each treatment group on days 2 and 6 after X-ray irradiation to the values in the control group were calculated. The results are shown in FIG.
In addition, ROC analysis was performed on the total glutathione concentration, GSSG concentration, GSH concentration, GSSG concentration/GSH concentration, and blood antioxidant capacity 2 and 6 days after X-ray irradiation in each treatment group. The results are shown in Table 1.

Figure 0007493176000001
Figure 0007493176000001

表1から、GSSG濃度/GSH濃度を用いた方法のAUC値が最も高く、予測能が高いことが示された。また、特に20Gyと30Gyとの比較において、グルタチオン濃度を用いた場合のAUC値が、血液抗酸化能を用いた場合のAUC値よりも高いことから、皮膚炎の程度の予測において血液抗酸化能を用いた方法よりもグルタチオン濃度を用いた方法が優れていることが示された。
From Table 1, it was shown that the AUC value of the method using GSSG concentration/GSH concentration was the highest and the prediction ability was high. In addition, in particular in the comparison between 20 Gy and 30 Gy, the AUC value when using glutathione concentration was higher than the AUC value when using blood antioxidant capacity, indicating that the method using glutathione concentration is superior to the method using blood antioxidant capacity in predicting the severity of dermatitis.

Claims (5)

放射線治療又は画像下治療による放射線被ばく後の皮膚炎の発生の有無を予測するためのデータを収集する方法であって、放射線被ばく後に被験体から取得された赤血球のグルタチオン濃度を測定することを含み、赤血球の還元型グルタチオン濃度/酸化型グルタチオン濃度(酸化型グルタチオン濃度に対する還元型グルタチオン濃度の比)が第1の基準値以下であることは皮膚炎が発生する可能性が高いことを示し
ここで、第1の基準値は、放射線被ばく後に皮膚炎が発生した集団と、発生しなかった集団とにおける赤血球の還元型グルタチオン濃度/酸化型グルタチオン濃度(酸化型グルタチオン濃度に対する還元型グルタチオン濃度の比)に基づき決定された、放射線被ばく後に皮膚炎が発生する集団と、発生しない集団とを判別できる値である、方法。
A method for collecting data for predicting the occurrence or non-occurrence of dermatitis after radiation exposure due to radiation therapy or radiotherapy, the method comprising: measuring a glutathione concentration in red blood cells obtained from a subject after radiation exposure; a reduced glutathione concentration/oxidized glutathione concentration (ratio of reduced glutathione concentration to oxidized glutathione concentration) in the red blood cells being equal to or lower than a first reference value indicates a high possibility of the occurrence of dermatitis;
Here, the first standard value is a value that is determined based on the reduced glutathione concentration/oxidized glutathione concentration (the ratio of reduced glutathione concentration to oxidized glutathione concentration) in red blood cells in a population that develops dermatitis after radiation exposure and a population that does not, and that is capable of distinguishing between a population that develops dermatitis after radiation exposure and a population that does not .
還元型グルタチオン濃度/酸化型グルタチオン濃度(酸化型グルタチオン濃度に対する還元型グルタチオン濃度の比)が、第1の基準値以下であって第2の基準値より高いことは一過性皮膚炎が発生する可能性が高いことを示し、第2の基準値以下であることは持続性皮膚炎が発生する可能性が高いことを示し
ここで、第2の基準値は、放射線被ばく後に持続性皮膚炎が発生した集団と、発生しなかった集団とにおける赤血球の還元型グルタチオン濃度/酸化型グルタチオン濃度(酸化型グルタチオン濃度に対する還元型グルタチオン濃度の比)に基づき決定された、放射線被ばく後に持続性皮膚炎が発生する集団と、発生しない集団とを判別できる値である、請求項1に記載の方法。
a reduced glutathione concentration/oxidized glutathione concentration (ratio of reduced glutathione concentration to oxidized glutathione concentration) being equal to or lower than the first reference value and higher than the second reference value indicates a high possibility of occurrence of transient dermatitis, and a ratio being equal to or lower than the second reference value indicates a high possibility of occurrence of persistent dermatitis,
The method according to claim 1, wherein the second standard value is a value capable of distinguishing between a population that will develop persistent dermatitis after radiation exposure and a population that will not develop persistent dermatitis after radiation exposure, the value being determined based on the reduced glutathione concentration/oxidized glutathione concentration (the ratio of reduced glutathione concentration to oxidized glutathione concentration) in red blood cells in a population that will develop persistent dermatitis after radiation exposure and a population that will not develop persistent dermatitis after radiation exposure.
放射線被ばくが、X線又は電子線、ガンマ線、陽子線、重粒子線、中性子線の照射によるものである、請求項1又は2に記載の方法。 The method according to claim 1 or 2, wherein the radiation exposure is due to irradiation with X-rays, electron beams, gamma rays, proton beams, heavy particle beams, or neutron beams. 放射線被ばくが、乳がん、皮膚がん又は頭頸部がん、直腸がん、食道がん、脳腫瘍、転移性脳腫瘍、肝臓がん、肺癌、悪性リンパ腫の放射線治療によるものである、請求項1から3のいずれか一項に記載の方法。 The method according to any one of claims 1 to 3, wherein the radiation exposure is due to radiation therapy for breast cancer, skin cancer, head and neck cancer, rectal cancer, esophageal cancer, brain tumor, metastatic brain tumor, liver cancer, lung cancer, or malignant lymphoma. 被験体から取得された赤血球の還元型グルタチオン及び酸化型グルタチオンの濃度を測定するための手段を含む、請求項1から4のいずれか一項に記載の方法に使用するためのキット。 5. A kit for use in the method of any one of claims 1 to 4 , comprising means for measuring the concentrations of reduced glutathione and oxidized glutathione in red blood cells obtained from a subject.
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