JP7462035B2 - Probe composition for detecting 11 types of cancer - Google Patents

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Description

本願は、癌遺伝子メチル化検出組成物に関し、特に重亜硫酸塩(Bisulfite)処理後のDNA配列を特異的に認識するプローブ組成物、及びハイスループット配列決定(NGS)方法に基づいて食道癌、胃癌、結腸直腸癌、肺癌、肝臓癌、膵臓癌、前立腺癌、乳癌、卵巣癌、子宮頸癌及び子宮内膜癌等という11種類の腫瘍の遊離DNAメチル化レベルの変化を検出する応用に関する。 This application relates to a composition for detecting cancer gene methylation, in particular a probe composition that specifically recognizes DNA sequences after bisulfite treatment, and its application to detecting changes in free DNA methylation levels in 11 types of tumors, including esophageal cancer, gastric cancer, colorectal cancer, lung cancer, liver cancer, pancreatic cancer, prostate cancer, breast cancer, ovarian cancer, cervical cancer, and endometrial cancer, based on a high-throughput sequencing (NGS) method.

ハイスループット配列決定(NGS)技術は、現代のゲノム学研究分野の革新的なイノベーションであり、該技術は、数十から数百万個のDNA分子に対して配列分析を同時に行うことができ、これは、ポストゲノム時代の到来を示した。配列決定(シーケンシング)の深さを制御することにより、デノボシーケンシング及びリシーケンシングなどの異なる目標を実現することができると共に、異なる初期処理により、ゲノム、トランスクリプトーム及びメチロームの配列を分析することができる。 High-throughput sequencing (NGS) technology is a revolutionary innovation in the field of modern genomics research, which can perform sequence analysis on tens to millions of DNA molecules simultaneously, marking the arrival of the post-genomic era. By controlling the depth of sequencing, different goals such as de novo sequencing and resequencing can be achieved, and genome, transcriptome and methylome sequences can be analyzed through different initial processes.

現在、臨床的遺伝子検出の技術は、主に、ポリメラーゼ連鎖反応(PCR)、蛍光insituハイブリダイゼーション(FISH)及び遺伝子チップ技術である。PCR機器は、価格が低く、感度が高く、簡単で迅速に操作することができ、臨床の普及度が高いが、技術的に制限されるため、少数の遺伝子を同時に検出することしかできない。FISH感度が高いが、操作難度が高い。遺伝子チップの処理量は、上記両者よりも高く、大量の遺伝子を同時に検出することができる。しかしながら、欠陥は、既知の遺伝子又は変異しか検出できず、正確性が低く、偽陽性が高い。NGS技術は、処理量が大きく(大量の既知及び未知の遺伝子及び変異を同時に検出する)、結果が正確であり(確率が遺伝子チップよりも高い)、検出速度が速く、各遺伝子あたりの検出コストが低いなどという利点を有し、現在、徐々に臨床的疾患の検出及び監視などの分野に応用される。将来の配列決定費用のさらなる低減に伴い、NGSは、必然的に遺伝子チップ等の他のハイスループット技術を徐々に代替する。 At present, the technologies of clinical gene detection are mainly polymerase chain reaction (PCR), fluorescence in situ hybridization (FISH) and gene chip technology. PCR equipment is low in price, highly sensitive, simple and fast to operate, and has a high clinical popularity, but due to technical limitations, it can only detect a small number of genes at the same time. FISH has high sensitivity, but is difficult to operate. The throughput of gene chips is higher than both of the above, and can detect a large number of genes at the same time. However, the drawback is that it can only detect known genes or mutations, has low accuracy, and has high false positives. NGS technology has the advantages of high throughput (detecting a large number of known and unknown genes and mutations at the same time), accurate results (higher probability than gene chips), fast detection speed, low detection cost per gene, etc., and is currently gradually applied to fields such as clinical disease detection and monitoring. With the further reduction of sequencing costs in the future, NGS will inevitably gradually replace other high-throughput technologies such as gene chips.

現在、一般的な全ゲノム配列決定の総価が高く、稀な変異を検出するために配列決定の深さを増加させると、最終価格を消費者が負担しにくい。したがって、標的配列のキャプチャシーケンシングは、主流となり、該技術は、検出の需要に応じて、関心のあるゲノム領域に対して捕捉プローブを設計し、相補的ハイブリダイゼーション原理で標的断片DNAを濃縮し、かつ後にNGS検出を行う。このようなポリシーは、研究又は検出の目的に応じて柔軟に策定することができ、少量の遺伝子領域のみを選択し、配列決定の深さを増加させ、標的領域の変異状況を効果的に発見することができ、非常に高い感度及び正確性を有する。 At present, the total price of general whole genome sequencing is high, and if the sequencing depth is increased to detect rare mutations, the final price is difficult for consumers to bear. Therefore, capture sequencing of target sequences has become mainstream, and the technology designs capture probes for genomic regions of interest according to the demand for detection, enriches the target fragment DNA through the principle of complementary hybridization, and then performs NGS detection. Such a policy can be flexibly formulated according to the purpose of research or detection, and can select only a small amount of gene regions, increase the sequencing depth, and effectively discover the mutation status of the target region, with very high sensitivity and accuracy.

癌の発生及び進行過程において、遺伝情報はDNAの突然変異、挿入/欠失、染色体構造変異、コピー数変動、及びエピジェネティックな情報の変化を含む一連の変化が現れる。癌の進行プロセスにおいて、DNA配列の変異は、ランダムに発生し、変異が重要な成長制御遺伝子に発生する場合にのみ、悪性腫瘍の発生をもたらす。多くの遺伝子発現異常は、エピジェネティックの変化に由来し、一般的には、DNAメチル化レベルの変化に由来する。研究によると、遺伝子メチル化レベルの変化は、遺伝子変異よりも早く、遺伝子メチル化の変化を追跡検出すれば、癌の発生を早期に予測することができる。近年、ゲノム学の発展に伴い、現在、30種類を超える癌のエピゲノムを研究した。結果によると、DNAメチル化は、各種の癌においていずれも支配的ではないが、勿論のことながら、遺伝子メチル化修飾モードの変化が細胞の発展傾向及び腫瘍の表現型を変えて多くの癌の発生及び進行に重要な影響を与える。 In the process of cancer development and progression, genetic information undergoes a series of changes, including DNA mutations, insertions/deletions, chromosome structure mutations, copy number variations, and changes in epigenetic information. In the process of cancer progression, DNA sequence mutations occur randomly, and only when mutations occur in important growth control genes will they lead to the development of malignant tumors. Many gene expression abnormalities are derived from epigenetic changes, generally from changes in DNA methylation levels. Research has shown that changes in gene methylation levels occur earlier than gene mutations, and by tracking and detecting changes in gene methylation, the development of cancer can be predicted early. In recent years, with the development of genomics, the epigenomes of more than 30 types of cancer have been studied. The results show that although DNA methylation is not dominant in any of various cancers, changes in gene methylation modification modes can of course change the development trends of cells and tumor phenotypes, which have an important impact on the development and progression of many cancers.

2018年初に、癌ゲノムプロフィール(TCGA)は、27件の総合的な分析文章を発表し、十年以上の30種類の癌データに対してこれまで最も全面的な汎癌ゲノム解析を行った。染色体変異、DNAメチル化、RNA及びタンパク質等の様々なデータをまとめて分析した後、解剖学的な33種類の癌は、分子的特徴に基づいて28個のサブタイプに分けることができることを発見した。ある分子サブタイプは、従来通りの意味で25種類の癌を含む。この結果は、異なる器官に由来する癌に共通の分子的特徴が存在することを示す。それと同時に、同一の器官に由来する癌は、異なるゲノムプロフィールを有する可能性がある。これから分かるように、近い将来、癌スクリーニング及び診断マーカーの開発は、必然的により多い汎癌の概念を導入することであり、解剖学的な癌を研究するだけでなく、分子レベルで癌を研究し、ある分子的タイピングを網羅することができる汎癌マーカーを開発すべきである。 At the beginning of 2018, the Cancer Genomic Profile (TCGA) published 27 comprehensive analysis articles, and conducted the most comprehensive pan-cancer genome analysis to date on 30 types of cancer data over more than 10 years. After collating and analyzing various data such as chromosomal mutations, DNA methylation, RNA and protein, it was found that 33 anatomical types of cancer can be divided into 28 subtypes based on molecular characteristics. A molecular subtype includes 25 types of cancer in the traditional sense. This result indicates that cancers originating from different organs have common molecular characteristics. At the same time, cancers originating from the same organ may have different genomic profiles. As can be seen, in the near future, the development of cancer screening and diagnostic markers will inevitably introduce more pan-cancer concepts, and we should not only study anatomical cancers, but also develop pan-cancer markers that can study cancer at the molecular level and cover a certain molecular typing.

液体生検は、体外診断の1つの方式であり、非侵襲性の血液検査を採用し、腫瘍又は転移病巣が血液に放出する循環腫瘍細胞(CTC)又は循環腫瘍DNA(ctDNA)を監視することができる。該技術は、侵襲による危害を効果的に低減することができ、かつ腫瘍の各部分と全ての転移病巣へのサンプリングを実現し、腫瘍の不均一性を克服し(しかしながら、現在、用いられた標準組織の生検は、腫瘍のある部分の特徴のみを反映する)、かつリアルタイムな監視を実現することができ、より高い感度を有し、さらに、ゲノム情報により病変が発生する部位を予測することができ、患者の生存期間を効果的に延長することができる可能性がある。これらの利点に基づいて、液体生検は、腫瘍の早期診断、病期補助決定、予後及び再発監視、投薬指導などの方面に用いることができる。現在、最も一般的に液体生検に使用されるのは、遊離DNAである。 Liquid biopsy is a method of in vitro diagnosis, which adopts non-invasive blood testing to monitor circulating tumor cells (CTCs) or circulating tumor DNA (ctDNA) released into the blood by tumors or metastatic lesions. This technology can effectively reduce the harm caused by invasion, and realize sampling of each part of the tumor and all metastatic lesions, overcome the heterogeneity of the tumor (however, the standard tissue biopsy currently used only reflects the characteristics of a certain part of the tumor), and realize real-time monitoring, has higher sensitivity, and can predict the site where the lesion occurs based on genomic information, which may effectively extend the survival time of patients. Based on these advantages, liquid biopsy can be used in the aspects of early diagnosis of tumors, auxiliary determination of disease stage, prognosis and recurrence monitoring, drug guidance, etc. Currently, the most commonly used liquid biopsy is free DNA.

遊離DNA(cfDNA)は、循環血液中に存在し細胞外に遊離し、部分的に分解される内因性DNAである。研究によると、腫瘍組織が発生及び発展過程において、その腫瘍細胞がアポトーシスした後、血漿中にDNAを放出し、分解された後、遊離腫瘍DNA(ctDNA)を形成する。CtDNAの分子遺伝的特徴(例えば、遺伝子変異、マイクロサテライトの不安定性及び癌抑制遺伝子プロモーターメチル化等)は腫瘍組織DNAに一致する。多重癌の早期スクリーニング及び検出において、末梢血の採取は、他の臨床検出手段よりも簡便であり、基幹病院に普及しやすく、かつその非侵襲的特徴のため、無症候性の人々によって受けられやすい。したがって、血漿中のctDNAメチル化レベルの変化を検出することは、多重癌の早期スクリーニング及び診断の重要な手段の一つとなる。 Free DNA (cfDNA) is endogenous DNA that exists in the circulating blood and is released outside the cells and partially degraded. Research has shown that during the development and development of tumor tissue, the tumor cells release DNA into the plasma after apoptosis, and after decomposition, form free tumor DNA (ctDNA). The molecular genetic characteristics of ctDNA (e.g., gene mutation, microsatellite instability, and tumor suppressor gene promoter methylation, etc.) are consistent with tumor tissue DNA. In the early screening and detection of multiple cancers, peripheral blood collection is more convenient than other clinical detection means, is easily distributed in core hospitals, and is easily accepted by asymptomatic people due to its non-invasive characteristics. Therefore, detecting changes in the ctDNA methylation level in plasma is one of the important means for early screening and diagnosis of multiple cancers.

標的配列の捕捉技術をNGSと組み合わせてcfDNAの変異及びメチル化レベルの変化を監視し、腫瘍の早期スクリーニング、感受性遺伝子監視、コンパニオン診断、個別化医療、予後監視等の各方面の応用を実現することができる。現在、中国内外の複数の会社は、いずれも異なる規模の、異なる応用シーンに対する癌検出panelを打ち上げ、一部のpanelがFDA又はCFDAの承認番号を取得した。例えば、Foundation Medicineが打ち出したFoundationOne CDxは、324個の遺伝子を網羅することができるものであり、メモリアルスローンケタリング癌センター(MSK)が打ち出したIMPACTは、468種類の癌関連遺伝子を網羅することができるものであり、バーニングロックバイオテックが打ち出した「ヒトEGFR/ALK/BRAF/KRAS遺伝子突然変異ジョイント検出キット」、ノボジーンが打ち出した「ヒトEGFR、KRAS、BRAF、PIK3CA、ALK、ROS1遺伝子変異検出キット」等がある。Singlera Genomicsも、2018年に結腸直腸癌メチル化レベルを検出する製品「ColonES」を打ち出した。 Target sequence capture technology can be combined with NGS to monitor cfDNA mutations and changes in methylation levels, enabling applications in various areas such as early tumor screening, susceptibility gene monitoring, companion diagnosis, personalized medicine, and prognosis monitoring. At present, several companies in China and abroad have launched cancer detection panels of different scales and for different application scenarios, and some of the panels have obtained FDA or CFDA approval numbers. For example, FoundationOne CDx launched by Foundation Medicine can cover 324 genes, IMPACT launched by Memorial Sloan Kettering Cancer Center (MSK) can cover 468 types of cancer-related genes, Burning Rock Biotech has launched the "Human EGFR/ALK/BRAF/KRAS Gene Mutation Joint Detection Kit," and Novogene has launched the "Human EGFR, KRAS, BRAF, PIK3CA, ALK, ROS1 Gene Mutation Detection Kit." Singlera Genomics also launched a product called "ColonES" in 2018 to detect methylation levels in colorectal cancer.

しがたって、現在の多重癌の検出製品の欠乏及び技術上の制約に対して、本願は、食道癌、胃癌、結腸直腸癌、肺癌、肝臓癌、膵臓癌、前立腺癌、乳癌、卵巣癌、子宮頸癌及び子宮内膜癌等という11種類の癌の早期スクリーニングに用いることができるプローブ組成物を提供する。該プローブ組成物は、1)非侵襲的な方式で無症候性の人々の早期スクリーニング、及び癌患者の予後検出に用いられ、侵襲性検出による危害を低減し、2)配列決定の深さを増加させ、検出遺伝子の広さが従来の技術及び製品より優れるようにし、処理量が高く、検出速度が速く、各遺伝子の検出コストが低いなどの利点を有し、3)腫瘍の各部分と全ての転移病巣へのサンプリングを実現することができ、腫瘍の不均一性を克服し、4)より高い感度及び正確性を有し、リアルタイムな監視を実現することができ、さらに、ゲノム情報により病変が発生する部位を予測して、患者の生存期間を効果的に延長することができる可能性がある。 Therefore, in response to the current lack of detection products for multiple cancers and technical limitations, the present application provides a probe composition that can be used for early screening of 11 types of cancer, including esophageal cancer, gastric cancer, colorectal cancer, lung cancer, liver cancer, pancreatic cancer, prostate cancer, breast cancer, ovarian cancer, cervical cancer, and endometrial cancer. The probe composition 1) can be used for early screening of asymptomatic people in a non-invasive manner and for prognostic detection of cancer patients, reducing the harm caused by invasive detection; 2) increases the sequencing depth, making the breadth of detected genes superior to conventional technologies and products, and has the advantages of high throughput, fast detection speed, and low detection cost for each gene; 3) can achieve sampling of each part of the tumor and all metastatic lesions, overcoming the heterogeneity of the tumor; 4) has higher sensitivity and accuracy, can realize real-time monitoring, and may even be able to predict the site where a lesion will occur based on genomic information, effectively prolonging the survival time of patients.

具体的には、本願は、以下の内容に関する。
1、プローブ組成物であって、食道癌、胃癌、結腸直腸癌、肺癌、肝臓癌、膵臓癌、前立腺癌、乳癌、卵巣癌、子宮頸癌及び子宮内膜癌のうち任意の癌の特異的領域を標的とするプローブを含み、前記癌特異的領域は、Seq ID No.1-62のいずれかから選択される、プローブ組成物。
2、さらに、汎癌特異的領域のいずれかを標的とするプローブを含み、前記汎癌特異的領域は、Seq ID No.63-64のいずれかから選択される、第1項に記載のプローブ組成物。
3、さらに、組織特異的領域のいずれかを標的とするプローブを含み、前記組織特異的領域は、Seq ID No.65-117のいずれかから選択される、第1項に記載のプローブ組成物。
4、前記組織特異的領域におけるSeq ID No.66-67、79、81-82、97-102、116-117が食道の組織特異的標的領域である、ことを特徴とする第3項に記載のプローブ組成物。
5、前記組織特異的領域におけるSeq ID No.81、82、97-102が胃の組織特異的標的領域である、ことを特徴とする第3項に記載のプローブ組成物。
6、前記組織特異的領域におけるSeq ID No.83、87-90、110が結腸直腸の組織特異的標的領域である、ことを特徴とする第3項に記載のプローブ組成物。
7、前記組織特異的領域におけるSeq ID No.65、70-72、76、91-92、103-104が肺の組織特異的標的領域である、ことを特徴とする第3項に記載のプローブ組成物。
8、前記組織特異性領域におけるSeq ID No.73-74、107が肝臓の組織特異的標的領域である、ことを特徴とする第3項に記載のプローブ組成物。
9、前記組織特異的領域におけるSeq ID No.111-115が膵臓の組織特異的標的領域である、ことを特徴とする第3項に記載のプローブ組成物。
10、前記組織特異的領域におけるSeq ID No.80、84、93、95が前立腺の組織特異的標的領域である、ことを特徴とする第3項に記載のプローブ組成物。
11、前記組織特異的領域におけるSeq ID No.78、84-86が乳腺の組織特異的標的領域である、ことを特徴とする第3項に記載のプローブ組成物。
12、前記組織特異的領域において、Seq ID No.77、96、105が卵巣の組織特異的標的領域である、ことを特徴とする請求項3に記載のプローブ組成物。
13、前記組織特異的領域におけるSeq ID No.68-69、75、109が子宮頸部の組織特異的標的領域である、ことを特徴とする第3項に記載のプローブ組成物。
14、前記組織特異的領域におけるSeq ID No.94、106、108が子宮内膜の組織特異的標的領域である、ことを特徴とする第3項に記載のプローブ組成物。
15、重亜硫酸塩で変換されたCGがメチル化されない前記特異的領域とハイブリダイズした低メチル化プローブと、重亜硫酸塩で変換されたCG全体がメチル化された前記特異的領域とハイブリダイズする高メチル化プローブとを含む、第1-14項のいずれか1項に記載のプローブ組成物。
16、各プローブの長さは、40~60bpである、第15項に記載のプローブ組成物。
17、各プローブの長さは45~56bpであり、好ましくは50~56bpであり、さらに好ましくは50bpである、第16項に記載のプローブ組成物。
18、前記低メチル化プローブが癌特異的領域を標的とするプローブSeq ID No.118-214のいずれか、汎癌特異的領域を標的とするプローブSeq ID No.215-216のいずれか、及び組織特異的領域を標的とするプローブSeq ID No.217-274のいずれかを含む、ことを特徴とする第15項に記載のプローブ組成物。
19、前記高メチル化プローブが癌特異的領域を標的とするプローブSeq ID No.275-371のいずれか、汎癌特異的領域を標的とするプローブSeq ID No.372-373のいずれか、及び組織特異的領域を標的とするプローブSeq ID No.374-431のいずれかを含む、ことを特徴とする第15項に記載のプローブ組成物。
20、キットであって、第1-19項のいずれか1項に記載のプローブ組成物を含むキット。
21、第1-19項のいずれか1項に記載のプローブ組成物の食道癌、胃癌、結腸直腸癌、肺癌、肝臓癌、膵臓癌、前立腺癌、乳癌、卵巣癌、子宮頸癌及び子宮内膜癌を検出するキットの製造における使用。
Specifically, the present application relates to the following:
1. A probe composition comprising a probe targeting a specific region of any of esophageal cancer, gastric cancer, colorectal cancer, lung cancer, liver cancer, pancreatic cancer, prostate cancer, breast cancer, ovarian cancer, cervical cancer and endometrial cancer, the cancer-specific region being selected from any of Seq ID No. 1-62.
2. The probe composition according to claim 1, further comprising a probe targeting any of the pan-cancer specific regions, wherein the pan-cancer specific regions are selected from any of Seq ID Nos. 63-64.
3. The probe composition according to claim 1, further comprising a probe targeting any one of tissue-specific regions, the tissue-specific region being selected from any one of Seq ID Nos. 65-117.
4. The probe composition according to item 3, wherein Seq ID Nos. 66-67, 79, 81-82, 97-102, and 116-117 in the tissue-specific region are tissue-specific target regions of the esophagus.
5. The probe composition according to item 3, wherein Seq ID Nos. 81, 82, and 97-102 in the tissue-specific region are tissue-specific target regions of the stomach.
6. The probe composition according to item 3, wherein Seq ID Nos. 83, 87-90, and 110 in the tissue-specific region are tissue-specific target regions of the colorectum.
7. The probe composition according to item 3, wherein Seq ID Nos. 65, 70-72, 76, 91-92, and 103-104 in the tissue-specific region are lung tissue-specific target regions.
8. The probe composition according to item 3, wherein Seq ID Nos. 73-74 and 107 in the tissue-specific region are tissue-specific target regions for the liver.
9. The probe composition according to item 3, wherein Seq ID No. 111-115 in the tissue-specific region is a pancreatic tissue-specific target region.
10. The probe composition according to item 3, wherein Seq ID Nos. 80, 84, 93, and 95 in the tissue-specific region are tissue-specific target regions of the prostate.
11. The probe composition according to item 3, wherein Seq ID Nos. 78 and 84-86 in the tissue-specific region are tissue-specific target regions of the mammary gland.
12. The probe composition according to claim 3, wherein in the tissue-specific region, Seq ID Nos. 77, 96, and 105 are tissue-specific target regions for the ovary.
13. The probe composition according to item 3, wherein Seq ID Nos. 68-69, 75, and 109 in the tissue-specific region are tissue-specific target regions of the uterine cervix.
14. The probe composition according to claim 3, wherein Seq ID Nos. 94, 106, and 108 in the tissue-specific region are tissue-specific target regions of the endometrium.
15. The probe composition according to any one of paragraphs 1 to 14, comprising a low methylation probe hybridizing to the specific region where the bisulfite converted CG is not methylated, and a high methylation probe hybridizing to the specific region where the entire bisulfite converted CG is methylated.
16. The probe composition according to item 15, wherein each probe has a length of 40 to 60 bp.
17. The probe composition according to item 16, wherein the length of each probe is 45-56 bp, preferably 50-56 bp, and more preferably 50 bp.
18. The probe composition according to claim 15, characterized in that the hypomethylated probe comprises any of the probes Seq ID No. 118-214 targeting a cancer-specific region, any of the probes Seq ID No. 215-216 targeting a pan-cancer-specific region, and any of the probes Seq ID No. 217-274 targeting a tissue-specific region.
19. The probe composition according to claim 15, characterized in that the hypermethylated probe comprises any of the probes Seq ID No. 275-371 targeting cancer-specific regions, any of the probes Seq ID No. 372-373 targeting pan-cancer-specific regions, and any of the probes Seq ID No. 374-431 targeting tissue-specific regions.
20. A kit comprising the probe composition according to any one of items 1-19.
21. Use of the probe composition according to any one of items 1 to 19 in the manufacture of a kit for detecting esophageal cancer, gastric cancer, colorectal cancer, lung cancer, liver cancer, pancreatic cancer, prostate cancer, breast cancer, ovarian cancer, cervical cancer and endometrial cancer.

本願は、さらに、前記プローブ組成物を利用して食道癌、胃癌、結腸直腸癌、肺癌、肝臓癌、膵臓癌、前立腺癌、乳癌、卵巣癌、子宮頸癌及び子宮内膜癌等という11種類の癌を検出する方法を提供する。 The present application further provides a method for detecting 11 types of cancer, including esophageal cancer, gastric cancer, colorectal cancer, lung cancer, liver cancer, pancreatic cancer, prostate cancer, breast cancer, ovarian cancer, cervical cancer, and endometrial cancer, by utilizing the probe composition.

本願は、また、前記キットを利用して上記11種類の癌のメチル化レベルの変化を同時に検出する方法も提供する。 The present application also provides a method for simultaneously detecting changes in the methylation levels of the above 11 types of cancer using the kit.

従来の癌検出技術に制限があるため、以下の利点を有するプローブ組成物を開発する必要がある。
1、液体生検は、非侵襲性腫瘍検出に属し、組織サンプルを取得できない無症候性の人々及び患者集団にも適用することができる。
2、中国の一般的な11種類の癌のメチル化レベルの変化を同時に検出することができ、80%を超える癌発症集団を網羅する。
3、検出の正確性を増加させるために、各癌に対して、平均な配列決定の深さが5000Xを超える。
4、被検者に対して、一回限り全ての発病率が高い癌のスクリーニングを完了し、検出効率を向上させることができ、各マーカーの平均価格は、市場の従来の単一マーカーの検出よりも低い。
5、企業に対して、1つのpenalだけを用いて主要な癌のスクリーニングを完了することができ、プローブの合成コストを節約し、実験フローを簡略化し、実験員の操作を容易にすることができる。
6、原則として、癌患者の予後の癌の監視に用いられてもよい。
Due to the limitations of conventional cancer detection technologies, there is a need to develop probe compositions that have the following advantages:
1. Liquid biopsy belongs to non-invasive tumor detection and can be applied to asymptomatic people and patient populations where tissue samples cannot be obtained.
2. It can simultaneously detect changes in the methylation levels of 11 common types of cancer in China, covering more than 80% of the cancer-affected population.
3. To increase the accuracy of detection, the average sequencing depth is more than 5000X for each cancer.
4. Subjects can complete screening for all high-incidence cancers in one go, improving the detection efficiency, and the average price of each marker is lower than that of traditional single-marker detection on the market.
5. For companies, it allows them to complete screening of major cancers with only one penalty, saving the cost of probe synthesis, simplifying the experimental flow, and facilitating the operation of experimenters.
6. In principle, it may be used to monitor the prognosis of cancer patients.

図1は本願の実施操作フローである。FIG. 1 shows an operational flow of the present invention.

本願は、癌遺伝子メチル化検出用のプローブ組成物を提供する。ハイスループット配列決定(NGS)方法に基づいて、食道癌、胃癌、結腸直腸癌、肺癌、肝臓癌、膵臓癌、前立腺癌、乳癌、卵巣癌、子宮頸癌及び子宮内膜癌等という11種類の腫瘍遊離DNAメチル化レベルの変化を検出する。それは、非侵襲的な方式で11種類の一般的な癌のメチル化レベルの変化を同時に検出することができ、感度及び正確性が高く、配列決定の深さが深く、かつコストが低く、組織サンプルを取得できない無症候性の人々及び患者集団、及び癌患者の予後の癌の監視に適用する。 The present application provides a probe composition for cancer gene methylation detection. Based on a high-throughput sequencing (NGS) method, it detects the changes in the methylation levels of free DNA in 11 types of tumors, including esophageal cancer, gastric cancer, colorectal cancer, lung cancer, liver cancer, pancreatic cancer, prostate cancer, breast cancer, ovarian cancer, cervical cancer, and endometrial cancer. It can simultaneously detect the changes in the methylation levels of 11 types of common cancers in a non-invasive manner, with high sensitivity and accuracy, deep sequencing depth, and low cost, and is applicable to asymptomatic people and patient populations who cannot obtain tissue samples, and cancer monitoring of the prognosis of cancer patients.

定義
本明細書の他の箇所で具体的に限定されない限り、本明細書で使用される全ての他の技術及び科学的用語は、本願の属する分野の当業者に一般的に理解されるものである。
Definitions Unless specifically limited elsewhere herein, all other technical and scientific terms used herein are commonly understood by one of ordinary skill in the art to which this application belongs.

プローブは、長さが数十から数百ひいては数千の塩基対の一本鎖又は二本鎖DNAであり、分子の変性、アニーリング及び相補的塩基対形成の高精度を利用し、測定対象のサンプルにおける相補的な非標識一本鎖DNA又はRNAと水素結合(ハイブリダイズ)し、二本鎖複合体(ハイブリッド)を形成することができる。対合されないプローブを洗浄した後、オートラジオグラフィー又は酵素結合反応などの検出システムを用いてハイブリダイゼーション反応結果を検出することができる。本願において、プローブと相補的に結合又はハイブリダイズした領域は、特異的標的領域である。複数のプローブは、プローブ組成物に組み合わせる。 The probe is a single-stranded or double-stranded DNA with a length of tens to hundreds or even thousands of base pairs, and can hydrogen bond (hybridize) with complementary unlabeled single-stranded DNA or RNA in the sample to be measured to form a double-stranded complex (hybrid) by utilizing the high accuracy of molecular denaturation, annealing, and complementary base pairing. After washing away the unpaired probe, the hybridization reaction result can be detected using a detection system such as autoradiography or an enzyme-linked reaction. In this application, the region that is complementary bound or hybridized to the probe is the specific target region. Multiple probes are combined into a probe composition.

癌特異的領域とは、少ない癌の種類において、正常な対照組織と比較して、該領域のメチル化レベルに有意差があることを意味する。 A cancer-specific region means that there is a significant difference in the methylation level of the region in a few cancer types compared to normal control tissue.

汎癌特異的領域とは、大部分の癌の種類において、正常な対照組織と比較して、該領域のメチル化レベルに有意差があることを意味する。 A pan-cancer specific region means that there is a significant difference in the methylation level of the region compared to normal control tissue in most cancer types.

組織特異的領域とは、該領域の特定組織におけるメチル化レベルが他の組織と比較して有意差があることを意味する。 A tissue-specific region means that the methylation level of that region in a specific tissue is significantly different compared to other tissues.

DNAメチル化とは、CpGジヌクレオチドにおけるシトシン上の第5位の炭素原子のメチル化過程の発生を意味し、安定した修飾状態として、DNAメチルトトランスフヱラーゼの作用で、DNAの複製過程に伴って新生の子孫DNAに遺伝することができ、重要なエピジェネティックメカニズムであり、DNAメチル化の時に、遺伝子プロモーター領域のメチル化は、癌抑制遺伝子の転写サイレンシングを引き起こすことができ、したがって、それと腫瘍の発生との関係が密接である。異常メチル化は、癌抑制遺伝子とDNA修復遺伝子の高メチル化、反復配列DNAの低メチル化、いくつかの遺伝子のインプリンティング喪失を含み、それは、多種の腫瘍の発生に関連する。 DNA methylation refers to the occurrence of the methylation process of the fifth carbon atom on cytosine in CpG dinucleotides, which, as a stable modified state, can be inherited by the action of DNA methyltransferase to the newly born progeny DNA during the DNA replication process, and is an important epigenetic mechanism. During DNA methylation, the methylation of gene promoter regions can cause transcriptional silencing of tumor suppressor genes, and thus is closely related to the occurrence of tumors. Abnormal methylation includes hypermethylation of tumor suppressor genes and DNA repair genes, hypomethylation of repetitive DNA, and loss of imprinting of some genes, which are associated with the occurrence of various tumors.

本明細書において、Panelは、本明細書で使用されるプローブ組成物を指す。 As used herein, Panel refers to the probe composition used herein.

以下、本願の技術的解決手段を詳細に説明する。
本願の1つの具体的な実施形態において、プローブ組成物は、食道癌、胃癌、結腸直腸癌、肺癌、肝臓癌、膵臓癌、前立腺癌、乳癌、卵巣癌、子宮頸癌及び子宮内膜癌のうち任意の癌の特異的領域を標的とするプローブであって、前記癌特異的領域は、Seq ID No.1-62のいずれかから選択されるプローブと、Seq ID No.63-64のいずれかから選択される汎癌特異的領域のいずれかを標的とするプローブと、Seq ID No.65-117のいずれかから選択される組織特異的領域のいずれかを標的とするプローブとを含む。前記組織特異的領域におけるSeq ID No.66-67、79、81-82、97-102、116-117は、食道の組織特異的標的領域であり、Seq ID No.81、82、97-102は、胃の組織特異的標的領域であり、Seq ID No.83、87-90、110は、結腸直腸の組織特異的標的領域である。
The technical solutions of the present application are described in detail below.
In one specific embodiment of the present application, the probe composition is a probe targeting any cancer-specific region of esophageal cancer, gastric cancer, colorectal cancer, lung cancer, liver cancer, pancreatic cancer, prostate cancer, breast cancer, ovarian cancer, cervical cancer, and endometrial cancer, the cancer-specific region including a probe selected from any of Seq ID No. 1-62, a probe targeting any pan-cancer specific region selected from any of Seq ID No. 63-64, and a probe targeting any tissue-specific region selected from any of Seq ID No. 65-117. In the tissue-specific region, Seq ID No. 66-67, 79, 81-82, 97-102, 116-117 are tissue-specific target regions of the esophagus, Seq ID No. 81, 82, 97-102 are tissue-specific target regions of the stomach, and Seq ID No. 83, 87-90, 110 are tissue-specific target regions of the colorectum.

本願の1つの具体的な実施形態において、プローブ組成物は、食道癌、胃癌、結腸直腸癌、肺癌、肝臓癌、膵臓癌、前立腺癌、乳癌、卵巣癌、子宮頸癌及び子宮内膜癌のうち任意の癌の特異的領域を標的とするプローブであって、前記癌特異的領域は、Seq ID No.1-62のいずれかから選択されるプローブと、Seq ID No.63-64のいずれかから選択される汎癌特異的領域のいずれかを標的とするプローブと、Seq ID No.65-117のいずれかから選択される組織特異的領域のいずれかを標的とするプローブとを含む。前記組織特異的領域におけるSeq ID No.65、70-72、76、91-92、103-104は、肺の組織特異的標的領域である。 In one specific embodiment of the present application, the probe composition is a probe that targets a specific region of any of esophageal cancer, gastric cancer, colorectal cancer, lung cancer, liver cancer, pancreatic cancer, prostate cancer, breast cancer, ovarian cancer, cervical cancer, and endometrial cancer, and the cancer-specific region includes a probe selected from any of Seq ID No. 1-62, a probe that targets any of the pan-cancer specific regions selected from any of Seq ID No. 63-64, and a probe that targets any of the tissue-specific regions selected from any of Seq ID No. 65-117. Seq ID No. 65, 70-72, 76, 91-92, 103-104 in the tissue-specific region are lung tissue-specific target regions.

本願の1つの具体的な実施形態において、プローブ組成物は、食道癌、胃癌、結腸直腸癌、肺癌、肝臓癌、膵臓癌、前立腺癌、乳癌、卵巣癌、子宮頸癌及び子宮内膜癌のうち任意の癌の特異的領域を標的とするプローブであって、前記癌特異的領域は、Seq ID No.1-62のいずれかから選択されるプローブと、Seq ID No.63-64のいずれかから選択される汎癌特異的領域のいずれかを標的とするプローブと、Seq ID No.65-117のいずれかから選択される組織特異的領域のいずれかを標的とするプローブとを含む。前記組織特異的領域におけるSeq ID No.73-74、107は、肝臓の組織特異的標的領域であり、Seq ID No.111-115は、膵臓の組織特異的標的領域である。 In one specific embodiment of the present application, the probe composition is a probe that targets a specific region of any of esophageal cancer, gastric cancer, colorectal cancer, lung cancer, liver cancer, pancreatic cancer, prostate cancer, breast cancer, ovarian cancer, cervical cancer, and endometrial cancer, and the cancer-specific region includes a probe selected from any of Seq ID No. 1-62, a probe that targets any of pan-cancer specific regions selected from any of Seq ID No. 63-64, and a probe that targets any of tissue-specific regions selected from any of Seq ID No. 65-117. In the tissue-specific region, Seq ID No. 73-74 and 107 are tissue-specific target regions of the liver, and Seq ID No. 111-115 are tissue-specific target regions of the pancreas.

本願の1つの具体的な実施形態において、プローブ組成物は、食道癌、胃癌、結腸直腸癌、肺癌、肝臓癌、膵臓癌、前立腺癌、乳癌、卵巣癌、子宮頸癌及び子宮内膜癌のうち任意の癌の特異的領域を標的とするプローブであって、前記癌特異的領域は、Seq ID No.1-62のいずれかから選択されるプローブと、Seq ID No.63-64のいずれかから選択される汎癌特異的領域のいずれかを標的とするプローブと、Seq ID No.65-117のいずれかから選択される組織特異的領域のいずれかを標的とするプローブとを含む。前記組織特異的領域におけるSeq ID No.80、84、93、95が前立腺の組織特異的標的領域である。 In one specific embodiment of the present application, the probe composition is a probe that targets a specific region of any of esophageal cancer, gastric cancer, colorectal cancer, lung cancer, liver cancer, pancreatic cancer, prostate cancer, breast cancer, ovarian cancer, cervical cancer, and endometrial cancer, and the cancer-specific region includes a probe selected from any of Seq ID No. 1-62, a probe that targets any of the pan-cancer specific regions selected from any of Seq ID No. 63-64, and a probe that targets any of the tissue-specific regions selected from any of Seq ID No. 65-117. Seq ID No. 80, 84, 93, and 95 in the tissue-specific region are tissue-specific target regions of the prostate.

本願の1つの具体的な実施形態において、プローブ組成物は、食道癌、胃癌、結腸直腸癌、肺癌、肝臓癌、膵臓癌、前立腺癌、乳癌、卵巣癌、子宮頸癌及び子宮内膜癌のうち任意の癌の特異的領域を標的とするプローブであって、前記癌特異的領域は、Seq ID No.1-62のいずれかから選択されるプローブと、Seq ID No.63-64のいずれかから選択される汎癌特異的領域のいずれかを標的とするプローブと、Seq ID No.65-117のいずれかから選択される組織特異的領域のいずれかを標的とするプローブとを含む。前記組織特異的領域におけるSeq ID No.78、84-86は、乳腺の組織特異的標的領域であり、Seq ID No.77、96、105は、卵巣の組織特異的標的領域であり、Seq ID No.68-69、75、109は、子宮頸部の組織特異的標的領域であり、Seq ID No.94、106、108は、子宮内膜の組織特異的標的領域である。 In one specific embodiment of the present application, the probe composition is a probe targeting a specific region of any of esophageal cancer, gastric cancer, colorectal cancer, lung cancer, liver cancer, pancreatic cancer, prostate cancer, breast cancer, ovarian cancer, cervical cancer, and endometrial cancer, and the cancer-specific region includes a probe selected from any of Seq ID No. 1-62, a probe targeting any of pan-cancer specific regions selected from any of Seq ID No. 63-64, and a probe targeting any of tissue-specific regions selected from any of Seq ID No. 65-117. In the tissue-specific region, Seq ID No. 78, 84-86 are tissue-specific target regions of the mammary gland, Seq ID No. 77, 96, and 105 are tissue-specific target regions of the ovary, and Seq ID No. 68-69, 75, and 109 are tissue-specific target regions of the cervix, and Seq ID No. 94, 106, and 108 are tissue-specific target regions of the endometrium.

本願の1つの具体的な実施形態において、上記プローブ組成物は、重亜硫酸塩で変換されたCGがメチル化されない前記特異的領域とハイブリダイズした低メチル化プローブと、重亜硫酸塩で変換されたCG全体がメチル化された前記特異的領域とハイブリダイズした高メチル化プローブとを含む。前記低メチル化プローブは、癌特異的領域を標的とするプローブSeq ID No.118-214のいずれか、汎癌特異的領域を標的とするプローブSeq ID No.215-216のいずれか、及び組織特異的領域を標的とするプローブSeq ID No.217-274のいずれかを含む。前記高メチル化プローブは、癌特異的領域を標的とするプローブSeq ID No.275-371のいずれか、汎癌特異的領域を標的とするプローブSeq ID No.372-373のいずれか、及び組織特異的領域を標的とするプローブSeq ID No.374-431のいずれかを含む。 In one specific embodiment of the present application, the probe composition includes a low methylation probe hybridized to the specific region where the bisulfite converted CG is not methylated, and a high methylation probe hybridized to the specific region where the entire bisulfite converted CG is methylated. The low methylation probe includes any of the probes Seq ID No. 118-214 targeting the cancer specific region, any of the probes Seq ID No. 215-216 targeting the pan cancer specific region, and any of the probes Seq ID No. 217-274 targeting the tissue specific region. The high methylation probe includes any of the probes Seq ID No. 275-371 targeting the cancer specific region, any of the probes Seq ID No. 372-373 targeting the pan cancer specific region, and any of the probes Seq ID No. 374-431 targeting the tissue specific region.

以下の表1に示すように、Seq ID No.118、Seq ID No.119及びSeq ID No.120は、いずれもSeq ID No.1が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.275、Seq ID No.276及びSeq ID No.277は、いずれもSeq ID No.1が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.121及びSeq ID No.122は、いずれもSeq ID No.2が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.278及びSeq ID No.279は、いずれもSeq ID No.2が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.123及びSeq ID No.124は、いずれもSeq ID No.3が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.280及びSeq ID No.281は、いずれもSeq ID No.3が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.125は、Seq ID No.4が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.282は、Seq ID No.4が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.126及びSeq ID No.127は、いずれもSeq ID No.5が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.283及びSeq ID No.284は、いずれもSeq ID No.3が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.128は、Seq ID No.6が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.285は、Seq ID No.6が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.129は、Seq ID No.7が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.286は、Seq ID No.7が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.130及びSeq ID No.130は、いずれもSeq ID No.8が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.287及びSeq ID No.288は、いずれもSeq ID No.8が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.132、Seq ID No.133及びSeq ID No.134は、いずれもSeq ID No.9が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.289、Seq ID No.290及びSeq ID No.291は、いずれもSeq ID No.9が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.135は、Seq ID No.10が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.292は、Seq ID No.10が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.136は、Seq ID No.11が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.293は、Seq ID No.11が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.137は、Seq ID No.12が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.294は、Seq ID No.12が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.138は、Seq ID No.13が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.295は、Seq ID No.13が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.139及びSeq ID No.140は、いずれもSeq ID No.14が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.296及びSeq ID No.297は、いずれもSeq ID No.14が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.141及びSeq ID No.142は、いずれもSeq ID No.15が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.298及びSeq ID No.299は、いずれもSeq ID No.15が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.143及びSeq ID No.144は、いずれもSeq ID No.16が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.300及びSeq ID No.301は、いずれもSeq ID No.16が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.145及びSeq ID No.146は、いずれもSSeq ID No.17が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.302及びSeq ID No.303は、いずれもSeq ID No.17が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.147は、Seq ID No.18が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.304は、Seq ID No.18が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.148及びSeq ID No.149は、いずれもSeq ID No.19が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.305及びSeq ID No.306は、いずれもSeq ID No.19が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.150は、Seq ID No.20が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.307は、Seq ID No.20が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.151は、Seq ID No.21が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.308は、Seq ID No.21が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.152は、Seq ID No.22が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.309は、Seq ID No.22が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.153、Seq ID No.154、及びSeq ID No.155は、いずれもSeq ID No.23が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.310、Seq ID No.311、及びSeq ID No.312は、いずれもSeq ID No.23が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.156及びSeq ID No.157は、いずれもSeq ID No.24が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.313及びSeq ID No.314は、いずれもSeq ID No.24が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.158及びSeq ID No.159は、いずれもSeq ID No.25が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.315及びSeq ID No.316は、いずれもSeq ID No.25が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.160及びSeq ID No.161は、いずれもSeq ID No.26が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.317及びSeq ID No.318は、いずれもSeq ID No.26が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.162は、Seq ID No.27が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.319は、Seq ID No.27が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.163及びSeq ID No.164は、いずれもSeq ID No.28が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.320及びSeq ID No.321は、いずれもSeq ID No.28が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.165及びSeq ID No.166は、いずれもSeq ID No.29が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.322及びSeq ID No.323は、いずれもSeq ID No.29が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.167は、Seq ID No.30が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.324は、Seq ID No.30が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.168及びSeq ID No.169は、いずれもSeq ID No.31が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.325及びSeq ID No.326は、いずれもSeq ID No.31が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.170は、Seq ID No.32が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.327は、Seq ID No.32が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.171及びSeq ID No.172は、いずれもSeq ID No.33が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.328及びSeq ID No.329は、いずれもSeq ID No.33が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.173は、Seq ID No.34が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.330は、Seq ID No.34が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.174及びSeq ID No.175は、いずれもSeq ID No.35が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.331及びSeq ID No.332は、いずれもSeq ID No.35が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.176は、Seq ID No.36が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.333は、Seq ID No.36が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.177及びSeq ID No.178は、いずれもSeq ID No.37が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.334及びSeq ID No.335は、いずれもSeq ID No.37が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.179及びSeq ID No.180は、いずれもSeq ID No.38が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.336及びSeq ID No.337は、いずれもSeq ID No.38が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.181は、Seq ID No.39が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.338は、Seq ID No.39が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.182及びSeq ID No.183は、いずれもSeq ID No.40が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブ
であり、Seq ID No.339及びSeq ID No.340は、いずれもSeq ID No.40が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.184は、Seq ID No.41が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.341は、Seq ID No.41が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.185は、Seq ID No.42が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.342は、Seq ID No.42が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.186は、Seq ID No.43が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.343は、Seq ID No.43が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.187は、Seq ID No.44が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.344は、Seq ID No.44が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.188及びSeq ID No.189は、いずれもSeq ID No.45が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.345及びSeq ID No.346は、いずれもSeq ID No.45が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.190は、Seq ID No.46が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.347は、Seq ID No.46が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.191は、Seq ID No.47が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.348は、Seq ID No.47が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.192は、Seq ID No.48が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.349は、Seq ID No.48が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.193は、Seq ID No.49が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.350は、Seq ID No.49が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.194は、Seq ID No.50が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.351は、Seq ID No.50が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.195及びSeq ID No.196は、いずれもSeq ID No.51が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.352及びSeq ID No.353は、いずれもSeq ID No.51が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.197は、Seq ID No.52が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.354は、Seq ID No.52が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.198及びSeq ID No.199は、いずれもSeq ID No.53が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.355及びSeq ID No.356は、いずれもSeq ID No.53が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.200は、Seq ID No.54が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.357は、Seq ID No.54が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.201及びSeq ID No.202は、いずれもSeq ID No.55が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.358及びSeq ID No.359は、いずれもSeq ID No.55が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.203及びSeq ID No.204は、いずれもSeq ID No.56が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.360及びSeq ID No.361は、いずれもSeq ID No.56が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.205及びSeq ID No.206は、いずれもSeq ID No.57が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.362及びSeq ID No.363は、いずれもSeq ID No.57が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.207及びSeq ID No.208は、いずれもSeq ID No.58が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.364及びSeq ID No.365は、いずれもSeq ID No.58が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.209及びSeq ID No.210は、いずれもSeq ID No.59が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.366及びSeq ID No.367は、いずれもSeq ID No.59が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.211は、Seq ID No.60が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.368は、Seq ID No.60が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.212及びSeq ID No.213は、いずれもSeq ID No.61が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.369及びSeq ID No.370は、いずれもSeq ID No.61が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.214は、Seq ID No.62が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.371は、Seq ID No.62が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.215は、Seq ID No.63が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.372は、Seq ID No.63が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.216は、Seq ID No.64が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.373は、Seq ID No.64が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.217は、Seq ID No.65が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.374は、Seq ID No.65が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.218は、Seq ID No.66が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.375は、Seq ID No.66が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.219は、Seq ID No.67が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.376は、Seq ID No.67が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.220は、Seq ID No.68が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.377は、Seq ID No.68が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.221は、Seq ID No.69が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.378は、Seq ID No.69が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.222は、Seq ID No.70が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.379は、Seq ID No.70が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.223は、Seq ID No.71が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.380は、Seq ID No.71が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.224は、Seq ID No.72が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.381は、Seq ID No.72が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.225は、Seq ID No.73が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.382は、Seq ID No.73が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.226は、Seq ID No.74が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.383は、Seq ID No.74が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.227は、Seq ID No.75が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.384は、Seq ID No.75が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.228及びSeq ID No.229は、いずれもSeq ID No.76が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.385及びSeq ID No.386は、いずれもSeq ID No.76が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.230は、Seq ID No.77が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.387は、Seq ID No.77が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.231は、Seq ID No.78が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.388は、Seq ID No.78が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.232は、Seq ID No.79が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.389は、Seq ID No.79が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.233は、Seq ID No.80が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.390は、Seq ID No.80が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.234は、Seq ID No.81が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.391は、Seq ID No.81が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.235は、Seq ID No.82が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.392は、Seq ID No.82が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.236は、Seq ID No.83が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.393は、Seq ID No.83が示す標的領域を標的とす
る高メチル化プローブである。Seq ID No.237は、Seq ID No.84が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.394は、Seq ID No.84が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.238は、Seq ID No.85が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.395は、Seq ID No.85が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.239は、Seq ID No.86が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.396は、Seq ID No.86が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.240は、Seq ID No.87が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.397は、Seq ID No.87が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.241は、Seq ID No.88が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.398は、Seq ID No.88が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.242は、Seq ID No.89が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.399は、Seq ID No.89が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.243は、Seq ID No.90が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.400は、Seq ID No.90が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.244は、Seq ID No.91が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.401は、Seq ID No.91が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.245は、Seq ID No.92が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.402は、Seq ID No.92が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.246は、Seq ID No.93が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.403は、Seq ID No.93が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.247は、Seq ID No.94が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.404は、Seq ID No.94が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.248は、Seq ID No.95が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.405は、Seq ID No.95が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.249は、Seq ID No.96が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.406はSeq ID No.96が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.250は、Seq ID No.97が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.407は、Seq ID No.97が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.251は、Seq ID No.98が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.408は、Seq ID No.98が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.252は、Seq ID No.99が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.409は、Seq ID No.99が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.253は、Seq ID No.100が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.410は、Seq ID No.100が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.254は、Seq ID No.101が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.411は、Seq ID No.101が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.255及びSeq ID No.256は、いずれもSeq ID No.102が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.412及びSeq ID No.413は、いずれもSeq ID No.102が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.257は、Seq ID No.103が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.414は、Seq ID No.103が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.258は、Seq ID No.104が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.415は、Seq ID No.104が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.259は、Seq ID No.105が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.416は、Seq ID No.105が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.260は、Seq ID No.106が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.417は、Seq ID No.106が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.261は、Seq ID No.107が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.418は、Seq ID No.107が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.262は、Seq ID No.108が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.419は、Seq ID No.108が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.263は、Seq ID No.109が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.420は、Seq ID No.109が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.264、Seq ID No.265、及びSeq ID No.266は、いずれもSeq ID No.110が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.421、Seq ID No.422、及びSeq ID No.423は、いずれもSeq ID No.110が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.267は、Seq ID No.111が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.424は、Seq ID No.111が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.268は、Seq ID No.112が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.425は、Seq ID No.112が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.269は、Seq ID No.113が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.426は、Seq ID No.113が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.270及びSeq ID No.271は、いずれもSeq ID No.114が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.427及びSeq ID No.428は、いずれもSeq ID No.114が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.272は、Seq ID No.115が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.429は、Seq ID No.115が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.273は、Seq ID No.116が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.430は、Seq ID No.116が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。Seq ID No.274は、Seq ID No.117が示す標的領域を標的とする低メチル化プローブであり、Seq ID No.431は、Seq ID No.117が示す標的領域を標的とする高メチル化プローブである。表1にプローブの標的とする標的配列を示す。
As shown in Table 1 below, Seq ID No. 118, Seq ID No. 119 and Seq ID No. 120 are all hypomethylated probes targeting the target region indicated by Seq ID No. 1, Seq ID No. 275, Seq ID No. 276 and Seq ID No. 277 are all hypermethylated probes targeting the target region indicated by Seq ID No. 1, Seq ID No. 121 and Seq ID No. 122 are all hypomethylated probes targeting the target region indicated by Seq ID No. 2, Seq ID No. 278 and Seq ID No. 279 are all hypermethylated probes targeting the target region indicated by Seq ID No. 2. Seq ID No. 123 and Seq ID No. 124 are both hypomethylated probes targeting the target region shown in Seq ID No. 3, and Seq ID No. 280 and Seq ID No. 281 are both hypermethylated probes targeting the target region shown in Seq ID No. 3. Seq ID No. 125 is a hypomethylated probe targeting the target region shown in Seq ID No. 4, and Seq ID No. 282 is a hypermethylated probe targeting the target region shown in Seq ID No. 4. Seq ID No. 126 and Seq ID No. 127 are both hypomethylated probes targeting the target region shown in Seq ID No. 3. Seq ID No. 128 is a hypomethylated probe targeted to the target region shown in Seq ID No. 6, Seq ID No. 285 is a hypermethylated probe targeted to the target region shown in Seq ID No. 6, Seq ID No. 129 is a hypomethylated probe targeted to the target region shown in Seq ID No. 7, Seq ID No. 286 is a hypermethylated probe targeted to the target region shown in Seq ID No. 7, Seq ID No. 130 and Seq ID No. Seq ID No. 130 is a low methylation probe targeting the target region shown in Seq ID No. 8, and Seq ID No. 287 and Seq ID No. 288 are high methylation probes targeting the target region shown in Seq ID No. 8. Seq ID No. 132, Seq ID No. 133 and Seq ID No. 134 are low methylation probes targeting the target region shown in Seq ID No. 9, and Seq ID No. 289, Seq ID No. 290 and Seq ID No. 291 are high methylation probes targeting the target region shown in Seq ID No. 9. Seq ID No. 135 is a low methylation probe targeting the target region shown in Seq ID No. 9. Seq ID No. 136 is a hypomethylated probe targeted to the target region designated Seq ID No. 11, Seq ID No. 293 is a hypermethylated probe targeted to the target region designated Seq ID No. 11, Seq ID No. 137 is a hypomethylated probe targeted to the target region designated Seq ID No. 12, Seq ID No. 294 is a hypermethylated probe targeted to the target region designated Seq ID No. 12, Seq ID No. 138 is a hypomethylated probe targeted to the target region designated Seq ID No. 12, Seq ID No. 295 is a hypermethylated probe targeted to the target region designated Seq ID No. 12, Seq ID No. 139 is a hypomethylated probe targeted to the target region designated Seq ID No. 136, Seq ID No. 294 is a hypermethylated probe targeted to the target region designated Seq ID No. 136, Seq ID No. 137 is a hypomethylated probe targeted to the target region designated Seq ID No. 12, Seq ID No. 295 is a hypermethylated probe targeted to the target region designated Seq ID No. 12, Seq ID No. 139 is a hypomethylated probe targeted to the target region designated Seq ID No. 136, Seq ID No. 292 is a hypermethylated probe targeted to the target region designated Seq ID No. 10, Seq ID No. 139 is a hypomethylated probe targeted to the target region designated Seq ID No. 1 Seq ID No. 13 is a hypomethylated probe targeting the target region shown in Seq ID No. 13, and Seq ID No. 295 is a hypermethylated probe targeting the target region shown in Seq ID No. 13. Seq ID No. 139 and Seq ID No. 140 are both hypomethylated probes targeting the target region shown in Seq ID No. 14, and Seq ID No. 296 and Seq ID No. 297 are both hypermethylated probes targeting the target region shown in Seq ID No. 14. Seq ID No. 141 and Seq ID No. 142 are both hypomethylated probes targeting the target region shown in Seq ID No. 15, and Seq ID No. 298 and Seq ID No. Seq ID No. 143 and Seq ID No. 144 are both low methylated probes targeting the target region shown in Seq ID No. 16, Seq ID No. 300 and Seq ID No. 301 are both high methylated probes targeting the target region shown in Seq ID No. 16, Seq ID No. 145 and Seq ID No. 146 are both low methylated probes targeting the target region shown in Seq ID No. 17, Seq ID No. 302 and Seq ID No. 303 are both low methylated probes targeting the target region shown in Seq ID No. 17, Seq ID No. 303 are both high methylated probes targeting the target region shown in Seq ID No. 17, Seq ID No. 304 and Seq ID No. 305 are both low methylated probes targeting the target region shown in Seq ID No. 17, Seq ID No. 306 and Seq ID No. 307 are both low methylated probes targeting the target region shown in Seq ID No. 17, Seq ID No. 308 and Seq ID No. 309 are both low methylated probes targeting the target region shown in Seq ID No. 18, Seq ID No. 309 and Seq ID No. 310 are both low methylated probes targeting the target region shown in Seq ID No. 18, Seq ID No. 301 and Seq ID No. 302 are both low methylated probes targeting the target region shown in Seq ID No. 18, Seq ID No. 303 and Seq ID No. 311 are both low methylated probes targeting the target region shown in Seq ID No. 18, Seq ID No. 304 and Seq ID No. 312 are both low methylated probes targeting the target region shown in Seq ID No. 18, Seq ID No. Seq ID No. 147 is a low methylation probe targeted to the target region shown in Seq ID No. 18, and Seq ID No. 304 is a high methylation probe targeted to the target region shown in Seq ID No. 18. Seq ID No. 148 and Seq ID No. 149 are both low methylation probes targeted to the target region shown in Seq ID No. 19, and Seq ID No. 305 and Seq ID No. 306 are both high methylation probes targeted to the target region shown in Seq ID No. 19. Seq ID No. 150 is a low methylation probe targeted to the target region shown in Seq ID No. 19. Seq ID No. 151 is a hypomethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 21, Seq ID No. 308 is a hypermethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 21, Seq ID No. 152 is a hypomethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 22, Seq ID No. 309 is a hypermethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 22. Seq ID No. 153, Seq ID No. 304 is a hypomethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 22, Seq ID No. 305 is a hypermethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 22. Seq ID No. 154 and Seq ID No. 155 are all hypomethylated probes targeting the target region shown in Seq ID No. 23, and Seq ID No. 310, Seq ID No. 311, and Seq ID No. 312 are all hypermethylated probes targeting the target region shown in Seq ID No. 23. Seq ID No. 156 and Seq ID No. 157 are all hypomethylated probes targeting the target region shown in Seq ID No. 24, and Seq ID No. 313 and Seq ID No. 314 are all hypermethylated probes targeting the target region shown in Seq ID No. 24. Seq ID No. 158 and Seq ID No. 159 are both hypomethylated probes targeting the target region shown in Seq ID No. 25, and Seq ID No. 315 and Seq ID No. 316 are both hypermethylated probes targeting the target region shown in Seq ID No. 25. Seq ID No. 160 and Seq ID No. 161 are both hypomethylated probes targeting the target region shown in Seq ID No. 26, and Seq ID No. 317 and Seq ID No. 318 are both hypermethylated probes targeting the target region shown in Seq ID No. 26. Seq ID No. 162 is both hypomethylated probes targeting the target region shown in Seq ID No. 26. Seq ID No. 163 and Seq ID No. 164 are both hypomethylated probes targeting the target region represented by Seq ID No. 28, Seq ID No. 320 and Seq ID No. 321 are both hypermethylated probes targeting the target region represented by Seq ID No. 28, Seq ID No. 165 and Seq ID No. 166 are both hypomethylated probes targeting the target region represented by Seq ID No. 29, Seq ID No. 322 and Seq ID No. 323 are both hypomethylated probes targeting the target region represented by Seq ID No. 29, Seq ID No. 324 and Seq ID No. 325 are both hypermethylated probes targeting the target region represented by Seq ID No. 29, Seq ID No. 165 and Seq ID No. 166 are both hypomethylated probes targeting the target region represented by Seq ID No. 29, Seq ID No. 326 and Seq ID No. 327 are both hypomethylated probes targeting the target region represented by Seq ID No. 29, Seq ID No. 328 and Seq ID No. 329 are both hypermethylated probes targeting the target region represented by Seq ID No. 29, Seq ID No. 329 and Seq ID No. 330 are both hypomethylated probes targeting the target region represented by Seq ID No. 29, Seq ID No. 331 and Seq ID No. 332 are both hypomethylated probes targeting the target region represented by Seq ID No. 29, Seq ID No. 333 and Seq ID No. 334 are both hypomethylated probes targeting the target region represented by Seq ID No. 29, Seq ID No. 335 and Seq ID No. 336 are both hypomethylated probes targeting the target region represented by Seq ID No. 29, Seq ID No. 3 Seq ID No. 167 is a low methylation probe targeted to the target region shown in Seq ID No. 30, and Seq ID No. 324 is a high methylation probe targeted to the target region shown in Seq ID No. 30. Seq ID No. 168 and Seq ID No. 169 are low methylation probes targeted to the target region shown in Seq ID No. 31, and Seq ID No. 325 and Seq ID No. 326 are high methylation probes targeted to the target region shown in Seq ID No. 31. Seq ID No. 170 is a low methylation probe targeted to the target region shown in Seq ID No. 30. Seq ID No. 327 is a low methylated probe targeting the target region shown in Seq ID No. 32. Seq ID No. 171 and Seq ID No. 172 are both low methylated probes targeting the target region shown in Seq ID No. 33. Seq ID No. 328 and Seq ID No. 329 are both high methylated probes targeting the target region shown in Seq ID No. 33. Seq ID No. 173 is a low methylated probe targeting the target region shown in Seq ID No. 34. Seq ID No. 330 is a high methylated probe targeting the target region shown in Seq ID No. 34. Seq ID No. 174 and Seq ID No. 175 are both hypomethylated probes targeting the target region shown in Seq ID No. 35, and Seq ID No. 331 and Seq ID No. 332 are both hypermethylated probes targeting the target region shown in Seq ID No. 35. Seq ID No. 176 is a hypomethylated probe targeting the target region shown in Seq ID No. 36, and Seq ID No. 333 is a hypermethylated probe targeting the target region shown in Seq ID No. 36. Seq ID No. 177 and Seq ID No. 178 are both hypomethylated probes targeting the target region shown in Seq ID No. 35. Seq ID No. 179 and Seq ID No. 180 are both hypomethylated probes targeted to the target region shown in Seq ID No. 38, and Seq ID No. 336 and Seq ID No. 337 are both hypermethylated probes targeted to the target region shown in Seq ID No. 38. Seq ID No. 181 is a hypomethylated probe targeted to the target region shown in Seq ID No. 39, and Seq ID No. 338 is a hypermethylated probe targeted to the target region shown in Seq ID No. 38. Seq ID No. 182 and Seq ID No. 183 are both low methylated probes targeting the target region represented by Seq ID No. 40, and Seq ID No. 339 and Seq ID No. 340 are both high methylated probes targeting the target region represented by Seq ID No. 40. Seq ID No. 184 is a low methylated probe targeting the target region represented by Seq ID No. 41, and Seq ID No. 341 is a high methylated probe targeting the target region represented by Seq ID No. 41. Seq ID No. 185 is a low methylated probe targeting the target region represented by Seq ID No. 41. Seq ID No. 187 is a hypomethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 44 and Seq ID No. 344 is a hypermethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 44. Seq ID No. 188 and Seq ID No. 342 are hypomethylated probes targeted to the target region represented by Seq ID No. 42 and hypermethylated probes targeted to the target region represented by Seq ID No. 42. Seq ID No. 186 is a hypomethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 43 and Seq ID No. 343 is a hypermethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 43. Seq ID No. 187 is a hypomethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 44 and Seq ID No. 344 is a hypermethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 44. Seq ID No. 189 is a low methylated probe targeting the target region shown in Seq ID No. 45, and Seq ID No. 345 and Seq ID No. 346 are high methylated probes targeting the target region shown in Seq ID No. 45. Seq ID No. 190 is a low methylated probe targeting the target region shown in Seq ID No. 46, and Seq ID No. 347 is a high methylated probe targeting the target region shown in Seq ID No. 46. Seq ID No. 191 is a low methylated probe targeting the target region shown in Seq ID No. 47, and Seq ID No. 348 is a high methylated probe targeting the target region shown in Seq ID No. 47. Seq ID No. 192 is a hypomethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 48, and Seq ID No. 349 is a hypermethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 48. Seq ID No. 193 is a hypomethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 49, and Seq ID No. 350 is a hypermethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 49. Seq ID No. 194 is a hypomethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 50, and Seq ID No. 351 is a hypermethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 50. Seq ID No. 195 and Seq ID No. 196 are both hypomethylated probes targeting the target region shown in Seq ID No. 51, and Seq ID No. 352 and Seq ID No. 353 are both hypermethylated probes targeting the target region shown in Seq ID No. 51. Seq ID No. 197 is a hypomethylated probe targeting the target region shown in Seq ID No. 52, and Seq ID No. 354 is a hypermethylated probe targeting the target region shown in Seq ID No. 52. Seq ID No. 198 and Seq ID No. 199 are both hypomethylated probes targeting the target region shown in Seq ID No. 52. Seq ID No. 200 is a hypomethylated probe targeted to the target region shown in Seq ID No. 54, Seq ID No. 357 is a hypermethylated probe targeted to the target region shown in Seq ID No. 54, Seq ID No. 201 and Seq ID No. 202 are hypomethylated probes targeted to the target region shown in Seq ID No. 55, Seq ID No. 358 and Seq ID No. 359 are hypomethylated probes targeted to the target region shown in Seq ID No. 54, ...0 is a hypomethylated probe targeted to the target region shown in Seq ID No. 54, Seq ID No. 200 is a hypomethylated probe targeted to the target region shown in Seq ID No. 54, Seq ID No. 357 is a hypermethylated probe targeted to the target region shown in Seq ID No. 54, Seq ID No. 200 is a hypomethylated probe targeted to the target region shown in Seq ID No. 54, Seq ID No. 200 is a hypomethylated probe targeted to the target region shown in Seq ID No. 54, Seq ID No. Seq ID No. 203 and Seq ID No. 204 are both low methylated probes targeting the target region shown in Seq ID No. 56, and Seq ID No. 360 and Seq ID No. 361 are both high methylated probes targeting the target region shown in Seq ID No. 56. Seq ID No. 205 and Seq ID No. 206 are both low methylated probes targeting the target region shown in Seq ID No. 57, and Seq ID No. 362 and Seq ID No. 363 are both high methylated probes targeting the target region shown in Seq ID No. 57. Seq ID No. 207 and Seq ID No. 208 are both hypomethylated probes targeting the target region shown in Seq ID No. 58, and Seq ID No. 364 and Seq ID No. 365 are both hypermethylated probes targeting the target region shown in Seq ID No. 58. Seq ID No. 209 and Seq ID No. 210 are both hypomethylated probes targeting the target region shown in Seq ID No. 59, and Seq ID No. 366 and Seq ID No. 367 are both hypermethylated probes targeting the target region shown in Seq ID No. 59. Seq ID No. 211 is both hypomethylated probes targeting the target region shown in Seq ID No. 59. Seq ID No. 368 is a low methylated probe targeting the target region indicated by Seq ID No. 60, and Seq ID No. 369 is a high methylated probe targeting the target region indicated by Seq ID No. 61, Seq ID No. 212 and Seq ID No. 213 are both low methylated probes targeting the target region indicated by Seq ID No. 61, and Seq ID No. 369 and Seq ID No. 370 are both high methylated probes targeting the target region indicated by Seq ID No. 61, Seq ID No. 214 is a low methylated probe targeting the target region indicated by Seq ID No. 62, and Seq ID No. 371 is a high methylated probe targeting the target region indicated by Seq ID No. 62. Seq ID No. 215 is a hypomethylated probe targeted to the target region designated Seq ID No. 63, and Seq ID No. 372 is a hypermethylated probe targeted to the target region designated Seq ID No. 63. Seq ID No. 216 is a hypomethylated probe targeted to the target region designated Seq ID No. 64, and Seq ID No. 373 is a hypermethylated probe targeted to the target region designated Seq ID No. 64. Seq ID No. 217 is a hypomethylated probe targeted to the target region designated Seq ID No. 65, and Seq ID No. 374 is a hypermethylated probe targeted to the target region designated Seq ID No. 65. Seq ID No. 218 is a hypomethylated probe targeted to the target region designated Seq ID No. 66, and Seq ID No. 375 is a hypermethylated probe targeted to the target region designated Seq ID No. 66. Seq ID No. 219 is a hypomethylated probe targeted to the target region designated Seq ID No. 67, and Seq ID No. 376 is a hypermethylated probe targeted to the target region designated Seq ID No. 67. Seq ID No. 220 is a hypomethylated probe targeted to the target region designated Seq ID No. 68, and Seq ID No. 377 is a hypermethylated probe targeted to the target region designated Seq ID No. 68. Seq ID No. 221 is a hypomethylated probe targeted to the target region designated Seq ID No. 69, and Seq ID No. 378 is a hypermethylated probe targeted to the target region designated Seq ID No. 69. Seq ID No. 222 is a hypomethylated probe targeted to the target region designated Seq ID No. 70, and Seq ID No. 379 is a hypermethylated probe targeted to the target region designated Seq ID No. 70. Seq ID No. 223 is a hypomethylated probe targeted to the target region designated Seq ID No. 71, and Seq ID No. 380 is a hypermethylated probe targeted to the target region designated Seq ID No. 71. Seq ID No. 224 is a hypomethylated probe targeted to the target region designated Seq ID No. 72, and Seq ID No. 381 is a hypermethylated probe targeted to the target region designated Seq ID No. 72. Seq ID No. 225 is a hypomethylated probe targeted to the target region designated Seq ID No. 73, and Seq ID No. 382 is a hypermethylated probe targeted to the target region designated Seq ID No. 73. Seq ID No. 226 is a hypomethylated probe targeted to the target region designated Seq ID No. 74, and Seq ID No. 383 is a hypermethylated probe targeted to the target region designated Seq ID No. 74. Seq ID No. 227 is a hypomethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 75, and Seq ID No. 384 is a hypermethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 75. Seq ID No. 228 and Seq ID No. 229 are both hypomethylated probes targeted to the target region represented by Seq ID No. 76, and Seq ID No. 385 and Seq ID No. 386 are both hypermethylated probes targeted to the target region represented by Seq ID No. 76. Seq ID No. 230 is a hypomethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 77, and Seq ID No. 385 is a hypermethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 76. Seq ID No. 231 is a hypomethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 78, and Seq ID No. 388 is a hypermethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 78, Seq ID No. 232 is a hypomethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 79, and Seq ID No. 389 is a hypermethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 79, Seq ID No. 233 is a hypomethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 80, and Seq ID No. 389 is a hypermethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 79, Seq ID No. 234 is a hypomethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 80, and Seq ID No. 387 is a hypermethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 77, Seq ID No. 231 is a hypomethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 78, and Seq ID No. 388 is a hypermethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 78, Seq ID No. 232 is a hypomethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 79, and Seq ID No. 389 is a hypermethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 79, Seq ID No. 233 is a hypomethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 80, and Seq ID No. Seq ID No. 390 is a hypermethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 80. Seq ID No. 234 is a hypomethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 81, and Seq ID No. 391 is a hypermethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 81. Seq ID No. 235 is a hypomethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 82, and Seq ID No. 392 is a hypermethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 82. Seq ID No. 236 is a hypomethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 83, and Seq ID No. 392 is a hypermethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 82. Seq ID No. 237 is a hypomethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 84, and Seq ID No. 394 is a hypermethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 84, Seq ID No. 238 is a hypomethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 85, and Seq ID No. 395 is a hypermethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 85, Seq ID No. 239 is a hypomethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 86, and Seq ID No. 395 is a hypermethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 85, Seq ID No. 239 is a hypomethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 86, and Seq ID No. 394 is a hypermethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 84, Seq ID No. 239 is a hypomethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 86, and Seq ID No. 395 is a hypermethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 86, Seq ID No. 240 is a hypomethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 87, and Seq ID No. 397 is a hypermethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 87. Seq ID No. 241 is a hypomethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 88, and Seq ID No. 398 is a hypermethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 88. Seq ID No. 242 is a hypomethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 89, and Seq ID No. 397 is a hypermethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 87. Seq ID No. 399 is a hypermethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 89. Seq ID No. 243 is a hypomethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 90, and Seq ID No. 400 is a hypermethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 90. Seq ID No. 244 is a hypomethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 91, and Seq ID No. 401 is a hypermethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 91. Seq ID No. 245 is a hypomethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 92, and Seq ID No. 402 is a hypermethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 92. Seq ID No. 402 is a hypermethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 92. Seq ID No. 246 is a hypomethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 93, and Seq ID No. 403 is a hypermethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 93. Seq ID No. 247 is a hypomethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 94, and Seq ID No. 404 is a hypermethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 94. Seq ID No. 248 is a hypomethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 95, and Seq ID No. 405 is a hypermethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 96. Seq ID No. 249 is a hypomethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 96, and Seq ID No. 406 is a hypermethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 96. Seq ID No. 250 is a hypomethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 97, and Seq ID No. 407 is a hypermethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 97. Seq ID No. 251 is a hypomethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 98, and Seq ID No. 405 is a hypermethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 95. Seq ID No. 249 is a hypomethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 96, and Seq ID No. 406 is a hypermethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 96. Seq ID No. 250 is a hypomethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 97, and Seq ID No. 407 is a hypermethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 97. Seq ID No. 251 is a hypomethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 98, and Seq ID No. Seq ID No. 253 is a hypomethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 100 and Seq ID No. 410 is a hypermethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 100. Seq ID No. 254 is a hypomethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 101 and Seq ID No. 408 is a hypermethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 98. Seq ID No. 252 is a hypomethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 99 and Seq ID No. 409 is a hypermethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 99. Seq ID No. 253 is a hypomethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 100 and Seq ID No. 410 is a hypermethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 100. Seq ID No. 254 is a hypomethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 101 and Seq ID No. 409 is a hypermethylated probe targeted to the target region represented by Seq ID No. 100. Seq ID No. 411 is a hypermethylated probe targeting the target region represented by Seq ID No. 101. Seq ID No. 255 and Seq ID No. 256 are both hypomethylated probes targeting the target region represented by Seq ID No. 102, and Seq ID No. 412 and Seq ID No. 413 are both hypermethylated probes targeting the target region represented by Seq ID No. 102. Seq ID No. 257 is a hypomethylated probe targeting the target region represented by Seq ID No. 103, and Seq ID No. 414 is a hypermethylated probe targeting the target region represented by Seq ID No. 103. Seq ID No. 258 is a hypomethylated probe targeted to the target region designated Seq ID No. 104, and Seq ID No. 415 is a hypermethylated probe targeted to the target region designated Seq ID No. 104. Seq ID No. 259 is a hypomethylated probe targeted to the target region designated Seq ID No. 105, and Seq ID No. 416 is a hypermethylated probe targeted to the target region designated Seq ID No. 105. Seq ID No. 260 is a hypomethylated probe targeted to the target region designated Seq ID No. 106, and Seq ID No. 417 is a hypermethylated probe targeted to the target region designated Seq ID No. 106. Seq ID No. 261 is a hypomethylated probe targeted to the target region designated Seq ID No. 107, and Seq ID No. 418 is a hypermethylated probe targeted to the target region designated Seq ID No. 107. Seq ID No. 262 is a hypomethylated probe targeted to the target region designated Seq ID No. 108, and Seq ID No. 419 is a hypermethylated probe targeted to the target region designated Seq ID No. 108. Seq ID No. 263 is a hypomethylated probe targeted to the target region designated Seq ID No. 109, and Seq ID No. 420 is a hypermethylated probe targeted to the target region designated Seq ID No. 109. Seq ID No. 264, Seq ID No. 265, and Seq ID No. 266 are all hypomethylated probes targeting the target region shown in Seq ID No. 110, and Seq ID No. 421, Seq ID No. 422, and Seq ID No. 423 are all hypermethylated probes targeting the target region shown in Seq ID No. 110. Seq ID No. 267 is a hypomethylated probe targeting the target region shown in Seq ID No. 111, and Seq ID No. 424 is a hypermethylated probe targeting the target region shown in Seq ID No. 111. Seq ID No. 268 is a hypomethylated probe targeting the target region shown in Seq ID No. 111. Seq ID No. 425 is a low methylated probe targeting the target region designated Seq ID No. 112, Seq ID No. 269 is a low methylated probe targeting the target region designated Seq ID No. 113, Seq ID No. 426 is a high methylated probe targeting the target region designated Seq ID No. 113, Seq ID No. 270 and Seq ID No. 271 are both low methylated probes targeting the target region designated Seq ID No. 114, Seq ID No. 427 and Seq ID No. 428 are both low methylated probes targeting the target region designated Seq ID No. 114, Seq ID No. 429 is a high methylated probe targeting the target region designated Seq ID No. 112, Seq ID No. 230 is a low methylated probe targeting the target region designated Seq ID No. 112, Seq ID No. 232 is a high methylated probe targeting the target region designated Seq ID No. 112, Seq ID No. 233 is a low methylated probe targeting the target region designated Seq ID No. 113, Seq ID No. 234 is a high methylated probe targeting the target region designated Seq ID No. 113, Seq ID No. 235 is a low methylated probe targeting the target region designated Seq ID No. 114, Seq ID No. 236 is a high methylated probe targeting the target region designated Seq ID No. 114, Seq ID No. 237 is a high methylated probe targeting the target region designated Seq ID No. 114, Seq ID No. 238 is a high methylated probe targeting the target region designated Seq ID No. 114, Seq ID No. 239 is a low methylated probe targeting the target region designated Seq ID No. 112, Seq ID No. 240 Seq ID No. 272 is a low methylation probe targeted to the target region designated Seq ID No. 115, and Seq ID No. 429 is a high methylation probe targeted to the target region designated Seq ID No. 115, Seq ID No. 273 is a low methylation probe targeted to the target region designated Seq ID No. 116, and Seq ID No. 430 is a high methylation probe targeted to the target region designated Seq ID No. 116, Seq ID No. 274 is a low methylation probe targeted to the target region designated Seq ID No. 117, and Seq ID No. 431 is a high methylation probe targeted to the target region designated Seq ID No. 117, The hypermethylated probe targets the target region indicated by 117. Table 1 shows the target sequences targeted by the probes.

本願の1つの具体的な実施形態において、上記プローブ組成物における各プローブの長さは、40~60bpであり、好ましくは、45~56bpであり、好ましくは、50~56bpであり、さらに好ましくは、50bpである。 In one specific embodiment of the present application, the length of each probe in the above probe composition is 40 to 60 bp, preferably 45 to 56 bp, preferably 50 to 56 bp, and more preferably 50 bp.

本願は、さらに、キットを提供する。 The present application further provides a kit.

本願の1つの具体的な実施形態において、前記キットは、上記いずれかの実施形態に記載のプローブ組成物を含む。 In one specific embodiment of the present application, the kit includes a probe composition described in any of the above embodiments.

本願は、さらに、プローブ組成物の用途を提供する。 The present application further provides uses of the probe composition.

本願の1つの具体的な実施形態において、上記プローブ組成物は、食道癌、胃癌、結腸直腸癌、肺癌、肝臓癌、膵臓癌、前立腺癌、乳癌、卵巣癌、子宮頸癌及び子宮内膜癌を検出するキットを製造するために用いられる。 In one specific embodiment of the present application, the probe composition is used to manufacture a kit for detecting esophageal cancer, gastric cancer, colorectal cancer, lung cancer, liver cancer, pancreatic cancer, prostate cancer, breast cancer, ovarian cancer, cervical cancer, and endometrial cancer.

本願は、さらに、チップを提供する。 The present application further provides a chip.

本願の1つの具体的な実施形態において、前記チップに上記いずれかの実施形態に記載のプローブ組成物が固定される。 In one specific embodiment of the present application, the probe composition described in any of the above embodiments is immobilized on the chip.

本願は、さらに、前記プローブ組成物を利用して食道癌、胃癌、結腸直腸癌、肺癌、肝臓癌、膵臓癌、前立腺癌、乳癌、卵巣癌、子宮頸癌及び子宮内膜癌等という11種類の癌を検出する方法を提供する。 The present application further provides a method for detecting 11 types of cancer, including esophageal cancer, gastric cancer, colorectal cancer, lung cancer, liver cancer, pancreatic cancer, prostate cancer, breast cancer, ovarian cancer, cervical cancer, and endometrial cancer, by utilizing the probe composition.

本願の1つの具体的な実施形態において、前記検出方法は、ハイブリダイゼーションによる捕捉方式を採用してcfDNAを濃縮し、かつNGS技術を用いて癌に密接に関連するメチル化部位を検出する。中国の発病率が最も高い6つの悪性腫瘍(肺癌、胃癌、結腸直腸癌、肝臓癌、乳癌及び食道癌)、及び悪性度が極めて高い膵臓癌を網羅する。また、他の3種類の女性腫瘍及び男性腫瘍(子宮頸癌、卵巣癌、子宮内膜癌、及び前立腺癌)を含む。最後に、検出された血漿cfDNAにおける遺伝子メチル化の変化レベルに基づいて、多重癌の早期スクリーニング及び早期診断に情報を提供する。 In one specific embodiment of the present application, the detection method employs a hybridization capture method to enrich cfDNA, and uses NGS technology to detect methylation sites closely related to cancer. It covers the six malignant tumors with the highest incidence in China (lung cancer, gastric cancer, colorectal cancer, liver cancer, breast cancer, and esophageal cancer), and pancreatic cancer, which has a very high malignancy. It also includes other three types of female and male tumors (cervical cancer, ovarian cancer, endometrial cancer, and prostate cancer). Finally, it provides information for early screening and early diagnosis of multiple cancers based on the change levels of gene methylation in the detected plasma cfDNA.

本願は、また、前記キットを利用して上記11種類の癌のメチル化レベルの変化を同時に検出する方法も提供する。 The present application also provides a method for simultaneously detecting changes in the methylation levels of the above 11 types of cancer using the kit.

具体的には、本願は、被験者の11種類の癌のインビトロ検出方法に関し、この方法は、被験者サンプルを採取するステップと、前記サンプルにおけるDNAを抽出し精製するステップと、精製されたDNAサンプルに対して配列決定用のDNAライブラリーを構築するステップと、前記構築されたDNAライブラリーを重亜硫酸塩で変換するステップと、プレPCRにより前記重亜硫酸塩で変換されたDNAライブラリーを増幅するステップと、プローブ組成物を利用してプレPCRにより増幅されたサンプルに対してハイブリダイゼーションによる捕捉を行うステップと、PCRを利用してハイブリダイゼーションにより捕捉された生成物を増幅するステップと、PCR増幅後のハイブリダイゼーションにより捕捉された生成物に対してハイスループット次世代配列決定を行うステップと、配列決定データを分析し、サンプルのメチル化レベルを決定するステップと、前記サンプルのメチル化レベルに基づいて前記患者の罹患状況を判読するステップとを含む。 Specifically, the present application relates to an in vitro method for detecting eleven types of cancer in a subject, the method including the steps of collecting a subject sample, extracting and purifying DNA in the sample, constructing a DNA library for sequencing from the purified DNA sample, converting the constructed DNA library with bisulfite, amplifying the bisulfite-converted DNA library by pre-PCR, performing hybridization capture on the pre-PCR amplified sample using a probe composition, amplifying the hybridization capture products using PCR, performing high-throughput next-generation sequencing on the hybridization capture products after PCR amplification, analyzing the sequencing data to determine the methylation level of the sample, and interpreting the disease status of the patient based on the methylation level of the sample.

具体的には、前記被験者は癌がかかる疑いがある。具体的には、採取された被験者サンプルは、血漿サンプルである。具体的には、前記変換は、重亜硫酸塩処理を用いる。 Specifically, the subject is suspected of having cancer. Specifically, the subject sample collected is a plasma sample. Specifically, the conversion uses a bisulfite treatment.

具体的には、前記プローブ組成物は、汎癌特異的領域を標的とする2つのプローブと、癌特異的領域を標的とするn個のプローブと、組織特異的領域を標的とするm個のプローブとを含む。前記プローブ組成物は、重亜硫酸塩で変換されたCGがメチル化されない前記癌特異的領域、汎癌特異的領域、及び組織特異的領域にハイブリダイズした低メチル化プローブと、重亜硫酸塩で変換されたCG全体がメチル化された前記癌特異的領域、汎癌特異的領域、及び組織特異的領域とハイブリダイズする高メチル化プローブとを含む。前記プローブ組成物における各プローブの長さは、40~60bpである。例えば、前記プローブ組成物における各プローブの長さは、45~56bpであり、好ましくは、50~56bpであり、さらに好ましくは、50bpである。 Specifically, the probe composition includes two probes targeting pan-cancer-specific regions, n probes targeting cancer-specific regions, and m probes targeting tissue-specific regions. The probe composition includes a low methylation probe hybridized to the cancer-specific region, pan-cancer-specific region, and tissue-specific region in which the bisulfite-converted CG is not methylated, and a high methylation probe hybridized to the cancer-specific region, pan-cancer-specific region, and tissue-specific region in which the entire bisulfite-converted CG is methylated. The length of each probe in the probe composition is 40 to 60 bp. For example, the length of each probe in the probe composition is 45 to 56 bp, preferably 50 to 56 bp, and more preferably 50 bp.

具体的には、前記プローブ組成物におけるn個のプローブは、癌特異的領域を標的とし、nは、1-192から選択される任意の整数であり、前記癌特異的領域は、Seq ID No.1-62のいずれかから選択される。前記プローブ組成物におけるm個のプローブは前記組織特異的領域を標的とし、mは、1-116から選択されるいずれかの整数であり、前記組織特異的領域は、Seq ID No.65-117のいずれかから選択される。前記低メチル化プローブは、癌特異的領域を標的とするプローブSeq ID No.118-214のいずれか、汎癌特異的領域を標的とするプローブSeq ID No.215-216のいずれか、及び組織特異的領域を標的とするプローブSeq ID No.217-274のいずれかを含む。前記高メチル化プローブは、癌特異的領域を標的とするプローブSeq ID No.275-371のいずれか、汎癌特異的領域を標的とするプローブSeq ID No.372-373のいずれか、及び組織特異的領域を標的とするプローブSeq ID No.374-431のいずれかを含む。 Specifically, the n probes in the probe composition target a cancer-specific region, n being any integer selected from 1-192, and the cancer-specific region being selected from any of Seq ID Nos. 1-62. The m probes in the probe composition target a tissue-specific region, m being any integer selected from 1-116, and the tissue-specific region being selected from any of Seq ID Nos. 65-117. The low methylation probe includes any of probes Seq ID Nos. 118-214 targeting a cancer-specific region, any of probes Seq ID Nos. 215-216 targeting a pan-cancer-specific region, and any of probes Seq ID Nos. 217-274 targeting a tissue-specific region. The high methylation probe includes any of probes Seq ID Nos. 217-274 targeting a cancer-specific region. These include any of probes Seq ID No. 275-371 targeting pan-cancer specific regions, any of probes Seq ID No. 372-373 targeting tissue specific regions, and any of probes Seq ID No. 374-431 targeting tissue specific regions.

具体的には、前記判読は、(1)汎癌特異的領域データベースを比較し、かつ判読して被験者が癌に罹患しているか否かを確認するステップと、(2)癌特異的領域データベースを比較し、かつ判読して被験者が罹患している癌がいくつかの疑われる癌のうちの1種類であることを確認するステップと、(3)組織特異的領域データベースを比較し、かつ判読して被験者の癌に罹患する部位を確認するステップと、を含む。前記ステップ(1)は、前記汎癌特異的領域Seq ID No.63のメチル化レベルが55%以上であるか否かを判断し、かつ前記汎癌特異的領域Seq ID No.64のメチル化レベルが60%以上であるか否かを判断し、Seq ID No.63のメチル化レベルが55%以上であり、かつSeq ID No.64のメチル化レベルが60%以上であると、前記患者が癌に罹患していると判読することを含む。前記ステップ(2)は、前記癌特異的領域を標的とするn個のプローブにおいて、n1個のプローブの標的とする領域のメチル化レベルがそれぞれの閾値以上であり、かつn1/n≧20%であり、好ましくは、n1/n≧30%であると、患者が組織特異的癌のいずれかに罹患していると判読することを含む。前記ステップ(3)は、前記組織特異的領域を標的とするm個のプローブのうちm1個のプローブの標的とする領域のメチル化レベルがそれぞれの閾値以上である場合、それぞれの閾値以上のm1個のプローブの標的とする組織をさらに分析し、かつ各組織の閾値以上であるプローブの個数をカウントし、患者の癌に罹患している組織が、メチル化レベルが閾値以上である、プローブの数が最も多い組織であると判読することを含む。下記表1には、各標的領域のメチル化の閾値も示される。 Specifically, the interpretation includes the steps of (1) comparing and interpreting the pan-cancer specific region database to determine whether the subject has cancer, (2) comparing and interpreting the cancer specific region database to determine whether the subject has cancer of one of several suspected cancers, and (3) comparing and interpreting the tissue specific region database to determine the site of the subject's cancer. The step (1) includes determining whether the methylation level of the pan-cancer specific region Seq ID No. 63 is 55% or more and determining whether the methylation level of the pan-cancer specific region Seq ID No. 64 is 60% or more, and interpreting the patient as having cancer if the methylation level of Seq ID No. 63 is 55% or more and the methylation level of Seq ID No. 64 is 60% or more. The step (2) includes determining that the patient is suffering from any of the tissue-specific cancers when the methylation levels of the regions targeted by n1 probes among the n probes targeting the cancer-specific region are equal to or greater than the respective thresholds and n1/n≧20%, preferably n1/n≧30%. The step (3) includes further analyzing the tissues targeted by the m1 probes that are equal to or greater than the respective thresholds when the methylation levels of the regions targeted by m1 probes among the m probes targeting the tissue-specific region are equal to or greater than the respective thresholds, counting the number of probes that are equal to or greater than the threshold for each tissue, and determining that the tissue suffering from the patient's cancer is the tissue with the largest number of probes that have a methylation level equal to or greater than the threshold. The methylation thresholds for each target region are also shown in Table 1 below.

実施例1:
図1に示すように、本願の実施フローは、具体的には以下のとおりである。
Example 1:
As shown in FIG. 1, the implementation flow of the present invention is specifically as follows.

1.1.cfDNAの抽出精製
1.1.1.血漿サンプルの調製:
4℃、2000gで血液サンプルを10min遠心分離し、血漿を新しい遠心分離管に移した。4℃、16000gで血漿サンプルを10min遠心分離し、使用された収集管タイプに基づいて、次のステップを実行し、本実験で使用された収集管タイプは、他である。
1.1. Extraction and purification of cfDNA 1.1.1. Preparation of plasma samples:
The blood samples were centrifuged at 2000g at 4°C for 10 min and the plasma was transferred to a new centrifuge tube. The plasma samples were centrifuged at 16000g at 4°C for 10 min and the following steps were performed based on the collection tube type used; the collection tube type used in this experiment is other.

1.1.2.溶解及び結合
1.1.2.1.以下の表に従って結合しようとする溶液/ビーズ混合物を用意し、その後に完全に均一に混合した。
1.1.2. Dissolution and binding 1.1.2.1. Prepare the solution/bead mixture to be bound according to the table below and then mix thoroughly to homogeneity.

適量の体積の血漿サンプルを添加した。
1.1.2.2.血漿サンプルと結合溶液/ビーズ混合物を完全に均一に混合した。
1.1.2.3.ローティッセリで10min十分に結合し、cfDNAを磁気ビーズに結合した。
1.1.2.4.溶液が清澄になるまで結合管を磁気スタンドに5min置き、磁気ビーズが磁気スタンドに完全に吸着された。
1.1.2.5.ピペットで上澄液を注意深く捨て、管を磁気スタンドに数分間保持し続け、ピペットで残留上澄液を除去した。
An appropriate volume of plasma sample was added.
1.1.2.2. The plasma sample and binding solution/bead mixture were mixed thoroughly and homogeneously.
1.1.2.3. The cfDNA was bound to the magnetic beads after thorough binding in a Rotisserie for 10 min.
1.1.2.4. The binding tube was placed on the magnetic stand for 5 min until the solution became clear and the magnetic beads were completely adsorbed to the magnetic stand.
1.1.2.5. Carefully discard the supernatant with a pipette, keep the tube on the magnetic stand for a few minutes, and remove the remaining supernatant with a pipette.

1.1.3.洗浄
1.1.3.1.ビーズを1mlの洗浄溶液に再懸濁した。
1.1.3.2.再懸濁液を新しい吸着されない1.5mlの遠心分離管に移した。結合管を残した。
1.1.3.3.ビーズ懸濁液を含有する遠心分離管を磁気スタンドに20s置いた。
1.1.3.4.分離して得られた上澄液を、洗浄結合管から吸い出し、洗浄後の残留ビーズを再懸濁液に再収集し、溶解/結合管を捨てた。
1.1.3.5.溶液が清澄になり、ビーズが磁気スタンドに凝集するまで管を磁気スタンドに2min置き、1mlのピペットで上澄液を除去した。
1.1.3.6.管を磁気スタンドに残し、200μLのピペットで残留した液体をできるだけ除去した。
1.1.3.7.管を磁気スタンドから取り外し、1mlの洗浄溶液を添加し、30sボルテックスした。
1.1.3.8.溶液が清澄になり、ビーズが磁気スタンドに凝集するまで磁気スタンドに2minに置き、1mlのピペットで上澄液を除去した。
1.1.3.9.管を磁気スタンドに残し、200μLのピペットで残留液体を完全に除去した。
1.1.3.10.管を磁気スタンドから取り外し、1mlの80%のエタノールを添加し、30sボルテックスした。
1.1.3.11.磁気スタンドに2min置き、溶液が清澄になり、1mlのピペットで上澄液を除去した。
1.1.3.12.管を磁気スタンドに残し、200μLのピペットで残留液体を除去した。
1.1.3.13.80%のエタノールで上記1.1.3.10.-1.1.3.12.のステップを1回繰り返し、上澄液をできるだけ除去した。
1.1.3.14.管を磁気スタンドに残し、空気にビーズを3~5分間乾燥させた。
1.1.3. Washing 1.1.3.1. The beads were resuspended in 1 ml of washing solution.
1.1.3.2. Transfer the resuspension to a new non-adsorbed 1.5 ml centrifuge tube. Leave the combined tube behind.
1.1.3.3. The centrifuge tube containing the bead suspension was placed on the magnetic stand for 20 s.
1.1.3.4. The resulting supernatant was aspirated from the wash bind tube, the remaining washed beads were recollected in the resuspension, and the lysis/bind tube was discarded.
1.1.3.5. Place the tube on the magnetic stand for 2 min until the solution was clear and the beads had clumped to the magnetic stand, then remove the supernatant with a 1 ml pipette.
1.1.3.6. The tube was left on the magnetic stand and as much residual liquid as possible was removed with a 200 μL pipette.
1.1.3.7. The tube was removed from the magnetic stand and 1 ml of Wash Solution was added and vortexed for 30 s.
1.1.3.8. Place on magnetic stand for 2 min until solution becomes clear and beads clump to the magnetic stand, then remove supernatant with 1 ml pipette.
1.1.3.9. The tube was left on the magnetic stand and any remaining liquid was completely removed with a 200 μL pipette.
1.1.3.10. The tube was removed from the magnetic stand and 1 ml of 80% ethanol was added and vortexed for 30 s.
1.1.3.11. Place on magnetic stand for 2 min until solution becomes clear and remove supernatant with 1 ml pipette.
1.1.3.12. The tube was left on the magnetic stand and residual liquid was removed with a 200 μL pipette.
1.1.3.13. The above steps 1.1.3.10. to 1.1.3.12. were repeated once using 80% ethanol, and the supernatant was removed as much as possible.
1.1.3.14. The tube was left on the magnetic stand and the beads were allowed to air dry for 3-5 minutes.

1.1.4.cfDNAの溶離
1.1.4.1.下記表に従って溶離液を加えた。
1.1.4. Elution of cfDNA 1.1.4.1. Eluents were added according to the table below.

1.1.4.2.5minボルテックスし、磁気スタンドに2min置き、溶液が清澄になり、上澄液中のcfDNAを吸い取った。
1.1.4.3.精製されたcfDNAを直ちに使用し、又は上澄液を新しい遠心分離管に移し、-20℃で保存した。
1.1.4.2. Vortex for 5 min, place on magnetic stand for 2 min until solution becomes clear, and aspirate off cfDNA in the supernatant.
1.1.4.3. Use the purified cfDNA immediately or transfer the supernatant to a new centrifuge tube and store at -20°C.

1.2.gDNAの断片化及び精製:
1.2.1.Qubit濃度に応じて、2μgのgDNAに、水を添加して125μlまで補充し、covarisの130μlの断片化管に加え、プログラムを、50W、20%、200サイクル、250sに設定した。
1.2. gDNA Fragmentation and Purification:
1.2.1. Depending on Qubit concentration, 2 μg gDNA was made up to 125 μl with water and added to a 130 μl shearing tube in a Covaris and the program was set to 50 W, 20%, 200 cycles, 250 s.

1.2.2.断片化が終了した後に1μlのサンプルに対してAgilent2100を用いて断片を検出し、正常に断片化した後に、サンプルの検出メインピークは、約150bp-200bpであった。
cfDNAサンプルについて、Agilent2100で、断片検出を行い、直接的にQubitを行って後続の実験のために用意した。
1.2.2. After the fragmentation was completed, 1 μl of the sample was used to detect the fragments using Agilent 2100, and after successful fragmentation, the main peak detected in the sample was about 150 bp-200 bp.
The cfDNA samples were subjected to fragment detection on the Agilent 2100 and directly subjected to Qubit to prepare them for subsequent experiments.

1.3.末端修復、3’端への「A」テイル化。
1.3.1.20ngの断片化されたgDNA又はcfDNAをPCRチューブに入れ、ヌクレアーゼフリー水を50μlになるまで加え、以下の試薬を加え、ボルテックスして均一に混合した。
1.3. End repair, adding an "A" tail to the 3' end.
1.3.1.20 ng of fragmented gDNA or cfDNA was placed in a PCR tube, and nuclease-free water was added to a volume of 50 μl. The following reagents were then added and vortexed to mix uniformly.

1.3.2.以下のプログラムを設定してPCR機器で反応を行った:ホットリッド温度85℃。 1.3.2. The reaction was run in a PCR machine with the following program: hot lid temperature 85°C.

1.4.リンカー連結及び精製:
1.4.1.以下の表を参照してリンカーを適切な濃度に予め希釈した。
1.4. Linker Ligation and Purification:
1.4.1. Pre-diluted the linker to the appropriate concentration, referring to the table below:

1.4.2.以下の表に従って以下の試薬を調製し、軽くピペッティングして均一に混合し、短時間遠心分離した。 1.4.2. Prepare the following reagents according to the table below, gently pipette to mix evenly, and briefly centrifuge.

1.4.3.以下のプログラムを設定してPCR機器で反応を行った:ホットリッドなし。 1.4.3. The reaction was run on a PCR machine using the following program: No hot lid.

1.4.4.以下の系に従って、精製された磁気ビーズを加えて実験を行った(Agencourt AMPure XP磁気ビーズを事前に室温にして振盪し均一に混合して使用に備える)。 1.4.4. Experiments were performed with purified magnetic beads according to the following system (Agencourt AMPure XP magnetic beads were brought to room temperature in advance, shaken to mix uniformly, and prepared for use):

1.4.4.1.軽くピペッティングして6回均一に混合した。
1.4.4.2.室温で5-15min静置してインキュベートし、PCRチューブを磁気スタンドに3min置いて溶液を清澄化した。
1.4.4.3.上澄液を除去し、PCRチューブを磁気スタンドに置き続け、PCRチューブ内に200μlの80%のエタノール溶液を加え、30s静置した。
1.4.4.4.上澄液を除去し、次にPCRチューブ内に200μlの80%のエタノール溶液を加え、30s静置した後に上澄液を完全に除去した(10μlのピペットを用いて底部に残留するエタノール溶液を除去することを薦める)。
1.4.4.5.室温で3-5min静置し、残留エタノールを完全に揮発させた。
1.4.4.6.22μlのヌクレアーゼフリー水を加え、PCRチューブを磁気スタンドから取り外し、軽くピペッティングし磁気ビーズを再懸濁し、気泡の生成を回避し、室温で2min静置した。
1.4.4.7.PCRチューブを磁気スタンドに2min置いて溶液を清澄化した。
1.4.4.8.ピペットで20μlの上澄液を吸引し、新しいPCRチューブに移した。
1.4.4.1. Gently pipette 6 times to mix evenly.
1.4.4.2. Incubate at room temperature stationary for 5-15 min, then place the PCR tube on a magnetic stand for 3 min to clarify the solution.
1.4.4.3. The supernatant was removed, and the PCR tube was placed on the magnetic stand. 200 μl of 80% ethanol solution was added to the PCR tube, and the tube was allowed to stand for 30 s.
1.4.4.4. Remove the supernatant, then add 200 μl of 80% ethanol solution to the PCR tube, leave it for 30 s, and then completely remove the supernatant (it is recommended to use a 10 μl pipette to remove the ethanol solution remaining at the bottom).
1.4.4.5. Allow to stand at room temperature for 3-5 minutes to completely evaporate the remaining ethanol.
1.4.4.6.22 μl of nuclease-free water was added, the PCR tube was removed from the magnetic stand, and the magnetic beads were resuspended by gently pipetting, avoiding the creation of air bubbles, and allowed to stand at room temperature for 2 min.
1.4.4.7. The PCR tube was placed on a magnetic stand for 2 min to clarify the solution.
1.4.4.8. 20 μl of the supernatant was aspirated with a pipette and transferred to a new PCR tube.

1.5重亜硫酸塩処理及び精製:
1.5.1.必要な試薬を予め取り出し、かつ溶解した。以下の表に基づいて各試薬を加えた。
1.5 Bisulfite Treatment and Purification:
1.5.1. Remove and dissolve the necessary reagents in advance. Add each reagent according to the table below.

1.5.2.DNA保護緩衝液に液体を加えると青色になった。軽くピペッティングして均一に混合し、次に2つの管に分けてPCR機器に置いた。
1.5.3.以下のプログラムを設定し、かつ実行した:ホットリッド105℃。
1.5.2. The liquid turned blue when added to the DNA protection buffer, gently pipetted to mix evenly, then split into two tubes and placed in the PCR machine.
1.5.3 The following program was set and run: Hot lid 105°C.

1.5.4.短時間で遠心分離して2つの管の同じサンプルを同一のきれいな1.5mlの遠心分離管に合わせた。
1.5.5.各サンプルに310μlの緩衝液BLを加え(サンプル量が100ngよりも少ないと、1μlのキャリアRNA(1μg/μl)を加える)、ボルテックスし均一に混合し、短時間で遠心分離した。
1.5.6.250μlの無水エタノールを各サンプルに加え、15sボルテックスし均一に混合し、短時間で遠心分離し、混合液を準備された対応するスピンカラムに入れた。
1.5.7.1min静置し、1min遠心分離し、収集管内の液体をスピンカラムに改めて移し、1min遠心分離し、遠心分離管の液体を捨てた。
1.5.8.500μlの緩衝液BWを加え(無水エタノールを添加するか否かに気をつける)、1min遠心分離し、廃液を捨てた。
1.5.9.500μlの緩衝液BDを加え(無水エタノールを添加するか否かに気をつける)、管にキャップを付けて、室温で15min放置した。1min遠心分離し、遠心分離後の液体を捨てた。
1.5.10.500μlの緩衝液BWを加え(無水エタノールを添加するか否かに気をつける)、1min遠心分離し、遠心分離後の液体を捨て、1回繰り返し、合計2回であった。
1.5.11.250μlの無水エタノールを加え、1min遠心分離し、スピンカラムを新しい2mlの収集管に置き、全ての残りの液体を捨てた。
1.5.12.スピンカラムをきれいな1.5mlの遠心分離管に置き、20μlのヌクレアーゼフリー水をスピンカラム膜の中央に加え、管にキャップを軽く付けて、室温で1min放置し、1min遠心分離した。
1.5.13.収集管中の液体をスピンカラムに改めて移し、室温で1min置き、1min遠心分離した。
1.5.4. Centrifuge briefly and combine the identical samples from the two tubes into identical clean 1.5 ml centrifuge tubes.
1.5.5. Add 310 μl of Buffer BL to each sample (if the sample amount is less than 100 ng, add 1 μl of Carrier RNA (1 μg/μl)), vortex to mix evenly, and briefly centrifuge.
1.5.6. 250 μl of absolute ethanol was added to each sample, vortexed for 15 s to mix evenly, briefly centrifuged, and the mixture was loaded onto the corresponding prepared spin column.
1.5.7.1 min was allowed to stand, then centrifuged for 1 min, the liquid in the collection tube was transferred to the spin column again, centrifuged for 1 min, and the liquid in the centrifuge tube was discarded.
1.5.8.Add 500 μl of Buffer BW (be careful not to add absolute ethanol), centrifuge for 1 min, and discard the waste liquid.
1.5.9. Add 500 μl of Buffer BD (be careful to add absolute ethanol), cap the tube and leave at room temperature for 15 min. Centrifuge for 1 min and discard the liquid after centrifugation.
1.5.10. Add 500 μl of buffer BW (be careful whether to add absolute ethanol), centrifuge for 1 min, discard the liquid after centrifugation, and repeat once, for a total of two times.
1.5.11. Add 250 μl of absolute ethanol, centrifuge for 1 min, place the spin column into a new 2 ml collection tube and discard all remaining liquid.
1.5.12. Place the spin column into a clean 1.5 ml centrifuge tube and add 20 μl of nuclease-free water to the center of the spin column membrane, loosely cap the tube, let sit at room temperature for 1 min, and centrifuged for 1 min.
1.5.13. The liquid in the collection tube was transferred back into the spin column, left at room temperature for 1 min, and centrifuged for 1 min.

1.6.ハイブリダイゼーション前のプレ増幅及び精製:
1.6.1.以下の表に従って反応系を調製し、ピペッティングして均一に混合し、短時間で遠心分離した。
1.6. Pre-amplification and purification before hybridization:
1.6.1. Prepare the reaction system according to the table below, mix uniformly by pipetting, and briefly centrifuge.

1.6.2.以下のプログラムを設定してPCRプログラムを起動した:ホットリッド105℃。 1.6.2. The PCR program was run with the following settings: Hot lid 105°C.

1.6.3.PCRサイクル数は、投入されたDNAの量に応じて調整され、基準データは、以下のように示された。 1.6.3. The number of PCR cycles was adjusted according to the amount of DNA input, and the baseline data was shown as follows:

1.6.4.反応終了後のPCRチューブに50μlのAgencourt AMPure XP磁気ビーズを加え、気泡の生成を避けるように、ピペットでピペッティングして均一に混合した(事前にAgencourt AMPure XPを室温で均一に混合してバランスした)。
1.6.5.室温で5-15minインキュベートし、PCRチューブを磁気スタンドに3min置いて溶液を清澄化した。
1.6.6.上澄液を除去し、PCRチューブを磁気スタンドに置き続け、PCRチューブ内に200μlの80%のエタノール溶液を添加し、30s静置した。
1.6.7.上澄液を除去し、次にPCRチューブ内に200μlの80%のエタノール溶液を加え、30s静置した後に上澄液を完全に除去した(10μlのピペットを用いて底部に残留するエタノール溶液を除去することを薦める)。
1.6.8.室温で5min静置し、残留エタノールを完全に揮発させた。
1.6.9.30μlのヌクレアーゼフリー水を加え、遠心分離管を磁気スタンドから取り外し、ピペットを使用し、軽くピペッティングして磁気ビーズを再懸濁した。
1.6.10.室温で2min静置し、200μlのPCRチューブを磁気スタンドに2min置いて溶液を清澄化した。
1.6.11.ピペットで上澄液を新しい200μlのPCRチューブに移し(アイスボックスに置き)、反応管にサンプル番号をマーク付けし、次の反応に備える。
1.6.12.1μlのサンプルを取ってQubitを用いてライブラリー濃度測定を行い、ライブラリー濃度を記録した。
1.6.13.1μlのサンプルに対してアジレント2100を用いてライブラリー断片の長さを測定し、ライブラリーの長さは、約270bp-320bpの間にあった。
1.6.4. After the reaction was completed, 50 μl of Agencourt AMPure XP magnetic beads were added to the PCR tube and mixed uniformly by pipetting to avoid the formation of air bubbles (Agencourt AMPure XP was mixed uniformly at room temperature in advance and balanced).
1.6.5. Incubate at room temperature for 5-15 min and then place the PCR tube on a magnetic stand for 3 min to clarify the solution.
1.6.6. The supernatant was removed, and the PCR tube was placed on the magnetic stand. 200 μl of 80% ethanol solution was added to the PCR tube and allowed to stand for 30 s.
1.6.7. Remove the supernatant, then add 200 μl of 80% ethanol solution to the PCR tube, leave it for 30 s, and then completely remove the supernatant (it is recommended to use a 10 μl pipette to remove the ethanol solution remaining at the bottom).
1.6.8. The mixture was left to stand at room temperature for 5 minutes to completely evaporate the remaining ethanol.
1.6.9.30 μl of nuclease free water was added, the centrifuge tube was removed from the magnetic stand, and using a pipette, the magnetic beads were resuspended by gently pipetting up and down.
1.6.10. Let stand at room temperature for 2 min, then place the 200 μl PCR tube on a magnetic stand for 2 min to clarify the solution.
1.6.11. Pipette the supernatant into a new 200 μl PCR tube (keep in icebox), mark the reaction tube with the sample number, and prepare it for the next reaction.
1.6.12.1 μl sample was taken to perform library concentration measurement using Qubit and the library concentration was recorded.
1.6.13. Library fragment lengths were measured using an Agilent 2100 on 1 μl samples and library lengths were between approximately 270 bp-320 bp.

1.7.サンプルとプローブとのハイブリダイゼーション:
1.7.1.以下の体系に応じてサンプルライブラリーと様々なHybブロッカーを均一に混合し、Bと表記した:
1.7. Hybridization of sample with probe:
1.7.1. The sample library and various Hyb Blockers were mixed homogeneously according to the following scheme and designated as B:

1.7.2.準備されたサンプルとHybブロッカーの混合物を真空濃縮遠心分離機に入れ、PCRチューブキャップを開き、遠心分離機を起動し、真空ポンプスイッチを開き、濃縮を開始した。
1.7.3.吸引され乾燥したサンプルを改めて約9μlのヌクレアーゼフリー水に溶解し、全体積が10μlであり、軽くピペッティングして均一に混合し、短時間で遠心分離した後に氷に置いて使用に備え、Bと表記した。
1.7.4.Hyb緩衝液を室温で融解し、融解した後に沈殿が出て、均一に混合した後に65℃の水浴槽内に置いて予熱し、完全に溶解した後(沈殿及び濁りがない)、20μlのHyb緩衝液を新しい200μlのPCRチューブ内に置き、チューブにキャップを付けて、Aと表記し、65℃の水浴槽内に置き続けてインキュベートして使用に備えた。
1.7.2. The prepared sample and HybBlocker mixture was placed into a vacuum concentration centrifuge, the PCR tube cap was opened, the centrifuge was started, the vacuum pump switch was opened, and concentration was started.
1.7.3. The aspirated and dried sample was dissolved again in about 9 μl of nuclease-free water to a total volume of 10 μl, gently pipetted to mix uniformly, centrifuged briefly, and then placed on ice for use, designated as B.
1.7.4. Thaw the Hyb buffer solution at room temperature. After thawing, precipitates were formed. After mixing uniformly, place in a water bath at 65°C to preheat. After complete dissolution (no precipitate or turbidity), place 20 μl of Hyb buffer solution in a new 200 μl PCR tube, cap the tube, label it as A, and continue to incubate in a water bath at 65°C for use.

1.7.5.iGeneTech Biotech(北京)有限公司により、以下の低メチル化プローブを合成した。
a)癌特異的領域を標的とするプローブSeq ID No.118-214のいずれか、b)汎癌特異的領域を標的とするプローブSeq ID No.215-216のいずれか、及びc)組織特異的領域を標的とするプローブSeq ID No.217-274のいずれか。
かつ、以下の高メチル化プローブを合成した。
d)癌特異的領域を標的とするプローブSeq ID No.275-371のいずれか、e)汎癌特異的領域を標的とするプローブSeq ID No.372-373のいずれか、及びf)組織特異的領域を標的とするプローブSeq ID No.374-431のいずれか。
かつ、a:b:c:d:e:f=1:1:1:1:1:1の比率でプローブ組成物を調製した。
1.7.5. The following hypomethylated probes were synthesized by iGeneTech Biotech (Beijing) Co., Ltd.
a) any of probes Seq ID Nos. 118-214 targeting cancer-specific regions, b) any of probes Seq ID Nos. 215-216 targeting pan-cancer-specific regions, and c) any of probes Seq ID Nos. 217-274 targeting tissue-specific regions.
In addition, the following hypermethylated probes were synthesized.
d) any of probes Seq ID Nos. 275-371 that target a cancer-specific region, e) any of probes Seq ID Nos. 372-373 that target a pan-cancer-specific region, and f) any of probes Seq ID Nos. 374-431 that target a tissue-specific region.
In addition, the probe composition was prepared in a ratio of a:b:c:d:e:f=1:1:1:1:1:1:1.

1.7.6.5μlのRNaseブロッカーと2μlのプローブ組成物を200μlのPCRチューブ内に置き、軽くピペッティングして均一に混合し、短時間で遠心分離した後に氷に置いて使用に備え、Cと表記した。
1.7.7.PCR機器パラメータを、ホットリッド100℃、95℃、5min、65℃で保持するように設定した。
1.7.8.PCRチューブBをPCR機器に置き、以上のプログラムを実行した。
1.7.9.PCR機器の温度が65℃に低下する時、PCRチューブAをPCR機器に置いてインキュベートし、PCR機器のホットリッドをつけた。
1.7.10.5min後、CをPCRに置いてインキュベートし、PCR機器のホットリッドを付けた。
1.7.11.PCRチューブCをPCR機器に2min置いた後、ピペットを13μlに調整し、PCRチューブAから13μlのHyb緩衝液を吸引してPCRチューブCに移し、全てのPCRチューブB内のサンプルを吸い取ってPCRチューブCに移し、10回軽くピペッティングし、十分に均一に混合し、大量の気泡の生成を回避し、チューブキャップを密封し、PCR機器にホットリッドをし、65℃で(16-24h)一晩インキュベートした。
1.7.6.5 μl of RNase blocker and 2 μl of probe composition were placed in a 200 μl PCR tube, gently pipetted to mix evenly, centrifuged briefly, and then placed on ice for preparation for use, designated as C.
1.7.7. PCR instrument parameters were set to hot lid 100°C, 95°C, 5 min, hold at 65°C.
1.7.8. Place PCR tube B in the PCR machine and run the above program.
1.7.9. When the temperature of the PCR instrument was reduced to 65°C, PCR tube A was placed in the PCR instrument and incubated, and the hot lid of the PCR instrument was turned on.
1.7.10. After 5 min, C was placed in the PCR and incubated, then the hot lid of the PCR machine was turned on.
1.7.11. After placing PCR tube C in the PCR machine for 2 min, adjust the pipette to 13 μl, aspirate 13 μl of Hyb buffer from PCR tube A and transfer it to PCR tube C, aspirate all the samples in PCR tube B and transfer them to PCR tube C, gently pipette 10 times to mix thoroughly and evenly, avoiding the generation of a large amount of air bubbles, seal the tube cap, put the hot lid on the PCR machine, and incubate at 65°C overnight (16-24 h).

1.8.標的領域DNAライブラリーの捕捉:
1.8.1.磁気ビーズを捕捉する準備
1.8.1.1.磁気ビーズ(Dynabeads MyOne Streptavidin T1磁気ビーズ)を4℃で取り出し、ボルテックスし振盪し再懸濁した。
1.8.1.2.50μlの磁気ビーズを新しいPCRチューブ内に置き、磁気スタンドに1min置いて溶液を清澄化し、上澄液を除去した。
1.8.1.3.磁気スタンドからPCRチューブを取り外し、200μLの結合緩衝液を加えて複数回軽くピペッティングして均一に混合し、磁気ビーズを再懸濁した。
1.8.1.4.磁気スタンドに1min置き、上澄液を除去した。
1.8.1.5.ステップ3-4を2回繰り返し、磁気ビーズを計3回洗浄した。
1.8.1.6.磁気スタンドからPCRチューブを取り出し、200μLの結合緩衝液を加えて6回軽くピペッティングして磁気ビーズを再懸濁して使用に備えた。
1.8. Capture of target region DNA library:
1.8.1. Preparation of magnetic beads for capture 1.8.1.1. Magnetic beads (Dynabeads MyOne Streptavidin T1 magnetic beads) were removed at 4° C. and resuspended by vortexing and shaking.
1.8.1.2. 50 μl of magnetic beads were placed into a new PCR tube and placed on the magnetic stand for 1 min to clarify the solution and the supernatant was removed.
1.8.1.3. Remove the PCR tube from the magnetic stand and add 200 μL of binding buffer and mix evenly by gently pipetting multiple times to resuspend the magnetic beads.
1.8.1.4. Place on magnetic stand for 1 min and remove supernatant.
1.8.1.5. Steps 3-4 were repeated twice to wash the magnetic beads a total of three times.
1.8.1.6. Remove the PCR tube from the magnetic stand and add 200 μL of Binding Buffer and gently pipette up and down 6 times to resuspend the magnetic beads and prepare for use.

1.8.2.標的DNAライブラリーの捕捉
1.8.2.1.ハイブリダイゼーション生成物PCRチューブCをPCR機器に保持し、準備された200μLの捕捉用磁気ビーズをハイブリダイゼーション後の生成物PCRチューブCに加え、ピペットで6回ピペッティングして均一に混合し、ローティッセリに置いて室温で30min結合した(回転速度は、好ましくは10回転/min以下である)。
1.8.2.2.PCRチューブを磁気スタンドに2min置いて溶液を清澄化し、上澄液を除去した。
1.8.2.3.PCRチューブC内に200μLの洗浄緩衝液1を加え、6回軽くピペッティングして均一に混合し、ローティッセリに置いて15min洗浄し(回転速度は、好ましくは10回転/min以下である)、次に短時間で遠心分離し、PCRチューブを磁気スタンドに2min置いて溶液を清澄化し、上澄液を除去した。
1.8.2.4.200μlの65℃で予熱した洗浄緩衝液2を加え、6回軽くピペッティングして均一に混合し、ミキサーに置いて65℃で10minインキュベートし、800回転/minの回転速度で洗浄した。
1.8.2.5.短時間で遠心分離し、PCRチューブを磁気スタンド上に2min置いて、上澄液を除去した。洗浄緩衝液2を用いて洗浄を2回繰り返し、合計3回であった。最後に洗浄緩衝液2を完全に除去した。
1.8.2.6.PCRチューブを磁気スタンドに置き続け、PCRチューブ内に200μlの80%のエタノールを添加し、30s静置した後にエタノール溶液を完全に除去し、室温で2min乾燥させた。
1.8.2.7.PCRチューブに30μLのヌクレアーゼフリー水を加え、磁気スタンドからPCRチューブを取り外し、6回軽くピペッティングして磁気ビーズを再懸濁して使用に備えた。
1.8.2. Capture of target DNA library 1.8.2.1. Place hybridization product PCR tube C in the PCR instrument, add 200 μL of prepared capture magnetic beads to post-hybridization product PCR tube C, pipette 6 times to mix evenly, and place on a rotisserie to bind at room temperature for 30 min (rotation speed is preferably 10 rpm or less).
1.8.2.2. The PCR tube was placed on a magnetic stand for 2 min to clarify the solution and the supernatant was removed.
1.8.2.3. Add 200 μL of Wash Buffer 1 into PCR tube C, gently pipette 6 times to mix evenly, place on a rotisserie to wash for 15 min (rotation speed is preferably 10 rpm or less), then briefly centrifuge, place the PCR tube on a magnetic stand for 2 min to clarify the solution, and remove the supernatant.
1.8.2.4. 200 μl of washing buffer 2 preheated at 65° C. was added, gently pipetted six times to mix evenly, placed on a mixer and incubated at 65° C. for 10 min, and washed at a rotation speed of 800 rpm.
1.8.2.5. Centrifuge briefly, place the PCR tube on a magnetic stand for 2 min, and remove the supernatant. Repeat washing with Wash Buffer 2 twice for a total of 3 times. Finally, remove Wash Buffer 2 completely.
1.8.2.6. The PCR tube was placed on the magnetic stand, 200 μl of 80% ethanol was added to the PCR tube, and the tube was left to stand for 30 s, after which the ethanol solution was completely removed and the tube was dried at room temperature for 2 min.
1.8.2.7. Add 30 μL of nuclease-free water to the PCR tube, remove the PCR tube from the magnetic stand, and gently pipette up and down 6 times to resuspend the magnetic beads and prepare for use.

1.9.捕捉後の増幅及び精製
1.9.1.以下の表に基づいて反応系を調製して捕捉ライブラリーの濃縮を行い、軽くピペッティングして均一に混合した後、短時間で遠心分離した。
1.9. Post-capture amplification and purification 1.9.1. Prepare a reaction system according to the table below to concentrate the captured library, mix uniformly by gentle pipetting, and then briefly centrifuge.

1.9.2.以下のプログラムを設定し、サンプルをPCR機器に置き、プログラムを実行する:ホットリッド105℃。 1.9.2. Set up the following program, place the samples in the PCR instrument and run the program: Hot lid 105°C.

1.9.3.PCRが終了した後にサンプルに55μlのAgencourt AMPure XP磁気ビーズを加え、ピペットで軽くピペッティングして均一に混合した。
1.9.4.室温で5minインキュベートし、PCRチューブを磁気スタンドに3min置いて溶液を清澄化した。
1.9.5.上澄液を除去し、PCRチューブを磁気スタンドに置き続け、200μlの80%の無水エタノールを加え、30s静置した。
1.9.6.上澄液を除去し、次にPCRチューブ内に200μlの80%の無水エタノールを添加し、30s静置した後に上澄液を完全に除去した。
1.9.7.室温で5min放置することにより、残留エタノールを完全に揮発させた。
1.9.8.25μlのヌクレアーゼフリー水を加え、PCRチューブを磁気スタンドから取り外し、軽くピペッティングして均一に混合して磁気ビーズを再懸濁し、室温で2min置いた。
1.9.9.PCRチューブを磁気スタンドに2min置いて溶液を清澄化した。
1.9.10.ピペットで23μlの上澄液を吸い取って1.5mlの遠心分離管に移し、サンプル情報を付けた。
1.9.11.1μlのライブラリーを取ってQubitを用いて定量し、ライブラリー濃度を記録した。
1.9.12.サンプルを1μl取り、Agilent2100を用いてライブラリー断片の長さを測定した。
1.9.13.Illuminaハイスループット配列決定プラットフォームを用いて配列決定を行った。
1.9.3. After PCR was completed, 55 μl of Agencourt AMPure XP magnetic beads were added to the samples and mixed evenly by gently pipetting.
1.9.4. Incubate at room temperature for 5 min and place the PCR tube on a magnetic stand for 3 min to clarify the solution.
1.9.5. Remove the supernatant and, while still placing the PCR tube on the magnetic stand, add 200 μl of 80% absolute ethanol and let stand for 30 s.
1.9.6. The supernatant was removed, and then 200 μl of 80% absolute ethanol was added to the PCR tube. After standing for 30 s, the supernatant was completely removed.
1.9.7. The remaining ethanol was allowed to evaporate completely by leaving it at room temperature for 5 minutes.
1.9.8.25 μl of nuclease-free water was added, the PCR tube was removed from the magnetic stand, gently pipetted to mix evenly to resuspend the magnetic beads, and the tube was left at room temperature for 2 min.
1.9.9. The PCR tube was placed on a magnetic stand for 2 min to clarify the solution.
1.9.10. Pipette 23 μl of supernatant into a 1.5 ml centrifuge tube and label with sample information.
1.9.11.1 μl of library was taken and quantified using Qubit and the library concentration was recorded.
1.9.12. 1 μl of sample was taken and library fragment lengths were measured using Agilent 2100.
1.9.13. Sequencing was performed using the Illumina high-throughput sequencing platform.

1.10.メチル化生体情報の分析フローとして、一般的に、trimmomatic等の品質制御ソフトウェアを使用して配列決定品質をチェックし、低品質のリードを除去し、その後にBismarker等の比較ソフトウェアを用いて品質制御後のクリーンなデータを参照ゲノムと照合し、methykit等のRパッケージを用いて対応するメチル化部位を抽出した。最後に、Panel上の各標的領域のメチル化比率を算出した。 1.10. The analytical flow of methylation bioinformation is generally to check the sequencing quality using quality control software such as trimmomatic and remove low-quality reads, then compare the clean data after quality control with the reference genome using comparison software such as Bismarker, and extract the corresponding methylation sites using an R package such as methykit. Finally, the methylation ratio of each target region on the panel was calculated.

実施例2
病理学的に評価されたサンプルを一例として、本願のPanel検出を採用し、実施例1の方法で末梢血を採取する。ライブラリーを構築し、Illuminaプラットフォームにより配列決定する。配列決定データは、生体情報の分析フローにより処理され、メチル化レベルを得て、結果は、以下の表19に示すとおりである(表19は、検出されたメチル化閾値以上の標的領域を示す)。
Example 2
Taking the pathologically evaluated sample as an example, the Panel detection of the present application is adopted, and peripheral blood is collected by the method of Example 1. A library is constructed and sequenced by the Illumina platform. The sequencing data is processed by the bioinformation analysis flow to obtain the methylation level, and the results are shown in Table 19 below (Table 19 shows the target regions above the methylation threshold that were detected).

検出サンプルに対してパターン認識分類同定を行い、まず、汎癌特異的マーカーTBX15及びCRYGD遺伝子のメチル化レベルが55%及び60%以上であることを判読すると、該サンプルが、癌に罹患しているサンプルであると予備的に判断し、次に、癌特異的マーカーOTX1、SFRP2、CDO1、TRIM15、ALX4、CCNA1のメチル化レベルがいずれも表1に示されたそれぞれの閾値以上である(上記表19に示すとおりである)と判読すると、該サンプルが、以下の11種類の癌(食道癌、胃癌、結腸直腸癌、肺癌、肝臓癌、膵臓癌、前立腺癌、乳癌、卵巣癌、子宮頸癌及び子宮内膜癌)における任意の癌に罹患しているサンプルであると判断し、最後に、組織特異的マーカーを判読し、表19におけるそれぞれの閾値以上の標的領域に基づいて、胃組織特異性の6つの標的領域Seq ID No.81、Seq ID No.82、Seq ID No.97、Seq ID No.98、Seq ID No.99及びSeq ID No.100がそれぞれのメチル化レベルの閾値以上であり、他の組織特異的マーカーのメチル化がそのそれぞれの閾値以上ではないことが分かり、したがって、それぞれのメチル化閾値以上の組織特異的マーカーにおいて、胃組織特異的マーカーが最も多い場合、最終的に、該サンプルが胃癌に罹患しているサンプルであると判断する。
該患者は、術後48時間後に、再び採血し、本願のPanel検出を採用し、実施例1の方法で末梢血を採取する。ライブラリーを構築し、かつIlluminaプラットフォームにより配列決定し、配列決定データは、上記生体情報の分析フローにより処理され、パターン認識の方法で、全ての配列決定データを分析し、結果は、上表における遺伝子メチル化レベルが正常なレベルに復帰することを示す。
Pattern recognition classification identification is performed on the detected samples. First, if the methylation levels of the pan-cancer specific markers TBX15 and CRYGD genes are determined to be 55% and 60% or more, the sample is preliminarily determined to be a sample suffering from cancer. Next, if the methylation levels of the cancer specific markers OTX1, SFRP2, CDO1, TRIM15, ALX4, and CCNA1 are all determined to be equal to or higher than the respective thresholds shown in Table 1 (as shown in Table 19 above), the sample is determined to be a sample suffering from any of the following 11 types of cancer (esophageal cancer, gastric cancer, colorectal cancer, lung cancer, liver cancer, pancreatic cancer, prostate cancer, breast cancer, ovarian cancer, cervical cancer, and endometrial cancer). Finally, the tissue-specific markers are determined to be equal to or higher than the respective thresholds shown in Table 19, and six target regions Seq ID No. 81, Seq ID No. 82, Seq ID No. 83, Seq ID No. 84, Seq ID No. 85, Seq ID No. 86, Seq ID No. 87, Seq ID No. 88, Seq ID No. 89, Seq ID No. 90, Seq ID No. 91, Seq ID No. 92, Seq ID No. 93, Seq ID No. 94, Seq ID No. 95, Seq ID No. 96, Seq ID No. 97, Seq ID No. 98, Seq ID No. 99, Seq ID No. 99, Seq ID No. 91, Seq ID No. 94, Seq ID No. 95, Seq ID No. 96, Seq ID No. 97, Seq ID No. 99, Seq ID No. 99, Seq ID No. 98, Seq ID No. 99, Seq ID No. If it is found that Seq ID No. 82, Seq ID No. 97, Seq ID No. 98, Seq ID No. 99 and Seq ID No. 100 are above their respective methylation thresholds, and the methylation of other tissue-specific markers is not above their respective thresholds, and therefore, among the tissue-specific markers above their respective methylation thresholds, stomach tissue-specific markers are the most abundant, then the sample is finally determined to be a sample affected by gastric cancer.
The patient's blood was collected again 48 hours after the operation, and the Panel detection of the present application was adopted to collect peripheral blood by the method of Example 1. A library was constructed and sequenced by the Illumina platform, and the sequencing data was processed by the above bioinformation analysis flow, and all the sequencing data was analyzed by the method of pattern recognition, and the results showed that the gene methylation levels in the above table were restored to normal levels.

実施例3
結腸直腸癌サンプルを一例として、本願のPanel検出を採用し、実施例1の方法で末梢血を採取する。ライブラリーを構築し、かつIlluminaプラットフォームにより配列決定する。配列決定データは、上記生体情報の分析フローにより処理され、メチル化レベルを得て、結果は、以下の表20に示すとおりである(表20は、検出されたメチル化閾値以上の標的領域を示す)。
Example 3
Taking colorectal cancer samples as an example, the Panel detection of the present application is adopted, and peripheral blood is collected by the method of Example 1. A library is constructed and sequenced by the Illumina platform. The sequencing data is processed by the above bioinformation analysis flow to obtain the methylation level, and the results are shown in Table 20 below (Table 20 shows the target regions above the methylation threshold that were detected).

検出サンプルに対してパターン認識分類同定を行い、まず、汎癌特異的マーカーTBX15及びCRYGD遺伝子のメチル化レベルが55%及び60%以上であることを判読すると、該サンプルが、癌に罹患しているサンプルであると予備的に判断し、次に、癌特異的マーカーTRH、CDO1、ELMO1、GFRA1、CCNA1、SALL1のメチル化レベルがいずれも表1に示されたそれぞれの閾値以上である(上記表20に示すとおりである)と判読すると、該サンプルが、以下の11種類の癌(食道癌、胃癌、結腸直腸癌、肺癌、肝臓癌、膵臓癌、前立腺癌、乳癌、卵巣癌、子宮頸癌及び子宮内膜癌)における任意の癌に罹患しているサンプルであると判断し、最後に、組織特異的マーカーを判読し、表20におけるそれぞれの閾値以上の標的領域に基づいて、結腸直腸組織特異性の6つの標的領域Seq ID No.63、Seq ID No.64、Seq ID No.87、Seq ID No.88、Seq ID No.89、Seq ID No.90がそれぞれのメチル化レベルの閾値以上であり、他の組織特異的マーカーのメチル化がそのそれぞれの閾値以上ではないことが分かり、したがって、それぞれのメチル化閾値以上の組織特異的マーカーにおいて、結腸直腸組織特異的マーカーが最も多い場合、最終的に、該サンプルが結腸直腸癌に罹患しているサンプルであると判断する。
患者は、術後48時間後に、再び採血し、本願のPanel検出を採用し、実施例1の方法で末梢血を採取する。ライブラリーを構築し、配列決定し、配列決定データは、上記生体情報の分析フローにより処理され、パターン認識の方法で、全ての配列決定データを分析し、結果は、上記表における遺伝子メチル化レベルが正常なレベルに復帰することを示す。
The detected samples are subjected to pattern recognition classification identification. First, if the methylation levels of the pan-cancer specific markers TBX15 and CRYGD genes are determined to be 55% and 60% or more, the sample is preliminarily determined to be a sample suffering from cancer. Next, if the methylation levels of the cancer specific markers TRH, CDO1, ELMO1, GFRA1, CCNA1, and SALL1 are all determined to be equal to or higher than the respective thresholds shown in Table 1 (as shown in Table 20 above), the sample is determined to be a sample suffering from any of the following 11 types of cancer (esophageal cancer, gastric cancer, colorectal cancer, lung cancer, liver cancer, pancreatic cancer, prostate cancer, breast cancer, ovarian cancer, cervical cancer, and endometrial cancer). Finally, the tissue-specific markers are determined to be equal to or higher than the respective thresholds shown in Table 20, and the six target regions Seq ID No. 63, Seq ID No. 64, Seq ID No. 65, Seq ID No. 66, Seq ID No. 67, Seq ID No. 68, Seq ID No. 69, Seq ID No. 70, Seq ID No. 71, Seq ID No. 72, Seq ID No. 73, Seq ID No. 74, Seq ID No. 75, Seq ID No. 76, Seq ID No. 77, Seq ID No. 78, Seq ID No. 79, Seq ID No. 80, Seq ID No. 81, Seq ID No. 82, Seq ID No. 83, Seq ID No. 84, Seq ID No. 85, Seq ID No. 86, Seq ID No. 87, Seq ID No. 89, Seq ID No. 89, Seq ID No. 81, Seq ID No. 82, Seq ID No. 8 If it is found that Seq ID No. 64, Seq ID No. 87, Seq ID No. 88, Seq ID No. 89, and Seq ID No. 90 are above their respective methylation thresholds, and the methylation of other tissue-specific markers is not above their respective thresholds, and therefore, among the tissue-specific markers above their respective methylation thresholds, colorectal tissue-specific markers are the most abundant, then the sample is finally determined to be a sample affected by colorectal cancer.
The patient's blood was collected again 48 hours after the operation, and the Panel detection of the present application was adopted to collect peripheral blood by the method of Example 1. A library was constructed and sequenced, and the sequencing data was processed by the above bioinformation analysis flow, and all the sequencing data was analyzed by the method of pattern recognition, and the results showed that the gene methylation levels in the above table were restored to normal levels.

実施例4
肺癌サンプルを一例として、本願のPanel検出を採用し、実施例1の方法で末梢血を採取する。ライブラリーを構築し、かつIlluminaプラットフォームにより配列決定する。配列決定データは、上記生体情報の分析フローにより処理され、メチル化レベルを得て、結果は、以下の表21に示すとおりである(表21は、検出されたメチル化閾値以上の標的領域を示す)。
Example 4
Taking lung cancer samples as an example, the Panel detection of the present application is adopted, and peripheral blood is collected by the method of Example 1. A library is constructed and sequenced by the Illumina platform. The sequencing data is processed by the above-mentioned bioinformation analysis flow to obtain the methylation level, and the results are as shown in Table 21 below (Table 21 shows the target regions above the methylation threshold that were detected).

検出サンプルに対してパターン認識分類同定を行い、まず、汎癌特異的マーカーTBX15及びCRYGD遺伝子のメチル化レベルが55%及び60%以上であることを判読すると、該サンプルが、癌に罹患しているサンプルであると予備的に判断し、次に、癌特異的マーカーRUNX3、APC、HOXA11 AS、PHOX2A、GALR1のメチル化レベルがいずれも表1に示されたそれぞれの閾値以上である(上記表21に示すとおりである)と判読すると、該サンプルが、以下の11種類の癌(食道癌、胃癌、結腸直腸癌、肺癌、肝臓癌、膵臓癌、前立腺癌、乳癌、卵巣癌、子宮頸癌及び子宮内膜癌)における任意の癌に罹患しているサンプルであると判断し、最後に、組織特異的マーカーを判読し、表21におけるそれぞれの閾値以上の標的領域に基づいて、肺臓組織特異性の5つの標的領域Seq ID No.71、Seq ID No.72、Seq ID No.76、Seq ID No.91及びSeq ID No.92がそれぞれのメチル化レベルの閾値以上であり、他の組織特異的マーカーのメチル化がそのそれぞれの閾値以上ではないことが分かり、したがって、それぞれのメチル化閾値以上の組織特異的マーカーにおいて、肺臓組織特異的マーカーが最も多い場合、最終的に、該サンプルが肺癌に罹患しているサンプルであると判断する。
患者は、術後48時間後に、再び採血し、本願のPanel検出を採用し、実施例1の方法で末梢血を採取する。ライブラリーを構築し、配列決定し、配列決定データは、上記生体情報の分析フローにより処理され、パターン認識の方法で、全ての配列決定データを分析し、結果は、上記表における遺伝子メチル化レベルが正常なレベルに復帰することを示す。
Pattern recognition classification identification is performed on the detected samples. First, if the methylation levels of the pan-cancer specific markers TBX15 and CRYGD genes are determined to be 55% and 60% or more, the sample is preliminarily determined to be a sample suffering from cancer. Next, if the methylation levels of the cancer specific markers RUNX3, APC, HOXA11 AS, PHOX2A, and GALR1 are all determined to be equal to or higher than the respective thresholds shown in Table 1 (as shown in Table 21 above), the sample is determined to be a sample suffering from any of the following 11 types of cancer (esophageal cancer, gastric cancer, colorectal cancer, lung cancer, liver cancer, pancreatic cancer, prostate cancer, breast cancer, ovarian cancer, cervical cancer, and endometrial cancer). Finally, tissue-specific markers are determined, and five lung tissue-specific target regions Seq ID No. 71, Seq ID No. 61, Seq ID No. 62, Seq ID No. 63, Seq ID No. 64, Seq ID No. 65, Seq ID No. 66, Seq ID No. 67, Seq ID No. 69, Seq ID No. 70, Seq ID No. 71, Seq ID No. 72, Seq ID No. 73, Seq ID No. 74, Seq ID No. 75, Seq ID No. 76, Seq ID No. 77, Seq ID No. 78, Seq ID No. 79, Seq ID No. 80, Seq ID No. 81, Seq ID No. 82, Seq ID No. 83, Seq ID No. 84, Seq ID No. 85, Seq ID No. 86, Seq ID No. 87, Seq ID No. 89, Seq ID No. 89, Seq ID No. 89, Seq ID No. 81, Seq ID If it is found that Seq ID No. 72, Seq ID No. 76, Seq ID No. 91 and Seq ID No. 92 are above their respective methylation thresholds, and the methylation of other tissue-specific markers is not above their respective thresholds, and therefore, among the tissue-specific markers above their respective methylation thresholds, the lung tissue-specific markers are the most abundant, then the sample is finally determined to be a sample suffering from lung cancer.
The patient's blood was collected again 48 hours after the operation, and the Panel detection of the present application was adopted to collect peripheral blood by the method of Example 1. A library was constructed and sequenced, and the sequencing data was processed by the above bioinformation analysis flow, and all the sequencing data was analyzed by the method of pattern recognition, and the results showed that the gene methylation levels in the above table were restored to normal levels.

実施例5
肝臓癌サンプルを一例として、本願のPanel検出を採用し、実施例1の方法で末梢血を採取する。ライブラリーを構築し、かつIlluminaプラットフォームにより配列決定する。配列決定データは、上記生体情報の分析フローにより処理され、メチル化レベルを得て、結果は、以下の表22に示すとおりである(表22は、検出されたメチル化閾値以上の標的領域を示す)。
Example 5
Taking liver cancer samples as an example, the Panel detection of the present application is adopted, and peripheral blood is collected by the method of Example 1. A library is constructed and sequenced by the Illumina platform. The sequencing data is processed by the above-mentioned bioinformation analysis flow to obtain the methylation level, and the results are as shown in Table 22 below (Table 22 shows the target regions above the methylation threshold that were detected).

検出サンプルに対してパターン認識分類同定を行い、まず、汎癌特異的マーカーTBX15及びCRYGD遺伝子のメチル化レベルが55%及び60%以上であることを判読すると、該サンプルが、癌に罹患しているサンプルであると予備的に判断し、次に、癌特異的マーカーRASSF1、APC、TRIM15、HOXA11 AS、CCND2のメチル化レベルがいずれも表1に示されたそれぞれの閾値以上である(上記表22に示すとおりである)と判読すると、該サンプルが、以下の11種類の癌(食道癌、胃癌、結腸直腸癌、肺癌、肝臓癌、膵臓癌、前立腺癌、乳癌、卵巣癌、子宮頸癌及び子宮内膜癌)における任意の癌に罹患しているサンプルであると判断し、最後に、組織特異的マーカーを判読し、表22におけるそれぞれの閾値以上の標的領域に基づいて、肝組織特異性の2つの標的領域Seq ID No.73及びSeq ID No.74がそれぞれのメチル化レベルの閾値以上であり、他の組織特異的マーカーのメチル化がそのそれぞれの閾値以上ではないことが分かり、したがって、それぞれのメチル化閾値以上の組織特異的マーカーにおいて、肝組織特異的マーカーが最も多い場合、最終的に、該サンプルが肝臓癌に罹患しているサンプルであると判断する。
患者は、術後48時間後に、再び採血し、本願のPanel検出を採用し、実施例1の方法で末梢血を採取する。ライブラリーを構築し、配列決定し、配列決定データは、上記生体情報の分析フローにより処理され、パターン認識の方法で、全ての配列決定データを分析し、結果は、上記表における遺伝子メチル化レベルが正常なレベルに復帰することを示す。
The detected samples were subjected to pattern recognition classification identification. First, the methylation levels of the pan-cancer specific markers TBX15 and CRYGD genes were determined to be 55% and 60% or more, respectively, to preliminarily determine that the sample was affected by cancer. Second, the methylation levels of the cancer specific markers RASSF1, APC, TRIM15, HOXA11 AS, and CCND2 were determined to be equal to or higher than the respective thresholds shown in Table 1 (as shown in Table 22 above), to determine that the sample was affected by any of the following 11 types of cancer (esophageal cancer, gastric cancer, colorectal cancer, lung cancer, liver cancer, pancreatic cancer, prostate cancer, breast cancer, ovarian cancer, cervical cancer, and endometrial cancer). Finally, the tissue-specific markers were determined to be equal to or higher than the respective thresholds shown in Table 22, and two liver tissue-specific target regions Seq ID No. 73 and Seq ID No. 61 were determined to be equal to or higher than the respective thresholds shown in Table 22. If it is found that 74 are above their respective methylation level thresholds and the methylation of other tissue-specific markers is not above their respective thresholds, and therefore liver tissue-specific markers are the most abundant among the tissue-specific markers above their respective methylation thresholds, then the sample is finally determined to be a sample suffering from liver cancer.
The patient's blood was collected again 48 hours after the operation, and the Panel detection of the present application was adopted to collect peripheral blood by the method of Example 1. A library was constructed and sequenced, and the sequencing data was processed by the above bioinformation analysis flow, and all the sequencing data was analyzed by the method of pattern recognition, and the results showed that the gene methylation levels in the above table were restored to normal levels.

実施例6
食道癌サンプルを一例として、本願のPanel検出を採用し、実施例1の方法で末梢血を採取する。ライブラリーを構築し、かつIlluminaプラットフォームにより配列決定する。配列決定データは、上記生体情報の分析フローにより処理され、メチル化レベルを得て、結果は、以下の表23に示すとおりである(表23は、検出されたメチル化閾値以上の標的領域を示す)。
Example 6
Taking esophageal cancer samples as an example, the Panel detection of the present application is adopted, and peripheral blood is collected by the method of Example 1. A library is constructed and sequenced by the Illumina platform. The sequencing data is processed by the above-mentioned bioinformation analysis flow to obtain the methylation level, and the results are as shown in Table 23 below (Table 23 shows the target regions above the methylation threshold that were detected).

検出サンプルに対してパターン認識分類同定を行い、まず、汎癌特異的マーカーTBX15及びCRYGD遺伝子のメチル化レベルが55%及び60%以上であることを判読すると、該サンプルが、癌に罹患しているサンプルであると予備的に判断し、次に、癌特異的マーカーCPE、TFAP2E、TRH、C11orf21、EDNRBのメチル化レベルがいずれも表1に示されたそれぞれの閾値以上である(上記表23に示すとおりである)と判読すると、該サンプルが、以下の11種類の癌(食道癌、胃癌、結腸直腸癌、肺癌、肝臓癌、膵臓癌、前立腺癌、乳癌、卵巣癌、子宮頸癌及び子宮内膜癌)における任意の癌に罹患しているサンプルであると判断し、最後に、組織特異的マーカーを判読し、表23におけるそれぞれの閾値以上の標的領域に基づいて、食道組織特異性の4つの標的領域Seq ID No.66、Seq ID No.67、Seq ID No.79及びSeq ID No.80がそれぞれのメチル化レベルの閾値以上であり、他の組織特異的マーカーのメチル化がそのそれぞれの閾値以上ではないことが分かり、したがって、それぞれのメチル化閾値以上の組織特異的マーカーにおいて、食道組織特異的マーカーが最も多い場合、最終的に、該サンプルが食道癌に罹患しているサンプルであると判断する。
患者は、術後48時間後に、再び採血し、本願のPanel検出を採用し、実施例1の方法で末梢血を採取する。ライブラリーを構築し、配列決定し、配列決定データは、上記生体情報の分析フローにより処理され、パターン認識の方法で、全ての配列決定データを分析し、結果は、上記表における遺伝子メチル化レベルが正常なレベルに復帰することを示す。
Pattern recognition classification identification is performed on the detected samples. First, if the methylation levels of the pan-cancer specific markers TBX15 and CRYGD genes are determined to be 55% and 60% or more, the sample is preliminarily determined to be a sample affected by cancer. Next, if the methylation levels of the cancer specific markers CPE, TFAP2E, TRH, C11orf21, and EDNRB are all determined to be equal to or higher than the respective thresholds shown in Table 1 (as shown in Table 23 above), the sample is determined to be a sample affected by any of the following 11 types of cancer (esophageal cancer, gastric cancer, colorectal cancer, lung cancer, liver cancer, pancreatic cancer, prostate cancer, breast cancer, ovarian cancer, cervical cancer, and endometrial cancer). Finally, the tissue-specific markers are determined to be equal to or higher than the respective thresholds shown in Table 23, and the four target regions Seq ID No. 66, Seq ID No. 67, Seq ID No. 69, Seq ID No. 70, Seq ID No. 71, Seq ID No. 72, Seq ID No. 73, Seq ID No. 74, Seq ID No. 75, Seq ID No. 76, Seq ID No. 77, Seq ID No. 78, Seq ID No. 79, Seq ID No. 80, Seq ID No. 81, Seq ID No. 82, Seq ID No. 83, Seq ID No. 84, Seq ID No. 85, Seq ID No. 86, Seq ID No. 87, Seq ID No. 88, Seq ID No. 89, Seq ID No. 90, Seq ID No. 91, Seq ID No. 92, Seq ID No. 93, Seq ID No. 94, Seq ID No. 95, Seq ID No. 96 If it is found that Seq ID No. 79 and Seq ID No. 80 are above their respective methylation level thresholds, and the methylation of other tissue-specific markers is not above their respective thresholds, and therefore, among the tissue-specific markers above their respective methylation thresholds, the esophageal tissue-specific markers are the most abundant, then the sample is finally determined to be a sample affected by esophageal cancer.
The patient's blood was collected again 48 hours after the operation, and the Panel detection of the present application was adopted to collect peripheral blood by the method of Example 1. A library was constructed and sequenced, and the sequencing data was processed by the above bioinformation analysis flow, and all the sequencing data was analyzed by the method of pattern recognition, and the results showed that the gene methylation levels in the above table were restored to normal levels.

実施例7
膵臓癌サンプルを一例として、本願のPanel検出を採用し、実施例1の方法で末梢血を採取する。ライブラリーを構築し、かつIlluminaプラットフォームにより配列決定する。配列決定データは、上記生体情報の分析フローにより処理され、メチル化レベルを得て、結果は、以下の表24に示すとおりである(表24は、検出されたメチル化閾値以上の標的領域を示す)。
Example 7
Taking pancreatic cancer samples as an example, the Panel detection of the present application is adopted, and peripheral blood is collected by the method of Example 1. A library is constructed and sequenced by the Illumina platform. The sequencing data is processed by the above-mentioned bioinformation analysis flow to obtain the methylation level, and the results are as shown in Table 24 below (Table 24 shows the target regions above the methylation threshold that were detected).

検出サンプルに対してパターン認識分類同定を行い、まず、汎癌特異的マーカーTBX15及びCRYGD遺伝子のメチル化レベルが55%及び60%以上であることを判読すると、該サンプルが、癌に罹患しているサンプルであると予備的に判断し、次に、癌特異的マーカーHOPX、SFRP2、GFRA1、HOXB4、SALL1のメチル化レベルがいずれも表1に示されたそれぞれの閾値以上である(上記表24に示すとおりである)と判読すると、該サンプルが、以下の11種類の癌(食道癌、胃癌、結腸直腸癌、肺癌、肝臓癌、膵臓癌、前立腺癌、乳癌、卵巣癌、子宮頸癌及び子宮内膜癌)における任意の癌に罹患しているサンプルであると判断し、最後に、組織特異的マーカーを判読し、表24におけるそれぞれの閾値以上の標的領域に基づいて、膵臓組織特異性の5つの標的領域Seq ID No.111、Seq ID No.112、Seq ID No.113、Seq ID No.114及びSeq ID No.115がそれぞれのメチル化レベルの閾値以上であり、他の組織特異的マーカーのメチル化がそのそれぞれの閾値以上ではないことが分かり、したがって、それぞれのメチル化閾値以上の組織特異的マーカーにおいて、膵臓組織特異的マーカーが最も多い場合、最終的に、該サンプルが膵臓癌に罹患しているサンプルであると判断する。
患者は、術後48時間後に、再び採血し、本願のPanel検出を採用し、実施例1の方法で末梢血を採取する。ライブラリーを構築し、配列決定し、配列決定データは、上記生体情報の分析フローにより処理され、パターン認識の方法で、全ての配列決定データを分析し、結果は、上記表における遺伝子メチル化レベルが正常なレベルに復帰することを示す。
Pattern recognition classification identification is performed on the detected samples. First, if the methylation levels of the pan-cancer specific markers TBX15 and CRYGD genes are determined to be 55% and 60% or more, the sample is preliminarily determined to be a sample suffering from cancer. Next, if the methylation levels of the cancer specific markers HOPX, SFRP2, GFRA1, HOXB4, and SALL1 are all determined to be equal to or higher than the respective thresholds shown in Table 1 (as shown in Table 24 above), the sample is determined to be a sample suffering from any of the following 11 types of cancer (esophageal cancer, gastric cancer, colorectal cancer, lung cancer, liver cancer, pancreatic cancer, prostate cancer, breast cancer, ovarian cancer, cervical cancer, and endometrial cancer). Finally, the tissue-specific markers are determined to be equal to or higher than the respective thresholds shown in Table 24, and five target regions Seq ID No. 111, Seq ID No. 112, Seq ID No. 113, Seq ID No. 114, Seq ID No. 115, Seq ID No. 116, Seq ID No. 117, Seq ID No. 118, Seq ID No. 119, Seq ID No. 120, Seq ID No. 121, Seq ID No. 122, Seq ID No. 123, Seq ID No. 124, Seq ID No. 125, Seq ID No. 126, Seq ID No. 127, Seq ID No. 128, Seq ID No. 129, Seq ID No. 130, Seq ID No. 131, Seq ID No. 132, Seq ID No. 133, Seq ID No. 134, Seq ID No. 135, Seq ID No. 136, Seq ID No. 137, S If it is found that Seq ID No. 112, Seq ID No. 113, Seq ID No. 114 and Seq ID No. 115 are equal to or above their respective methylation level thresholds, and the methylation of other tissue-specific markers is not equal to or above their respective thresholds, and therefore pancreatic tissue-specific markers are the most abundant among the tissue-specific markers equal to or above their respective methylation thresholds, then the sample is finally determined to be a sample suffering from pancreatic cancer.
The patient's blood was collected again 48 hours after the operation, and the Panel detection of the present application was adopted to collect peripheral blood by the method of Example 1. A library was constructed and sequenced, and the sequencing data was processed by the above bioinformation analysis flow, and all the sequencing data was analyzed by the method of pattern recognition, and the results showed that the gene methylation levels in the above table were restored to normal levels.

実施例8
乳癌サンプルを一例として、本願のPanel検出を採用し、実施例1の方法で末梢血を採取する。ライブラリーを構築し、かつIlluminaプラットフォームにより配列決定する。配列決定データは、上記生体情報の分析フローにより処理され、メチル化レベルを得て、結果は、以下の表25に示すとおりである(表25は、検出されたメチル化閾値以上の標的領域を示す)。
Example 8
Taking breast cancer samples as an example, the Panel detection of the present application is adopted, and peripheral blood is collected by the method of Example 1. A library is constructed and sequenced by the Illumina platform. The sequencing data is processed by the above-mentioned bioinformation analysis flow to obtain the methylation level, and the results are as shown in Table 25 below (Table 25 shows the target regions above the methylation threshold that were detected).

検出サンプルに対してパターン認識分類同定を行い、まず、汎癌特異的マーカーTBX15及びCRYGD遺伝子のメチル化レベルが55%及び60%以上であることを判読すると、該サンプルが、癌に罹患しているサンプルであると予備的に判断し、次に、癌特異的マーカーTRIM15、RUNX3、TFAP2E、RASSF1、SFRP2、CCND2のメチル化レベルがいずれも表1に示されたそれぞれの閾値以上である(上記表25に示すとおりである)と判読すると、該サンプルが、以下の11種類の癌(食道癌、胃癌、結腸直腸癌、肺癌、肝臓癌、膵臓癌、前立腺癌、乳癌、卵巣癌、子宮頸癌及び子宮内膜癌)における任意の癌に罹患しているサンプルであると判断し、最後に、組織特異的マーカーを判読し、表25におけるそれぞれの閾値以上の標的領域に基づいて、乳腺組織特異性の3つの標的領域Seq ID No.78、Seq ID No.85及びSeq ID No.86がそれぞれのメチル化レベルの閾値以上であり、他の組織特異的マーカーのメチル化がそのそれぞれの閾値以上ではないことが分かり、したがって、それぞれのメチル化閾値以上の組織特異的マーカーにおいて、乳腺組織特異的マーカーが最も多い場合、最終的に、該サンプルが乳癌に罹患しているサンプルであると判断する。
患者は、術後48時間後に、再び採血し、本願のPanel検出を採用し、実施例1の方法で末梢血を採取する。ライブラリーを構築し、配列決定し、配列決定データは、上記生体情報の分析フローにより処理され、パターン認識の方法で、全ての配列決定データを分析し、結果は、上記表における遺伝子メチル化レベルが正常なレベルに復帰することを示す。
Pattern recognition classification identification is performed on the detected samples. First, if the methylation levels of the pan-cancer specific markers TBX15 and CRYGD genes are determined to be 55% and 60% or more, the sample is preliminarily determined to be a sample suffering from cancer. Next, if the methylation levels of the cancer specific markers TRIM15, RUNX3, TFAP2E, RASSF1, SFRP2, and CCND2 are all determined to be equal to or higher than the respective thresholds shown in Table 1 (as shown in Table 25 above), the sample is determined to be a sample suffering from any of the following 11 types of cancer (esophageal cancer, gastric cancer, colorectal cancer, lung cancer, liver cancer, pancreatic cancer, prostate cancer, breast cancer, ovarian cancer, cervical cancer, and endometrial cancer). Finally, the tissue-specific markers are determined to be equal to or higher than the respective thresholds shown in Table 25, and the three target regions Seq ID No. 78, Seq ID No. 100, Seq ID No. 1100, Seq ID No. 120, Seq ID No. 130, Seq ID No. 140, Seq ID No. 150, Seq ID No. 160, Seq ID No. 170, Seq ID No. 180, Seq ID No. 190, Seq ID No. 200, Seq ID No. 210, Seq ID No. 220, Seq ID No. 230, Seq ID No. 240, Seq ID No. 250, Seq ID No. 260, Seq ID No. 270, Seq ID No. 280, Seq ID No. 290, Seq ID No. 300, Seq ID No. 310, Seq ID No. 320, Seq ID No. 330, Seq ID No. 340, Seq ID If it is found that Seq ID No. 85 and Seq ID No. 86 are above their respective methylation thresholds, and the methylation of other tissue-specific markers is not above their respective thresholds, and therefore, among the tissue-specific markers above their respective methylation thresholds, the breast tissue-specific markers are the most abundant, then the sample is finally determined to be a sample affected by breast cancer.
The patient's blood was collected again 48 hours after the operation, and the Panel detection of the present application was adopted to collect peripheral blood by the method of Example 1. A library was constructed and sequenced, and the sequencing data was processed by the above bioinformation analysis flow, and all the sequencing data was analyzed by the method of pattern recognition, and the results showed that the gene methylation levels in the above table were restored to normal levels.

当業者にとって、以上の技術的解決手段及び構想に基づいて、様々な対応する変更及び変形を行うことができ、全てのこれらの変更及び変形はいずれも本願の請求項の保護範囲内に含まれるべきである。 Those skilled in the art can make various corresponding modifications and variations based on the above technical solutions and concepts, and all these modifications and variations should be included within the scope of protection of the claims of this application.

Claims (10)

食道癌、胃癌、結腸直腸癌、肺癌、肝臓癌、膵臓癌、前立腺癌、乳癌、卵巣癌、子宮頸癌及び子宮内膜癌の特異的領域を標的とするプローブ、汎癌特異的領域を標的とするプローブ、及び組織特異的領域を標的とするプローブを含み、
前記癌特異的領域は、Seq ID No.1-62であり、
前記汎癌特異的領域は、Seq ID No.63-64であり、
前記組織特異的領域は、Seq ID No.65-117である、
プローブ組成物。
probes targeting esophageal, gastric, colorectal, lung, liver, pancreatic, prostate, breast, ovarian, cervical and endometrial cancer specific regions, probes targeting pan-cancer specific regions, and probes targeting tissue specific regions;
The cancer-specific region is Seq ID No. 1-62;
The pan-cancer specific region is Seq ID No. 63-64;
The tissue-specific region is Seq ID No. 65-117;
Probe composition.
前記組織特異的領域におけるSeq ID No.66-67、79、81-82、97-102、116-117が食道の組織特異的標的領域であり、又は
前記組織特異的領域におけるSeq ID No.81、82、97-102が胃の組織特異的標的領域であり、又は
前記組織特異的領域におけるSeq ID No.83、87-90、110が結腸直腸の組織特異的標的領域であり、又は
前記組織特異的領域におけるSeq ID No.65、70-72、76、91-92、103-104が肺の組織特異的標的領域であり、又は
前記組織特異性領域におけるSeq ID No.73-74、107が肝臓の組織特異的標的領域であり、又は
前記組織特異的領域におけるSeq ID No.111-115が膵臓の組織特異的標的領域であり、又は
前記組織特異的領域におけるSeq ID No.80、84、93、95が前立腺の組織特異的標的領域であり、又は
前記組織特異的領域におけるSeq ID No.78、84-86が乳腺の組織特異的標的領域であり、又は
前記組織特異的領域において、Seq ID No.77、96、105が卵巣の組織特異的標的領域であり、又は
前記組織特異的領域におけるSeq ID No.68-69、75、109が子宮頸部の組織特異的標的領域であり、又は
前記組織特異的領域におけるSeq ID No.94、106、108が子宮内膜の組織特異的標的領域である、ことを特徴とする請求項1に記載のプローブ組成物。
Seq ID No. 66-67, 79, 81-82, 97-102, 116-117 in the tissue-specific region are tissue-specific target regions of the esophagus, or Seq ID No. 81, 82, 97-102 in the tissue-specific region are tissue-specific target regions of the stomach, or Seq ID No. 83, 87-90, 110 in the tissue-specific region are tissue-specific target regions of the colorectum, or Seq ID No. 65, 70-72, 76, 91-92, 103-104 in the tissue-specific region are tissue-specific target regions of the lung, or Seq ID No. 73-74, 107 in the tissue-specific region are tissue-specific target regions of the liver ...65, 70-72, 76, 91-92, 103-104 in the tissue-specific region are tissue-specific target regions of the lung, or Seq ID No. 73-74, 107 in The probe composition according to claim 1, wherein Seq ID Nos. 111-115 are tissue-specific target regions of the pancreas, or Seq ID Nos. 80, 84, 93, and 95 in the tissue-specific region are tissue-specific target regions of the prostate, or Seq ID Nos. 78, 84-86 in the tissue-specific region are tissue-specific target regions of the mammary gland, or Seq ID Nos. 77, 96, and 105 in the tissue-specific region are tissue-specific target regions of the ovary, or Seq ID Nos. 68-69, 75, and 109 in the tissue-specific region are tissue-specific target regions of the cervix, or Seq ID Nos. 94, 106, and 108 in the tissue-specific region are tissue-specific target regions of the endometrium.
重亜硫酸塩で変換されたCGがメチル化されない前記特異的領域とハイブリダイズした低メチル化プローブと、重亜硫酸塩で変換されたCG全体がメチル化された前記特異的領域とハイブリダイズした高メチル化プローブとを含む請求項1-2のいずれか1項に記載のプローブ組成物。 The probe composition according to any one of claims 1-2, comprising a low-methylation probe hybridized to the specific region in which the bisulfite-converted CG is not methylated, and a high-methylation probe hybridized to the specific region in which the bisulfite-converted CG is entirely methylated. 各プローブの長さは、40~60bpである請求項3に記載のプローブ組成物。 The probe composition according to claim 3, wherein each probe has a length of 40 to 60 bp. 各プローブの長さは45~56bpであり、好ましくは50~56bpであり、さらに好ましくは50bpである請求項4に記載のプローブ組成物。 The probe composition according to claim 4, wherein the length of each probe is 45 to 56 bp, preferably 50 to 56 bp, and more preferably 50 bp. 前記低メチル化プローブが癌特異的領域を標的とするプローブSeq ID No.118-214、汎癌特異的領域を標的とするプローブSeq ID No.215-216、及び組織特異的領域を標的とするプローブSeq ID No.217-274を含む、ことを特徴とする請求項3に記載のプローブ組成物。 The probe composition according to claim 3, characterized in that the hypomethylated probes include probes Seq ID No. 118-214 targeting cancer-specific regions, probes Seq ID No. 215-216 targeting pan-cancer-specific regions, and probes Seq ID No. 217-274 targeting tissue-specific regions. 前記高メチル化プローブが癌特異的領域を標的とするプローブSeq ID No.275-371、汎癌特異的領域を標的とするプローブSeq ID No.372-373、及び組織特異的領域を標的とするプローブSeq ID No.374-431を含む、ことを特徴とする請求項3に記載のプローブ組成物。 The probe composition according to claim 3, characterized in that the hypermethylated probes include probes Seq ID No. 275-371 targeting cancer-specific regions, probes Seq ID No. 372-373 targeting pan-cancer-specific regions, and probes Seq ID No. 374-431 targeting tissue-specific regions. 請求項1-7のいずれか1項に記載のプローブ組成物を含むキット。 A kit comprising the probe composition according to any one of claims 1 to 7. 請求項1-7のいずれか1項に記載のプローブ組成物の食道癌、胃癌、結腸直腸癌、肺癌、肝臓癌、膵臓癌、前立腺癌、乳癌、卵巣癌、子宮頸癌及び子宮内膜癌を検出するキットの製造における使用。 Use of the probe composition according to any one of claims 1 to 7 in the manufacture of a kit for detecting esophageal cancer, gastric cancer, colorectal cancer, lung cancer, liver cancer, pancreatic cancer, prostate cancer, breast cancer, ovarian cancer, cervical cancer and endometrial cancer. 食道癌、胃癌、結腸直腸癌、肺癌、肝臓癌、膵臓癌、前立腺癌、乳癌、卵巣癌、子宮頸癌及び子宮内膜癌の特異的領域を標的とするプローブ;汎癌特異的領域を標的とするプローブ及び組織特異的領域を標的とするプローブを食道癌、胃癌、結腸直腸癌、肺癌、肝臓癌、膵臓癌、前立腺癌、乳癌、卵巣癌、子宮頸癌及び子宮内膜癌を検出するための用途
ここで、前記癌特異的領域は、Seq ID No.1-62であり、
前記汎癌特異的領域は、Seq ID No.63-64であり、
前記組織特異的領域は、Seq ID No.65-117である
Probes targeting specific regions of esophageal, gastric, colorectal, lung, liver, pancreatic, prostate, breast, ovarian, cervical and endometrial cancer; Use of probes targeting pan-cancer specific regions and probes targeting tissue specific regions for detecting esophageal, gastric, colorectal, lung, liver, pancreatic, prostate, breast, ovarian, cervical and endometrial cancer :
wherein the cancer-specific region is Seq ID No. 1-62;
The pan-cancer specific region is Seq ID No. 63-64;
The tissue-specific region is Seq ID No. 65-117 .
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