JP7323919B2 - Cell sheet for treatment of ischemic heart disease - Google Patents

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本発明は、医療用細胞シートに関する。より詳細には、本発明は、虚血性心疾患に用いるための、血管内皮前駆細胞と筋芽細胞を共培養することにより得られる、新規な医療用細胞シートに関する。 The present invention relates to medical cell sheets. More specifically, the present invention relates to a novel medical cell sheet obtained by co-culturing vascular endothelial progenitor cells and myoblasts for use in ischemic heart disease.

狭心症、心筋梗塞などの虚血性心疾患では、心筋組織に十分な酸素が行き渡らなくなり、この状態が長時間続くと心筋組織に傷害が生じる。元来成体の心筋細胞は自己複製能に乏しいため、一旦傷害を受けると心筋の修復はできないか、修復できたとしてもごく限られた回復しか期待できず、最終的に心不全に陥ってしまう。 In ischemic heart diseases such as angina pectoris and myocardial infarction, sufficient oxygen does not reach the myocardial tissue, and if this state continues for a long time, the myocardial tissue is damaged. Since adult myocardial cells are inherently poor in self-renewal ability, once damaged, the myocardium cannot be repaired, or even if repaired, only limited recovery can be expected, eventually leading to heart failure.

一方、本発明者らは、骨髄、臍帯血または末梢血由来の単核球画分から無血清培養下で血管内皮前駆細胞(Endothelial progenitor cells, EPCs)を増幅させる方法を、虚血性疾患、難治性潰瘍または糖尿病関連疾患の治療剤として使用する目的で発明し、報告してきた(特許文献1、非特許文献1および2)。より詳細には、本発明者らは、単核球画分から血管新生に寄与する細胞群へと分化、増殖し得る培養条件として、幹細胞因子(SCF)、インターロイキン6(IL-6)、FMS様チロシンキナーゼ3リガンド(Flt-3 ligand)、トロンボポエチン(TPO)および血管内皮細胞増殖因子(VEGF)の5種の因子を含有する無血清培地中で単核球を培養する方法を開発してきた。この培養系により機能性EPCが増幅し、EPC の質・量が保証され、血管再生能が増強することが判明し,本培養系はQuality and Quantity(QQ)培養と命名されている。そして最近では、QQ培養された末梢血単核球は、虚血性心疾患に対する細胞治療としても検討されている(非特許文献3)。 On the other hand, the present inventors have proposed a method for amplifying vascular endothelial progenitor cells (EPCs) from bone marrow, umbilical cord blood or peripheral blood-derived mononuclear cell fractions under serum-free culture for ischemic diseases, refractory diseases, etc. It was invented and reported for use as a therapeutic agent for ulcer- or diabetes-related diseases (Patent Document 1, Non-Patent Documents 1 and 2). More specifically, the present inventors have found that stem cell factor (SCF), interleukin-6 (IL-6), FMS, and cell-proliferation conditions under which the mononuclear cell fraction can be differentiated and proliferated into a group of cells that contribute to angiogenesis. We have developed a method to culture mononuclear cells in serum-free medium containing five factors: tyrosine kinase-3 ligand (Flt-3 ligand), thrombopoietin (TPO) and vascular endothelial growth factor (VEGF). It was found that this culture system amplifies functional EPCs, guarantees the quality and quantity of EPCs, and enhances the revascularization ability. This culture system is named Quality and Quantity (QQ) culture. Recently, QQ-cultured peripheral blood mononuclear cells have also been studied as a cell therapy for ischemic heart disease (Non-Patent Document 3).

他方、心不全の治療法として、心筋組織への骨格筋芽細胞移植が知られている。骨格筋に含まれる筋芽細胞は、筋肉が損傷を受けたとき分裂し、修復を行う。心筋と骨格筋は構造、機能などに類似する部分が多く、そのため骨格筋由来の筋芽細胞は傷害心筋も修復し得ると考えられている。さらに筋芽細胞懸濁液の移植の際の、移植細胞の障害損失、レシピエント心の注入時の組織障害、レシピエント心への組織供給効率、不整脈の発生、梗塞部位全体への治療困難などの欠点を克服するために、筋芽細胞をシート化して用いることが検討されている(例えば、非特許文献4~8)。 On the other hand, transplantation of skeletal myoblasts into myocardial tissue is known as a therapeutic method for heart failure. Myoblasts contained in skeletal muscle divide and repair when the muscle is damaged. Cardiac muscle and skeletal muscle have many similarities in structure and function, so it is believed that skeletal muscle-derived myoblasts can repair damaged myocardium. In addition, damage loss of transplanted cells during transplantation of myoblast suspension, tissue damage during injection of recipient heart, efficiency of tissue supply to recipient heart, occurrence of arrhythmia, difficulty in treating the entire infarcted area, etc. In order to overcome the drawbacks of the method, the use of sheeted myoblasts has been investigated (eg, Non-Patent Documents 4 to 8).

国際公開第2014/051154号WO2014/051154

Masuda H. et al. Development of serum-free quality and quantity control culture of colony-forming endothelial progenitor cell for vasculogenesis. Stem Cells Transl Med 1 2012: 160-171Masuda H. et al. Development of serum-free quality and quantity control culture of colony-forming endothelial progenitor cell for vasculogenesis. Stem Cells Transl Med 1 2012: 160-171 Masuda H. et al. Vasculogenic conditioning of peripheral blood mononuclear cells promotes endothelial progenitor cell expansion and phenotype transition of anti-inflammatory macrophage and T lymphocyte to cells with regenerative potential. J Am Heart Assoc. 2014 Jun 25;3(3):e000743. doi: 10.1161/JAHA.113.000743.Masuda H. et al. Vasculogenic conditioning of peripheral blood mononuclear cells promotes endothelial progenitor cell expansion and phenotype transition of anti-inflammatory macrophage and T lymphocyte to cells with regenerative potential. J Am Heart Assoc. 2014 Jun 25;3(3):e000743 doi: 10.1161/JAHA.113.000743. Amankeldi A. Salybekov1, et al. Regeneration-associated cells improve recovery from myocardial infarction through enhanced vasculogenesis, anti-inflammation, and cardiomyogenesis. PLoS One. 2018 Nov 28;13(11):e0203244. doi: 10.1371/journal.pone.0203244. eCollection 2018Amankeldi A. Salybekov1, et al. Regeneration-associated cells improve recovery from myocardial infarction through enhanced vasculogenesis, anti-inflammation, and cardiomyogenesis. PLoS One. 2018 Nov 28;13(11):e0203244. doi: 10.1371/journal.pone. 0203244. eCollection 2018 Sawa Y. et ai. Tissue engineered myoblast sheets improved cardiac function sufficiently to discontinue LVAS in a patient with DCM: report of a case. Surg Today 2012; 42: 181-184Sawa Y. et ai. Tissue engineered myoblast sheets improved cardiac function sufficiently to discontinue LVAS in a patient with DCM: report of a case. Surg Today 2012; 42: 181-184 Alshammary S. et al. Impact of cardiac stem cell sheet transplantation on myocardial infarction. Surg Today 2013; 43:970-976Alshammary S. et al. Impact of cardiac stem cell sheet transplantation on myocardial infarction. Surg Today 2013; 43:970-976 Sawa Y. et al. Cell Sheet Technology for Heart Failure, Current Pharmaceutical Biotechnology 2013; 14: 61-66Sawa Y. et al. Cell Sheet Technology for Heart Failure, Current Pharmaceutical Biotechnology 2013; 14: 61-66 Sawa Y. et al. Present and Future Perspectives on Cell Sheet-Based Myocardial Regeneration Therapy. BioMed Research International 2013; http://dx.doi.org/10.1155/2013/583912Sawa Y. et al. Present and Future Perspectives on Cell Sheet-Based Myocardial Regeneration Therapy. BioMed Research International 2013; http://dx.doi.org/10.1155/2013/583912 堂前圭太郎 他、重症心不全における骨格筋筋芽細胞シートを用いた心筋再生治療における安全性、有効性の検討、Organ Biology 2015; 22(2): 64-68Keitaro Domae et al., Examination of safety and efficacy of myocardial regeneration treatment using skeletal muscle myoblast sheets in severe heart failure, Organ Biology 2015; 22(2): 64-68 Terrovitis J. et al. Noninvasive Quantification and Optimization of Acute Cell Retention by In Vivo Positron Emission Tomography After Intramyocardial Cardiac-Derived Stem Cell Delivery. Journal of the American College of Cardiology 2009; 54(17): DOI: 10.1016/j.jacc.2009.04.097Terrovitis J. et al. Noninvasive Quantification and Optimization of Acute Cell Retention by In Vivo Positron Emission Tomography After Intramyocardial Cardiac-Derived Stem Cell Delivery. Journal of the American College of Cardiology 2009; 54(17): DOI: 10.1016/j.jacc .2009.04.097

虚血性心疾患に対する細胞治療の問題点として、投与された細胞の残存率、生着率が低いことが知られている(非特許文献9)。この残存率および生存率の低さは、細胞の物理的流出、投与される患部が虚血や炎症といった細胞が生着しにくい環境であることこと、また投与されるのが他人の細胞であったり、心筋細胞とは異なる種類の細胞であったりするために免疫的に拒絶されること、等に起因すると考えられる。また、虚血性心疾患に対する細胞治療の他の問題点として、細胞治療の効果は主にパラクライン効果により生じており、投与した細胞の心筋分化度が低いこと、投与細胞が腫瘍化する懸念があること、投与細胞が電気的・組織的に孤立化することで不整脈の懸念があることが挙げられる。 A known problem with cell therapy for ischemic heart disease is that the administered cells have a low survival rate and engraftment rate (Non-Patent Document 9). This low survival rate and survival rate are due to the physical outflow of cells, the environment where cells are difficult to engraft, such as ischemia and inflammation, and the fact that the cells being administered are other people's cells. It is also thought that this is due to immunological rejection due to the fact that they are cells of a different type from myocardial cells. In addition, as other problems of cell therapy for ischemic heart disease, the effect of cell therapy is mainly caused by the paracrine effect, and the degree of myocardial differentiation of the administered cells is low, and there is concern that the administered cells may become tumorigenic. There is also concern about arrhythmia due to electrical and tissue isolation of the administered cells.

本発明は、従来の細胞治療に比較して、より効果的な虚血性心疾患の処置が行える方法を提供することを課題としてなされたものである。 An object of the present invention is to provide a method for treating ischemic heart disease more effectively than conventional cell therapy.

本発明は以下を提供する。
[1] 血管内皮前駆細胞を準備する工程;
筋芽細胞を準備する工程;
血管内皮前駆細胞 とシート形成上有効量の筋芽細胞とを、血管内皮前駆細胞と筋芽細胞との細胞数比(血管内皮前駆細胞数:筋芽細胞数)が1:0.5~20 となるように播種して共培養し、細胞シートを形成する工程
を含む、細胞シートの製造方法。
[2] 共培養された血管内皮前駆細胞の少なくとも一部を取り除く工程をさらに含む、1に記載の製造方法。
[3] シート形成上有効量が、1.0×103~1.0×105個/cm2 である、2に記載の製造方法。
[4] 血管内皮前駆細胞が、末梢血単核球由来である、1~3のいずれか一に記載の製造方法。
[5] 末梢血単核球が、細胞シートが移植される対象から得たものである、4に記載の製造方法。
[6] 血管内皮前駆細胞を準備する工程が、末梢血単核球を無血清培地を用いて培養する工程である、4または5に記載の製造方法。
[7] 筋芽細胞が、細胞シートが移植される対象から得たものである、1~6のいずれか1項に記載の製造方法。
[8] 血管内皮前駆細胞および筋芽細胞を含む、細胞シート。
[9] 虚血性心疾患の処置のための、8に記載の細胞シート。
[10] 血管内皮前駆細胞および筋芽細胞の少なくとも一方が、細胞シートが移植される対象から得たものである、8または9に記載の細胞シート。
[11] 再生医療等製品である、8~10のいずれか一に記載の細胞シート。
[12] 8~11のいずれか一に記載の細胞シートを調製するための、キット。
[13] 筋芽細胞シートと組み合わせて使用するための、血管内皮前駆細胞の使用。
The present invention provides the following.
[1] a step of preparing vascular endothelial progenitor cells;
preparing myoblasts;
Vascular endothelial progenitor cells and a sheet-forming effective amount of myoblasts are added at a cell number ratio of vascular endothelial progenitor cells to myoblasts (number of vascular endothelial progenitor cells: number of myoblasts) of 1:0.5 to 20. A method for producing a cell sheet, comprising the steps of seeding and co-cultivating to form a cell sheet.
[2] The production method according to 1, further comprising removing at least part of the co-cultured vascular endothelial progenitor cells.
[3] The production method according to 2, wherein the effective amount for sheet formation is 1.0×10 3 to 1.0×10 5 pieces/cm 2 .
[4] The production method according to any one of 1 to 3, wherein the vascular endothelial progenitor cells are derived from peripheral blood mononuclear cells.
[5] The production method according to 4, wherein the peripheral blood mononuclear cells are obtained from a subject to which the cell sheet is transplanted.
[6] The production method according to 4 or 5, wherein the step of preparing vascular endothelial progenitor cells is a step of culturing peripheral blood mononuclear cells using a serum-free medium.
[7] The production method according to any one of 1 to 6, wherein the myoblasts are obtained from a subject to which the cell sheet is to be transplanted.
[8] A cell sheet containing vascular endothelial progenitor cells and myoblasts.
[9] The cell sheet according to 8, for treatment of ischemic heart disease.
[10] The cell sheet according to 8 or 9, wherein at least one of vascular endothelial progenitor cells and myoblasts is obtained from a subject to which the cell sheet is to be transplanted.
[11] The cell sheet according to any one of 8 to 10, which is a regenerative medicine product.
[12] A kit for preparing the cell sheet according to any one of 8 to 11.
[13] Use of vascular endothelial progenitor cells for use in combination with myoblast sheets.

本発明による共培養細胞シートを用いることにより、従来の筋芽単独の細胞シートを用いた場合に比較して、より効果的な虚血性心疾患の処置が行える。本発明の細胞シートを持ちることにより、左室駆出率(LVEF)の改善、リモデリングの軽減作用が期待できる。
血管内皮前駆細胞が共培養されていることにより、細胞シートを移植した組織において血管新生が促進されうる。また炎症が抑制されうる。
本発明の細胞シートには、ある程度分化した細胞が使用されるため、腫瘍化の懸念が少ないと考えられる。
細胞シートが用いられる対象から採取した細胞を利用する態様においては、移植した細胞が免疫的に拒絶されることを抑制できる。
By using the co-cultured cell sheet according to the present invention, ischemic heart disease can be treated more effectively than when using a conventional cell sheet of myoblasts alone. The use of the cell sheet of the present invention is expected to improve left ventricular ejection fraction (LVEF) and reduce remodeling.
Co-culturing of vascular endothelial progenitor cells can promote angiogenesis in the cell sheet-implanted tissue. Inflammation can also be suppressed.
Since cells differentiated to some extent are used in the cell sheet of the present invention, there is little concern about tumorigenesis.
In the embodiment using cells collected from the subject for which the cell sheet is used, immune rejection of the transplanted cells can be suppressed.

In vitroでのQQ細胞と菌芽細胞の共培養のプロトコールIn vitro co-culture protocol of QQ cells and mycoblasts 細胞写真cell photo CD34を染色した細胞の写真Photograph of cells stained for CD34 PECAM-1、CD34を染色した細胞の写真Pictures of cells stained with PECAM-1 and CD34 Cx43、Tunel染色した細胞の写真Photograph of Cx43, Tunel-stained cells In vitro培養した細胞についてのRT-PCRの結果。各左側のバーは菌芽細胞単独培養の結果であり、各右側のバーは共培養の結果である。RT-PCR results for in vitro cultured cells. Each left bar is the result of mycoblast monoculture and each right bar is the result of co-culture. In vitro培養した細胞についての炎症関連サイトカインの測定の結果。各左側のバーは菌芽細胞単独培養の結果であり、各右側のバーは共培養の結果である。Results of measurements of inflammation-related cytokines on in vitro cultured cells. Each left bar is the result of mycoblast monoculture and each right bar is the result of co-culture. In vivo評価のプロトコールIn vivo evaluation protocol In vivo評価結果In vivo evaluation results

本発明は、下記の工程を含む、細胞シートの製造方法、およびそれにより製造された細胞シートに関する:
血管内皮前駆細胞を準備する工程;
筋芽細胞を準備する工程;
血管内皮前駆細胞 とシート形成上有効量の筋芽細胞とを、血管内皮前駆細胞と筋芽細胞との細胞数比(血管内皮前駆細胞数:筋芽細胞数)が1:0.5~20 となるように播種して共培養し、細胞シートを形成する工程。
The present invention relates to a method for producing a cell sheet and a cell sheet produced thereby, comprising the following steps:
providing vascular endothelial progenitor cells;
preparing myoblasts;
Vascular endothelial progenitor cells and a sheet-forming effective amount of myoblasts are added at a cell number ratio of vascular endothelial progenitor cells to myoblasts (number of vascular endothelial progenitor cells: number of myoblasts) of 1:0.5 to 20. A step of seeding and co-cultivating to form a cell sheet.

[血管内皮前駆細胞の準備]
(血管内皮前駆細胞)
本発明には、血管内皮前駆細胞(Endothelial progenitor cells;EPCs)が用いられる。本発明で用いられる血管内皮前駆細胞は、血管内皮細胞に成り得る未分化な細胞であれば特に限定されない。血管内皮前駆細胞は分化程度によって、直径20~50μmの細胞を主に含む分化型EPCコロニー(CFU-Large cell like EC、大型EPCコロニーともいう)と、直径20μm以下の細胞を主に含む未分化型EPCコロニー(CFU-small cell like EC、小型EPCコロニーともいう)の、大きさの異なる2種類のコロニーにより区別できる。早い段階で出現する未分化型(小型)EPCコロニーは、増殖能にすぐれた早期分化段階のEPCコロニーであり、また遅い段階で出現する分化型(大型)EPCコロニーは、血管発生にすぐれた晩期分化段階のEPCコロニーであるといえる(例えば、Masuda H. et al., Circulation Research, 109: 20-37 (2011)を参照)。本発明には、いずれも好適に用いることができる。
[Preparation of vascular endothelial progenitor cells]
(vascular endothelial progenitor cells)
Vascular endothelial progenitor cells (EPCs) are used in the present invention. The vascular endothelial progenitor cells used in the present invention are not particularly limited as long as they are undifferentiated cells that can become vascular endothelial cells. Depending on the degree of differentiation, vascular endothelial progenitor cells are classified into differentiated EPC colonies (CFU-Large cell-like EC, also called large EPC colonies) mainly containing cells with a diameter of 20 to 50 μm and undifferentiated cells mainly containing cells with a diameter of 20 μm or less. Two types of EPC colonies (CFU-small cell like EC, also referred to as small EPC colonies) can be distinguished by their different sizes. Undifferentiated (small) EPC colonies appearing at an early stage are EPC colonies at an early differentiation stage with excellent proliferation ability, and differentiated (large) EPC colonies appearing at a late stage are late stage EPC colonies with excellent vascular development. It can be said that they are EPC colonies in the differentiation stage (see, for example, Masuda H. et al., Circulation Research, 109: 20-37 (2011)). Any of them can be suitably used in the present invention.

血管内皮前駆細胞は、末梢血、骨髄、臍帯血等から採取される単核球に含まれる。本発明の好ましい態様においては、血管内皮前駆細胞として、単核球を、CD34/CD133による選別を行うことなく、後述する無血清培地で培養することにより得られる細胞群である、QQ細胞(QQCs)(特許文献1、非特許文献1および2)が用いられる。このような細胞群に含まれる血管内皮前駆細胞は、CD34/CD133による選別を行う場合と比較して未分化型EPCコロニー形成細胞数がほぼ同等なのに対して分化型EPCコロニー形成細胞数が著しく増加している。好ましくはCD34/CD133による選別を行う場合と比較して未分化型EPC形成細胞数が変わらないのに対してその2倍以上の分化型EPCコロニー形成細胞が含まれる。さらに好ましくはCD34/CD133による選別を行う場合と比較して未分化型EPCコロニー形成細胞数が変わらないのに対してその4倍の、より好ましくは5倍の分化型EPCコロニー形成細胞が含まれる。なお、以下では、本発明を、血管内皮前駆細胞がQQ細胞である場合を例に説明することがあるが、当業者であれば、その説明を他の血管内皮前駆細胞を用いた場合にも適宜当てはめて理解することができる。 Vascular endothelial progenitor cells are included in mononuclear cells collected from peripheral blood, bone marrow, umbilical cord blood, and the like. In a preferred embodiment of the present invention, as vascular endothelial progenitor cells, QQ cells (QQCs ) (Patent Document 1, Non-Patent Documents 1 and 2) are used. Vascular endothelial progenitor cells contained in such a cell group have almost the same number of undifferentiated EPC colony-forming cells as compared to the case of sorting with CD34/CD133, but the number of differentiated EPC colony-forming cells is significantly increased. are doing. Preferably, the number of undifferentiated EPC colony-forming cells is the same as in the case of selection by CD34/CD133, but the number of differentiated EPC colony-forming cells is more than twice the same. More preferably, the number of undifferentiated EPC colony-forming cells does not change compared to the case of selection with CD34/CD133, but the number of differentiated EPC colony-forming cells is 4 times, more preferably 5 times that. . In the following, the present invention may be described as an example in which the vascular endothelial progenitor cells are QQ cells. It can be applied appropriately and understood.

(単核球)
QQ細胞は、単核球から得られる。単核球とは、末梢血、骨髄または臍帯血等に含まれる円形核を持つ細胞の総称で、リンパ球、単球、マクロファージ、血管内皮前駆細胞、造血幹細胞等が含まれる。単核球は通常、CD34および/またはCD133陽性細胞を含んでいる。動物から骨髄、臍帯血または末梢血を採取し、それを例えば密度勾配遠心法に付して該分画を抽出することにより単核球が得られる。密度勾配遠心法としては、単核球分画が得られる限り特に限定されないが、好ましくはHistopaque-1077(Sigma-Aldrich)が用いられる。
(mononuclear cells)
QQ cells are derived from mononuclear cells. Mononuclear cells are a general term for cells with round nuclei contained in peripheral blood, bone marrow, umbilical cord blood, etc., and include lymphocytes, monocytes, macrophages, vascular endothelial progenitor cells, hematopoietic stem cells, and the like. Mononuclear cells usually contain CD34 and/or CD133 positive cells. Mononuclear cells can be obtained by collecting bone marrow, umbilical cord blood or peripheral blood from an animal and subjecting it to, for example, density gradient centrifugation to extract the fraction. Density gradient centrifugation is not particularly limited as long as a mononuclear cell fraction can be obtained, but Histopaque-1077 (Sigma-Aldrich) is preferably used.

本発明の特に好ましい態様においては、血管内皮前駆細胞のソースとして、末梢血由来の単核球が用いられる。 In a particularly preferred embodiment of the present invention, peripheral blood-derived mononuclear cells are used as a source of vascular endothelial progenitor cells.

血管内皮前駆細胞が由来する動物種は特に限定されないが、得られる細胞シートを虚血性心疾患の治療等を目的として生体に移植する場合は、細胞シートが移植される対象と同種の動物から得たものであることが好ましく、また細胞シートが移植される対象自身から得たものであることがより好ましい。 The animal species from which the vascular endothelial progenitor cells are derived is not particularly limited. More preferably, the cell sheet is obtained from the subject himself/herself to whom the cell sheet is to be transplanted.

(無血清培地)
本発明において、血管内皮前駆細胞として、単核球をCD34/CD133による選別を行うことなく無血清培地で培養して得られた細胞群が用いられる場合、培養に用いられる無血清培地の好ましい例は、幹細胞因子(SCF)、インターロイキン6(IL-6)、FMS様チロシンキナーゼ3リガンド(Flt-3 ligand、またはFL略されることがある。)、トロンボポエチン(TPO)および血管内皮細胞増殖因子(VEGF)の5種の因子を含有する無血清培地である。
(serum-free medium)
In the present invention, when a cell group obtained by culturing mononuclear cells in a serum-free medium without selection by CD34/CD133 is used as the vascular endothelial progenitor cells, preferred examples of serum-free medium used for the culture is stem cell factor (SCF), interleukin 6 (IL-6), FMS-like tyrosine kinase 3 ligand (Flt-3 ligand, or sometimes abbreviated to FL), thrombopoietin (TPO) and vascular endothelial cell growth factor (VEGF) is a serum-free medium containing five factors.

幹細胞因子(SCF)は、248個のアミノ酸からなる分子量約30,000の糖タンパク質である。選択的スプライシングにより可溶型と膜結合型が存在するが、本発明で用いられるSCFはEPC等の培養に有用である限りいずれのタイプのSCFでもよい。好ましくは可溶型である。SCFの由来等は特に限定されないが、安定した供給が見込まれる組換え体が好ましく、特に好ましくはヒト組換え体である。SCFのヒト組み換え体は、商業的に入手可能なものが知られている。 Stem cell factor (SCF) is a 248 amino acid glycoprotein with a molecular weight of approximately 30,000. A soluble type and a membrane-bound type exist due to alternative splicing, and the SCF used in the present invention may be of any type as long as it is useful for culturing EPCs and the like. A soluble form is preferred. Although the origin of SCF is not particularly limited, a recombinant that is expected to be stably supplied is preferred, and a human recombinant is particularly preferred. Human recombinants of SCF are known to be commercially available.

無血清培地中のSCFの濃度は、用いるSCFの種類によっても異なり、EPC等の培養に有用である限り特に限定されないが、ヒト組換えSCFの場合であれば、例えば10~1000ng/mL、好ましくは50~500ng/mL、より好ましくは約100ng/mLである。 The concentration of SCF in the serum-free medium varies depending on the type of SCF used, and is not particularly limited as long as it is useful for culturing EPCs and the like. is between 50 and 500 ng/mL, more preferably about 100 ng/mL.

血管内皮細胞増殖因子(VEGF)は、EPCに特異的に作用する増殖因子であり、主に血管周囲の細胞で産生されることが知られている。選択的スプライシングによってサイズの異なる数種のVEGFタンパク質が産生されるが、本発明に用いるVEGFはEPCのコロニー形成を可能にする限りいずれのタイプのVEGFでもよい。好ましくはVEGF165である。VEGFの由来等は特に限定されないが、安定した供給が見込まれる組換え体が好ましく、特に好ましくはヒト組換え体である。 Vascular endothelial growth factor (VEGF) is a growth factor that specifically acts on EPCs and is known to be mainly produced in cells surrounding blood vessels. Although alternative splicing produces several different sized VEGF proteins, the VEGF used in the present invention can be of any type as long as it allows colony formation of EPCs. VEGF165 is preferred. Although the origin of VEGF is not particularly limited, recombinants that are expected to be stably supplied are preferred, and human recombinants are particularly preferred.

無血清培地中のVEGFの濃度は、用いるVEGFの種類によっても異なるが、ヒト組換えVEGF165の場合であれば、好ましくは5~500ng/mL、より好ましくは約20~100ng/mL、さらに好ましくは50ng/mLである。 The concentration of VEGF in the serum-free medium varies depending on the type of VEGF used, but in the case of human recombinant VEGF165, it is preferably 5 to 500 ng/mL, more preferably about 20 to 100 ng/mL, and even more preferably about 20 to 100 ng/mL. 50 ng/mL.

FMS様チロシンキナーゼ3リガンド(FL)は、初期造血制御において重要な役目を担う受容体型チロシンキナーゼのリガンドとして知られている。いくつかの選択的スプライシングによる産物が知られているが、造血系幹細胞の増殖を刺激するという報告がある。本発明に用いられるFLは、EPC等の富化に有用である限り、いずれのタイプのFLであってもよい。 FMS-like tyrosine kinase 3-ligand (FL) is known as a receptor-type tyrosine kinase ligand that plays an important role in the control of early hematopoiesis. Several alternatively spliced products are known and are reported to stimulate proliferation of hematopoietic stem cells. The FL used in the present invention may be any type of FL as long as it is useful for enrichment of EPC and the like.

無血清培地中のFLの濃度は、用いるFLの種類によっても異なるが、ヒト組換えFlt-3リガンドの場合であれば、好ましくは10~1000ng/mL、より好ましくは50~500ng/mL、さらに好ましくは100ng/mLである。 The concentration of FL in the serum-free medium varies depending on the type of FL used, but in the case of human recombinant Flt-3 ligand, it is preferably 10 to 1000 ng/mL, more preferably 50 to 500 ng/mL. Preferably it is 100 ng/mL.

トロンボポエチン(TPO)は、造血系サイトカインの一種であり、造血幹細胞から巨核球が作られる過程に特異的に作用し、巨核球の産生を促進することが知られている。本発明に用いるTPOの由来等は特に限定されないが、安定した供給が見込まれる組換え体が好ましく、特に好ましくはヒト組換え体である。 Thrombopoietin (TPO) is a type of hematopoietic cytokine and is known to act specifically on the process of producing megakaryocytes from hematopoietic stem cells and promote the production of megakaryocytes. The origin of the TPO used in the present invention is not particularly limited, but a recombinant that is expected to be stably supplied is preferred, and a human recombinant is particularly preferred.

無血清培地中のTPOの濃度は、用いるTPOの種類によっても異なるが、ヒト組換えTPOの場合であれば、好ましくは1~500ng/mL、より好ましくは5~100ng/mL、さらに好ましくは20ng/mLである。 The concentration of TPO in the serum-free medium varies depending on the type of TPO used, but in the case of human recombinant TPO, it is preferably 1-500 ng/mL, more preferably 5-100 ng/mL, and still more preferably 20 ng. /mL.

無血清培地に添加される各種因子はまた、単核球が由来する動物と同種の動物に由来する因子で統一することが好ましい。このように単核球および各種因子の由来を統一することで、同種異系移植等の同種移植に好適な細胞培養物が得られる。また、細胞移植が意図される個体由来の単核球を用いることで、同種同系移植に好適な細胞培養物を得ることも可能である。このように異種動物由来の成分を一切含有しない環境でEPC等を含む細胞群の培養が可能であるため、得られる細胞培養物は、移植等に際して感染リスク・拒絶反応を回避できるという利点を有する。 Various factors added to the serum-free medium are preferably unified with factors derived from the same animal species as the animal from which the mononuclear cells were derived. By unifying the origins of mononuclear cells and various factors in this way, a cell culture suitable for allogeneic transplantation such as allogeneic transplantation can be obtained. It is also possible to obtain cell cultures suitable for allogeneic transplantation by using mononuclear cells derived from an individual for whom cell transplantation is intended. Since it is possible to culture a group of cells containing EPCs and the like in an environment that does not contain any components derived from heterologous animals, the resulting cell culture has the advantage of avoiding the risk of infection and rejection during transplantation. .

無血清培地の本体としては、当分野で動物細胞の培養のために通常用いられている基礎培地を利用することができ、例えば造血幹細胞の増殖用培地として知られている無血清培地を用いることができる。無血清培地として用いられる基礎培地としては、例えばDMEM、MEM、IMDM等が挙げられる。 As the body of the serum-free medium, a basal medium commonly used for culturing animal cells in the art can be used. For example, a serum-free medium known as a medium for growing hematopoietic stem cells can be used. can be done. Examples of basal media used as serum-free media include DMEM, MEM, IMDM and the like.

(培養条件)
無血清培地中での単核球の培養条件は特に限定されず、動物細胞を培養するための通常の条件で実施することができる。例えば、5%CO2環境下、37℃で7日間以上(例えば10日間以上)培養される。無血清培地中での単核球の密度は、EPC等の富化を可能とする限り特に限定されないが、好ましくは0.5~10×105細胞/mLであり、より好ましくは1~5×105細胞/mLであり、さらに好ましくは3~4×105細胞/mLである。
(Culture conditions)
Conditions for culturing mononuclear cells in a serum-free medium are not particularly limited, and normal conditions for culturing animal cells can be used. For example, it is cultured at 37° C. for 7 days or longer (eg, 10 days or longer) in a 5% CO 2 environment. The density of mononuclear cells in the serum-free medium is not particularly limited as long as it allows enrichment of EPCs and the like, but is preferably 0.5 to 10×10 5 cells/mL, more preferably 1 to 5 cells/mL. ×10 5 cells/mL, more preferably 3 to 4×10 5 cells/mL.

(無血清培養により得られる細胞群)
本発明において、単核球を上述した因子を含有する無血清培地で培養した結果得られる細胞群には、分化型EPCコロニー形成細胞数が多く含まれうる。細胞群にはまた、抗炎症性マクロファージが含まれていてもよい。抗炎症性マクロファージとは、CD206陽性、抗炎症性で血管形成や修復に寄与するマクロファージである。好ましくはM2マクロファージであり、より好ましくはCD206陽性のM2マクロファージである。
(Cell group obtained by serum-free culture)
In the present invention, a cell group obtained by culturing mononuclear cells in a serum-free medium containing the factors described above may contain a large number of differentiated EPC colony-forming cells. Cell populations may also include anti-inflammatory macrophages. Anti-inflammatory macrophages are CD206-positive, anti-inflammatory macrophages that contribute to angiogenesis and repair. M2 macrophages are preferred, and CD206-positive M2 macrophages are more preferred.

血管内皮前駆細胞コロニー形成能の測定は、市販のキットを使用して行うことができる。このようなキットとして、例えばステムセルテクノロジー社製のキット(カタログNo.H4236)が市販されている。抗炎症性マクロファージあるいは炎症性マクロファージの分化あるいは増幅は、例えば、抗炎症性マクロファージについてはCD206、そして炎症性マクロファージについてはCCR2を、それらに親和性を有する抗体により標識し、フローサイトメータ解析により計測できる。 Vascular endothelial progenitor cell colony-forming ability can be measured using a commercially available kit. As such a kit, for example, a kit manufactured by Stem Cell Technology (Catalog No. H4236) is commercially available. Differentiation or amplification of anti-inflammatory macrophages or inflammatory macrophages is measured, for example, by labeling CD206 for anti-inflammatory macrophages and CCR2 for inflammatory macrophages with antibodies having affinity to them and performing flow cytometric analysis. can.

得られる細胞群は、さらに抗炎症性のTh2細胞や、制御性T細胞を含みうる。したがって得られる細胞群は、EPCや抗炎症性マクロファージに加えて、さらに抗炎症性のTh2細胞や制御性T細胞が富化した細胞群でもあり得る。 The resulting cell population may further include anti-inflammatory Th2 cells and regulatory T cells. Therefore, the obtained cell population can be a cell population enriched with anti-inflammatory Th2 cells and regulatory T cells in addition to EPCs and anti-inflammatory macrophages.

得られる細胞群は、分化型EPCコロニー形成細胞と抗炎症性マクロファージ(CD206陽性のM2マクロファージ)を含むことが好ましい。このような細胞群は、例えば潰瘍などの炎症部位において、血管を発生させるだけでなく、炎症をも抑えることができる点で極めて効果的であると考えられるからである。 The resulting cell population preferably contains differentiated EPC colony-forming cells and anti-inflammatory macrophages (CD206-positive M2 macrophages). This is because such a group of cells is considered to be extremely effective in that it can not only generate blood vessels but also suppress inflammation at an inflamed site such as an ulcer.

[筋芽細胞の準備]
本発明には、筋芽細胞が用いられる。筋芽細胞は、ある程度分化した細胞であるので、腫瘍化のリスクがより少ないということができる。筋芽細胞の由来は特に限定されるものではないが、生体内に豊富に存在し、比較的容易な操作で採取できるとの観点からは、骨格筋組織の骨格筋芽細胞であることが好ましい。採取する部位は、特に限定されず、例えば大腿部の内側広筋とすることができる。
[Preparation of myoblasts]
Myoblasts are used in the present invention. Since myoblasts are cells that have differentiated to some extent, it can be said that the risk of tumorigenesis is less. The origin of myoblasts is not particularly limited, but skeletal myoblasts of skeletal muscle tissue are preferable from the viewpoint that they exist abundantly in vivo and can be collected by a relatively easy operation. . The site to be collected is not particularly limited, and can be, for example, the vastus medialis muscle of the thigh.

筋芽細胞を生体から採取する場合、細胞シートが移植される対象において免疫的拒絶が起きにくいとの観点から、当該対象から採取することが好ましい。 When myoblasts are collected from a living body, they are preferably collected from a subject to whom the cell sheet is to be transplanted, from the viewpoint that immune rejection is less likely to occur in the subject.

採取する量は、目的とする細胞シートとして必要な大きさ、枚数にも拠るが、例えば、ヒトへの移植用の細胞シートとして108オーダーの細胞を含む細胞シートが複数枚必要である場合があり、比較的多くの筋芽細胞が必要である場合がある。筋芽細胞は、体外で培養・増殖させることができ、また保存液に懸濁して凍結保存することができる。必要に応じ、複数回の採取や培養により、適切な量を確保することができる。 The amount to be collected depends on the size and number of cells required for the desired cell sheet. Yes, and relatively many myoblasts may be required. Myoblasts can be cultured and proliferated outside the body, and can be suspended in a preservation solution and cryopreserved. If necessary, an appropriate amount can be ensured by collecting and culturing multiple times.

[共培養]
本発明の細胞シートは、血管内皮前駆細胞と筋芽細胞とを共培養することにより製造される。共培養は、培養開始時に、血管内皮前駆細胞と筋芽細胞とを同一の培養器材表面上に播種することにより開始される。
[Co-culture]
The cell sheet of the present invention is produced by co-culturing vascular endothelial progenitor cells and myoblasts. Co-culture is initiated by seeding vascular endothelial progenitor cells and myoblasts on the same cultureware surface at the start of culture.

(播種)
共培養のための血管内皮前駆細胞と筋芽細胞との播種の方法は、少なくとも血管内皮前駆細胞と筋芽細胞とが同一器材表面上に共存しつつ、筋芽細胞シートが形成される限り、特に限定されないが、好ましい態様においては、まずシート形成上有効量の筋芽細胞が培養器材表面上に播種され、次いで筋芽細胞に対して所定の比の細胞数の血管内皮前駆細胞が播種される。
(sowing)
The method of seeding vascular endothelial progenitor cells and myoblasts for co-culture is as long as a myoblast sheet is formed while at least the vascular endothelial progenitor cells and myoblasts coexist on the same substrate surface. Although not particularly limited, in a preferred embodiment, an effective amount of myoblasts for sheet formation is first seeded on the surface of the cultureware, and then vascular endothelial progenitor cells are seeded in a predetermined ratio to the myoblasts. be.

共培養に際して、筋芽細胞は、数日~数週間の培養により筋芽細胞がシート状の培養物を形成できる量、すなわちシート形成上有効量で播種される。シート形成上有効量は、例えば1週間以内程度の培養でシートを得るためには、1.0×103~1.0×105個/cm2 であり、好ましくは2.0×103~5.0×104個/cm2であり、より好ましくは2.0×103~2.0×104個/cm2である。あるいは、筋芽細胞を実質的に増殖させることなくシートを得るためには、シート形成上有効量は0.4×106~2.5×106個/cm2であり、好ましくは0.5×106~2.1×106個/cm2であり、より好ましくは0.6×106~1.7×106個/cm2である。筋芽細胞の播種量はまた、形成される細胞シートに要求される大きさや枚数を考慮して決定することができる。 In co-culturing, myoblasts are seeded in an amount that allows myoblasts to form a sheet-like culture after several days to several weeks of culture, that is, in an effective amount for sheet formation. The effective amount for sheet formation is, for example, 1.0×10 3 to 1.0×10 5 cells/cm 2 , preferably 2.0×10 3 , in order to obtain a sheet by culturing for about one week or less. 5.0×10 4 pieces/cm 2 , more preferably 2.0×10 3 to 2.0×10 4 pieces/cm 2 . Alternatively, in order to obtain a sheet without substantially proliferating myoblasts, the effective amount for sheet formation is 0.4×10 6 to 2.5×10 6 cells/cm 2 , preferably 0.5×10 6 cells/cm 2 . It is 5×10 6 to 2.1×10 6 pieces/cm 2 , more preferably 0.6×10 6 to 1.7×10 6 pieces/cm 2 . The seeding amount of myoblasts can also be determined in consideration of the required size and number of cell sheets to be formed.

共培養における血管内皮前駆細胞の播種量は、播種される筋芽細胞の量と次に述べる血管内皮前駆細胞と筋芽細胞との比に基づき、適宜計算できる。 The seeding amount of vascular endothelial progenitor cells in co-culture can be appropriately calculated based on the amount of myoblasts to be seeded and the ratio of vascular endothelial progenitor cells to myoblasts described below.

(血管内皮前駆細胞と筋芽細胞との比)
共培養開始時の血管内皮前駆細胞と筋芽細胞との比は、シート化できる限り特に限定されないが、例えば、播種される血管内皮前駆細胞と筋芽細胞との細胞数比(血管内皮前駆細胞数:筋芽細胞数)は、1:0.5~20とすることができる。好ましくは、血管内皮前駆細胞数:筋芽細胞数は、1:0.2~5であり、より好ましくは1:0.3~3であり、さらに好ましくは1:0.5~2である。このような範囲での共培養は、血管新生関連因子の発現が高くなることが期待でき、かつ抗炎症効果および細胞生存に有利であると考えられる。また、血管内皮前駆細胞の割合が低すぎると共培養されている筋芽細胞の機能を増強させるだけの十分な効果が期待できず、逆に血管内皮前駆細胞の割割合が高すぎる場合、筋芽細胞により細胞シートが形成されず、好ましくない。なお、本発明に関し、細胞の比率をいうときは、特に記載した場合を除き、細胞数に基づく値である。
(Ratio of vascular endothelial progenitor cells to myoblasts)
The ratio of vascular endothelial progenitor cells and myoblasts at the start of co-culture is not particularly limited as long as sheet formation is possible. number: number of myoblasts) can be 1:0.5-20. Preferably, the ratio of vascular endothelial progenitor cell number to myoblast number is 1:0.2 to 5, more preferably 1:0.3 to 3, still more preferably 1:0.5 to 2. . Co-culture in such a range can be expected to increase the expression of angiogenesis-related factors, and is considered to be advantageous for anti-inflammatory effects and cell survival. If the ratio of vascular endothelial progenitor cells is too low, a sufficient effect to enhance the function of co-cultured myoblasts cannot be expected. Blast cells do not form a cell sheet, which is undesirable. Regarding the present invention, when referring to the ratio of cells, it is a value based on the number of cells unless otherwise specified.

(培養器材)
共培養が行われる培養器材は、特に限定されないが、形成される細胞シートの器材からの剥離が容易に行えるとの観点からは、0~80℃の温度範囲で水和力が変化するポリマーを表面に被覆した細胞培養器材が用いられることが好ましい。すなわち、細胞は0~80℃の温度範囲で水和力が変化するポリマーを表面に被覆した細胞培養器材上で、ポリマーの水和力の弱い温度域で培養される。その温度は、通常動物細胞の培養に適した温度である37℃付近であることが好ましい。温度応答性高分子はホモポリマー、コポリマーのいずれであってもよい。このような高分子としては、例えば、特開平2-211865号公報に記載されているポリマーが挙げられる。具体的には、例えば、(メタ)アクリルアミド化合物、N-(若しくはN,N-ジ)アルキル置換(メタ)アクリルアミド誘導体、またはビニルエーテル誘導体等のモノマーの重合体が挙げられ、コポリマーの場合は、これらの中で任意の2種以上が重合された物でありえる。更には、上記モノマー以外のモノマー類との共重合、ポリマー同士のグラフトまたは共重合、あるいはポリマー、コポリマーの混合物を用いたものであってもよい。また、ポリマー本来の性質を損なわない範囲で架橋されていてもよい。その際、その上で培養されるものが動物細胞であることから、剥離が5℃~50℃の範囲で行えることが好ましく、そのため温度応答性ポリマーの好ましい例としては、ポリ-N-n-プロピルアクリルアミド(単独重合体の下限臨界溶解温度21℃)、ポリ-N-n-プロピルメタクリルアミド(同27℃)、ポリ-N-イソプロピルアクリルアミド(同32℃)、ポリ-N-イソプロピルメタクリルアミド(同43℃)、ポリ-N-シクロプロピルアクリルアミド(同45℃)、ポリ-N-エトキシエチルアクリルアミド(同約35℃)、ポリ-N-エトキシエチルメタクリルアミド(同約45℃)、ポリ-N-テトラヒドロフルフリルアクリルアミド(同約28℃)、ポリ-N-テトラヒドロフルフリルメタクリルアミド(同約35℃)、ポリ-N,N-エチルメチルアクリルアミド(同56℃)、ポリ-N,N-ジエチルアクリルアミド(同32℃)が挙げられる。温度応答性の細胞培養器材は市販されており、例えばUpCell(登録商標)(CellSeed, cat# CS3003, CS3004, CS3005, CS3006, CS3007)等が共培養のために使用できる。
(Culture equipment)
The cultureware for co-cultivation is not particularly limited, but from the viewpoint that the formed cell sheet can be easily peeled off from the equipment, a polymer whose hydration force changes in the temperature range of 0 to 80°C is used. It is preferable to use a cell cultureware with a coating on the surface. That is, cells are cultured in a temperature range where the hydration power of the polymer is weak on a cell cultureware whose surface is coated with a polymer whose hydration power changes in the temperature range of 0 to 80°C. The temperature is preferably around 37° C., which is generally suitable for culturing animal cells. A temperature-responsive polymer may be either a homopolymer or a copolymer. Examples of such polymers include polymers described in JP-A-2-211865. Specific examples include polymers of monomers such as (meth)acrylamide compounds, N-(or N,N-di)alkyl-substituted (meth)acrylamide derivatives, and vinyl ether derivatives, and in the case of copolymers, these It can be a product obtained by polymerizing any two or more of the above. Furthermore, copolymers with monomers other than the above monomers, graft or copolymerization between polymers, or mixtures of polymers and copolymers may be used. Moreover, it may be crosslinked to the extent that it does not impair the original properties of the polymer. At that time, since animal cells are cultured thereon, it is preferable that the exfoliation can be performed in the range of 5°C to 50°C. Propyl acrylamide (lower critical solution temperature of homopolymer 21 ° C.), poly-Nn-propyl methacrylamide (27 ° C.), poly-N-isopropyl acrylamide (32 ° C.), poly-N-isopropyl methacrylamide ( 43° C.), poly-N-cyclopropylacrylamide (45° C.), poly-N-ethoxyethylacrylamide (about 35° C.), poly-N-ethoxyethyl methacrylamide (about 45° C.), poly-N - Tetrahydrofurfuryl acrylamide (about 28°C), poly-N-tetrahydrofurfuryl methacrylamide (about 35°C), poly-N,N-ethylmethylacrylamide (about 56°C), poly-N,N-diethyl Acrylamide (at 32°C) can be mentioned. Temperature-responsive cell cultureware is commercially available, and for example, UpCell (registered trademark) (CellSeed, cat# CS3003, CS3004, CS3005, CS3006, CS3007) can be used for co-culture.

(血管内皮前駆細胞の除去)
好ましい態様において、血管内皮前駆細胞と筋芽細胞が一定期間共培養された後、共培養された血管内皮前駆細胞の少なくとも一部が除去される。少なくとも一部の血管内皮前駆細胞の除去は、培地の交換とともに行うことができる。すなわち、培養器から培養上清を除去する際に、浮遊している血管内皮前駆細胞は容易に上清とともに除去できる。血管内皮前駆細胞の少なくとも一部の除去は、培養期間中のどの時点で行ってもよい。例えば、共培養後、2~5日目に培地交換とともに行い、新鮮培地を追加した後、さらに残りの期間、血管内前駆細胞の少なくとも一部が除去された状態で、培養を続けることができる。
(Removal of vascular endothelial progenitor cells)
In a preferred embodiment, after the vascular endothelial progenitor cells and myoblasts have been co-cultured for a period of time, at least a portion of the co-cultured vascular endothelial progenitor cells are removed. Removal of at least a portion of vascular endothelial progenitor cells can be performed in conjunction with medium replacement. That is, when the culture supernatant is removed from the incubator, floating vascular endothelial progenitor cells can be easily removed together with the supernatant. Removal of at least a portion of the vascular endothelial progenitor cells may be performed at any point during the culture period. For example, 2 to 5 days after co-cultivation, the medium is exchanged, fresh medium is added, and the culture can be continued for the remaining period with at least part of the intravascular progenitor cells removed. .

血管内皮前駆細胞は、一部を除去してもよく、全部を除去してもよい。一部の血管内皮前駆細胞が除去され、多少の血管内皮前駆細胞が筋芽細胞シート上に残されると、シートが移植された場合に患部での血管新生や血流の改善への寄与が期待できる。この観点からは、血管内皮前駆細胞は、全部が除去されるのではなく、その一部が筋芽細胞シート上に残されることが好ましい。共培養に用いられた血管内皮前駆細胞のうち、例えば20%程度の血管内皮前駆細胞が細胞シート上に残されてよく、10%程度の血管内皮前駆細胞が残されていてもよく、5%程度の血管内皮前駆細胞が残されていてもよい。 Vascular endothelial progenitor cells may be partially or wholly removed. If some vascular endothelial progenitor cells are removed and some vascular endothelial progenitor cells remain on the myoblast sheet, it is expected to contribute to improved angiogenesis and blood flow in the affected area when the sheet is transplanted. can. From this point of view, it is preferable that not all of the vascular endothelial progenitor cells are removed, but some of them remain on the myoblast sheet. Of the vascular endothelial progenitor cells used for co-culture, for example, about 20% of the vascular endothelial progenitor cells may be left on the cell sheet, about 10% of the vascular endothelial progenitor cells may be left, and 5% may be left on the cell sheet. Some vascular endothelial progenitor cells may be left.

(培地)
共培養に用いられる培地は、筋芽細胞の培養のために用いられる従来のものが使用できる。例えば、DMEM、MEM、F12、DME、RPMI1640、MCDB(MCDB102、104、107、131、153、199など)、L15、SkBM、RITC80-7等の基礎培地に、必要に応じ、成分を添加する等して改変を加えたものが使用できる。
(Culture medium)
A conventional medium used for culturing myoblasts can be used for the co-culture. For example, DMEM, MEM, F12, DME, RPMI1640, MCDB (MCDB102, 104, 107, 131, 153, 199, etc.), L15, SkBM, RITC80-7 and other basal media, if necessary, adding components, etc. can be used with modifications.

共培養に用いられる培地は、無血清培地であってもよく、血清を添加した培地であってもよい。血清が用いられる場合、血清の例として、異種血清、同種血清(同種他家血清、自己血清)が挙げられる。ここでいう異種血清は、細胞シートが移植される場合は、移植される対象とは異なる種の生物に由来する血清を意味する。例えば、対象がヒトである場合、ウシやウマに由来する血清、例えば、ウシ胎仔血清(FBS、FCS)、仔ウシ血清(CS)、ウマ血清(HS)などが異種血清に該当する。また、同種血清は、対象と同一の種の生物に由来する血清を意味する。例えば、対象がヒトである場合、ヒト血清が同種血清に該当する。同種血清は、対象以外の同種の個体から採取した同種他家血清と、自己血清、すなわち対象自身から採取した血清を含む。細胞シートが移植される場合であって、共培養のために血清を用いる場合は、移植時の副作用を回避するとの観点からは、同種血清が好ましく、自己血清がより好ましい。 The medium used for co-cultivation may be a serum-free medium or a medium supplemented with serum. When serum is used, examples of serum include xenogeneic serum, allogeneic serum (allogeneic and autologous serum). The heterologous serum as used herein means, when the cell sheet is transplanted, serum derived from an organism of a species different from that of the transplanted subject. For example, when the subject is a human, serum derived from bovine or horse, such as fetal bovine serum (FBS, FCS), calf serum (CS), horse serum (HS), and the like, correspond to heterologous serum. Also, allogeneic serum means serum derived from organisms of the same species as the subject. For example, when the subject is human, human serum corresponds to allogeneic serum. Allogeneic serum includes allogeneic serum obtained from an individual of the same species other than the subject, and autologous serum, ie, serum obtained from the subject himself. When a cell sheet is transplanted and serum is used for co-culturing, allogeneic serum is preferable, and autologous serum is more preferable, from the viewpoint of avoiding side effects during transplantation.

血清を用いる場合、その濃度培地中の濃度は、0.5~20%、例えば5%、10%、15%とすることができる。なお、本発明に関し、培地中の血清の濃度は、特に記載した場合を除き、血清の容積と培地全体の容積に基づく濃度(v/v)である。 When serum is used, its concentration in the concentration medium can be 0.5-20%, eg 5%, 10%, 15%. Regarding the present invention, the concentration of serum in the medium is the concentration (v/v) based on the volume of serum and the volume of the entire medium, unless otherwise specified.

別の好ましい態様においては、共培養のための培地は血清を実質的に含まない。 In another preferred embodiment, the medium for co-cultivation is substantially free of serum.

(培養温度、期間等)
共培養は、筋芽細胞をシート形成を目的に培養する場合と同様の条件で行うことができる。典型的な培養条件としては、37℃、5%CO2での培養が挙げられる。培養期間は、シート状の構造物が形成されるまで行うことができる。この期間は、血管内皮前駆細胞の少なくとも一部を除した後の培養期間を含み、例えば1.0×103~1.0×105個/cm2で筋芽細胞を播種した場合の培養期間は、2日~2週間であり、より特定すると3日~10日であり、例えば1週間前後である。培養期間は、筋芽細胞の播種量がより多い場合はより短い期間でありうる。
(Incubation temperature, period, etc.)
Co-cultivation can be performed under the same conditions as when myoblasts are cultured for the purpose of sheet formation. Typical culturing conditions include culturing at 37° C. and 5% CO 2 . The culture period can be continued until a sheet-like structure is formed. This period includes the culture period after at least part of the vascular endothelial progenitor cells have been removed, for example, culture when myoblasts are seeded at 1.0×10 3 to 1.0×10 5 cells/cm 2 . The period is 2 days to 2 weeks, more particularly 3 days to 10 days, for example around 1 week. The culture period can be shorter if the myoblast seeding rate is higher.

(細胞シートの回収)
血管内皮前駆細胞と筋芽細胞との共培養を経て形成された細胞シートは、培養器材表面から剥離させ、回収することができる。細胞シートを回収する方法は特に限定されないが、温度応答性の培養器材を用いた場合は、適切な温度に変化させることにより回収することができ、他の例として、希薄なタンパク質分解酵素を用いる方法、特殊なタンパク質分解酵素を用いる方法、キレート剤(例えばEDTA)を用いる方法、スクレーパー等を使いて物理的に剥離する方法等が挙げられる。得られた細胞シートは、必要に応じて積層化し、三次元構造体とすることができる。
(Recovery of cell sheet)
A cell sheet formed through co-culture of vascular endothelial progenitor cells and myoblasts can be peeled off from the surface of the cultureware and collected. The method for collecting the cell sheet is not particularly limited, but when a temperature-responsive cultureware is used, the cell sheet can be collected by changing the temperature to an appropriate temperature. As another example, dilute protease is used. method, a method using a special protease, a method using a chelating agent (for example, EDTA), and a method of physically peeling off using a scraper or the like. The obtained cell sheets can be layered as necessary to form a three-dimensional structure.

[細胞シート]
本発明は、上述の製造方法で得られる、血管内皮前駆細胞および筋芽細胞を含む、細胞シートを提供する。
[Cell sheet]
The present invention provides a cell sheet containing vascular endothelial progenitor cells and myoblasts obtained by the production method described above.

本発明の細胞シートは、血管内皮前駆細胞と筋芽細胞とを共培養して製造しているため、典型的には、筋芽細胞で形成されるシートに小型の血管内皮細胞が付随した形態をしている。筋芽細胞のみで形成されるシートとは、小型の血管内皮細胞が付随している以外には形態上の違いは少なく、そのため従来の筋芽細胞シートと同様に用いることができると考えられる。 Since the cell sheet of the present invention is produced by co-culturing vascular endothelial progenitor cells and myoblasts, it typically has a form in which small vascular endothelial cells accompany a sheet formed of myoblasts. doing A sheet formed only of myoblasts has little morphological difference except that small vascular endothelial cells are attached, and therefore, it is considered that it can be used in the same way as a conventional myoblast sheet.

本発明者らの検討によると、得られた細胞シートは、筋芽細胞のみから形成された細胞シートに比較して、抗炎症・免疫制御性サイトカインであるIL-10 の発現上昇が認められる。またIL-10の発現上昇とともに、一部の炎症性サイトカインの発現上昇も認められることがある。 According to the studies of the present inventors, the obtained cell sheet showed increased expression of IL-10, which is an anti-inflammatory/immunoregulatory cytokine, compared to a cell sheet formed only from myoblasts. Along with the increased expression of IL-10, increased expression of some inflammatory cytokines may also be observed.

[細胞シートの用途、その他]
本発明の細胞シートは、虚血性心疾患の処置のために用いることができる。虚血性心疾患は、心筋において、血量の減少によって組織内の血流がさがり細胞の変性、萎縮、線維化などの組織障害が生じることによって起こる疾患である。虚血はその原因により、閉塞性虚血、圧迫性虚血、痙攣性虚血、代償性虚血に大別される。なお処置とは、病気の治療、病気の進行の抑制、病気の予防、および病気の発症リスクの低減を含む。
[Uses of cell sheets, etc.]
The cell sheet of the present invention can be used for treating ischemic heart disease. Ischemic heart disease is a disease caused by tissue damage such as degeneration, atrophy, and fibrosis of cells due to decreased blood flow in the myocardial tissue. Ischemia is roughly classified into obstructive ischemia, compression ischemia, convulsive ischemia, and compensatory ischemia, depending on the cause. Treatment includes treatment of disease, inhibition of progression of disease, prevention of disease, and reduction of risk of developing disease.

本発明の細胞シートはまた、虚血性心疾患以外の心筋症に対する効果も期待できる。心筋症とは心臓の筋肉の異常で心機能が低下する疾患である。心筋症は、拡張型心筋症、肥大型心筋症、拘束型心筋症が含まれる。 The cell sheet of the present invention is also expected to be effective against cardiomyopathy other than ischemic heart disease. Cardiomyopathy is a disease in which cardiac function is reduced due to an abnormality of the heart muscle. Cardiomyopathy includes dilated cardiomyopathy, hypertrophic cardiomyopathy, and restrictive cardiomyopathy.

本発明の細胞シートが移植に用いられる場合、次のような効果の少なくとも一つが期待できる:
移植された細胞の流失が抑制される;
移植された細胞の免疫的拒絶が抑制される;
患部の血管新生が促進される;
幹部の血流が改善される;
患部の炎症が抑制される;
移植された細胞の残存率、生着率が上昇する;
移植された細胞の心筋への分化度が高くなる;
移植された細胞が腫瘍化する懸念が少なくなる;
移植された細胞の電気的・組織的な孤立化(不整脈)が起こりにくくなる。
When the cell sheet of the present invention is used for transplantation, at least one of the following effects can be expected:
the loss of transplanted cells is inhibited;
immune rejection of transplanted cells is suppressed;
angiogenesis is promoted in the affected area;
Blood flow in the trunk is improved;
inflammation in the affected area is suppressed;
Increased survival rate and engraftment rate of transplanted cells;
increased myocardial differentiation of the transplanted cells;
less concern that the transplanted cells will become tumorigenic;
Electrical and organizational isolation (arrhythmia) of transplanted cells becomes less likely to occur.

上記の効果は、血管内皮前駆細胞を筋芽細胞と共培養することにより奏されると考えられる。したがって、本発明は、筋芽細胞シートと組み合わせて使用するための、血管内皮前駆細胞の使用方法を提供するものでもある。 The above effects are considered to be achieved by co-culturing vascular endothelial progenitor cells with myoblasts. Accordingly, the present invention also provides methods of using vascular endothelial progenitor cells for use in combination with myoblast sheets.

本発明はまた、上述したような細胞シートを製造するための、キットを提供する。キットは、シートが移植される対象から末梢血を採取するために用いられる試薬、器具;末梢血から単核球画分を得るための試薬、器具;血管内皮前駆細胞を調製、培養するための試薬、器具;筋芽細胞を採取するための器具、筋芽細胞を凍結保存するための試薬、器具;血管内皮前駆細胞と筋芽細胞を共培養するための培養器材;共培養のためにシートが移植される対象から血清を採取するために用いられる器具;医療機関で採取された細胞等をシートの製造業者まで運搬するために用いる器具等のいずれかを含む。 The present invention also provides kits for producing cell sheets as described above. The kit includes reagents and instruments used for collecting peripheral blood from a subject to which the sheet is to be transplanted; reagents and instruments for obtaining a mononuclear cell fraction from peripheral blood; preparation and culturing of vascular endothelial progenitor cells; Reagents and instruments; instruments for collecting myoblasts, reagents and instruments for cryopreserving myoblasts; culture instruments for co-culturing vascular endothelial progenitor cells and myoblasts; sheets for co-culturing equipment used to collect serum from a subject to be transplanted; equipment used to transport cells collected at a medical institution to a sheet manufacturer.

本発明の細胞シートは、再生医療等製品とすることができる。再生医療等製品である場合、細胞シートは、医薬品および医薬部外品の製造管理および品質管理規則に適合した条件(good manufacturing practice、GMP)および再生医療等製品の製造管理および品質管理の基準(Good Gene, Cellular, and Tissue-based Products Manufacturing Practice、GCTP)で製造される。 The cell sheet of the present invention can be used as a regenerative medicine product. In the case of a regenerative medicine product, the cell sheet must comply with the conditions (good manufacturing practice, GMP) that conform to the manufacturing control and quality control regulations for pharmaceuticals and quasi-drugs and the standards for manufacturing control and quality control of regenerative medicine products ( Good Gene, Cellular, and Tissue-based Products Manufacturing Practice, GCTP).

[細胞の準備]
(QQ細胞)
末梢血から、常法により単核球を遠心分離により採取し、単核球を2×106 個/6-well Primaria plate (BD Falcon, Franklin Lakes, NJ) wellに播種した。培地は、5つのサイトカインであるrecombinant human vascular endothelial growth factor (rhVEGF) (50 ng/ml), rh interleukin-6 (rhIL-6) (20 ng/ml), rh Fms-related tyrosine kinase-3 ligand (rhFlt-3L) (100 ng/ml), rh thrombopoietin (rhTPO) (20 ng/ml), rh stem cell factor (rhSCF) (100 ng/ml) (all from PeproTech, Rocky Hill, NJ) と抗生剤 antibiotics cocktail (Invtrogen) をStemline II medium (Sigma, St. Lois, MO) に添加したものを用いた。7日間、37 °C、5% CO2で培養し、QQ細胞(QQCs)を得た。
[Preparation of cells]
(QQ cells)
Mononuclear cells were collected from peripheral blood by centrifugation by a conventional method, and 2×10 6 mononuclear cells/6-well Primaria plate (BD Falcon, Franklin Lakes, NJ) wells were seeded. The medium contains five cytokines, recombinant human vascular endothelial growth factor (rhVEGF) (50 ng/ml), rh interleukin-6 (rhIL-6) (20 ng/ml), rh Fms-related tyrosine kinase-3 ligand ( rhFlt-3L) (100 ng/ml), rh thrombopoietin (rhTPO) (20 ng/ml), rh stem cell factor (rhSCF) (100 ng/ml) (all from PeproTech, Rocky Hill, NJ) and antibiotics Cocktail (Invtrogen) added to Stemline II medium (Sigma, St. Lois, Mo.) was used. After culturing at 37°C and 5% CO 2 for 7 days, QQ cells (QQCs) were obtained.

(筋芽細胞)
筋芽細胞(MBCs)は市販のヒト由来のセルラインを用いた(Lonza cat# CC2580, Lot# 0000418971)。15%FBS加MCDB培地にて細胞を培養、2回ほど継代し十分な量に増やした。
(myoblast)
Myoblasts (MBCs) were obtained from a commercially available human-derived cell line (Lonza cat# CC2580, Lot# 0000418971). The cells were cultured in MCDB medium supplemented with 15% FBS and subcultured twice to increase the amount to a sufficient amount.

[In vitroの検討]
(共培養)
プロトコールを図1に示した。
QQCsは健康ボランティアのものを用いた。50mL採血し、QQCsを培養した。培養したMBCsを0.25%のトリプシンEDTAを用いて剥離し、1x105/wellとなるように通常の6well dish(9.6 cm2/well)に播種した。翌日にQQCsを、MBCsとの細胞数がそれぞれQQCs:MBCs = 1:1、1:3、1:10となるようにwellに播種した。48時間の共培養ののち培地の上清を吸引し、QQCsを取り除いた(図1中の(1))。MBCsの培地を入れさらに3日間、通常酸素下培養および低酸素下で培養を行った。3日後に0.25%のトリプシンEDTAを用いて細胞を回収し(図1中の(2))、PCR用の試料を作成するためRNAlater (Invitrogen, cat# AM7021) に入れた。1週間後に上清を2mlに置換し、24時間後に回収し、培地中の炎症関係サイトカインの濃度をELISAで計測した。
[In vitro study]
(Co-culture)
The protocol is shown in FIG.
QQCs from healthy volunteers were used. 50 mL of blood was collected and cultured for QQCs. The cultured MBCs were detached using 0.25% trypsin-EDTA and seeded in a normal 6-well dish (9.6 cm 2 /well) at 1×10 5 /well. On the next day, QQCs and MBCs were seeded in wells so that the cell numbers were QQCs:MBCs = 1:1, 1:3, 1:10, respectively. After 48 hours of co-cultivation, the medium supernatant was aspirated to remove QQCs ((1) in FIG. 1). The medium of MBCs was added and cultured under normoxia and hypoxia for 3 days. Cells were harvested after 3 days using 0.25% trypsin-EDTA ((2) in FIG. 1) and placed in RNAlater (Invitrogen, cat# AM7021) to generate samples for PCR. After 1 week, the supernatant was replaced with 2 ml, collected after 24 hours, and the concentration of inflammation-related cytokines in the medium was measured by ELISA.

(結果)
培養後の細胞の写真を、図2~5に示した。共培養群では通常の細胞の上などに小型の細胞が多く見られる。回収後にも残存しているQQCsと考えられる。その他の形態上の違いなどは見られない。
(result)
Photographs of cells after culturing are shown in Figures 2-5. In the co-culture group, many small cells are seen on top of normal cells. These QQCs are considered to remain after collection. No other morphological differences are observed.

また、RT-PCRの結果を図6に、炎症関係サイトカインの濃度測定結果を図7に示した。抗炎症性サイトカインであるIL-10の発現上昇がみられた。 FIG. 6 shows the results of RT-PCR, and FIG. 7 shows the results of concentration measurement of inflammation-related cytokines. Increased expression of IL-10, an anti-inflammatory cytokine, was observed.

[In vivoの検討]
(細胞シートの作成)
In vivoの検討用に細胞シートを作成した。それぞれMBCs単独シートおよびQQCs共培養のシートを作成した。MBCs単独シートは、MBCsを1x104個/cm2の密度で12wellの温度応答性の培養ディッシュUpcell(登録商標)(CellSeed, cat# CS3003) に播種した。共培養シートは、これまでのin vitroの検討から最も有効であった1:1のプロトコール、すなわちMBCs播種24時間後にQQCsも同量加え、同様に、37 °C、5% CO2、48時間の共培養を行った。共培養の後、QQCsを取り除き、さらに3日間培養を行った。
[In vivo study]
(Creation of cell sheet)
Cell sheets were prepared for in vivo studies. A sheet of MBCs alone and a sheet of QQCs coculture were prepared, respectively. MBCs alone sheets were seeded with MBCs at a density of 1×10 4 /cm 2 in 12-well temperature-responsive culture dishes Upcell® (CellSeed, cat# CS3003). The co-culture sheet was the most effective 1:1 protocol from the in vitro studies so far . were co-cultured. After co-cultivation, QQCs were removed and the cells were further cultured for 3 days.

(心筋梗塞マウスの作成)
8週齢の雄性のヌードマウスを用いた。マウスに挿管し人工呼吸器で呼吸管理後、右側臥位左開胸にて心臓を露出した。左冠動脈を7-0のモノフィラメント糸で結紮、心筋梗塞を作成した。作成後、左心室の虚血部位を覆うようにそれぞれの細胞シートを留置、心膜を閉じることによりシートを固定し、胸腔を閉じて手術を終了した。
(Creation of myocardial infarction mice)
Eight-week-old male nude mice were used. After the mouse was intubated and respiratory management was performed with an artificial respirator, the heart was exposed by left thoracotomy in the right lateral decubitus position. The left coronary artery was ligated with a 7-0 monofilament thread to create a myocardial infarction. After preparation, each cell sheet was indwelled so as to cover the ischemic site of the left ventricle, the sheet was fixed by closing the pericardium, and the thoracic cavity was closed to complete the operation.

(心機能の評価)
プロトコールを図8に示した。手術直後、1週間後、2週間後および4週間後に小動物用の超音波装置を用いて心機能を測定した。1および4週間後の超音波の後、マウス心臓を摘出、半数をPCR解析用に、残りの半数を組織化学用の凍結用切片とした。PCR解析用では心臓をヘパリン加PBSで還流した後にこれを摘出、RNAlaterに浸透させた。組織化学用として4%のPFAで固定の後に10,15,20%のスクロースで脱水、OCTコンパウンドに包埋し-80℃に保存し凍結切片とした。
(Evaluation of cardiac function)
The protocol is shown in FIG. Cardiac function was measured using a small animal ultrasound device immediately, 1 week, 2 weeks and 4 weeks after surgery. After 1 and 4 weeks of ultrasound, mouse hearts were excised and half were cryosectioned for PCR analysis and the other half for histochemistry. For PCR analysis, hearts were excised after perfusion with heparinized PBS and permeated with RNAlater. For histochemical use, the cells were fixed with 4% PFA, dehydrated with 10, 15, and 20% sucrose, embedded in OCT compound, stored at -80°C, and frozen.

(結果)
心機能の測定結果を、図9に示した。左室駆出率(LVEF)は心筋梗塞作成直後は、コントロール(CTL)群=28.0±1.7%、MBCs単独投与(MBCs only)群=28.7±1.3%、MBCs+QQCs混合投与(MBCs+QQCs)群=28.0±2.3%であり3群間に有意差はなかった。CTL群とMBCs群は術後1週間では直後と差はなかったが、CTL群はその後LVEFは低下傾向でありリモデリングの進行が示唆された。一方でMBCs単独群のLVEFはその後も低下はせず、4週間目で33.0±3.6%と軽度の改善傾向が見られた。MBCs+QQCs群は1週目で31.6±2.2と増加傾向が見られ、その後もMBCs単独群よりも常に高く4週間後では39.6±1.6%と直後に比べて約10%の改善効果が見られた。また4週間目における左室拡張末期径(LVDd)と左室収縮末期径(LVDs)は有意差はなかったもののMBCs+QQCs群で低値であり、リモデリングの軽減作用が示唆された。
(result)
FIG. 9 shows the measurement results of cardiac function. Control (CTL) group = 28.0 ± 1.7%, MBCs alone (MBCs only) group = 28.7 ± 1.3%, MBCs + QQCs mixed administration (MBCs + QQCs) immediately after myocardial infarction Group = 28.0 ± 2.3% and there was no significant difference among the three groups. There was no difference between the CTL group and the MBCs group at 1 week after surgery, but the CTL group showed a downward trend in LVEF thereafter, suggesting the progression of remodeling. On the other hand, the LVEF of the MBCs alone group did not decrease thereafter, and showed a mild improvement trend of 33.0±3.6% at 4 weeks. The MBCs + QQCs group showed an increasing trend of 31.6 ± 2.2 at the first week, and after that, it was always higher than the MBCs alone group, and 39.6 ± 1.6% after 4 weeks, an improvement of about 10% compared to immediately after. rice field. In addition, although there was no significant difference in left ventricular end-diastolic diameter (LVDd) and left ventricular end-systolic diameter (LVDs) at 4 weeks, the values were lower in the MBCs + QQCs group, suggesting an effect of reducing remodeling.

Claims (12)

血管内皮前駆細胞を準備する工程;
筋芽細胞を準備する工程;
血管内皮前駆細胞とシート形成上有効量の筋芽細胞とを、血管内皮前駆細胞と筋芽細胞との細胞数比(血管内皮前駆細胞数:筋芽細胞数)が1:0.5~20となるように播種して共培養し、細胞シートを形成する工程
を含む、細胞シートの製造方法。
providing vascular endothelial progenitor cells;
preparing myoblasts;
Vascular endothelial progenitor cells and an effective amount of myoblasts for sheet formation are mixed at a cell number ratio of vascular endothelial progenitor cells to myoblasts (number of vascular endothelial progenitor cells:number of myoblasts) of 1:0.5 to 20. A method for producing a cell sheet, comprising the steps of seeding and co-cultivating to form a cell sheet.
共培養された血管内皮前駆細胞の少なくとも一部を取り除く工程をさらに含む、請求項1に記載の製造方法。 2. The production method according to claim 1, further comprising removing at least part of the co-cultured vascular endothelial progenitor cells. シート形成上有効量が、1.0×103~1.0×105個/cm2である、請求項2に記載の製造方法。 3. The production method according to claim 2, wherein the sheet-forming effective amount is 1.0×10 3 to 1.0×10 5 pieces/cm 2 . 血管内皮前駆細胞が、末梢血単核球由来である、請求項1~3のいずれか1項に記載の製造方法。 The production method according to any one of claims 1 to 3, wherein the vascular endothelial progenitor cells are derived from peripheral blood mononuclear cells. 末梢血単核球が、細胞シートが移植される対象から得たものである、請求項4に記載の製造方法。 5. The production method according to claim 4, wherein the peripheral blood mononuclear cells are obtained from a subject to which the cell sheet is to be transplanted. 血管内皮前駆細胞を準備する工程が、末梢血単核球を無血清培地を用いて培養する工程である、請求項4または5に記載の製造方法。 The production method according to claim 4 or 5, wherein the step of preparing vascular endothelial progenitor cells is a step of culturing peripheral blood mononuclear cells using a serum-free medium. 筋芽細胞が、細胞シートが移植される対象から得たものである、請求項1~6のいずれか1項に記載の製造方法。 The production method according to any one of claims 1 to 6, wherein the myoblasts are obtained from a subject to which the cell sheet is to be transplanted. 下記の工程を含む製造方法により得られる、血管内皮前駆細胞および筋芽細胞を含む、細胞シート:
血管内皮前駆細胞を準備する工程;
筋芽細胞を準備する工程;
血管内皮前駆細胞とシート形成上有効量の筋芽細胞とを、血管内皮前駆細胞と筋芽細胞との細胞数比(血管内皮前駆細胞数:筋芽細胞数)が1:0.5~20となるように播種して共培養し、細胞シートを形成する工程。
A cell sheet containing vascular endothelial progenitor cells and myoblasts obtained by a production method comprising the following steps:
providing vascular endothelial progenitor cells;
preparing myoblasts;
Vascular endothelial progenitor cells and an effective amount of myoblasts for sheet formation are mixed at a cell number ratio of vascular endothelial progenitor cells to myoblasts (number of vascular endothelial progenitor cells:number of myoblasts) of 1:0.5 to 20. A step of seeding and co-cultivating to form a cell sheet.
虚血性心疾患の処置のための、請求項8に記載の細胞シート。 9. A cell sheet according to claim 8 for treatment of ischemic heart disease. 血管内皮前駆細胞および筋芽細胞の少なくとも一方が、細胞シートが移植される対象から得たものである、請求項8または9に記載の細胞シート。 10. The cell sheet according to claim 8 or 9, wherein at least one of vascular endothelial progenitor cells and myoblasts is obtained from a subject to which the cell sheet is to be transplanted. 再生医療等製品である、請求項8~10のいずれか1項に記載の細胞シート。 The cell sheet according to any one of claims 8 to 10, which is a regenerative medicine product. 請求項8~11のいずれか1項に記載の細胞シートの製造における、血管内皮前駆細胞の使用。 Use of vascular endothelial progenitor cells in the production of the cell sheet according to any one of claims 8-11.
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