JP6978116B1 - セリア安定型ジルコニア−アルミナ複合セラミック材料の表面改質方法 - Google Patents
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Abstract
Description
項1.
セリア安定型ジルコニア−アルミナ複合セラミック材料の表面改質方法であって、
セリア安定型ジルコニア−アルミナ複合セラミック材料の表面をアルカリ処理した後、プラズマ処理を行うことにより、
骨髄間葉細胞の硬組織への分化を向上させ、血管内皮細胞の血管新生を促進させ、骨埋入時の新生骨形成を促進させ、又は細胞接触時のROS発生を低減させることができる、表面改質方法。
項2.
前記セリア安定型ジルコニア−アルミナ複合セラミック材料が、90体積%又はそれ以上の正方晶ジルコニアで構成され、
安定化剤として10〜12モル%のセリアを含有するジルコニア相と、アルミナ相とを含むジルコニア−アルミナ複合セラミック材料であって、
前記複合セラミック材料中のアルミナ相の量は20〜70体積%であり、前記複合セラミック材料は、微細ジルコニア粒子を内部に含有するアルミナ粒子をジルコニア粒子内に取り込んだコンポジット粒子が分散されてなる、項1に記載の表面改質方法。
項3.
前記アルカリ処理が、前記セリア安定型ジルコニア−アルミナ複合セラミック材料を5〜15M水酸化ナトリウム水溶液中に浸漬することにより行われる、項1又は2に記載の表面改質方法。
項4.
前記プラズマ処理が、大気圧低温プラズマ発生装置を用いて行われる、請求項1〜3のいずれか一項に記載の表面改質方法。
項5.
セリア安定型ジルコニア−アルミナ複合セラミック材料の表面改質方法であって、
セリア安定型ジルコニア−アルミナ複合セラミック材料の表面をアルカリ処理した後、プラズマ処理を行うことにより、
骨髄間葉細胞の硬組織への分化を向上させることができる、項1〜4のいずれか一項に記載の表面改質方法。
項6.
セリア安定型ジルコニア−アルミナ複合セラミック材料の表面改質方法であって、
セリア安定型ジルコニア−アルミナ複合セラミック材料の表面をアルカリ処理した後、プラズマ処理を行うことにより、
血管内皮細胞の血管新生を促進させるができる、項1〜4のいずれか一項に記載の表面改質方法。
項7.
セリア安定型ジルコニア−アルミナ複合セラミック材料の表面改質方法であって、
セリア安定型ジルコニア−アルミナ複合セラミック材料の表面をアルカリ処理した後、プラズマ処理を行うことにより、
骨埋入時の新生骨形成を促進させることができる、項1〜4のいずれか一項に記載の表面改質方法。
項8.
セリア安定型ジルコニア−アルミナ複合セラミック材料の表面改質方法であって、
セリア安定型ジルコニア−アルミナ複合セラミック材料の表面をアルカリ処理した後、プラズマ処理を行うことにより、
細胞接触時のROS発生を低減させることができる、項1〜4のいずれか一項に記載の表面改質方法。
項9.
項1〜8のいずれか一項に記載の表面改質方法によって表面が処理されたセリア安定型ジルコニア−アルミナ複合セラミック材料。
項10.
セリア安定型ジルコニア−アルミナ複合セラミック材料の表面をアルカリ処理した後、プラズマ処理を行うことにより、骨髄間葉細胞の硬組織への分化を向上させ、血管内皮細胞の血管新生を促進させ、骨埋入時の新生骨形成を促進させ、又は細胞接触時のROS発生を低減させることができる、表面が改質され、生体適合性を有するセリア安定型ジルコニア−アルミナ複合セラミック材料。
項11.
表面改質されたセリア安定型ジルコニア−アルミナ複合セラミック材料の製造方法であって、
セリア安定型ジルコニア−アルミナ複合セラミック材料の表面をアルカリ処理する工程、及び、プラズマ処理する工程を備える、
骨髄間葉細胞の硬組織への分化を向上させ、血管内皮細胞の血管新生を促進させ、骨埋入時の新生骨形成を促進させ、又は細胞接触時のROS発生を低減させることができるように表面が改質されたセリア安定型ジルコニア−アルミナ複合セラミック材料の製造方法。
項12.
項11に記載の表面改質されたセリア安定型ジルコニア−アルミナ複合セラミック材料の製造方法によって得られた、表面が改質され、生体適合性を有するセリア安定型ジルコニア−アルミナ複合セラミック材料。
本発明は、セリア安定型ジルコニア−アルミナ複合セラミック材料の表面改質方法(以下、「本発明の表面改質方法」ということもある。)に関する。
表面改質の対象であるセリア安定型ジルコニア−アルミナ複合セラミック材料(以下、「複合セラミック材料」ともいう。)は、前述した特許文献1に記載されている複合セラミック材料のことである。詳細には、90体積%又はそれ以上の正方晶ジルコニアで構成されるジルコニア相と、アルミナ相とを含むジルコニア−アルミナ複合セラミック材料であって、前記複合セラミック材料中のアルミナ相の量は20〜70体積%であり、前記複合セラミック材料は、微細ジルコニア粒子を内部に含有するアルミナ粒子をジルコニア粒子内に取り込んだコンポジット粒子が分散されてなることを特徴とするジルコニア−アルミナ複合セラミック材料であり、
好ましくは、90体積%又はそれ以上の正方晶ジルコニアで構成されるジルコニア相と、アルミナ相とを含むジルコニア−アルミナ複合セラミック材料であって、前記複合セラミック材料中のアルミナ相の量は20〜70体積%であり、前記複合セラミック材料は、微細ジルコニア粒子を内部に含有するアルミナ粒子をジルコニア粒子内に取り込んだコンポジット粒子が分散されてなり、前記複合セラミック材料中に分散される全アルミナ粒子の数に対する、前記コンポジット粒子内に存在し、かつ内部に微細ジルコニア粒子を含有するアルミナ粒子の数の比が0.3%又はそれ以上であることを特徴とするジルコニア−アルミナ複合セラミック材料であり、
より好ましくは、90体積%又はそれ以上の正方晶ジルコニアで構成され、安定化剤として10〜12モル%のセリアを含有するジルコニア相と、アルミナ相とを含むジルコニア−アルミナ複合セラミック材料であって、前記複合セラミック材料中のアルミナ相の量は20〜70体積%であり、前記複合セラミック材料は、微細ジルコニア粒子を内部に含有するアルミナ粒子をジルコニア粒子内に取り込んだコンポジット粒子が分散されてなることを特徴とするジルコニア−アルミナ複合セラミック材料のことである。
前記セリア安定型ジルコニア−アルミナ複合セラミック材料は、特許文献1に記載の方法に従って製造することができる。詳細な製造方法は以下のとおりである。
セリア安定型ジルコニア−アルミナ複合セラミック材料の製造方法は、ジルコニア相を提供するための第1粉末と、アルミナ相を提供するために第2粉末とを前記複合セラミック材料中のアルミナ相の量が20〜70体積%になるように混合する工程と、得られた混合粉末を所望の形状に成形して圧粉体を作製する工程と、前記圧粉体を酸素含有雰囲気下、得られた複合セラミック材料中に、微細ジルコニア粒子を内部に有するアルミナ粒子がジルコニア粒子内に取り込まれた構造のコンポジット粒子が分散されるように焼成する工程とを含む。
所定量の正方晶ジルコニア粉末とγ−アルミナ粉末とをエタノール溶媒中で24時間ボールミルを用いて混合し、乾燥して混合粉末を得る。次いで、この混合粉末を大気中1000℃で2時間仮焼する。このようにして得られた仮焼粉末をエタノール溶媒中で24時間ボールミルを用いて粉砕し、乾燥することによって複合粉末を得る。残りの正方晶ジルコニア粉末及び複合粉末を、複合セラミック材料中のアルミナ量が10〜80体積%の範囲となるように混合する。得られた混合物をエタノール溶媒中で24時間ボールミルを用いて混合した後、乾燥して焼結用粉末を得る。
得られた焼結用粉末を15MPaの圧力で一軸加圧成形して直径約120mmの円盤状の成形体を得る。245MPaの圧力で成形体をCIP(冷間静水圧加圧)処理した後、試験片の形状に切削加工し、大気中、焼成温度1450℃で3時間の条件下、成形体を常圧焼結により焼成することにより、焼結体が得られる。また、別法として、焼結体は、混合粉末を仮焼結させてセラミックス仮焼結体を得る工程、前記仮焼結体を切削加工して成形体を得る工程、及び前記成形体を焼結させてセラミックス焼結体を得る工程を経て製造することもできる。
本発明の表面改質方法は、前記セリア安定型ジルコニア−アルミナ複合セラミック材料の表面をアルカリ処理することを含んでいる。
アルカリ処理は、前記セリア安定型ジルコニア−アルミナ複合セラミック材料をアルカリ水溶液に浸漬することにより行うことができる。
アルカリ水溶液は、ナトリウムイオン(Na+)、カリウムイオン(K+)等のアルカリ金属イオン;カルシウムイオン(Ca2+)等のアルカリ土類金属イオン等の金属イオンを1種以上含有する水溶液である。アルカリ水溶液として、例えば、水酸化ナトリウム(NaOH)水溶液、水酸化カリウム(KOH)水溶液等を用いることができる。
アルカリ水溶液における金属イオンの濃度は、0.1M(モル濃度)以上20M以下が好ましく、5M以上15M以下がより好ましく、8M以上12M以下がさらに好ましい。
基材のアルカリ溶液への浸漬時間は、特に限定はなく、例えば、1時間以上120時間であり、12時間以上96時間以下が好ましく、18時間以上32時間以下がより好ましい。
アルカリ処理は、前記複合セラミック材料を、通常0.1〜20M、好ましくは5〜15M、より好ましくは8〜12M、特に10M水酸化ナトリウム水溶液中に、30℃で24時間浸漬することにより行うことが好ましい。
アルカリ処理は、1回又は2回以上に分けて行うことができる。
アルカリ処理の後、水で洗浄し、自然乾燥させてもよい。
本発明の表面改質方法は、アルカリ処理したセリア安定型ジルコニア−アルミナ複合セラミック材料の表面をプラズマ処理することを含んでいる。
プラズマ処理に用いられるプラズマ発生源としては、特に限定されるものではなく、例えば、水素、ヘリウム、希ガス、酸素、窒素、ハロゲン、アンモニア、二酸化炭素、水蒸気等が挙げられる。これらのガスは、1種単独で使用することができ、又はこれらの任意の2種以上のガスを混合した混合ガスを使用することもできる。プラズマ処理は、1回又は複数回行うことができる。
ALP活性量としては、通常1.3μmol/mL以上、好ましくは1.4〜3.0μmol/mL、より好ましくは2.0〜2.5μmol/mLである。
例えば、7日後のALP活性量としては、通常1.3μmol/mL以上、好ましくは1.4〜3.0μmol/mL、より好ましくは2.0〜2.5μmol/mLである。
また、14日後のALP活性量としては、通常2.0μmol/mL以上、好ましくは2.1〜3.0μmol/mL、より好ましくは2.0〜2.5μmol/mLである。
本発明の表面改質されたセリア安定型ジルコニア−アルミナ複合セラミック材料は、ALP活性量増大材、又はALP活性促進材と言い換えることができる。
カルシウム析出量としては、通常11mg/dL以上、好ましくは11〜30mg/dL、より好ましくは16〜25mg/dLである。
例えば、21日後のカルシウム析出量としては、通常11mg/dL以上、好ましくは11〜30mg/dL、より好ましくは16〜25mg/dLである。
また、28日後のカルシウム析出量としては、通常11mg/dL以上、好ましくは11〜30mg/dL、より好ましくは16〜25mg/dLである。
本発明の表面改質されたセリア安定型ジルコニア−アルミナ複合セラミック材料は、カルシウム析出量増大材、又はカルシウム析出促進材と言い換えることができる。
Runx2 mRNAの発現量(3日後)としては、通常1以上、好ましくは1.2〜2.0、より好ましくは1.3〜1.6である。
ALP mRNAの発現量(7日後)としては、通常1以上、好ましくは1.2〜2.0、より好ましくは1.3〜1.6である。
OPN mRNAの発現量(14日後)としては、通常1以上、好ましくは1.2〜2.0、より好ましくは1.3〜1.6である。
BMP mRNAの発現量(21日後)としては、通常1以上、好ましくは1.2〜2.0、より好ましくは1.3〜1.6である。
本発明の表面改質されたセリア安定型ジルコニア−アルミナ複合セラミック材料は、
Runx2 mRNAの発現量増大材若しくはRunx2 mRNAの発現促進材、
ALP mRNAの発現量増大材若しくはALP mRNAの発現促進材、
OPN mRNAの発現量増大材若しくはOPN mRNAの発現促進材、又は
BMP mRNAの発現量増大材若しくはBMP mRNAの発現促進材と言い換えることができる。
ICAM1の発現量(3日後)としては、通常1以上、好ましくは1.1〜2.0、より好ましくは1.2〜1.6である。
von Willebrand facterの発現量(5日後)としては、通常1以上、好ましくは1.1〜2.0、より好ましくは1.2〜1.6である。
Thorombomodulinの発現量(7日後)としては、通常1以上、好ましくは1.1〜2.0、より好ましくは1.2〜1.6である。
本発明の表面改質されたセリア安定型ジルコニア−アルミナ複合セラミック材料は、
ICAM1の発現量増大材若しくはICAM1の発現促進材、
von Willebrand facterの発現量増大材若しくはvon Willebrand facterの発現促進材、又は
Thorombomodulinの発現量増大材若しくはThorombomodulinの発現促進材と言い換えることができる。
ROS発生量(レベル)としては、通常5000(a.u.)以下、好ましくは4000(a.u.)以下、より好ましくは3500(a.u.)以下である。なお、ROS発生量は、相対的な物理単位として、任意単位(a.u.)で表すことができる。
本発明の表面改質方法されたセリア安定型ジルコニア−アルミナ複合セラミック材料は、ROS発生量減少材又はROS発生低減材と言い換えることができる。
新生骨形成は、新生骨の骨量(BV/TV)、骨梁幅(Tb. Th)、骨梁数(Tb. N)、及び骨梁と骨梁との間隔(Tb. Sp)を測定することで評価することができる。新生骨の骨量(BV/TV)、骨梁幅(Tb. Th)、及び骨梁数(Tb. N)は、各数値が大きい方が、新生骨形成が促進されたということができる。一方、骨梁と骨梁との間隔(Tb. Sp)は、数値が小さい方が、新生骨形成が促進されたということができる。
新生骨の骨量(BV/TV)(埋入8週間後)としては、通常30%以上、好ましくは40〜70%、より好ましくは50〜60%である。
骨梁幅(Tb. Th)(埋入8週間後)としては、通常100μm以上、好ましくは120〜180μm、より好ましくは140〜160μmである。
骨梁数(Tb. N)(埋入8週間後)としては、通常3/mm以上、好ましくは3.5〜7.0/mm、より好ましくは4.0〜5.0/mmである。
骨梁と骨梁との間隔(Tb. Sp)(埋入8週間後)としては、通常300μm以下、好ましくは20〜250μm、より好ましくは50〜150μmである。
本発明の表面改質されたセリア安定型ジルコニア−アルミナ複合セラミック材料は、
新生骨形成増大材若しくは新生骨形成促進材、
新生骨の骨量増大材若しくは新生骨の骨量促進材、
骨梁幅増大材若しくは骨梁幅促進材、又は
骨梁と骨梁との間隔減少材若しくは骨梁と骨梁との間隔低減材と言い換えることができる。
病理組織学的解析は、新生骨の形成量(BA)、及び、試料(ナノジルコニアスクリュー)が新生骨と接触している量(BIC)を測定することで評価することができる。
新生骨の形成量(BA)(8週間後)としては、通常20%以上、好ましくは30〜60%、より好ましくは35〜50%である。
試料(ナノジルコニアスクリュー)が新生骨と接触している量(BIC)(8週間後)としては、通常30%以上、好ましくは40〜80%、より好ましくは50〜70%である。
本発明の表面改質されたセリア安定型ジルコニア−アルミナ複合セラミック材料は、
新生骨の形成量増大材若しくは新生骨の形成促進材、又は
試料(ナノジルコニアスクリュー)が新生骨と接触している量(BIC)増大材若しくは試料(ナノジルコニアスクリュー)が新生骨と接触している量(BIC)促進材と言い換えることができる。
LBA(4週間後)としては、通常20%以上、好ましくは22〜40%、より好ましくは25〜30%である。
LBA(8週間後)としては、通常20%以上、好ましくは30〜50%、より好ましくは35〜45%である。
本発明の表面改質されたセリア安定型ジルコニア−アルミナ複合セラミック材料は、LBA増大材又はLBA促進材と言い換えることができる。
本発明の表面改質されたセリア安定型ジルコニア−アルミナ複合セラミック材料の製造方法(以下、「本発明の製造方法」ということもある。)は、上述のセリア安定型ジルコニア−アルミナ複合セラミック材料の表面をアルカリ処理する工程、及び、プラズマ処理する工程を備えている。
そして、本発明の製造方法によって得られた表面改質されたセリア安定型ジルコニア−アルミナ複合セラミック材料は、骨髄間葉細胞の硬組織への分化を向上させ、血管内皮細胞の血管新生を促進させ、骨埋入時の新生骨形成を促進させ、又は細胞接触時のROS発生を低減させることができるように表面が改質された材料である。
また、本発明の表面改質されたセリア安定型ジルコニア−アルミナ複合セラミック材料は、特に生体適合性を必要としない、例えば、光コネクタ用フェルール、軸受け、ダイス等の産業機械部品;ハサミ、鋸、その他種々の刃物類等の事務又は理化学用品;メカニカルシール、粉砕メディア等の化学部品;スポーツ用品に用いることもできる。
市販のYAMAKIN株式会社製の円板状ナノジルコニア仮焼結体(直径約98mm)を切削加工し、次いで、特許文献1に記載の本焼結方法に準拠して、ナノジルコニア板(直径約10mm、厚み約2mm)を得た。この得られたナノジルコニア板を、鏡面研磨し、10M 水酸化ナトリウム(NaOH)水溶液に浸漬した状態で、30℃で24時間反応させた(アルカリ処理)。次いで、ナノジルコニア板を取り出し、イオン交換水で導電率が5μS/cm3以下になるまで洗浄し、自然乾燥させた。その後、アルカリ処理したナノジルコニア板を、大気圧下でプラズマ処理を行った。プラズマ処理には、ピアゾフラッシュ(登録商標)PZ2(アルス社製)を用い、前記ナノジルコニア板の表面から10mmの間隔をあけて30秒間プラズマを照射した。得られたナノジルコニア板を実施例1(試料1)とした。
市販のYAMAKIN株式会社製の円板状ナノジルコニア仮焼結体(直径約98mm)を切削加工し、次いで、特許文献1に記載の本焼結方法に準拠して、ナノジルコニアスクリュー(直径約1.2mm、長さ約17.0mm)を得た。得られたナノジルコニアスクリューを用いて、実施例1と同様にアルカリ処理及びプラズマ処理したものを実施例2(試料2)とした。
上記実施例1に記載した鏡面処理した後のナノジルコニア板を、比較例1(比較試料1)とした。
上記比較試料1に、実施例1と同様のアルカリ処理だけを行い、プラズマ処理は行わなかったものを比較例2(比較試料2)とした。
上記比較試料1に、アルカリ処理を行った後、UV処理を行ったものを比較例3(比較試料3)とした。
ここで、UV処理は、UV照射装置としてHL-2000 HybriLinker(フナコシ株式会社製)を用いて、波長254nm、30秒間の条件で行った。
上記実施例2で使用したナノジルコニアスクリューに、実施例1と同様のアルカリ処理だけを行い、プラズマ処理は行わなかったものを比較例4(比較試料4)とした。
細胞培養及び試験材料への播種
生後8週齢のSD雄性ラットの両側大腿骨より骨髄間葉細胞を採取し、初代培養を確立した。培地にはE−MEM(和光純薬工業株式会社製)、10%牛胎児血清(FBS;Invitrogen,Life Technologies, USA)、ペニシリン(500U/ml, Cambrex Bio Science Walkersville, USA)、ストレプトマイシン(500μg/ml, Cambrex Bio Science Walkersville)、及びファンギゾン(1.25μg/ml, Cambrex Bio Science Walkersville)を含む培養液を使用した。培地の交換は3日ごとに行い、以下の実験は37℃、5%CO2の気相の培養条件下で行った。各試料を培養プレートに配置し、継代3代目の細胞を1wellあたり4万個播種した後、培地を分化誘導培地(10%FBS及び骨分化誘導剤(10 mMβ-グリセロリン酸ナトリウム(和光純薬工業株式会社製)、80 μg/ml アスコルビン酸(ナカライテスク株式会社製),10-8 Mデキサメタゾン含有)に交換し、細胞刺激を開始した。なお、培地交換は2日毎に行った。一定期間が経過した後、以下の初期骨形成評価試験を行った。
ALP活性は、初期の硬組織分化を示すものである。
培養開始7日後及び14日後における各々の培養細胞をリン酸緩衝生理食塩水で洗浄した後、0.2%トライトン(登録商標)(Sigma,St. Louis, MO, USA)にて抽出及び溶解した。ALP活性は、Alkali Phosphatase Luminometric ELIsa Kit(登録商標)(Sigma,St. Louis, MO, USA)を用い、メーカーの指示書に従って測定した。DNAの定量を、Pico green Double standard DNA Assay Kit(DSファーマバイオメディカル株式会社製)を用い、メーカーの指示書に従って行った。DNAを定量した後、DNAの定量あたりのALP活性を算出した。その結果を表1及び図2に示す。
カルシウム析出量は、培養後期の石灰化に関与している。
培養21日後及び28日後における細胞外マトリックスに析出したカルシウム量を、10%ギ酸を用いて抽出した。カルシウム析出量は、Calcium E-test Kit(和光純薬工業株式会社製)を用いて定量した。その結果を表2及び図3に示す。
3日後、7日後、14日後、及び21日後の培養細胞より逆転写した後、mRNAを抽出し、StepOne PlusTM Real-Time PCR System (アプライドバイオシステム社製)を用いて硬組織分化誘導能に関する遺伝子マーカー(Runx2 mRNA、ALP mRNA、OPN mRNA、及びBMP mRNA)を定量した。ここで、Runx2 mRNA(Runt-related transcription factor 2 mRNA)は骨芽細胞への分化を決定づける因子であり、ALP mRNA(Alkaline phosphatase mRNA)は初期の分化に関与する因子であり、OPN mRNA(Osteopontin mRNA)は石灰化調節因子であり、BMP mRNA(Bone morphogenetic protein mRNA)は石灰化に関与する因子である。それぞれ、以下の式に従って、算出した。なお、解析方法は、デルタデルタ(ΔΔ)CT法とする。また、下記のGAPDH mRNAは、Glyceraldehyde-3-Phosphate Dehydrogenase mRNA(グリセルアルデヒド-3-リン酸デヒドロゲナーゼ mRNA)を意味する。
Runx2 mRNA(3日後) = Runx2 mRNA 発現量 / GAPDH mRNA 発現量
ALP mRNA(7日後) = ALP mRNA 発現量 / GAPDH mRNA 発現量
OPN mRNA(14日後) = OPN mRNA 発現量 / GAPDH mRNA 発現量
BMP mRNA(21日後) = BMP mRNA 発現量 / GAPDH mRNA 発現量
その結果を表3及び図4に示す。
表1〜3及び図2〜4より、以下のことがいえる。
各試料上でラット骨髄間葉細胞を培養したところ、実施例1のナノジルコニア板(アルカリ処理後にプラズマ処理を実施)は、比較例2のナノジルコニア板(アルカリ処理のみ)と比較して、初期の硬組織分化を示すALP活性、及び培養後期の石灰化に関与するカルシウム析出量、硬組織分化誘導能に関する遺伝子マーカー(Runx2 mRNA、ALP mRNA、OPN mRNA、及びBMP mRNA)の発現が有意に高い値を示した。
これらの結果から、実施例1のように、セリア安定型ジルコニア−アルミナ複合セラミック材料の表面にアルカリ処理及びプラズマ処理を行うことにより、硬組織分化誘導能が向上されることがわかった。
血管内皮細胞の血管新生
前記実験例1の遺伝子解析と同様に、3日後及び5日後の培養細胞より逆転写した後、mRNAを抽出し、StepOne PlusTM Real-Time PCR System (アプライドバイオシステム社製)を用いて、血管新生に関与するICAM1、von Willebrand facter、及びThorombomodulinの各遺伝子の発現量を測定した。ここで、ICAM1(Intercellular adhesion molecule-1)は、初期付着関連遺伝子であり、von Willebrand facter(VWF)及びThorombomodulin (TM)は、いずれも接着後の創傷治癒関連遺伝子である。
その結果を表4及び図5に示す。
表4及び図5において、実施例1のナノジルコニア板(アルカリ処理後にプラズマ処理を実施)は、比較例2のナノジルコニア板(アルカリ処理のみ)と比較して、ICAM1(初期付着関連遺伝子)、von Willebrand facter及びThorombomodulin(いずれも接着後の創傷治癒関連遺伝子)の発現量が有意に高い値を示した。
この結果から、実施例1のように、セリア安定型ジルコニア−アルミナ複合セラミック材料の表面にアルカリ処理及びプラズマ処理を行うことにより、インプラント埋入時において血管新生が促進されることがわかった。
細胞接触時のROS発生
実施例1、比較例1及び比較例3のナノジルコニア板上にラット骨髄細胞を播種し、培養3日後、蛍光性酸化ストレス検出薬CellROXTM Deep Red Reagent, for oxidative stress detection(サーモフィッシャーサイエンティフィック社製)を使用し、細胞内のROS(Reactive Oxygen Species;活性酸素)レベルを測定した。
その結果を表5及び図6に示す。
表5及び図6より、実施例1のROS発生の値は、比較例1及び3のROS発生の値よりも小さかった。これより、実施例1のナノジルコニア板は、細胞接触時のROSの発生が少ないことが確認された。
材料表面に各種細胞が接着し、増殖を行うためには、材料表面の酸化ストレスが関与しているとされる。よって、実施例1のように、セリア安定型ジルコニア−アルミナ複合セラミック材料の表面にアルカリ処理及びプラズマ処理を行うことで、セリア安定型ジルコニア−アルミナ複合セラミック材料の表面のROSを減少させ、細胞が生育するのに良好な環境を作成することができることがわかった。
In vivo評価
実施例2及び比較例4のナノジルコニアスクリューを使用して、以下のin vivo評価を行った。生後8週齢のSD系雄性ラット(清水実験材料株式会社)の大腿骨にダイヤモンドポイントで穿孔させた後、実施例2又は比較例4のナノジルコニアスクリューを即時に埋入した。この際、スクリューの先端部を含む数カ所で穿孔部に接触させ、初期固定が得られるように埋入した。
実施例2又は比較例4のナノジルコニアスクリューを生後8週齢のSD系雄性ラットの大腿骨に埋入し、埋入8週間後に麻酔薬を腹腔内に過剰投与することにより安楽死させ、その後大腿骨を摘出した。摘出した大腿骨をマイクロフォーカスX線CT SMX−130CT(株式会社島津製作所製)を用いて撮影した。撮影部位はインプラント埋入周囲500μm、高さ2mmとした。得られた画像を図7に示す。
新生骨の骨量(BV/TV)、骨梁幅(Tb. Th)、骨梁数(Tb. N)、及び骨梁と骨梁との間隔(Tb. Sp)を、骨梁構造計測ソフトとしてTRI/3D-BON(Ratoc System Engineering社製)を用いて解析した。その結果を表6及び図8に示す。
なお、新生骨の骨量、骨梁幅、及び骨梁数については、数値が大きいほど骨の形成が多いことを示しており、骨梁と骨梁との間隔については、数値が小さいほど骨が密になっているため、骨の形成が多いことを示している。
10%ホルマリンにより固定した後、大腿骨を摘出した。採取した大腿骨をスクリュー挿入部に沿って矢状断面の非脱灰切片を作製した後にビラヌエバ染色を行い、オールインワン蛍光顕微鏡(BZ-9000, Keyence社製)を用いて組織学的観察を行った。撮影部位はインプラント埋入周囲500μm、高さ2mmとした。得られた画像を図9に示す。
新生骨の形成量(BA)、及び、試料(ナノジルコニアスクリュー)が新生骨と接触している量(BIC)をソフトウェア(画像処理ソフトImageJ/開発元:アメリカ国立衛生研究所(NIH))を用いて解析を行った。その結果を表7及び図10に示す。
標識した新生骨量(LBA)をソフトウェア(画像処理ソフトImageJ/開発元:アメリカ国立衛生研究所(NIH))を用いて解析した。その結果を表8及び図12に示す。
表6、図7及び図8に示すCTを利用した海綿骨形態計測の結果、実施例2のナノジルコニアスクリュー(アルカリ処理後にプラズマ処理を実施)は、比較例2のナノジルコニアスクリュー(アルカリ処理のみ)と比較して、周囲の新生骨形成が多く認められた。
また、表7、図9及び図10に示す病理組織学的解析においても、実施例2のナノジルコニアスクリューは比較例4のナノジルコニアスクリューよりも新生骨の形成量(BA)及び接触量(BIC)のいずれも多いことが明らかとなった。
さらに、表8、図11及び図12に示すビラネバ染色を行った病理組織像においては、実施例2のナノジルコニアスクリューにおいて埋入初期の1週間後では良好な成果を示さなかったものの、埋入4週目以降では新生骨の形成が多く認められた。また、埋入4週目及び8週目のいずれにおいても、実施例2のナノジルコニアスクリューは比較例4のナノジルコニアスクリューより高い新生骨形成量を示した。
Claims (9)
- 人工関節又は人工歯根に使用するためのセリア安定型ジルコニア−アルミナ複合セラミック材料の表面改質方法であって、
前記表面改質方法が、人工関節又は人工歯根に使用するためのセリア安定型ジルコニア−アルミナ複合セラミック材料の表面をアルカリ処理した後、プラズマ処理を行う工程を含む、表面改質方法。 - 前記人工関節又は人工歯根に使用するためのセリア安定型ジルコニア−アルミナ複合セラミック材料が、90体積%又はそれ以上の正方晶ジルコニアで構成され、
安定化剤として10〜12モル%のセリアを含有するジルコニア相と、アルミナ相とを含むジルコニア−アルミナ複合セラミック材料であって、
前記複合セラミック材料中のアルミナ相の量は20〜70体積%であり、前記複合セラミック材料は、微細ジルコニア粒子を内部に含有するアルミナ粒子をジルコニア粒子内に取り込んだコンポジット粒子が分散されてなる、請求項1に記載の表面改質方法。 - 前記アルカリ処理が、前記人工関節又は人工歯根に使用するためのセリア安定型ジルコニア−アルミナ複合セラミック材料を5〜15M水酸化ナトリウム水溶液中に浸漬することにより行われる、請求項1又は2に記載の表面改質方法。
- 前記プラズマ処理が、大気圧低温プラズマ発生装置を用いて行われる、請求項1〜3のいずれか一項に記載の表面改質方法。
- 人工関節又は人工歯根に使用するためのセリア安定型ジルコニア−アルミナ複合セラミック材料の表面改質方法であって、
前記表面改質方法が、セリア安定型ジルコニア−アルミナ複合セラミック材料の表面をアルカリ処理した後、プラズマ処理を行う工程を含む、請求項1〜4のいずれか一項に記載の表面改質方法。 - 請求項1〜5のいずれか一項に記載の表面改質方法によって表面が処理された人工関節又は人工歯根に使用するためのセリア安定型ジルコニア−アルミナ複合セラミック材料。
- 人工関節又は人工歯根に使用するためのセリア安定型ジルコニア−アルミナ複合セラミック材料の表面をアルカリ処理した後、プラズマ処理を行う工程により、表面が改質され、生体適合性を有する、人工関節又は人工歯根に使用するためのセリア安定型ジルコニア−アルミナ複合セラミック材料。
- 人工関節又は人工歯根に使用するための表面改質されたセリア安定型ジルコニア−アルミナ複合セラミック材料の製造方法であって、
人工関節又は人工歯根に使用するためのセリア安定型ジルコニア−アルミナ複合セラミック材料の表面をアルカリ処理する工程、及び、プラズマ処理する工程を備える、
表面が改質された人工関節又は人工歯根に使用するためのセリア安定型ジルコニア−アルミナ複合セラミック材料の製造方法。 - 請求項8に記載の人工関節又は人工歯根に使用するための表面改質されたセリア安定型ジルコニア−アルミナ複合セラミック材料の製造方法によって得られた、表面が改質され、生体適合性を有する、人工関節又は人工歯根に使用するためのセリア安定型ジルコニア−アルミナ複合セラミック材料。
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