JP6733872B2 - How to collect hepatocytes - Google Patents
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Description
[0003]本発明は、一般的に、複数のドナーからの肝細胞を寄せ集め、凍結保存することに関する。 [0003] The present invention relates generally to the collection and cryopreservation of hepatocytes from multiple donors.
[0004]肝細胞は、肝臓の中の細胞のおよそ80%を構成し、多くの薬理学的化合物、毒素又は生体異物の活性化及び最終的な解毒の両方にとって重要である。新薬の需要及び入手可能性の需要の増加、並びに市販承認の前のより厳格な規制や安全性に関する試験のために、単離された初代肝細胞は、実験室での薬物代謝、有効性及び毒性を研究する上で貴重な資源となっている。 [0004] Hepatocytes make up approximately 80% of the cells in the liver and are important for both activation and eventual detoxification of many pharmacological compounds, toxins or xenobiotics. Due to increasing demand for new drugs and availability, as well as for more stringent regulatory and safety studies prior to commercial approval, isolated primary hepatocytes can be used in the laboratory for drug metabolism, efficacy and efficacy. It is a valuable resource for studying toxicity.
[0005]近年、初代ドナー肝細胞の単離及び凍結保存において顕著な進歩がなされ、急速に解凍され、直ちに実験に使用することが可能であるようになっている。しかし、性別、年齢、民族性、健康状態、遺伝的背景、及び他の要因の変動が試験結果を歪めるために、1つのヒト肝臓(個々のドナー)から単離された肝細胞における肝臓代謝を研究しても、集団全体における肝機能を正確には反映していない。肝臓代謝のより正確な測定は、個々のドナー細胞の混合物又は「プール」を用いて、肝細胞の不均一集団を作製することである。 [0005] In recent years, significant advances have been made in the isolation and cryopreservation of primary donor hepatocytes, allowing them to be thawed rapidly and used immediately in experiments. However, variations in sex, age, ethnicity, health status, genetic background, and other factors distort the test results, so that liver metabolism in hepatocytes isolated from one human liver (individual donor) may be altered. Studies have not accurately reflected liver function in the entire population. A more accurate measure of liver metabolism is to use a mixture or "pool" of individual donor cells to create a heterogeneous population of hepatocytes.
[0006]肝細胞を寄せ集めることについてはいくつかの方法が提案されている。これらのプロトコールは、生存細胞の総数を減少させる物理的及び化学的ストレスの両方に細胞を晒す長い手順をしばしば用いる。例えば、米国特許第7,604,929号の方法は、第2又は最終的な凍結保存段階の前に密度勾配遠心分離工程を利用する。これは細胞に化学的及び機械的ストレスを与え、細胞を損失する結果になるか(図1A〜B)又は凍結保存中に死ぬように細胞を弱める。国際公開第2014/045202号A2に開示されている別の方法は、寄せ集めるプロセスを通して肝細胞を凍結保存溶液中に維持する。凍結保存溶液は、細胞死を引き起こすことを知られるジメチルスルホキシド(DMSO)などの毒性試薬を含む。 [0006] Several methods have been proposed for collecting hepatocytes. These protocols often use long procedures that expose the cells to both physical and chemical stresses that reduce the total number of viable cells. For example, the method of US Pat. No. 7,604,929 utilizes a density gradient centrifugation step prior to the second or final cryopreservation step. This places chemical and mechanical stress on the cells, resulting in cell loss (FIGS. 1A-B) or weakening cells to die during cryopreservation. Another method, disclosed in WO 2014/045202 A2, maintains hepatocytes in a cryopreservation solution through a process of pooling. Cryopreservation solutions contain toxic reagents known to cause cell death, such as dimethylsulfoxide (DMSO).
[0007]提案されたシステム及び方法は、プロセスを通じて細胞の損失を減少させる技術を採用し、したがって、生存細胞の総数を増加させることを目的とする。 [0007] The proposed systems and methods employ techniques that reduce cell loss throughout the process, and thus aim to increase the total number of viable cells.
[0008]本出願は、肝細胞を寄せ集めるプロセスから生じる生存細胞の数を増加させることを目的とする。複数の供給源からの肝細胞を凍結保存するための1つの方法は:
A)複数の供給源からの肝細胞を解凍するステップ;
B)複数の供給源からの肝細胞を保存溶液に寄せ集めるステップ;
C)寄せ集めた肝細胞を遠心分離して、生存肝細胞及び非生存肝細胞の両方をペレット化するステップ;
D)保存溶液を除去するステップ;
E)ペレット化された生存及び非生存肝細胞を凍結保存剤と混合するステップ;
F)寄せ集めた肝細胞をバイアルに分配するステップ;及び
G)バイアル中の肝細胞を凍結保存するステップ
を含む。
[0008] The present application aims to increase the number of viable cells resulting from the process of recruiting hepatocytes. One method for cryopreserving hepatocytes from multiple sources is:
A) Thawing hepatocytes from multiple sources;
B) collecting hepatocytes from multiple sources into a preservation solution;
C) Centrifuging the pooled hepatocytes to pellet both live and non-live hepatocytes;
D) removing the stock solution;
E) mixing pelleted viable and non-viable hepatocytes with a cryopreservative;
F) dispensing the pooled hepatocytes into a vial; and G) cryopreserving the hepatocytes in the vial.
[0009]上記の方法は、ヒト肝細胞、ブタ肝細胞、サル肝細胞、イヌ肝細胞、ネコ肝細胞、ウシ肝細胞、ウマ肝細胞、ヒツジ肝細胞及びげっ歯類肝細胞を含む群から選択されるものを含む様々な種類の肝細胞を利用することができる。 [0009] The above method is selected from the group including human hepatocytes, porcine hepatocytes, monkey hepatocytes, dog hepatocytes, cat hepatocytes, bovine hepatocytes, horse hepatocytes, sheep hepatocytes and rodent hepatocytes. Various types of hepatocytes can be utilized, including those described.
[0010]性別、人種、年齢、代謝状態又は健康状態に基づいて、個々の供給源を寄せ集めることができる。場合によっては、その時に存在するサンプルセットに基づいてプールを無作為化させることができる。 [0010] Individual sources can be aggregated based on gender, race, age, metabolic status or health status. In some cases, the pool can be randomized based on the sample set that is present at the time.
[0011]使用することができる保存溶液の種類としては、ウィスコンシン大学溶液、ハイポサーモゾル−ベース(HypoThermosol−Base)、又はハイポサーモゾル−FRS(HypoThermosol−FRS)に加えて、凍結保存剤の毒性を低下させる及び/又は肝細胞に必須な栄養素を提供する他の同様な保存溶液が挙げられる。例えば、保存溶液は、ウシ胎児血清を含むことができる。 [0011] The types of preservative solutions that can be used include University of Wisconsin solution, HypoThermosol-Base, or HypoThermosol-FRS (HypoThermosol-FRS), as well as the toxicity of cryopreservatives. Other similar preservative solutions that lower the blood pressure and/or provide hepatocytes with essential nutrients. For example, the preservation solution can include fetal calf serum.
[0012]遠心分離のステップは、細胞にかかる物理的及び化学的ストレスを減少させるために、密度勾配を含まない。この遠心分離工程は、生存肝細胞及び非生存肝細胞の両方をペレット化する。 [0012] The centrifugation step does not include a density gradient to reduce physical and chemical stress on the cells. This centrifugation step pellets both viable and non-viable hepatocytes.
[0013]ペレットは、凍結する前に凍結保存剤と組み合わせることができる。凍結保存剤とペレット化された細胞を組み合わせる場合には、上下にピペッティングするステップ、ボルテックスするステップ、バイアルを前後に振るステップ、バイアルをタッピングするステップ又は同様のプロセスが、凍結保存溶液中の細胞を再懸濁するために使用することができる。 [0013] The pellet may be combined with a cryopreservative prior to freezing. When combining cryopreservative and pelleted cells, pipetting up and down, vortexing, shaking the vial back and forth, tapping the vial or similar process can be used to Can be used to resuspend.
[0014]アリコート又は他の方法を介してペレット化された肝細胞をバイアルに分配する場合には、寄せ集めた細胞は、細胞800〜1500万個/mlの範囲の密度で分配することができる。一実施形態では、細胞1333万個/mlが使用される。 [0014] When dispensing pelleted hepatocytes via aliquots or other methods into vials, the aggregated cells can be distributed at densities in the range of 8-15 million cells/ml. .. In one embodiment, 133,300 cells/ml are used.
[0015]寄せ集めた肝細胞を最終的に解凍した後、ユーザーは、実験を実行する直前に生存細胞と非生存細胞とを分離するために密度勾配分画を行ってもよい。ある場合には、密度勾配遠心分離のステップは、50〜200RCFで実行される。密度勾配分画は、ポリビニルピロリドンでコーティングしたコロイド状シリカ粒子(パーコール;Percoll)による密度勾配遠心分離を含んでいてもよい。 [0015] After the final thaw of the pooled hepatocytes, the user may perform a density gradient fractionation to separate viable and non-viable cells just prior to performing the experiment. In some cases, the density gradient centrifugation step is performed at 50-200 RCF. Density gradient fractionation may include density gradient centrifugation over polyvinylpyrrolidone-coated colloidal silica particles (Percoll).
[0016]これらのプロセスで使用される肝細胞は、プレーティングされているか、又は懸濁状態で使用され得る。 [0016] The hepatocytes used in these processes may be plated or used in suspension.
[0020]事前に凍結保存された個々のドナーから得られた肝細胞からの凍結保存された細胞(例えば、肝細胞)のプールを調製するための改良されたシステム及び方法の記載が本明細書に記載される。このシステム及び方法は、寄せ集めるプロセス中の肝細胞への物理的及び化学的ストレスを減少させる一方で、エンドユーザーによって行われる解凍後の遠心分離のステップ中の寄せ集めた生存細胞の回収物を増加させる。一般に、このシステム及び方法は、個々のドナー肝細胞のバイアルを解凍し、それらを保存溶液に寄せ集めることを含む。その後、寄せ集めた細胞を短時間、遠心分離して、生存細胞と非生存細胞の両方をペレット化し、次いで複数のバイアル中に高密度で凍結保存する。その後、エンドユーザーは、実験的使用の直前に生存細胞を非生存細胞から分離するために密度勾配遠心分離を行ってもよい。提案された方法の利点のいくつかは、寄せ集めた肝細胞を実験する前に生存細胞の数を減少させる機械的、化学的及び他の環境的な因子への曝露を減少させることである。 [0020] Described herein are improved systems and methods for preparing pools of cryopreserved cells (eg, hepatocytes) from hepatocytes obtained from previously cryopreserved individual donors. It is described in. This system and method reduces the physical and chemical stress on hepatocytes during the homing process, while reducing the collection of homing viable cells during the post-thaw centrifugation step performed by the end user. increase. Generally, the system and method involves thawing vials of individual donor hepatocytes and pooling them into a preservation solution. The pooled cells are then briefly centrifuged to pellet both viable and non-viable cells and then cryopreserved at high density in multiple vials. The end user may then perform density gradient centrifugation to separate viable cells from non-viable cells just prior to experimental use. Some of the advantages of the proposed method are that it reduces exposure to mechanical, chemical and other environmental factors that reduce the number of viable cells prior to experimenting with pooled hepatocytes.
[0021]一実施形態において、事前に単離され凍結保存された個々のドナーからの肝細胞は、液体窒素気相中に最低−150℃で保存される。寄せ集められる個々のドナーバイアルは、無作為に、又は特定の代謝活性(例えば、ECOD、シトクロムP450、一般的なフェーズI又はフェーズII)、年齢、人種、性別、民族性、又は他の表現型決定要因に基づいて選択することができる。解凍されたバイアルの数は、混合集団に含まれる個体の数及び生成されるプールのサイズに依存する。例えば、各々の肝細胞のプールに使用される個々のバイアルの数は、2〜50人からであり得る。各々のプールは、300から1000個のバイアルの範囲であり得る。例えば、300個のバイアルを有する10個のドナープールは、各々のドナーからおよそ30個のバイアルが必要になると予想される。 [0021] In one embodiment, previously isolated and cryopreserved hepatocytes from individual donors are stored in liquid nitrogen vapor phase at a minimum of -150°C. The individual donor vials that are pooled together may be randomized or have specific metabolic activities (eg, ECOD, cytochrome P450, general phase I or phase II), age, race, gender, ethnicity, or other representation. It can be selected based on the type determinants. The number of thawed vials depends on the number of individuals included in the mixed population and the size of the pool produced. For example, the number of individual vials used for each pool of hepatocytes can be from 2 to 50 people. Each pool can range from 300 to 1000 vials. For example, a 10 donor pool with 300 vials would be expected to require approximately 30 vials from each donor.
[0022]個々のドナー肝細胞は、37℃に維持された水浴中におよそ2分間又は氷の軸がほとんど見えなくなるまでバイアルを浸漬することによって解凍され、その後、4℃で、保存溶液を含む容器に内容物を速やかにデカントする。保存溶液は、凍結保存剤中に見出されるDMSO(及び/又は肝細胞に毒性のある他の試薬)を希釈するために使用される。いくつかの例では、保存溶液はまた、寄せ集めるプロセス中の生存能力を向上させるために肝細胞に必須の栄養素を提供する。保存溶液の容量は、生成されるべきプールの大きさに依存するが、例えば、1mLの凍結保存された細胞に対して1:1の比の保存溶液から構成することができる。保存溶液は、ウシ胎仔血清(FBS)含有又は非含有の、ウィスコンシン大学溶液(10mMラクトビオン酸カリウム、25mM KH2PO4、5mM MgSO4、30mMラフィノース、5mMアデノシン、3mMグルタチオン、1mMアロプリノール、及び50g/L ヒドロキシエチルデンプン(Hyroxyethyl starch))、ハイポサーモゾル−ベース(HTS−Base)、ハイポサーモゾル−FRS(HTS−FRS)、又は他のそのような培地から構成することができる。複数のバイアルの肝細胞を解凍し、同じ容器で混合し、複数のドナー細胞の「寄せ集めた」集団を作製する間に、肝細胞を4℃で保存溶液中に維持する。解凍されたバイアルの数に依存して、解凍された肝細胞は保存溶液中に2〜10時間置くことができる。 [0022] Individual donor hepatocytes are thawed by soaking the vials in a water bath maintained at 37°C for approximately 2 minutes or until the ice axis is almost invisible, then at 4°C containing the stock solution. Immediately decant contents into container. The stock solution is used to dilute DMSO (and/or other reagents that are toxic to hepatocytes) found in cryopreservatives. In some instances, the preservation solution also provides hepatocytes with essential nutrients to improve viability during the homing process. The volume of stock solution depends on the size of the pool to be generated, but can be made up, for example, of a 1:1 ratio of stock solution to 1 mL of cryopreserved cells. The stock solution was a University of Wisconsin solution (10 mM potassium lactobionate, 25 mM KH2PO4, 5 mM MgSO4, 30 mM raffinose, 5 mM adenosine, 3 mM glutathione, 1 mM allopurinol, and 50 g/L hydroxyethyl starch) with or without fetal bovine serum (FBS). (Hyroxyethyl starch)), hypothermosol-base (HTS-Base), hypothermosol-FRS (HTS-FRS), or other such media. Hepatocytes from multiple vials are thawed, mixed in the same container, and maintained in storage solution at 4° C. while making a “populated” population of multiple donor cells. Depending on the number of thawed vials, thawed hepatocytes can be placed in the stock solution for 2-10 hours.
[0023]複数のバイアルの肝細胞を解凍して寄せ集めた後、細胞を50〜200相対遠心力(RCF)の範囲で8〜10分間遠心分離して、生存細胞と非生存細胞の両方をペレット化する。保存溶液は、例えば吸入によってペレット細胞から除去される。プロセス中のこの時点で密度勾配を含まない遠心分離のステップを使用することにより、第2の凍結保存の前の肝細胞における物理的及び化学的ストレスが低減される。図1A〜Bは、密度勾配(例えば、パーコール)遠心分離が肝細胞に及ぼす影響を、密度勾配を含まない遠心分離と比較して示す。各々の続いて起こるスピンごとに、密度勾配(パーコール)を用いると、パーコール無しで遠心分離した肝細胞と比較して、生存細胞の総数が減少した。これらの結果は、密度勾配溶液を用いた遠心分離が生存細胞の総数を減少させることを示している。 [0023] After thawing and collecting the hepatocytes in a plurality of vials, the cells are centrifuged in the range of 50 to 200 relative centrifugal force (RCF) for 8 to 10 minutes to remove both viable cells and non-viable cells. Pellet. The stock solution is removed from the pellet cells, eg by inhalation. The use of a density gradient-free centrifugation step at this point in the process reduces physical and chemical stress in hepatocytes prior to the second cryopreservation. 1A-B show the effect of density gradient (eg, Percoll) centrifugation on hepatocytes compared to centrifugation without density gradient. For each subsequent spin, the density gradient (Percoll) was used to reduce the total number of viable cells compared to hepatocytes centrifuged without Percoll. These results indicate that centrifugation with density gradient solution reduces the total number of viable cells.
[0024]細胞をペレット化して、保存溶液を除去した後、それらを直ちに、例えば10%のDMSOを含むクライオストール(CryoStor)(登録商標)CS10で構成されていてもよい凍結保護剤溶液に再懸濁させる。その後、寄せ集めた非生存及び生存肝細胞を、バイアル当たり1〜1.5mLのアリコートで細胞1000〜1500万個/mLで分配する。細胞計数は、このプロセスの任意のステップに沿って、例えば、トリパンブルー、アクリジンオレンジ、又はヨウ化プロピジウムを用いないか、又は用いて、行うことができることに留意されたい。 [0024] After pelleting the cells and removing the stock solution, they are immediately resuspended in a cryoprotectant solution, which may consist of, for example, CryoStor(R) CS10 with 10% DMSO. Suspend. The pooled non-viable and viable hepatocytes are then distributed at 10-15 million cells/mL in 1-1.5 mL aliquots per vial. It should be noted that cell counting can be performed along any step of the process, eg, with or without trypan blue, acridine orange, or propidium iodide.
[0025]混合又は再懸濁プロセスは、凍結保存剤をペレット化された肝細胞に添加することで構成されていてもよい。混合したペレット及び凍結保存剤をピペットで上下させたり、ボルテックスしたり、バイアル中に前後に振ったり、バイアル中でタッピングしたり、又は他の同様のプロセスで、ペレットを分解し、凍結保存剤全体に肝細胞を分散させることができる。 [0025] The mixing or resuspension process may consist of adding a cryopreservative to the pelleted hepatocytes. Pipette up and down mixed pellets and cryopreservatives, vortex, shake back and forth in vials, tap in vials, or other similar process to break up pellets and remove total cryopreservatives. Hepatocytes can be dispersed in the.
[0026]寄せ集めた肝細胞を含むバイアルは、速度制御された冷凍機を用いて凍結され、出荷の前、少なくとも3日以上10年以下の間、最低−150℃で液体窒素中に維持される。バイアルは、ドライアイス又は気相の液体窒素(例えばデュワー)でエンドユーザーに出荷され、液体窒素中に最低−150℃で保存される。使用直前に、エンドユーザーは37℃に維持された水浴中にバイアルをおよそ2分間浸漬するか、又は氷の軸がほとんど見えなくなるまで寄せ集めた肝細胞を解凍することができる。 [0026] The vials containing the pooled hepatocytes are frozen using a rate controlled refrigerator and kept in liquid nitrogen at least -150°C for at least 3 days and up to 10 years prior to shipment. It Vials are shipped to end users on dry ice or liquid nitrogen in the vapor phase (eg Dewar) and stored in liquid nitrogen at a minimum of -150°C. Immediately prior to use, the end user can immerse the vial in a water bath maintained at 37° C. for approximately 2 minutes or thaw the hepatocytes pooled until the ice axis is barely visible.
[0027]寄せ集めた非生存及び生存肝細胞を、ポリビニルピロリドン(パーコール)勾配でコーティングした20〜30%のコロイドシリカに適用し、50〜200RCFで8〜10分間遠心分離して、生存細胞を非生存細胞から分離する。したがって、生存細胞の最大数は、凍結保存又は他の凍結−融解サイクルにさらに晒されることなく、使用直前に単離される。このプロセスにより、500万個から800万個+までの生存細胞が回収され、実験に即座に使用できる。実験としては、生存率;代謝活性;トランスポーター活性;並びに異物摂取、代謝、有効性、及び毒性のアッセイが挙げられるが、これに限定されない。 [0027] The pooled non-viable and viable hepatocytes were applied to 20-30% colloidal silica coated with a polyvinylpyrrolidone (Percoll) gradient and centrifuged at 50-200 RCF for 8-10 minutes to remove viable cells. Separate from non-viable cells. Therefore, the maximum number of viable cells is isolated immediately before use without further exposure to cryopreservation or other freeze-thaw cycles. This process recovers from 5 to 8 million+ viable cells and is ready for use in experiments. Experiments include, but are not limited to, viability; metabolic activity; transporter activity; and foreign body uptake, metabolism, efficacy, and toxicity assays.
個々の凍結保存されたドナー肝細胞からの寄せ集めた肝細胞の調製手順を図2に示し、以下の操作を記載する:
1−A 10名のドナーからの凍結保存肝細胞のバイアルを、37℃の水浴中で氷の軸がほとんど見えなくなるまでおよそ2分間解凍する。いくつかのプールは、ドナーあたり500〜900個の間のバイアル、又はこの例では、50〜90個のバイアルで構成することができることに留意されたい。
The procedure for preparation of pooled hepatocytes from individual cryopreserved donor hepatocytes is shown in Figure 2 and describes the following procedures:
1-A Vials of cryopreserved hepatocytes from 10 donors are thawed in a 37°C water bath for approximately 2 minutes until the ice axes are almost invisible. It should be noted that some pools can consist of between 500-900 vials per donor, or in this example 50-90 vials.
1−B 解凍した肝細胞懸濁液(1mL)を、500mLのハイポサーモゾル−FRS保存溶液を含む1Lビーカーの中にピペットで入れ、4℃に維持し、肝細胞プールを生成する。 1-B Thawed hepatocyte suspension (1 mL) is pipetted into a 1 L beaker containing 500 mL of Hypothermosol-FRS stock solution and kept at 4° C. to generate hepatocyte pool.
1−C 寄せ集めた肝細胞を100Gで10分間、保存溶液(FRS)から遠心分離して生存細胞と非生存細胞の両方をペレット化する。 1-C Collected hepatocytes are centrifuged at 100 G for 10 minutes from stock solution (FRS) to pellet both viable and non-viable cells.
1−D 保存溶液を吸引により除去し、細胞を凍結保護剤クライオストール(登録商標)CS10培地中で穏やかに再懸濁する(例えば、前後に振る)。細胞を、トリパンブルー排除を用いて細胞密度を測定し、必要に応じて追加の凍結保護溶液を添加して、およそ細胞13.3×106個/mLを達成する。 The 1-D stock solution is removed by aspiration and the cells are gently resuspended (eg, rocked back and forth) in the cryoprotectant Cryostall® CS10 medium. Cells The cell density was determined using trypan blue exclusion, additional cryoprotectant solution optionally is added to achieve approximately cells 13.3 × 10 6 cells / mL.
1−E 1.5ミリリットル又はおよそ2000万個の細胞を個々のバイアルに等分する。 1-E 1.5 ml or approximately 20 million cells are aliquoted into individual vials.
1−F 寄せ集めた肝細胞のバイアルは、速度制御された冷凍庫で凍結保存され、液体窒素気相中に最低−150℃で保存される。 1-F Collected vial of hepatocytes are cryopreserved in a rate-controlled freezer and stored in liquid nitrogen vapor phase at a minimum of -150°C.
エンドユーザーによって行われる寄せ集めた肝細胞からの生存細胞の分離の手順は、図2に示されており、以下の操作に記載される:
2−A 寄せ集めた肝細胞のバイアルを、37℃の水浴中で氷の軸がほとんど見えなくなるまでおよそ2分間解凍する。
The procedure for the separation of viable cells from the aggregated hepatocytes performed by the end user is shown in Figure 2 and described in the following procedure:
2-A Thaw the pooled hepatocyte vials in a 37°C water bath for approximately 2 minutes until the ice axes are almost invisible.
2−B 肝細胞懸濁液を、20〜30%のパーコール密度勾配に注意深く適用する。 The 2-B hepatocyte suspension is carefully applied to a 20-30% Percoll density gradient.
2−C 試料を200RCFで10分間遠心分離して生存細胞と非生存細胞を分離する。 The 2-C sample is centrifuged at 200 RCF for 10 minutes to separate viable and non-viable cells.
2−D 最低500万個の生存細胞が回収され、実験のために直ちに使用される。 2-D A minimum of 5 million viable cells are collected and used immediately for experiments.
[0028]生存細胞の収量は、希釈率、及び寄せ集めるプロセス中の曝露時間によって変化し得ることに留意されたい。例えば、より大きなバッチでは、1:1の解凍された凍結保存剤に対する保存溶液の比が、費用がかかりすぎるか、又は困難であることもある(寄せ集める容器の容積)。さらに、多数のバイアルを解凍するのにより多くの時間を要する。したがって、細胞は、高濃度の凍結保存毒素に長期間晒される。凍結保存剤がより希釈され、寄せ集める時間が短縮され、一般に生存肝細胞のより高い収率をもたらす、より小さいバッチで行うことが容易であることもある。例えば、ステップ2−Dは、より大きなバッチに対して500万個の生存細胞をもたらすが、より小さいバッチ内では800万個まで及びそれを超える生存細胞をもたらし得る。より小さいバッチでは、4:1の解凍された凍結保存剤に対する保存溶液の比であってもよい。 [0028] It should be noted that the yield of viable cells may vary with the dilution rate and the exposure time during the pooling process. For example, in larger batches, a 1:1 ratio of stock solution to thawed cryopreservative can be too costly or difficult (volume of junk container). Moreover, it takes more time to thaw a large number of vials. Therefore, cells are exposed to high concentrations of cryopreserved toxin for long periods of time. It may also be easier to do in smaller batches, where the cryopreservative is more diluted, has a shorter collection time, and generally results in a higher yield of viable hepatocytes. For example, Step 2-D can result in 5 million viable cells for a larger batch, but up to 8 million and more viable cells in a smaller batch. For smaller batches, there may be a 4:1 ratio of thawed cryopreservative to preservative solution.
[0029]本明細書のプロセスは、懸濁又はプレーティングされた状態で使用される肝細胞に適用することができる。 [0029] The processes herein can be applied to hepatocytes used in suspension or plated.
[0030]実施例は肝細胞を記載しているが、本方法及びプロセスは他の細胞型に適用することができる。 [0030] Although the examples describe hepatocytes, the methods and processes can be applied to other cell types.
[0031]本明細書に例示され記載されたこれらの実施形態及び特徴は例示的なものであって、本出願の最後に列挙された特許請求の範囲を限定することを意図しておらず、特許請求の範囲そのものでもない。複数の組合せ及び均等な構成部分、範囲及びステップは、本出願の範囲内であると見なされる。 [0031] These embodiments and features illustrated and described herein are exemplary and not intended to limit the scope of the claims recited at the end of this application, It is not the claims themselves. Multiple combinations and equivalent components, ranges and steps are considered to be within the scope of this application.
[著作権に関する記載]
[0001]この特許出願書類の開示の一部は、図面を含む著作権保護の対象となる資料を含む。著作権者は、特許商標庁のファイル又は記録に載ったときのように特許文書又は特許開示のいずれかでのファクシミリによる複製に対して異論はないが、それ以外の場合にはすべての著作権を留保する。
[Description regarding copyright]
[0001] A portion of the disclosure of this patent application contains material which is subject to copyright protection, including drawings. The copyright owner has no objection to facsimile reproduction of either the patent document or the patent disclosure as it appears in the Patent and Trademark Office file or record, but otherwise all copyrights Reserve.
[相互参照及び関連出願]
[0002]本出願は、以下の各々の同時係属中の出願:2015年2月27日に出願された米国特許出願第62/121,619号の利益を主張し、参照によりその全体が本明細書中に取り込まれる。
[Cross-reference and related applications]
[0002] This application claims the benefit of each of the following co-pending applications: US Patent Application No. 62/121,619, filed February 27, 2015, which is hereby incorporated by reference in its entirety. Incorporated in the book.
Claims (10)
A)複数の供給源からの肝細胞を解凍するステップ;
B)複数の供給源からの肝細胞を保存溶液に寄せ集めるステップ;
C)寄せ集めた肝細胞を遠心分離して、生存肝細胞及び非生存肝細胞の両方をペレット化するステップであって、遠心分離が密度勾配を含まないステップ;
D)保存溶液を除去するステップ;
E)ペレット化された生存肝細胞及びペレット化された非生存肝細胞を凍結保存剤と混合し、寄せ集めたペレット化された肝細胞を形成するステップ;
F)寄せ集めたペレット化された肝細胞をバイアルに分配するステップ;及び
G)バイアル中の寄せ集めたペレット化された肝細胞を凍結保存し、寄せ集めた凍結保存された肝細胞を形成するステップ
を含む、方法。 A method for cryopreserving hepatocytes from multiple sources, comprising:
A) Thawing hepatocytes from multiple sources;
B) collecting hepatocytes from multiple sources into a preservation solution;
C) centrifuging the pooled hepatocytes to pellet both live and non-live hepatocytes , wherein centrifugation does not include a density gradient ;
D) removing the stock solution;
E) mixing the pelleted viable hepatocytes and the pelleted non-viable hepatocytes with a cryopreservative to form a pooled pelleted hepatocyte ;
F) Distributing the pooled pelleted hepatocytes into a vial; and G) Cryopreserving the pooled pelleted hepatocytes in the vial to form the pooled cryopreserved hepatocytes. A method comprising steps.
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