JP6629119B2 - Method for producing three-dimensional cell culture - Google Patents
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Description
本発明は、三次元細胞培養物の製造方法に関する。 The present invention relates to a method for producing a three-dimensional cell culture.
平面での細胞培養は、培養細胞を調製し、観察し、研究するためには便利な方法であり、それにより細胞を迅速に増殖させることができる。培養ディッシュを細胞足場材料であるゼラチン、コラーゲンI、IVやファイブロネクチンなどで処理し、細胞を培養液とともに播種して平面細胞培養を行う方法は、よく知られているが、生体内の組織の特徴である細胞間相互作用−細胞および細胞−マトリックス相互作用に欠けている。 Flat cell culture is a convenient method for preparing, observing, and studying cultured cells, which allows cells to grow rapidly. It is well known that a culture dish is treated with a cell scaffold such as gelatin, collagen I, IV or fibronectin, and the cells are seeded with a culture solution to perform planar cell culture. Lack of the characteristic cell-cell-cell and cell-matrix interactions.
細胞を三次元培養するために、セルローススポンジ、ゼラチンスポンジ、コラーゲンスポンジなどの足場材料の使用が提案されているが、血管構造の再生は実現されていない。 Although the use of scaffold materials such as cellulose sponge, gelatin sponge, and collagen sponge has been proposed for three-dimensionally culturing cells, regeneration of blood vessel structures has not been realized.
特許文献１は、コア部の解離性ゲルファイバ及びシェル部の細胞接着性ゲルを用いて、血管様構造物を製造しているが、この製造方法は煩雑であり、血管様構造物は実際の血管とは異なるものである。 Patent Document 1 manufactures a blood vessel-like structure using a core part of a dissociable gel fiber and a shell part of a cell-adhesive gel. However, this manufacturing method is complicated, and the blood vessel-like structure is not actually used. They are different from blood vessels.
特許文献２は、心筋細胞と血管内皮細胞と線維芽細胞を用いた心臓組織型スフェロイドを開示している。 Patent Document 2 discloses a heart tissue type spheroid using cardiomyocytes, vascular endothelial cells, and fibroblasts.
特許文献３は、毛細血管用の三次元構造体を開示しているが、その作製のために多量のファイブロネクチンを使用するため高コストであり、ファイブロネクチン−ゼラチン層を形成するために、各容器(インサート)にファイブロネクチン溶液とゼラチン溶液を各々加えて遠心処理し、上清を除去する操作を複数回行っており、三次元構造体の形成に手間がかかり、さらにまたこれらの作業工程中に細胞に対する負荷や、工程中の細胞数の喪失が無視できない。 Patent Document 3 discloses a three-dimensional structure for capillaries, which is expensive due to the use of a large amount of fibronectin for the preparation thereof, and is required for forming a fibronectin-gelatin layer. The operations of adding a fibronectin solution and a gelatin solution to a container (insert), centrifuging the mixture, and removing the supernatant are performed several times, which takes time to form a three-dimensional structure. The load on the cells and the loss of the number of cells during the process cannot be ignored.
非特許文献１（本明細書では、「従来法」と記載することがある）は、電荷の異なるファイブロネクチンとゼラチンを組み合わせて細胞外に薄層化することを特徴とする、微小血管様構造を形成する三次元細胞培養物を開示しているが、微小血管様構造の製造工程が煩雑であって時間がかかり、またこれらの作業工程中に細胞に対する負荷や細胞数の喪失が無視できず、ファイブロネクチンの使用量が多く高価である。 Non-Patent Document 1 (hereinafter sometimes referred to as “conventional method”) is a microvascular-like structure characterized by thinning out of cells by combining fibronectin and gelatin having different charges. Although the three-dimensional cell culture which forms is disclosed, the manufacturing process of the microvessel-like structure is complicated and time-consuming, and the load on the cells and the loss of the cell number during these working processes cannot be ignored. However, the amount of fibronectin used is high and expensive.
本発明は、生体の毛細血管に近い構造を有する三次元細胞培養物の製造方法を提供することを目的とする。 An object of the present invention is to provide a method for producing a three-dimensional cell culture having a structure close to a capillary of a living body.
本発明者は、以下の三次元細胞培養物の製造方法を提供するものである。
項１． 下記の工程１〜工程３を含む、微小血管様構造を有する三次元細胞培養物の製造方法
工程１：振とう処理された線維芽細胞を培養容器に播種して第１線維芽細胞層を形成する工程、
工程２：第１線維芽細胞層上にコラーゲンIVを添加し、次いで血管内皮細胞を播種して培養し、第１線維芽細胞層の上に血管様構造層を形成する工程
工程３：振とう処理された線維芽細胞をVEGF及びFGFとともに血管様構造層上に播種し、血管様構造層から上方に血管様構造が伸びた第２線維芽細胞層を形成する工程。
項２． 以下の工程４をさらに含む、項１に記載の三次元細胞培養物の製造方法
工程４：第２線維芽細胞層上に血管内皮細胞を播種して培養し、血管様構造層から上方に伸びた血管様構造の開口を備えた血管内皮層を形成する工程。
項３． 下から順番に第１線維芽細胞層（下層）／血管様構造層（中層）／第２線維芽細胞層（上層）の３層を重層した微小血管様の構造を含む三次元細胞培養物であって、中層の血管様構造体が上層に延びて上層表面に開口を形成し、下層と中層の間にコラーゲンIVを含む、三次元細胞培養物。
項４． 下から順番に第１線維芽細胞層（下層）／血管様構造層（中層）／第２線維芽細胞層（上層）／血管内皮層（最上層）の４層を重層した、微小血管様の構造を含む三次元細胞培養物であって、中層の血管様構造体が上層を通って最上層の開口と連通し、下層と中層の間にコラーゲンIVを含む、三次元細胞培養物。
項５． 上層にVEGFとFGFを含む、項３又は４に記載の三次元細胞培養物。
The present inventor provides the following method for producing a three-dimensional cell culture.
Item 1. A method for producing a three-dimensional cell culture having a microvessel-like structure, including the following steps 1 to 3 Step 1: seeding the shake-treated fibroblasts into a culture vessel to form a first fibroblast layer Process,
Step 2: adding collagen IV on the first fibroblast layer, then seeding and culturing vascular endothelial cells, and forming a vascular-like structural layer on the first fibroblast layer Step 3: shaking Disseminating the treated fibroblasts together with VEGF and FGF on the blood vessel-like structure layer to form a second fibroblast layer having a blood vessel-like structure extending upward from the blood vessel-like structure layer.
Item 2. Item 4. The method for producing a three-dimensional cell culture according to item 1, further comprising the following step 4: Step 4: Seeding and culturing vascular endothelial cells on the second fibroblast layer, and extending upward from the vascular-like structure layer Forming a vascular endothelial layer having an opening of the vascular-like structure.
Item 3. A three-dimensional cell culture containing a microvascular-like structure in which three layers of a first fibroblast layer (lower layer) / vessel-like structure layer (middle layer) / second fibroblast layer (upper layer) are layered in order from the bottom. A three-dimensional cell culture, wherein the blood vessel-like structure in the middle layer extends to the upper layer to form an opening in the surface of the upper layer, and contains collagen IV between the lower layer and the middle layer.
Item 4. A microvessel-like structure in which four layers of a first fibroblast layer (lower layer) / vessel-like structure layer (middle layer) / second fibroblast layer (upper layer) / vascular endothelial layer (top layer) are sequentially layered from the bottom. A three-dimensional cell culture comprising a structure, wherein the middle vascular-like structure communicates with the uppermost opening through the upper layer and comprises collagen IV between the lower and middle layers.
Item 5. Item 3. The three-dimensional cell culture according to Item 3 or 4, comprising VEGF and FGF in the upper layer.
本発明で得られる微小血管様構造(以下、「血管」又は「血管様構造」と略することがある)を有する三次元細胞培養物は、生細胞の状態で、赤血球が流れ、赤血球は微小血管様構造内にとどまり、薬剤候補物質を添加していない条件下では血管内に流入させたナノメディシンあるいはナノ薬剤すなわち数十ナノメートルオーダーサイズ(以下、「ナノサイズ」と言うことがある。)の物質が血管外に移行する漏出性の「ほとんどない」血管様構造が得られ、血管機能を制御する薬剤候補物質の添加による前記ナノサイズの物質の血管外への移行の増減を評価することにより前記ナノサイズの物質の血管漏出性を制御する薬剤をスクリーニングすることができる。 A three-dimensional cell culture having a microvessel-like structure obtained in the present invention (hereinafter, may be abbreviated as `` blood vessel '' or `` vessel-like structure '') is a live cell state, in which red blood cells flow, and red blood cells are microscopic. The nanomedicine or nanopharmaceutical that flows into the blood vessel under the condition that the drug candidate substance remains in the blood vessel-like structure and the drug candidate substance is not added, that is, several tens of nanometers (hereinafter sometimes referred to as “nanosize”). A leaky `` little '' vascular-like structure in which the substance migrates out of the vessel is obtained, and by evaluating the increase or decrease in the extravascular migration of the nano-sized substance by the addition of a drug candidate substance that controls vascular function. An agent that controls the vascular leakiness of the nano-sized substance can be screened.
本発明では、三次元培養体を構築するまでの工数が圧倒的に少なくなり、時間を短縮でき、細胞に対する負荷も軽減し、さらに工程中の細胞数喪失も大幅に軽減する。具体的な製造工程における実作業時間は、本発明の開口型血管網の場合、一回に連続しては最大でも1時間程度であり、多数の三次元細胞培養物を並行して作製可能であり、多数の検体を用いた薬剤スクリーニングを短期間で実施可能である。本発明では、第２線維芽細胞層の底面を培養器具表面と接着させるためのみにファイブロネクチンを使用すればよく、すべての構成細胞の表面にファイブロネクチンの被膜が必要な従来法と比較して、ファイブロネクチンの使用量の減少により製造コストが大幅に低下する。また従来法でこの被膜工程中での細胞喪失のために工程開始前に準備した細胞数の半数強しか実際の細胞層を構成させる工程に到達できないのに対し、本発明では細胞表面への被膜工程を必要としないことからほとんど工程中の細胞数喪失がなく、労力及びコストの面から効果的である。 In the present invention, the number of steps required to construct a three-dimensional culture is significantly reduced, the time can be shortened, the load on the cells is reduced, and the loss of the number of cells during the process is significantly reduced. The actual working time in the specific manufacturing process is, in the case of the open-type vascular network of the present invention, at most about one hour at a time consecutively, and it is possible to produce many three-dimensional cell cultures in parallel. Yes, drug screening using a large number of samples can be performed in a short period of time. In the present invention, fibronectin may be used only to adhere the bottom surface of the second fibroblast cell layer to the surface of the culture instrument, compared with the conventional method that requires a fibronectin coating on the surface of all constituent cells. In addition, the production cost is greatly reduced due to the decrease in the amount of fibronectin used. Also, in the conventional method, only a little more than half of the number of cells prepared before the start of the process due to loss of cells during the coating process can reach the process of forming an actual cell layer, whereas in the present invention, coating on the cell surface is performed. Since no step is required, there is almost no loss of the number of cells during the step, which is effective in terms of labor and cost.
本発明で構築された微小血管様構造物は、ヒト生体内の正常な毛細血管構造と近くなり、ナノサイズの物質の漏出程度が低いため、ナノ粒子の漏出に対する物質の影響をより適切に調べることができる。また過去の知見（非特許文献：Adv Drug Deliv Rev. 2014 Jul;74:2-11、Robbins and Cotran Pathologic Basis of Disease 8e: Chapters 2 and 3、他）によれば、このような、ナノサイズの物質に対する漏出程度の低い性質の血管は、難治性固形がんにおける腫瘍内血管や、線維化を伴う慢性炎症における血管とも類似する。 The microvessel-like structure constructed according to the present invention is closer to a normal capillary structure in a human body, and has a low degree of leakage of a nano-sized substance. Therefore, the influence of the substance on the leakage of nanoparticles is more appropriately examined. be able to. According to past findings (Non-patent document: Adv Drug Deliv Rev. 2014 Jul; 74: 2-11, Robbins and Cotran Pathologic Basis of Disease 8e: Chapters 2 and 3, etc.), such nano-sized Blood vessels with a low degree of leakage to a substance are similar to blood vessels in tumors in refractory solid cancer and blood vessels in chronic inflammation accompanied by fibrosis.
本発明の製造方法で得られる三次元細胞培養物の概要を図１に示す。 FIG. 1 shows an outline of a three-dimensional cell culture obtained by the production method of the present invention.
本発明の三次元細胞培養物は、下から順番に（１）第１線維芽細胞層（下層とよぶ）、（２）血管様構造層（中層とよぶ）、（３）第２線維芽細胞層（上層とよぶ）の３層を重層した構造、或いはさらに（４）血管内皮層（最上層とよぶ）を重層した４層構造を有し、第１線維芽細胞層（下層）は工程１により形成され、血管様構造層（中層）は工程２により形成され、第２線維芽細胞層（上層）は工程３により形成され、血管内皮層（最上層）は工程４により形成される。
（１）工程１（第１線維芽細胞層（下層）の形成）
原料となる線維芽細胞は、市販品を用いることができる。市販の線維芽細胞を購入し、ディッシュなどの適当な培養容器で平面培養における常法に従い培養する。培養された線維芽細胞は、常法に従いトリプシンなどのプロテアーゼ処理により容器から剥がして線維芽細胞の懸濁液を作製する。
The three-dimensional cell culture of the present invention comprises, in order from the bottom, (1) a first fibroblast layer (referred to as a lower layer), (2) a vascular-like structural layer (referred to as a middle layer), and (3) a second fibroblast. The first fibroblast layer (lower layer) has a structure in which three layers of an upper layer (called an upper layer) or (4) a four-layer structure in which a vascular endothelial layer (referred to as an uppermost layer) is further stacked. The vascular-like structure layer (middle layer) is formed by step 2, the second fibroblast layer (upper layer) is formed by step 3, and the vascular endothelial layer (top layer) is formed by step 4.
(1) Step 1 (formation of first fibroblast layer (lower layer))
Commercially available fibroblasts can be used as a raw material. Commercially available fibroblasts are purchased and cultured in a suitable culture vessel such as a dish according to a conventional method for planar culture. The cultured fibroblasts are peeled from the container by a protease treatment with trypsin or the like according to a conventional method to prepare a suspension of fibroblasts.
得られた細胞懸濁液はそのまま振とう処理を行ってもよいが、培養液を遠心分離して除き、線維芽細胞を緩衝液に懸濁するのが好ましい。緩衝液としては、Tris-HCl緩衝液、PBS緩衝液などが挙げられる。緩衝液は等張液であるか、等張に近い液であるのが好ましい。 The obtained cell suspension may be subjected to shaking treatment as it is, but it is preferable to remove the culture solution by centrifugation and suspend the fibroblasts in a buffer solution. Examples of the buffer include Tris-HCl buffer, PBS buffer and the like. The buffer is preferably an isotonic solution or a solution close to isotonic.
緩衝液に懸濁した線維芽細胞は、懸濁液をチューブなどの容器に入れて振とう処理を行う。振とうは、水平往復、水平偏心、楕円、旋回などのいずれでもよく、水平偏心式では船が揺れるような振動が与えられる。振とうは、１０〜５０ｒｐｍ／ｍｉｎ、好ましくは１０〜３０ｒｍｐ／ｍｉｎ程度で行うことが好ましい。振とう時間は、特に限定されないが、例えば１０分から２時間程度、好ましくは３０分から１時間程度である。理論に拘束されることを望むものではないが、本発明者は振とう処理を行うことで、線維芽細胞がファイブロネクチンなどの細胞外マトリクスの産生能を高めることができると考えている。 The fibroblasts suspended in the buffer are subjected to a shaking treatment by placing the suspension in a container such as a tube. Shaking may be any of horizontal reciprocation, horizontal eccentricity, ellipse, turning, and the like. In the case of horizontal eccentricity, vibrations that shake the ship are given. Shaking is preferably performed at 10 to 50 rpm / min, preferably about 10 to 30 rpm / min. The shaking time is not particularly limited, but is, for example, about 10 minutes to 2 hours, preferably about 30 minutes to 1 hour. Without wishing to be bound by theory, the present inventor believes that by performing shaking treatment, fibroblasts can increase the ability to produce extracellular matrices such as fibronectin.
振とう処理された細胞は、遠心分離により上清を除去し、培地に懸濁して培養容器に播種し、培養して下層である第１線維芽細胞層を形成する。 The cells subjected to the shaking treatment are subjected to centrifugation to remove the supernatant, suspended in a medium, seeded in a culture vessel, and cultured to form a lower first fibroblast layer.
培養容器がマイクロタイタープレートに配置したウェルの場合、線維芽細胞は、24ウェルサイズの１ウェル当たり５×１０４個〜５×１０６個程度播種すればよい。 When the culture vessel is a well arranged in a microtiter plate, fibroblasts may be seeded at about 5 × 10 4 to 5 × 10 6 cells per well of a 24-well size.
第１線維芽細胞層（下層）の厚さは10〜60μm程度、好ましくは15〜50μm程度、より好ましくは20〜40μm程度である。
（２）工程２（血管様構造層（中層）の形成）
原料となる血管内皮細胞は、市販品を用いることができる。市販の血管内皮細胞を購入し、ディッシュなどの適当な培養容器で培養し、トリプシン等で処理して血管内皮細胞の懸濁液を調製してもよく、市販の血管内皮細胞を培養することなく市販の培地に懸濁して播種してもよい。
The thickness of the first fibroblast layer (lower layer) is about 10 to 60 μm, preferably about 15 to 50 μm, and more preferably about 20 to 40 μm.
(2) Step 2 (formation of blood vessel-like structure layer (middle layer))
Commercially available products can be used as vascular endothelial cells as a raw material. A commercially available vascular endothelial cell may be purchased, cultured in an appropriate culture vessel such as a dish, and treated with trypsin to prepare a suspension of vascular endothelial cells. The cells may be inoculated and suspended in a commercially available medium.
工程２では、第１線維芽細胞層（下層）上にコラーゲンIVを添加する。コラーゲンIV溶液の添加量は特に限定されないが、例えば30〜200μL / well (24 well insert)程度、好ましくは100 μL / well (24 well insert)程度であり、コラーゲンIV溶液の濃度は特に限定されないが、例えば0.01〜0.2 mg/ml程度、好ましくは0.04 mg/ml程度である。 In step 2, collagen IV is added on the first fibroblast layer (lower layer). The amount of the collagen IV solution is not particularly limited, but is, for example, about 30 to 200 μL / well (24 well insert), preferably about 100 μL / well (24 well insert), and the concentration of the collagen IV solution is not particularly limited. For example, about 0.01 to 0.2 mg / ml, preferably about 0.04 mg / ml.
この後に、血管内皮細胞を培地に懸濁して、コラーゲンＩＶ溶液を添加した後の第１線維芽細胞層上に播種し血管様構造層を形成する。コラーゲンＩＶを第１線維芽細胞層上に添加することで、次に播種した血管内皮細胞により網目状の血管が形成される。血管が形成されるまでの時間は、１２時間から４８時間程度、好ましくは２４時間程度で十分な網目状の毛細血管様の構造が形成される。 Thereafter, the vascular endothelial cells are suspended in a medium and seeded on the first fibroblast layer after the addition of the collagen IV solution to form a vascular-like structure layer. By adding collagen IV on the first fibroblast layer, a reticulated blood vessel is formed by the seeded vascular endothelial cells. The time until the blood vessel is formed is about 12 to 48 hours, preferably about 24 hours, and a sufficient network-like capillary-like structure is formed.
血管内皮細胞の播種は、一般的な細胞平面培養法に倣って実施することができる。 Seeding of vascular endothelial cells can be performed according to a general cell plane culture method.
培養容器(例えばインサート)が２４ウェルプレートに配置したウェルの場合、血管内皮細胞は、１ウェル当たり１×１０４個〜５×１０６個程度播種すればよい。 When the culture vessel (for example, insert) is a well arranged in a 24-well plate, about 1 × 10 4 to 5 × 10 6 vascular endothelial cells may be seeded per well.
血管様構造層（中層）の厚さは3〜20μm程度、好ましくは4〜15μm程度、より好ましくは5〜10μm程度である。
（３）工程３（第２線維芽細胞層（上層）の形成）
工程３で使用する線維芽細胞は、工程１と同様に培養及び振とう処理することにより作製することができる。振とう処理後に遠心分離して上清を除去し、VEGFとFGFを含む培地に線維芽細胞を懸濁して播種する。線維芽細胞を播種し、１２時間から４８時間程度、好ましくは２４時間程度培養することで、血管が血管様構造層から上方に延びて表面に開口を形成する。
The thickness of the blood vessel-like structure layer (middle layer) is about 3 to 20 μm, preferably about 4 to 15 μm, and more preferably about 5 to 10 μm.
(3) Step 3 (formation of second fibroblast layer (upper layer))
The fibroblast used in step 3 can be produced by culturing and shaking in the same manner as in step 1. After shaking, the supernatant is removed by centrifugation, and the fibroblasts are suspended and seeded in a medium containing VEGF and FGF. By inoculating the fibroblasts and culturing them for about 12 to 48 hours, preferably about 24 hours, the blood vessels extend upward from the blood vessel-like structure layer to form openings on the surface.
血管を上方に延ばすために、VEGFとFGFを使用することが好ましい。懸濁液中のVEGFの好ましい濃度は、10〜100 ng/ml程度であり、FGFの好ましい濃度は、5 〜 20 ng/ml程度である。 Preferably, VEGF and FGF are used to extend the blood vessels upward. The preferred concentration of VEGF in the suspension is on the order of 10-100 ng / ml, and the preferred concentration of FGF is on the order of 5-20 ng / ml.
培養容器が２４ウェルプレートに配置したウェルの場合、線維芽細胞は、１ウェル当たり５×１０４個〜５×１０６個程度播種すればよい。 When the culture vessel is a well arranged in a 24-well plate, fibroblasts may be seeded at about 5 × 10 4 to 5 × 10 6 per well.
第２線維芽細胞層（上層）の厚さは10〜60μm程度、好ましくは15〜50μm程度、より好ましくは20〜40μm程度である。
（４）工程４（血管内皮層（最上層）の形成）
工程２と同様にして、血管内皮細胞を培地に懸濁し、コラーゲンＩＶ溶液を添加した後の第２線維芽細胞層（上層）上に播種する。血管内皮層（最上層）の血管内皮細胞は、第２線維芽細胞層（上層）の開口がさらに延びて血管内皮層（最上層）に開口を形成する。この開口に薬物候補物質及びナノサイズの物質を供給することで、ナノサイズの物質の血管透過性に影響する薬物候補物質をスクリーニングすることができる。ナノサイズの物質が血管を透過したことは、共焦点顕微鏡で血管様構造層(中層)の状態を観察することにより評価することができる。ナノサイズの物質としては、蛍光物質、金属、金属酸化物、ポリマーなど種々の材料が挙げられる。
The thickness of the second fibroblast layer (upper layer) is about 10 to 60 μm, preferably about 15 to 50 μm, and more preferably about 20 to 40 μm.
(4) Step 4 (formation of vascular endothelial layer (top layer))
In the same manner as in step 2, the vascular endothelial cells are suspended in a medium and seeded on the second fibroblast layer (upper layer) after the addition of the collagen IV solution. In the vascular endothelial cells in the vascular endothelial layer (top layer), the openings in the second fibroblast layer (upper layer) further extend to form openings in the vascular endothelial layer (top layer). By supplying a drug candidate substance and a nano-sized substance to this opening, a drug candidate substance that affects the vascular permeability of the nano-sized substance can be screened. The permeation of the nano-sized substance through the blood vessel can be evaluated by observing the state of the blood vessel-like structural layer (middle layer) with a confocal microscope. Examples of the nano-sized substance include various materials such as a fluorescent substance, a metal, a metal oxide, and a polymer.
培養容器が２４ウェルプレートに配置したウェルの場合、血管内皮細胞は、１ウェル当たり１×１０４個〜５×１０６個程度播種すればよい。または、この層については播種を省略することも可能である。ただしこの場合は形成される血管網は至適細胞数を播種する場合に比べて漏出性のより高いものとなる。 When the culture vessel is a well arranged in a 24-well plate, about 1 × 10 4 to 5 × 10 6 vascular endothelial cells may be seeded per well. Alternatively, the seeding can be omitted for this layer. However, in this case, the formed vascular network is more leaky than when the optimal cell number is seeded.
血管内皮層（最上層）の厚さは3〜20μm程度、好ましくは4〜15μm程度、より好ましくは5〜10μm程度である。 The thickness of the vascular endothelial layer (top layer) is about 3 to 20 μm, preferably about 4 to 15 μm, and more preferably about 5 to 10 μm.
本明細書において、血管内皮細胞、線維芽細胞は、哺乳動物由来の細胞が使用される。
哺乳動物としては、ヒト、ラット、マウス、ハムスター、ウサギ、イヌ、サル、ウシ、ブタ、ヤギなどが挙げられ、ヒト、マウス、ラットが好ましく、ヒトがより好ましい。血管内皮細胞としては、ＨＢＭＥＣ（ヒト脳血管内皮細胞）、ＨＣＰＥＣ（ヒト脳脈絡叢血管内皮細胞）、ＨＩＭＥＣ（ヒト小腸血管内皮細胞）、ＨＣＭＥＣ（ヒト心臓血管内皮細胞）、ＨＡＥＣ（ヒト大動脈血管内皮細胞）、ＨＲＥＣ（ヒト網膜血管内皮細胞）、ＨＵＶＥＣ（ヒト臍帯静脈血管内皮細胞）、ＨＵＡＥＣ（ヒト臍帯動脈血管内皮細胞）、ヒト肺動脈内皮細胞（HPAEC）、ヒト伏在静脈内皮細胞（HSaVEC）などの市販品を使用することができる。
In the present specification, mammal-derived cells are used as vascular endothelial cells and fibroblasts.
Examples of mammals include humans, rats, mice, hamsters, rabbits, dogs, monkeys, cows, pigs, goats, and the like. Humans, mice, and rats are preferred, and humans are more preferred. As vascular endothelial cells, HBMEC (human cerebrovascular endothelial cells), HCPEC (human cerebral choroid plexus vascular endothelial cells), HIMEC (human small intestinal vascular endothelial cells), HCMEC (human cardiac vascular endothelial cells), HAEC (human aortic vascular endothelial cells) Cells), HREC (human retinal vascular endothelial cells), HUVEC (human umbilical vein endothelial cells), HUAEC (human umbilical artery vascular endothelial cells), human pulmonary artery endothelial cells (HPAEC), human saphenous vein endothelial cells (HSaVEC), etc. Can be used.
工程２，４において、血管内皮細胞は、２×１０４／ｃｍ２〜２×１０６／ｃｍ２以上程度の密度で播種される。なお工程４は、生成される血管網の漏出性が上がっても問題ない場合においては省略することも可能である。 In steps 2 and 4, vascular endothelial cells are seeded at a density of about 2 × 10 4 / cm 2 to 2 × 10 6 / cm 2 or more. Step 4 can be omitted if there is no problem even if the leakage of the generated vascular network increases.
線維芽細胞は、ファイブロネクチンなどの細胞外マトリクス産生能が高い細胞が好ましく、皮膚あるいは胎盤や臍帯などから分離される胎児由来の線維芽細胞、マウス胚性線維芽細胞などがより好ましい。本発明の線維芽細胞層に用いることができる細胞は線維芽細胞のみに限定されず、他の間葉系細胞（例えば、神経学的組織のグリア細胞、肝臓や膵臓の星細胞など）、および間葉系細胞が腫瘍化したすなわち肉腫のすべての腫瘍細胞（例えば骨肉腫や子宮肉腫など）、上皮間葉転換した上皮系のがんのすべての腫瘍細胞（例えば膵臓がん、乳がん、大腸がんなど）、間葉系と上皮系の混合したようなあるいはいずれの由来であるか不明な腫瘍の腫瘍細胞（例えば悪性黒色腫、悪性中皮腫など）を包含する。さらに、組織内に存在する免疫系細胞（例えばマスト細胞、マクロファージ、樹状細胞など）を線維芽細胞層に含むことができる。 The fibroblast is preferably a cell having a high extracellular matrix-producing ability such as fibronectin, and more preferably a fibroblast derived from a fetus isolated from the skin, the placenta, the umbilical cord, or the like, a mouse embryonic fibroblast and the like. Cells that can be used in the fibroblast layer of the present invention are not limited to fibroblasts, and include other mesenchymal cells (eg, glial cells of neurological tissue, stellate cells of liver and pancreas), and Mesenchymal cells become tumorous, ie all sarcoma tumor cells (eg osteosarcoma and uterine sarcoma), all epithelial tumor cells with epithelial-mesenchymal transition (eg pancreatic cancer, breast cancer, colon Tumor cells, such as malignant melanoma, malignant mesothelioma, etc.), and tumor cells of a mixed or mesenchymal and epithelial origin or of unknown origin. In addition, immune system cells (eg, mast cells, macrophages, dendritic cells, etc.) present in the tissue can be included in the fibroblast layer.
工程１，３において、線維芽細胞は、２×１０４／ｃｍ２〜２×１０６／ｃｍ２程度の密度で播種される。 In steps 1 and 3, fibroblasts are seeded at a density of about 2 × 10 4 / cm 2 to 2 × 10 6 / cm 2 .
本発明の方法に使用する培養容器としては、特に限定されないが、カルチャーインサートの使用できるプレートの各ウェルなどが挙げられる。 The culture vessel used in the method of the present invention is not particularly limited, and includes, for example, each well of a plate on which a culture insert can be used.
本発明の三次元細胞培養物は、培地を凍結用細胞組織保存液（100%血清、TCプロテクター、セルバンカーなど）に置換したうえで-80℃に凍結保存することができる。さらに融解後に構造を保って培養を継続することができる。すなわち、長期保存が可能である。 The three-dimensional cell culture of the present invention can be stored frozen at -80 ° C after replacing the medium with a cell tissue preservation solution for freezing (100% serum, TC protector, cell bunker, etc.). Further, the culture can be continued while maintaining the structure after thawing. That is, long-term storage is possible.
本発明は以下の実施例によってさらに例示されるが、これらはさらなる限定として解釈されるべきではない。
実施例１
１．本製造法の手順：
Ｉ.ヒト皮膚線維芽細胞(NHDF)の三次元培養（図１中の「第1線維芽細胞層（下層）」）
(1)細胞をTrypsin 処理し、遠心したのち、50mM Tris-HCl (pH 7.4)溶液またはDulbecco PBS(-)、すなわち等張バッファー(pH 7.4)で懸濁する。
(2)室温で約30分〜１時間、振盪機（TAITEC Wave-SI）を用いて20rpm/min前後で振とうする。
(3)細胞を回収し、遠心後上清除去。
(4)培地に再懸濁し、培養インサート(培養容器、ベクトンディッキンソン社製)に播種する。24 wellプレート1wellに対して、5.0x105細胞のNHDFを播種する。（(1)〜(4)の手順で60〜90分間を要する。）なお、インサートの培養面は本製造法による三次元細胞構造体がインサートからはがれないよう、通常の平面培養と同様にファイブロネクチンコートを要する。
(5)24時間培養
(本手順の結果) NHDFが培養容器の培養面上に４層程度に重層化して培養される。
II．血管内皮細胞の播種（図１中の「血管様構造層(中層)」）
(1)続いて、第１線維芽細胞層の上にcollagen IV (0.04 mg/ml)、24wellの1wellあたり100μlを添加する
(2)血管内皮細胞HUVEC (細胞数は24wellの1wellあたり1.0x105)を、一般的な細胞平面培養法に倣って播種する
(3)24時間培養
(本手順の結果) まずはHUVECが重層化したNHDF層の上面に培養される
The present invention is further illustrated by the following examples, which should not be construed as further limiting.
Example 1
1. Procedure of this production method :
I. Three-dimensional culture of human dermal fibroblasts (NHDF) ("First fibroblast layer (lower layer)" in Fig. 1)
(1) The cells are treated with Trypsin, centrifuged, and then suspended in a 50 mM Tris-HCl (pH 7.4) solution or Dulbecco PBS (-), ie, an isotonic buffer (pH 7.4).
(2) Shake at about 20 rpm / min using a shaker (TAITEC Wave-SI) at room temperature for about 30 minutes to 1 hour.
(3) The cells are collected, and the supernatant is removed after centrifugation.
(4) The cells are resuspended in a medium and seeded on a culture insert (culture vessel, manufactured by Becton Dickinson). One well of a 24-well plate is seeded with 5.0 × 10 5 cells of NHDF. (The procedure of (1) to (4) requires 60 to 90 minutes.) The culture surface of the insert is fibroblasted in the same manner as in ordinary planar culture so that the three-dimensional cell structure according to the present production method does not come off the insert. Requires a Nectin coat.
(5) 24 hours culture
(Results of this procedure) NHDF is layered and cultured in about four layers on the culture surface of the culture vessel.
II. Seeding of vascular endothelial cells (“Vessel-like structural layer (middle layer)” in FIG. 1)
(1) Subsequently, collagen IV (0.04 mg / ml) and 100 μl per well of 24 wells are added on the first fibroblast layer.
(2) Inoculate vascular endothelial cells HUVEC (the number of cells is 1.0 × 10 5 per 24 well) according to a general cell plane culture method
(3) 24 hours culture
(Results of this procedure) First, HUVECs are cultured on top of the overlaid NHDF layer
III．線維芽細胞の三次元培養（前図中で「第２線維芽細胞層（上層）」）
(1) 血管様構造層の上に、「Ｉ．」と同じ処置をしたヒト皮膚線維芽細胞NHDF（細胞数も同数）を準備し、これを播種する。ただし、再懸濁する培地にはVEGF(30 ng/mL) とFGF(10 ng/mL、100 ng/mL Heparan sulfate sodiumを添加)を添加する。
(2)24時間培養
(本手順の結果) 線維芽細胞が重層化するとともに、血管様構造層の血管内皮の増殖が促され、また、上層線維芽細胞内に血管内皮が誘導されてくるために、最上層に向かって血管様構造の延長と開口がもたらされる（いわば「煙突」様の構造を作る）。
IV．血管内皮細胞の播種（図1中で「血管内皮層（最上層）」）
(1) 第２線維芽細胞層（上層）の上に、「II．」と同様に血管内皮細胞HUVEC (細胞数は24wellの1wellあたり1.0x105)を播種する。
(2) 24時間培養
(結果) 最上層では血管内皮細胞が平面培養と同様の構造を形成し、なおかつ、血管構造層から誘導されてきた血管内皮細胞による構造と結合して、最上面における血管様構造の開口がもたらされる。
III. Three-dimensional culture of fibroblasts ("second fibroblast layer (upper layer)" in the previous figure)
(1) On the blood vessel-like structure layer, prepare human dermal fibroblasts NHDF (the same number of cells) treated in the same manner as in “I.” and inoculate them. However, add VEGF (30 ng / mL) and FGF (10 ng / mL, add 100 ng / mL Heparan sulfate sodium) to the medium to be resuspended.
(2) 24 hours culture
(Results of this procedure) As the fibroblasts are stratified, the proliferation of the vascular endothelium in the vascular-like structural layer is promoted, and the vascular endothelium is induced in the upper fibroblasts. This results in an extension and opening of the vessel-like structure (creating a so-called "chimney" -like structure).
IV. Seeding of vascular endothelial cells ("Vascular endothelial layer (top layer)" in Fig. 1)
(1) On the second fibroblast layer (upper layer), seed vascular endothelial cells HUVEC (the number of cells is 1.0 × 10 5 per 24 well) as in “II.”.
(2) 24-hour culture
(Results) In the uppermost layer, vascular endothelial cells form a structure similar to that in planar culture, and combine with the structure of vascular endothelial cells derived from the vascular structure layer, resulting in the opening of a vascular-like structure on the uppermost surface. It is.
本発明と従来法の手順を従来法として図２に示す。なお、従来法とは、ファイブロネクチン・ゼラチンを細胞に薄層化する方法を意味する。
２．本技術により得られる構造
上記１に述べた手順にて、血管様構造層には図３の構造が得られる。血管内皮細胞による網目状の血管様構造（図３−１赤色）は主にこの層に形成されるため、共焦点顕微鏡による観察は容易となる。
FIG. 2 shows the procedure of the present invention and the conventional method as the conventional method. The conventional method means a method of thinning fibronectin gelatin into cells.
2. Structure obtained by the present technology By the procedure described in the above 1, the structure shown in FIG. 3 is obtained in the blood vessel-like structure layer. Since a network-like vascular-like structure (red in FIG. 3-1) formed by vascular endothelial cells is mainly formed in this layer, observation with a confocal microscope becomes easy.
なお本構造は、上層を構成する血管内皮細胞と縦（z軸）方向にも交通する（図３−２）ため、最上層の上部に添加した物質は、この血管様構造層の血管様構造まで到達する。血管内皮染色によって同定される血管様構造層（中層）から最上層の血管内皮層までの厚みは約50μmであった。
３．本技術により得られた構造の、生細胞状態での機能的解析
続いて、本方法により得られた血管様構造が、機能的にも生体を摸することを示す。
In addition, since the present structure also communicates with the vascular endothelial cells constituting the upper layer in the vertical (z-axis) direction (FIG. 3-2), the substance added to the upper part of the uppermost layer uses the vascular-like structure of the vascular-like structure layer. To reach. The thickness from the vascular-like structural layer (middle layer) to the uppermost vascular endothelial layer identified by vascular endothelial staining was about 50 μm.
3. Functional analysis of the structure obtained by the present technique in a living cell state. Subsequently, it is shown that the blood vessel-like structure obtained by the present method functionally mimics a living body.
前述の通り、本構築物内の血管様構造は、血管構造層に主に形成されるが、最上層の血管内皮細胞と連結したz軸方向の管腔を形成する。 As described above, the blood vessel-like structure in the present construct is mainly formed in the blood vessel structure layer, but forms a z-axis lumen connected to the uppermost layer of vascular endothelial cells.
したがって、最上層の上部培養液中に、血管様構築内に流し込む物質を添加することで、血管様構造層に下記の実施例を得る。 Therefore, the following example is obtained in the vascular-like structure layer by adding a substance that flows into the vascular-like structure into the upper culture solution in the uppermost layer.
なお、本実施例は、ホルマリン等で固定していない、培養状態の生細胞による構造物の状態で観察・撮影することができる。このため、生細胞における薬剤の効果を確認することが可能である。
(i)高分子量デキストラン（2MDa: アルブミン=70kDa・10―20nm相当と同等よりも大きい物質で、数十ナノメートルサイズ相当と見做される）を流した場合(図４)：
一般的なナノメディシン・ナノ薬剤と同等の数十ナノメートルサイズであると考えられる2MDaデキストランは、血管様構造層に存在する、血管内皮細胞で形成された毛細血管様構造の内部に主に分布し、本発明の三次元細胞培養物の微小血管様構造がナノ粒子の漏出性がほとんどないことが確認された。
(ii) (i)に加えて、赤血球を流した場合(図５)：
デキストランの存在する毛細血管様構造内に、赤血球が存在した。このことから、本毛細血管様構造は、赤血球及び数十ナノメートルサイズのデキストラン粒子を保持できることが確認された。
In the present embodiment , observation and photographing can be performed in a state of a structure of living cells in a culture state, which is not fixed with formalin or the like. Therefore, it is possible to confirm the effect of the drug on living cells.
(i) When flowing high molecular weight dextran (2MDa: a substance larger than the equivalent of albumin = 70 kDa · 10-20 nm, which is considered to be equivalent to several tens of nanometers) (FIG. 4):
2MDa dextran, which is thought to be several tens of nanometers in size equivalent to general nanomedicine and nanopharmaceuticals, is mainly distributed inside the capillary-like structure formed by vascular endothelial cells in the vascular-like structural layer. It was confirmed that the microvessel-like structure of the three-dimensional cell culture of the present invention hardly leaks nanoparticles.
(ii) In addition to (i), when red blood cells are shed (Fig. 5):
Red blood cells were present in the capillary-like structure where dextran was present. From this, it was confirmed that the present capillary-like structure can hold red blood cells and dextran particles having a size of several tens of nanometers.
Claims (5)
工程１：振とう処理された線維芽細胞を培養容器に播種して第１線維芽細胞層を形成する工程、
工程２：第１線維芽細胞層上にコラーゲンIVを添加し、次いで血管内皮細胞を播種して培養し、第１線維芽細胞層の上に血管様構造層を形成する工程
工程３：振とう処理された線維芽細胞をVEGF及びFGFとともに血管様構造層上に播種し、血管様構造層から上方に血管様構造が伸びた第２線維芽細胞層を形成する工程。 A method for producing a three-dimensional cell culture having a microvessel-like structure, including the following steps 1 to 3 Step 1: seeding the shake-treated fibroblasts into a culture vessel to form a first fibroblast layer Process,
Step 2: adding collagen IV on the first fibroblast layer, then seeding and culturing vascular endothelial cells, and forming a vascular-like structural layer on the first fibroblast layer Step 3: shaking Disseminating the treated fibroblasts together with VEGF and FGF on the blood vessel-like structure layer to form a second fibroblast layer having a blood vessel-like structure extending upward from the blood vessel-like structure layer.
工程４：第２線維芽細胞層上に血管内皮細胞を播種して培養し、血管様構造層から上方に伸びた血管様構造の開口を備えた血管内皮層を形成する工程。 The method for producing a three-dimensional cell culture according to claim 1, further comprising the following step 4: Step 4: Seeding and culturing vascular endothelial cells on the second fibroblast cell layer, and raising the vascular endothelial cells upward from the vascular-like structure layer Forming a vascular endothelial layer with openings of elongated vascular-like structures.
5. The three-dimensional cell culture according to claim 3, wherein the upper layer contains VEGF and FGF.
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