JP6595215B2 - Immunochromatographic analyzer, manufacturing method thereof, and immunochromatographic analysis method - Google Patents

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Description

本発明は、免疫クロマト分析装置およびその製造方法並びに免疫クロマト分析方法に関する。   The present invention relates to an immunochromatography analyzer, a method for producing the same, and an immunochromatography analysis method.

近年、検体の前処理を行う必要の無い、免疫クロマトグラフィーによるイムノアッセイは、抗体の持つ特異的反応性を利用して、試料液中の抗原を検出する簡便な体外診断キットもしくは携帯用診断装置として重要性が高まっている。特に、ウィルスや細菌等の病原体検査キットは、一般の病院やクリニックでも汎用されている身近な免疫クロマト分析装置である。   In recent years, immunochromatographic immunoassays that do not require pretreatment of specimens have been used as simple in-vitro diagnostic kits or portable diagnostic devices that detect antigens in sample solutions using the specific reactivity of antibodies. The importance is increasing. In particular, pathogen testing kits such as viruses and bacteria are familiar immunochromatographic analyzers widely used in general hospitals and clinics.

従来の免疫クロマト分析装置の最も簡単な構造としては、試料添加部、標識物質保持部、検出部が担持されたクロマトグラフ媒体部、および検出部を通過した液体を吸収する吸収部が相互に繋がった構造である。   The simplest structure of a conventional immunochromatography analyzer is that a sample addition unit, a labeling substance holding unit, a chromatographic medium unit carrying a detection unit, and an absorption unit that absorbs liquid that has passed through the detection unit are interconnected. Structure.

このような免疫クロマト分析装置に対し、現在ではインフルエンザウイルスのような微量な抗原を検出するために、高感度化が求められている。
例えば、非特異的な抗原抗体反応を防ぐため、BSA、カゼイン、ゼラチン、哺乳動物IgG等のタンパク質を検体希釈液や展開液に添加する方法や、検体を、ステロイド骨格を持つ界面活性剤溶液で展開し、その後標識物質を増幅する方法(特許文献1)や、被験物質と該被験物質に対する第一の抗体で修飾した標識物質とを含む溶液を多孔性担体上で特定の速度で展開する方法(特許文献2)等が提案されている。
しかし、従来の免疫クロマト分析装置では、要求されるレベルにまで被検出物質の検出感度を高めることはできなかった。
For such an immunochromatography analyzer, high sensitivity is currently required in order to detect a trace amount of antigen such as influenza virus.
For example, in order to prevent non-specific antigen-antibody reaction, a method of adding a protein such as BSA, casein, gelatin, or mammalian IgG to a sample diluent or a developing solution, or a sample with a surfactant solution having a steroid skeleton A method of developing and then amplifying a labeled substance (Patent Document 1), or a method of developing a solution containing a test substance and a labeled substance modified with a first antibody against the test substance on a porous carrier at a specific rate (Patent Document 2) and the like have been proposed.
However, the conventional immunochromatography analyzer cannot increase the detection sensitivity of the substance to be detected to the required level.

特開2012−211849号公報JP 2012-211849 A 特開2008−197038号公報JP 2008-197038 A

したがって、本発明の目的は、被検出物質の検出感度を著しく高めることのできる、免疫クロマト分析装置およびその製造方法並びに免疫クロマト分析方法を提供することにある。   Accordingly, an object of the present invention is to provide an immunochromatography analyzer, a method for producing the same, and an immunochromatography method that can significantly increase the detection sensitivity of a substance to be detected.

本発明は、以下の通りである。
1.検体を添加する試料添加部と、前記検体に含まれる被検出物質を認識する標識物質を保持する標識物質保持部と、前記被検出物質を検出する検出部が担持されたクロマトグラフ媒体部とを順次含む免疫クロマト分析装置において、
前記クロマトグラフ媒体部における前記検出部が、非プロトン性極性溶媒および前記被検出物質と特異的に反応する抗体を少なくとも含む塗布液を、クロマトグラフ媒体部上に塗布して形成されてなることを特徴とする免疫クロマト分析装置。
2.前記非プロトン性極性溶媒が、ジメチルスルホキシド(DMSO)であることを特徴とする前記1に記載の免疫クロマト分析装置。
3.前記塗布液における前記非プロトン性極性溶媒の濃度が、0.02〜0.4容量%であることを特徴とする前記1または2に記載の免疫クロマト分析装置。
4.前記クロマトグラフ媒体部が、ニトロセルロースまたは酢酸セルロースを含むことを特徴とする前記1〜3のいずれか1に記載の免疫クロマト分析装置。
5.検体を添加する試料添加部と、前記検体に含まれる被検出物質を認識する標識物質を保持する標識物質保持部と、前記被検出物質を検出する検出部が担持されたクロマトグラフ媒体部とを順次含む免疫クロマト分析装置の製造方法において、
前記クロマトグラフ媒体部における前記検出部が、非プロトン性極性溶媒および前記被検出物質と特異的に反応する抗体を少なくとも含む塗布液を、クロマトグラフ媒体部上に塗布して形成されることを特徴とする免疫クロマト分析装置の製造方法。
6.前記非プロトン性極性溶媒が、ジメチルスルホキシド(DMSO)であることを特徴とする前記5に記載の免疫クロマト分析装置の製造方法。
7.前記塗布液における前記前記非プロトン性極性溶媒の濃度が、0.02〜0.4容量%であることを特徴とする前記5または6に記載の免疫クロマト分析装置の製造方法。
8.前記クロマトグラフ媒体部が、ニトロセルロースまたは酢酸セルロースを含むことを特徴とする前記5〜7のいずれか1に記載の免疫クロマト分析装置の製造方法。
9.前記1〜4のいずれか1に記載の免疫クロマト分析装置を用い、下記工程(1)〜(4)を順次実施することを特徴とする、免疫クロマト分析方法。
(1)前記検体を試料添加部に添加する工程
(2)前記標識物質保持部に保持されている標識物質により前記検体に含まれる被検出物質を認識させる工程
(3)前記検体および標識物質を移動相としてクロマトグラフ媒体部に展開させる工程
(4)展開された移動相中の被検出物質を検出部で検出する工程
The present invention is as follows.
1. A sample addition unit for adding a sample, a labeling substance holding unit for holding a labeling substance for recognizing a detection substance contained in the sample, and a chromatographic medium part on which a detection unit for detecting the detection substance is supported In the immunochromatography analyzer including sequentially,
The detection part in the chromatographic medium part is formed by applying a coating liquid containing at least an aprotic polar solvent and an antibody that specifically reacts with the substance to be detected on the chromatographic medium part. A characteristic immunochromatographic analyzer.
2. 2. The immunochromatographic analyzer according to 1 above, wherein the aprotic polar solvent is dimethyl sulfoxide (DMSO).
3. 3. The immunochromatographic analyzer according to 1 or 2 above, wherein the concentration of the aprotic polar solvent in the coating solution is 0.02 to 0.4% by volume.
4). 4. The immunochromatographic analyzer according to any one of 1 to 3, wherein the chromatographic medium part includes nitrocellulose or cellulose acetate.
5). A sample addition unit for adding a sample, a labeling substance holding unit for holding a labeling substance for recognizing a detection substance contained in the sample, and a chromatographic medium part on which a detection unit for detecting the detection substance is supported In the manufacturing method of the immunochromatography analyzer including sequentially,
The detection part in the chromatographic medium part is formed by applying a coating liquid containing at least an aprotic polar solvent and an antibody that specifically reacts with the substance to be detected on the chromatographic medium part. A method for producing an immunochromatographic analyzer.
6). 6. The method for producing an immunochromatographic analyzer according to 5 above, wherein the aprotic polar solvent is dimethyl sulfoxide (DMSO).
7). 7. The method for producing an immunochromatographic analyzer according to 5 or 6, wherein the concentration of the aprotic polar solvent in the coating solution is 0.02 to 0.4% by volume.
8). 8. The method for producing an immunochromatographic analyzer according to any one of 5 to 7, wherein the chromatographic medium part contains nitrocellulose or cellulose acetate.
9. The immunochromatography analysis method according to any one of 1 to 4 above, wherein the following steps (1) to (4) are sequentially performed.
(1) A step of adding the sample to the sample addition unit (2) A step of recognizing a substance to be detected contained in the sample by a labeling substance held in the labeling substance holding unit (3) A sample and a labeling substance (4) A step of detecting a substance to be detected in the developed mobile phase by a detection unit.

本発明によれば、非プロトン性極性溶媒が抗体の疎水性部分(例えばFc領域)と相互作用し、クロマトグラフ媒体部上での抗体の凝集を抑制することにより、被検出物質の存在に基づいて発せられる信号とノイズの比であるSN比が向上し、被検出物質の検出感度が著しく高まる。   According to the present invention, the aprotic polar solvent interacts with the hydrophobic portion (for example, Fc region) of the antibody and suppresses the aggregation of the antibody on the chromatographic medium portion, thereby being based on the presence of the substance to be detected. The signal-to-noise ratio, which is the ratio of the signal and noise emitted, is improved, and the detection sensitivity of the substance to be detected is significantly increased.

免疫クロマト分析装置の構造を説明するための断面図である。It is sectional drawing for demonstrating the structure of an immunochromatography analyzer.

以下に、本発明を実施するための形態を説明する。   Below, the form for implementing this invention is demonstrated.

本発明の免疫クロマト分析装置およびその製造方法は、検体を添加する試料添加部と、前記検体に含まれる被検出物質を認識する標識物質を保持する標識物質保持部と、前記被検出物質を検出する検出部が担持されたクロマトグラフ媒体部と、必要に応じて前記検出部を通過した液体を吸収する吸収部とを順次備え、前記クロマトグラフ媒体部における前記検出部が、非プロトン性極性溶媒および前記被検出物質と特異的に反応する抗体を少なくとも含む塗布液を、クロマトグラフ媒体部上に塗布して形成されることを特徴としている。
以下、図面を参照しながら本発明の免疫クロマト分析装置およびその製造方法の一実施形態について説明する。
The immunochromatography analyzer of the present invention and the manufacturing method thereof include a sample addition unit for adding a sample, a labeling substance holding unit for holding a labeling substance that recognizes a target substance contained in the sample, and detecting the target substance A chromatographic medium part on which the detection part is supported, and an absorption part that absorbs the liquid that has passed through the detection part if necessary, and the detection part in the chromatographic medium part is an aprotic polar solvent And a coating solution containing at least an antibody that specifically reacts with the substance to be detected is formed on the chromatographic medium part.
Hereinafter, an embodiment of an immunochromatography analyzer of the present invention and a manufacturing method thereof will be described with reference to the drawings.

本発明の免疫クロマト分析装置は図1に示すように、試料添加部(サンプルパッドともいう)(1)、標識物質保持部(コンジュゲートパッドともいう)(2)、クロマトグラフ媒体部(3)、検出部(4)、吸収部(5)およびバッキングシート(6)から構成されている。   As shown in FIG. 1, the immunochromatographic analyzer of the present invention comprises a sample adding part (also called a sample pad) (1), a labeling substance holding part (also called a conjugate pad) (2), and a chromatographic medium part (3). , A detection unit (4), an absorption unit (5), and a backing sheet (6).

試料添加部(1)は、免疫クロマト分析装置において、検体(サンプル)を滴下する部位である。サンプルは、通常の免疫クロマト分析装置に使用される素材であればどのようなものでもよい。試料添加部(1)は試料を吸収保持するグラスファイバーまたはセルロースの膜が通常使用される。   A sample addition part (1) is a site | part which dripped a test substance (sample) in an immunochromatography analyzer. The sample may be any material as long as it is a material used in a normal immunochromatography analyzer. As the sample addition part (1), a glass fiber or cellulose film for absorbing and holding the sample is usually used.

標識物質保持部(2)は、あらかじめ被検出物質と結合する抗体に結合した、後述する標識物質(マーカー物質)が含有されている。標識物質保持部内を被検出物質が移動する際に抗体と結合し、標識化される。標識物質保持部(2)は、例えば、グラスファイバー不織布またはセルロース膜等からなっている。   The labeling substance holding part (2) contains a labeling substance (marker substance) to be described later that is bound to an antibody that binds to the substance to be detected in advance. When the substance to be detected moves in the labeling substance holding part, it binds to the antibody and is labeled. The labeling substance holding part (2) is made of, for example, a glass fiber nonwoven fabric or a cellulose film.

クロマトグラフ媒体部(3)は、クロマトグラフの展開部位である。クロマトグラフ媒体部(3)は、毛管現象を示す微細多孔性物質からなる不活性の膜である。クロマトグラフで使用される検出試薬、固定化試薬または被検出物質などと反応性を有しないという観点から、また、本発明の効果が向上するという観点から、例えば、ニトロセルロース製のメンブレン(以下「ニトロセルロースメンブレン」という場合がある)や、酢酸セルロース製のメンブレン(以下「酢酸セルロースメンブレン」という場合がある)が好ましく、ニトロセルロースメンブレンがさらに好ましい。なお、セルロース類メンブレン、ナイロンメンブレン及び多孔質プラスチック布類(ポリエチレン、ポリプロピレン)も使用可能である。   The chromatographic medium part (3) is a developed part of the chromatograph. The chromatographic medium part (3) is an inert film made of a microporous material that exhibits capillary action. From the viewpoint of not having reactivity with a detection reagent, an immobilization reagent or a substance to be detected used in a chromatograph, and from the viewpoint of improving the effect of the present invention, for example, a membrane made of nitrocellulose (hereinafter referred to as “ A nitrocellulose membrane ”or a cellulose acetate membrane (hereinafter sometimes referred to as“ cellulose acetate membrane ”) is preferable, and a nitrocellulose membrane is more preferable. Cellulose membranes, nylon membranes and porous plastic cloth (polyethylene, polypropylene) can also be used.

ニトロセルロースメンブレンとしては、ニトロセルロースが主体で含まれていればよく、純品またはニトロセルロース混合品などニトロセルロースを主材とするメンブレンを使用することができる。   As the nitrocellulose membrane, it is sufficient if nitrocellulose is mainly contained, and a membrane mainly composed of nitrocellulose such as a pure product or a nitrocellulose mixed product can be used.

ニトロセルロースメンブレンは、さらに毛細管現象を促進させる物質を含有させることもできる。該物質としては、膜面の表面張力を低下させ、親水性をもたらす物質が好ましい。例えば、糖類、アミノ酸の誘導体、脂肪酸エステル、各種合成界面活性剤またはアルコール等の両親媒性の作用を有する物質であって、免疫クロマトグラフ上での被検出物質の移動に影響がなく、マーカー物質(例えば金コロイドなど)の発色に影響を及ぼさない物質が好ましい。   The nitrocellulose membrane can further contain a substance that promotes capillary action. As the substance, a substance that lowers the surface tension of the film surface and brings about hydrophilicity is preferable. For example, a substance having an amphipathic action such as saccharides, amino acid derivatives, fatty acid esters, various synthetic surfactants or alcohols, which has no effect on the movement of a substance to be detected on an immunochromatograph and is a marker substance Substances that do not affect the color development (eg, gold colloid) are preferred.

ニトロセルロースメンブレンは、多孔性であって、毛細管現象を示す。この毛細管現象の指標は、吸水速度(吸水時間:capillary flow time)を測ることで確認できる。吸水速度は、検出感度と検査時間に影響する。   Nitrocellulose membranes are porous and exhibit capillary action. The index of the capillary phenomenon can be confirmed by measuring the water absorption speed (water absorption time: capillary flow time). The water absorption rate affects detection sensitivity and inspection time.

上記のようなニトロセルロースメンブレンや酢酸セルロースメンブレンに代表されるクロマトグラフ媒体部(3)の形態及び大きさは特に制限されるものではなく、実際の操作の点及び反応結果の観察の点において適切であればよい。   The form and size of the chromatographic medium part (3) represented by the above nitrocellulose membrane and cellulose acetate membrane are not particularly limited, and are appropriate in terms of actual operation and reaction results. If it is.

さらに操作をより簡便にするためには、クロマトグラフ媒体部(3)の裏面に、プラスチックなどよりなる支持体を設けることが好ましい。この支持体の性状は特に制限されるものではないが、目視判定によって測定結果の観察を行う場合には、支持体は、標識物質によりもたらされる色彩と類似しない色彩を有するものであることが好ましく、通常、無色又は白色であることが好ましい。   Furthermore, in order to make the operation easier, it is preferable to provide a support made of plastic or the like on the back surface of the chromatographic medium part (3). The properties of the support are not particularly limited, but when the measurement result is observed by visual judgment, the support preferably has a color that is not similar to the color caused by the labeling substance. Usually, it is preferably colorless or white.

検出部(4)は、前記クロマトグラフ媒体部(3)上に形成される。すなわち、被検出物質と特異的に結合する抗体が任意の位置に固定化される。
本発明では、検出部(4)が、非プロトン性極性溶媒および被検出物質と特異的に反応する抗体を少なくとも含む塗布液を、クロマトグラフ媒体部(3)上に塗布して形成されてなることを特徴としている。
The detection part (4) is formed on the chromatographic medium part (3). That is, an antibody that specifically binds to the substance to be detected is immobilized at an arbitrary position.
In the present invention, the detection part (4) is formed by applying a coating liquid containing at least an aprotic polar solvent and an antibody that specifically reacts with the substance to be detected on the chromatographic medium part (3). It is characterized by that.

非プロトン性極性溶媒としては、例えばジメチルスルホキシド、N,N−ジメチルホルムアミド、N,N−ジメチルアセトアミド、N−メチル−2−ピロリドン、アセトニトリル、プロパンニトリル、ブチロニトリル、スルホラン等が挙げられ、中でもクロマトグラフ媒体部上での抗体の凝集を抑制し、SN比を向上させるという観点から、ジメチルスルホキシド(DMSO)がとくに好ましい。   Examples of the aprotic polar solvent include dimethyl sulfoxide, N, N-dimethylformamide, N, N-dimethylacetamide, N-methyl-2-pyrrolidone, acetonitrile, propanenitrile, butyronitrile, sulfolane and the like. Dimethyl sulfoxide (DMSO) is particularly preferable from the viewpoint of suppressing aggregation of the antibody on the medium part and improving the SN ratio.

また、前記塗布液における非プロトン性極性溶媒の濃度は、0.01〜1.0容量%の範囲であることが好ましい。非プロトン性極性溶媒の濃度が0.01容量%未満では、添加量が少なすぎて本発明の効果を奏することができない。逆に1.0容量%を超えるとニトロセルロースメンブレンや酢酸セルロースメンブレンのようなクロマトグラフ媒体部を溶解してしまい好ましくない。前記塗布液における非プロトン性極性溶媒の濃度は、0.02〜0.4容量%がより好ましく、0.02〜0.3容量%がさらに好ましい。   The concentration of the aprotic polar solvent in the coating solution is preferably in the range of 0.01 to 1.0% by volume. When the concentration of the aprotic polar solvent is less than 0.01% by volume, the added amount is too small to achieve the effects of the present invention. On the contrary, if it exceeds 1.0% by volume, the chromatographic medium part such as nitrocellulose membrane or cellulose acetate membrane is dissolved, which is not preferable. The concentration of the aprotic polar solvent in the coating solution is more preferably 0.02 to 0.4% by volume, and further preferably 0.02 to 0.3% by volume.

抗体としては例えば、ポリクローナル抗体またはモノクローナル抗体が挙げられる。モノクローナル抗体およびポリクローナル抗体若しくはそのフラグメントは、公知であり、入手可能であり、公知の方法により調製することができる。
前記塗布液中の抗体の濃度は、例えば0.1mg/mL〜2mg/mLであり、0.3mg/mL〜1.5mg/mLが好ましく、0.4mg/mL〜1.2mg/mLがさらに好ましい。
Examples of antibodies include polyclonal antibodies and monoclonal antibodies. Monoclonal antibodies and polyclonal antibodies or fragments thereof are known and available, and can be prepared by known methods.
The concentration of the antibody in the coating solution is, for example, 0.1 mg / mL to 2 mg / mL, preferably 0.3 mg / mL to 1.5 mg / mL, and further 0.4 mg / mL to 1.2 mg / mL. preferable.

また前記塗布液において、前記各成分以外に通常使用される成分としては、例えば、各種緩衝液、アルコール類、糖類、アミノ酸類、たんぱく質、水溶性の合成高分子等が挙げられる。   In the coating solution, components that are usually used in addition to the above components include various buffer solutions, alcohols, sugars, amino acids, proteins, water-soluble synthetic polymers, and the like.

前記塗布液を、クロマトグラフ媒体部(3)上に塗布する方法としては、インクジェット印刷法、スポット法等の公知の方法が挙げられる。また塗布された検出部の形状はとくに限定されないが、円形のスポット、クロマトグラフ媒体部(3)の展開方向に対し垂直にのびるライン、数字、文字または+、−などの記号等の形状が挙げられる。また塗布量としても公知のものと同等とすることができる。   Examples of a method for applying the coating solution on the chromatographic medium part (3) include known methods such as an ink jet printing method and a spot method. Moreover, the shape of the applied detection part is not particularly limited, but examples include a circular spot, a line extending perpendicularly to the developing direction of the chromatographic medium part (3), a number, a character, or a symbol such as +,-. It is done. Also, the coating amount can be equivalent to a known one.

またクロマトグラフ媒体部(3)上に前記塗布液を塗布した後、非特異的な吸着により分析の精度が低下することを防止するため、必要に応じて、クロマトグラフ媒体部(3)に、公知の方法でブロッキング処理を行うことができる。一般にブロッキング処理はウシ血清アルブミン、スキムミルク、カゼインまたはゼラチン等の蛋白質が好適に用いられる。かかるブロッキング処理後に、必要に応じて、例えば、Tween20、TritonX−100またはSDS等の界面活性剤を1つ又は2つ以上組み合わせて洗浄してもよい。   In addition, after applying the coating liquid on the chromatographic medium part (3), in order to prevent the accuracy of analysis from being reduced due to non-specific adsorption, The blocking process can be performed by a known method. In general, proteins such as bovine serum albumin, skim milk, casein or gelatin are preferably used for the blocking treatment. After such blocking treatment, if necessary, for example, one or a combination of two or more surfactants such as Tween 20, Triton X-100, or SDS may be washed.

吸収部(5)は、クロマトグラフ媒体部(3)の末端に、検出部(4)を通過した検体や展開液等の液体を吸収させるために必要に応じて設置される。本発明の免疫クロマト分析装置において、吸収部(5)は例えばグラスファイバーからなることができる。吸収部(5)がグラスファイバーからなることによって、試料液の液戻りを大幅に低減することができる。   The absorption section (5) is installed at the end of the chromatographic medium section (3) as necessary to absorb the liquid such as the specimen and the developing solution that has passed through the detection section (4). In the immunochromatography analyzer of the present invention, the absorption part (5) can be made of glass fiber, for example. When the absorption part (5) is made of glass fiber, the return of the sample liquid can be greatly reduced.

バッキングシート(6)は、基材である。片面に粘着剤を塗布したり、粘着テープを貼り付けることにより、片面が粘着性を有し、該粘着面上に試料添加部(1)、標識物質保持部(2)、クロマトグラフ媒体部(3)、検出部(4)、および吸収部(5)の一部または全部が密着して設けられている。バッキングシート(6)は、粘着剤によって試料液に対して不透過性、非透湿性となるようなものであれば、基材としては、特に限定されない。   The backing sheet (6) is a base material. By applying an adhesive on one side or sticking an adhesive tape, one side has adhesiveness, and the sample addition part (1), labeling substance holding part (2), chromatographic medium part ( 3) A part or all of the detection unit (4) and the absorption unit (5) are provided in close contact with each other. The backing sheet (6) is not particularly limited as long as the backing sheet (6) becomes impermeable and impermeable to the sample solution by the adhesive.

上記のようにして作製した免疫クロマト分析装置は、製品化する前に、通常乾燥処理に施される。乾燥温度は例えば20〜50℃、乾燥時間は0.5〜1時間である。非プロトン性極性溶媒、例えばジメチルスルホキシド(DMSO)は、上記乾燥条件により、検出部(4)中、例えば1キットあたり0.01〜0.5μg/キット質量%残存する。   The immunochromatographic analyzer produced as described above is usually subjected to a drying treatment before commercialization. The drying temperature is, for example, 20 to 50 ° C., and the drying time is 0.5 to 1 hour. An aprotic polar solvent, such as dimethyl sulfoxide (DMSO), remains in the detection part (4), for example, 0.01 to 0.5 μg / kit mass% per kit under the above drying conditions.

本発明の免疫クロマト分析方法は以下の工程(1)〜(4)を含み、上記の免疫クロマト分析装置を用いて検体に含まれる被検出物質を検出する。
(1)前記検体を試料添加部に添加する工程
(2)前記標識物質保持部に保持されている標識物質により前記検体に含まれる被検出物質を認識させる工程
(3)前記検体および標識物質を移動相としてクロマトグラフ媒体部に展開させる工程
(4)展開された移動相中の被検出物質を検出部で検出する工程
各工程について以下に説明する。
The immunochromatographic analysis method of the present invention includes the following steps (1) to (4), and detects a substance to be detected contained in a specimen using the above immunochromatographic analyzer.
(1) A step of adding the sample to the sample addition unit (2) A step of recognizing a substance to be detected contained in the sample by a labeling substance held in the labeling substance holding unit (3) A sample and a labeling substance Step of developing the chromatographic medium portion as a mobile phase (4) Step of detecting a substance to be detected in the developed mobile phase by the detection portion Each step will be described below.

(1)検体を試料添加部に添加する工程
工程(1)では、第1に、検体を、測定精度を低下させることなく、免疫クロマトグラフ媒体中をスムーズに移動する程度の濃度に検体希釈液で調整または希釈して検体含有液とするのが好ましい。第2に、該検体含有液を試料添加部(1)上に、所定量(通常、0.1〜2ml)滴下する。検体含有液が滴下されると、検体含有液は試料添加部(1)中で移動を開始する。
(1) Step of adding sample to sample adding portion In step (1), first, the sample diluent is adjusted to a concentration that allows the sample to move smoothly through the immunochromatographic medium without reducing measurement accuracy. It is preferable to prepare or dilute the sample-containing solution by adjusting or dilution with Secondly, a predetermined amount (usually 0.1 to 2 ml) of the specimen-containing liquid is dropped onto the sample addition part (1). When the specimen-containing liquid is dropped, the specimen-containing liquid starts to move in the sample addition part (1).

検体希釈液は、また展開液としても使用することができるものであるが、通常、溶媒として水を用い、これに緩衝液、塩、および非イオン界面活性剤、さらに、例えば抗原抗体反応の促進あるいは非特異的反応を抑制するための蛋白質、高分子化合物(PVP等)、イオン性界面活性剤又はポリアニオン、あるいは、抗菌剤、キレート剤等々の1種もしくは2種以上を加えてもよい。展開液として用いる場合には、検体と展開液を予め混合したものを、試料添加部上に供給・滴下して展開させることもできるし、先に検体を試料添加部上に供給・滴下した後、展開液を試料添加部上に供給・滴下して展開させてもよい。   The sample diluent can also be used as a developing solution, but usually water is used as a solvent, and a buffer solution, a salt, and a nonionic surfactant, and further, for example, an antigen-antibody reaction is promoted. Or you may add 1 type, or 2 or more types, such as a protein for suppressing a nonspecific reaction, high molecular compounds (PVP etc.), an ionic surfactant, or a polyanion, or an antibacterial agent, a chelating agent. When used as a developing solution, a sample and developing solution mixed in advance can be supplied and dropped onto the sample addition unit, or developed, or after the sample is first supplied and dropped onto the sample addition unit. Alternatively, the developing solution may be supplied and dropped on the sample addition unit to be developed.

被検出物質を含む検体としては、例えば、生体試料、即ち、全血、血清、血漿、尿、唾液、喀痰、鼻腔又は咽頭拭い液、髄液、羊水、乳頭分泌液、涙、汗、皮膚からの浸出液、組織や細胞及び便からの抽出液等の他、牛乳、卵、小麦、豆、牛肉、豚肉、鶏肉などやそれらを含む食品等の抽出液等が挙げられる。   Samples containing the substance to be detected include, for example, biological samples, that is, whole blood, serum, plasma, urine, saliva, sputum, nasal cavity or throat wipe, cerebrospinal fluid, amniotic fluid, nipple discharge, tears, sweat, skin As well as extracts from milk, eggs, wheat, beans, beef, pork, chicken, and foods containing them, and the like.

具体的な被検出物質としては、例えば、癌胎児性抗原(CEA)、HER2タンパク、前立腺特異抗原(PSA)、CA19−9、α−フェトプロテイン(AFP)、免疫抑制酸性タンパク(IPA)、CA15−3、CA125、エストロゲンレセプター、プロゲステロンレセプター、便潜血、トロポニンI、トロポニンT、CK−MB、CRP、ヒト絨毛性ゴナドトロピン(hCG)、黄体形成ホルモン(LH)、卵胞刺激ホルモン(FSH)、梅毒抗体、インフルエンザウイルス、ヒトヘモグロビン、クラミジア抗原、A群β溶連菌抗原、HBs抗体、HBs抗原、ロタウイルス、アデノウイルス、アルブミンまたは糖化アルブミン等が挙げられるが、これらに限定されるものではない。   Specific examples of the substance to be detected include carcinoembryonic antigen (CEA), HER2 protein, prostate specific antigen (PSA), CA19-9, α-fetoprotein (AFP), immunosuppressive acidic protein (IPA), CA15- 3, CA125, estrogen receptor, progesterone receptor, fecal occult blood, troponin I, troponin T, CK-MB, CRP, human chorionic gonadotropin (hCG), luteinizing hormone (LH), follicle stimulating hormone (FSH), syphilis antibody, Examples include, but are not limited to, influenza virus, human hemoglobin, chlamydia antigen, group A β-streptococcal antigen, HBs antibody, HBs antigen, rotavirus, adenovirus, albumin or glycated albumin.

(2)標識物質保持部に保持されている標識物質により検体に含まれる被検出物質を認識させる工程
工程(2)は、工程(1)において試料添加部に添加された検体含有液を、標識物質保持部(2)へと移動させ、標識物質保持部に保持されている標識物質により検体中の被検出物質を認識させる工程である。
(2) The step of recognizing the substance to be detected contained in the specimen by the labeling substance held in the labeling substance holding part In the process (2), the specimen-containing liquid added to the sample addition part in the step (1) is labeled In this step, the substance to be detected is detected in the specimen by the labeling substance held in the labeling substance holding part by moving to the substance holding part (2).

標識物質は抗体を標識化する。免疫クロマトグラフ法における検出試薬の標識には、一般に酵素等も使用されるが、被検出物質の存在を目視で判定するのに適していることから、標識物質としては不溶性担体を用いることが好ましい。抗体を不溶性担体に感作することにより標識化した検出試薬を調製することができる。なお、抗体を不溶性担体に感作する手段は、公知の方法に従えばよい。   The labeling substance labels the antibody. Generally, an enzyme or the like is used for labeling the detection reagent in the immunochromatography method. However, since it is suitable for visually determining the presence of the substance to be detected, it is preferable to use an insoluble carrier as the labeling substance. . A labeled detection reagent can be prepared by sensitizing the antibody to an insoluble carrier. The means for sensitizing the antibody to the insoluble carrier may be in accordance with a known method.

標識物質としての不溶性担体には、金、銀もしくは白金のようなコロイド状金属粒子、酸化鉄のようなコロイド状金属酸化物粒子、硫黄などのコロイド状非金属粒子及び合成高分子よりなるラテックス粒子、またはその他を用いることができる。特に金コロイドが、検出が簡便で好ましい。金コロイドの粒子の平均粒径は、例えば10nm〜250nm、好ましくは35nm〜120nmである。平均粒径は、透過型電子顕微鏡(TEM:日本電子(株)製、JEM−2010)により、撮影した投影写真を用いて無造作に100個の粒子を粒子の投影面積円相当径を計測し、その平均値から算出することができる。   Insoluble carriers as labeling substances include colloidal metal particles such as gold, silver or platinum, colloidal metal oxide particles such as iron oxide, colloidal nonmetal particles such as sulfur, and latex particles composed of synthetic polymers. Or others can be used. In particular, colloidal gold is preferable because it is easy to detect. The average particle diameter of the colloidal gold particles is, for example, 10 nm to 250 nm, preferably 35 nm to 120 nm. The average particle diameter was measured with a transmission electron microscope (TEM: manufactured by JEOL Ltd., JEM-2010), and the projected area circle equivalent diameter of 100 particles was measured randomly using the photographed projection photograph. It can be calculated from the average value.

不溶性担体は、被検出物質の存在を視覚的に判定するのに適した標識物質であり、目視による判定を容易にするためには有色であることが好ましい。コロイド状金属粒子及びコロイド状金属酸化物粒子は、それ自体が粒径に応じた特定の自然色を呈するものであり、その色彩を標識として利用することができる。   The insoluble carrier is a labeling substance suitable for visually determining the presence of the substance to be detected, and is preferably colored in order to facilitate the visual determination. The colloidal metal particles and the colloidal metal oxide particles themselves exhibit a specific natural color corresponding to the particle diameter, and the color can be used as a label.

(3)検体および標識物質を移動相としてクロマトグラフ媒体部に展開させる工程
工程(3)は、工程(2)において被検出物質が標識物質保持部において標識物質に認識された後、検体および標識物質を、クロマトグラフ媒体部上を移動相として通過させる工程である。
(3) Step of developing a sample and a labeling substance as a mobile phase in the chromatographic medium part Step (3) is a step in which the substance to be detected is recognized after the substance to be detected is recognized by the labeling substance in the labeling substance holding part in step (2). In this step, the substance is passed through the chromatographic medium as a mobile phase.

(4)展開された移動相中の被検出物質を検出部で検出する工程
工程(4)は、クロマトグラフ媒体部上を移動相として通過した検体中の被検出物質が、抗原・抗体の特異的結合反応により、検出部に保持、即ち、担持固定されている抗体と標識試薬とによってサンドイッチ状に挟まれるように特異的に反応結合して、検出部が着色する工程である。
(4) A step of detecting a substance to be detected in the developed mobile phase by the detection unit Step (4) is a step in which the substance to be detected in the specimen that has passed as a mobile phase on the chromatographic medium part is a specific antigen / antibody. This is a step in which the detection part is colored by specific reaction and binding so as to be sandwiched between the antibody and the labeling reagent that are held or immobilized on the detection part by the target binding reaction.

被検出物質が存在しない場合には、試料の水分に溶解した標識試薬は、クロマトグラフ媒体部上の検出部を通過しても特異的結合反応が起こらないので、検出部が着色しない。
本発明では、前記塗布液に含まれる非プロトン性極性溶媒が抗体の疎水性部分(例えばFc領域)と相互作用し、ニトロセルロースメンブレンや酢酸セルロースメンブレンのようなクロマトグラフ媒体部上で抗体の凝集が抑制され、被検出物質の存在に基づいて発せられる信号とノイズの比であるSN比が向上し、被検出物質の検出感度が著しく高まる。
When the substance to be detected does not exist, the labeling reagent dissolved in the moisture of the sample does not cause a specific binding reaction even when it passes through the detection part on the chromatographic medium part, so that the detection part is not colored.
In the present invention, the aprotic polar solvent contained in the coating solution interacts with the hydrophobic part (for example, Fc region) of the antibody, and the antibody aggregates on a chromatographic medium part such as a nitrocellulose membrane or a cellulose acetate membrane. Is suppressed, the signal-to-noise ratio, which is a ratio of a signal and noise generated based on the presence of the substance to be detected, is improved, and the detection sensitivity of the substance to be detected is significantly increased.

最後に、検体含有液の水分は、吸収部(5)へと移動する。   Finally, the moisture in the specimen-containing liquid moves to the absorption part (5).

以下、本発明を実施例によりさらに説明するが、本発明は下記例に制限されるものではない。   EXAMPLES Hereinafter, although an Example demonstrates this invention further, this invention is not restrict | limited to the following example.

(1)試料添加部の作製
試料添加部としてグラスファイバーからなる不織布(ミリポア社製:300mm×30mm)を用いた。
(2)標識物質保持部の作製
金コロイド懸濁液(田中貴金属工業社製:LC40nm)0.5mlに、リン酸緩衝液(pH7.4)で0.05mg/mlの濃度になるように希釈したマウス由来抗インフルエンザAモノクローナル抗体(第二抗体)を0.1ml加え、室温で10分間静置した。
次いで、1質量%の牛血清アルブミン(BSA)を含むリン酸緩衝液(pH7.4)を0.1ml加え、更に室温で10分間静置した。その後、十分撹拌した後、8000×gで15分間遠心分離を行い、上清を除去した後、1質量%のBSAを含むリン酸緩衝液(pH7.4)を0.1ml加えた。以上の手順で標識物質溶液を作製した。
上記作製した標識物質溶液300μLに300μLの10質量%トレハロース水溶液と1.8mLの蒸留水を加えたものを15mm×300mmのグラスファイバーパッド(ミリポア社製)に均一になるように添加した後、真空乾燥機にて乾燥させ、標識物質保持部を作製した。
(1) Preparation of sample addition part The nonwoven fabric (Millipore company_made: 300 mm x 30 mm) which consists of glass fiber was used as a sample addition part.
(2) Preparation of labeling substance holding part 0.5 ml of colloidal gold suspension (Tanaka Kikinzoku Kogyo Co., Ltd .: LC 40 nm) diluted with phosphate buffer (pH 7.4) to a concentration of 0.05 mg / ml 0.1 ml of the mouse-derived anti-influenza A monoclonal antibody (second antibody) was added and allowed to stand at room temperature for 10 minutes.
Next, 0.1 ml of a phosphate buffer (pH 7.4) containing 1% by weight of bovine serum albumin (BSA) was added, and the mixture was allowed to stand at room temperature for 10 minutes. Then, after sufficiently stirring, centrifugation was performed at 8000 × g for 15 minutes to remove the supernatant, and 0.1 ml of a phosphate buffer solution (pH 7.4) containing 1% by mass of BSA was added. The labeling substance solution was prepared by the above procedure.
After adding 300 μL of a 10% by mass trehalose aqueous solution and 1.8 mL of distilled water to 300 μL of the prepared labeling substance solution to a 15 mm × 300 mm glass fiber pad (Millipore), vacuum is added. The labeling substance holding part was produced by drying with a dryer.

(3)クロマトグラフ媒体部および検出部の作製
メンブレンとしてニトロセルロースからなるシート(ミリポア社製、商品名:HF120、300mm×25mm)を用いた。
次に、5質量%のイソプロピルアルコールを含むリン酸緩衝液(pH7.4)で1.0mg/mlの濃度になるようにマウス由来抗インフルエンザAモノクローナル抗体(第一抗体)を希釈した溶液150μLを、乾燥されたメンブレン上の検出部位(検出ライン)に1mmの幅でイムノクロマト用ディスペンサー「XYZ3050」(BIODOT社製)を用いて1μL/mmの量(1シートあたり25μL)でライン状に塗布した。なお該溶液としては、表1に示すジメチルスルホキシド(DMSO)濃度を有する複数の溶液を準備した。
また、金ナノ粒子標識試薬の展開の有無や展開速度を確認するために検出部位の下流に、金ナノ粒子標識物質や被検出物質である動物肉タンパク質などと広く親和性を有するヤギ由来抗血清をリン酸緩衝液(pH7.4)で希釈した液をコントロール部位(コントロールライン)に塗布した。その後、50℃で30分間乾燥させ、室温で一晩乾燥させ、クロマトグラフ媒体部および検出部を作製した。
(3) Preparation of chromatographic medium part and detection part As a membrane, a sheet made of nitrocellulose (manufactured by Millipore, trade name: HF120, 300 mm × 25 mm) was used.
Next, 150 μL of a solution obtained by diluting a mouse-derived anti-influenza A monoclonal antibody (first antibody) with a phosphate buffer solution (pH 7.4) containing 5% by mass of isopropyl alcohol so as to have a concentration of 1.0 mg / ml was obtained. Then, a detection site (detection line) on the dried membrane was applied in a line shape with an amount of 1 μL / mm (25 μL per sheet) using an immunochromatographic dispenser “XYZ3050” (manufactured by BIODOT) with a width of 1 mm. As the solution, a plurality of solutions having dimethyl sulfoxide (DMSO) concentrations shown in Table 1 were prepared.
In addition, in order to confirm the presence / absence and development speed of the gold nanoparticle labeling reagent, the goat-derived antiserum having a wide affinity for the gold nanoparticle labeling substance or animal meat protein as the detection substance downstream of the detection site Was diluted with a phosphate buffer (pH 7.4) and applied to a control site (control line). Then, it was dried at 50 ° C. for 30 minutes and dried overnight at room temperature to prepare a chromatographic medium part and a detection part.

(4)免疫クロマト分析装置の作成
次に、バッキングシートから成る基材に、試料添加部、標識物質保持部、検出部が担持されたクロマトグラフ媒体部、展開した試料や標識物質を吸収するための吸収部としてグラスファイバー製の不織布を順次貼り合わせた。そして、裁断機で幅が5mmとなるように裁断し、免疫クロマト分析装置とした。なお、標識物質保持部およびインキュベーション部の試料展開方向の長さをそれぞれ8mmとした。
(4) Preparation of immunochromatographic analyzer Next, in order to absorb the sample addition part, the labeling substance holding part, the chromatographic medium part carrying the detection part, the developed sample and the labeling substance on the base material composed of a backing sheet Glass fiber non-woven fabrics were sequentially bonded together as an absorbent part. And it cut | judged so that a width | variety might be set to 5 mm with the cutter, and it was set as the immunochromatography analyzer. The length of the labeling substance holding part and the incubation part in the sample development direction was 8 mm.

(5)検体希釈液
1質量%の非イオン界面活性剤(日油株式会社製、商品名:MN811とナカライテスク社製、商品名NP−40の1:1混合物)、80mMの塩化カリウム、20mMのグアニジン塩酸塩、0.4重量%のポリビニルピロリドン(平均分子量36万)を含む50mMのHEPES緩衝液(pH7.5)を調製し、検体を希釈処理するための試薬とした。
(5) Sample diluent 1% by mass of nonionic surfactant (manufactured by NOF Corporation, trade name: MN811 and Nacalai Tesque, trade name NP-40, 1: 1 mixture), 80 mM potassium chloride, 20 mM A 50 mM HEPES buffer solution (pH 7.5) containing 0.4% by weight of guanidine hydrochloride and 0.4% by weight of polyvinylpyrrolidone (average molecular weight of 360,000) was prepared as a reagent for subjecting the specimen to dilution treatment.

(6)測定
上記作製した免疫クロマト分析装置を用いて、以下の方法で試料中のインフルエンザAウィルスの存在の有無を測定した。即ち、吸引トラップの片方の管を吸引ポンプに、もう片方の管をインフルエンザに感染していない人の鼻腔の奥部まで挿入し、吸引ポンプを陰圧にして鼻汁を採取した。採取した鼻汁を上記検体希釈液で20倍に希釈し、これを陰性検体試料とした。また、陰性検体試料に、蛋白濃度が50ng/mLとなるように市販の不活化インフルエンザAウィルスを加えたものを陽性検体試料とした。
(6) Measurement The presence or absence of influenza A virus in the sample was measured by the following method using the prepared immunochromatography analyzer. That is, one tube of the suction trap was inserted into the suction pump, and the other tube was inserted into the back of the nasal cavity of a person who was not infected with influenza, and the suction pump was set to negative pressure to collect nasal discharge. The collected nasal discharge was diluted 20 times with the above-mentioned sample diluent, and this was used as a negative sample sample. Moreover, what added the commercially available inactivated influenza A virus so that protein concentration might be set to 50 ng / mL to the negative sample sample was made into the positive sample sample.

陰性検体試料、陽性検体試料とも150μLを免疫クロマト分析装置の試料添加部上に載せて展開させ、表1に示す各経過時間後に、検出部の着色の度合い(発色強度)をデンシトメーターにより測定した(表中の単位はmAbs)。結果を表1に示す。なお、試料数は3とした(No.1〜3)。   150 μL of both the negative sample sample and the positive sample sample are placed on the sample addition part of the immunochromatography analyzer and developed, and after each elapsed time shown in Table 1, the degree of coloring (color intensity) of the detection part is measured with a densitometer (The unit in the table is mAbs). The results are shown in Table 1. The number of samples was 3 (No. 1 to 3).

Figure 0006595215
Figure 0006595215

表1において、まず陰性検体試料の結果を参照すると、DMSOを添加していない試料は、試験開始後15分経過後および30分経過後で発色のノイズが観察されたが、DMSOを0.02〜0.40容量%の範囲で添加した試料は、ノイズの発生が大幅に減少した。
また、陽性検体試料と陰性検体試料の結果から下記式によりSN比を算出すると、DMSOを0.02〜0.40容量%の範囲で添加した試料は、SN比が向上しており、被検出物質の検出感度が著しく高まることが示唆された。さらに、陽性検体の15分経過後の測定バラツキ(SD:標準偏差)も、DMSOを0.02〜0.40容量%の範囲で添加した試料において大幅に低下している。これらの効果は、検出部の抗体塗布時に非プロトン性極性溶媒を加えることで、固相に固定化された検出部抗体の配向性が良化するため、非特異的反応および測定バラツキの抑制、特異的反応の増大が得られていると考えられる。
SN比=陽性検体試料15分経過後の発色強度/陰性検体試料30分経過後の発色強度
In Table 1, first, referring to the result of the negative specimen sample, in the sample to which DMSO was not added, colored noise was observed after 15 minutes and 30 minutes from the start of the test. In the sample added in the range of ˜0.40% by volume, the generation of noise was greatly reduced.
In addition, when the S / N ratio is calculated from the results of the positive specimen sample and the negative specimen sample by the following formula, the S / N ratio is improved in the sample to which DMSO is added in the range of 0.02 to 0.40% by volume. It was suggested that the detection sensitivity of the substance was remarkably increased. Furthermore, the measurement variation (SD: standard deviation) after the lapse of 15 minutes for the positive sample is also greatly reduced in the sample to which DMSO was added in the range of 0.02 to 0.40 vol%. These effects are obtained by adding an aprotic polar solvent when the antibody is applied to the detection unit, so that the orientation of the detection unit antibody immobilized on the solid phase is improved, thereby suppressing nonspecific reactions and measurement variations. It is considered that an increase in specific reaction has been obtained.
SN ratio = color intensity after 15 minutes of positive sample / color intensity after 30 minutes of negative sample

1 試料添加部(サンプルパッド)
2 標識物質保持部
3 クロマトグラフ媒体部
4 検出部
5 吸収部
6 バッキングシート
1 Sample addition part (sample pad)
2 Labeling substance holding part 3 Chromatographic medium part 4 Detection part 5 Absorption part 6 Backing sheet

Claims (5)

検体を添加する試料添加部と、前記検体に含まれる被検出物質を認識する標識物質を保持する標識物質保持部と、前記被検出物質を検出する検出部が担持されたクロマトグラフ媒体部とを順次含む免疫クロマト分析装置において、
前記クロマトグラフ媒体部における前記検出部が、ジメチルスルホキシド(DMSO)および前記被検出物質と特異的に反応する抗体を少なくとも含む塗布液を、クロマトグラフ媒体部上に塗布して形成されてなり、
前記クロマトグラフ媒体部が、ニトロセルロースまたは酢酸セルロースを含むことを特徴とする免疫クロマト分析装置。
A sample addition unit for adding a sample, a labeling substance holding unit for holding a labeling substance for recognizing a detection substance contained in the sample, and a chromatographic medium part on which a detection unit for detecting the detection substance is supported In the immunochromatography analyzer including sequentially,
The detection part in the chromatographic medium part is formed by applying a coating liquid containing at least an antibody that specifically reacts with dimethyl sulfoxide (DMSO) and the substance to be detected on the chromatographic medium part,
The immunochromatographic analyzer, wherein the chromatographic medium part contains nitrocellulose or cellulose acetate.
前記塗布液における前記ジメチルスルホキシド(DMSO)の濃度が、0.02〜0.4容量%であることを特徴とする請求項1に記載の免疫クロマト分析装置。 The immunochromatography analyzer according to claim 1, wherein the concentration of the dimethyl sulfoxide (DMSO) in the coating solution is 0.02 to 0.4% by volume. 検体を添加する試料添加部と、前記検体に含まれる被検出物質を認識する標識物質を保持する標識物質保持部と、前記被検出物質を検出する検出部が担持されたクロマトグラフ媒体部とを順次含む免疫クロマト分析装置の製造方法において、
前記クロマトグラフ媒体部における前記検出部が、ジメチルスルホキシド(DMSO)および前記被検出物質と特異的に反応する抗体を少なくとも含む塗布液を、クロマトグラフ媒体部上に塗布して形成され、前記クロマトグラフ媒体部が、ニトロセルロースまたは酢酸セルロースを含むことを特徴とする免疫クロマト分析装置の製造方法。
A sample addition unit for adding a sample, a labeling substance holding unit for holding a labeling substance for recognizing a detection substance contained in the sample, and a chromatographic medium part on which a detection unit for detecting the detection substance is supported In the manufacturing method of the immunochromatography analyzer including sequentially,
The detection part in the chromatographic medium part is formed by applying a coating liquid containing at least an antibody that specifically reacts with dimethyl sulfoxide (DMSO) and the substance to be detected on the chromatographic medium part, and the chromatograph The method for producing an immunochromatographic analyzer, wherein the medium part contains nitrocellulose or cellulose acetate.
前記塗布液における前記ジメチルスルホキシド(DMSO)の濃度が、0.02〜0.4容量%であることを特徴とする請求項3に記載の免疫クロマト分析装置の製造方法。 The method for producing an immunochromatographic analyzer according to claim 3, wherein the concentration of the dimethyl sulfoxide (DMSO) in the coating solution is 0.02 to 0.4% by volume. 請求項1または2に記載の免疫クロマト分析装置を用い、下記工程(1)〜(4)を順次実施することを特徴とする、免疫クロマト分析方法。
(1)前記検体を試料添加部に添加する工程
(2)前記標識物質保持部に保持されている標識物質により前記検体に含まれる被検出物質を認識させる工程
(3)前記検体および標識物質を移動相としてクロマトグラフ媒体部に展開させる工程
(4)展開された移動相中の被検出物質を検出部で検出する工程
An immunochromatography analysis method, wherein the following steps (1) to (4) are sequentially performed using the immunochromatography analyzer according to claim 1 or 2.
(1) A step of adding the sample to the sample addition unit (2) A step of recognizing a substance to be detected contained in the sample by a labeling substance held in the labeling substance holding unit (3) A sample and a labeling substance (4) A step of detecting a substance to be detected in the developed mobile phase by a detection unit.
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