JP6467182B2 - Control sample of hemoglobin F - Google Patents
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Description
本発明は、特定物質の定量の際に標準として用いる管理試料に関する発明であり、より具体的には、安定性に優れたヘモグロビンF(HbF)の管理試料に関する発明である。 The present invention relates to a control sample used as a standard when quantifying a specific substance, and more specifically, relates to a control sample of hemoglobin F (HbF) having excellent stability.
ヒトヘモグロビンは2本のα鎖と2本の非α鎖(β鎖、γ鎖、δ鎖)からなる四量体であり、それぞれのポリペプチド鎖に1個ずつのヘムが結合している。このポリペプチド鎖の種類により、正常人のヘモグロビンはHbA(α2β2)、HbA2(α2δ2)およびHbF(α2γ2)の3種類が存在する。α鎖は141個のアミノ酸でできており、非α鎖(β鎖、γ鎖、δ鎖)はすべて146個のアミノ酸からなる。このアミノ酸配列をヘモグロビンの一次構造と呼び、β鎖とδ鎖は10個のアミノ酸配列が異なり、β鎖とγ鎖は39個のアミノ酸配列が異なる。 Human hemoglobin is a tetramer composed of two α chains and two non-α chains (β chain, γ chain, δ chain), and one heme is bound to each polypeptide chain. Depending on the type of polypeptide chain, there are three types of normal human hemoglobin: HbA (α2β2), HbA2 (α2δ2), and HbF (α2γ2). The α chain is made up of 141 amino acids, and the non-α chains (β chain, γ chain, δ chain) are all made up of 146 amino acids. This amino acid sequence is called the primary structure of hemoglobin. The β chain and δ chain differ in 10 amino acid sequences, and the β chain and γ chain differ in 39 amino acid sequences.
このヘモグロビンの先天的な異常により惹起される血液性の疾患が存在する。例えば、βサラセミアは、グロビンのβ鎖の合成欠損により、正常成人HbA(HbA=α2β2)の産生異常を来す疾患である。この場合、β鎖の代わりにδ鎖やγ鎖の合成や、HbA2やHbFの値の上昇が認められる。しかしながらこのHbA2やHbFの産生増加も、HbAの産生欠損を補完するには不十分で、赤血球は小球性低色素性となる。さらに重症サラセミアによる貧血は、ヘモグロビン合成異常によるばかりでなく、骨髄内での赤芽球の形成不全や抹消での溶血もその原因となっている。過剰なα鎖が赤血球膜と接触すると、沈降により、赤血球が脆弱となる。 There is a blood-related disease caused by this congenital abnormality of hemoglobin. For example, β thalassemia is a disease that causes abnormal production of normal adult HbA (HbA = α2β2) due to a synthesis defect of the β chain of globin. In this case, synthesis of δ chain and γ chain instead of β chain, and increase in the values of HbA2 and HbF are observed. However, this increase in production of HbA2 and HbF is insufficient to complement the production defect of HbA, and erythrocytes become microcytic hypochromic. Furthermore, anemia due to severe thalassemia is caused not only by abnormal hemoglobin synthesis, but also by erythroblast formation failure and peripheral hemolysis in the bone marrow. When excess α chain comes into contact with the red blood cell membrane, the red blood cells become brittle due to sedimentation.
上記のような疾病原理から、HbFはサラセミア症候群、あるいは、異常ヘモグロビン症、先天性溶血性貧血等の診断の補助検査の指標として測定される。また、骨髄異形成症候群や白血病などの造血器腫瘍性疾患や再生不良性貧血に際してもHbFの高値がみられることがあり、病態把握の一手段として測定されることがある。 From the above-mentioned disease principle, HbF is measured as an index for an auxiliary test for diagnosis of thalassemia syndrome, abnormal hemoglobinosis, congenital hemolytic anemia, or the like. In addition, a high value of HbF may be observed in hematopoietic neoplastic diseases such as myelodysplastic syndrome and leukemia, and aplastic anemia, which may be measured as a means of grasping the disease state.
HbFの測定は高速液体クロマトグラフィー法(以下、HPLCともいう)を用いて 臨床的な検査が実施されている。 HbF is measured clinically using a high performance liquid chromatography method (hereinafter also referred to as HPLC).
生体物質の測定、特に定量を行う場合は、標準を取るための管理試料(標準品)を可能な限り用いることが望ましい。その場合、管理試料の分析時の挙動が実際の検体と同等であることが要求される。 When measuring biological materials, especially when quantifying them, it is desirable to use as many control samples (standard products) as possible for taking standards. In that case, it is required that the behavior of the control sample at the time of analysis is equivalent to that of the actual sample.
さらに管理試料においては、個々のロットの長期安定性が要求される。また、それらの凍結乾燥品では、凍結乾燥品自体の安定性のみならず 使用時に精製水等を加え復元した後の安定性が要求される。 Furthermore, long-term stability of individual lots is required for control samples. In addition, these freeze-dried products are required to have not only the stability of the freeze-dried product itself but also the stability after reconstitution with purified water during use.
これらの事項はヘモグロビンFの測定を行う際にも同様であり、Hb標準品や管理試料において、実際の検体と新鮮血液と分析時の挙動が同等であることが必要であり、さらに長期安定性と、凍結乾燥品の復元安定性が要求される。 The same applies to the measurement of hemoglobin F. In the Hb standard and control samples, the actual specimen and fresh blood must have the same behavior at the time of analysis, and long-term stability. In addition, the restoration stability of the freeze-dried product is required.
ヘモグロビンは時間、温度等の付加によって、主に酸化による変性を起こすことが知られている。これは、酸化したメトヘモグロビンと酸化されていないオキシヘモグロビンとは、その電荷が異なるからである。一方、現在ヘモグロビンの測定に用いられているHPLC法は、ヘモグロビンの電荷の差により分離を行うもので、酸化によりメトヘモグロビンが含まれた血液を分析するとクロマトパターンが乱れ、新鮮血とは分離パターンが異なるものとなることが知られている。 It is known that hemoglobin is mainly denatured by oxidation with the addition of time, temperature and the like. This is because oxidized methemoglobin and non-oxidized oxyhemoglobin have different charges. On the other hand, the HPLC method currently used for the measurement of hemoglobin performs separation based on the difference in the charge of hemoglobin. When blood containing methemoglobin is analyzed by oxidation, the chromatographic pattern is disturbed and separated from fresh blood. Are known to be different.
このような中、ヘモグロビンFの測定、特に定量、に際しても、経時的に安定なヘモグロビンFの管理試料の提供が求められている。 Under such circumstances, provision of a management sample of hemoglobin F that is stable over time is also required for measurement of hemoglobin F, particularly for quantification.
本発明者らは、既にヘモグロビンのうち、ヘモグロビンA1c(HbA1c)をスクロースで安定化させた、主にHbA1cのHPLCによる定量の際に用いるヘモグロビンA1cの管理試料の発明を行い、既に特許となっている(特許文献1)。 The inventors of the present invention have already invented a control sample of hemoglobin A1c used for quantification by HPLC of HbA1c, in which hemoglobin A1c (HbA1c) is stabilized with sucrose, and has already been patented. (Patent Document 1).
しかしながら、ヘモグロビンFを安定化させるための安定化剤を考える場合には、数々の問題点が存在する。 However, when considering a stabilizer for stabilizing hemoglobin F, there are a number of problems.
(1)ヘモグロビンは、その種類によって分子の電荷等の状態が微妙に異なることが知られている。HPLCによるヘモグロビンの測定は、マイナスのイオン交換基を有するカチオンイオン(陽イオン)交換カラムを用いる。そのために、ヘモグロビン分子に伴う電荷はヘモグロビン同士の分離において重要な要素である。例えば、ヘモグロビンA1cよりもプラス電荷が大きいヘモグロビンはHbA1cよりも溶出が遅く、逆にヘモグロビンA1cよりもプラス電荷が小さいヘモグロビン、例えば、ヘモグロビンFはHbA1cよりも溶出が早くなる。このように電荷の違いが大きくHPLCの検出状態に影響を及ぼすところに添加する安定剤は、このようなヘモグロビンの電荷の状態に影響を与え難いことが一つの条件となるが、それをヘモグロビンの電荷の状態と安定剤として用いる糖類分子の相関から予測することは困難である。 (1) It is known that hemoglobin has a slightly different state of molecular charge depending on its type. The measurement of hemoglobin by HPLC uses a cation ion (cation) exchange column having a negative ion exchange group. Therefore, the electric charge accompanying the hemoglobin molecule is an important factor in the separation of hemoglobin. For example, hemoglobin having a larger positive charge than hemoglobin A1c is eluted more slowly than HbA1c. Conversely, hemoglobin having a smaller positive charge than hemoglobin A1c, eg, hemoglobin F, is eluted faster than HbA1c. One of the conditions for the stabilizer added in such a place where the difference in charge is large and affects the detection state of HPLC is that it is difficult to affect the charge state of such hemoglobin. It is difficult to predict from the correlation between the state of charge and the sugar molecules used as stabilizers.
(2)ヘモグロビンFの管理試料においては、当然相当量のヘモグロビンFが必要である。しかしながら健常成人の赤血球には殆ど認められないヘモグロビンFを、管理試料として使用可能な態様としてどのように確保するか、また、確保されたヘモグロビンFの含有物において、ヘモグロビンFをどのように安定化するかは、上記(1)の問題の存在を前提に、予測することはいっそう困難となる。 (2) In the management sample of hemoglobin F, naturally, a considerable amount of hemoglobin F is required. However, how to secure hemoglobin F, which is hardly observed in erythrocytes of healthy adults, as an aspect that can be used as a control sample, and how to stabilize hemoglobin F in the secured content of hemoglobin F It is even more difficult to predict whether the problem (1) exists.
上述した技術的困難の中、本発明者は検討を重ねた結果、ヘモグロビンFの供給源として臍帯血が適切であり、かつ、ヘモグロビンFの管理試料の安定化剤としてスクロースが適切であることを見出した。すなわち本発明は、ヒト赤血球の溶血物とヒト臍帯血の混合溶血物に対して、スクロースが含有されていることを特徴とする、ヘモグロビンFの管理試料(以下、本発明の管理試料ともいう)を提供する発明である。「混合溶血物」とは、後述するように、ヒト赤血球の溶血物にヒト臍帯血をそのまま添加することにより、当該溶血物の低張性により、ヒト臍帯血の赤血球が自ずから溶血することにより得られる溶血物である。後述するように、通常のヒト赤血球と一緒に臍帯血に対して溶血処理を行っても、所望するようなヘモグロビンFの管理試料として用いることができる組成物を調製することはできない。すなわち、本発明のヘモグロビンFの管理試料の基礎的な部分は、「溶血物に血球を破壊する前の臍帯血を混合して調製する」もので、当初の溶血物のみから調製する既存のヘモグロビンA1cの管理試料とは全く異なるものである。 In light of the technical difficulties described above, the present inventor has repeatedly studied that umbilical cord blood is appropriate as a supply source of hemoglobin F, and that sucrose is appropriate as a stabilizer for a management sample of hemoglobin F. I found it. That is, the present invention is a hemoglobin F control sample (hereinafter also referred to as a control sample of the present invention), characterized in that sucrose is contained in a mixed hemolysate of human erythrocytes and human umbilical cord blood. It is the invention which provides. As described later, “mixed hemolysate” is obtained by adding human umbilical cord blood to human erythrocyte lysate as it is, and the erythrocytes of human umbilical cord blood naturally lyse due to the hypotonicity of the lysate. Is a hemolysate. As will be described later, even if hemolysis is performed on umbilical cord blood together with normal human erythrocytes, a composition that can be used as a management sample of hemoglobin F as desired cannot be prepared. That is, the basic part of the management sample of hemoglobin F of the present invention is “prepared by mixing umbilical cord blood before disrupting blood cells into hemolyzed material”, and existing hemoglobin prepared only from the original hemolysate. This is completely different from the control sample of A1c.
本発明の管理試料が上記のようなヒト臍帯血をそのまま添加する特殊な構成であること、さらに、ヘモグロビンFよりもヘモグロビンA1cに近い分子構造、すなわちヘモグロビンA1cに近似の電荷状態であるヘモグロビンA1A、さらにヘモグロビンA1cの一態様であるヘモグロビンLA1c+に対しては、実用に耐えるスクロースによる安定化効果が認められなかった(後述する実施例)ことからすると、当初このような構成の発明を見出すことについて、本発明者は全く予想をしていなかった。 The management sample of the present invention has a special configuration in which human umbilical cord blood as described above is added as it is, and further has a molecular structure closer to hemoglobin A1c than hemoglobin F, that is, hemoglobin A1A having a charge state approximate to hemoglobin A1c, Furthermore, for hemoglobin LA1c +, which is an aspect of hemoglobin A1c, a stabilizing effect by sucrose that can be used practically was not recognized (Examples described later). The inventor had never expected.
本発明の管理試料におけるスクロースの含有量は、ヘモグロビン濃度10mg/mlの管理試料全体に対して5〜20質量%であることが好ましく、同6〜18質量%であることがさらに好ましく、同10〜15質量%であることが極めて好ましい。なお、管理試料中のヘモグロビン濃度は種々に設定可能であるが、本明細書においては標準的な製品のヘモグロビン濃度である「10mg/ml」を基準として、上記スクロースの含有量を規定している。当然に、異なるヘモグロビン濃度の製品であれば、そのヘモグロビン濃度に応じてスクロースの含有量も異なってくる。また、ヒト臍帯血は、希釈を行わないで用いることが極めて好適であり、その場合の無希釈のヒト臍帯血のヒト赤血球の溶解物に対する添加量は、ヒト赤血球の2倍容量希釈の当該混合物に対して0.05〜0.5質量%であることが好ましく、同0.05〜0.2質量%であることがさらに好ましく、同0.05〜0.1質量%であることが極めて好ましい。 The content of sucrose in the management sample of the present invention is preferably 5 to 20% by mass, more preferably 6 to 18% by mass, and more preferably 10 to 10% by mass with respect to the entire management sample having a hemoglobin concentration of 10 mg / ml. It is very preferably ˜15% by mass. Although the hemoglobin concentration in the control sample can be variously set, in this specification, the content of the sucrose is defined based on “10 mg / ml” which is the hemoglobin concentration of a standard product. . Naturally, in the case of a product having a different hemoglobin concentration, the sucrose content varies depending on the hemoglobin concentration. Moreover, it is very preferable to use human umbilical cord blood without dilution, and the amount of undiluted human umbilical cord blood added to the lysate of human erythrocytes is the mixture obtained by diluting human erythrocytes in a 2-fold volume dilution. It is preferably 0.05 to 0.5% by mass, more preferably 0.05 to 0.2% by mass, and extremely preferably 0.05 to 0.1% by mass. preferable.
本発明の管理試料は、その目的を問わず、血液検体中のヘモグロビンFの定量の際の管理試料として用いることが可能であり、典型的にはβサラセミア等のサラセミア症候群の補助検査としてのヘモグロビンFの定量に際しての管理試料として用いるものである。 Regardless of the purpose, the control sample of the present invention can be used as a control sample for quantifying hemoglobin F in a blood sample. Typically, hemoglobin as an auxiliary test for thalassemia syndrome such as β-thalassemia It is used as a control sample when F is quantified.
本発明の管理試料は、液体の状態のまま用いることも可能であるが、通常は凍結乾燥品として用いる。この凍結乾燥品としての本発明の管理試料において、極めて良好な経時的安定性が認められる。 Although the control sample of the present invention can be used in a liquid state, it is usually used as a lyophilized product. In the control sample of the present invention as this freeze-dried product, very good temporal stability is observed.
上述の通りに本発明は、本発明の管理試料を、血液検体中のヘモグロビンFをHPLCを用いて測定、特に定量する際の、ヘモグロビンFの標準として用いることを特徴とする、管理試料の使用方法を提供し、ヒト赤血球の溶血物とヒト臍帯血の混合物に対してスクロースを含有させる、当該混合物中のヘモグロビンFの安定化方法を提供する発明である。 As described above, the present invention uses the management sample of the present invention as a standard for hemoglobin F when measuring, in particular, quantifying hemoglobin F in a blood sample using HPLC. The invention provides a method for stabilizing hemoglobin F in a mixture of human erythrocyte hemolysate and human umbilical cord blood containing sucrose.
さらに本発明は、ヒト赤血球の溶血物に対してヒト臍帯血を混合して、当該溶血物と臍帯血の混合物を調製し、当該混合物に対してスクロースを含有させることを特徴とする、ヘモグロビンFの管理試料の生産方法を提供する発明である。本発明の生産方法では、スクロースを含有させた、ヒト赤血球の溶血物とヒト臍帯血の混合物に対して、凍結乾燥処理を行うことも可能である。 Furthermore, the present invention is characterized in that human umbilical cord blood is mixed with a lysate of human erythrocytes to prepare a mixture of the lysate and umbilical cord blood, and sucrose is contained in the mixture. It is invention which provides the production method of this control sample. In the production method of the present invention, a lyophilization treatment can be performed on a mixture of human erythrocyte hemolysate and human umbilical cord blood containing sucrose.
本発明により、経時的安定性に優れたヘモグロビンFを測定する際の標準となる管理試料が提供される。また本発明により、当該管理試料の使用方法、ヘモグロビンFの安定化方法、及び、当該管理試料の生産方法が提供される。当該管理試料は、液剤形態及び凍結乾燥形態の双方を含むものである。 According to the present invention, there is provided a control sample that serves as a standard when measuring hemoglobin F having excellent stability over time. The present invention also provides a method for using the control sample, a method for stabilizing hemoglobin F, and a method for producing the control sample. The control sample includes both liquid form and lyophilized form.
(1)本発明の管理試料の生産
(a)ヒト赤血球の溶解物の調製
適宜保存用成分が含有されることが許容されるヒト全血から、遠心分離等の常法により赤血球を分離する。この工程を省略して、赤血球のみを入手して用いても良い。このようにして得られた赤血球を生理食塩水等で洗浄した後、低張液、典型的には精製水を加えて溶血を行い、遠心分離を行って得られる最下層の赤色画分(精製溶血液)が「ヒト赤血球の溶解物」である。精製水等の低張液の添加量は溶血を行う際の常法に従うもので、特に限定されるものではないが、赤血球の全体容積に対して概ね0.5〜1.5容量であり、好ましくは0.7〜1.2容量である。
(1) Production of control sample of the present invention (a) Preparation of lysate of human erythrocytes Red blood cells are separated from human whole blood that is allowed to contain components for storage as appropriate by a conventional method such as centrifugation. This step may be omitted and only red blood cells may be obtained and used. The erythrocytes obtained in this manner are washed with physiological saline, etc., and then the hypotonic solution, typically purified water is added to perform hemolysis, and the lowermost red fraction obtained by centrifugation (purification) Lysed blood) is “lysed human erythrocyte”. The addition amount of hypotonic solution such as purified water is in accordance with a conventional method for hemolysis and is not particularly limited, but is generally 0.5 to 1.5 volumes with respect to the total volume of red blood cells, Preferably it is 0.7-1.2 capacity.
(b)ヒト臍帯血の添加
上記(a)により得られたヒト赤血球の溶解物に、ヒト臍帯血を添加する。ヒト臍帯血は、胎児と母体を繋ぐ胎児側の組織であるへその緒(臍帯)の中に含まれる胎児血であり、臍帯血に含まれる赤血球にはヘモグロビンFが豊富に含まれている。ヒト臍帯血は、上記のヒト赤血球の溶解物に対して添加することが極めて好ましい。すなわち、上記(a)の段階で、ヒト全血とヒト臍帯血を混合しても、所望するヘモグロビンFが含まれる本発明の管理試料の中間体を調製することは困難である。上記のようなヒト赤血球の溶解物に対してヒト臍帯血を添加することで、当該溶解物の低張性により臍帯血中の赤血球は自ずと溶解することになる。ヒト臍帯血の添加量については上述した。
(B) Addition of human umbilical cord blood Human umbilical cord blood is added to the lysate of human erythrocytes obtained in (a) above. Human umbilical cord blood is fetal blood contained in the umbilical cord (umbilical cord), which is a fetal side tissue connecting the fetus and the mother, and erythrocytes contained in the umbilical cord blood are rich in hemoglobin F. It is very preferable to add human umbilical cord blood to the above-mentioned lysate of human erythrocytes. That is, even if human whole blood and human umbilical cord blood are mixed in the step (a), it is difficult to prepare an intermediate of the control sample of the present invention containing the desired hemoglobin F. By adding human umbilical cord blood to the lysate of human erythrocytes as described above, the erythrocytes in the umbilical cord blood are naturally lysed due to the hypotonicity of the lysate. The amount of human umbilical cord blood added is described above.
(c)スクロースの添加
上記(b)において得られた「ヒト赤血球の溶解物とヒト臍帯血の混合物」に対して、安定化剤であるスクロースを添加する。添加量については上述した通りである。この添加の際には、予め適切な濃度のスクロースの水溶液を調製して、これを所望のスクロース濃度となるように、上記混合物に対して添加することが好適である。ここで混合物のヘモグロビン濃度を測定して、当該濃度を所望の濃度に調整する。本実施例における当該ヘモグロビン濃度は10mg/mLであるが、これに限定されるものではない。当該ヘモグロビン濃度調整は、所望するスクロース濃度の水溶液を用いることが好適である。
(C) Addition of sucrose To the “mixture of human erythrocyte lysate and human umbilical cord blood” obtained in (b) above, sucrose as a stabilizer is added. The amount of addition is as described above. At the time of this addition, it is preferable to prepare an aqueous solution of sucrose having an appropriate concentration in advance and add it to the above mixture so as to obtain a desired sucrose concentration. Here, the hemoglobin concentration of the mixture is measured, and the concentration is adjusted to a desired concentration. The hemoglobin concentration in this example is 10 mg / mL, but is not limited thereto. The hemoglobin concentration is preferably adjusted using an aqueous solution having a desired sucrose concentration.
この工程を経て得られる組成物が、本発明の管理試料(液剤段階)である。 The composition obtained through this process is the control sample (liquid agent stage) of the present invention.
(d)凍結乾燥
多くの場合、管理試料は凍結乾燥処理を施して用時調整を行って用いる形態とする。本発明の管理試料も同様である。凍結乾燥の方法は常法に従い、具体的には実施例において開示する。
(D) Freeze-drying In many cases, the control sample is used after being freeze-dried and adjusted for use. The same applies to the control sample of the present invention. The method of lyophilization follows conventional methods, and is specifically disclosed in the examples.
(2)本発明の管理試料の使用
上述したように、本発明の管理試料は血液検体中のヘモグロビンFを定量する際の標準として用いることができる。本発明の管理試料を用いるヘモグロビンFの定量方法は高速液体クロマトグラフィー(HPLC)である。
(2) Use of the control sample of the present invention As described above, the control sample of the present invention can be used as a standard for quantifying hemoglobin F in a blood sample. The method for quantifying hemoglobin F using the control sample of the present invention is high performance liquid chromatography (HPLC).
また、本発明の管理試料を標準として用いて、血液検体中のヘモグロビンFの定量を行う対象となる疾患は、その疾患により成人では本来殆ど認められないヘモグロビンFの高値、上昇、一過性の増加が認められる疾患であれば特に限定されない。ヘモグロビンFの高値を認める疾患として、βサラセミア、δβサラセミア等のサラセミア症候群、遺伝性高HbF症、若年性慢性骨髄性白血病等が挙げられる。上昇を認める疾患として、不安定Hb症、先天性溶血性貧血、急性骨髄性白血病、骨髄異形成症候群等が挙げられる。一過性の増加を認める疾患として、再生不良性貧血、PNH、骨髄移植後等の著しい骨髄最盛期等が挙げられる。これらの中での典型例として、βサラセミア、δβサラセミア等のサラセミア症候群が挙げられる。 In addition, a disease for which hemoglobin F in a blood sample is quantified using the control sample of the present invention as a standard is a hemoglobin F high value, elevation, or transient that is hardly recognized in adults due to the disease. If it is the disease by which an increase is recognized, it will not specifically limit. Examples of diseases in which a high level of hemoglobin F is recognized include thalassemia syndromes such as β thalassemia and δβ thalassemia, hereditary hyper-HbF disease, juvenile chronic myeloid leukemia and the like. Examples of diseases that are elevated include unstable Hb disease, congenital hemolytic anemia, acute myeloid leukemia, myelodysplastic syndrome, and the like. Examples of diseases that show a transient increase include aplastic anemia, PNH, and a marked bone marrow peak period after bone marrow transplantation. Typical examples among these are thalassemia syndromes such as β thalassemia and δβ thalassemia.
本発明の管理試料は、液剤としても、凍結乾燥品としても非常に優れた経時的安定性が認められ、上記のような血液検体中のヘモグロビンFの定量の際に用いる標準として極めて好適である。 The control sample of the present invention is very suitable as a standard to be used for quantification of hemoglobin F in the blood sample as described above, as it shows excellent temporal stability both as a solution and as a lyophilized product. .
以下、本発明の実施例を開示する。 Examples of the present invention will be disclosed below.
[実施例1] 管理試料の調製
本発明の管理試料と、その比較例は下記の要領で調製した。
[Example 1] Preparation of control sample The control sample of the present invention and a comparative example thereof were prepared as follows.
(工程1)
(1) 450mLのヒト全血をパック(クエン酸−リン酸−デキストロース−アデニン(CPDA)保存液を含む)に入ったまま転倒混和し均一にする。
(2) 450mLのヒト全血を50mL遠沈管に約45mLずつ分注し遠心分離器(3000rpm×5min,4℃)にかけ、上清の血漿、血小板、白血球を除去し赤血球を分離する。また,感染性否定試験用に15mL遠沈管に入れ遠心し、上清を試験に出す。
(3) 分離した赤血球に1/2倍容量の生理食塩水を加え混合し、遠心分離(3000rpm×5min,4℃)にかけ生理食塩水を除去する。この操作を8回繰り返す。ただし、8回目の遠心時間は、10分とする。
( Process 1 )
(1) 450 mL of human whole blood is mixed by inversion while in a pack (including citrate-phosphate-dextrose-adenine (CPDA) stock solution) to make it uniform.
(2) Approximately 45 mL of 450 mL of human whole blood is dispensed into a 50 mL centrifuge tube and applied to a centrifuge (3000 rpm × 5 min, 4 ° C.) to remove supernatant plasma, platelets, and white blood cells and separate red blood cells. For infectivity denial test, centrifuge in 15 mL centrifuge tube and remove supernatant for test.
(3) Add 1/2 volume of physiological saline to the separated erythrocytes, mix, and centrifuge (3000 rpm × 5 min, 4 ° C.) to remove the physiological saline. This operation is repeated 8 times. However, the eighth centrifugation time is 10 minutes.
(工程2)
(1) 工程1で得た洗浄赤血球に1.0等容量の精製水を加え、震盪し、赤血球を溶血させる。
( Process 2 )
(1) Add 1.0 equivalent volume of purified water to the washed red blood cells obtained in
(工程3)
(1) 工程2で得た溶血液に1/4容量のトルエンを加え、激しく震盪(約5分間)し、遠心分離(3000rpm×30min,4℃)にかけ、3層に分離したうちの下層部分をパスツール等で試験管に回収する。
(2) (1)で回収した液は2回目の遠心分離(3000rpm×15min,4℃)にかけ、上層に浮くか又は底に沈殿した不溶解物を除き透明な部分のみをパスツール等で試験管に分けて回収する。
(3) この精製溶血液(約500mL)に1mLのヒト臍帯血を加え、混合する。
(4) (3)の精製溶血液を容量し、これに最終濃度が10%の安定化剤には1/4容量の50%濃度の安定剤を加え、5%の安定化剤には1/4容量の25%濃度の安定化剤を加え均一になるまで混合する。「安定化剤」は、スクロース、又は、比較例として用いる他の糖類である。
(5) ヘモグロビン濃度を測定して、10%の安定化剤を含む精製溶血液には10%安定化剤溶液で希釈して、10mg/mLに調整する。5%の安定化剤を含む精製溶血液には5%安定化剤溶液で希釈して、10mg/mLに調整する。これにより液剤段階の本発明の管理試料又はその比較例が調製された。
( Process 3 )
(1) Add 1/4 volume of toluene to the hemolyzed blood obtained in
(2) The liquid collected in (1) is subjected to a second centrifugation (3000 rpm × 15 min, 4 ° C.), and only the transparent part is tested with a Pasteur etc. except for the insoluble matter that floats on the upper layer or settles on the bottom. Collect in tubes.
(3) Add 1 mL of human umbilical cord blood to this purified hemolyzed blood (about 500 mL) and mix.
(4) Purified hemolyzed blood of (3) is added, and 1/4 volume of stabilizer is added to a stabilizer with a final concentration of 10%, and 1% is added to a stabilizer with 5%. Add / 4 volume of 25% strength stabilizer and mix until uniform. “Stabilizer” is sucrose or other saccharide used as a comparative example.
(5) The hemoglobin concentration is measured, and the purified hemolyzed blood containing 10% stabilizer is diluted with a 10% stabilizer solution and adjusted to 10 mg / mL. Purified hemolyzed blood containing 5% stabilizer is diluted with 5% stabilizer solution and adjusted to 10 mg / mL. As a result, a control sample of the present invention at the liquid preparation stage or a comparative example thereof was prepared.
(工程4)
(1) 工程3の(5)において調製した10%安定化剤を含む液剤段階の管理試料各1mLを10mLバイアルビンにて分注して、凍結乾燥を行う。
(2) 凍結乾燥は、予備凍結:−30度・4時間、1次乾燥:−20℃・10時間、2次乾燥:−10℃・10時間、3次乾燥:−4℃・10時間、最終乾燥:4℃・60時間、の工程を経て行った。
(3) 窒素置換して、ゴム栓打栓後 フィリップキャップを締める。
( Process 4 )
(1) Dispense 1 mL each of the liquid-phase management sample containing the 10% stabilizer prepared in (3) of
(2) Freeze-drying consists of pre-freezing: -30 ° C for 4 hours, primary drying: -20 ° C for 10 hours, secondary drying: -10 ° C for 10 hours, tertiary drying: -4 ° C for 10 hours, Final drying: The process was performed at 4 ° C. for 60 hours.
(3) Replace with nitrogen and tighten the lip cap after rubber plugging.
これにより、凍結乾燥品としての本発明の管理試料又はその比較例が調製された。 Thereby, the control sample of the present invention as a freeze-dried product or a comparative example thereof was prepared.
[試験例1] 糖類添加試験
上記の実施例1において、安定化剤として、(1)マルトース、(2)スクロース、(3)ソルビトール、(4)アラビノース、(5)キシロース、を用い、これらの添加量を、それぞれ管理試料に対して10質量%として、工程3の凍結乾燥品を調製して、HPLCで、(a)ヘモグロビンF(HbF)、(b)ヘモグロビンA1c(HbA1c)、(c)ヘモグロビンA1A(HbA1A)についての、上記凍結乾燥前の存在量と、凍結乾燥後(精製水を凍結乾燥前と当容量となるように添加後)の存在量を比較した。その結果を表1(表1−1、1−2、1−3)に開示する。
[Test Example 1] Sugar addition test In Example 1 above, (1) maltose, (2) sucrose, (3) sorbitol, (4) arabinose, (5) xylose were used as stabilizers. The lyophilized product of
HbFについては表1−1、HbA1cについては表1−2、HbA1Aについては表1−3に示した。 HbF is shown in Table 1-1, HbA1c is shown in Table 1-2, and HbA1A is shown in Table 1-3.
これらの結果より、スクロースとソルビトールをヘモグロビンFの安定化剤の候補として、次に示す加速試験を行った。 Based on these results, the following accelerated test was conducted using sucrose and sorbitol as candidates for hemoglobin F stabilizers.
[実施例2] 熱加速試験
熱加速試験は、被験試料(凍結乾燥品:スクロース又はソルビトールを5%又は10%添加したもの)を、37℃の条件下で試験直後から4週間放置し、それぞれ試験直後から1週間毎に、精製水を凍結乾燥前と当容量となるように添加後、ヘモグロビン量をHPLCにより定量し、その結果を表2(表2−1、2−2、2−3)と、図1(図1−1、1−2、1−3、1−4)に示す。(a)表2−1と図1−1はヘモグロビンF(HbF)、(b)表2−2と図1−2はヘモグロビンA1c(HbA1c)、(c)表2−3と図1−3、1−4はヘモグロビンA1A(HbA1A)についての結果を示すものであり。図1−4は、図1−3のスクロース添加の結果を示す拡大図である。
[Example 2] Thermal acceleration test In the thermal acceleration test, a test sample (lyophilized product: sucrose or sorbitol added at 5% or 10%) was allowed to stand for 4 weeks immediately after the test at 37 ° C. Immediately after the test, purified water was added to each volume before freeze-drying and at the same volume, and the amount of hemoglobin was quantified by HPLC. The results are shown in Table 2 (Tables 2-1, 2-2, 2-3). ) And FIG. 1 (FIGS. 1-1, 1-2, 1-3, 1-4). (A) Table 2-1 and FIG. 1-1 are hemoglobin F (HbF), (b) Table 2-2 and FIG. 1-2 are hemoglobin A1c (HbA1c), (c) Table 2-3 and FIG. 1-3. 1-4 shows the result about hemoglobin A1A (HbA1A). FIG. 1-4 is an enlarged view showing the result of addition of sucrose of FIG. 1-3.
これらの結果より、いずれのヘモグロビンに対してもソルビトールは、経時的に十分な安定化効果を付与するには至らないことが明らかになり、スクロースは、従来からの認識通りにヘモグロビンA1cについての優れた安定化効果を示すことと、本発明の主題であるヘモグロビンFに対しても優れた安定化効果を示すことが明らかになった。しかしながら、ヘモグロビンA1Aに対しては、実用に耐える安定化効果を付与するには至らないことが、特に図1−4において明らかになった。 From these results, it is clear that sorbitol does not give a sufficient stabilizing effect over time to any hemoglobin, and sucrose is superior to hemoglobin A1c as conventionally recognized. It has become clear that the present invention exhibits a stabilizing effect and also exhibits an excellent stabilizing effect on hemoglobin F, which is the subject of the present invention. However, it has been clarified particularly in FIGS. 1-4 that hemoglobin A1A does not provide a stabilizing effect that can withstand practical use.
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