JP6457392B2 - ポリカーボネートに担持させた医薬用ペンダント型1級アミン - Google Patents
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Description
アニオン性の薬剤と、
式(2)の第1の繰り返し単位を含むアミン・ポリマーと
を含む、抗微生物性組成物が開示される。
a′は、1または2に等しい整数であり、
b′は、1または2に等しい整数であり、
R′は、独立して、水素、メチル、エチル、およびそれらの組合せから選択される1価ラジカルであり、
G′は、単結合および少なくとも1つの炭素を含有する基を含む群から選択される2価架橋基であり、
X−は、負に帯電したカウンター・イオンであり、
前記薬剤と、前記アミン・ポリマーとが、非共有結合性の相互作用により結合する。)
下記構造式(4)の第1の繰り返し単位を含む、抗微生物性のアミン・ポリマーが、開示される。
(上記式中、
a′は、1または2に等しい整数であり、
b′は、1または2に等しい整数であり、
R′は、それぞれ独立して、水素、メチル、エチル、およびそれらの組合せから選択される1価ラジカルであり、
L′は、2〜10の炭素を含む2価の架橋性基であり、
X−は、負に帯電したカウンター・イオンである。)
ii)開環重合のための親核性開始剤、
iii)有機触媒、および
iv)溶媒
を含む混合物を調整することと、
前記混合物を攪拌して開環重合により保護されたアミン・ポリマーを形成することと、
前記保護されたアミン・ポリマーを脱保護して抗微生物性のアミン・ポリマーを形成すること
とを含み、
前記第1の環状カーボネート・モノマーが式(6)の構造を有する方法が開示される。
アニオン性薬剤を含む第2の水性混合物を形成することと、
前記第1の混合物と、前記第2の混合物とを組み合わせて、前記アミン・ポリマーと前記薬剤とが非共有性の相互作用によって結合した抗微生物組成物を形成することと、
を含む方法が開示される。
ROP反応混合物は、開示剤を含んでいる。この開始剤は、開環重合したポリマー鎖の繰り返しユニットに共有結合した鎖フラグメントとなる。開環重合のための開始剤は、概ねアルコール、1級アミン、セカンダリー・アミン、チオール、およびこれらの組み合わせといった求核基を含む。開始剤は、少なくとも1つの活性な求核開始基を含むことができる。開始剤は、ポリマー性であっても非ポリマー性であっても良い。例えば、開始剤は、ポリマー性アルコール、ポリマー性アミン、またはポリマー性チオールとすることができる。
中間体アミン・ポリマー(すなわち、脱保護化以前)またはアミン・ポリマーの、エンドキャップは、任意的である。エンドキャップ剤は、さらなる鎖の成長を防止し、反応性の末端基を安定化させる。例えば、エンドキャップ剤としては、カルボン酸無水物、カルボン酸塩化物、または反応性エステル類(例えば、p−ニトロフェニルエステル類)末端の水酸基をエステルに変換する材料を挙げることができる。実施形態では、エンドキャップは、無水酢酸であり、これは、反応性水酸基末端基を酢酸エステル基に変換する。エンドキャップ基はまた、生物学的に活性な部分とすることができる。
開環重合のための後述する方法、条件および材料は、抗微生物性組成物を調整するアミン・ポリマーおよび他のROPコンポーネントに適用される。
ROP重合は、任意的に促進剤、とりわけ窒素性塩基の存在下で行うことができる。例示的な窒素性塩基促進剤としては以下、ピリジン(Py)、N,N−ジメチルアミノシクロヘキサン(Me2NCy)、4−N,N−ジメチルアミノピリジン(DMAP)、トランス1,2−ビス(ジメチルアミノ)シクロヘキサン(TMCHD)、1,8−ジアザビシクロ[5,4,0]ウンデク−7−エン(DBU)、1,5,7−トリアザビシクロ[4,4,0]デク−5−エン(TBD)7−メチル−1,5,7−トリアザビシクロ[ 4,4,0]デク−5−エン(MTBD)、(−)−スパルテイン(Sp)、1,3−ビス(2−プロピル)−4,5−ジメチルイミダゾールー2−イリデン(Im−1)、1,3−ビス(2,4,6−トリメチルフェニル)イミダゾール−2−イリデン(Im−2)、1,3−ビス(2,6−ジ−i−プロピルフェニル(イミダゾール−2−イリデン)(Im−3)、1,3−ビス(1−アダマンチル)イミダゾール−2−イリデン(Im−4)、1,3−ジ−i−プロピルイミダゾール−2−イリデン(Im−5)、1,3−ジ−t−ブチルイミダゾール−2−イリデン(Im−6)、1,3−ビス(2,6−ジ−i−プロピルフェニル)−4,5−ジヒドロイミダゾール−2−イリデン(Im−7)、1,3−ビス(2,6−ジ−i−プロピルフェニル)−4,5−ジヒドロイミダゾール−2−イリデン、1,3−ビス(2,6−ジ−i−プロピルフェニル)−4,5−ジヒドロイミダゾール−2−イリデン(Im−8)、またはこれらの組み合わせを挙げることができ、これらを表5に示す。
本アミン・ポリマーは、単独で、または遺伝子、タンパク、薬剤のいずれかまたはこれらを含む広範な生物学的に活性な物質複合体(担持した複合体)の形態で使用することができる。方法は、アミン・ポリマーまたは担持複合体またはこれら両方に微生物を接触させることで、未成物を死滅させることを含む。アミン・ポリマーおよび生物学的に活性な物質は、非共有結合性の相互作用によって結合される。生物学的に活性な物質は、水中でアミン・ポリマーにより形成されるミセル状ナノ構造のコア内にカプセル化されることができる。例えば、ポリ(エチレンオキシド)鎖を有するアミン・ポリマーは、薬剤中に存在するアニオン性残基とカチオン性ポリマーとの間の静電的相互作用により、担持複合体を形成することができる。カプセル化プロセスは、潜在的に毒性の有機溶媒を使用することなく水性混合物中で行うことができる。ポリマーの生物学的互換性、構造的多様性、ナノサイズ薬剤を担持した粒子の組み合わせることにより、アニオン性治療薬の効果的なデリバリーを提供する。1実施形態では、担持複合体は、アミン・ポリマーと、ジクロフェナク(DCF)またはペニリシンG(PenG)薬とを含む。
(Purinethol)(登録商標),ラロキシフェン(Raloxifene),レブリミッド(Revlimid)(登録商標),リュウマトレックス(Rheumatrex)(登録商標),リツキサン(Rituxan)(登録商標),リツキシマブ(Rituximab),ロフェロン−A(Roferon-A)(登録商標) (Interferon Alfa-2a) ルーベックス(Rubex)(登録商標),ルビドマイシンヒドロクロリド(Rubidomycin hydrochloride),サンドスタチン(Sandostatin)(登録商標),サンドスタチンLAR(Sandostatin LAR)(登録商標),サルグラモスティム(Sargramostim),ソル−コルテフ(Solu-Cortef)(登録商標),ソル−メドロール(Solu-Medrol)(登録商標),ソラフェニブ(Sorafenib),SPRYCEL(商標),STI−571,ストレプトゾシン(Streptozocin),SU11248,サニチニブ(Sunitinib),ステント(Sutent)(登録商標),タモキシフェン(Tamoxifen),タルセバ(Tarceva)(登録商標),タルグレチン(Targretin)(登録商標),タキソール(Taxol)(登録商標),タキソテレ(Taxotere)(登録商標),テモダール(Temodar)(登録商標),テモゾロミド(Temozolomide),テムシロリムス(Temsirolimus),テニポシド(Teniposide),TESPA,タリドミド(Thalidomide),タロミド(Thalomid)(登録商標),テラシス(TheraCys)(登録商標),チオグアニン(Thioguanine),チオグアニンタブロイド(Thioguanine Tabloid)(登録商標),チオフォスフォアミド(Thiophosphoamide),チオプレックス(Thioplex)(登録商標),チオテパ(Thiotepa),TICE(登録商標),トポサール(Toposar)(登録商標),トポテカン(Topotecan),トレミフェン(Toremifene),トリセル(Torisel)(登録商標),トシツモマブ(Tositumomab),トラツズマブ(Trastuzumab),トレンダ(Treanda)(登録商標),トレチノイン(Tretinoin),トレキサール(Trexall)(商標),トリセノックス(Trisenox)(登録商標),TSPA,TYKERB(登録商標),VCR,ベクティビックス(Vectibix)(商標),ベルバン(Velban)(登録商標),ベルカード( Velcade)(登録商標),ベペシド(VePesid)(登録商標),ベサノイド(Vesanoid)(登録商標),ビアデュール(Viadur)(商標),ビダザ(Vidaza)(登録商標),ビンブラスチン(Vinblastine),ビンブラスチンスルフェート(Vinblastine Sulfate),ビンカサールPfs(Vincasar Pfs)(登録商標),ビンクリスチン(Vincristine),ビノレルビン(Vinorelbine),ビノレルビンタートレート(Vinorelbine tartrate),VLB,VM−26,ボリノスタット(Vorinostat),VP−16,ブモン(Vumon)(登録商標),ゼローダ(Xeloda)(登録商標),ザノサール(Zanosar)(登録商標),ゼバリン(Zevalin)(商標),ジネカード(Zinecard)(登録商標),ゾラデックス(Zoladex)(登録商標),ゾレドニック酸(Zoledronic acid),ゾリンザ(Zolinza)およびゾメタ( Zometa)を挙げることができる。
このマーおよびポリマーの1H−および13C−NMRスペクトルを、Bruker Avance 400分光計を用い、それぞれ400および100MHzで動作させて記録した。溶媒のプロトン信号を、内部参照標準とした。
ポリマーへの変換をモニタし、かつマクロ−トランスファー・エージェントのポリスチレン換算分子量を決定するため、THFを溶離液として使用してSECを行った。THFSECは、Waters2414差分屈折率計およびWatersHR−4E、HR−1カラムを搭載したWaters 2695D分離モジュールで記録した。システムをTHF中30℃で平衡化し、ポリマー溶液および溶離液を、1.0mL/分の流速で供給した。ポリマー溶液は、既知濃度(約3mg/mL)で調整し、200マイクロリットルの注入容量を使用した。データ収集および分析は、Astraソフトウェア(Wyatt Technology Corporation、USA、バージョン5.3.4.1.4)を使用して実行した。カラムは、Mp=360Da〜Mp=778jDaまでにわたるポリスチレン標準(Polymer Standard Service、USA)シリーズを使用して校正した。
薬剤担持のナノ構造体のモルフォロジーを、200keVの加速電圧でEFI Tecnai G2 F20電子顕微鏡を使用して観測した。TEMサンプルを、まず水性ポリマー溶液(4.0マイクロリットル)の滴をformvar被覆された200メッシュの銅グリッド(Ted Pella Inc.,USA)上に滴下して調整した。1分後、過剰の溶液をフィルタ紙を使用して拭い取った。その後、染色剤であるリンタングステン酸(2%w/v、4.0マイクロリットル)をグリッド上に配置し、1分後、過剰の溶液を拭い去り、室内条件下にグリッドを置き、乾燥させた。
(実施例1)tert−ブチル2−オキソ−1,3−ジオキサン−5−イルカルバメート(tBuODC)の合成
エチル2−オキソ−1,3−ジオキサン−5−イル−カルバメート(EtODC)を、実施例1で概ね説明した手順を使用して調整した。
マグネチック攪拌棒を装着した500mL丸底フラスコ中で、THF(250mL)にC5DHPA(4.8g、18.3mmol、1.0当量)およびエチルクロロホルメート(7.0mL、8.0g、73.7mmol、4.0当量)を窒素雰囲気下、溶解した。反応混合物を氷冷条件で30分間平衡化し、TEA(10.2mL、7.4g、73.3mmol、4.0当量)を、冷却した反応混合物に滴下して加え(20分以上かけて)た。1時間後、反応混合物を室温まで暖め、反応物を約15時間攪拌した。続いてTEA.HCL塩が析出し、これを濾過により除去し、真空下で揮発分を除去して粗生成物として白っぽいワックス上の固体が得られた。粗生成物を、さらにテトラヒドロフラン:ジエチルエーテル(10:90、20:80v/v)(100mL)から再結晶して、白色固体(2.4g、48%)を得た。
tBuODCで形成されるホモポリマーである保護ポリカーボネートPPC1、すなわち、ポリ(tert−ブチル2−オキソ−1,3−ジオキサン−5−イル−カルバメート)の調整は、ベンジルアルコールで開始され、保護ポリカーボネート・ホモポリマーおよびコポリマーを調整するための開環重合の代表例である。
実施例14で説明した概略手順を使用して、種々の保護ポリカーボネート・ランダムコポリマーを、tBuODC(モノマー1)、EtODC(モノマー2)を、異なる量のモノマー1およびモノマー2を含む混合物を使用し、ベンジルアルコールにより開始されるROPにより調整した(表7)。
(実施例22)4−アームスターポリマーPPC10
後述する脱保護の実施例では、アミン・ポリマーAPC1〜APC14の構造の添え字x′、y′を、脱保護ステップ後にNMRで決定した。NMRで決定したAPC1〜APC14の数平均分子量(Mn)を表8に示す。
脱イオン水中でのポリマーの極限ミセル濃度(CMCs)を、プローブとしてピレンを使用して蛍光分光法により決定した。蛍光スペクトルは、LS50Bルミネッセンス分光計(Perkin Elmer、U.S.A)により25℃で記録した。ポリマー・サンプルを、測定の前に10分間平衡化した。ピレン試料のアセトン溶液(6.16×10−5M、10マイクロリットル)を、ガラス・バイアルに加え、空気乾燥してアセトンを除去した。濃度を変えたポリマー溶液をそれぞれ1mLピレンに加えて、24時間立てて放置した。各バイアル中の最終的なピレン濃度は、6.16×10−7Mであった。励起スペクトルを、395nmの発光を使用して300nmから360nmでスキャンした。励起および発光バンド幅を、2.5nmに設定した。励起スペクトルのI337/I334の強度比(ピーク高さ)を、ポリマー濃度の関数として分析した。CMCは、曲線の屈曲点での接線と、低濃度でのデータ点の接線とが交差する点とした。
ジクロフェナク(DFC)およびペニシリンG(PenG)の水溶液を、ナノ粒子にカプセル化した。
DCF担持ナノ粒子からのDCF放出を、透析法を使用して検討した。DCFを担持したナノ粒子9mLを、1kDaのMWCO(Spectrum Laboratories、U.S.A)を有する透析メンブレンチューブに移し、PBS(pH7.4)40mLまたは酢酸ナトリウム/酢酸緩衝液(pH5.6)のいずれかに対して透析を行った。セットアップは、オービタル・シェイカーで37℃、100rpmにて振トウした。設定した時間間隔で、放出された媒体の1mLを除去し、フレッシュな媒体に置き換えた。媒体内に放出されたDCFの量を、上述したように、276nmでHPLCを使用して分析した。
ヒト真皮繊維芽細胞(HDF)を、96ウェル・プレートにウェル当たり、1.0×104セルの密度で播種し、成長媒体100マイクロリットル中で培養した。プレートを37℃で一晩培養し、処理前に70%〜80%の培養密度に到達させた。種々の濃度のポリマー溶液を調整した。所望する細胞の培養密度に達した時、使用済みの成長媒体を各ウェルから除去し、予め準備した溶液100マイクロリットルで置換し、培養器に戻した。2日の培養の後、培養媒体を除去し、MTT溶液10マイクロリットルを、100マイクロリットルのフレッシュな媒体と共に添加した。DMSO100マイクロリットルをその後各ウェルに添加して、内部の紫色のホルマザン結晶を溶解した。100マイクロリットルの試料を各ウェルから採取し、新たな95ウェル・プレートに移した。このプレートをその後、マイクロプレート・リーダ(TECAN、Swizerland)を使用して690nmを参照波長として550nmで定量した。ホルマザン結晶の吸収値は、690nmのもので、550nmのものを減じることによって得た。結果を、如何なる処理も受けていない対照細胞の吸収値に対するパーセンテージとして表現した。
PBSに懸濁したラットの赤血球細胞100マイクロリットル(4容量%)をそれぞれ96ウェル・プレートの各ウェルに配置し、ポリマー溶液100マイクロリットルを各ウェルに添加した。このプレートを、37℃で培養した。細胞懸濁液を取り出し、1000rpm、5分間遠心分離した。上澄み試料(100マイクロリットル)を96ウェル・プレートに移し、ヘモグロビン放出を、マイクロプレート・リーダ(TECAN、Switzerland)を使用し、576nmでモニタした。PBS中赤血球細胞懸濁液を、ネガティブ対照群とした。0.1%TritonX−100に溶解した赤血球細胞によるウェルの吸収を、溶血100%とした。溶血のパーセンテージを、下記式を使用して計算した。(O.D.=光学密度):溶血(%)=[O.D.576nm(polymer solution)−O.D.576nm(0.1%TRITONX−100)−O.D.576nm(PBS)]×100
脱イオン水中の新たに調整したDCF担持ナノ粒子のサイズを、22℃、30日間モニタした。初期サイズ測定の後、サンプルをそれらのそれぞれの貯蔵条件下で貯蔵した。直接サンプルチューブ内で分析する前に、指定した時間間隔で試料を、0.5時間室温に置いて温度平衡とした。
両親媒性のコポリマーは、水溶液中で自己会合して、それらの臨界ミセル濃度として示されるようにミセル構造を形成する傾向にある。表10は、DI水中における3〜630mg/Lの範囲のCMC値をリストする。CMCの広いレンジは、ミセル構造がコポリマーの疎水性−親水性バランスに大きく依存することを示しており、低いCMC値のポリマーは、高い疎水性割合を有する。
ジクロフェナク(DCF)およびペニシリンG(PenG)を、有機溶媒を使用することなく、直接ナノ粒子にカプセル化した。ナノ粒子は、それらのサイズおよび薬剤担持能力(表10)にしたがって特徴付けた。カチオン性アミン・ポリマーと、DCFおよびPenGのアニオン性のカルボキシ基との間のイオン性相互作用は、高い薬剤担持レベルおよびカプセル化効率を与えた。PenGのナノ粒子へのカプセル化は、また、サイズおよびブランクのナノ粒子に比較したDCFおよびPenGを担持したナノ粒子の多分散性の著しい減少により、より緊密な充填構造を与えた。表10に示されるように、担持させる前のミセルは、平均流体動力学的粒径が、包括的に192nmから288nmの範囲に有った。担持させたナノ粒子は、平均流体動力学的粒径が、包括的に80nmから168nmの範囲に有った。
実施例47(APC9/DCF)のナノ粒子からのDCFのin vitro放出を2つの異なる緩衝溶液、PBS(pH7.4)または20mMの酢酸ナトリウム/酢酸緩衝液(pH5.6)内で(図2のグラフ)、37℃、24時間モニタした。2つのpHでの薬剤放出性の比較は、pH7.4におけるナノ粒子からのDCFの放出は、pH5.6におけるよりも、DCFの放出量で約30%高く、著しく速かった。他はいpHにおける放出速度の増加は、カチオン性アミン・ポリマーの*−NH3 +基の脱プロトン化が、アニオン性薬剤の結合を弱めているためのようであった。
脱保護したポリマーAPC9から製造した担持させたナノ粒子を、それらの対応するMICとして示される静菌抑制濃度に関連して評価した。APC9それ自身は、S.aureusの増殖を抑制しないが、PenG担持APC9ナノ粒子は、約0.05mg/LPenG当量のMICを有する。さらにAPC9ポリマーおよびPenG担持APC9ナノ粒子は、200倍の当量ポリマーおよびPenG濃度であっても、ほとんど無視できる溶血性しか示さない(〜2%溶血)。APC6、APC8は、CMCsの値が高いので、PenGを担持させるためには使用しなかったが、これは、静脈内注射の後の安定する可能性を示唆するものである。
ポリマーAPC9,APC8、およびAPC6を、ヒト真皮繊維芽細胞(HDF)に対する毒性の点で試験した。ポリマーAPC7は、水溶性がないことから試験しなかった。図5の棒グラフ(APC9、APC8、APC6は、ぞれぞれ(a)、(b)、(c)としてラベルされている。)に示されるように、どのポリマーもHDF細胞に対して顕著な細胞毒性を示さなかった。HDF細胞生存性は、500mg/Lの濃度に至るまで>80%と高く維持されていた。
APC8およびAPC9をそれぞれ脱保護化した実施例46、47のDCF担持ナノ粒子を、22℃で30日間粒径の変化をモニタして棚段寿命安定性を試験した(図6のグラフ)。図6から、APC8の担持ナノ粒子は、より高い親水性含有量を有し、APC9から製造した担持ナノ粒子に比較して低い粒径安定性を示した。APC8担持ナノ粒子は、30日経過で、粒径の5倍の増加(212nmから978nm)を示した。粒径の大きなバラツキが、PDIとして観測され、PDIは、0.23〜1まで増加した。比較すると、脱保護したポリマーAPC9から調整した担持ナノ粒子は、30日の機関にわたり、高く安定で、粒径およびPDIの変化(粒径から125nm、PDI〜0.1)も無視できた。
保護されたセリノール由来の1級アミン官能基を含有する脂環式カーボネート・モノマーが調整され、このモノマーは、ホモポリマー化または他のカーボネート・モノマーとコポリマー化することができる。tBoc基の選択的な脱保護化においては、これらのカチオン性ポリマーは、抗微生物剤βラクタム・クラス(ペニリシンG ナトリウム塩)および鎮痛剤のNSAIDクラス(ジクロフェナクナトリウム塩)といったアニオン性薬剤をカプセル化するために使用された。ドラッグ・デリバリー用途から離れても、これらの材料は、ミセルと、添加される機能性材料との間のポリマー電解質間複合体形成に使用される。APC9は、アニオン性薬剤を含有する抗微生物組成物の形成のために最も有用なアミン・ポリマーであった。APC9のトリフロロ酢酸カウンター・イオンは、如何なる好適なカウンター・イオンXで置換でき、上述したAPC9構造のx′およびy′は、10以上とすることができ、より好ましくは、20以上とすることができる。ポリ(エチレンオキシド)鎖は、50以上、より好ましくは100〜150、に等しいn′または1000〜5000DaのMnを有することができる。
Claims (30)
- アニオン性の薬剤と、
式(2)の第1の繰り返し単位を含むアミン・ポリマーと
を含む、抗微生物性組成物。
a′は、1または2に等しい整数であり、
b′は、1または2に等しい整数であり、
R′は、独立して、水素、メチル、エチル、およびそれらの組合せから選択される1価ラジカルであり、
G′は、単結合および少なくとも1つの炭素を含有する基からなる群から選択される2価架橋基であり、
X−は、負に帯電したカウンター・イオンであり、
前記薬剤と、前記アミン・ポリマーとが、非共有結合性の相互作用により結合する。) - G′は、前記アミン・ポリマーの主鎖に結合する窒素を含む、請求項1に記載の組成物。
- 前記a′は、1であり、b′は1である、請求項1に記載の組成物。
- 前記アミン・ポリマーは、微生物に対して0mg/Lを超え、200mg/Lよりも小さい最小抑制濃度(MIC)を有する、請求項1に記載の組成物。
- 前記アミン・ポリマーは、4級アミン基を含む繰り返し単位を含まない、請求項1に記載の組成物。
- 前記アミン・ポリマーは、ポリカーボネートまたはポリエステルカーボネート、またはそれら両方である、請求項1に記載の組成物。
- 前記アミン・ポリマーは、2ブロックのコポリマーである、請求項1に記載の組成物。
- 前記アミン・ポリマーは、3ブロックのコポリマーである、請求項1に記載の組成物。
- 前記アミン・ポリマーは、6以上の独立したブロック・コポリマーのアームを有するスター型ポリマーであり、前記アームはそれぞれ、第1の繰り返し単位を有する第2ブロックに結合したポリ(アルキレン・オキシド)主鎖を含む第1ブロックを含み、前記第1ブロックは、末端基により前記スター型ポリマーの共有的に架橋されたミクロゲル・コアに結合する、請求項1に記載の組成物。
- 前記アミン・ポリマーは、共有結合的に架橋されたヒドロゲルのペンダント基である、請求項1に記載の組成物。
- 前記薬剤は、ジクロフェナク(DCF)である、請求項1に記載の組成物。
- 前記薬剤は、ペニシリンG(PenG)である、請求項1に記載の組成物。
- 前記アミン・ポリマーは、下記構造を有する、請求項1に記載の組成物。
- 下記構造式(4)の第1の繰り返し単位を含む、抗微生物性のアミン・ポリマー。
a′は、1または2に等しい整数であり、
b′は、1または2に等しい整数であり、
R′は、それぞれ独立して、水素、メチル、エチル、およびそれらの組合せから選択される1価ラジカルであり、
L′は、2〜10の炭素を含む2価の架橋性基であり、
X−は、負に帯電したカウンター・イオンである。) - 前記アミン・ポリマーは、第1の繰り返し単位のホモポリマーであり、前記ホモポリマーは、モノマー性のアルコキシ末端基またはモノマー性のアリロキシ末端基を有する、請求項14に記載のアミン・ポリマー。
- 前記アミン・ポリマーは、15〜45の重合度を有する、請求項15に記載のアミン・ポリマー。
- 前記アミン・ポリマーは、水中、Echerichia coliに対して30mg/L〜125mg/Lの最小抑制濃度(MIC)を有する、請求項15に記載のアミン・ポリマー。
- 前記アミン・ポリマーは、水中、黄色ブドウ球菌に対して30mg/L〜125mg/Lの最小抑制濃度(MIC)を有する、請求項15に記載のアミン・ポリマー。
- 前記第1の繰り返し単位が、下記式である、請求項15に記載のアミン・ポリマー。
- 前記アミン・ポリマーが、下記構造を有する、請求項15に記載のアミン・ポリマー。
- 前記アミン・ポリマーは、
i)第1の繰り返し単位、
ii)エステルまたはカーボネート主鎖基を含む疎水性の第2の繰り返し単位、および
iii)単量体のアルコキシ末端基または単量体のアリロキシ末端基
からなる、請求項14に記載のアミン・ポリマー。 - 直鎖ランダムコポリマーは、10〜30の重合度を有する、請求項21に記載のアミン・ポリマー。
- i)第1の環状カーボネート・モノマー、
ii)開環重合のための親核性開始剤、
iii)有機触媒、および
iv)溶媒
を含む混合物を調整することと、
前記混合物を攪拌して開環重合により保護されたアミン・ポリマーを形成することと、
前記保護されたアミン・ポリマーをTFA(トリフロロ酢酸)を使用して脱保護して抗微生物性のアミン・ポリマーを形成すること
とを含み、
前記第1の環状カーボネート・モノマーが式(6)の構造を有する、
抗微生物性のアミン・ポリマーの製造方法。
- 式(2)の第1の繰り返し単位を含むアミン・ポリマーの第1の水性混合物を形成することと、
アニオン性薬剤を含む第2の水性混合物を形成することと、
前記第1の水性混合物と、前記第2の水性混合物とを組み合わせて、前記アミン・ポリマーと前記薬剤とが非共有性の相互作用によって結合した抗微生物組成物を形成することと、
を含む抗微生物組成物の製造方法。 - 微生物を請求項1の組成物に接触させて、前記微生物を死滅させる方法(ただし、人体の治療方法を除く)。
- 請求項1の組成物を基材の表面に配置し、溶媒を除去して抗微生物層を、前記基材の表面に形成する方法。
- 前記基材は、医療用デバイスである、請求項26に記載の方法。
- 医療用デバイスの表面に配置された請求項1の組成物を含む、物体。
- 前記医療用デバイスは、カテーテルである、請求項28に記載の物体。
- 前記医療用デバイスは、巻き付けて装着するために好適な材料である、請求項28に記載の物体。
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