JP6432774B2 - 細胞賦活剤 - Google Patents
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Description
本発明は、細胞賦活剤に関する。
現在、培養細胞は、医薬品（例えば、抗体、細胞成長因子、免疫活性物質など）の製造、医薬品研究用のツール、化粧品の評価などのように多分野に使用されている。細胞培地中には、細胞の成長・分裂を制御するために、各種の血清由来成分（例えば、アルブミン、インスリン、細胞成長因子など）を添加することが多い。このとき、添加される成分が少ないほど、培養細胞の成長・分裂のコントロール、未知成分由来の因子を制御できる可能性が高まるので、そのような代替物質を得ることが求められている（例えば、特許文献１、２）。
一方、ジメチルスルフォニオプロピオナート（dimethylsulfoniopropionate、以下、DMSPと省略する）は、スルホニウムの一種である有機硫黄化合物であり、ミズゴケやプランクトンが生産することが知られている。DMSPは、化学的に不安定であるため、その特性を調べた研究は少ないが、ニワトリ、金魚などに与えると、生体賦活作用を示すことが知られている（非特許文献１）。
一方、ジメチルスルフォニオプロピオナート（dimethylsulfoniopropionate、以下、DMSPと省略する）は、スルホニウムの一種である有機硫黄化合物であり、ミズゴケやプランクトンが生産することが知られている。DMSPは、化学的に不安定であるため、その特性を調べた研究は少ないが、ニワトリ、金魚などに与えると、生体賦活作用を示すことが知られている（非特許文献１）。
甲子園大学紀要 A 栄養学部編 (24), 1-14, 1996
しかしながら、DMSPが培養細胞に与える影響を調べた研究は認められず、その知見は不明であった。
本発明は、上記した事情に鑑みてなされたものであり、その目的は、細胞賦活剤、特に培養細胞の培地中に添加することで、細胞活性を増強させられるものを提供することである。
本発明は、上記した事情に鑑みてなされたものであり、その目的は、細胞賦活剤、特に培養細胞の培地中に添加することで、細胞活性を増強させられるものを提供することである。
本発明者は、鋭意検討の結果、ジメチルスルフォニオプロピオナート（dimethylsulfoniopropionate：DMSP）を培養細胞の培地中に添加することで、細胞活性を強力に増加させることを見出し、基本的には本発明を完成するに至った。
こうして、上記目的を達成するための発明に係る細胞賦活剤は、DMSPを主要成分として含むことを特徴とする。
DMSPは、示性式が(CH3)2S+CH2CH2COO-で示され、分子量が134.04の化合物である。海や湿地帯の植物やプランクトンが生産する。化学的に不安定で、硫酸塩エアロゾルと有機エアロゾルとに変わり、雲を発生させることが知られている。
本発明に係る細胞賦活剤は、培養細胞の培地中に添加することにより、その効果を発揮する。
こうして、上記目的を達成するための発明に係る細胞賦活剤は、DMSPを主要成分として含むことを特徴とする。
DMSPは、示性式が(CH3)2S+CH2CH2COO-で示され、分子量が134.04の化合物である。海や湿地帯の植物やプランクトンが生産する。化学的に不安定で、硫酸塩エアロゾルと有機エアロゾルとに変わり、雲を発生させることが知られている。
本発明に係る細胞賦活剤は、培養細胞の培地中に添加することにより、その効果を発揮する。
また、他の発明に係る細胞の培養方法は、培地中にDMSPを添加して培養することを特徴とする。
このとき、培地中に添加させるDMSPの最終濃度は、0.4μg/ml以上であることが好ましい。本実施例によれば、436μg/mlまで濃度を上昇させても、細胞増殖を大きく阻害するような要因は認められなかった。但し、DMSPは不安定であることから、その機能は時間的に効果が減少する可能性がある。このため、DMSPを培地に添加するときには、一定時間毎（例えば、48時間〜72時間毎）に添加することが好ましい。
培養される細胞としては、特に限定されないが、例えば初代培養細胞、培養細胞株、組換培養細胞株などが例示される。また、由来としては、特に限定されないが、哺乳類（ヒト、チンパンジー、サル（カニクイザル、アカゲザル、アフリカミドリザル、ニホンザルを含む）、ウシ、ウマ、ブタ、ラクダ、シカ、イヌ、ネコ、ウサギ、ラット、マウス、チャイニーズハムスター、シリアンハムスターなど）、鳥類（ニワトリなど）、昆虫細胞などが例示される。なお、種の異なる２つ以上の細胞をハイブリッドさせて作製された細胞（例えば、抗体産生用ハイブリドーマなど）を用いることもできる。
また、細胞が由来する器官・組織としては、特に限定されないが、血球・リンパ系、血管系、脳・神経系、骨髄、筋組織、胸腺、唾液腺、口腔、食道、胃、肝臓、胆嚢、脾臓、小腸、大腸、直腸、皮膚、角膜、肺、甲状腺、哺乳器、子宮、子宮頸部、卵巣、精巣、膵臓、腎臓、副腎皮質、膀胱、胎盤、臍帯、胎仔、胎子、尾、間葉系幹細胞、ガン細胞（メラノーマ、テラトカルシノーマ、腹水、肉腫など）などが例示される。
このとき、培地中に添加させるDMSPの最終濃度は、0.4μg/ml以上であることが好ましい。本実施例によれば、436μg/mlまで濃度を上昇させても、細胞増殖を大きく阻害するような要因は認められなかった。但し、DMSPは不安定であることから、その機能は時間的に効果が減少する可能性がある。このため、DMSPを培地に添加するときには、一定時間毎（例えば、48時間〜72時間毎）に添加することが好ましい。
培養される細胞としては、特に限定されないが、例えば初代培養細胞、培養細胞株、組換培養細胞株などが例示される。また、由来としては、特に限定されないが、哺乳類（ヒト、チンパンジー、サル（カニクイザル、アカゲザル、アフリカミドリザル、ニホンザルを含む）、ウシ、ウマ、ブタ、ラクダ、シカ、イヌ、ネコ、ウサギ、ラット、マウス、チャイニーズハムスター、シリアンハムスターなど）、鳥類（ニワトリなど）、昆虫細胞などが例示される。なお、種の異なる２つ以上の細胞をハイブリッドさせて作製された細胞（例えば、抗体産生用ハイブリドーマなど）を用いることもできる。
また、細胞が由来する器官・組織としては、特に限定されないが、血球・リンパ系、血管系、脳・神経系、骨髄、筋組織、胸腺、唾液腺、口腔、食道、胃、肝臓、胆嚢、脾臓、小腸、大腸、直腸、皮膚、角膜、肺、甲状腺、哺乳器、子宮、子宮頸部、卵巣、精巣、膵臓、腎臓、副腎皮質、膀胱、胎盤、臍帯、胎仔、胎子、尾、間葉系幹細胞、ガン細胞（メラノーマ、テラトカルシノーマ、腹水、肉腫など）などが例示される。
本発明によれば、細胞賦活剤、特に培養細胞の培地中に添加することで、細胞活性を増強させられるものを提供することが可能となる。
次に、本発明の実施形態について、図表を参照しつつ説明するが、本発明の技術的範囲は、これらの実施形態によって限定されるものではなく、発明の要旨を変更することなく様々な形態で実施することができる。
＜DMSPの効果確認試験１＞
１．試験方法
(1)被験細胞の培養
被験細胞として、ATCCから購入したCHO-DP12（抗ヒトインターロイキン8抗体を産生するCHO由来細胞）を使用した。この細胞を無血清培地A（HyClone CDM4CHO （サーモフィッシャーサイエンティフィック株式会社）、glutamine 4mM 及びメトトレキサレート（MTX、シグマアルドリッチ）200nMを含む）に馴化して用いた。
１．試験方法
(1)被験細胞の培養
被験細胞として、ATCCから購入したCHO-DP12（抗ヒトインターロイキン8抗体を産生するCHO由来細胞）を使用した。この細胞を無血清培地A（HyClone CDM4CHO （サーモフィッシャーサイエンティフィック株式会社）、glutamine 4mM 及びメトトレキサレート（MTX、シグマアルドリッチ）200nMを含む）に馴化して用いた。
(2)MTTアッセイ
MTT細胞数測定キット（ナカライテスク）を用いて、細胞数を測定した。具体的には、次の方法に従った。
(i)96 well（ウエル）培養プレート（住友ベークライト）に、7000 cells/well (90μl)で細胞懸濁液を播種した。
(ii)各ウェルに、ろ過滅菌済みDMSP溶液（溶媒：超純水）を10μl添加し、ボルテックスにて混合した。DMSPは、最終濃度として、0, 0.436, 1.45, 4.36, 14.5, 43.6, 145及び436μg/mlとなるように添加した。各DMSP濃度について、サンプル数n=5とした。
(iii)培養プレート中の細胞を炭酸ガスインキュベーター（CO2 5.0%、36.5℃）内で培養した。
(iv)培養開始から、24時間後、48時間後及び72時間後に、インキュベーターから培養プレートを取り出し、各ウェルにMTT試薬（ナカライテスク）10μl添加してボルテックス混合した。
(v)炭酸ガスインキュベーター内で、２〜４時間保温した。
(vi)培養プレートを取り出し、各ウェルにイソプロピルアルコール（ナカライテスク）100μl添加し、フィルムでウェルを覆い、炭酸ガスインキュベーター内で16-20時間保温した。
(vii)マイクロプレートリーダー（サーモフィッシャーサイエンティフィック）で570 nmにおける吸光度を測定した。
MTT細胞数測定キット（ナカライテスク）を用いて、細胞数を測定した。具体的には、次の方法に従った。
(i)96 well（ウエル）培養プレート（住友ベークライト）に、7000 cells/well (90μl)で細胞懸濁液を播種した。
(ii)各ウェルに、ろ過滅菌済みDMSP溶液（溶媒：超純水）を10μl添加し、ボルテックスにて混合した。DMSPは、最終濃度として、0, 0.436, 1.45, 4.36, 14.5, 43.6, 145及び436μg/mlとなるように添加した。各DMSP濃度について、サンプル数n=5とした。
(iii)培養プレート中の細胞を炭酸ガスインキュベーター（CO2 5.0%、36.5℃）内で培養した。
(iv)培養開始から、24時間後、48時間後及び72時間後に、インキュベーターから培養プレートを取り出し、各ウェルにMTT試薬（ナカライテスク）10μl添加してボルテックス混合した。
(v)炭酸ガスインキュベーター内で、２〜４時間保温した。
(vi)培養プレートを取り出し、各ウェルにイソプロピルアルコール（ナカライテスク）100μl添加し、フィルムでウェルを覆い、炭酸ガスインキュベーター内で16-20時間保温した。
(vii)マイクロプレートリーダー（サーモフィッシャーサイエンティフィック）で570 nmにおける吸光度を測定した。
２．試験結果
結果を表１〜表４及び図１〜図３に示した。
結果を表１〜表４及び図１〜図３に示した。
表１〜表３には、培養開始から24時間後、48時間後及び72時間後におけるDMSP濃度と570nmにおける吸光度を測定した結果（n=5）を示した。また、表４には、コントロール（DMSP添加なし（0 μg/ml））の吸光度を基準（1.000）とした場合の各DMSP濃度における吸光度（平均値）を相対値として示した。
図１〜図３には、培養開始から24時間後、48時間後及び72時間後におけるDMSP濃度と570nmにおける吸光度との関係をそれぞれ示した。
図１に示すように、DMSP添加なしを基準とした場合、DMSPを添加したサンプルの吸光度値は、全て高かった。また、Student's t検定を行った結果、培養時間に関わらず、濃度0.436μg/mlの時に有意差（P＜0.05）が確認された。
培養日数が経過するにつれて、DMSP添加したサンプルの吸光度値は、DMSP添加なしの吸光度値と比較して時の増加率が大きくなっていた。
以上の結果から、DMSP添加によりCHO-DP12の細胞増殖または代謝が活性化されたと考えられた。DMSPによる細胞賦活化は、少なくとも今回検討した濃度範囲では有効であり、培養72時間は有効であると考えられた。
図１〜図３には、培養開始から24時間後、48時間後及び72時間後におけるDMSP濃度と570nmにおける吸光度との関係をそれぞれ示した。
図１に示すように、DMSP添加なしを基準とした場合、DMSPを添加したサンプルの吸光度値は、全て高かった。また、Student's t検定を行った結果、培養時間に関わらず、濃度0.436μg/mlの時に有意差（P＜0.05）が確認された。
培養日数が経過するにつれて、DMSP添加したサンプルの吸光度値は、DMSP添加なしの吸光度値と比較して時の増加率が大きくなっていた。
以上の結果から、DMSP添加によりCHO-DP12の細胞増殖または代謝が活性化されたと考えられた。DMSPによる細胞賦活化は、少なくとも今回検討した濃度範囲では有効であり、培養72時間は有効であると考えられた。
このように、本実施形態によれば、培養細胞の培地中に添加することで、細胞活性を増強させられる細胞賦活剤を提供できた。
Claims (3)
- ジメチルスルフォニオプロピオナート（dimethylsulfoniopropionate：DMSP）を主要成分として含み、最終培地中のDMSPの濃度が0.4μg/ml〜4.36μg/mlとなることを特徴とする無血清培地用細胞賦活剤。
- 培地中に0.4μg/ml〜4.36μg/mlのDMSPを添加して培養することを特徴とする無血清培地における細胞の培養方法。
- DMSPは少なくとも72時間毎に培地中に添加することを特徴とする請求項２に記載の無血清培地における細胞の培養方法。
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| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
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| JP2014262073A JP6432774B2 (ja) | 2014-12-25 | 2014-12-25 | 細胞賦活剤 |
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