JP6178162B2 - Macrophage activator containing mucin treated with β-galactosidase - Google Patents

Macrophage activator containing mucin treated with β-galactosidase Download PDF

Info

Publication number
JP6178162B2
JP6178162B2 JP2013171620A JP2013171620A JP6178162B2 JP 6178162 B2 JP6178162 B2 JP 6178162B2 JP 2013171620 A JP2013171620 A JP 2013171620A JP 2013171620 A JP2013171620 A JP 2013171620A JP 6178162 B2 JP6178162 B2 JP 6178162B2
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
mucin
galactosidase
extract
composition
treated
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Active
Application number
JP2013171620A
Other languages
Japanese (ja)
Other versions
JP2015040183A (en
Inventor
亮太 竹内
亮太 竹内
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
MORITA PHARMACEUTICAL IND., LTD.
Original Assignee
MORITA PHARMACEUTICAL IND., LTD.
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by MORITA PHARMACEUTICAL IND., LTD. filed Critical MORITA PHARMACEUTICAL IND., LTD.
Priority to JP2013171620A priority Critical patent/JP6178162B2/en
Publication of JP2015040183A publication Critical patent/JP2015040183A/en
Application granted granted Critical
Publication of JP6178162B2 publication Critical patent/JP6178162B2/en
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Images

Landscapes

  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Medicines Containing Plant Substances (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)

Description

本発明は、マクロファージを活性化するための、β−ガラクトシダーゼで処理された食品由来のムチンを含む組成物を提供する。   The present invention provides a composition comprising food-derived mucins treated with β-galactosidase for activating macrophages.

マクロファージは生体内の免疫反応の中心的役割を担い、生体内に侵入した細菌・ウイルス、また癌細胞等を攻撃することが明らかにされている。今日では、生体内のマクロファージを活性化させ、感染症や癌等を治療するマクロファージ活性化療法が開発され、注目を集めている。   It has been shown that macrophages play a central role in the immune response in the body and attack bacteria / viruses and cancer cells that have entered the body. Today, macrophage activation therapy that activates macrophages in the body and treats infections, cancers, and the like has been developed and attracts attention.

本発明者らはこれまでにヒトの血清中に存在する糖タンパク質であるビタミンD結合型タンパク質(以下、「DBP」と記載する。)をβ−ガラクトシダーゼ、必要に応じてさらにシアリダーゼで処理し、DBPの糖鎖を修飾することによってDBPにマクロファージ活性化作用を付与できることを見出し、報告している(特許文献1)。   The present inventors have previously treated vitamin D-binding protein (hereinafter referred to as “DBP”), which is a glycoprotein present in human serum, with β-galactosidase, and if necessary, further treated with sialidase, It has been found and reported that macrophage activation can be imparted to DBP by modifying the sugar chain of DBP (Patent Document 1).

しかしながら、当該分野においては依然として、簡易且つ効率的にマクロファージを活性化することが可能な手段が切望されている。   However, there is still a need in the art for a means that can activate macrophages simply and efficiently.

糖タンパク質のうち、単純な繰り返し構造を持つペプチド鎖に、1〜数十個程度の単糖からなる糖鎖がO−グリコシド結合で周期的に結合してなる高分子糖タンパク質は「ムチン」と総称される。ムチンは、動植物の粘液の成分として天然に多種存在し、生体系において、細胞組織の保湿、保護、潤滑などの物理的作用の他、細胞外マトリックスとして抗菌効果を示し、ウイルスなどの感染を抑える等、様々な重要な働きをすることが知られている。   Among glycoproteins, high molecular glycoproteins consisting of 1 to several tens of sugar chains periodically linked by O-glycosidic bonds to peptide chains with a simple repeating structure are called “mucins”. Collectively. Mucin exists naturally as a component of mucus in animals and plants, and in the biological system, it exhibits antibacterial effects as an extracellular matrix in addition to physical actions such as moisturizing, protecting, and lubricating cellular tissues, and suppresses infections such as viruses. It is known to perform various important functions.

WO2012/029954WO2012 / 029954

本発明は、マクロファージを活性化することが可能な新たな手段を提供することを目的とする。   An object of this invention is to provide the new means which can activate a macrophage.

本発明者らは、上記課題を解決すべく鋭意検討した結果、食品由来のムチンをβ−ガラクトシダーゼで処理することによって、当該ムチンにマクロファージ活性化作用を付与できることを見出し、本発明を完成させるに至った。   As a result of intensive studies to solve the above problems, the present inventors have found that a food-derived mucin can be treated with β-galactosidase to impart a macrophage activating action to the mucin, thereby completing the present invention. It came.

すなわち、本発明は以下の特徴を有する。
[1] 食品由来のムチンを含有する組成物であって、該ムチンがβ−ガラクトシダーゼで処理されている、上記組成物。
[2] 食品が植物である、[1]の組成物。
[3] 食品由来のムチンをβ−ガラクトシダーゼで処理することを含む、β−ガラクトシダーゼで処理された該ムチンを含有する組成物の製造方法。
[4] 食品が植物である、[3]の方法。
[5] 食品由来のムチンを含有し、該ムチンがβ−ガラクトシダーゼで処理されていることを特徴とする、マクロファージ活性化剤。
[6] 食品が植物である、[5]のマクロファージ活性化剤。
That is, the present invention has the following features.
[1] A composition containing a food-derived mucin, wherein the mucin is treated with β-galactosidase.
[2] The composition of [1], wherein the food is a plant.
[3] A method for producing a composition containing mucin treated with β-galactosidase, comprising treating mucin derived from food with β-galactosidase.
[4] The method according to [3], wherein the food is a plant.
[5] A macrophage activator comprising a food-derived mucin, wherein the mucin is treated with β-galactosidase.
[6] The macrophage activator according to [5], wherein the food is a plant.

本発明によれば、食品由来のムチンよりマクロファージを活性化する作用を有する組成物を提供することができる。本発明の組成物は、食経験の豊富な食品に由来するムチンより得ることができる組成物であり、マクロファージを活性化することを目的として日常的に摂取、使用、又は投与することができる安全性の高い組成物である。   ADVANTAGE OF THE INVENTION According to this invention, the composition which has the effect | action which activates a macrophage from food-derived mucin can be provided. The composition of the present invention is a composition that can be obtained from mucins derived from foods rich in dietary experience, and can be taken, used, or administered on a daily basis for the purpose of activating macrophages. It is a highly composition.

図1(A)は、CBB染色した結果を示す写真図である。各レーンにアプライしたサンプル:(M)マーカー、(レーン1)ムチン抽出液、(レーン2)加工ムチン抽出液。図1(B)及び(C)は、実施例2のHPAレクチンを用いたウェスタンブロッティングの結果を示す写真図である。(B)各レーンにアプライしたサンプル:(レーン1)ムチン抽出液、(レーン2)加工ムチン抽出液。(C)アプライしたサンプル:(レーン3)精製加工ムチン抽出液。FIG. 1 (A) is a photograph showing the results of CBB staining. Sample applied to each lane: (M) marker, (lane 1) mucin extract, (lane 2) processed mucin extract. 1 (B) and (C) are photographic diagrams showing the results of Western blotting using the HPA lectin of Example 2. FIG. (B) Sample applied to each lane: (lane 1) mucin extract, (lane 2) processed mucin extract. (C) Applied sample: (lane 3) purified processed mucin extract. 図2はGcMAF、ムチン抽出液、又は加工ムチン抽出液で処理したマクロファージの貪食活性を示す。FIG. 2 shows the phagocytic activity of macrophages treated with GcMAF, mucin extract, or processed mucin extract. 図3は精製加工ムチン抽出液を投与されたマウスに由来するマクロファージの貪食活性を示す。FIG. 3 shows the phagocytic activity of macrophages derived from mice administered with purified processed mucin extract.

1.β−ガラクトシダーゼで処理されたムチン
「ムチン」とは、アポムチンと呼ばれるコアタンパク質にO-グリコシド結合を介して無数の糖鎖が結合している高分子糖タンパク質の総称である(T. E. Maureen & D. Kurt: 糖鎖生物学入門,化学同人(2005))。より詳細には、ムチンは、セリン及び/又はトレオニンに富む10〜80残基からなる繰り返し構造を有するコアタンパク質を有し、このセリン及び/又はトレオニンの水酸基に糖鎖の還元末端のN-アセチルガラクトサミン(以下、「GalNAc」と記載する。)がα-O-グリコシド結合により高頻度で結合している構造を有する。糖鎖には、GalNAcに連結してN-アセチルグルコサミン、ガラクトース、フコース、シアル酸などが含まれ得る。
1. Mucin treated with β-galactosidase “Mucin” is a generic term for macromolecular glycoproteins in which an innumerable sugar chain is bound to a core protein called apomucin through O-glycosidic bonds (TE Maureen & D. Kurt: Introduction to Glycobiology, Chemical Doujin (2005)). More specifically, mucin has a core protein having a repeating structure consisting of 10 to 80 residues rich in serine and / or threonine, and N-acetyl at the reducing end of the sugar chain is added to the hydroxyl group of serine and / or threonine. Galactosamine (hereinafter referred to as “GalNAc”) has a structure in which α-O-glycoside bonds are bonded at a high frequency. The sugar chain may include N-acetylglucosamine, galactose, fucose, sialic acid and the like linked to GalNAc.

本発明において「ムチン」とは、上記構造を有するものであれば特に限定はされないが、食用とし得る天然物(いわゆる食品)由来のムチンが入手容易性及び安全性の面から好ましい。ムチンを含む食品は公知であり、例えば、イモ類(サツマイモ、ヤマイモ、ナガイモ(ツクネイモ、ヤマトイモ)、サトイモ等)、レンコン、オクラ、モロヘイヤ、アシタバ、ツルムラサキ、アロエ等の植物、燕の巣、海藻、ナメコ、クラゲ等が挙げられる。   In the present invention, the “mucin” is not particularly limited as long as it has the above-mentioned structure, but a mucin derived from a natural product (so-called food) that can be edible is preferable from the viewpoint of availability and safety. Foods containing mucin are known, for example, potatoes (sweet potatoes, yams, yams (Tsukuneimo, Yamatoimo), taros, etc.), lotus root, okra, moroheiya, ashitaba, tsurumurasaki, aloe and other plants, spider webs, seaweeds, Nameko, jellyfish and the like.

本発明において「ムチン」は、上記食品より溶媒を用いて抽出した抽出液又はその乾燥物の形態で用いることができる。抽出溶媒としては、食品よりムチンを抽出できるものであればよく、例えば水、アルコール(好ましくはエタノール)、及びそれらの混合液等を利用することができる。好ましくは抽出溶媒として水を利用する。抽出液の乾燥物は、得られた抽出液を凍結乾燥、噴霧乾燥、送風乾燥、真空乾燥等の公知の乾燥手段に付すことにより得ることができる。   In the present invention, “mucin” can be used in the form of an extract extracted from the food using a solvent or a dried product thereof. Any extraction solvent may be used as long as it can extract mucin from food. For example, water, alcohol (preferably ethanol), a mixed solution thereof, or the like can be used. Preferably, water is used as the extraction solvent. The dried extract can be obtained by subjecting the obtained extract to known drying means such as freeze drying, spray drying, blow drying, and vacuum drying.

本発明において「β−ガラクトシダーゼ」は、いずれの生物由来のものであってもよく、ウシ(ウシ肝臓)、大腸菌、アスペルギルス菌、ペニシリウム菌等に由来するものを利用することができる。また、β−ガラクトシダーゼをコードする核酸を用いて適切な宿主細胞で組み換え的に発現させて得られた組換え酵素も利用することができる。β−ガラクトシダーゼは、粗精製形態、精製形態、固定化形態などの任意の形態を採ることが可能である。粗精製形態には、例えば細胞、組織、又は細胞培養物からの処理物(例えば、抽出物、凍結乾燥物など)が含まれる。固定化形態とは、適当な固相に固定された状態を意味する。このような固相の材料としては、例えば、セルロース、ニトロセルロースなどのセルロース誘導体、セファロース、アガロース、金属、ガラス、セラミック、樹脂など(これらに限定されない)が挙げられる。固相の形状および材質は特に限定されるものではない。   In the present invention, “β-galactosidase” may be derived from any organism, and those derived from bovine (bovine liver), Escherichia coli, Aspergillus, Penicillium, and the like can be used. In addition, a recombinant enzyme obtained by recombinant expression in a suitable host cell using a nucleic acid encoding β-galactosidase can also be used. β-galactosidase can take any form such as a crudely purified form, a purified form, and an immobilized form. Crude forms include, for example, processed products (eg, extracts, lyophilized products, etc.) from cells, tissues, or cell cultures. The immobilized form means a state in which it is immobilized on an appropriate solid phase. Examples of such a solid phase material include, but are not limited to, cellulose derivatives such as cellulose and nitrocellulose, sepharose, agarose, metal, glass, ceramic, resin, and the like. The shape and material of the solid phase are not particularly limited.

ムチンのβ−ガラクトシダーゼによる処理は、水性溶媒中にてムチンとβ−ガラクトシダーゼとを反応させることにより行うことができる。反応はムチン、より詳細には糖鎖においてGalNAcに結合したガラクトースを外す/遊離させることができればよく、水性溶媒中にてムチンとβ−ガラクトシダーゼとを20〜60℃、好ましくは35〜42℃、より好ましくは37.5℃にて、0.5〜5時間、好ましくは、1〜3時間程度反応させることによって行うことができる。反応pHは、pH5〜pH11、好ましくは中性域とし、バッチ方式で行っても良いし、連続方式で行っても良い。水性溶媒としては、水やリン酸緩衝液(リン酸ナトリウム緩衝液等)を用いることができる。反応の停止は、熱処理(60〜70℃にて5〜15分間)にて酵素を失活させることにより行うことができる。   The treatment of mucin with β-galactosidase can be performed by reacting mucin with β-galactosidase in an aqueous solvent. The reaction only needs to be able to remove / release mucin, more specifically, galactose bound to GalNAc in the sugar chain. 20-60 ° C., preferably 35-42 ° C., of mucin and β-galactosidase in an aqueous solvent More preferably, it can be carried out by reacting at 37.5 ° C. for 0.5 to 5 hours, preferably about 1 to 3 hours. The reaction pH is from pH 5 to pH 11, preferably in the neutral range, and may be carried out by a batch method or a continuous method. As the aqueous solvent, water or a phosphate buffer (such as a sodium phosphate buffer) can be used. The reaction can be stopped by inactivating the enzyme by heat treatment (at 60 to 70 ° C. for 5 to 15 minutes).

得られたβ−ガラクトシダーゼで処理されたムチンは、適当な水性溶媒中に含めて液状の形態としてもよいし、公知の乾燥手段に付して乾燥物の形態としてもよい。   The obtained mucin treated with β-galactosidase may be included in a suitable aqueous solvent to form a liquid, or may be subjected to a known drying means to form a dried product.

上記抽出液及び/又は上記β−ガラクトシダーゼで処理されたムチンはさらに精製することができる。精製はムチンの精製に一般的に用いられる手法を利用することができ、例えば硫安塩析、有機溶媒(エタノール、メタノール、アセトン等)による沈殿分離、イオン交換クロマトグラフィー、等電点クロマトグラフィー、ゲルろ過クロマトグラフィー、疎水性クロマトグラフィー、吸着カラムクロマトグラフィー、基質または抗体などを利用したアフィニティークロマトグラフィー、逆相カラムクロマトグラフィーなどのクロマトグラフィー、精密ろ過、限外ろ過、逆浸透ろ過等の濾過処理などを1つまたは複数を適宜組み合わせて用いて精製することができる。精製により好ましくは45〜80kDa程度、さらに好ましくは56〜80kDa程度の分子量を有するタンパク質を少なくとも回収できればよい。   The mucin treated with the extract and / or the β-galactosidase can be further purified. For purification, methods commonly used for purification of mucin can be used. For example, ammonium sulfate salting out, precipitation separation with an organic solvent (ethanol, methanol, acetone, etc.), ion exchange chromatography, isoelectric point chromatography, gel Filtration chromatography, hydrophobic chromatography, adsorption column chromatography, affinity chromatography using substrates or antibodies, chromatography such as reverse phase column chromatography, filtration treatment such as microfiltration, ultrafiltration, reverse osmosis filtration, etc. Can be purified using one or more in combination. It is sufficient that at least a protein having a molecular weight of preferably about 45-80 kDa, more preferably about 56-80 kDa can be recovered by purification.

本発明の組成物又はマクロファージ活性化剤中には、β−ガラクトシダーゼで処理されたムチンをタンパク質の量にして、0.0001mg〜100mgの範囲から適宜選択される量を含めることができる。当該含有量は、組成物又はマクロファージ活性化剤の形態、用法、用量、並びに、当該組成物又はマクロファージ活性化剤を必要とするヒト(患者)又は動物の年齢、体重、疾患の重篤度などの要因によって変化し得る。   In the composition or macrophage activator of the present invention, an amount appropriately selected from the range of 0.0001 mg to 100 mg can be included in the amount of protein of mucin treated with β-galactosidase. The content includes the form, usage, and dose of the composition or macrophage activator, and the age, weight, severity of disease, etc. of the human (patient) or animal in need of the composition or macrophage activator It can vary depending on the factors.

2.その他の成分
本発明の組成物又はマクロファージ活性化剤は、β−ガラクトシダーゼで処理されたムチンに加えて、飲食品、動物飼料、医薬品、化粧品などの最終的な形態において許容される他の成分をさらに含めることができる。このような成分としては、例えば、賦形剤、結合剤、崩壊剤、滑沢剤、希釈剤、溶解補助剤、懸濁化剤、等張化剤、pH調整剤、緩衝剤、安定化剤、着色剤、矯味剤、矯臭剤、酸化防止剤、増粘剤、防腐剤、界面活性剤、キレート剤、乳化剤、果汁、甘味料、酸味料、食塩、香料、ビタミン類、調味料、香辛料、油分、紫外線吸収剤、アルコール類、各種皮膚栄養剤等から選択される一以上の成分を、飲食品、動物飼料、医薬品、化粧品などの最終的な形態に応じて適宜選択し含めることができる。
2. Other components In addition to mucin treated with β-galactosidase, the composition or macrophage activator of the present invention contains other components that are acceptable in the final form such as foods, drinks, animal feeds, pharmaceuticals, and cosmetics. Further can be included. Examples of such components include excipients, binders, disintegrants, lubricants, diluents, solubilizers, suspending agents, isotonic agents, pH adjusters, buffers, and stabilizers. , Colorant, flavoring agent, flavoring agent, antioxidant, thickener, preservative, surfactant, chelating agent, emulsifier, fruit juice, sweetener, acidulant, salt, flavor, vitamins, seasoning, spice, One or more components selected from oils, ultraviolet absorbers, alcohols, various skin nutrients, and the like can be appropriately selected and included depending on the final form of foods, drinks, animal feeds, pharmaceuticals, cosmetics, and the like.

3.組成物及びその用途
本発明の組成物は、マクロファージ活性化作用を有する飲食品組成物、動物飼料組成物、化粧品組成物、又は医薬品組成物として使用することができる。
3. Composition and use thereof The composition of the present invention can be used as a food / beverage composition, an animal feed composition, a cosmetic composition, or a pharmaceutical composition having a macrophage activating action.

本発明の組成物の形態は特に限定されないが、一態様において経口摂取又は経口投与に適した液状、固形状または半固形状の組成物とすることができる。固形状又は半固形状の組成物は、例えば、顆粒剤、カプセル剤、錠剤、細粒剤、カプレット、散剤、丸剤などの形態を有する医薬品や、健康食品、栄養機能食品、栄養補助食品(サプリメント)、介護食、流動食、栄養調整食品、栄養補助剤等として提供される。固形状又は半固形状の組成物は、上記β−ガラクトシダーゼで処理されたムチンを賦形剤、増量剤、結合剤、崩壊剤、滑沢剤増粘剤等の助剤等と混合し、常法に従って成形し製造することができる。液状組成物は、例えば、液状食品(例えば、ジュース、ミネラル飲料、スポーツドリンク等の飲料)や液状の経口投与用の医薬品等として提供される。液状組成物は、水を基調とする組成物であり、β−ガラクトシダーゼで処理されたムチンを水と混合して製造することができる。   Although the form of the composition of this invention is not specifically limited, In one aspect | mode, it can be set as the liquid, solid form, or semisolid composition suitable for oral ingestion or oral administration. Solid or semi-solid compositions include, for example, pharmaceuticals having forms such as granules, capsules, tablets, fine granules, caplets, powders, pills, health foods, nutritional functional foods, dietary supplements ( Supplements), nursing foods, liquid foods, nutritionally adjusted foods, nutritional supplements, etc. A solid or semi-solid composition is prepared by mixing mucin treated with β-galactosidase with an excipient such as an excipient, a bulking agent, a binder, a disintegrant, a lubricant thickener, etc. It can be molded and manufactured according to the law. The liquid composition is provided, for example, as a liquid food (for example, a beverage such as juice, mineral beverage, sports drink) or a liquid pharmaceutical for oral administration. The liquid composition is a composition based on water, and can be produced by mixing mucin treated with β-galactosidase with water.

また別の態様において、本発明の組成物は非経口投与(例えば、経皮投与、腹腔内投与、静脈内投与、筋肉内投与等)に適した液状又は半固形状の組成物とすることができる。このよう形態の組成物は、例えば、ローション、乳液、クリーム等の形態の化粧品組成物や、注射剤、軟膏剤等の形態の医薬品として提供される。これらの組成物は、β−ガラクトシダーゼで処理されたムチンを水と共に、懸濁化剤、界面活性剤、乳化剤、増粘剤等の助剤等と混合し、常法に従って製造することができる。   In another embodiment, the composition of the present invention may be a liquid or semi-solid composition suitable for parenteral administration (eg, transdermal administration, intraperitoneal administration, intravenous administration, intramuscular administration, etc.). it can. The composition in such a form is provided as a cosmetic composition in the form of a lotion, milky lotion, cream or the like, or a pharmaceutical in the form of an injection, an ointment or the like. These compositions can be produced according to a conventional method by mixing mucin treated with β-galactosidase together with auxiliary agents such as suspending agents, surfactants, emulsifiers, thickeners and the like together with water.

本発明の組成物はマクロファージ活性化する作用を有し、当該組成物を摂取又は投与されたヒト又は動物においてマクロファージを活性化することができる。本発明において「マクロファージ活性化」とは、マクロファージの貪食能(特にFcレセプターを介する貪食能)や活性酸素産生能及び抗原提示作用が増強されることを意味する。当該組成物の摂取量又は投与量は、1回の摂取又は投与につき体重1kgあたりβ−ガラクトシダーゼで処理されたムチンのタンパク質の量にして、0.0001mg〜100mgの範囲から適宜選択される量を摂取又は投与することができる。当該量は、組成物の形態、用法、用量、並びに、当該組成物を必要とするヒト(患者)又は動物の年齢、体重、疾患の重篤度などの要因によって変化し得る。   The composition of the present invention has an action of activating macrophages, and can activate macrophages in humans or animals that have been ingested or administered the composition. In the present invention, “macrophage activation” means that macrophage phagocytic ability (particularly phagocytic ability via Fc receptor), active oxygen production ability and antigen presenting action are enhanced. The intake or dose of the composition is the amount of mucin protein treated with β-galactosidase per kg of body weight per intake or administration, and an appropriate amount selected from the range of 0.0001 mg to 100 mg. Or it can be administered. The amount can vary depending on the form of the composition, usage, dosage, and factors such as the age, weight, severity of disease of the human (patient) or animal in need of the composition.

本発明の組成物を摂取又は投与することにより、マクロファージの活性化によって治療し得ることが公知である、または治療し得る可能性がある疾患や障害を治療又は寛解し、あるいは当該疾患や障害に対する抵抗性を増強することができる。このような疾患や障害としては例えば、創傷治癒、アレルギー疾患、自己免疫疾患、治療薬による副作用、癌等が挙げられる。   Treating or ameliorating a disease or disorder known or potentially treatable by macrophage activation by ingesting or administering the composition of the present invention, or against the disease or disorder Resistance can be enhanced. Examples of such diseases and disorders include wound healing, allergic diseases, autoimmune diseases, side effects due to therapeutic agents, cancer, and the like.

以下に実施例を示して本発明を具体的に説明するが、本発明はこれらの実施例に限定されるものでない。   EXAMPLES The present invention will be specifically described below with reference to examples, but the present invention is not limited to these examples.

[実施例1]ムチン抽出液および加工ムチン抽出液の調製
(抽出液の調製)
皮を剥いたサツマイモ徳島産鳴門金時50gを刻み、蒸留水450mlを加えミキサー(ZOJIRUSHI BM-RE08-HA)で180秒間摩砕した。室温にて5時間撹拌したのち、濾紙でろ過した水抽出を4℃、3000rpmで10分間遠心分離(TOMY CX-200 TA-4)して上清を回収した。回収液は片側をクリップで留めた透析膜に100mlずつ分注して、反対側もクリップで留め、浮きをつけて4Lのイオン交換水中に浮かべて透析を行った。透析開始から120分後イオン交換水を新しいものに代えて一晩透析して、約400mlのムチン抽出液を得た。
[Example 1] Preparation of mucin extract and processed mucin extract (preparation of extract)
50 g of Naruto gold from Tokushima was peeled off, and 450 ml of distilled water was added and ground with a mixer (ZOJIRUSHI BM-RE08-HA) for 180 seconds. After stirring at room temperature for 5 hours, the water extraction filtered through filter paper was centrifuged at 4 ° C. and 3000 rpm for 10 minutes (TOMY CX-200 TA-4), and the supernatant was recovered. The collected liquid was dispensed 100 ml each on a dialysis membrane clipped on one side, the other side was also clipped, floated and floated in 4 L of ion exchange water for dialysis. 120 minutes after the start of dialysis, ion-exchanged water was replaced with fresh one and dialyzed overnight to obtain about 400 ml of mucin extract.

(タンパク質定量)
ムチン抽出液中のタンパク質定量は、ビシンコニン酸(BCA)タンパク質測定キット(PIERCE, Reagent A [Lot NO.HH106101, PROD # 23223],およびReagent B [Lot NO.CE49183, PROD # 23224](タカラバイオ社)を使用した。ムチン抽出液にpH 7.0の10mMリン酸緩衝液を加えて25倍、50倍希釈し96 wellプレートに25μlずつアプライした。別にウシ血清アルブミン(Sigma-Aldrich社製Albumin from Bovine Serum.COH)にpH 7.0の10mMリン酸緩衝液を加えて0, 0.1, 0.25, 0.5, 1.0, 2.0 mg/mlに調整し、上記96 wellプレートに25μlずつアプライした。そこにBCA液(A液1ml:B液20μlの割合で混合)を200μlずつアプライし、37℃で30分間反応させた後570nmで吸光度を測定した。
結果、ムチン抽出液中のタンパク質量は0.906μg/μlであった。
(Protein quantification)
Protein quantification in the mucin extract was performed using the bicinchoninic acid (BCA) protein measurement kit (PIERCE, Reagent A [Lot NO.HH106101, PROD # 23223], and Reagent B [Lot NO. CE49183, PROD # 23224] (Takara Bio Inc.) A 10 mM phosphate buffer solution of pH 7.0 was added to the mucin extract, diluted 25-fold and 50-fold, and 25 μl each was applied to a 96-well plate, separately from bovine serum albumin (Albumin from Bovine Serum from Sigma-Aldrich) COH) was adjusted to 0, 0.1, 0.25, 0.5, 1.0, 2.0 mg / ml by adding 10 mM phosphate buffer at pH 7.0, and 25 μl each was applied to the 96-well plate. 1 ml: mixed at a ratio of 20 μl of solution B) was applied 200 μl at a time, reacted at 37 ° C. for 30 minutes, and the absorbance was measured at 570 nm.
As a result, the amount of protein in the mucin extract was 0.906 μg / μl.

(加工ムチン抽出液の調製)
ムチン抽出液(タンパク質量0.906μg/μl)50mlにβ−ガラクトシダーゼ(WAKO社製:pH7.0の100 mMリン酸ナトリウム緩衝液で溶解して2000 U/mlとしたもの)28.3μlを加えて37.5℃で3時間インキュベーションした。その後、60℃で10分熱処理して酵素を失活させ、β−ガラクトシダーゼで処理した加工ムチン抽出液を得た。
(Preparation of processed mucin extract)
37.5 by adding 28.3 μl of β-galactosidase (WAKO: dissolved in 100 mM sodium phosphate buffer pH 7.0 to 2000 U / ml) to 50 ml of mucin extract (protein amount 0.906 μg / μl) Incubated for 3 hours at ° C. Thereafter, the enzyme was inactivated by heat treatment at 60 ° C. for 10 minutes to obtain a processed mucin extract treated with β-galactosidase.

[実施例2]加工ムチン抽出液の電気泳動によるタンパク質の分離とHPAレクチンを用いたウェスタンブロッティング
(サンプルの調整)
実施例1記載の手法にて調製したムチン抽出液(1)及び加工ムチン抽出液(2)、並びに、ムチン抽出液500μlをAmicon Ultra 10K(Lot.R3CA66596)(メルクミリポア社)で限外ろ過し(4℃、13500rpm、15分間)、回収した濃縮液をβ−ガラクトシダーゼ処理した液(精製加工ムチン抽出液)(3)につき、それぞれタンパク質量が2μgになるように調製したサンプルをSDS-ポリアクリルアミドゲルにアプライし、300 Vで電気泳動を行った。次いで、PVDF膜に転写(47V、1時間)し、TBST緩衝液で洗浄(10分間×3回)した後、1%BSA(TBST 10ml:BSA 100mg)でブロッキングした。その後、TBST緩衝液で洗浄(10分間×3回)し、一次抗体(2000倍希釈のHPAレクチン)と室温にて2時間反応させた。一次抗体反応後、TBST緩衝液で洗浄(10分間×3回)し、二次抗体(5000倍希釈のストレプトアビジン)と室温にて2時間反応させた。二次抗体反応後、TBST緩衝液で洗浄(10分間×3回)し、ECL液(A液 1ml:B液 1ml)(GEヘルスケア社)をかけ室温にて1分間反応させ、3分間感光して撮影した。撮影後、PVDF膜はTBST緩衝液で洗浄(10分間×3回)した後、CBB染色液(CBB溶液 1 ml:20%酢酸 1 ml)を1mlかけ、脱色液で脱色し、一夜乾燥させた。
[Example 2] Protein separation by electrophoresis of processed mucin extract and Western blotting using HPA lectin (sample preparation)
The mucin extract (1) and the processed mucin extract (2) prepared by the method described in Example 1 and 500 μl of the mucin extract were ultrafiltered with Amicon Ultra 10K (Lot.R3CA66596) (Merck Millipore). (4 ° C., 13500 rpm, 15 minutes), each sample prepared so that the amount of protein was 2 μg with respect to a solution (purified processed mucin extract) (3) obtained by treating the collected concentrated solution with β-galactosidase (SDS-polyacrylamide) The gel was applied and electrophoresed at 300 V. Subsequently, it was transferred to a PVDF membrane (47 V, 1 hour), washed with TBST buffer (10 minutes × 3 times), and then blocked with 1% BSA (TBST 10 ml: BSA 100 mg). Then, it was washed with TBST buffer (10 minutes × 3 times), and reacted with the primary antibody (HPA lectin diluted 2000 times) at room temperature for 2 hours. After the primary antibody reaction, it was washed with TBST buffer (10 minutes × 3 times) and reacted with the secondary antibody (5000-fold diluted streptavidin) at room temperature for 2 hours. After the secondary antibody reaction, wash with TBST buffer solution (10 minutes x 3 times), apply ECL solution (A solution 1 ml: B solution 1 ml) (GE Healthcare), react at room temperature for 1 minute, and sensitize for 3 minutes And then shot. After shooting, the PVDF membrane was washed with TBST buffer (10 minutes x 3 times), then applied with 1 ml of CBB staining solution (CBB solution 1 ml: 20% acetic acid 1 ml), decolorized with decoloring solution, and dried overnight. .

(結果)
図1(A)には、ムチン抽出液(1)及び加工ムチン抽出液(2)のSDS-PAGEのCBB染色の結果を示す。ムチン抽出液(1)のレーンにはバンドが確認されなかった。これはタンパク質が、O-グリコシド結合を介して無数の糖鎖が結合している高分子糖タンパク質であることを示唆する。また、加工ムチン抽出液(2)のレーンには80, 70, 56, 45 及び26 kDa付近にバンドが見られた。
(result)
FIG. 1 (A) shows the results of SDS-PAGE CBB staining of the mucin extract (1) and the processed mucin extract (2). No band was confirmed in the lane of the mucin extract (1). This suggests that the protein is a high-molecular glycoprotein in which an infinite number of sugar chains are bonded through O-glycoside bonds. In the lane of the processed mucin extract (2), bands were observed near 80, 70, 56, 45 and 26 kDa.

図1(B)にはムチン抽出液(1)、加工ムチン抽出液(2)の、図1(C)には精製加工ムチン抽出液(3)のHPAレクチンを用いたウェスタンブロッティングの様子を示す。その結果、ムチン抽出液(1)のレーンにはHPAレクチン陽性バンドはみられないが、加工ムチン抽出液(2)および、精製加工ムチン抽出液(3)のレーンでは80, 70および 56kDa付近にHPAレクチン陽性バンドが見られた。   Fig. 1 (B) shows mucin extract (1) and processed mucin extract (2), and Fig. 1 (C) shows Western blotting of purified processed mucin extract (3) using HPA lectin. . As a result, no HPA lectin-positive band was observed in the lane of the mucin extract (1), but in the lane of the processed mucin extract (2) and the purified processed mucin extract (3), it was around 80, 70 and 56 kDa. HPA lectin positive band was seen.

これらの結果は、ムチン抽出液中に含まれる巨大な糖タンパク質から、β−ガラクトシダーゼ処理による糖鎖の切断によりGalNAc構造のO型糖タンパク質が形成されたことが示唆される。   These results suggest that an O-type glycoprotein having a GalNAc structure was formed from a huge glycoprotein contained in the mucin extract by cleavage of the sugar chain by β-galactosidase treatment.

以上の結果より、ムチン抽出液及びその濃縮液をβ−ガラクトシダーゼで処理することによって、HPAレクチン陽性の糖タンパク質を得ることができた。   From the above results, it was possible to obtain a HPA lectin-positive glycoprotein by treating the mucin extract and its concentrated solution with β-galactosidase.

[実施例3]加工ムチン抽出液のマクロファージ貪食活性への影響(in vitro)
実施例1記載の手法にて調製した加工ムチン抽出液のマクロファージの貪食活性への影響を以下の手順で評価した。
[Example 3] Effect of processed mucin extract on macrophage phagocytic activity (in vitro)
The effect of the processed mucin extract prepared by the method described in Example 1 on the phagocytic activity of macrophages was evaluated by the following procedure.

(実験方法)
8週齢のICRマウス(雌)の腹腔に10mM PBS緩衝液10mlを注入して腹腔内混合細胞を取り出し、4℃、1,000rpmで15分間遠心した。集めた細胞をRPMI1640培地で1.0×106細胞/mlに調節し、カバーグラスを沈めたプレートに5.0×105細胞/wellになるように500μlずつ播種した。当該細胞にRPMI培地を500μl加えて、37.5℃で1時間予備培養して、マクロファージをカバーグラスに定着させた。その後、上清を除き付着したマクロファージ層を洗浄して、新しいRPMI培地を加えて37℃で15時間培養した。
(experimental method)
An intraperitoneal mixed cell was taken out by injecting 10 ml of 10 mM PBS buffer into the abdominal cavity of an 8-week-old ICR mouse (female), and centrifuged at 4 ° C. and 1,000 rpm for 15 minutes. The collected cells were adjusted to 1.0 × 10 6 cells / ml with RPMI1640 medium, and 500 μl each was seeded at 5.0 × 10 5 cells / well on a plate with a cover glass submerged. To the cells, 500 μl of RPMI medium was added and precultured at 37.5 ° C. for 1 hour to fix the macrophages on the cover glass. Thereafter, the supernatant was removed and the adhering macrophage layer was washed, and a fresh RPMI medium was added, followed by culturing at 37 ° C. for 15 hours.

この準備したマクロファージ層に、(pH 7.0の100mM SPBで調節した)ムチン抽出液又は加工ムチン抽出液(タンパク質量にして、1.0ng、10ng若しくは100ng)、あるいはコントロール(なお、「コントロール」には上記のとおりマウス腹腔から集めた細胞をRPMI1640培地にて培養して得られた上清を用いた。)、さらにポジティブコントロールとして精製GcMAF(徳島大学大学院ソシオテクノサイエンス研究部の堀研究室で合成)1.0ngタンパク質量をそれぞれ加えて、37℃、3時間培養した。続いて、マクロファージに、0.5%オプソニン化SRBCを加え90分間貪食させ後、マクロファージを固定、ギムザ染色し、その後、顕鏡にて貪食されたSRBCをカウントして貪食指数(ingestion index)を算出し、マクロファージの貪食活性を評価した。   To this prepared macrophage layer, mucin extract (modified with 100 mM SPB at pH 7.0) or processed mucin extract (1.0 ng, 10 ng or 100 ng in protein amount) or control (note that “control” is the above As a positive control, purified GcMAF (synthesized in the Hori laboratory of the University of Tokushima Sociotechnoscience) 1.0 was used as a positive control. Each ng protein amount was added, and the cells were cultured at 37 ° C. for 3 hours. Subsequently, macrophages were added with 0.5% opsonized SRBC and phagocytosed for 90 minutes, then the macrophages were fixed and stained with Giemsa, and then the phagocytic index (ingestion index) was calculated by counting the phagocytosed SRBC. Macrophage phagocytic activity was evaluated.

(結果)
コントロール群を相対値1.00として、加工ムチン抽出液(タンパク質量にして、1.0ng、10ng若しくは100ng)で処理した群の貪食指数の平均値(n=3)は、それぞれ1.89、1.95、1.93となり、コントロール群と比べて有意に上昇した(図2参照)。一方、ムチン抽出液(タンパク質量にして、1.0ng、10ng若しくは100ng)で処理した群の貪食指数の平均値(n=3)は、それぞれ0.95、1.02、0.91となり、コントロール群と同程度であった。
(result)
With the control group as the relative value 1.00, the average value (n = 3) of the phagocytic index of the group treated with the processed mucin extract (1.0 ng, 10 ng or 100 ng in terms of protein amount) was 1.89, 1.95, 1.93, respectively. There was a significant increase compared to the control group (see FIG. 2). On the other hand, the average value (n = 3) of the phagocytic index of the group treated with the mucin extract (1.0 ng, 10 ng or 100 ng as the protein amount) was 0.95, 1.02 and 0.91, respectively, which was the same level as the control group. It was.

以上より、in vitroにおいて、加工ムチン抽出液に優れたマクロファージ貪食活性が認められた。   As mentioned above, the macrophage phagocytic activity excellent in the processed mucin extract was recognized in vitro.

[実施例4]精製加工ムチン抽出液のマクロファージ貪食活性への影響(ex vivo)
(精製加工ムチン抽出液の調製)
実施例1記載の手法にて調製したムチン抽出液(タンパク質量0.906μg/μl)22.1 μlに、2.5μlのβ−ガラクトシダーゼ(10mU/μl、Grade III from Bovine Liver, SIGMA, Lot NO.54H7025, G1875)を加え、そこに100mM SPB緩衝液(pH7.0)を加えて全量を200μlとした。得られた混合液を37.5℃で1時間インキュベーションした後、HOT DRY BATHで60℃、10分間加熱し、酵素を失活させた。次いで、得られた加工ムチン抽出液を実施例2記載の手法にて限外ろ過し、その得られた精製加工ムチン抽出液のタンパク質量が6ng/500μl又は60ng/500μlとなるように、100mM SPB緩衝液(pH7.0)を用いて調整した。
[Example 4] Effect of purified processed mucin extract on macrophage phagocytic activity (ex vivo)
(Preparation of purified processed mucin extract)
To mucin extract (protein amount 0.906 μg / μl) 22.1 μl prepared by the method described in Example 1, 2.5 μl β-galactosidase (10 mU / μl, Grade III from Bovine Liver, SIGMA, Lot NO. 54H7025, G1875 ) And 100 mM SPB buffer (pH 7.0) was added thereto to make the total volume 200 μl. The resulting mixture was incubated at 37.5 ° C. for 1 hour, and then heated with HOT DRY BATH at 60 ° C. for 10 minutes to inactivate the enzyme. Subsequently, the obtained processed mucin extract was ultrafiltered by the method described in Example 2, and 100 mM SPB was prepared so that the protein amount of the obtained purified processed mucin extract was 6 ng / 500 μl or 60 ng / 500 μl. Adjustment was made using a buffer solution (pH 7.0).

(実験方法)
8週齢のICRマウス(雌)に、調製した精製加工ムチン抽出液6ng/500μl又は60ng/500μl、およびコントロール500μlをそれぞれ腹腔内注射し、3時間放置した(なお、「コントロール」には上記のとおりマウス腹腔から集めた細胞をRPMI1640培地にて培養して得られた上清を用いた。)。次いで、実施例3記載の手法にて、各マウスの腹腔より腹腔内混合細胞を取り出し、カバーグラスを沈めたプレートに5.0×105細胞/wellになるように500μlずつ播種した。当該細胞にRPMI培地を500μl加えて、37.5℃で1時間予備培養して、マクロファージをカバーグラスに定着させた後、新しいRPMI培地と交換し0.5%オプソニン化SRBCを加えて、マクロファージに90分間貪食させる。マクロファージを固定、ギムザ染色し、その後、顕鏡にて貪食されたSRBCをカウントして貪食指数(ingestion index)を算出し、マクロファージの貪食活性を評価した。
(experimental method)
ICR mice (female) aged 8 weeks were injected intraperitoneally with 6 ng / 500 μl or 60 ng / 500 μl of the prepared purified mucin extract and 500 μl of control, respectively, and left for 3 hours (note that “control” is the above) The supernatant obtained by culturing cells collected from the mouse abdominal cavity in RPMI1640 medium was used.) Subsequently, the intraperitoneal mixed cells were taken out from the abdominal cavity of each mouse by the method described in Example 3, and 500 μl was seeded on a plate with a cover glass submerged at 5.0 × 10 5 cells / well. Add 500 μl of RPMI medium to the cells, pre-incubate for 1 hour at 37.5 ° C., fix macrophages on cover glass, replace with fresh RPMI medium, add 0.5% opsonized SRBC, and phagocytose macrophages for 90 minutes Let Macrophages were fixed and stained with Giemsa, and then the SRBC phagocytosed with a microscope was counted to calculate the ingestion index, and the phagocytic activity of macrophages was evaluated.

(結果)
コントロール群を1.00として相対値で示すとき、精製加工ムチン抽出液(タンパク質量にして、6ng、及び60ng)で処理した群の貪食指数の平均値(n=3)は、それぞれ1.463及び1.539であり、コントロール群と比べて有意に上昇した(図3参照)。
(result)
When the control group is expressed as a relative value of 1.00, the average value (n = 3) of the phagocytic index of the group treated with the purified processed mucin extract (6 ng and 60 ng in protein amount) is 1.463 and 1.539, respectively. , Significantly increased compared to the control group (see FIG. 3).

これより、in vivoにおいて、精製加工ムチン抽出液に優れたマクロファージ貪食活性が認められた。   From this, macrophage phagocytic activity excellent in purified processed mucin extract was observed in vivo.

本発明によれば、マクロファージを活性化することを目的として日常的に摂取、使用、又は投与することができる安全性の高い組成物を得ることができ、マクロファージ活性化作用を有する飲食品組成物、化粧品組成物、及び/又は医薬品組成物を提供することができる。   ADVANTAGE OF THE INVENTION According to this invention, the highly safe composition which can be ingested, used or administered on a daily basis for the purpose of activating a macrophage can be obtained, and the food-drinks composition which has a macrophage activation effect | action Cosmetic compositions and / or pharmaceutical compositions can be provided.

Claims (6)

食品由来のムチンを含有するマクロファージを活性化するための組成物であって、該ムチンがβ−ガラクトシダーゼで処理されている、上記組成物。 A composition for activating macrophages containing food-derived mucin, wherein the mucin is treated with β-galactosidase. 食品が植物である、請求項1に記載の組成物。   The composition according to claim 1, wherein the food is a plant. 食品由来のムチンをβ−ガラクトシダーゼで処理することを含む、β−ガラクトシダーゼで処理された該ムチンを含有するマクロファージを活性化するための組成物の製造方法。 A method for producing a composition for activating macrophages containing β-galactosidase-treated mucin, which comprises treating food-derived mucin with β-galactosidase. 食品が植物である、請求項3に記載の方法。   The method according to claim 3, wherein the food is a plant. 食品由来のムチンを含有し、該ムチンがβ−ガラクトシダーゼで処理されていることを特徴とする、マクロファージ活性化剤。   A macrophage activator comprising a mucin derived from food, wherein the mucin is treated with β-galactosidase. 食品が植物である、請求項5に記載のマクロファージ活性化剤。   The macrophage activator according to claim 5, wherein the food is a plant.
JP2013171620A 2013-08-21 2013-08-21 Macrophage activator containing mucin treated with β-galactosidase Active JP6178162B2 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2013171620A JP6178162B2 (en) 2013-08-21 2013-08-21 Macrophage activator containing mucin treated with β-galactosidase

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2013171620A JP6178162B2 (en) 2013-08-21 2013-08-21 Macrophage activator containing mucin treated with β-galactosidase

Publications (2)

Publication Number Publication Date
JP2015040183A JP2015040183A (en) 2015-03-02
JP6178162B2 true JP6178162B2 (en) 2017-08-09

Family

ID=52694537

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP2013171620A Active JP6178162B2 (en) 2013-08-21 2013-08-21 Macrophage activator containing mucin treated with β-galactosidase

Country Status (1)

Country Link
JP (1) JP6178162B2 (en)

Family Cites Families (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US7829679B2 (en) * 2005-08-12 2010-11-09 Riken Mucin-type glycoprotein and use thereof
JP5110563B2 (en) * 2006-03-03 2012-12-26 独立行政法人産業技術総合研究所 Method for producing mucin-type sugar chain binding protein
WO2012029954A1 (en) * 2010-09-03 2012-03-08 国立大学法人徳島大学 Process for production of novel degalactosylated gc globulin

Also Published As

Publication number Publication date
JP2015040183A (en) 2015-03-02

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Fan et al. Partial characterization and anti-tumor activity of an acidic polysaccharide from Gracilaria lemaneiformis
JP5303697B2 (en) Anti-inflammatory agent
KR101320631B1 (en) Immunostimulating Polysaccharide Isolated from Korean Mulberry and Manufacturing Method Thereof
KR20170053144A (en) Polysaccharide fraction isolated from enzyme treated barley grass with immune-enhancing activity and uses thereof
EP1175907A1 (en) Remedies
KR101168381B1 (en) Immune activation of green tea hdrolysate and the preparation of food with active components
WO2013094903A1 (en) Persimmon leaf-derived sugar fraction having immune function boosting activity and method for producing same
JP6259208B2 (en) Hyaluronic acid production promoter
KR102294288B1 (en) Polysaccharide fraction isolated from Nelumbo nucifera leaf with immune-enhancing activity and method for producing the same
JP2011522911A (en) Compositions obtained from chlorella extracts having immunomodulatory properties
WO2012020840A1 (en) Composition for improving skin quality
KR20110014820A (en) Polysaccharide extracted from capsosiphon fulvescens having anti-coagulation and immunostimulating effect, composition containing polysaccharide and process thereof
JP6178162B2 (en) Macrophage activator containing mucin treated with β-galactosidase
JP6579605B2 (en) Skin improver
EP3290043B1 (en) Enzyme-treated milk product, method for producing same, composition, and product
KR101732714B1 (en) Immune-enhancing composition comprsing arabinoxylan from corn or corn processing by-product
JP4261071B2 (en) Therapeutic agent
KR101839186B1 (en) Use of Aplysia kurodai extract having retinal cell regeneration effect
Sankhe et al. Snow Ear (Tremella fuciformis)
KR20130047855A (en) Low molecular weight chitosan oligosaccharide having potent anti-asthma activity and pharmacological composition containing the same
JP5969206B2 (en) Antiallergic agent and method for producing the same
KR102140702B1 (en) Galactouronoglucooligosaccharide Derived from Ginseng cake and Use Thereof
KR101989980B1 (en) Anticancer or immunactive polysaccharide from residues of immature citrus extract or immature citrus peel and composition comprising the same as an active ingredient
TWI228991B (en) Pharmaceuticals, foods, beverages, feeds or cosmetics inducing growth factor production
KR100776956B1 (en) Remedies

Legal Events

Date Code Title Description
A521 Request for written amendment filed

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A821

Effective date: 20141112

A621 Written request for application examination

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621

Effective date: 20160301

A131 Notification of reasons for refusal

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131

Effective date: 20170131

A977 Report on retrieval

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A971007

Effective date: 20170131

A521 Request for written amendment filed

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20170323

TRDD Decision of grant or rejection written
A01 Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01

Effective date: 20170704

A61 First payment of annual fees (during grant procedure)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A61

Effective date: 20170713

R150 Certificate of patent or registration of utility model

Ref document number: 6178162

Country of ref document: JP

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R150

S531 Written request for registration of change of domicile

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R313531

S531 Written request for registration of change of domicile

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R313531

R350 Written notification of registration of transfer

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R350

R350 Written notification of registration of transfer

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R350

R250 Receipt of annual fees

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250

S531 Written request for registration of change of domicile

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R313531

R350 Written notification of registration of transfer

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R350

R250 Receipt of annual fees

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250

R250 Receipt of annual fees

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250

R250 Receipt of annual fees

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250

R250 Receipt of annual fees

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250