JP6116791B2 - Cdp−コリンを含有する組成物およびその使用法 - Google Patents
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Description
CDP−コリン 0.5g
魚油 3.7g
炭水化物 9.0g
乳タンパク質 3g
[実験詳細セクション]
[材料および方法]
[試料調製]
ヘパリン化血漿の1ミリリットル(mL)試料を、内標準として使用するために、1μgのフルオロ−ウリジンでスパイクし、次に、メタノール(5mL)の添加によってタンパク質を除いた。試料を遠心分離し、凍結乾燥し、5mLの0.25N酢酸アンモニウム(pH8.8)において再構成し、次に、ボロネートアフィニティカラムですぐに精製した。
全ての段階を、4℃で行った。ボロネートアフィニティカラム(Affigel−601、Bod−Rad)を、2回の5mL酢酸アンモニウム洗浄で準備し、試料を適用し、カラムを酢酸アンモニウムで再び洗浄し、次に、ヌクレオシドを0.1N ギ酸(7mL)で溶離した。溶出液を凍結乾燥し、次に、HPLC分析のために100μLの水において再構成した。ボロネートアフィニティカラムが、多くの生物学的分子(ヌクレオチド塩基アデノシン、シチジン、グアノシン、チミジンおよびウリジンを包含する)を結合する。
HPLC分析は、Rainin Dynamax Microsorb C18カラム(3μM装填;4.6×100mm)を取り付けたBeckman System Gold apparatus(Beckman Instruments)を用いて、室温で行った。標準HPLC法は、Lopez−Coviellaら(J.Neurochem 65:889−894,1995)に記載されている。改変HPLCのために、0.004Nリン酸カリウム緩衝液(pH5.8)および0.1%メタノールをギ酸の代わりに含有し、1mL/分で流動し、35℃に加熱した定組成溶離緩衝液を使用した。
ヌクレオシドを測定する標準HPLC法は、ウリジンおよびシチジンの分離ピークを生じるが、シチジンピークおよびチロシンピークの一致は、ヒト血漿試料に関して示されているように(図1)、シチジンレベルの正確な測定を妨げる。チロシンは多くの生物学的流体、例えば、血漿または脳脊髄液(CSF)に存在する。この実施例において、シチジンおよびチロシンピークを区別し、シチジンレベルの正確な測定を可能にする改変HPLC法を使用した(図2)。
[材料および実験方法]
[試験計画]
8人の健康な被験者(男性5人、女性3人、27〜67才)に一晩絶食するよう指示し、少なくとも3日の洗い流し期間をあけた3日間の、それぞれの日の7〜8AMにおいて、漸増用量(500、1000および2000mg)の二ナトリウムUMP(Numico,Wageningen,NL)を順次に投与した。全被験者に昼食を与えた。血液試料をヘパリン化した管に8時間にわたって採取した。血漿をメタノールで処理して、タンパク質を沈殿させ、クロロホルムで抽出し、水性層のアリコートを凍結乾燥し、水に溶解し、UV検出を伴うHPLCによって分析した。
統計的分析をSPSS 12.0で行った。データを、平均値±SEMとして示した。独立スチューデント試験、一元配置分散分析(ANOVA)、反復測定を行うANOVA、二元配置ANOVAを使用して、文脈において詳しく記載されているように統計的作用を評価した。適切であれば、Tukey’s HSD post hoc分析を行った。有意レベルをp<0.05に設定した。
被験者に、500、1000または2000mgのUMPを経口投与し、血中ウリジンレベルを、基線および投与から1、2、4および8時間後に測定した。血漿ウリジンレベルを、実施例1に記載のように分析した。血漿ウリジンレベルは、経口UPMに反応して、用量依存的に増加し、次に、8時間以内に基線レベルに戻った(図3)。同様の結果がジャービルにおいても観測された(図4)。
[材料および実験方法]
[実験計画]
8〜9匹の雄ジャービル(60〜80g)のグループを、一晩絶食させ、(a)ウリジン(Sigma,St.Louis,MO;250mg/kg体重)または二ナトリウUMP(1mmol/kg体重、胃管栄養法による250mg/kgウリジンに対応する用量)を投与し、1時間後に、テラゾール麻酔下の断頭によって犠牲にした。首から採取した血液を、EDTAを含有する試験管に収集し、実施例2に記載したように処理した。
断頭後に、頭蓋から脳をすばやく除去し、ドライアイスで凍結し、80%メタノール中に均質化し、遠心分離し、凍結乾燥し、実施例2において血液に関して記載したように分析した。
ウリジンの経口投与が、血漿ウリジンレベルを増加しうるかを確認するために、ジャービルに250mg/kgシチジンまたはウリジンを胃管栄養法によって与えた。60分後、脳を均質化し、ウリジンレベルを分析した。対照動物と比較して、シチジンの経口投与は、脳ウリジンレベルの2倍増加を生じ、ウリジンの経口投与は脳ウリジンレベルの3倍より多い増加を生じた(図5)。グループ間の全ての差異は統計的に有意であった。
別の実験において、ジャービルに250mg/kg体重のウリジンを経口投与し、60分後にシチジンおよびウリジンの血漿および脳レベルを評価した。対照動物と比較した倍増加を計算し、図7A(血漿)および7B(脳)に示す。各場合に、シチジンの倍増加を、100%に任意設定したウリジンの倍増加に標準化した。これらの結果は、以下のことを示している。(a)血流中のウリジンが脳に輸送され、(b)ウリジンが、血漿における場合と比較して、脳において異なって代謝的処理され、特に、それは血漿における場合と比較して、より有効にシチジンに変換される。
[材料および実験方法]
[実験計画]
データを3つの実験から収集し、グループサイズは動物5〜16匹であった。雄ジャービル(60〜80g)にUMP(1mmol/kg体重)を胃管栄養法によって与え、指示された時期に犠牲にした。実施例3に記載したように、脳の均質化、タンパク質沈殿および凍結乾燥を行った後に、試料をHPLC−UVによって分析した。
脳組織または細胞を、メタノール/クロロホルム(1:2 vol/vol)に溶解し、遠心分離し、水性相を真空乾燥し、100〜200μLの水に再懸濁し、イオン交換カラム(Alltech Hypersil APS−2、5μM、250×4.6mm)上でのHPLCによって分離した。CDP−コリンを、線形勾配のNaH2PO4緩衝液A(1.75mM NaH2PO4、pH2.9)およびB(500mM、pH4.5)で溶離し、これは、接近して共溶出する物質、例えばUMPからの、CDP−コリンの40分間にわたる分解を可能にした。CDP−コリンの滞留時間は9.5分であった。個々のヌクレオチドピークを、380nmにおけるUV吸収によって検出し、真正標準の位置との比較によって、ならびに選択試料に対するヌクレオチド標準の付加によって、同定した。
PC12細胞を、10%ウシ胎児血清(FBS)を補充した最小必須培地(MEM;Invitrogen,Carlsbad,CA)において、37℃で維持した。実験培養は、被験化合物を添加したまたは添加していない50ng/mLマウス2.5S(2.5サブユニット)NGFおよび1% FBSを含有する倍地において、2日間または4日間であった。NGFおよびFBSはInvitrogenから得た。
脳でのリン脂質前駆物質レベルにおける経口投与ウリジンの作用を評価するために、実施例3の第二実験からのジャービルの脳を、CDP−コリン(ケネディ経路によるリン脂質生合成における主要中間体)のレベルについて分析した。UMP投与後30分間にわたってCDP−コリンのレベルが、線形に有意に増加した(回帰分析、r=0.98、p<0.02)(図8)。
[材料および実験方法]
[動物および食餌UMP補充]
雄の中年Fischer 344ラット(微量透析を行う時点で22〜24ヶ月)を、National Institute on Aging(Harlan Sprague−Dawley,Indianapolis,IN)から得た。ラットを一匹ずつ標準飼育条件下に収容し、餌および水を自由に与えながら12時間の明暗サイクルに暴露した。各ラットは約500mg/kg/日のUMP−2Naを摂取した(ウリジンの腹腔内LD50は4.3g/Kgである)。
ドーパミン(DA)、ジヒドロキシフェニル酢酸(DOPAC)、ホモバニリン酸(HVA)、セロトニン(5−HT)、5−ヒドロキシインドール酢酸(5−HIAA)、および3,4−ジヒドロキシ安息香酸(DHBA:内標準)を、Sigma(St,Louis,MO)から購入し、HClO4(0.1M)に溶解させて、1mMの原液を作り、アリコートを−80℃で保存した。塩酸ケタミン(100mg/mL)をFort Dodge Anima Health(Fort Dorge,IA)から購入した。キシラジン(20mg/mL)をPhoenix Scientific,Inc.(St.Joseph,MO)から得た。
ケタミンおよびキシラジンの混合物(それぞれ80mg/kg体重および10mg/kg体重、腹腔内)でラットに麻酔し、Kopf定位枠に入れた。全ての外科用器具をホットビーズ乾燥滅菌器または70%エタノールによって滅菌した。2mm穿頭器によって、頭蓋に小さい穴を開けた。CMA/11 14/04 Cuprプローブ(O.D.0.24mm、4mm膜、6,000Da、CMA微量透析、Sweden)を、右線条体に埋め込み(AP=+0.5、ML=−3.0 ブレグマから、DV=−7.3mm 硬膜から;Paxinos G et al,The Rat Brain in Stereotaxic Coordinates,第2版、Academic Press,San Diegoに記載)、切歯バー(incisor bar)は、−5.0mmに設定した。歯科用セメントを使用してプローブを適切な位置に永久的に固定し、3つのアンカースクリューを頭蓋に固定した。手術後、ラットに生理食塩水(5mL/kg)を腹腔内注射し、目覚めるまで37℃の体温を維持する電気パッドに保持した。
微量透析実験の後、ラットにケタミンおよびキシラジン(80および10mg/kg、腹腔内)で麻酔した。黒インクをプローブから入れて、プローブのまわりの組織を染色した。ラットをギロチンで断頭した。脳をすぐに冷却切開板上で切開した。左線条体を、後のタンパク質アッセイのために、液体窒素中に配置したエッペンドルフ管においてスナップ凍結した。さらに右線条体を切開し、プローブの位置を目視観測によって決定した。プローブが線条体内で見出されなかった場合は、データを含めなかった。
線条体の重さを量り、氷上のエッペンドルフ管において、0.1M HClO4および1μM EDTAを含有する1mLのH2Oで1分間均質化した。10秒間にわたってボルテックスした後、アリコートをビシンコニニック酸(Sigma,St.Louis,MO)タンパク質アッセイに使用した。次に、ホモジネートをUltrafree−MC遠心分離フィルターユニット(Millipore,14,000rpm/15分/4℃)で濾過した。水性相をHPLCに付す前に、1:10希釈を行った。均質化の前に、DHBAを内標準として試料に添加した。ドーパミンおよびその代謝産物の濃度をHPLCによって測定し、3反復測定の数値を平均し、試料当たりのタンパク質量に標準化した。
透析物および組織試料におけるDAおよび代謝産物を、ESA Coulochem 5100A検出器(E1=−175mV;E2=+325mV;Eguard=350mV)およびESA Microdialysis Cell(モデル5014B,ESA,North Chelmsford,MA)を使用して測定した。移動相(MD−TM,ESA)は、75mM NaH2PO4、1.7mM 1−オクタンスルホン酸、100μ/L トリエチルアミン、25μM EDTA、10%アセトニトリル、pH3.0から成っていた。流速は、0.4mL/分であった。カラム(ESA MD 150、3×150mm、3μm、120Å)を、40℃カラムオーブンに維持した。試料を、Alltech 580自動試料採取器(Alltech,Deerfield,IL)によってHPLCに注入し、分析の間に冷却トレーで4℃に維持した。データをAlltech AllChrom(商標)データシステムによって捕捉し、AllChrom plus(商標)ソフトウエアで分析した。試料分離および検出の間に検出ゲインを変化させうる時間線プログラムを使用して、1回の注入によって透析物における低DAおよび高代謝産物濃度データを得ることを可能にした。
データを、各時点で6〜9測定の試料採取時間に従って示した(平均値±測定値の標準誤差[S.E.M.])。DAおよび主要代謝産物の基礎値を、K+刺激前の最初の4連続試料の平均値に基づいて求め(透析物における平均値は10.2±0.4nMであった;n=22)、これを100%値とした。二元配置ANOVA(処理x時間)およびTurkey’s HSD post hoc試験を使用して、統計を取った。一元配置ANOVAを使用して、各時点における3グループ間の違いを比較した。>0.05のp値を使用して、統計的有意性を評価した。ドーパミンの基礎レベルは、二回の反復実験間で均一であり、従って、対応するグループに収集した(F1,20=3.99、p>005)。透析物における基礎DAレベルは、K+刺激前の4連続試料において、1時間の平衡後に安定であった(F3,57=0.15、p>0.05;試料採取時間(0、15、30、45分)を対象内ファクターとして使用する反復測定を行う一元配置ANOVA)。
脳での神経伝達物質放出における経口投与ウリジン代謝産物の作用を評価するために、制限環境に維持した高齢ラットが、1週間または6週間にわたって、対照食餌または2.5%UMPを補充した食餌を摂取した。UMP補充は、処理グループ間において、透析物における基礎DAレベルに影響を与えなかった(対照対UMP−1週間対UMP−6週間;F2,19=0.28)。透析物におけるDA濃度は10.2±0.4nM(n=22ラット)であった。
[材料および実験方法]
[データ分析]
データは、各グループについて、6〜16測定したUMP処理に従って示した(平均値±S.E.M)。一元配置ANOVAおよびTurkey’s HSD post hoc試験を使用して、処理間の差異を比較した。Newman−Keuls多重範囲試験を、図13のデータに使用した。
200μL溶解緩衝液(60mM Tris−HCl、4%SDS、20%グリセロール、1mM ジチオトレイトール、1mM AEBSF、8μMアプロチニン、500μMベスタチン、15μM E64、200μMロイペプチン、10μMペプスタチンA)を含有するエッペンドルフ管に、線条体組織を入れた。試料を音波処理し、沸騰させ(10分間)、遠心分離した(14,000g、室温で1分間)。上澄み液を無菌管に移し、ビシンコニニック酸アッセイ(Sigma,St.Louis,MO)を使用して、全タンパク質含有量を測定した。
ウリジンレベルを増加させることが、脳における新しい膜の生成、神経フィラメント−70(NF−70)および神経フィラメント−M(NF−M)のレベルを増強しうるかを評価するために、神経突起伸長の生物マーカーを、実施例6に記載した実験からのラットの脳において評価した。6週間のUMP食餌補充は、NF−70(図12A)およびNF−M(図12B)のレベルを、それぞれ、対照値の182±25%(F2,31=6.01、p<0.05)および221±34%(F2,21=8.86、p<0.01)に有意に増加させた。1週間のUMP食餌の摂取は、これら2つのタンパク質のレベルを、対照群と比較して統計的有意に増加させなかった。線条体におけるNF−70およびNF−Mのレベルは、それぞれ、対照値の204±36%および221±34%に増加した。
[材料および実験方法]
[データ分析]
データは平均値±S.E.M.として示される。分散分析(ANOVA)を使用して、グループ間の差異を求めた(有意レベル、p<0.05)。差異が検出された場合、平均値をNewman−Keuls多重範囲試験によって分離した。
1%ウシ胎児血清を含有するMEMにおいて、PC12細胞を、コラーゲン被覆60mm培養皿で低密度平板培養した。実験グループは以下の通りであった。ウリジン、ウリジントリホスフェート、シチジン、リアクティブブルー2、スラミンおよびPPADS(Sigma,St.Louis,MO)。全ての処理を、平板培養から24時間後に行った。処理期間の終りに、OpenLabソフトウエアを使用して、位相差Zeiss Axioplan 2顕微鏡で画像を得た。各皿について6デジタル画像を捕捉し、処理グループごとに合計18〜24画像であった。各実験における各処理グループについて、約300細胞を定量化した。実験を三重に行った。神経突起伸長および神経突起長さを包含する神経突起の定量化を、実験グループを知らされていない1人以上の研究者によって行った。神経突起長さは、パブリックドメインNIHソフトウエア「Image J」を使用して測定した。細胞体の直径より長い突起を、神経突起として計数した。突起を有する細胞だけを分析した。
細胞内UTPおよびCTPのレベルを、実施例5に記載のようにHPCLによって分析し、但し、5mM NaH2PO4、pH2.65を緩衝剤Aとして使用した。
次に、NGF−誘発神経突起伸長における、ウリジン処理(10〜200μM)の作用を試験した。NGFの不存在下において、PC12細胞は神経突起を発生させなかった(1%未満)。NGFの不存在におけるウリジン処理(50μM、2または4日間)は、神経突起を発生させなかった。NGFの存在において、ウリジン(50〜200μM)は、4日間の処理後に細胞当たりの神経突起の数を有意に(p<0.01または0.001)増加させた(図13A〜C)が、2日間の処理または低ウリジン濃度(10、25μM)は、作用を有さなかった。NGF暴露細胞のシチジンでの処理も、神経突起伸長に作用を有さなかった。
[材料および実験方法]
[P2Y受容体の検出]
ウエスタンブロットは、ウサギ抗−P2Y2、抗−P2Y4(両方ともCalbiochemより)、またはウサギ抗−P2Y6(Novus Biologicals,Littleton,CO)を使用した。
PC12細胞を、コラーゲンで被覆した12mmガラスカバースリップ(A.Daigger & Co.,Vernon Hills,IL)上でそれらを増殖させたこと以外は、前記のように処理した。免疫蛍光法を使用して、タンパク質を可視化した。簡単に言えば、細胞を、4%パラホルムアルデヒドで固定し、0.25% Triton X−100で透過化処理し、10%健常ヤギ血清でブロックし、適切な抗体(マウス抗−NF−70、およびウサギ抗−P2Y2、ウサギ抗−P2Y4またはウサギ抗−P2Y6)中で一晩にわたって培養した。P2Y2およびP2Y4可視化のために、対照培養物を、一次抗体および対照抗原と共に培養して、免疫染色が特異性であることを確実にした。P2Y6受容体については、対照抗原が入手できなかった。次に、細胞を、蛍光色素接合二次抗体中で1時間培養し(ヤギ抗−ウサギALEXA 488およびヤギ抗−マウスALEXA 568;Molecular Probes,Eugene,OR)、DAPI(Vector Laboratories,Burlingame,CA)を用いるか用いずに、封入剤を用いてガラススライドに載せた。一次抗体を与えた対照抗原を使用して、免疫染色が特異性であることを確実にした。Zeiss Plan−Neofluor 40x油浸対物レンズを用いて、OpenLabソフトウエアを使用するZeiss(Oberkochen,Germany)Axioplan顕微鏡でデジタル画像を得た。
UTPは、P2Y受容体、即ちP2Y2、P2Y4およびP2Y6受容体の、ピリミジン活性化種のアゴニストである。細胞外UTPが神経突起伸長に作用するメカニズムに、これらの受容体が関与しているかどうかを確認するために、受容体がPC12細胞において発現されるかどうか、およびNGFへの暴露がそれらの発現を変更させるかどうかを先ず確認し、PC12細胞を0〜7日間にわたってNGFで処理し、受容体のレベルを測定した。3日間のNGF処理後、P2Y2受容体の発現が最大レベルに達し、それは3日未満のNGF処理で観測されたレベルより有意に(p<0.001)高かった(図16A)。P2Y2、ならびにP2Y4およびP2Y6受容体の発現および局在を可視化するために、細胞を、NGFの存在または不存在下に4日間にわたって増殖させ、次に、神経突起マーカーNF−70、およびP2Y2、P2Y4またはP2Y6(ぞれぞれ、図16B、左〜右)について、それらを免疫染色した。3つの全ての受容体が、NGF−分化PC12細胞において高度に発現された。さらに、P2Y2は、ニューロンマーカーMAP−2と共局存していた。NGFの不存在下において、受容体タンパク質発現は、免疫染色によって検出されなかった。さらに、ウリジンの存在は、NGFだけに暴露された細胞に存在する量と比較して、受容体の発現に作用しなかった。従って、P2Y2、P2Y4およびP2Y6受容体は、神経細胞に存在するが、それらの前駆物質に存在しない。
P2Y受容体によるシグナル伝達が、ウリジンによる神経突起伸長の誘発を媒介するかどうかを確認するために、PC12細胞を、NGF、ウリジン(100μM)およびP2Y受容体アンタゴニストスラミン(30μM)、ピリドキサル−ホスフェート−6−アゾフェニル−2’,4’二スルホン酸(PPADS;30μM)およびリアクティブブルー2(RB−2;10μM)と共に、4日間にわたって培養した。各アンタゴニストは、NGF刺激神経突起伸長のウリジン強化を、有意に(p<0.05または0.001)ブロックした(図17)。P2Y受容体アンタゴニストはどれも、PC12細胞へのウリジンの取込みを阻害しなかった。これらの結果は、使用した条件下に、P2Y受容体を経たシグナル伝達が、神経突起伸長のウリジン誘発を媒介することを示している。従って、例えばCDP−コリンの投与によって、血漿ウリジンレベルを増加させることは、P2Y受容体の刺激による神経突起伸長を誘発する。
[材料および実験方法]
[代謝標識およびPI代謝回転分析]
PI代謝回転の分析を、Nitsch RM et al,J Neurochem 69:704−12,1997に記載されているように行った。簡単に言えば、細胞を無血清MEM中の1.25 microCurie(μCi)/皿のミオ−[2−3H]イノシトール(17.0Curie/mmol;Amersham Biosciences)で36時間にわたって代謝的に標識し、ハンクス平衡塩類溶液(HBSS)で2回洗浄し、HBSS中の10mMの塩化リチウムで15分間処理した。薬剤を10mMリチウムの存在下に37℃で60分間にわたって添加した。細胞を氷冷メタノールで溶解し、脂質をクロロホルム/メタノール/水(容量により2:2:1)での抽出によって除去した。AG 1−X8カラム(Bio−Rad)ならびに溶離剤としての1Mギ酸アンモニウムおよび0.1Mギ酸を使用するイオン交換クロマトグラフィーによって、標識された水溶性イノシトールホスフェートを、遊離[3H]イノシトールから分離した。放射能を、液体シンチレーションスペクトロメトリによって定量化した。
P2Y2、P2Y4およびP2Y6受容体は、ホスホリパーゼC/ジアシルグリセロール/イノシトールトリホスフェート(PLC/DAG/IP3)シグナル伝達経路を活性化する。神経突起伸長を促進するウリジンまたはUTPの濃度が、これらの受容体を活性化するかどうかを確認するために、NGF分化PC12細胞を、[3H]−イノシトール(50μM)またはUTP(10、100μM)で1時間標識し、IPシグナル伝達を、放射標識IPの代謝回転を測定することによって評価した(図18)。IPの形成は、100μM UTP(p<0.05)の添加によって、および50μMウリジン(p<0.01)によって、有意に増加した。P2Y受容体アンタゴニストPPADS(100μM)は、UTPによるIPシグナル伝達の刺激を、有意に(p<0.05)ブロックした。これらの結果は、UTPが、IPシグナル伝達経路のP2Y受容体媒介刺激によって、神経突起伸長を促進することを示している。
[材料および実験方法]
[モリス水迷路]
高齢ラット(18ヵ月、500g)に、対照食餌、または2.5% UMP含有食餌を、6週間与えた。次に、それらに、プールの4つの各四分円のどこかに順に配置した直径6フィートの水プール中の隠れたプラットホームを示し、泳ぐことによってプラットホームに移る各試行に90秒を与え、泳ぎ時間「平均逃避潜伏時間」を記録した。4試行1セットを、4日連続で毎日繰り返した。プラットホームを毎日同じ場所に置いた。モリス水迷路として公知のこの試験は、空間記憶の指標である。
対照またはUMP含有固形飼料(0、0.1、0.5または2.5%)を3週間にわたって自由に与えた雄の若い成長ジャービルを、ラジアルアーム迷路(各末端に小さい固形飼料を入れた4つの枝を有する中央室から成る)で試験した。試験の前に、動物を一晩絶食させ、次に、各動物を中央室に入れ、全ての固形飼料を見出すために180秒までを与えた。固形飼料を見出すのに要する時間が短いほど、向上した学習および空間記憶を示す。
対照または0.1% UMP食餌を4週間与え、前記の全固形飼料を見出すことができるように訓練した10匹のジャービルのグループを改変試験に付し、該改変試験において、迷路の2つのアームだけ(但し、常に同じ2つのアーム)が固形飼料報酬を有していた。この試験において、作業記憶誤りは、ジャービルがその日に固形飼料を既に取ったアームに再訪したという誤りである。参照記憶誤りは、ジャービルが固形飼料を有していなかった(改変試験中)アームに入ったという誤りである。
前記の実施例は、血清ウリジンレベルを増加させることが、いくつかの方法で機能する神経細胞の能力を向上させることを示した。この実施例は、ウリジンが認知機能および知力を増強させることを直接的に示す。高齢ラット(18ヵ月、500g)に、対照食餌または2.5% UMP・2Na+を含有する食餌を6週間与え、それらの記憶をモリス水迷路(空間記憶の指標)で試験した。UMP・2Na+強化食餌を与えたラットは、プラットホームの位置に到達するのに要する時間の、統計的に有意な減少を示し(図19)、血清ウリジンレベルを増加させることによって空間記憶が強化されることを示している。
[材料および実験方法]
[脳薄片調製]
雄スプレイグ・ドーリーラット(9〜11ヵ月齢)に、ケタミン(85mg/kg体重、筋肉内)で麻酔し、低温室において4℃で断頭した。すぐに脳を除去し、1mM ケタミンおよび15μg/mL エセリンを含有する冷却(4℃)酸素化クレブス緩衝液(119.5mM NaCl、3.3mM KCl、1.3mM CaCl2、1.2mM MgSO4、25mM NaHCO3、1.2mM KH2PO4、11mMグルコースおよび0.03mM EDTA、pH7.4)に入れた。残留する髄膜および脈絡叢を除去した後、すぐに、線条体、海馬および皮質の30μm薄片を、マッキルウェイン(McIllwain)組織細断機で調製し、3回洗浄し、特注の灌流室(Warner Instrument,Hamden,CT)に入れた。
前記の酸素化クレブス/ケタミン/エセリン緩衝液を用いて0.8mL/分の流量で室を灌流することによって、薄片を37℃で60分間平衡させた。灌流室は、電気刺激装置(モデルS88;Grass Instruments)に連結された2つの反対シルバーマッシュ(silver mash)電極を有していた。注文製の転極装置(polarity reversal device)を用いて、室分極を防ぎ、かつ各パルスの開始後50マイクロ秒で電流および電圧の両方を監視して、均一室抵抗を確実にした。平衡時間後に、20μM コリン、25μMシチジンおよび/または25μMウリジンの存在または不存在下において、薄片を、クレブス/ケタミン/エセリン緩衝液の高K+(52mM)バージョンでの灌流によって脱分極した。灌流液を、全2時間にわたって収集し、アセチルコリンに関して分析した。数値を、薄片のタンパク質含有量に関して標準化した。
アセチルコリン放出におけるコリンの作用を調べるために、線条体、海馬および皮質の薄片(n=8)を、コリンの存在または不存在下において培養し、次に、脱分極し、アセチルコリン放出を測定した。いくつかのグループにおいて、シチジンまたはウリジンも添加した。コリンはアセチルコリンの放出を増加させた(図22)。
[材料および実験方法]
[動物]
動物を、標準環境条件(室温、20〜25℃;相対湿度、55〜60%;明暗時間割、12/12)に維持した。7匹の妊娠スプレイグ・ドーリーラット(Charles River Laboratories)を、出産前1週間に得た。生後23日目に、雄の子を取り、小グループに分け、1週間順化させた。この際に、32匹のラットを体重によって組合せ、ICまたはEC条件のいずれかに割り当てた。ICラットの1つのサブグループ(n=8)およびECラットの1つのサブグループ(n=8)に、対照実験食餌(Teklad Global 16%タンパク質げっ歯類食餌(Teklad diet 00217)、Harlan Teklad,Madison,WI)を与え、残りのサブグループ(それぞれn=8)には、200mg/kg/日のUMP−2Na+または約132mg/kg/日のウリジンに対応するウリジン−5’−モノホスフェート二ナトリウム(0.1% UMP−2Na+;Teklad diet 03273)を補充したこの食餌を与えた。
直径6ft(185cm)および高さ1.5ft(0.55cm)の亜鉛めっき円形タンクを、20cmの深さまで水(25℃±2℃)で満たし、いくつかの特別迷路目印(extra−maze cues)を有する薄暗い照明の部屋に置いた。4つの出発位置(北、南、東、西)をタンクの外周部に一定の間隔で配置し、プールを4つの等しい四分円に分割した。水迷路の可視プラットホーム版のために、白いゴムボール(直径8cm)を、浸水プラットホームの上部に取り付け、水面より上に突き出させた。プラットホームは、水から逃避するためにボールに乗るための踏み段として使用できた。ビデオカメラを水迷路より上方に取り付け、このカメラは、ビデオ追跡ソフトウエアを有するコンピューターに連結されて、逃避潜伏時間(プラットホームに到達するまでの時間)、泳いだ距離(プラットホームを見つけるために泳いだ経路の長さ)、および水泳速度を自動的に記録した(HVS Image Ltd;Buckingham,UK)。
行動訓練を、10:00AM〜2.00PMの間にブラインド的に実施した。ラットは、隠れたプラットホーム(水面下1.5cm)を探すための1日4試行(即ち水泳)から成る4日間の訓練を受け、該プラットホームは、各動物について試行を通して同じ位置(即ち、4つの四分円の1つ)に維持された。各試行において、動物を、4つの指定出発点(N、S、EおよびW)の1つにおいて、壁に面しているタンクに入れ、隠れたプラットホームに逃避させた。各出発点が1日に1回使用されるように、各試行において異なる出発点を使用した。動物が90秒以内に逃避できなかった場合、実験者によってプラットホームに逃避するように手で誘導した。プラットホームに乗った後、ラットをプラットホームに20秒間留まらせた。各試行後に、動物を迷路から出し、30秒間の試行間間隔(ITI)にわたって待機ケージ(holding cage)に入れた。逃避プラットホームに乗るまでの潜伏時間を、課題習得の測度として使用した。
結果を平均値±S.E.Mとして示す。データを、ANOVA、次にフィッシャーPLSDによって、post−hoc比較に関して分析した。P<0.05の数値を有する差異は、有意とみなされた。
海馬依存性および/または認知記憶処理における、経口UMP投与の作用を調べるために、ラットを豊富(EC)または貧困(IC)条件に3ヶ月間暴露し、各条件に暴露したラットに対照食餌またはUMP強化食餌を与え、次に、隠れプラットホーム水迷路課題を与えた。試行のブロックの有意な主作用によって立証されるように(ANOVA分析;P<0.001)、全ラットの成績が、隠れプラットホーム水迷路課題における4日間の訓練期間中に向上した(図23A)。さらに、グループの主作用(P<0.01)、および有意グループ×食餌相互作用(P<0.05)も観測された。IC−UMPラットおよびいずれかの食餌で処理されたECラットが、IC−CONTラット(対照食餌を与えられたICラット)より有意に速く、課題を習得した(post−hoc分析;P<0.05)。さらに、UMPで処理したECラットは、EC−CONTラットより速く課題を習得した(P<0.09)。このように、UMPでの慢性的食餌処理は、貧困環境条件によって生じる空間および/または認知記憶および知力における障害を防止し、健康被験動物において空間および/または認知記憶および知力を向上させる。
[材料および実験方法]
[可視水迷路課題]
4日間/1日4試行の空間訓練課題の終了から1週間後、前記の実施例からのラットに、1日4試行(即ち、水泳)から構成される4訓練期間を与えた。各試行において、動物を、4つの指定出発点(N、S、EおよびW)の1つにおいて、壁に面しているタンクに入れ、可視的に合図されたプラットホームに逃避しうるようにした。各出発点が各日に使用されるように、各試行において、異なる出発点を使用した。さらに、4つの各四分円が各日に1回プラットホームを有するように、可視逃避プラットホームを、各試行において、異なる四分円に入れた。動物が90秒以内に逃避できなかった場合、実験者によってプラットホームに逃避するように手で誘導した。プラットホームに乗った後、ラットをプラットホームに20秒間留まらせた。各試行後に、動物を迷路から出し、30秒ITIにわたって待機ケージに入れた。
線条体依存性記憶処理における、経口UMP投与の作用を調べるために、ラットを、先の実施例のように処理し、可視プラットホーム水迷路課題を与えた。図24に示すように、試行のブロックの有意な主作用によって立証されるように(ANOVA分析;P<0.001)、ラットの成績が4日間の訓練期間中に向上した。他の有意な主作用は観測されず、これは、環境およびUMP補充食餌が線条体に基づく(刺激−反応)記憶における作用をほとんどまたは全く有さないことを示す。
対象に、3.3mmol(ミリモル)ウリジンまたは3.2mmolシチジンをそれぞれ含有する経口UMP(2000mg)またはCDP−コリン(4000mg)を投与した。UMPおよびCDP−コリン後に、血漿ウリジンピークが、それぞれ24および14mcMでピークに達し;曲線下面積の増加は、それぞれ345%および201%であった(図25)。
[材料および実験方法]
[食餌]
対照標準食餌(表4)は、Teklad Global 16%タンパク質げっ歯類食餌(Harlan Teklad,Madison,WI)から成り、それは0.1%塩化コリン(CC)を含有し、50mg/kg/日の日用量に相当した。UMPは、0.5%UMP・2Na+w/wとして与え、対照食餌に添加され、これもHarlan Tekladによって製造され、240mg/kg/日UMPに相当した。DHAは、200マイクロリットル(mcL)/日5%アラビアゴム溶液中の300mg/kg/日として投与され、DHAを投与されないグループは賦形剤(5%アラビアゴム)だけを投与された。DHAは、Nu−Chek Prep(Elysian,MN)によって供給され、UMPはNumico(Wagenigen,NL)によって供給された。どのグループも、実験期間中に体重の有意な変化を示さなかった。
ジャービルにケタミンおよびキシラジン(80および10mg/kg体重、腹腔内)で麻酔し、頭を液体窒素に2分間浸し、次に断頭することによって、犠牲にした。すぐに、かつ素早く(30秒)、骨鉗子を用いて脳を除去し、−80℃で保存した。
凍結した脳半球の重さを量り、組織崩壊剤(Polytron PT 10−35,Kinematica AG,Switzerland)を用いて100容量の氷冷脱イオン水中で均質化し、次に、実施例1に記載したように分析した。
全脳ホモジネート試料中のタンパク質を、ビシンコニニック酸試薬(Perkin Elmer,Norwalk,CT,USA)を用いて測定した。DNAは、Hoechst H 33258(American Hoechst Corporation)として公知の蛍光染料であるビスベンズイミダゾール(bisbenzimidizole)の存在下に、蛍光計で試料の460nm発光を測定することによって測定し、該染料は、DNAに結合した際に356nmにおける励起極大および458の発光極大を有する。
体重80〜100gの雄ジャービルを、8匹のジャービルの4つのグループに分け、表1に示されている栄養補助食品を投与した。
[1] アルツハイマー病または他の加齢性記憶障害を有する患者において、記憶、学習または認知を向上させる方法であって、CDP−コリンまたは薬学的に許容可能なその塩を含む組成物を該患者に投与し、それによってアルツハイマー病または他の加齢性記憶障害を有する患者において、記憶、学習または認知を向上させることを含む方法。
[2] 前記CDP−コリンまたは薬学的に許容可能なその塩が、前記患者におけるウリジンまたはウリジンホスフェートのレベルを増加させることができる、上記[1]に記載の方法。
[3] 前記組成物が、多価不飽和脂肪酸をさらに含む、上記[1]に記載の方法。
[4] アルツハイマー病または他の加齢性記憶障害を有する患者において、シナプス伝達を向上させる方法であって、CDP−コリンまたは薬学的に許容可能なその塩を含む組成物を該患者に投与し、それによってアルツハイマー病または他の加齢性記憶障害を有する患者において、シナプス伝達を向上させることを含む方法。
[5] 前記CDP−コリンまたは薬学的に許容可能なその塩が、前記患者におけるウリジンまたはウリジンホスフェートのレベルを増加させることができる、上記[4]に記載の方法。
[6] 前記組成物が、多価不飽和脂肪酸をさらに含む、上記[4]に記載の方法。
[7] アルツハイマー病または他の加齢性記憶障害を有する患者の脳細胞または神経細胞が、神経伝達物質を合成する能力を、増加または強化する方法であって、CDP−コリンまたは薬学的に許容可能なその塩を含む組成物を該患者に投与し、それによって患者の脳細胞または神経細胞が神経伝達物質を合成する能力を増加または強化することを含む方法。
[8] 前記神経伝達物質がアセチルコリンである、上記[7]に記載の方法。
[9] 前記CDP−コリンまたは薬学的に許容可能なその塩が、前記患者におけるウリジンまたはウリジンホスフェートのレベルを増加させることができる、上記 [7]に記載の方法。
[10] 前記組成物が、多価不飽和脂肪酸をさらに含む、上記[7]に記載の方法。
[11] アルツハイマー病または他の加齢性記憶障害を有する患者の脳細胞または神経細胞が、有効量の神経伝達物質をシナプスに繰り返し放出する能力を、増加または強化する方法であって、CDP−コリンまたは薬学的に許容可能なその塩を含む組成物を該患者に投与し、それによって患者の脳細胞または神経細胞が、有効量の神経伝達物質をシナプスに繰り返し放出する能力を増加または強化することを含む方法。
[12] 前記神経伝達物質がアセチルコリンである、上記[11]に記載の方法。
[13] 前記CDP−コリンまたは薬学的に許容可能なその塩が、前記患者におけるウリジンまたはウリジンホスフェートのレベルを増加させることができる、上記[11]に記載の方法。
[14] 前記放出がニューロンの刺激後に生じる、上記[11]に記載の方法。
[15] 前記組成物が、多価不飽和脂肪酸をさらに含む、上記[11]に記載の方法。
[16] アルツハイマー病または他の加齢性記憶障害を有する患者の脳細胞または神経細胞によるホスファチジルコリンの生成を刺激または強化する方法であって、CDP−コリンまたは薬学的に許容可能なその塩を含む組成物を該患者に投与し、それによって患者の脳細胞または神経細胞によるホスファチジルコリンの生成を刺激または強化することを含む方法。
[17] 前記脳細胞または神経細胞が新しく分化される、上記[16]に記載の方法。
[18] 前記ホスファチジルコリンのレベルが、脳細胞または神経細胞の樹状突起膜において増加される、上記[16]に記載の方法。
[19] 前記ホスファチジルコリンのレベルが、脳細胞または神経細胞の軸索膜において増加される、上記[16]に記載の方法。
[20] 前記CDP−コリンまたは薬学的に許容可能なその塩が、前記患者におけるウリジンまたはウリジンホスフェートのレベルを増加させることができる、上記[16]に記載の方法。
[21] 前記組成物が、多価不飽和脂肪酸をさらに含む、上記[16]に記載の方法。
[22] アルツハイマー病または他の加齢性記憶障害を有する患者の脳において、ホスファチジルコリン(PC)、ホスファチジルエタノールアミン(PE)、ホスファチジルセリン(PS)およびホスファチジルイノシトール(PI)から選択されるリン脂質のレベルを増加させる方法であって、CDPコリンまたは薬学的に許容可能なその塩を含む組成物を該患者に投与し、それによって患者の脳において、PC、PE、PSおよびPIから選択されるリン脂質のレベルを増加させることを含む方法。
[23] 前記CDP−コリンまたは薬学的に許容可能なその塩が、前記患者におけるウリジンまたはウリジンホスフェートのレベルを増加させることができる、上記[22]に記載の方法。
[24] 前記組成物が、多価不飽和脂肪酸をさらに含む、上記[22]に記載の方法。
[25] アルツハイマー病または他の加齢性記憶障害を有する患者において、脳膜の生成を増加または強化する方法であって、CDPコリンまたは薬学的に許容可能なその塩を含む組成物を該患者に投与し、それによって患者の脳膜の生成を増加または強化することを含む方法。
[26] 前記CDP−コリンまたは薬学的に許容可能なその塩が、前記患者におけるウリジンまたはウリジンホスフェートのレベルを増加させることができる、[25]に記載の方法。
[27] 前記組成物が、多価不飽和脂肪酸をさらに含む、上記[25]に記載の方法。
[28] アルツハイマー病または他の加齢性記憶障害を有する患者の神経細胞の神経突起伸長を刺激または強化する方法であって、CDPコリンまたは薬学的に許容可能なその塩を含む組成物を該患者に投与し、それによって患者の神経細胞の神経突起伸長を刺激または強化することを含む方法。
[29] 前記CDP−コリンまたは薬学的に許容可能なその塩が、前記患者におけるウリジンまたはウリジンホスフェートのレベルを増加させることができる、上記[28]に記載の方法。
[30] 前記組成物が、多価不飽和脂肪酸をさらに含む、上記[28]に記載の方法。
[31] アルツハイマー病または他の加齢性記憶障害を有する患者の神経細胞の軸策分岐を刺激または強化する方法であって、CDPコリンまたは薬学的に許容可能なその塩を含む組成物を該患者に投与し、それによって患者の神経細胞の軸策分岐を刺激または強化することを含む方法。
[32] 前記CDP−コリンまたは薬学的に許容可能なその塩が、前記患者におけるウリジンまたはウリジンホスフェートのレベルを増加させることができる、上記[31]に記載の方法。
[33] 前記組成物が、多価不飽和脂肪酸をさらに含む、上記[31]に記載の方法。
[34] アルツハイマー病または他の加齢性記憶障害を有する患者の損傷された神経細胞の修復を促進する方法であって、CDPコリンまたは薬学的に許容可能なその塩を含む組成物を該患者に投与し、それによって患者の損傷された神経細胞の修復を促進することを含む方法。
[35] 前記CDP−コリンまたは薬学的に許容可能なその塩が、前記患者におけるウリジンまたはウリジンホスフェートのレベルを増加させることができる、上記[34]に記載の方法。
[36] 前記組成物が、多価不飽和脂肪酸をさらに含む、上記[34]に記載の方法。
[37] 膜の生成が、前記神経細胞において刺激または強化される、上記[34]に記載の方法。
[38] 損傷された神経細胞が損傷された軸索を有し、該損傷された軸索が治癒される、上記[34]に記載の方法。
[39] 膜の生成が、前記神経細胞に隣接するミエリン生成乏突起神経膠細胞において刺激または強化される、上記[34]に記載の方法。
Claims (2)
- (a)CDP−コリンまたは薬学的に許容可能なその塩と、
(b)コリンまたはコリン塩と、
(c)ドコサヘキサエン酸及びエイコサペンタエン酸と
の、必要とする患者において、神経細胞の神経突起伸長を刺激するための医薬の製造における使用であって、
該医薬が、該患者に投与され、該CDP−コリンまたは薬学的に許容可能なその塩が、300mg〜2000mgの量で存在し、前記ドコサヘキサエン酸及びエイコサペンタエン酸が、300mg/Kg/日以上の量で存在し、
該患者が、アルツハイマー病、加齢性認知障害、加齢性記憶障害(AAMI)、記憶力低下、ピック病、レビー小体病、または認知症を有する、使用。 - 前記医薬が、栄養補助食品の形態である、請求項1に記載の使用。
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