JP6037548B2 - Anti-inflammatory agent - Google Patents

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Description

本発明は、還元型スキトネミンを有効成分として含有する誘導型一酸化窒素合成酵素を介した抗炎症剤に関する。 The present invention relates to anti-inflammatory agents via the inducible nitric oxide synthase containing reduced form Sukitonemi in as an active ingredient.

一般的に、一酸化窒素(NO)は、不対電子を有するため反応性が高く、生体内で様々な反応系に関わっていることが知られている。NOは、生体内において、NO合成酵素によりアルギン酸と酸素から合成される。NO合成酵素には、神経型(nNOS)、誘導型(iNOS)及び内皮型(eNOS)の3つのアイソフォームが知られている。これらの中でiNOSは、感染等によって誘導されたインターフェロン−γ(IFNγ)及びインターロイキン−1(IL-1)等により転写レベルでその発現が誘導され、炎症反応に重要な役割を果たす一酸化窒素を合成するとともに、一連の生体防御機構を活性化させる。   In general, nitric oxide (NO) has high reactivity because it has unpaired electrons, and is known to be involved in various reaction systems in vivo. NO is synthesized from alginic acid and oxygen by NO synthase in vivo. There are three known isoforms of NO synthase: neural (nNOS), inducible (iNOS) and endothelial (eNOS). Among them, iNOS is expressed by interferon-γ (IFNγ) and interleukin-1 (IL-1) induced by infection and the like, and its expression is induced at the transcription level, and monoxide plays an important role in the inflammatory reaction. It synthesizes nitrogen and activates a series of biological defense mechanisms.

通常、炎症反応は、IFNγ及びIL-1の他、リポ多糖(LPS)及びプロスタグランジン(PG)等のメディエーターによって制御される。しかしながら、慢性炎症又は微生物感染等による急性炎症は組織にとって有害であり、細胞障害を引き起こすおそれがある。例えば非特許文献1に開示されるように、iNOSの持続的な発現によるNOの過剰生産は、敗血症、心血管疾患、関節リウマチ、気管支炎、及び癌等の炎症性疾患、並びに自己免疫疾患を引き起こすおそれがある。現在、iNOSを介する炎症性疾患等の疾患の悪化に対する予防薬や治療薬の開発が急務となっている。   Usually, the inflammatory reaction is controlled by mediators such as lipopolysaccharide (LPS) and prostaglandin (PG) in addition to IFNγ and IL-1. However, acute inflammation due to chronic inflammation or microbial infection is harmful to tissues and may cause cell damage. For example, as disclosed in Non-Patent Document 1, excessive production of NO by sustained expression of iNOS can cause inflammatory diseases such as sepsis, cardiovascular disease, rheumatoid arthritis, bronchitis, and cancer, and autoimmune diseases. May cause. Currently, there is an urgent need for the development of preventive and therapeutic drugs for worsening diseases such as inflammatory diseases mediated by iNOS.

Heo S.J., Yoon W.J., Kim K.N., Ahn G. N., Kang S.M., Kang D.H., Affan A., Chulhong O., Jung W.K., Jeon Y. J. (2010). Evaluation of anti-inflammatory effect of fucoxanthin isolated from brown algae in lipopolysaccharide-stimulated RAW 264.7 macrophages . Fo od. Chem.Toxicol., 48, 2045-2051.Heo SJ, Yoon WJ, Kim KN, Ahn GN, Kang SM, Kang DH, Affan A., Chulhong O., Jung WK, Jeon YJ (2010) .Evaluation of anti-inflammatory effect of fucoxanthin isolated from brown algae in lipopolysaccharide- stimulated RAW 264.7 macrophages. Fo od. Chem. Toxicol., 48, 2045-2051.

特表2007−526768号公報Special Table 2007-526768

ところで、校庭の土壌などの表面に肉眼的な大きさのコロニーを作る藻類としてイシクラゲが知られている。例えば特許文献1に開示されるように、イシクラゲはコレステロール低下作用、抗ウイルス作用、抗がん作用等の生体に有用な作用を発揮することが実証されている。   By the way, Ishi jellyfish is known as an algae that makes a macroscopically sized colony on the surface of school ground or the like. For example, as disclosed in Patent Document 1, it has been demonstrated that Ishi jellyfish exhibits useful effects on the living body such as cholesterol lowering action, antiviral action, and anticancer action.

本発明者らは、鋭意研究の結果、イシクラゲから単離した還元型スキトネミンについて、優れた一酸化窒素産生抑制作用を有することを見出した。
この発明は、上記の知見に基づいてなされたものであり、本発明の目的は、優れた抗炎症作用を発揮する抗炎症剤を提供することにある。
The present inventors have found, as a result of intensive research, with the reduced form Sukitonemi down isolated from Nostoc commune, it was found to have an effect excellent nitric oxide production suppression.
The present invention has been made based on the above findings, and an object of the present invention is to provide an anti-inflammatory agent that exhibits an excellent anti-inflammatory action.

上記の目的を達成するために請求項1に記載の発明の誘導型一酸化窒素合成酵素を介した細菌性炎症に対する抗炎症剤は、還元型スキトネミンを有効成分として含有する。 Anti-inflammatory agents against bacterial inflammation via inducible nitric oxide synthase of the invention described in claim 1 in order to achieve the above object, comprises a reduced form Sukitonemi in as an active ingredient.

発明の抗炎症剤によれば、優れた抗炎症作用を発揮することができる。 According to the anti-inflammatory agent of the present invention, an excellent anti-inflammatory action can be exhibited.

還元型スキトネミンの単離工程の説明図。Explanatory drawing of the isolation process of reduced type skitonemin. スキトネミンの単離工程の説明図。Explanatory drawing of the isolation process of skitonemin. 還元型スキトネミン及びスキトネミンによるLPS/IFNγ誘導RAW264細胞のNO産生への影響を示すグラフ。The graph which shows the influence on NO production | generation of LPS / IFN (gamma) induction RAW264 cell by a reduced form skitonemin and a skitonemin. (a)還元型スキトネミンのLPS/IFNγ誘導RAW264細胞におけるiNOSとCOX-2発現への影響を示すウエスタンブロット解析の結果。(b)還元型スキトネミンのLPS/IFNγ誘導RAW264細胞におけるiNOS mRNA発現に対する影響を示すRT-RCR後の電気泳動の結果。(A) Results of Western blot analysis showing the effect of reduced skitonene on iNOS and COX-2 expression in LPS / IFNγ-induced RAW264 cells. (B) Electrophoresis results after RT-RCR showing the effect of reduced skitonene on iNOS mRNA expression in LPS / IFNγ-induced RAW264 cells. (a)還元型スキトネミンのLPS/IFNγ誘導RAW264細胞におけるNO産生に伴う細胞内シグナル伝達において、MAPキナーゼ(p38, SAPK/JNK, ERK)のウエスタンブロット解析の結果。(b)還元型スキトネミンのLPS/IFNγ誘導RAW264細胞におけるNO産生に伴う細胞内シグナル伝達において、IκBα及びSTAT1のウエスタンブロット解析の結果。(A) Results of Western blot analysis of MAP kinase (p38, SAPK / JNK, ERK) in intracellular signal transduction associated with NO production in LPS / IFNγ-induced RAW264 cells of reduced form of skitonemin. (B) Western blot analysis of IκBα and STAT1 in intracellular signal transduction associated with NO production in LPS / IFNγ-induced RAW264 cells of reduced skitonemin. 還元型スキトネミンのLPS/IFNγ誘導RAW264細胞における炎症シグナルにおいて、MAPキナーゼ(p38、JNK、ERK)、Iκ-B、STAT1等の影響を示す図。The figure which shows the influence of MAP kinase (p38, JNK, ERK), I (kappa) -B, STAT1, etc. in the inflammatory signal in LPS / IFN (gamma) induction RAW264 cell of reduced type | mold skitonemin.

以下、本発明の一酸化窒素産生抑制剤を具体化した実施形態を詳細に説明する。なお、以下、細菌性炎症に対する抗炎症剤以外の用途は参考例とする。
本実施形態の一酸化窒素産生抑制剤に有効成分として含有される還元型スキトネミン(Reduced scytonemin)及びスキトネミン(Scytonemin)は、それぞれ下記一般式(1)及び一般式(2)に示される構造を有する。これらの中で、一酸化窒素産生抑制作用の優れる還元型スキトネミンが好ましい。なお、以下、スキトネミンは参考例とする。
Hereinafter, the embodiment which materialized the nitric oxide production inhibitor of the present invention is described in detail. Hereinafter, uses other than anti-inflammatory agents for bacterial inflammation are used as reference examples.
Reduced scytonemin (Reduced scytonemin) and scitonemin (Scytonemin) contained as active ingredients in the nitric oxide production inhibitor of the present embodiment have the structures shown by the following general formula (1) and general formula (2), respectively. . Of these, reduced-type skitonemin is preferred because of its excellent inhibitory effect on nitric oxide production. Hereinafter, skitonemin is used as a reference example.

また、一酸化窒素産生抑制剤に含有される還元型スキトネミン及びスキトネミンとしては、例えば天然素材由来の精製品、生化学品、及び化学合成品を適用することができる。天然素材からの精製品を適用する場合、天然素材原料としては、例えば、シアノバクテリア(藍色細菌)、ネンジュモ科ネンジュモ属の陸生藍藻の一種であるイシクラゲ(Nostoc commune)を挙げることができる。そして、還元型スキトネミン及びスキトネミンは、イシクラゲを原料として抽出工程及び単離工程を行うことにより得ることができる。以下、イシクラゲから還元型スキトネミン及びスキトネミンを得る方法について記載する。 In addition, as the reduced-type skitonemin and the skitonemine contained in the nitric oxide production inhibitor, for example, purified products derived from natural materials, biochemical products, and chemically synthesized products can be applied. In the case of applying a refined product from a natural material, examples of the raw material of the natural material include cyanobacteria (Cyanobacteria) and Nostoc commune, which is a kind of terrestrial cyanobacteria belonging to the genus Nenjumo. And reduced form skitonemin and skitonemin can be obtained by performing an extraction process and an isolation process by using Ishijelly. Hereinafter, a method for obtaining reduced-type skitonemin and skitonemin from Ishijelly will be described.

原料となるイシクラゲは、天然に自生する藻体であってもよいし、人工的に培養した藻体であってもよい。なお、安定供給が可能である点や品質保持が容易である点から、人工的に培養した藻体を用いることが工業的に好適である。また、原料としてのイシクラゲは採取したままの状態、採取後に破砕処理した状態、採取後に乾燥処理した状態、並びに採取後に破砕処理及び乾燥処理した状態のいずれの状態であってもよい。   The mushroom jellyfish used as a raw material may be a naturally occurring algal body or an artificially cultured algal body. In addition, it is industrially preferable to use an artificially cultured alga body from the viewpoint that stable supply is possible and quality maintenance is easy. In addition, the jellyfish as a raw material may be in any state of being collected, in a state of being crushed after being collected, in a state of being dried after being collected, and in a state of being crushed and dried after being collected.

抽出工程は、イシクラゲから還元型スキトネミン及びスキトネミンを含む抽出物を抽出する工程である。抽出工程に用いる抽出溶媒としては、水、親水性有機溶媒、又は水と親水性有機溶媒との混合溶媒を用いることができる。親水性有機溶媒としては、例えば、メタノールやエタノール等の低級アルコール類、アセトン、及び酢酸エチルが挙げられる。抽出方法としては、公知の抽出方法、例えば冷水抽出、温水抽出、熱水抽出、及び蒸気抽出のいずれの方法を用いてもよい。   The extraction step is a step of extracting an extract containing reduced-type skitonemin and skitonemine from the medusa. As the extraction solvent used in the extraction step, water, a hydrophilic organic solvent, or a mixed solvent of water and a hydrophilic organic solvent can be used. Examples of the hydrophilic organic solvent include lower alcohols such as methanol and ethanol, acetone, and ethyl acetate. As the extraction method, any known extraction method such as cold water extraction, hot water extraction, hot water extraction, and steam extraction may be used.

抽出操作としては、抽出溶媒中にイシクラゲを所定時間浸漬させる。抽出操作においては、抽出効率を高めるべく、必要に応じて攪拌処理、加圧処理、及び超音波処理等の処理をさらに行ってもよい。抽出操作後、例えばろ過や遠心分離等の公知の分離法を用いて固液分離操作を行うことにより、抽出液と原料の残渣とを分離する。このとき、必要に応じて得られた抽出液(抽出物)の濃縮を行う。   As the extraction operation, the jellyfish is immersed in the extraction solvent for a predetermined time. In extraction operation, in order to improve extraction efficiency, you may further perform processes, such as a stirring process, a pressurization process, and an ultrasonic treatment, as needed. After the extraction operation, for example, by performing a solid-liquid separation operation using a known separation method such as filtration or centrifugation, the extract and the raw material residue are separated. At this time, the obtained extract (extract) is concentrated as necessary.

単離工程は、抽出工程にて得られた抽出物中に含まれる還元型スキトネミン及びスキトネミンを単離・精製する工程である。還元型スキトネミン及びスキトネミンは、上記抽出物を1又は2以上のクロマトグラフィを用いて精製することにより単離される。クロマトグラフィとしては、公知のクロマトグラフィ、例えば液体クロマトグラフィ、超臨界流体クロマトグラフィ、及び薄層クロマトグラフィを用いることができる。液体クロマトグラフィとしては、例えばカラムクロマトグラフィを用いることができ、より具体的には高速液体クロマトグラフィ(HPLC)及びオープンカラムクロマトグラフィを挙げることができる。クロマトグラフィ担体としては、例えばイオン交換クロマトグラフィ、分配クロマトグラフィ(順相・逆相クロマトグラフィ)、吸着クロマトグラフィ、及び分子排斥クロマトグラフィが挙げられる。分配クロマトグラフィとして、より具体的にはシリカゲル担体やODS担体を用いることが分離効率の観点から好ましい。   The isolation step is a step of isolating and purifying reduced skitonemin and skitonemin contained in the extract obtained in the extraction step. Reduced skitonemin and skitonemin are isolated by purifying the extract using one or more chromatography. As the chromatography, known chromatography such as liquid chromatography, supercritical fluid chromatography, and thin layer chromatography can be used. As liquid chromatography, column chromatography can be used, for example, and more specifically, high performance liquid chromatography (HPLC) and open column chromatography can be mentioned. Examples of the chromatography carrier include ion exchange chromatography, partition chromatography (normal phase / reverse phase chromatography), adsorption chromatography, and molecular exclusion chromatography. More specifically, it is preferable to use a silica gel carrier or an ODS carrier as partition chromatography from the viewpoint of separation efficiency.

上記各種クロマトグラフィを適宜組み合わせて、公知の使用方法で上記還元型スキトネミン及びスキトネミンを単離・精製することができる。上記各種クロマトグラフィの使用方法としては、公知の方法を適宜採用することができる。上記還元型スキトネミン及びスキトネミンの同定は、構造決定により、又は精製品を指標とすることにより行うことができる。   By combining the above various chromatographs as appropriate, the reduced skitonemin and the skitonemin can be isolated and purified by a known method of use. As a method of using the above various chromatographies, known methods can be appropriately employed. The above-mentioned reduced form of skitonemin and skitonemin can be identified by determining the structure or using purified products as indicators.

本実施形態の一酸化窒素産生抑制剤の具体的な配合形態として、例えば健康食品や食品等の飲食品等の添加剤、医薬品、医薬部外品、皮膚外用剤、及び化粧品が挙げられる。飲食品の形態としては、特に限定されず、液状、粉末状、ゲル状、固形状等のいずれであってもよく、また剤形としては、錠剤、カプセル剤、顆粒剤、ドリンク剤のいずれであってもよい。前記飲食品としては、その他の成分としてゲル化剤含有食品、糖類、香料、甘味料、油脂、基材、賦形剤、食品添加剤、副素材、増量剤等を適宜配合してもよい。   Specific blending forms of the nitric oxide production inhibitor of the present embodiment include, for example, additives such as health foods and foods such as foods, pharmaceuticals, quasi drugs, skin external preparations, and cosmetics. The form of the food or drink is not particularly limited, and may be any of liquid, powder, gel, solid and the like, and the dosage form is any of tablets, capsules, granules, and drinks. There may be. As said food-drinks, you may mix | blend gelatinizer containing foodstuffs, saccharides, a fragrance | flavor, a sweetener, fats and oils, a base material, an excipient | filler, a food additive, a subsidiary material, a bulking agent etc. suitably as another component.

医薬品として使用する場合は、服用(経口摂取)、血管内投与、経皮投与、腹腔内投与の他、患部に塗布又は直接患部に投与する方法等のあらゆる投与方法を採用することが可能である。剤形としては、各投与方法に適した剤形を適宜採用することができるが、例えば、散剤、粉剤、顆粒剤、錠剤、カプセル剤、丸剤、坐剤、液剤、注射剤、皮膚外用剤等が挙げられる。また、必要により、添加剤として賦形剤、基剤、乳化剤、溶剤、安定剤等を配合してもよい。   In the case of use as a pharmaceutical, in addition to taking (oral intake), intravascular administration, transdermal administration, intraperitoneal administration, any administration method such as application to the affected area or direct administration to the affected area can be adopted. . As the dosage form, a dosage form suitable for each administration method can be appropriately adopted. For example, powder, powder, granule, tablet, capsule, pill, suppository, liquid, injection, external preparation for skin Etc. If necessary, excipients, bases, emulsifiers, solvents, stabilizers and the like may be added as additives.

本実施形態の一酸化窒素産生抑制剤を化粧料に適用する場合、化粧料基材に配合することにより製造することができる。化粧料の形態は、乳液状、クリーム状、粉末状等のいずれであってもよい。このような化粧料を肌に適用することにより、一酸化窒素産生抑制の効果を得ることができる。化粧料基剤は、一般に化粧料に共通して配合されるものであって、例えば、油分、精製水及びアルコールを主要成分として、界面活性剤、保湿剤、酸化防止剤、増粘剤、抗脂漏剤、血行促進剤、美白剤、pH調整剤、色素顔料、防腐剤及び香料から選択される少なくとも一種が適宜配合される。尚、本実施形態の一酸化窒素産生抑制剤を皮膚外用剤、化粧料、及び飲食品として適用する場合は、従来品と区別するために、上記作用・効果を得ることを目的とする旨の表示を付すことが好ましい。   When the nitric oxide production inhibitor of the present embodiment is applied to a cosmetic, it can be produced by blending into the cosmetic base material. The form of the cosmetic may be any of emulsion, cream, powder and the like. By applying such a cosmetic to the skin, an effect of suppressing nitric oxide production can be obtained. Cosmetic bases are generally blended in common with cosmetics, and include, for example, oil, purified water and alcohol as main components, surfactants, moisturizers, antioxidants, thickeners, anti-oxidants. At least one selected from a seborrheic agent, a blood circulation promoter, a whitening agent, a pH adjuster, a pigment, a preservative, and a fragrance is appropriately blended. In addition, when applying the nitric oxide production inhibitor of the present embodiment as an external preparation for skin, cosmetics, and food and drink, it is intended to obtain the above actions and effects in order to distinguish it from conventional products. It is preferable to attach a display.

次に、上記のように構成された一酸化窒素産生抑制剤の作用を説明する。
本実施形態の一酸化窒素産生抑制剤は、有効成分として配合される還元型スキトネミン又はスキトネミンにより、高い一酸化窒素産生抑制作用を発揮する。より具体的には、誘導型一酸化窒素合成酵素を介した一酸化窒素の産生抑制作用を発揮する。還元型スキトネミン及びスキトネミンは、誘導型一酸化窒素合成酵素に対応するmRNAの発現を抑制し、誘導型一酸化窒素合成酵素量を減少させる。
Next, an effect | action of the nitric oxide production inhibitor comprised as mentioned above is demonstrated.
The nitric oxide production inhibitor of the present embodiment exerts a high nitric oxide production inhibitory action due to reduced skitonemin or skitonemine blended as an active ingredient. More specifically, it exerts an inhibitory effect on nitric oxide production via inducible nitric oxide synthase. Reduced skitonemin and skitonemin suppress the expression of mRNA corresponding to inducible nitric oxide synthase and reduce the amount of inducible nitric oxide synthase.

誘導型一酸化窒素合成酵素の持続的な発現による一酸化窒素の過剰生産は、敗血症、心血管疾患、関節リウマチ、気管支炎、及び癌等の炎症性疾患、並びに自己免疫疾患を引き起こすことが知られている。したがって、本実施形態の一酸化窒素産生抑制剤は、敗血症、心血管疾患、関節リウマチ、気管支炎、及び癌等の炎症性疾患、並びに自己免疫疾患の予防薬や治療薬として好ましく適用できる。   Overproduction of nitric oxide by sustained expression of inducible nitric oxide synthase is known to cause inflammatory diseases such as sepsis, cardiovascular disease, rheumatoid arthritis, bronchitis, and cancer, and autoimmune diseases. It has been. Therefore, the nitric oxide production inhibitor of this embodiment can be preferably applied as a prophylactic or therapeutic agent for inflammatory diseases such as sepsis, cardiovascular disease, rheumatoid arthritis, bronchitis, and cancer, and autoimmune diseases.

また、本実施形態の一酸化窒素産生抑制剤は、LPS/INFγ誘導一酸化窒素産生に伴う細胞内シグナル伝達によって活性化されるMAPキナーゼ(p38,SAPK/JNK,ERK)、IκBα、STAT1について、各活性を抑制する。それにより、炎症反応を起こす一酸化窒素の産生を減少させる。よって、本実施形態の一酸化窒素産生抑制剤は、抗炎症剤として好ましく適用することができる。   Further, the nitric oxide production inhibitor of the present embodiment is about MAP kinase (p38, SAPK / JNK, ERK), IκBα, STAT1 activated by intracellular signal transduction accompanying LPS / INFγ-induced nitric oxide production, Inhibits each activity. Thereby, the production of nitric oxide causing an inflammatory response is reduced. Therefore, the nitric oxide production inhibitor of this embodiment can be preferably applied as an anti-inflammatory agent.

次に、本実施形態における効果について以下に記載する。
(1)本実施形態の一酸化窒素産生抑制剤は、還元型スキトネミン又はスキトネミンを有効成分として含有する。したがって、還元型スキトネミン又はスキトネミンの適用により誘導型一酸化窒素合成酵素を介した一酸化窒素の産生抑制作用を有効に発揮することができる。
Next, the effect in this embodiment is described below.
(1) The nitric oxide production inhibitor of this embodiment contains reduced-type skitonemin or skitonemine as an active ingredient. Therefore, the application of reduced skitonemin or skitonemin can effectively exert the inhibitory effect on nitric oxide production via inducible nitric oxide synthase.

(2)本実施形態の一酸化窒素産生抑制剤は、有効成分である還元型スキトネミン又はスキトネミンにより、誘導型一酸化窒素合成酵素を介した一酸化窒素の産生抑制作用を発揮する。したがって、誘導型一酸化窒素合成酵素を介した一酸化窒素の過剰生産が関連する敗血症、心血管疾患、関節リウマチ、気管支炎、及び癌等の炎症性疾患、並びに自己免疫疾患の予防薬や治療薬に好適に用いることができる。   (2) The nitric oxide production inhibitor of the present embodiment exerts an action of suppressing the production of nitric oxide via an inducible nitric oxide synthase with reduced-type skitonemin or skitonemin as an active ingredient. Therefore, prophylactic and treatment of inflammatory diseases such as sepsis, cardiovascular disease, rheumatoid arthritis, bronchitis, and cancer, and autoimmune diseases associated with overproduction of nitric oxide via inducible nitric oxide synthase It can be suitably used for medicine.

(3)本実施形態の一酸化窒素産生抑制剤は、好ましくは、有効成分である還元型スキトネミン又はスキトネミンがイシクラゲ由来である。したがって、より副作用が少なく、生体に対してより安全に適用することができる。   (3) In the nitric oxide production inhibitor of this embodiment, preferably, reduced-type skitonemin or skitonemine, which is an active ingredient, is derived from Ishi jellyfish. Therefore, there are few side effects and it can apply more safely with respect to a biological body.

なお、本実施形態の一酸化窒素産生抑制剤は、次のように変更して具体化することも可能である。
・本実施形態の一酸化窒素産生抑制剤は、有効成分である還元型スキトネミン又はスキトネミンにより、一酸化窒素の産生抑制作用を発揮する。それにより、一酸化窒素が関連する炎症の抑制効果を有効に発揮することができる。したがって、還元型スキトネミン又はスキトネミンを有効成分とする抗炎症剤として構成してもよい。
In addition, the nitric oxide production inhibitor of the present embodiment can be modified and embodied as follows.
-The nitric oxide production inhibitor of this embodiment exhibits a nitric oxide production inhibitory action by reduced-type skitonemin or skitonemine, which is an active ingredient. Thereby, the inhibitory effect of inflammation related to nitric oxide can be effectively exhibited. Therefore, you may comprise as an anti-inflammatory agent which uses reduced-type skitonemin or a skitonemin as an active ingredient.

・本実施形態の一酸化窒素産生抑制剤は、有効成分である還元型スキトネミン又はスキトネミンにより、LPS/INFγ誘導一酸化窒素産生に伴う細胞内シグナル伝達によって活性化されるMAPキナーゼ(p38,SAPK/JNK,ERK)、IκBα、STAT1の各活性を抑制する。したがって、還元型スキトネミン又はスキトネミンを有効成分とするMAPキナーゼ、IκBα、又はSTAT1の活性抑制剤として構成してもよい。   -The nitric oxide production inhibitor of this embodiment is a MAP kinase (p38, SAPK / activated by intracellular signal transduction associated with LPS / INFγ-induced nitric oxide production, by reduced-type skitonemin or skitonemin as an active ingredient. JNK, ERK), IκBα, and STAT1 activities are suppressed. Therefore, it may be configured as an activity inhibitor of MAP kinase, IκBα, or STAT1 containing reduced-type skitonemin or skitonemin as an active ingredient.

・本実施形態の一酸化窒素産生抑制剤は、例えば誘導型一酸化窒素合成酵素を介した一酸化窒素の過剰生産が関連する炎症性疾患及び自己免疫疾患の患者に好ましく適用される。しかしながら、治療の用途のみならず、健常者がこれらの各種症状の予防のために摂取してもよい。   -The nitric oxide production inhibitor of this embodiment is preferably applied to patients with inflammatory diseases and autoimmune diseases associated with, for example, excessive production of nitric oxide via inducible nitric oxide synthase. However, not only for therapeutic use, but also for healthy people may take in order to prevent these various symptoms.

・本実施形態の一酸化窒素産生抑制剤は、ヒト以外の動物、例えば、ウマ、ウシ、ブタのような家畜(非ヒト哺乳動物)、ニワトリ等の家禽、或いは犬、猫、ラット及びマウス等のペット(各種飼養動物)に投与してもよい。   -The nitric oxide production inhibitor of the present embodiment is a non-human animal, for example, domestic animals such as horses, cows and pigs (non-human mammals), poultry such as chickens, dogs, cats, rats and mice, etc. May be administered to other pets (various domestic animals).

・本実施形態の一酸化窒素産生抑制剤を実験用・研究用試薬として適用してもよい。一酸化窒素の産生が関係する生理作用のメカニズムの解明等を目的として用いることができる。   -You may apply the nitric oxide production inhibitor of this embodiment as a reagent for experiment and research. It can be used for the purpose of elucidating the mechanism of physiological action related to the production of nitric oxide.

次に、上記実施形態及び別例から把握できる技術的思想について記載する。
(イ) 還元型スキトネミン又はスキトネミンを有効成分とするMAPキナーゼ、IκBα、又はSTAT1の活性抑制剤。
Next, a technical idea that can be grasped from the above embodiment and another example will be described.
(I) An activity inhibitor of MAP kinase, IκBα, or STAT1 containing reduced-type skitonemin or skitonemin as an active ingredient.

(ロ) 還元型スキトネミン又はスキトネミンを有効成分として含有する自己免疫疾患の治療又は予防薬。
(ハ) 一酸化窒素産生抑制剤又は抗炎症剤の製造方法であって、水、親水性有機溶媒、又は水と親水性有機溶媒の混合溶媒を用いてイシクラゲから前記還元型スキトネミン又はスキトネミンを含む抽出物を抽出する抽出工程と、前記抽出物から前記還元型スキトネミン又はスキトネミンを単離する単離工程とを有する一酸化窒素産生抑制剤又は抗炎症剤の製造方法。
(B) A therapeutic or prophylactic agent for autoimmune diseases comprising reduced-type skitonemin or skitonemin as an active ingredient.
(C) A method for producing a nitric oxide production inhibitor or an anti-inflammatory agent, which comprises the reduced form of skitonemin or schitonemin from water jellyfish using water, a hydrophilic organic solvent, or a mixed solvent of water and a hydrophilic organic solvent. A method for producing a nitric oxide production inhibitor or anti-inflammatory agent, comprising: an extraction step for extracting an extract; and an isolation step for isolating the reduced-type skitonemin or skitonemine from the extract.

次に、実施例を挙げて上記実施形態をさらに具体的に説明する。
<1.還元型スキトネミン及びスキトネミンの抽出・単離>
イシクラゲの乾燥粉体(400g)にエタノール(4L)を添加して、室温にて2時間攪拌するとともに30分間静置した後、上清を回収した。また、沈殿物に対して、エタノール(4L)を添加して、室温にて2時間攪拌するとともに30分間静置した後、上清を回収した。この沈殿物に対する再抽出操作を合計10回繰り返した。得られた全ての上清をろ紙によりろ過するとともに、そのろ液を減圧濃縮することにより、イシクラゲ抽出物(20g)を得た。
Next, the above embodiment will be described more specifically with reference to examples.
<1. Extraction and isolation of reduced-type skitonemin and skitonemine>
Ethanol (4 L) was added to dried powder of jellyfish (400 g), stirred at room temperature for 2 hours and allowed to stand for 30 minutes, and then the supernatant was collected. In addition, ethanol (4 L) was added to the precipitate, stirred at room temperature for 2 hours and allowed to stand for 30 minutes, and then the supernatant was collected. The re-extraction operation for this precipitate was repeated a total of 10 times. All the obtained supernatants were filtered with a filter paper, and the filtrate was concentrated under reduced pressure to obtain Ishi jellyfish extract (20 g).

イシクラゲ抽出物に対して、複数のクロマトグラフィによる分画を組み合わせて行うことにより還元型スキトネミン及びスキトネミンの単離を行った。図1を参照して、還元型スキトネミン及びスキトネミンの単離工程について説明する。   The reduced schitonemin and schitonemin were isolated by combining a plurality of chromatographic fractions on the jellyfish extract. With reference to FIG. 1, the reduced-type skitonemin and the isolation process of skitonemin are demonstrated.

イシクラゲ抽出物(18g)について、中性シリカゲルを用いた吸引液体クロマトグラフィを行うことにより8画分に分画し、TLCによる標品との比較に基づいて還元型スキトネミン及びスキトネミンが含有される画分(NC−5)を回収した。画分NC−5について、中性シリカゲルを用いた液体カラムクロマトグラフィを行うことにより5画分に分画し、TLCによる標品との比較に基づいて還元型スキトネミン及びスキトネミンが含有される画分(NC−5−4、NC−5−5)を回収した。   The Ishi jellyfish extract (18 g) was fractionated into 8 fractions by performing suction liquid chromatography using neutral silica gel, and the fraction containing reduced skitonemin and skitonemin based on comparison with the standard by TLC (NC-5) was recovered. Fraction NC-5 was fractionated into 5 fractions by performing liquid column chromatography using neutral silica gel, and a fraction containing reduced skitonemin and skitonemin based on comparison with a standard by TLC ( NC-5-4, NC-5-5) were recovered.

画分NC−5−4について、更に中性シリカゲルを用いた液体カラムクロマトグラフィを行うことにより6画分に分画した。また、画分NC−5−5について、更に中性シリカゲルを用いた液体カラムクロマトグラフィを行うことにより4画分に分画した。そして、TLCによる標品との比較に基づいて還元型スキトネミン及びスキトネミンが含有される画分(NC−5−4−4,NC−5−4−5,NC−5−5−3)を回収するとともに、これらを一つに合わせて画分NC−5―Aとした。   Fraction NC-5-4 was further fractionated into 6 fractions by liquid column chromatography using neutral silica gel. Further, the fraction NC-5-5 was further fractionated into 4 fractions by liquid column chromatography using neutral silica gel. And based on the comparison with the sample by TLC, reduced fractions containing skitonemin and skitonemin (NC-5-4-4, NC-5-4-5, NC-5-5-3) are collected. At the same time, these were combined into one fraction NC-5-A.

画分NC−5―Aについて、Sephadex LH−20を用いた液体カラムクロマトグラフィを行うことにより8画分に分画した。そして、TLCによる標品との比較に基づいて還元型スキトネミンが含有される画分(NC−5−A−7)を回収するとともに、その画分NC−5―A−7について、ODS担体を用いた液体カラムクロマトグラフィを行うことにより還元型スキトネミンを単離した。   Fraction NC-5-A was fractionated into 8 fractions by liquid column chromatography using Sephadex LH-20. Then, based on the comparison with the standard by TLC, the fraction containing reduced skitonemin (NC-5-A-7) is recovered, and the ODS carrier is used for the fraction NC-5-A-7. The reduced form of skitonemin was isolated by performing the liquid column chromatography used.

スキトネミンは、図2に示されるように、NC−5−A−1の分画からさらに精製処理を行った。まず、NC−5―A−1(19.8mg)を、Sephadex LH−20カラムクロマトグラフィで2画分(NC−5−A−1−1,NC−5−A−1−2)に分画した。そのうち、NC−5−A−1−1について、NMRスペクトル測定及びTLC試験により精製度を確認しながら、Sephadex LH−20カラムクロマトグラフィにより分画した。さらに、ODS C18カラムクロマトグラフィを繰り返し行い、スキトネミンを単離した。 As shown in FIG. 2, skitonemine was further purified from the fraction of NC-5-A-1. First, NC-5-A-1 (19.8 mg) was fractionated into two fractions (NC-5-A-1-1, NC-5-A-1-2) by Sephadex LH-20 column chromatography. did. Among them, NC-5-A-1-1 was fractionated by Sephadex LH-20 column chromatography while confirming the degree of purification by NMR spectrum measurement and TLC test. In addition, ODS C 18 column chromatography was repeated to isolate skitonemin.

本実施例では、イシクラゲより単離した上記還元型スキトネミン及びスキトネミンの抗炎症作用について細菌感染時のマクロファージ(マウスマクロファージ細胞株 RAW264細胞株)をモデルとしたLPS/IFNγ誘導炎症反応系を用いて検討した。   In this example, the anti-inflammatory effect of the above-mentioned reduced form of skitonemin and skitonemin isolated from Ishikura jellyfish was examined using an LPS / IFNγ-induced inflammatory reaction system modeled on macrophages (mouse macrophage cell line RAW264 cell line) during bacterial infection. did.

<2.細胞培養>
マウスマクロファージRAW264細胞は、理化学研究所(茨城県つくば市)より入手した。RAW264細胞は、10%牛胎児血清、100U/mLペニシリン、100μg/mLストレプトレマイシン(以上Invitrogen, CA, USA)を含んだDMEM(Dulbecco’s modified Eagle’s medium; Thermo Fisher Scientifics, K. K, MA, USA)にて、95%空気−5%CO環境下で培養した。
<2. Cell culture>
Mouse macrophage RAW264 cells were obtained from RIKEN (Tsukuba City, Ibaraki Prefecture). RAW264 cells are DMEM (Dulbecco's modified Eagle's medium) containing 10% fetal bovine serum, 100 U / mL penicillin, 100 μg / mL streptromycin (above Invitrogen, CA, USA); Thermo Fisher Scientifics, KK, MA, USA ) at, and cultured under 95% air -5% CO 2 environment.

<3.還元型スキトネミン及びスキトネミンによるRAW264細胞への影響>
前記RAW264細胞を2×10cells/mLに調製し、24ウェルマルチプレート(Thermo Fisher Scientifics)に500μLずつ播種した。播種後、還元型スキトネミン及びスキトネミンを終濃度がそれぞれ0.5μM,1μM,2.5μMとなるように、各濃度で添加し、2時間前培養を行った。前処理の後、LPS(終濃度:200ng/mL)とIFNγ(終濃度:25ng/mL)を加え24時間処理した。24時間後、産生した一酸化窒素(NO)をGriess試薬(Promega, WI, USA)により発色させ、吸光度計(コロナ電気、茨城県)により、540nmにより検出した。結果を図3に示す。尚、データは平均±標準誤差で表した。2群間の比較にはStudent’s t-検定を行った。5%有意を*、1%有意を**とした。また、図中、LPS及びIFNγの欄において、+が添加有り、−が添加なしを示す。
<3. Effects of reduced form of skitonemin and scytonemin on RAW264 cells>
The RAW264 cells were prepared to 2 × 10 5 cells / mL, and 500 μL each was seeded on a 24-well multiplate (Thermo Fisher Scientifics). After sowing, reduced-type skitonemin and skitonemin were added at respective concentrations so that the final concentrations were 0.5 μM, 1 μM, and 2.5 μM, respectively, and precultured for 2 hours. After the pretreatment, LPS (final concentration: 200 ng / mL) and IFNγ (final concentration: 25 ng / mL) were added and treated for 24 hours. After 24 hours, the produced nitric oxide (NO) was developed with Griess reagent (Promega, WI, USA) and detected at 540 nm with an absorptiometer (Corona Electric, Ibaraki). The results are shown in FIG. The data was expressed as mean ± standard error. For comparison between the two groups, Student's t-test was performed. 5% significance was marked * and 1% significance was marked **. Further, in the figure, in the columns of LPS and IFNγ, + indicates that there is an addition and − indicates that there is no addition.

図3に示されるように、還元型スキトネミン処理は各濃度処理においてスキトネミン処理よりも有意にNOの産生を抑制した。
<4.ウエスタンブロッティング>
還元型スキトネミンのLPS/IFNγ誘導NO産生に伴う細胞内シグナル伝達に対する影響をウエスタンブロット法により検討した。LPS/IFNγ誘導によるNO産生シグナルにおいてiNOS及び炎症関連遺伝子の核内転写因子であるCOX-2について検討した。
As shown in FIG. 3, the reduced-type skitonemin treatment significantly suppressed the production of NO in each concentration treatment as compared with the skitonemin treatment.
<4. Western blotting>
The effect of reduced skitonemin on intracellular signal transduction associated with LPS / IFNγ-induced NO production was examined by Western blotting. We investigated COX-2, a nuclear transcription factor for iNOS and inflammation-related genes, in the NO production signal induced by LPS / IFNγ.

<4−1.細胞溶解サンプルの回収>
細胞数を2×10cells/mLに調製し、6ウェルマルチプレートに1mLずつ播種した。一晩培養後、還元型スキトネミンを終濃度が1μMとなるようにそれぞれ添加し、2時間前培養を行った。前処理の後、LPS(終濃度:200ng/mL)とIFNγ(終濃度:25ng/mL)を加え24時間処理した。刺激24時間後にプレートをPBS(-)で洗浄し(0.5mL×2回)、2%Protease inhibitor、2%Phosphatase含有, RIPA Buffer(25mM Tris-HCl pH7.6, 150mM NaCl, 1%NP-40, 1%Sodium deoxycholate, 0.1%SDS)を用いて細胞を溶解後、セルスクレーパーにて細胞を回収した。サンプル溶液中のタンパク質濃度は、Bio Rad DC プロテインアッセイキット(Bio Rab, Hercules, CA, USA)により測定した。タンパク濃度を調整したサンプル溶液に、10%メルカプトエタノール含有サンプルバッファーを加えて98℃で5分間加熱し、ウエスタンブロッティングに供した。
<4-1. Collection of cell lysis sample>
The number of cells was adjusted to 2 × 10 5 cells / mL, and 1 mL each was seeded on a 6-well multiplate. After overnight culture, reduced-type skitonemin was added to a final concentration of 1 μM, and pre-culture was performed for 2 hours. After the pretreatment, LPS (final concentration: 200 ng / mL) and IFNγ (final concentration: 25 ng / mL) were added and treated for 24 hours. After 24 hours of stimulation, the plate was washed with PBS (-) (0.5 mL x 2), containing 2% protease inhibitor, 2% Phosphatase, RIPA Buffer (25 mM Tris-HCl pH 7.6, 150 mM NaCl, 1% NP- The cells were lysed using 40, 1% sodium deoxycholate, 0.1% SDS), and the cells were collected with a cell scraper. The protein concentration in the sample solution was measured with a Bio Rad DC protein assay kit (Bio Rab, Hercules, CA, USA). A sample buffer containing 10% mercaptoethanol was added to the sample solution with the adjusted protein concentration, heated at 98 ° C. for 5 minutes, and subjected to Western blotting.

<4−2.SDS−PAGE>
泳動槽に12%ゲルをセットし、泳動バッファー(Bio Rad Tris/Glycine Buffer)を泳動槽の3分の1まで入れた。ゲルの各レーンに10μLずつサンプルをアプライし(先頭の使用しないレーンには、等量のタンパク質分子量マーカーをアプライ)、120Vで1〜1.5時間泳動してサンプルのタンパク質を分離した。
<4-2. SDS-PAGE>
12% gel was set in the electrophoresis tank, and electrophoresis buffer (Bio Rad Tris / Glycine Buffer) was added to one third of the electrophoresis tank. 10 μL of sample was applied to each lane of the gel (equal amount of protein molecular weight marker was applied to the first unused lane), and the sample protein was separated by electrophoresis at 120 V for 1 to 1.5 hours.

<4−3.ウエスタンブロッティング>
泳動後、ガラスプレートからゲルを慎重に外し、不要な濃縮ゲルを切り取り、10%ブロッティングバッファー(Tris/Glycine Buffer, Bio Rad)、20%メタノール、及び70%超純水からなる溶液に浸したろ紙の上へ移した。PVDF(Polyvinylidene difluoride)膜(Santa Cruz Biotechnology, CA, USA)は、メタノールに1分間浸し、親水化処理後、ブロッティングバッファーに浸して平衡化した。ブロッティングバッファーをよく染み込ませたスポンジとろ紙にSDS-PAGEで得たゲルと、PVDF膜を挟み、泳動槽にセット後、氷水で冷やしながら、60Vで90分間泳動し、タンパク質をPVDF膜に転写した。
<4-3. Western blotting>
After electrophoresis, carefully remove the gel from the glass plate, cut out the unnecessary concentrated gel, and filter paper soaked in a solution consisting of 10% blotting buffer (Tris / Glycine Buffer, Bio Rad), 20% methanol, and 70% ultrapure water. Moved to the top. A PVDF (Polyvinylidene difluoride) membrane (Santa Cruz Biotechnology, CA, USA) was immersed in methanol for 1 minute, hydrophilized, and then immersed in a blotting buffer for equilibration. The gel obtained by SDS-PAGE and a PVDF membrane are sandwiched between a sponge and filter paper soaked in blotting buffer well, set in the electrophoresis tank, and then run for 90 minutes at 60 V while cooling with ice water to transfer the protein to the PVDF membrane. .

ブロッティング終了後、PVDF膜を5%脱脂粉乳(Difco Laboratories Inc, MI, USA)−0.1%Tween 20含有トリス緩衝化生理食塩水(T-TBS)溶液に浸して1時間ブロッキング処理した。PVDF膜をT-TBSで5分間、3回洗浄後、iNOS及びCOX-2に対応する各モノクローナル抗体(一次抗体)を含有する溶液に浸して4℃で一晩振とうした。翌日、T-TBSで振とう洗浄し(10分間×3回)、二次抗体(5%脱脂粉乳含有T-TBS溶液)に浸して1時間振とうした。その後、PVDF膜をT-TBSにて洗浄し(10分間×3回)、ECL Plus(GE Healthcare UK Ltd, Amersham Place , England)を用い、化学発光検出装置(Davinch-Chemi, 和光純薬工業社製、大阪)により検出した。尚、β−アクチンが、本実験において蛋白質発現量の標準マーカーとして用いられた。結果を図4(a)に示す。尚、図中、LPS/IFNγの欄及びR-scytonemin欄において、+が添加有り、−が添加なしを示す。   After completion of blotting, the PVDF membrane was immersed in 5% non-fat dry milk (Difco Laboratories Inc, MI, USA) -0.1% Tween 20-containing Tris buffered saline (T-TBS) for blocking for 1 hour. The PVDF membrane was washed 3 times with T-TBS for 5 minutes, immersed in a solution containing each monoclonal antibody (primary antibody) corresponding to iNOS and COX-2, and shaken at 4 ° C. overnight. The next day, it was washed with T-TBS with shaking (10 minutes × 3 times), immersed in a secondary antibody (T-TBS solution containing 5% nonfat dry milk) and shaken for 1 hour. Thereafter, the PVDF membrane was washed with T-TBS (10 minutes × 3 times), and a chemiluminescence detector (Davinch-Chemi, Wako Pure Chemical Industries, Ltd.) using ECL Plus (GE Healthcare UK Ltd, Amersham Place, England) Manufactured by Osaka). In this experiment, β-actin was used as a standard marker for protein expression level. The results are shown in FIG. In the figure, in the LPS / IFNγ column and R-scytonemin column, + indicates addition and-indicates no addition.

<5.iNOSのmRNA発現>
還元型スキトネミンのLPS/IFNγ誘導NO産生に伴う細胞内シグナル伝達に対するiNOS mRNAの影響をRT-PCR法により検討した。
<5. iNOS mRNA expression>
The effect of iNOS mRNA on intracellular signal transduction associated with LPS / IFNγ-induced NO production of reduced skitonemin was examined by RT-PCR.

<5−1.総RNAの抽出及びPCR>
2×10cells/mLに調整したRAW264細胞を6ウェルマルチプレートに播種し、12時間前培養した。その後、LPS/IFNγで12時間刺激後、PBS(-)で3度洗浄した。洗浄後、Trizol(invitogen)を1mL/ウェル加え細胞を溶解後、1.5mLのエッペンチューブに移した。次に200μLのクロロホルムを加え、30秒ボルテックス後、11500rpm、15分間、4℃で遠心し、上澄みを再び新しい1.5mLエッペンチューブに移した後、2−プロパノールを加え、10分間静置させた。10分後、11500rpm、10分間、4℃で遠心し、上澄みを慎重に除去し、ペレットを500μLの75%EtOHで洗浄した。ペレットを9000rpm、5分間、4℃にて遠心することで回収し、洗浄液を慎重に捨て、30分間風乾させた。30分後、180μLのDEPC水(invitrogen)、20μLの10×Buffer(Takara bio, Ohtsu, Japan)、2μLのDNase1を加え、37℃で1時間反応させた。その後、40μLの酢酸ナトリウム(日本ジーン社、東京、3M、pH5.2)と150μLのフェノールクロロホルム溶液(invitrogen)を加え、ボルテックスした。フェノールクロロホルム・サンプル溶液の入ったチューブを15000rpm、5分間遠心後、上清を新しい1.5mLエッペンチューブに移し、800μLのエタノールにて総RNAを抽出した。その後15000rpm、30分間、4℃にて遠心し、総RNAを回収した。最後に上清を捨て、風乾後、DNase-RNaseフリー水に溶解させ、試験に供した。尚、GAPDHが、本実験においてmRNA発現量の標準マーカーとして用いられた。
<5-1. Total RNA extraction and PCR>
RAW264 cells adjusted to 2 × 10 5 cells / mL were seeded in a 6-well multiplate and pre-cultured for 12 hours. Then, after stimulation with LPS / IFNγ for 12 hours, the plate was washed 3 times with PBS (−). After washing, Trizol (invitogen) was added at 1 mL / well to lyse cells, and then transferred to a 1.5 mL Eppendorf tube. Next, 200 μL of chloroform was added, vortexed for 30 seconds, centrifuged at 11500 rpm for 15 minutes at 4 ° C., the supernatant was again transferred to a new 1.5 mL Eppendorf tube, 2-propanol was added, and the mixture was allowed to stand for 10 minutes. . Ten minutes later, it was centrifuged at 11500 rpm for 10 minutes at 4 ° C., the supernatant was carefully removed and the pellet was washed with 500 μL of 75% EtOH. The pellet was collected by centrifugation at 9000 rpm for 5 minutes at 4 ° C., and the washing solution was carefully discarded and allowed to air dry for 30 minutes. After 30 minutes, 180 μL of DEPC water (invitrogen), 20 μL of 10 × Buffer (Takara bio, Ohtsu, Japan), 2 μL of DNase1 were added and reacted at 37 ° C. for 1 hour. Thereafter, 40 μL of sodium acetate (Nippon Gene, Tokyo, 3M, pH 5.2) and 150 μL of phenol chloroform solution (invitrogen) were added and vortexed. After the tube containing the phenol chloroform sample solution was centrifuged at 15000 rpm for 5 minutes, the supernatant was transferred to a new 1.5 mL Eppendorf tube, and total RNA was extracted with 800 μL of ethanol. Thereafter, the mixture was centrifuged at 15000 rpm for 30 minutes at 4 ° C. to collect the total RNA. Finally, the supernatant was discarded, air-dried, dissolved in DNase-RNase-free water, and used for the test. GAPDH was used as a standard marker for mRNA expression level in this experiment.

バイオフォトメーターでサンプルの総RNA量を測定後、それぞれのRNAサンプルを100ng/μLに調整した。タカラバイオPrime Script RT regent kitを用いて逆転写反応を行った。PCR条件は、熱変性94℃:5分と、熱変性94℃:0.5分、アニーリング55℃:0.5分、及び伸長反応72℃:0.5分からなる一連の工程を30サイクルと、伸長反応72℃:7分と、保存4℃:無限とした。PCRに使用したプライマーとして、iNOS:配列番号1(forward)、iNOS:配列番号2(reverse)、GAPDH:配列番号3(forward)、及びGAPDH:配列番号4(reverse)を使用した。   After measuring the total RNA amount of the sample with a biophotometer, each RNA sample was adjusted to 100 ng / μL. Reverse transcription reaction was performed using Takara Bio Prime Script RT regent kit. PCR conditions were heat denaturation 94 ° C .: 5 minutes, heat denaturation 94 ° C .: 0.5 minutes, annealing 55 ° C .: 0.5 minutes, and extension reaction 72 ° C .: 0.5 minutes and 30 cycles. Extension reaction 72 ° C .: 7 minutes and storage 4 ° C .: infinite. As primers used for PCR, iNOS: SEQ ID NO: 1 (forward), iNOS: SEQ ID NO: 2 (reverse), GAPDH: SEQ ID NO: 3 (forward), and GAPDH: SEQ ID NO: 4 (reverse) were used.

逆転写反応で得たサンプルDNAを下記表1の反応溶液を用いて半定量的RT-PCR反応を行った(条件:表1参照)。その後、1×TAE−2%アガロースゲル電気泳動法により、iNOSのmRNA発現を検討した。結果を図4(b)に示す。尚、図中、LPS/IFNγの欄及びR-scytonemin欄において、+が添加有り、−が添加なしを示す。   The sample DNA obtained by the reverse transcription reaction was subjected to a semiquantitative RT-PCR reaction using the reaction solution shown in Table 1 below (conditions: see Table 1). Thereafter, iNOS mRNA expression was examined by 1 × TAE-2% agarose gel electrophoresis. The results are shown in FIG. In the figure, in the LPS / IFNγ column and R-scytonemin column, + indicates addition and-indicates no addition.

<6.ウエスタンブロットとmRNA発現の結果>
図4(a)に示されるように、還元型スキトネミン処理することで、LPS/IFNγ誘導iNOS及びCOX-2のタンパク発現が無処理の細胞(LPS/IFNγ誘導処理あり)と比較して有意に低下した。また、図4(b)に示されるように、還元型スキトネミンのiNOS mRNA発現に対する影響を半定量的RT-PCR法にて検討したところ、還元型スキトネミン処理することにより、iNOS mRNA発現が有意に低下した。以上により、還元型スキトネミンはiNOS mRNA発現を抑制し、iNOSタンパクの発現量を低下させることで炎症反応を引き起こすNO産生を減少させたと推察された。
<6. Western blot and mRNA expression results>
As shown in FIG. 4 (a), LPS / IFNγ-induced iNOS and COX-2 protein expression was significantly higher than that of untreated cells (with LPS / IFNγ-induced treatment). Declined. Further, as shown in FIG. 4 (b), when the effect of reduced skitonene on iNOS mRNA expression was examined by a semiquantitative RT-PCR method, iNOS mRNA expression was significantly increased by treatment with reduced skitonene. Declined. Based on the above, it was speculated that reduced skitonene reduced iNOS mRNA expression and decreased iNOS protein expression level, thereby reducing NO production causing inflammatory reaction.

<7.還元型スキトネミンの細胞内NO産生シグナルに対する影響>
還元型スキトネミンのLPS/IFNγ誘導NO産生に伴う細胞内シグナル伝達に対する影響をウエスタンブロット法により検討した。LPS/IFNγ誘導によるNO産生シグナルにおいて活性化されるMAPキナーゼ(p38, SAPK/JNK, ERK)、IκBα、STAT1について検討した。ウエスタンブロット法は、MAPキナーゼ等に対応する市販の各モノクローナル抗体を使用するとともに、上記<4.ウエスタンブロッティング>欄に記載の方法に従った。尚、β−アクチンが、本実験において蛋白質発現量の標準マーカーとして用いられた。結果を図5(a)(b)に示す。尚、図5の各レーン(0,15,30,60)は、LPS/IFNγを添加してからの処理時間(分)を示す。
<7. Effect of reduced skitonemin on intracellular NO production signal>
The effect of reduced skitonemin on intracellular signal transduction associated with LPS / IFNγ-induced NO production was examined by Western blotting. MAP kinases (p38, SAPK / JNK, ERK), IκBα, and STAT1 activated by LPS / IFNγ-induced NO production signals were examined. Western blotting uses commercially available monoclonal antibodies corresponding to MAP kinase and the like, and <4. Western blotting> The method described in the column was followed. In this experiment, β-actin was used as a standard marker for protein expression level. The results are shown in FIGS. 5 (a) and 5 (b). In addition, each lane (0, 15, 30, 60) of FIG. 5 shows the processing time (minute) after adding LPS / IFNγ.

図5(a)(b)に示されるように、還元型スキトネミンは、LPS/IFNγ誘導炎症シグナルにおいてMAPキナーゼ、IκBα、及びSTAT1の活性化を有意に抑制した。例えば、図6に示されるように、還元型スキトネミンはMAPキナーゼ、Iκ-B、STAT1の活性化を阻害し、下流となるAP-1の活性化やNFκ-Bの核移行を抑制することにより、iNOS発現を減少させ、最終的にNO産生を低下させたと推察された。   As shown in FIGS. 5 (a) and 5 (b), reduced skitonene significantly suppressed the activation of MAP kinase, IκBα, and STAT1 in LPS / IFNγ-induced inflammatory signals. For example, as shown in FIG. 6, reduced skitonene inhibits activation of MAP kinase, Iκ-B, and STAT1, and suppresses downstream activation of AP-1 and NFκ-B nuclear translocation. It was speculated that iNOS expression was decreased and NO production was finally decreased.

Claims (1)

還元型スキトネミンを有効成分として含有することを特徴とする誘導型一酸化窒素合成酵素を介した細菌性炎症に対する抗炎症剤。 Anti-inflammatory agents against bacterial inflammation via inducible nitric oxide synthase, characterized by containing a reduced form Sukitonemi in as an active ingredient.
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